Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Изучение нетрадиционных регуляторов роста в культуре ткани картофеля

Диссертация: Изучение нетрадиционных регуляторов роста в культуре ткани картофеля
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Методы культуры клеток и тканей способствуют ускоренному решению фундаментальных и прикладных проблем экспериментальной биологии растений. Картофель является удобным объектом для биотехнологических исследований (Сидоров и др., 1990; Nerem, 1991; Potato, 1993; Belknap et al., 1994), и, в частности, для изучения новых, нетрадиционных в культуре тканей регуляторов роста (крезацин, мивал, гумат… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Микроклональное размножение и длительное депонирование растений картофеля in vitro
      • 1. 1. 1. Гормональные и трофические факторы
      • 1. 1. 2. Свет, фотопериод, температура
      • 1. 1. 3. Генотип
      • 1. 1. 4. Способы микроклонального размножения и поддержания сортовых коллекций картофеля in vitro
    • 1. 2. Процессы регенерации картофеля in vitro
      • 1. 2. 1. Гормональные факторы
      • 1. 2. 2. Трофические факторы
      • 1. 2. 3. Свет, фотопериод, температура
      • 1. 2. 4. Генотип
      • 1. 2. 5. Возраст и тип экспланта
      • 1. 2. 6. Механизмы процессов морфогенеза в культуре тканей картофеля
    • 1. 3. Клубнеобразование in vitro
      • 1. 3. 1. Гормональные факторы
      • 1. 3. 2. Трофические факторы
      • 1. 3. 3. Свет, фотопериод, температура
      • 1. 3. 4. Генотип
      • 1. 3. 5. Механизмы процесса клубнеобразования картофеля in vitro
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Генотип
    • 2. 2. Техника культивирования in vitro
    • 2. 3. Характеристика регуляторов роста
    • 2. 4. Статистическая обработка результатов
  • ГЛАВА 3. ПЕРВИЧНЫЙ БИОСКРИНИНГ РЕГУЛЯТОРОВ РОСТА, ИХ ВЛИЯНИЕ НА ПРОЦЕССЫ МОРФОГЕНЕЗА И КАЛЛУСОГЕНЕЗА
    • 3. 1. Цитодеф
      • 3. 1. 1. Влияние цитодефа на процессы прямого морфогенеза
      • 3. 1. 2. Сравнение морфогенетического действия регулятора роста цитодефа и его химического аналога тидиазурона (дропп)
      • 3. 1. 3. Влияние цитодефа на процессы регенерации из каллусной ткани
      • 3. 1. 4. Влияние цитодефа на процессы каллусогенеза
    • 3. 2. Гумат натрия
      • 3. 2. 1. Влияние гумата натрия на процессы прямого морфогенеза
      • 3. 2. 2. Влияние гумата натрия на процессы регенерации из каллусной ткани
      • 3. 2. 3. Влияние гумата натрия на процессы каллусогенеза
  • ГЛАВА 4. ВЛИЯНИЕ РЕГУЛЯТОРОВ РОСТА НА ПРОЦЕССЫ МИКРОКЛОНАЛЬНОГО РАЗМНОЖЕНИЯ И ДЛИТЕЛЬНОГО ДЕПОНИРОВАНИЯ КАРТОФЕЛЯ IN VITRO
    • 4. 1. Микроклональное размножение
      • 4. 1. 1. Цитодеф
      • 4. 1. 2. Гумат натрия
    • 4. 2. Длительное депонирование растений картофеля in vitro
      • 4. 2. 1. Цитогенетическое действие регуляторов роста
  • ГЛАВА 5. ВЛИЯНИЕ РЕГУЛЯТОРОВ РОСТА НА ПРОЦЕССЫ КЛУБНЕОБРАЗОВАНИЯ IN VITRO
    • 5. 1. Цитодеф
    • 5. 2. Тидиазурон
    • 5. 3. Гумат натрия
  • ВЫВОДЫ

Изучение нетрадиционных регуляторов роста в культуре ткани картофеля (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Картофель (Solanum tuberosum L.) является одной из важнейших продовольственных культур (Бутенко, 1964; Глеба, Сытник, 1985). По этой культуре накоплен ценный теоретический материал и стала реальной разработка клеточных технологий, необходимых сельскохозяйственному производству (Wang, Ни, 1982; Bajaj, Sopory, 1986; Есипова, 1987; Мелик-Саркисов, Фадеева, 1989). Разработаны способы культивирования соматических клеток различных органов (листьев, стеблей, клубней, корней и т. д.), а также культура пыльников и протопластов, получение гаплоидных и полиплоидных растений картофеля, используемых в качестве ценного исходного материала для селекции (Бутенко, 1964; Okazawa, 1967; Murashige, 1974; Чайлахян, 1984; Хромова, 1984; BaJaJ, 1987; Philip, 1990; Матвеева, Паршикова, 1992; Rokka et al., 1996; Лигай, 1997). Получены межвидовые, межродовые и межсемейственные гибриды с важными признаками устойчивости к болезням и неблагоприятным факторам среды (Melchers, Sacristan, 1978; Бутенко, Кучко, 1979; Сидоров и др., 1990).

Методы культуры клеток и тканей способствуют ускоренному решению фундаментальных и прикладных проблем экспериментальной биологии растений. Картофель является удобным объектом для биотехнологических исследований (Сидоров и др., 1990; Nerem, 1991; Potato, 1993; Belknap et al., 1994), и, в частности, для изучения новых, нетрадиционных в культуре тканей регуляторов роста (крезацин, мивал, гумат натрия, цитодеф, эль-1, цикоцель и др.).

Изучение нетрадиционных для культуры тканей регуляторов роста проводится с целью поиска более доступных и достаточно эффективных препаратов по сравнению с традиционно используемыми синтетическими аналогами природных фитогормонов (кинетин, зеатин, ИУК, ИМК, а-НУК). Это позволит интенсифицировать и удешевить современные технологии получения регенерантов из меристемного материала с целью его оздоровления от вирусов, при микроклональном размножении ценного посадочного материала, в селекции и генно-инженерных работах при получении мутантных или трансформированных растений-регенерантов, а также с целью производства микроклубневого посадочного материала.

Целью данной работы является скрининг регуляторов роста, применяемых в различных отраслях растениеводства, на предмет их возможной активности в культуре ткани. В соответствии с вышеизложенным были поставлены следующие задачи:

1. Провести первичный биоскрининг нетрадиционных для культуры тканей регуляторов роста различного типа действия и отобрать несколько наиболее эффективных регуляторов для дальнейшего их изучения в культуре ткани картофеля.

2. Изучить действие отобранных регуляторов роста на процессы прямого морфогенеза и каллусогенеза картофеля in vitro у разных генотипов картофеля.

3. Изучить действие отобранных регуляторов роста на процессы морфогенеза из каллусной ткани разных генотипов картофеля.

4. Выявить влияние отобранных регуляторов роста на процессы микроклонального размножения картофеля разных генотипов.

5. Изучить действие отобранных регуляторов роста на процесс клубнеобразования in vitro у разных генотипов картофеля.

выводы.

1. Проведен первичный биоскрининг нетрадиционных для культуры тканей картофеля регуляторов роста (эпин, цикоцель, эль-1, крезацин, мивал, цитодеф, гумат натрия) и выделены два перспективных препарата цитодеф и гумат натрия.

2. Показана высокая эффективность регулятора роста цитодеф (1,0 мг/л) в сочетании с ИУК (0,5 мг/л) в процессах прямого морфогенеза у картофеля сорта Невский.

3. Ингибирующее действие цитодефа (1,0 — 3,0 мг/л и выше) и гумата натрия (20,0 — 50,0 мг/л) на рост стебля растений картофеля позволяет их использовать для длительного депонирования картофеля in vitro.

4. Использование цитодефа в концентрации 0,01 и 20,0 мг/л у сортов Невский и Удача, 0,5 мг/л кинетина у сорта Жуковский ранний обеспечивает быстрое формирование микроклубней (2−3 недели).

5. Оптимальная концентрация цитодефа для получения максимального количества крупных микроклубней составляет 5,0 мг/л.

6. Для получения максимального урожая клубней в течение 2-х месяцев целесообразно использовать цитодеф в концентрациях 5,0, 10,0 мг/л у сортов Невский и Жуковский ранний, 20,0 мг/л у сорта Удача, и гумат натрия в концентрации 0,001 — 0,1 мг/л у сорта Невский, 20,0 мг/л у сорта Удача.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В результате проделанной работы показана возможность использования нетрадиционных для культуры ткани картофеля регуляторов роста. Впервые проведено детальное изучение свойств регуляторов роста цитодеф, гумат натрия в культуре тканей картофеля различных генотипов. Показана принципиальная возможность их использования в культуре in vitro.

Первичный биоскрининг показал низкую морфогенетическую активность регуляторов роста эпина, цикоцеля, крезацина, мивала, эль-1. Однако эффективность используемых препаратов в культуре in vitro зависит от многих факторов, таких как концентрация, генотип, время года, тип и возраст экспланта. В связи с этим необходимо более детальное изучение вышеперечисленных регуляторов роста. Перспективно изучение использования адаптогенных препаратов мивала и крезацина при введении эксплантов в стерильную культуру или при длительном депонировании растений in vitro. Ретардантные свойства цикоцеля, возможно, найдут применение при длительном депонировании растений для замедления роста или в технологии клубнеобразования in vitro.

Применение нетрадиционных для культуры тканей картофеля регуляторов роста позволяет значительно удешевить технологии первичного семеноводства. Экономическая оценка эффективности применения цитодефа в культуре ткани показала, что благодаря высокой эффективности данного регулятора и его низкой стоимости снижение затрат на каждые 100 растений-регенерантов составило 66,2%. В технологии получения микроклубней затраты снизились на 11,3% (на 1000 микроклубней).

Результаты данной диссертационной работы могут быть использованы в таких технологиях, как получение микроклубневого посадочного материала, длительное депонирование растений in vitro, получение растений-регенерантов из эксплантов стеблевого происхождения с целью их интенсификации и удешевления.

ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА, ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ.

Экономическая оценка эффективности регулятора роста цитодефа показала возможность использования данного препарата в различных технологиях первичного семеноводства картофеля (табл.44).

Показать весь текст

Список литературы

  1. Э.Р., Алешин Н. Е., Харченко П. Н. Использование крезацина в биотехнологии риса // Тезисы докладов V международной конференции «Регуляторы роста и развития растений» (29 июня -1 июля 1999 года): М., МСХА, 1999, С. 303.
  2. Н.Г., Поликарпова, Колосова, Цитокининовая активность регуляторов роста и развития растений, выделенных из торфов // Физиология растений, — 1987.- Т.34.- Вып.З.- С. 577−582.
  3. В. А., Мелик-Саркисов О.С. Генотипические особенности морфогенеза в каллусных культурах, раз личных сортов картофеля // С.-х. биология.- 1985.- № 3- С.67−70.
  4. М. Морфофизиологические особенности регенерации генотипов картофеля in vitro: Автореф. дис. .канд. биол. наук. Душанбе.-1998,-24 с.
  5. .Г., Белуга Т. А. Каллусообразование у сортов картофеля // Докл. ВАСХНИЛ, — 1991, — Т. 3, С. 14−17.
  6. С.М., Думбай И. Н., Кочканян P.O., Горовая А. И. Комплексообразующая способность веществ гуминовой природы в почве // Химия в сельск. хоз-ве М.-1994, — № 5, — С. 8−10.
  7. Ю.А., Шаповалов А. А., Жирмунская Н. М., Овсянникова Т. В. О взаимосвязи рострегулирующей активности и фитотоксичности ситетических цитокининов // Докл. АНСССР.- 1981, — Т.257.-№ 6.-С. 1514−1516.
  8. А.А., Маашева М. Влияние препарата дропп на размножение винограда in vitro // Тезисы докладов VI международной конференции «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях» (26−28 июня 2001 года): М., МСХА, 2001, С. 140.
  9. Л.Г., Бабаев С. А., Солянова Л. Г. Производство пробирочных растений картофеля на основе биотехнологии в культуре in vitro в условиях юго-востока Казахстана // Вестник с./х. науки Казахстана 1992. -№ 3, — С. 85−86.
  10. Л.Ф., Трифонова М. Ф., Горовая А. И. Фотосинтетические процессы в растениях при введении гумата натрия в питательный раствор // Известия МСХА, Вып. 2, — 1992, — С. 82−94.
  11. А.Б., Бутенко Р. Г. Коллекция пробирочных растений картофеля // Научно-техн.бюлл. ВИР, — 1984, — Вып. 145.- С. 50−52.
  12. Р.Г. Рост и развитие картофеля в культуре in vitro. // Регуляция роста и развития картофеля, М.: Наука, — 1964, — С. 205 — 213.
  13. Р.Г., Кучко А. А. Получение межвидового соматического гибрида картофеля методом слияния изолированных протопластов // Докл. АН 1979,-Т. 247.-№ 2.-С. 491.
  14. Р.Г. Культура изолированных протопластов, клеток и тканей в решении задач физиологии растений // Новые направления в физиологии растений, 1985, С. 16−32.
  15. Р.Г. Экспериментальный морфогенез и дифференциация в культуре клеток растений. // XXXV Тимирязевские чтения,-М.: Наука,-1975.-51 с.
  16. Р.Г. Некоторые физиологические проблемы при культивировании in vitro картофеля // Регуляция роста и развития картофеля. -М, — 1990,-С. 88−98.
  17. О.Д., Казакова Е. А., Фотосинтез в культуре первичного каллуса картофеля // Фотосинтез и фотобиотехнология: Тез.докл. и сообщ. Междунар. конф., Пущино, 16−23 июня 1991.-С. 106−107.
  18. Г. Н., Бутенко Р. Г. Применение черенкования при выращивании безвирусных растений картофеля методом культуры меристемы. // Физиология растений,-1970, — Т.Н.- Вып.4, — С. 851−853.
  19. О.Н., Кутас Е. Н. Влияние тидиазурона на размножение in vitro голубики (Vaccinium corumbosum L.) // Тезисы докладов V международной конференции «Регуляторы роста и развития растений» (29 июня -1 июля 1999 года): М., МСХА, 1999, С. 312.
  20. В.А. Использование тидиазурона в культуре эмбриональных тканей плодовых растений // Тезисы докладов V международной конференции «Регуляторы роста и развития растений» (29 июня -1 июля 1999 года): М., МСХА, 1999, С.313−314.
  21. Ю.Ю., Сытник К. М. Клеточная инженерия растений.-Киев: Наукова думка, 1985. 187 с.
  22. Л.А., Каспарова И. П. Модификация генетического эффекта гексахлорциклогексана воздействием гумата натрия у традесканции клона 02 // Использ. биосфер, и модел. объектов для генет. мониторинга загрязнителей окружающей среды. Ереван, 1987, С. 32.
  23. А.С. Разработка лабораторной технологии получения гиногенных растений моркови in vitro: Автореф. дис. .канд. с.-х. наук.- М.-2001,23 с.
  24. .А. Методика полевого опыта,— М.: Колос, 1985.334 с.
  25. В. Будущность генетико-селекционных технологий. // Экономист. 1998. — № 1, с.22−24.
  26. П.Г., Кондратенко С. И., Чернышенко Т. В. Изыскание перспективных препаратов, обладающих фитогормональной активностью //
  27. Тезисы докладов V международной конференции «Регуляторы роста и развития растений» (29 июня -1 июля 1999 года): М&bdquo- МСХА, 1999, С. 289−290.
  28. З.И. Клубнеобразование in vitro как способ получения посадочного материала в первичном семеноводстве картофеля. // Селекция и семеноводство.- 1987.-№ 3.- С. 51−53.
  29. Н.Н. Изучение вариантов питательной среды для депонирования растущей коллекции картофеля in vitro // Использование клеточных технологий в селекции картофеля: Науч. Тр. НИИКХ.- М.- 1987.-С. 110−113.
  30. М.А., Бигалиев А. Б., Соломина В. Ф. Получение регенерантов картофеля в системе in vitro на различных питательных средах. // Вопросы селекции и интродукции растений Центрального Казахстана, Караганда, — 1988, — С. 72−84.
  31. Н.М. Методы скрининга регуляторов роста растений // Агрохимия.- 1984, — № 4, — С. 119−135.
  32. Е.М. Гуминовые вещества морских донных отложений // Гуминовые вещества в биосфере. М, — 1993. — С. 57−66.
  33. Т.Н. Регенерационные процессы и сомаклональная вариабельность в культуре тканей новых сортов картофеля: Автореф. дис. .канд. с.-х. наук. М.- 1994.- 22 с.
  34. А. В. Влияние эпибрассинолида на каллусогенез Nicotiana tabacum // Тез. докл. междунар. конф. «Молекулярная генетика и биотехнология». Минск, 1998. С. 179.
  35. А.В. Влияние эпибрассинолида на каллусогенез у листовых дисков табака // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях, 2001, С. 160−161. :
  36. А.Б. Культура тканей для международного обмена генетическими ресурсами // Сельское хозяйство за рубежом.-1980, — № 5, — С. 2425.
  37. Й. Физиологические основы микроклонального размножения растений// Международный агропромышленный журнал.- 1990, — С.35−40.
  38. Е.А. Влияние света и сахарозы на рост, морфогенез и пигментный состав картофеля в культуре in vitro // Научно-техн. бюлл. ВНИИР им. Вавилова, вып. 230.-СП6, — 1993, — С. 40−43.
  39. М.К., Джердемалиев Ж. К., Омирулы С. Клеточная инженерия в Институте молекулярной биологии и биохимии им. М. А. Айтхожина: некоторые итоги // Биотехнология. Теория и практика,-1996.-№ 1.- С. 10 -20.
  40. А.В., Французенок В. В. Размножение лилий в культуре in vitro // Изв. Акад. аграр. наук Респ. Беларусь.-1997.- № 2.- С. 73−76.
  41. Н.Ф. Усовершенствование технологии выращивания здорового исходного материала для первичного семеноводства картофеля // Регуляция роста и развитие картофеля. М, 1990, с. 164−166.
  42. М.Х. Совершенствование метода культуры пыльников для получения регенерантов риса с использованием крезацина: Автореф.дис.канд.биол.наук- Краснодар, 1995, 24 с.
  43. Т.Н., Аксенова Н. П., Сергеева Л. Н., Чайлахян М. Х. Взаимное влияние света и гормонов на регуляцию морфогенетическихпроцессов в культуре in vitro. II Физиология растений,-1987, — Т.34. Вып.4, — С. 795 — 802.
  44. Л.И. Взаимодействие генов в развитии. М.: Наука -1977, — 327 с.
  45. С.Д. Получение трансгенных растений картофеля и их молекулярно-генетический анализ: Автореф.дис.канд.биол.наук- Минск, 1995, 21 с.
  46. Лабораторно-практические занятия по сельскохозяйственной биотехнологии: Метод, указания М.: МСХА.- 1996.- 90 с.
  47. Н.С., Солоненко Л. П. Биохимические различия у картофеля на разных уровнях дифференциации в культуре тканей // Использование клеточных технологий в селекции картофеля: Науч. Труды -М, — 1987, — С. 89−94.
  48. Г. Л. Создание новых сортов картофеля на основе клеточной селекции // Вестник с.-х. науки Казахстана, — 1997.- № 2, — С. 68−78.
  49. Мелик-Саркисов О. С. Физиологе биотехнологические аспекты безвирусного картофелеводства: Автореф. дис. .докт. биол. наук. М.- 1995.-64с.
  50. Мелик-Саркисов О.С., Фадеева И. Н. Использование эффекта клубнеобразования в биотехнологии картофеля. // Вестник сельскохозяйственных наук, 1989.- № 9.- С. 86−92.
  51. Методические указания по использованию биотических и абиотических стрессовых факторов для расширения сомаклональной вариабельности у картофеля и получения хозяйственно-ценных форм, — М.-ВНИИКХ.- 1995.- 18 с.
  52. Методические, указания по получению трансформированных растений картофеля. М.- ВНИИКХ.- 1995.- 15 с.
  53. Н.А. Молекулярные и клеточные механизмы морфогенеза в культуре клеток растений. // Биология культивирования клеток и биотехнология растений, — М.-1991.- С.166−185.
  54. А.Т., Клубнеобразование и донорно-акцепторные связи у картофеля. // Регуляция роста и развития картофеля, — М.: Наука, — 1990.-С. 6 12.
  55. А.А., Свист В. Н. Агробиологическое обоснование применения регуляторов роста в семеноводстве картофеля // Вопросы картофелеводства: науч. труды, — М, — ВНИИКХ.- Россельхозакад.-2001, — С. 6771.
  56. С.Е. Продолжительность сохранения регенерационной способности у каллусов пшеницы // Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М, 1991, С. 256−259.
  57. JI.B., Берман О. Н., Скворцов О. В. Гуматы -экологически чистые стимуляторы роста и развития растений // Химия в сельском хозяйстве. 1994. -№ 5. — С. 12−13.
  58. Э.Г., Гукасян Н. С. Генетическая активность природного регулятора роста и развития растений гумата натрия на модельной системе микроорганизмов // Вопр. биологии, 1989- Т. 5, — С. 73−83.
  59. Ю.С., Каримов М. К., Алехина JI.A., Анварова М. А. Методическое руководство к практическим занятиям по культуре тканей растений. Душанбе: изд-во Тадж.СХИ.- 1990.- 20 с.
  60. Новицкене J1. Гавелене В. Контроль роста и морфогенеза ярового рапса // Тезисы докладов VI международной конференции «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях» (26−28 июня 2001 года): М., МСХА, 2001 С. 183.
  61. Овчинникова В. Н, Мелик-Саркисов О.С., Фадеева И. Н. Индукция клубнеобразования картофеля in vitro пониженными температурами // Вест. с.-х. науки. 1987.- № 7, — С. 81−84.
  62. Д.С., Наумова Г. В., Аммосова Я. М., Лизунова АЛ., Осипова Н. Н. Сравнительная характеристика гуминовых препаратов опытно-промышленных производств // Гуминовые вещества в биосфере. М., 1993, — С. 207−218.
  63. О.Е. Причины возникновения некрозов на яблоне и меры по их профилактике // Проблемы и перспективы адаптивного садоводства России. 1994. С. 132−136
  64. П.П., Иванов А. А. Особенности микроклонального размножения безвирусных пробирочных растений районированных сортов картофеля // Вклад молодых ученых в развитие сиб. аграр. науки. -Новосибирск, 1999, С. 67−68.
  65. B.C., Агаджанян Э. А., Горовая А. И., Хачатрян Н. К. Модифицирующее действие гумата натрия на генетическую активность фентиурама // Биол. журн. Армении, 1990- Т. 43. N 9, с. 768−772.
  66. А.В. Использование биотехнологических методов в селекции льна-долгунца // Второй междунар.симп."Новые и нетрадиц. растения и перспективы их практ.использ.": Материалы докл. Пущино.- 1997.- Т.4, — С. 352−353.
  67. А.В. Биотехнология в селекции льна Тверь.- 2000. 179с.
  68. О.П., Гришанович А. К. Ускоренное размножение исходного материала. // Картофель и овощи.- 1979, — № 5 .- С. 12−13.
  69. Т.И. Гормональная регуляция как основа целостности и продуктивности растительного организма Растения картофеля.: Автореф. дис. д-ра биол. наук // МСХА.- М.: 1999, 36 с.
  70. Т. И., Кириллова И. Г. Градиенты содержания свободных фитогормонов в стебле картофеля в связи с клубнеобразованием // Физиология растений. 1996. Т.43,-№ °1,-С. 915−919.
  71. И.Р., Тивари Ш., Бишимбаева Н. К., Кушнаренко С. В., Азимова Е. Д. Биотехнология зерновых культур (Культура тканей пшеницы и ячменя), Алма-Ата: Гылым, 1992, — 240 с.
  72. В.А., Самойлов В. М., Дубинич В. Л. Селекция in vitro цитоплазматических мутантов картофеля // Генетика, 1990- Т. 26. N 1, с. 84−89.
  73. С.Э. Изучение особенностей побегообразования у картофеля в культуре каллусной ткани. // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки, 1989.- № 1.- С. 32 — 38.
  74. З.А., Комаров А. Н., Латыпов И. О физиологической активности гумусоподобных веществ, извлекаемых из различных органических источников // Резервы повышения урожайности овощных культур: Сб. науч. тр. ЛСХИ, — Ленинград.- 1990.- С. 8 -11.
  75. И.М. Регенерация побегов из первичного клубневого каллуса у разных сортов картофеля // Физиология и биохимия культурных растений, 1985.- Т.П.- № 4, — С. 380−384.
  76. Л.М. Влияние гумата калия на прорастание семян Orchis Picta Loisel. in vitro // Тезисы докладов VI международной конференции «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях» (26−28 июня 2001 года): М., МСХА, 2001, С. 196.
  77. Л.Н., Бойко В. В., Зейрук Т. В., Егорова Л. И., Андреева B.C. Регуляция роста и| развития картофеля при оздоровлении и клональном микроразмножении. // Регуляция роста и развития картофеля, — М, — 1990.- С. 150 -154.
  78. Л.Н., Волкова Т. В., Миренкова Н. Н. Метод культуры тканей в картофелеводстве // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений.- М.-1979.-С. 123−128.
  79. Л.Н., Князева В. П., Хромова Л. М., Остапенко Д. П. Методические указания по оздоровлению и ускоренному размножению картофеля М.: ВАСХНИЛ, — 1976, — 30 с.
  80. Л.Н., Остапенко Д. П., Бойко В. В., Зейрук Т. В., Донец Н. В. Оздоровление и ускоренное размножение семенного картофеля: Метод, рекомендации. М.: ВАСХНИЛ, — 1985, — 36 с.
  81. Р.Х. Регенерация корней у черенков картофеля в связи с их возрастом и фазами развития растений. // Тр. ин-та физиол. растений АН СССР, — М. 1955, — Т.9.- С. 203 — 214.
  82. А. Цитодеф новый дефолиант // Хлопок, — М.: Колос.-1992,-№ 4,-С. 24−28.
  83. Р. Развитие картофеля и влияние регуляторов роста на образование микроклубней: Автореф. дис.кан. с.-х. наук // С.-Петерб. гос. аграр. ун-т.- СПб.-1995.-15 с.
  84. Л.М., Бургутин А. Б., Седнина Г. В., Бутенко Р. Г. Влияние фитогормонов на органогенез в каллусной культуре картофеля. // Тезисы докладов I всесоюзной конференции «Регуляторы роста и развития растений», М.: Наука, — 1982, — С. I80-I8I.
  85. JI.M. Каллусо- и морфогенез в культуре тканей картофеля // Исследования по клеточной селекции картофеля, — М.-1984.- С. 8188.
  86. Г. М. Инициация и культивирование каллуса у различных образцов картофеля. // Бюллетень ВИР,-1979, — Вып.93.- С.44−46.
  87. М.Х. Фотопериодическая и гормональная регуляция клубнеобразования у растений. М.: Наука, — 1984, — 68 с.
  88. М.Х. Гормональная регуляция роста и развития картофеля // Регуляция роста и развития картофеля.- М.-1990.- С. 48−62.
  89. И.Ф. Абсцизовая кислота как фактор соматического эмбриогенеза в культуре клеток и тканей растений // Тезисы докладов V международной конференции «Регуляторы роста и развития растений» (29 июня -1 июля 1999 года): М., МСХА, 1999, С.352−353.
  90. С.М. Применение гумата натрия при производстве семенного картофеля // Вопросы картофелеводства. М. — 1997, — С. 63−69.
  91. Л.И., Деведжян А. Г., Чайлахян М. Х. Гормональная регуляция клубнеобразования у черенков картофеля. // Регуляция роста и развития картофеля.- М.: Наука, 1990, — С. 68 — 74.
  92. Ahloowalia B.S. Plant regeneration from callus culture in potato // Euphytica.- 1982.- № 31, — P. 755−759.
  93. Amirouche L., Stuchbury Т., Matcheus S. Comparisons of cultivar performance on different nutrient media in a routine method for potato micropropagation. // Potato Research.- 1985.- V.28. P. 469 — 478.
  94. Austin J., Cassels A. Variation between plants regenerated from individual calli produced from separated potato stem callus cells. // Plant Science Letters, 1983, — V.31.-P. 107−114.
  95. Bajaj Y.P.S., Sopory S.K. Biotechnology of potato improvement. // Biotechnology in agriculture and forestry. Crops 1, — V.2.-1986.-Berlin: Springer-Verlag, 1986.- P. 429−454.
  96. Barker W.G.A. Method for the in vitro culturing for potato tuber // Science, — 1953, — V. l 18.- P. 384−385.
  97. Belknap W.R. et al. The molecular biology of the potato. // Biotechnology in agriculture series.- V.12.-2nd ed.- Wallingford: CAB Inter., 1994.270 p.
  98. Bonner J., Bandurski R.S. Studies on the physiology, pharmacology and biochemistry of auxin // Ann. Rev. Plant Physiol. 1952.- V.3.- P. 59−86. -
  99. Bottini A.G., Tizio R. Hormonal contribution of the mother tuber to growth, stolonization and tuberization of the potato plant (Solanum tuberosum L. cv. Spunta) // Phyton.- 1981, — V. 41, — P.27−32.
  100. Booth A., Lovell P.N. The effect of pre-treatment with gibberellic acid on the distribution of photosynthate in intact and disbudded plants of Solanum tuberosum L. // New Phytol. 1972, — V.71.- P. 795−804.
  101. Bragdo-Aas M. Regeneration of plants from callus of potato tubers. -Acta Horticultural,-!977,-V.78.-P. 133−137.
  102. Caligari P.D.S., Powell W. Variability in response of potato cultivars to micropropagation. I. In vitro performance // Ann. appl. Biol, 1989.- V. l 15, — N 1. -P. 115−121.
  103. Catchpole A.H., Hillman J. Effect of ethylene on tuber initiation in Solanum tuberosum L. // Nature.- 1969.-V.223, — P. 1387.
  104. Cearley J.A., Bolyard M.G. Regeneration of Solanum tuberosum cv. Katahdin from leaf explants in vitro 11 Am. Potato J., 1997, — V.74.- N 2, P. 125−129.
  105. Chander S.F., Dodds J.H. Adventitious shoot initiation in serially subcultured callus cultures of Solanum laciniatum. // Inter. Jour. Plant Physiol.-1983.- V. l 11, — № 2, — P. 115−121.
  106. Chandra R., Nair P. S. Potato tissue and cell culture. // Advances in horticulture. Potato.- V.7.- New Delhi: Malhotra pub. House.- 1993, — P. 113−141.
  107. Chapman H.W. Potato tissue culture // Amer. Potato J.-1955.V.32.-№ 6, — P. 207 210.
  108. Claver F.K. The effects of abscisic acid on tuberization of potato sprouts in vitro // Phyton.- 1970, — V. 27, — P. 25−29.Catchpole, Hillman, 1969.
  109. De Block M. Genotype-independent leaf disc transformation of potato (Solanum tuberosum) using Agrobacterium tumefaciens // Theoret. appl. Genet, 1988- T. 76.- N 5, P. 767−774.
  110. Debabrata Sarkar, Prakash S. Naik, Ramesh Chandra Effect of different light sources on potato micropropagation // J. Indian Potato Assoc.- 1996.-V.23.-№ 1−2.-P. 8−14.
  111. Denisen E.L. Response of kennebec potatoes to maleic hydrazide // Proc. Amer. Soc. Hort. Sci.- 1953, — V.62.- P. 411−421.
  112. Devedzhyan A.G., Yanina L.I., Khadzhakyan K.K., Chailakhyan M.K. Regulation of tuberization by means of physiologically active compounds in two forms of potato (Solanum chacoense and S. chacoense x S. acaule) // Fiziol. Rast.- 1981, — V.28.- P.933−939.
  113. Espinoza N.O., Dodds. J.H. Adveiititions shoot formation on cultured potato roots.//Plant Science, — 1985.-V.41. № 2,-P. 121−124.
  114. Espinoza N., Lizarraga R., Siguenas C., Buitron F., Bryan J., Dodds J.H. Tissue culture: micropropagation, conservation, and export of potato germplasm.-Lima (Peru), 1992, 19 c.
  115. Fatocun С.A., Yamada У. Variation in callus formation plant regeneration in African rice (Orysa glaberrina Stend.) // J. Plant Physiol.-1984.-V.117.-P. 179−183.
  116. Garcia -Torres, Gomez-Campo L.C. In vitro tuberization of potato sprouts as affected by ethrel and gibberelic acid // Potato Res.- 1973.- V.16.- P. 69−73.
  117. Garner N., Blake J. The induction and development of potato microtubers in vitro on media free of growth regulating substances. // Ann. Bot. (USA).-l 989.-V.63.- № 6.- P. 663 674. '
  118. Grnnesnft Jug6sz A., Martihovich L. The effect of TDZ on gynogenesis induction and plant regeneration in onion // Bulletin of the vegetable crops research institute Kecskemet.- 1998.- V.28.- P. 39−45.
  119. Goodwin P.B. Methods for the rapid propagation of potato. // Potato production in the humid tropics.- 1982.
  120. Goodwin P.В., Kim У.С., Adisarvvanto T. Propagation of potato by shoot-tip culture // Potato res.- 1980, — V. 23, — P. 9−24.
  121. K.L., Bassham J.A. 1-aminocyclopropane-l- carboxylic acid concentration in shoot forming and non-shoot forming tobacco callus culture // Plant. Physiol. -1982, — V. 70, — P. 919−921.
  122. Halperin W. Morphogenetic studies with partially synchronized cultures of carrot embryos // Science.- 1964, — V. 146.- P. 408−410.
  123. Hidalgo O. A. Technology available and present status of seed potato systems in countries of SWA. Regional Workshop on Seed Potato Systems. 1999.-Dhaka.- Bangladesh.- March 9−11, — 20p.
  124. Hammes P. S., Nel P.C. Control mechanisms in the tuberization process. // Potato research, 1975.- V.18.- № 2.- P. 262−272.
  125. Harmey M.A., Crowley M.P., Clinch P.E.M. The effect of growth regulators on tuberization of cultured stem pieces of Solanum tuberosum // Eur. Potato J.-1966, — V.9.- P.146−151.
  126. Hu C.Y., Wang P.J. Meristem, shoot tip and bud cultures // Handbook of plant cell culture.- 1983, — V.I.- P. 177−227.
  127. Hussey G., Stasey N.J. In vitro propagation of potato (Solanum tuberosum L.) // Ann. Bot.-I98I.-V.48.- № 6, — P. 787−796.
  128. Huxter T.J., Thrope T.A., Reid D.M. Shoot initiation in light and dark-grown tobacco callus: the role of ethylene // Physiol. Plant.- 1981.- V. 153.- P. 319−326.
  129. Jain P., Rashid A. Stimulation of shoot regeneration on Linum hypocotyl segments by thidiazuron and its response to light and calcium // Biol. Plantarum, 2001- V.44.-N 4, -P. 611−613. |
  130. Jarret R.L., Hasegawa P.M., Bressan R.A. Gibberellic acid regulation of adventitious shoot formation from tuber discs of potato // In Vitro.- 1981.- V. 17.-P. 825−830.
  131. Kaneda Y.- Tabei Y., Nishimura S., Harada K., Akihama Т., Kitamura K. Combination of thidiazuron and basal media with low salt concentrations increases the frequency of shoot organogenesis in soybeans // Plant Cell Rep., 1997,-V.17.-N 1. P. 8−12.
  132. Karlsson M., Heins R., Berghage R., Carlson W., Biembaum J. Temperature and photosynthetic photon flux influence chrysanthemum- shoot development and flower initiation under short-day conditions // J. Am. Soc. Hortic. Sci.-1989. V.114.-P. 158−163.
  133. Kikuta Y., Okazawa Y. Control of root and shoot-bud formation from potato tuber tissue cultured in vitro. // Physiol. Plant.-1984, — V.61.- P. 8−12.
  134. Kikuta Y., Okazawa Y. Shoot-bud formation and plantlet regeneration in potato tuber tissue cultured in vitro // J. Fac. Agric., Hokkaido Univ.-1982,-V. 61.- P. 166−179.
  135. Klan R. Biological principles of tissue banking.-Oxford: Pergcanon, 1982.-264 p. -
  136. Koda J., Okazawa Y. Influences of environmental, hormonal and nutritional factors on potato tuberization in vitro. // Japan J.Crop.Sci.-1983.- V. 53.-№ 4,-P. 582 591.
  137. Kozai Т., Watanabe К., Jeong B.R. Stem elongation and growth of Solanum tuberosum L. in vitro in response to photosynthetic photon flux, photoperiod and difference in photoperiod and dark period temperatures // Sc.hortic., 1995.-V.64.-N ½,-P. 1−9.
  138. Krauss A., Marschner H. Influence of nitrogen nutrition, daylength and temperature on contents of gibberellic and abscisic acid on tuberization in potato plants // Potato Res. -1982, — V.25.- P.13−21.
  139. Kumar D., Wareing P.F. Studies on tuberization of Solanumituberosum andigena. II. Growth hormones and tuberization // New Phitol.- 1974.-V.73.-P. 833−840.
  140. Lam S.L. Plantlet formation from potato tuber discs in vitro. // Potato Journal,-1977, — V.54.- № 10, — P. 465−468.
  141. Langille A.R., Forsline P.L. Influence of temperature and photoperiod on cytokinin pools in the potato, Solanum tuberosum L. // Plant Sci. Lett.- 1974.-V.2.- P. 198−191.
  142. Lawrence C.H., Barker W.G. A study of tuberization in the potato, Solanum tuberosum // Am. Potato J.- 1963, — V. 40, — P. 349−356.
  143. Lizarraga R., Huaman Z., Dodds J.H. In vitro conservation of potato germplasm at the International potato center // Am. Potato J, 1989, — V. 66.- N 4, P. 253−269.
  144. Lopez-Debgado H., Jimenez-Casas M., Scott I. M. Storage of potato microplants in vitro in the presence of acetylsalicylic acid // Plant Cell Tissue Organ Cult.-1998- V.54.- N 3.-P. 145−152.
  145. Mangat B.S., Kerson G., Wallace D. The effect of 2,4-D on tuberization and starch content of potato tubers produced on stem segmentscultured in vitro//Am. Potato J.- 1984.-V.61, — P. 355−361. !-
  146. Mares D.J., Marschner H., Krauss A. Effect of gibberellic acid on growth and carbohydrate metabolism of developing tubers of potato (Solanum tuberosum) // Physiol. Plant.- 1981.- V. 52, — P. 267−274.
  147. Mayer A.M., Poljakoff-Mayber A. Coumarins and there role in growth germination // Plant Growth Regul., Proc. Int. Conf., 4-th.-1961.- V. 46, — P. 259−265.
  148. Melchers G, Sacristan M.D., Holder A.A. Somatic Hybrid plants of potato and tomato regenerated from fused protoplasts // Carlsberg Res. Commun.-1978,-V. 43, — P. 203−218.
  149. Melis R.J.M., J. van Staden Tuberization and Hormones. // Zeitschrift fur Pflanzen Physiologie.- 1981.- V. 113.- № 3.- P. 271 -283.
  150. Menzel C.M. Tuberization in potato at high temperature: promotion by disbudding // Annals of Botany.- 1981.- V. 47.- № 6.- P. 727−733.
  151. Mingo-Castel A.W., Smith B.E., Kumamoto G. Studies on the carbondioxide promotion and ethylene inhibition of tuberization in Potato explants cultured in vitro // Plant Physiol.- 1976.- V.57.- P. 480−485. -
  152. Mix G., Sixin S. In vitro plant regeneration from potato tuber tissue // Landbauforschung Volkenrode.- 1983.- V. 33, — P. 264−266.
  153. Мое R., Mortensen L.M. Stem elongation and keeping quality in poinsettia (Euphorbia pulcherrima Willd.) as affected by temperature and supplementary lighting // Sci. Hortic. 1992, — V.50.- P. 127−136.
  154. Morel G. Vegetative propagation of orchids by meristem culture // Am. Orchid Soc. Bull.- I960.- V. 29, — P. 495−497.
  155. Mozeran R., Bancilhan-Rossign J.L., Grenan S. Nouvelles possibilites d’obtention et de multiplication rapide de clones sains de pome de terre (Solanum tuberosm L.) // C.R.Acad.Sc.Ser.D.- 1977, — P. 143−150.
  156. Murashige T. Plant propagation through tissue cultures. // Ann. rev. plant physiol.-1974.-V.25.-P.135−166.
  157. Murashige Т., Scoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture // Physiol. Plant.- 1962, — V. l5, — № 13, — P. 473 497.
  158. Nerem R.M. Cellular engineering // Ann. Biomed. Eng.- 1991.-V.19.- № 5, — P. 529−545.
  159. Nitsch J.P., Nitsch C. Haploid plants from pollen grains // Science.1969.-V. 163,-P. 85−87.
  160. Obata-Sasamoto H., Suzuki H. Activities of enzymes relating tolstarch synthesis and endogenous levels of growth regulators in potato stolon tips during tuberization // Physiol. Plant.- 1979, — V. 45, — P. 320−324.
  161. Okazawa Y., Katsura N., Tagawa T. Effects of auxin and kinetin on the development and differentiation of potato tissue cultured in vitro. // Physiol.plant.-1967.- V.20.- P. 862−869.
  162. Okazawa Y. Studies on the occurence of natural gibberellin and its effect on the tuber formation of potato plants. // Ibid,-1959.-V.28.- P.129 -133.
  163. Okazawa Y., Chapman H.W. Regulation of tuber formation in the potato plants // Physiol. Plant.- 1962.- V. 15, — P. 413−419.
  164. Opatrna J., Burdova I., Opatrny Z. Experimental improvement of the regeneration ability of potato explants // Biol. Plant.- 1992, — V.34.- P. 545−546.
  165. Palmer C.E. Enchanced shoot regeneration from Brassica campestris by silver nitrate // Plant Cell Rep.- 1992, — V. 11.- P. 541−545.
  166. Palmer C.E., Barker W.G. Influence of ethylene and kinetin on tuberization and enzyme activity in S. tuberosum stolons cultured in vitro // Ann. Bot.- 1973.-V.37.-P. 85 93.
  167. Palmer C.E., Smith O.E. Effect of kinetin on tuber formation on isolated stolons of Solanum tuberosum L. cultured in vitro. // Plant Cell Physiol.1970,-V.l 1.-№ 2,-P. 303. ' '
  168. Patrascu A. Regeneration of potato plants by in vitro culture of stem segments//Rev. Roum. Biol., Ser. Biol. Veg.- 1981,-V. 26,-P. 151−155.
  169. Pelacho A.M., Mingo-Castel A.M. Effect of photoperiod on kinetin-induced tuberization of isolated potato stolons cultured in vitro // Am. Potato J., 1991, V.68.-P. 533−541.
  170. Philip J.D.W. ed. Plant cell line selection.- New York, — Basel,-Cambridge, 1990, — 354 p.
  171. Potato // Advances in horticulture.- V.7.- New Delhi: MPH.- 1993.793 p.
  172. Purnhauser L., Medgyesy P., Czalco M., Dix P.J., Marton L. Stimulation of shoot regeneration in Triticum aestivum and Nicotiana plumbaginifolia viv tissue cultures using the ethylene inhibitor AgN03 // PL Cell Rep.- 1987. V.61. -№ 1.-P. 1−4.
  173. Rao P. S., Narayanaswami S. Induced morphogenesis in tissue cultures of Solanum xanthocarpum. // Planta, 1968. — V.81. — № 4. — P. 372 -375.
  174. Roca W.M., Espinoza N.O., Roca M.R., Bryan J.E. A tissue culture method for the rapid propagation of potatoes // Am. Potato J. -1978. V.55. — P. 691 701.
  175. Roest S., Bokelmann G.S. Vegetative propagation of Solanum tuberosum L. in vitro // Potato Res.-1976. V.19.- P. 173−178.
  176. Roklca V.M., Leena P., Eija P. Encanced production of diploid lines in anther culture of tetraploid potato (Solanum tuberosum L. ssp. tuberosum) clones. // Amer. Potato Jour.-1996, — № 73 (1).- P. 1−12.
  177. Sattelmacher В., Marschner H. Ralation between nitrogen nutrition, icytokinin activity and tuberization in Solanum tuberosum // Physiol. Plant.- 1978.-V. 44, — P. 65−68.
  178. Schilde R.L., Espinosa D.N., Estrada R. Induction of tubers in vitro and their utilization for storage and distribution of potato germplasm // Abstr. Conf. Pap. Europ. Assoc. Potato Res., Switzerland, — 1984, — P. 18.
  179. Sherman S., Berman M., A rapid transformation method for Solanum tuberosum using binary Agrobacterium tumefaciens vectors. // Plant Cell Reports, 1988, 7, 13 -16.
  180. Simko I. In vitro potato tuberization after the treatment with paclobutrazol. // Biology, 1991, 46, p. 251−256.
  181. Simko I. Effects of lcinetin, paclobutrazol and their interactions on the microtuberization of potato stem segments cultured in vitro in the light // Plant Grows Regulation, 1993, 12, p. 23−27.
  182. Souza C.M., Pinto J.E.B.P., Rodrigues B.M., Furtado D.F., De Morais A.R., Arrigoni-Blank M. de F. Efeito do thidiazuron na multiplicacao de repolho «in vitro» // Cienc.Agrotecnol.-1998- V.22.- N 1, P. 52−56. j •
  183. Stalknecht G.F., Farnsworth S. General characteristics coumarin-induced tuberization axillary shoots of S. tuberosum cultured in vitro. // Am. Potato J.-1982.-V.59, — № 1, — P. 17−32.
  184. Stalknecht G.F. Coumarin induced tuber formation on excised shoots of Solanum tuberosum L. cultured in vitro // Plant Physiol.- 1972, — V.50.- P. 412 -413.
  185. Stalknecht G.F. Tuber initiation in Solanum tuberosum: effect of phytohormones and induced changes in nucleic acid and protein metabolism. // Potato Physiology, London, — Academic press.-1985.-P. 231−260. j'
  186. Steinitz В., Cohen A., Golldberg Z., Kochba M. Precocious gladiolus corm formation in liquid shake culture. // Plant Cell Tiss Org Cult.-1991.- V.26.- P. 63−70
  187. Steward F.C., Caplin S.M. A tissue culture from potato tuber. The synergistic action of 2,4-D and of coconut milk. // Science,-1951.- V. l 13.- P. 518 520.
  188. Svobodova J. Freeing potato plants from virus // Proc. Int. Bot. Congr., 10-th. Abstracts. 1964, — P. 485−486.
  189. Thieme R., Pett B. Production of tubers in vitro and there use in the establishment of a potato store // Arch. Zuechtungsforsch.- 1982.-V. 12.- P. 257−262.
  190. Thorpe T.A., Meier D.D. Starch metabolism, respiration and shoot formation in tobacco callus culture. // Physiol. Plant.- 1973.- V.27.- № 3, — P. 365.
  191. Tizio R.M. Contribution a l’etude du mechanism hormonal de tuberization de la pomme de la terre (Solanum tuberosum L.).- Paris.-1979.
  192. Tizio R.M., Biain M.M. Are cytolcinins the specific factors for tuber formation in the potato plant? // Phyton.- 1973, — V.31.- P. 3−13.
  193. Tovar P., Chandre R., Dearcaut R., Dodds J.H. Effect of medium composition on in vitro tuberization // Amer. Potato J. 1987. V.64. — № 2. — P. 462.
  194. Tutty J.R., Hiclclent P.R., Kristie D.N., McRae K.B. The influence of photoperiod and temperature on the kinetics of stem elongation in Dendranthema grandiflorum//Jour. Amer. Sci. Hort.- 1994.-V.l 19,-№ 2,-P. 138−143. j"
  195. Van Staden J., Dimalla G.G. The distribution of cytokinins in tuberizing potatoes // Ann. Bot (London).- 1977.-V.41.- P. 741−746.
  196. Wang P.J. Regeneration of virus-free potato from tissue culture. // Plant tissue culture and its biotechnological application (Ed. by Barz W., Reinhard E. and Zenlc M.H.).- 1977, — P. 386 -391.
  197. Wang P.J., Hu C.Y. In vitro mass tuberisation and virus-free potato production in Taiwan. // Am. potato J.-1982, — № 59. P. 33−39.
  198. Wang P.J., Hu C.Y. // Potato Physiology, London, — Academicpress.-1985.- P. 503−577. j .i
  199. Wareh H., Trolinder N.L., Goodin J.R. Callus initiation, shoot regeneration, and micropropagation of three potato cultivars // HortScience, 1989- V. 24. N 4, P. 680−682.
  200. Wareing P.F., Jennings A.M.V. The hormonal control of tuberisation of potato // Plant growth substances, — В.: Springer, — 1980.- P. 293 300.
  201. Wattimena G., McCown В., Weis G. Comparative field perfomance of potatoes from microculture // Am. Potato J.- 1983.- V. 60.- P. 27−33.
  202. Webb K.J., Osifol E., Henshaw G.G. Shoot regeneration from leaflet discs of six cultivars of potato. // Plant Science Letters,-1983.- V.30.- № 1.- P. 1−8.
  203. Westcott R.J., Henshaw G.G., Roca W.M. Tissue culture storage of potato germplasm: culture initiation and plant regeneration. // Plant Sci. Lett.-1977.-V.9.- № 4.- P.309 -315.
  204. Westcott RJ. Tissue culture storage of potato germplasm // Potato Res.- 1981.-V. 24.- P. 331−352.
  205. Wooster P., Dihon T.J. Application of micropropagation to potato seed production // J. Nat. Inst. Agr. Bot, 1985.-V. 17.- N 1, P. 99−106.
  206. World Potato Facts.- International Potato Center (CIP).- 1982.- Lima, 1. Peru.
  207. Yang W.-Y., Bai Y.-Y., Xu Z.-H. Stimulation of shoot regeneration in leaf tissue culture of Solanum tuberosum by silver nitrate // Acta phytophysiol. sinica, 1998.-V.24.- N 1, P. 86−90.
  208. Yang S.F., Hoffman N.E. Ethylene biosynthesis and its regulation in higher plants // Ann. Rev. Plant. Physiol.-1984.- V.35.- P. 155−189.
  209. Zelcer A., Soferman O., Izhar S. Shoot regeneration in root cultures of Solanaceae. // Plant Cell Reports, — 1983.- V.2.- № 5. p. 252−254.
  210. Zhou H., Konzak S.F. Improvement of anther culture methods for haploid production in wheat //Crop. Sci. 1989.-V.29.- № 3.- P. 817−821.о 1lA^as -1 скь
Заполнить форму текущей работой

На отлично!