Π”ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, курсовая, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°
ΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² написании студСнчСских Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚

Π Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ° ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° стабилизации трансгСнов послС ΠΈΡ… ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π³Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌ

Π”ΠΈΡΡΠ΅Ρ€Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΡΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² Π½Π°ΠΏΠΈΡΠ°Π½ΠΈΠΈΠ£Π·Π½Π°Ρ‚ΡŒ ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒΠΌΠΎΠ΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹

ΠŸΡ€ΠΈ использовании трансгСнных насСкомых Π² ΠΏΡ€ΠΎΠ³Ρ€Π°ΠΌΠΌΠ°Ρ… контроля числСнности насСкомых-Π²Ρ€Π΅Π΄ΠΈΡ‚Π΅Π»Π΅ΠΉ ΠΈΠ»ΠΈ ΠΏΡ€ΠΈ Π·Π°ΠΌΠ΅Ρ‰Π΅Π½ΠΈΠΈ Π΄ΠΈΠΊΠΎΠΉ популяции пСрСносчиков малярии ΠΈΠ»ΠΈ Π»ΠΈΡ…ΠΎΡ€Π°Π΄ΠΊΠΈ Π”Π΅Π½Π³Π΅ рСзистСнтными трансгСнными насСкомыми ΠΎΠ΄Π½ΠΈΠΌ ΠΈΠ· Π³Π»Π°Π²Π½Ρ‹Ρ… рисков являСтся Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Ρ€Π΅ΠΌΠΎΠ±ΠΈΠ»ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ трансгСна (Handler et al., 2004). ΠŸΡ€ΠΈ внСшнСм источникС транспозазы трансгСн рСмобилизуСтся ΠΈ Π½Π°Ρ‡Π½Π΅Ρ‚ ΠΏΠ΅Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Ρ‰Π°Ρ‚ΡŒΡΡ ΠΏΠΎ Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΡƒ. Как… Π§ΠΈΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π΅Ρ‰Ρ‘ >

Π‘ΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅

  • 1. Π’Π²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΠ΅
  • 2. ΠžΠ±Π·ΠΎΡ€ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹
    • 2. 1. ΠŸΠ΅Ρ€ΡΠΏΠ΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Ρ‹ использования трансгСнных насСкомых Π² ΠΏΡ€ΠΎΠ³Ρ€Π°ΠΌΠΌΠ°Ρ… биоконтроля
      • 2. 1. 1. Π‘ΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Π½Π½Ρ‹ΠΉ Π±ΠΈΠΎΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒ
      • 2. 1. 2. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ стСрилизации насСкомых (SIT)
      • 2. 1. 3. ΠžΠΏΡ‚ΠΈΠΌΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΡ SIT ΠΈ ΡΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹ Π±ΠΈΠΎΠΈΠ½ΠΆΠ΅Π½Π΅Ρ€ΠΈΠΈ
      • 2. 1. 4. ΠŸΠ΅Ρ€ΡΠΏΠ΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Ρ‹ использования SIT для прСдупрСТдСния трансмиссивных Π·Π°Π±ΠΎΠ»Π΅Π²Π°Π½ΠΈΠΉ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ°
      • 2. 1. 5. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ замСщСния популяций
    • 2. 2. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹ получСния трансгСнных насСкомых
      • 2. 2. 1. Π -элСмСнт
      • 2. 2. 2. Hermes
      • 2. 2. 3. Minos ΠΈ mariner
      • 2. 2. 4. piggyBac
      • 2. 2. 5. Π‘Π°ΠΉΡ‚-спСцифичСская интСграция трансгСнов
      • 2. 2. 6. ΠœΠ°Ρ€ΠΊΠ΅Ρ€Ρ‹ трансгСнСза
    • 2. 3. РискирСмобилизации трансгСна ΠΈ ΡΠΏΠΎΡΠΎΠ±Ρ‹ Π΅Π³ΠΎ стабилизации
      • 2. 3. 1. ΠŸΡ€ΠΈΡ‡ΠΈΠ½Ρ‹ Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎΠΉ Ρ€Π΅ΠΌΠΎΠ±ΠΈΠ»ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ трансгСна Π² ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΉ популяции
      • 2. 3. 2. Бпособы стабилизации трансгСнов
    • 2. 4. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π΄Π΅Π»Π΅Ρ†ΠΈΠΉ ΠΏΡ€ΠΈ ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΠΈ Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΈΠ½Π΄ΡƒΠΊΡ†ΠΈΠΈ Π΄Π²Ρƒ Ρ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ² Π”ΠΠš
      • 2. 4. 1. ΠœΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΡ‹ возникновСния Π΄Π΅Π»Π΅Ρ†ΠΈΠΉ ΠΏΡ€ΠΈ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ²
      • 2. 4. 2. ΠœΠ΅Π³Π°Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·Ρ‹ 1−8сС I ΠΈ 1-Π‘Π³Π΅ I
      • 2. 4. 3. ΠŸΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΌΠ΅Π³Π°Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π· ΠΈ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈΠ½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ² Π”ΠΠš Π² ΠΈΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡΡ… Π½Π° ΠžΠ³ΠΎΡΠΎΡ€ΠΊΠŸΠ°
    • 2. 5. ΠŸΠ΅Ρ€ΡΠΏΠ΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Ρ‹ развития ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² постинтСграционной стабилизации трансгСнов
  • 3. ΠœΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Ρ‹ ΠΈ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹
    • 3. 1. ГСнСтичСскиС ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹
      • 3. 1. 1. Π›ΠΈΠ½ΠΈΠΈ/), melanogaster, использовавшиСся Π² Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅
      • 3. 1. 2. Врансформация эмбрионов Π“), melanogaster ΠΈ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ трансгСнных Π»ΠΈΠ½ΠΈΠΉ
      • 3. 1. 3. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ хромосомы, Π½Π° ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠΉ находится встроСнная Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌ конструкция
      • 3. 1. 4. Π’Π²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΠ΅ трансгСнов ЬЭсС I ΠΈ 1-Π‘Π³Π΅ I Π² Π»Π°Π±ΠΎΡ€Π°Ρ‚ΠΎΡ€Π½Ρ‹Π΅ Π»ΠΈΠ½ΠΈΠΈ
      • 3. 1. 5. Π’Π²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π΄Ρ€Π°ΠΉΠ²Π΅Ρ€ΠΎΠ² ΠΌΠ΅Π³Π°Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π· 1−8сС I ΠΈ 1-Π‘Π³Π΅ 1 Π² Ρ‚рансгСнныС Π»ΠΈΠ½ΠΈΠΈ
      • 3. 1. 6. ΠŸΡ€ΠΎΠ³Ρ€Π°ΠΌΠΌΠ½ΠΎΠ΅ обСспСчСниС. Π‘Π°Π·Ρ‹ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Ρ…
    • 3. 2. БиохимичСскиС ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹
      • 3. 2. 1. Π’Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π”ΠΠš ΠΈΠ· ?>. melanogaster
      • 3. 2. 2. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π½ΠΎΠΉ Ρ†Π΅ΠΏΠ½ΠΎΠΉ Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΈ (ПЦР). ΠŸΡ€Π°ΠΉΠΌΠ΅Ρ€Ρ‹, использовавшиСся Π² Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅
      • 3. 2. 3. ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½ΠΎΠ΅ ΠΊΠ»ΠΎΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅
      • 3. 2. 4. ΠŸΡ€ΠΈΠ³ΠΎΡ‚ΠΎΠ²Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΊΠΎΠΌΠΏΠ΅Ρ‚Π΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ Π»ΠΈΠ½ΠΈΠΈ Π•. соИ ИН5Π°
      • 3. 2. 5. Врансформация Π±Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΏΠ»Π°Π·ΠΌΠΈΠ΄Π°ΠΌΠΈ
      • 3. 2. 6. Π’Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π”ΠΠš ΠΏΠ»Π°Π·ΠΌΠΈΠ΄ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ Ρ‰Π΅Π»ΠΎΡ‡Π½ΠΎΠ³ΠΎ лизиса
      • 3. 2. 7. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π”ΠΠš
      • 3. 2. 8. Π‘ΠΏΠΈΡ€Ρ‚ΠΎΠ²ΠΎΠ΅ пСрСосаТдСниС Π”ΠΠš
    • 3. 3. Π‘ΠΎΠ·Π΄Π°Π½ΠΈΠ΅ гСнСтичСских конструкций
      • 3. 3. 1. ΠšΠΎΠ½ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ†ΠΈΡ Casper transgene stability (CTS)
      • 3. 3. 2. ΠšΠΎΠ½ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ†ΠΈΡ phiC31TS51D
      • 3. 3. 4. Π‘ΠΎΠ·Π΄Π°Π½ΠΈΠ΅ конструкции phiC31TS51D2xSce
  • 4. Π Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Ρ‹
    • 4. 1. Π Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ° ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° для сайт-нСспСцифичСской ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π³Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈ ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ трансгСнов Π² ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ систСмС D. melanogaster
      • 4. 1. 1. Π’Ρ‹Π±ΠΎΡ€ эффСктивного ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ° Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ² Π”ΠΠš Π² ΠΊΠ°Ρ‡Π΅ΡΡ‚Π²Π΅ основного инструмСнта ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π°
      • 4. 1. 2. NHEJ рСпарация Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ² Π”ΠΠš ΠΊΠ°ΠΊ основной способ Π΄Π΅Π»Π΅Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠ»Π΅Ρ‡Π° транспозона
    • 4. 2. Π Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ° ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° для сайт-спСцифичСской ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π³Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈ ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ трансгСнов Π² ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ систСмС D. melanogaster
      • 4. 2. 1. Бтабилизация трансгСнов Π·Π° ΡΡ‡Π΅Ρ‚ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ Π΄Π΅Π»Π΅Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠ»Π΅Ρ‡Π΅ΠΉ транспозона с ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒΡŽ SSA Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈΠ½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ² Π”ΠΠš
      • 4. 2. 2. ΠžΠ΄Π½ΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Π½Π½Π°Ρ дСлСция ΠΏΠ»Π΅Ρ‡Π΅ΠΉ транспозона ΠΊΠ°ΠΊ высокоэффСктивный способ стабилизации трансгСнов
  • 5. ΠžΠ±ΡΡƒΠΆΠ΄Π΅Π½ΠΈΠ΅
  • 7. Π’Ρ‹Π²ΠΎΠ΄Ρ‹

Π Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ° ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° стабилизации трансгСнов послС ΠΈΡ… ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π³Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌ (Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚, курсовая, Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ)

ПослСдниС успСхи Π² ΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΠΈ гСнСтичСского опрСдСлСния ΠΏΠΎΠ»Π° насСкомых (Zhu et al., 2002; Horn, Wimmer, 2003) ΠΈ ΠΈΠ½Ρ‚Снсивная Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π° Π½Π°Π΄ созданиСм трансгСнных ΠΊΠΎΠΌΠ°Ρ€ΠΎΠ², Π½Π΅ ΡΠΏΠΎΡΠΎΠ±Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠ΅Ρ€Π΅Π½ΠΎΡΠΈΡ‚ΡŒ ΠΌΠ°Π»ΡΡ€ΠΈΡŽ ΠΈΠ»ΠΈ Π”Π΅Π½Π³Π΅ (Ito et al., 2002; Lara Capurro de et al., 2000), говорят ΠΎ Ρ‚ΠΎΠΌ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π²Π½Π΅Π΄Ρ€Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ ΡˆΠΈΡ€ΠΎΠΊΠΎΠ΅ использованиС эффСктивных ΠΏΡ€ΠΎΠ³Ρ€Π°ΠΌΠΌ контроля числСнности Π²Ρ€Π΅Π΄ΠΈΡ‚Π΅Π»Π΅ΠΉ ΠΈ ΠΊΠΎΠ½Ρ‚роля Π½Π°Π΄ трансмиссивными заболСваниями с ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒΡŽ трансгСнных насСкомых Π΄Π΅Π»ΠΎ блиТайшСго Π±ΡƒΠ΄ΡƒΡ‰Π΅Π³ΠΎ. ΠŸΡ€ΠΈ Π²Π½Π΅Π΄Ρ€Π΅Π½ΠΈΠΈ Π² ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π½ΡƒΡŽ ΠΏΠΎΠΏΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΡŽ Π²Ρ€Π΅Π΄ΠΈΡ‚Π΅Π»Π΅ΠΉ большого количСства трансгСнных насСкомых основной Π·Π°Π΄Π°Ρ‡Π΅ΠΉ, стоящСй ΠΏΠ΅Ρ€Π΅Π΄ спСциалистами, являСтся соблюдСниС высокого уровня бСзопасности Ρ‚Π΅Ρ…Π½ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ для Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° ΠΈ ΠΎΠΊΡ€ΡƒΠΆΠ°ΡŽΡ‰Π΅ΠΉ срСды. Π‘ΡƒΡ‰Π΅ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‰Π°Ρ сСйчас тСхнология получСния трансгСнных насСкомых Π½Π΅ ΡΠΎΠΎΡ‚вСтствуСт этому Ρ‚Ρ€Π΅Π±ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡŽ.

ΠžΡΠ½ΠΎΠ²Π½Ρ‹ΠΌ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ получСния трансгСнных насСкомых являСтся интСграция Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌ Ρ€Π΅Ρ†ΠΈΠΏΠΈΠ΅Π½Ρ‚Π° гСнСтичСского ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Π° с ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒΡŽ Π½Π΅Π°Π²Ρ‚ΠΎΠ½ΠΎΠΌΠ½Ρ‹Ρ… транспозонов, ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡΡ‚Π°Π²Π»ΡΡŽΡ‚ собой Π²Π΅ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Π½ΡƒΡŽ ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»Ρƒ, ΡΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Ρ‰ΡƒΡŽ Ρ‚Π΅Ρ€ΠΌΠΈΠ½Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ ΠΈΠ½Π²Π΅Ρ€Ρ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΏΠΎΠ²Ρ‚ΠΎΡ€Ρ‹ (TIR ΠΎΡ‚ Π°Π½Π³Π». — terminal inverted repeats) транспозона, ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹ΠΌΠΈ Π·Π°ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π΅Π½Π° ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ трансгСна (Finnegan, 1989; Handler et al., 2004). ΠŸΡ€ΠΈ Ρ‚Π°ΠΊΠΎΠΌ способС ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π³Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ трансгСн оказываСтся ΠΎΠΊΡ€ΡƒΠΆΠ΅Π½Π½Ρ‹ΠΌ TIR мобильного элСмСнта. Оба ΠΏΠΎΠ²Ρ‚ΠΎΡ€Π° Π½Π΅ΠΎΠ±Ρ…ΠΎΠ΄ΠΈΠΌΡ‹ для пСрСмСщСния транспозона ΠΈ ΡƒΠ·Π½Π°ΡŽΡ‚ся транспозазой, которая Π²Ρ‹Ρ€Π΅Π·Π°Π΅Ρ‚ Ρ„Π»Π°Π½ΠΊΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½ΡƒΡŽ ΠΈΠΌΠΈ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΈΠ· ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ мСста Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ΅ ΠΈ Π²ΡΡ‚авляСт Π΅Π΅ Π² Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΎΠ΅ («cut and paste» ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌ).

ΠŸΡ€ΠΈ использовании трансгСнных насСкомых Π² ΠΏΡ€ΠΎΠ³Ρ€Π°ΠΌΠΌΠ°Ρ… контроля числСнности насСкомых-Π²Ρ€Π΅Π΄ΠΈΡ‚Π΅Π»Π΅ΠΉ ΠΈΠ»ΠΈ ΠΏΡ€ΠΈ Π·Π°ΠΌΠ΅Ρ‰Π΅Π½ΠΈΠΈ Π΄ΠΈΠΊΠΎΠΉ популяции пСрСносчиков малярии ΠΈΠ»ΠΈ Π»ΠΈΡ…ΠΎΡ€Π°Π΄ΠΊΠΈ Π”Π΅Π½Π³Π΅ рСзистСнтными трансгСнными насСкомыми ΠΎΠ΄Π½ΠΈΠΌ ΠΈΠ· Π³Π»Π°Π²Π½Ρ‹Ρ… рисков являСтся Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Ρ€Π΅ΠΌΠΎΠ±ΠΈΠ»ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ трансгСна (Handler et al., 2004). ΠŸΡ€ΠΈ внСшнСм источникС транспозазы трансгСн рСмобилизуСтся ΠΈ Π½Π°Ρ‡Π½Π΅Ρ‚ ΠΏΠ΅Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Ρ‰Π°Ρ‚ΡŒΡΡ ΠΏΠΎ Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΡƒ. Как ΠΏΠΎΠ²Π΅Π΄Π΅Ρ‚ сСбя Ρ‚ΠΎΡ‚ ΠΈΠ»ΠΈ ΠΈΠ½ΠΎΠΉ трансгСн, ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ Π½Π΅Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎ (Fraser et al., 2000; Perera et al., 2002; Sethuraman et al., 2007). Риск ΠΏΠΎΠ²Ρ‹ΡˆΠ°Π΅Ρ‚ ΠΈ Ρ‚ΠΎ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π³ΠΎΡ€ΠΈΠ·ΠΎΠ½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ пСрСнос транспозона ΠΈ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰Π΅Π΅ Π΅Π³ΠΎ распространСниС Π² ΠΏΠΎΠΏΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΠΈ ΠΌΠΎΠ³ΡƒΡ‚ ΠΏΡ€ΠΎΠΈΡΡ…ΠΎΠ΄ΠΈΡ‚ΡŒ с Π±ΠΎΠ»ΡŒΡˆΠΎΠΉ ΡΠΊΠΎΡ€ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ (Engels et al., 1992; Kidwell et al., 1992). ΠšΡ€ΠΎΠΌΠ΅ Ρ‚ΠΎΠ³ΠΎ, ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΈΠ΅ родствСнныС сСмСйства транспозонов способны ΠΊ ΠΏΠ΅Ρ€Π΅ΠΊΡ€Π΅ΡΡ‚Π½ΠΎΠΉ ΠΌΠΎΠ±ΠΈΠ»ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ, Ρ‚. Π΅. транспозаза ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ‚ΠΈΠΏΠ° ΠΌΠΎΠ±ΠΈΠ»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… элСмСнтов ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ Π²Ρ‹Π·Ρ‹Π²Π°Ρ‚ΡŒ транспозиции Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΎΠ³ΠΎ транспозона (Robertson, Lampe, 1995; Handler, McCombs, 2000).

ΠΠΊΡ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡Π΅ΠΉ становится Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ° ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° стабилизации трансгСнов послС ΠΈΡ… ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π³Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌ. Π’ ΡΠ²ΡΠ·ΠΈ с ΡΡ‚ΠΈΠΌ, Ρ†Π΅Π»ΡŒΡŽ настоящСй Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ Π±Ρ‹Π»ΠΎ Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ стабилизации трансгСнов послС ΠΈΡ… ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π³Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌ Π½Π° Π±Π°Π·Π΅ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈΠ½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ² Π”ΠΠš.

Для достиТСния ΡƒΠΊΠ°Π·Π°Π½Π½ΠΎΠΉ Ρ†Π΅Π»ΠΈ Π±Ρ‹Π»ΠΈ поставлСны ΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ:

1. Π Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π½ΠΎΠ²Ρ‹ΠΉ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ стабилизации трансгСнов послС ΠΈΡ… ΡΠ°ΠΉΡ‚-нСспСцифичСской ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π³Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌ Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈΠ½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ² Π”ΠΠš Π² ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ систСмС Dro-sophila melanogaster.

2. Π’Ρ‹ΡΠ²ΠΈΡ‚ΡŒ эффСктивный ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ² Π”ΠΠš для Ρ€Π΅Π°Π»ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° стабилизации трансгСнов.

3. ΠŸΡ€ΠΎΠ°Π½Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ Ρ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€ Π΄Π΅Π»Π΅Ρ†ΠΈΠΉ гСнСтичСского ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Π°, Π²ΠΎΠ·Π½ΠΈΠΊΠ°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π² Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Π΅ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈΠ½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ².

4. Π Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π½ΠΎΠ²Ρ‹ΠΉ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ стабилизации трансгСнов послС ΠΈΡ… ΡΠ°ΠΉΡ‚-спСцифичСской ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π³Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌ Π·Π° ΡΡ‡Π΅Ρ‚ SSA Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈΠ½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ² Π”ΠΠš Π² ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ систСмС D. melanogaster.

5. ΠŸΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ эффСктивного ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ удалСния всСх ΠΏΠ»Π΅Ρ‡Π΅ΠΉ Π½Π΅Π°Π²Ρ‚ΠΎΠ½ΠΎΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΎ транспозона ΠΈ ΡΠ΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… ΠΌΠ°Ρ€ΠΊΠ΅Ρ€ΠΎΠ² Π’ Π½Π°ΡΡ‚оящСй Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅ ΠΏΡ€Π΅Π΄Π»ΠΎΠΆΠ΅Π½ ΠΏΡ€ΠΈΠ½Ρ†ΠΈΠΏΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎ Π½ΠΎΠ²Ρ‹ΠΉ эффСктивный ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ стабилизации трансгСна послС Π΅Π³ΠΎ ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π³Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌ Ρ€Π΅Ρ†ΠΈΠΏΠΈΠ΅Π½Ρ‚Π°, основанный Π½Π° ΡΠ°ΠΉΡ‚-Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ Π΄Π΅Π»Π΅Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΠΈ ΠΏΠ»Π΅Ρ‡Π΅ΠΉ транспозона с ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒΡŽ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈΠ½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ² Π”ΠΠš.

ΠŸΡ€Π΅Π΄Π»ΠΎΠΆΠ΅Π½Π½Ρ‹Π΅ схСмы строСния Π²Π΅ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Π½Ρ‹Ρ… ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ» ΠΌΠΎΠ³ΡƒΡ‚ Π±Ρ‹Ρ‚ΡŒ ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½Ρ‹ ΠΏΡ€ΠΈ создании ΡƒΠ΄ΠΎΠ±Π½Ρ‹Ρ… Π²Π΅ΠΊΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² для трансгСнСза насСкомых Π² ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π³Ρ€ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΡ€ΠΎΠ³Ρ€Π°ΠΌΠΌΠ°Ρ… контроля числСнности Π²Ρ€Π΅Π΄ΠΈΡ‚Π΅Π»Π΅ΠΉ (IPM program — ΠΎΡ‚ Π°Π½Π³Π». Integrated pest management program). ΠšΡ€ΠΎΠΌΠ΅ Ρ‚ΠΎΠ³ΠΎ, ΡƒΠ½ΠΈΠ²Π΅Ρ€ΡΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΡƒΠ΅ΠΌΡ‹Ρ… ΠΏΡ€ΠΈΠ½Ρ†ΠΈΠΏΠΎΠ² стабилизации трансгСнов, ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ»ΠΈΡ‚ ΡΠΎΠ·Π΄Π°Ρ‚ΡŒ ΡΠ΅Ρ€ΠΈΡŽ ΡƒΠ½ΠΈΠ²Π΅Ρ€ΡΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… Π²Π΅ΠΊΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² для трансгСнСза ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ…, растСний ΠΈ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Π»ΠΈΠ½ΠΈΠΉ со ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ трансгСнами.

2. ΠžΠ±Π·ΠΎΡ€ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹.

7. Π’Ρ‹Π²ΠΎΠ΄Ρ‹.

1. Π‘ΠΎΠ·Π΄Π°Π½ Π½ΠΎΠ²Ρ‹ΠΉ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ стабилизации трансгСнов послС ΠΈΡ… ΡΠ°ΠΉΡ‚-нСспСцифичСской ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π³Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌ, основанный Π½Π° ΡƒΠ΄Π°Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ части ΠΏΠ»Π΅Ρ‡ транспозона Π·Π° ΡΡ‡Π΅Ρ‚ 1ΠœΠΠ•1 Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈΠ½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ² Π”ΠΠš.

2. Π’ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π½ΠΎ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Ρ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€ Π΄Π΅Π»Π΅Ρ†ΠΈΠΉ, Π²ΠΎΠ·Π½ΠΈΠΊΠ°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π² Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Π΅ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ² Π”ΠΠš ΠΏΠΎ Π«ΠΠ•1 ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΡƒ, составляСт Π² ΡΡ€Π΅Π΄Π½Π΅ΠΌ 1000−2000 ΠΏ.Π½. ВыявлСно, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π΄Π΅Π»Π΅Ρ†ΠΈΠΈ ΠΌΠΎΠ³ΡƒΡ‚ Π½ΠΎΡΠΈΡ‚ΡŒ Π΄Π²ΡƒΠ½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½Π½Ρ‹ΠΉ Ρ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€ ΠΎΡ‚ Ρ‚ΠΎΡ‡ΠΊΠΈ Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²Π° Π”ΠΠš.

3. Π‘ΠΎΠ·Π΄Π°Π½ Π½ΠΎΠ²Ρ‹ΠΉ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ стабилизации трансгСнов послС ΠΈΡ… ΡΠ°ΠΉΡ‚-спСцифичСской ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π³Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌ, основанный Π½Π° ΡƒΠ΄Π°Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ всСх ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ транспозона Π·Π° ΡΡ‡Π΅Ρ‚ ЗБА Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈΠ½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Π΄Π²ΡƒΡ†Π΅ΠΏΠΎΡ‡Π΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π²ΠΎΠ² Π”ΠΠš. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ позволяСт эффСктивно ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Π½Π½ΠΎ ΡƒΠ΄Π°Π»ΡΡ‚ΡŒ всС ΠΏΠ»Π΅Ρ‡ΠΈ Π½Π΅Π°Π²Ρ‚ΠΎΠ½ΠΎΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΎ транспозона ΠΈ ΠΌΠ°Ρ€ΠΊΠ΅Ρ€Ρ‹.

ΠŸΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ вСсь тСкст

Бписок Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹

  1. Z.N., Blair C.D., Carlson J.O., Beaty Π’.J., Olson K.E., 2001. Sind-bis virus-induced silencing of Dengue viruses in mosquitoes // Insect Mol. Biol. V. 10. № 3. P. 265−273.
  2. S. 2008.Transgenesis and the management of vector-borne disease.-USA.: Landes Bioscience and Springer Science, 190 p.
  3. Allen M.L., O’Brochta D.A., Atkinson P.W., Levesque C.S. 2001. Stable, germ-line transformation of Culex quinquefasciatus (Diptera: Culicinae) //J. Med. Entomol. V. 38, P. 701−710.
  4. L., Bourtzis K., Miller Π’., 2009. Genetically modified insects as a tool for biorational control // Biorational control of arthropod pests / Eds Ishaaya I., Horowitz A.R. Dordrecht: Springer Netherlands. P. 189−206.
  5. L., Nimmo D. 2008. Insect population suppression using engineered insects. Adv. Exp. Med. Biol. V.627. P. 93−103.
  6. Aly A.S.I., Vaughan A.M., Kappe S.H.I. 2009. Malaria parasite development in the mosquito and infection of the mammalian host // Ann. Rev. Microbiology. V. 63. β„– l.P. 195−221.
  7. Atkinson P.W., Warren W.D., O’Brochta D.A. 1993. The hobo transposable element of Drosophila can be cross-mobilized in houseflies and excises like the Ac element of maize // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V.90. P.9693−9697.
  8. R.M., Walden K.K., Robertson H.M. 1996. The genomes of most animals have multiple members of the Tel family of transposable elements // Genetica, V.98, P.131−140.
  9. Bale J.S., Lenteren J.C. van, Bigler F., 2008. Biological control and sustainable food production // Philos. Trans. R. Soc. bond. B. Biol. Sci. V. 363. № 1492. P. 761−776.
  10. J.D., Blessinger Π’., Morse J.G., 2009. Recapture of sterile Mediterranean fruit flies (Diptera: Tephritidae) in California’s preventative release program // J. Economic Entomology. V. 97. № 5. P. 1554−1562.
  11. Bateman J.R., Lee A.M., Wu C.T. 2006. Site-specific transformation of Dro-sophila via phiC31 integrase-mediated cassette exchange. // Genetics. V. 173. № 2. P. 769−77
  12. R., Friesen K. Denell R., 1992. Maternal-effect selfish genes in flour beetles // Science. V. 256. № 5053. P. 89−92.
  13. Y., Mogila V., Perrimona N. 1999. I-Scel Endonuclease, a New Tool for Studying DNA Double-Strand Break Repair Mechanisms in Drosophila. // Genetics. V.152. P. 1037−1044
  14. A.J., Klingler M., Wimmer E.A. 1999. A universal marker for transgenic insects //Nature. V.402. № 6760. P. 370.
  15. J., Maeda R.K., Hediger M., Karch F., Basler K., 2007. An optimized transgenesis system for Drosophila using germ-line-specific phiC31 integrases // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 104. № 9. P. 3312−3317.
  16. Budman J., Chu G., 2005. Processing of DNA for nonhomologous end-joining by cell-free extract. // EMBO J. P. 849−60.
  17. P., Clements J., Francis C., Hens K. 2006. Pax6 and eye development in Arthropoda II Arthropod Struct. Dev. V. 35. № 4. P. 379−391.
  18. L.C., Goebel M., Corsaro H.H., Wang H.H., Rosen E., Fraser M.J. 1989. Transposon mutagenesis of baculoviruses: analysis of Trichoplusia ni trans-poson IFP2 insertions within the FP-Locus of nuclear polyhidrosis viruses // Virology. V.161,P. 8−17.
  19. F., Benton J., Crisanti A. 2005. An Anopheles transgenic sexing strain for vector control // Nat. Biotechnol. V. 23. P. 1414−1417
  20. F., Nolan T., Loukeris T.G., Blass C., Savakis C., Kafatos F.C., Crisanti A. 2000. Stable germline transformation of the malaria mosquito Anopheles stephensi II Nature. V.405. P. 959−962.
  21. Chen C.H., Huang H, Ward C.M., Su J.T., Schaeffer L.V., Guo M, Hay B.A. 2007. A synthetic maternal-effect selfish genetic element drives population replacement in Drosophila I I Science. V. 316. № 5824. P. 597−600.
  22. C.J., Jasinskiene N., Pott G.B., James A.A. 1999. Promoter-directed expression of recombinant fire-fly luciferase in the salivary glands of Hermes-transformed Aedes aegypti II Gene. V. 226. № 2. P. 317−325.
  23. Condon K.C., Condon G.C., Dafa’alla T.H., Forrester O.T., Phillips C.E., Scaife S., Alphey L., 2007. Germ-line transformation of the Mexican fruit fly // Insect Mol. Biol. V. 16. № 5. P. 573−580.
  24. Dafa’alla T. Hi, Condon G.C., Condon K.C., Phillips C.E., Morrison N.I., Jin L., Epton M.J., Fu G. Alphey L. 2006. Transposon-free insertions for insect genetic engineering // Nat. Biotechnol. V. 24. № 7. P. 820−821.
  25. Ding S, Wu X, Li G, Han M, Zhuang Y, Xu T. 2005. Efficient transposition of the piggyBac (PB) transposon in mammalian cells and mice // Cell. V. 122. № 3. P. 473−83.
  26. W.R., 1992. The origin of P elements in Drosophila melanogaster II Bioessays. V. 14. № 10. P. 681−686.
  27. J.M., Hartl D.L., Dowling J.E. 1998. Transposition of the mariner element from Drosophila mauritiana in zebrafish. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA V. 95, № 9. P.5182−5186.
  28. Finnegan D., Sang, H. 1998. Transposition of the Drosophila element mariner into the chicken germ line // Nat. Biotechnol. V.95. № 5. P. 1050−1053.
  29. D.J., 1989. Eukaryotic transposable elements and genome evolution // Trends Genet. V. 5. № 4. p. 103−107.
  30. Franz G., Savakis, C. 1991. Minos, a new transposable element from Drosophila hydei, is a member of the Tc-l-like family of transposons // Nucleic Acids Res. V.19. № 23. P.6646.
  31. French-Constant R.H., Benedict M.Q. 2000. Resistance genes as candidates for insect transgenesis // Insect Transgenesis: Methods and Applications / Eds Handler A.M., James A.A. Boca Raton: CRC Press. P. 83−87.
  32. Fu G., Condon K.C., Epton M.J., Gong P., Jin L., Condon G.C., Morrison N.I., Dafa’alla T.H., Alphey L., 2007. Female-specific insect lethality engineered using alternative splicing // Nat. Biotechnol. V. 25. № 3. P. 353−357.
  33. M. 2001. The impact of mammalian gene regulation concepts on functional genomic research, metabolic engineering, and advanced gene therapies // Biotechnol Prog.V.17. № 1. P. 1−51.
  34. Gao G., McMahon C., Chen J., Rong Y.S. 2008. A powerful method combining homologous recombination and site-specific recombination for targeted mutagenesis in Drosophila. //Proc. Natl. Acad. Sci USA. V. 105. P. 13 999−4004
  35. Ghosh A.K., Ribolla P.E., Jacobs-Lorena M. 2001. Targeting Plasmodium ligands on mosquito salivary glands and midgut with a phage display peptide library//Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 98. № 23. P. 13 278−13 281.
  36. M.M., Rong Y.S., Petersen R.B., Lindquist S.L., Golic K.G. 1997. FLP-mediated DNA mobilization to specific target sites in Drosophila chromosomes. //Nucleic Acids Res. V.25. P. 3665−71
  37. M., Bujard H. 1992. Tight control of gene expression in mammalian cells by tetracycline-responsive promoters // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 89. № 12. P. 5547−5551.
  38. M., Freundlieb S., Bender G., Muller G., Hillen W., Bujard H., 1995. Transcriptional activation by tetracyclines in mammalian cells // Science. V. 268. № 5218. P. 1766−1769.
  39. F., Schliekelman P. 2004. Population genetics of autocidal control and strain replacement//Ann. Rev. Entomol. V.49. P. 193—217.
  40. A.C., Fish M., Nusse R., Calos M.P., 2004. Construction of transgenic Drosophila by using the site-specific integrase from phage phiC31 // Genetics. V. 166. № 4. P. 1775−1782.
  41. Gwadz R.W., Kaslow D., Lee J.Y., Maloy W.L., Zasloff M., Miller L.H. 1989. Effects of magainins and cecropins on the sporogonic development of malaria parasites in mosquitoes // Infect Immun. V. 57. № 9. P. 2628−2633.
  42. A.M. 2002. Use of the piggyBac transposon for germline transformation of insects // Insect Biochem. Mol. Biol. V.32. P. 1211−1220.
  43. Handler A.M., McCombs S.D. 2000. The piggyBac transposon mediates germ-line transformation in the Oriental fruit fly and closely related elements exist in its genome // Insect Mol. Biol. V. 9. № 6. P. 605−612.
  44. A.M., Zimowska G.J., Horn C., 2004. Post-integration stabilization of a transposon vector by terminal sequence deletion in Drosophila melanogaster II Nat. Biotechnol. V. 22. № 9. P. 1150−1154.
  45. D.L., Lohe A.R., Lozovskaya E.R. 1997. Modern thoughts on an an-cyent marinere: function, evolution, regulation // Ann. Rev. Genet. V.31. P. 337— 358.
  46. S.W., Golic K., Ashburner M. 2004. Drosophila: A Lab Handbook 2nd Ed © / Cold Spring Harbor Laboratory Press. P. 1409
  47. J.C., Scott M.J. 2000. A repressible female-specific lethal genetic system for making transgenic insect strains suitable for a sterile-release program // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 97. № 15. P. 8229−8232.
  48. J., Franz G., Rendon P. 1995. Increased effectiveness and applicability of the sterile insect technique through male-only releases for control of
  49. Mediterranean fruit flies during fruiting seasons // J. Applied Entomology. V. 119. β„– l.P. 371−377.
  50. J., Ortiz G., Liedo P., Schwarz A. 1982. Six years of successful medfly program in Mexico and Guatemala // Symposium: fruit flies of economic importance. CEC/IOBC International Symposium, Athens, Greece. Rotterdam: A.A. Balkema. P. 353−365
  51. C., Handler A.M. 2005. Site-specific genomic targeting in Drosophila. //Proc. Natl. Acad. Sci USA. V.102. P. 12 483−8.
  52. C., Jaunich B., Wimmer E.A., 2000. Highly sensitive, fluorescent transformation marker for Drosophila transgenesis // Dev. Genes Evol. V. 210. № 12. P. 623−629.
  53. C., Wimmer E.A., 2003. A transgene-based, embryo-specific lethality system for insect pest management // Nat. Biotech. V. 21. β„– l.P. 64−70.
  54. A.R., Ellsworth P.C., Ishaaya I. 2009. Biorational pest control -An overview // Biorational control of arthropod pests / Eds Ishaaya I., Horowitz A.R. Dordrecht: Springer Netherlands. P. 1−20
  55. Ito J., Ghosh A., Moreira L.A., Wimmer E.A., Jacobs-Lorena M., 2002. Transgenic anopheline mosquitoes impaired in transmission of a malaria parasite // Nature. V. 417. № 6887. P. 452−455.
  56. A.A., Blackmer K., Racioppi J.V. 1989. A salivary gland-specific, maltase-like gene of the vector mosquito, Aedes aegypti II Gene. V. 75. β„– l.P. 7383.
  57. T., Lark K.G. 1998. Characterization of Soymarl, a mariner element in soybean // Genetics. V. 149. № 3. P. 1569−1574.
  58. N., Coates C.J., James A.A. 2000. Structure of Hermes integrations in the germline of the yellow fever mosquito, Aedes aegypti // Insect Mol. Biol. V.9. P. l 1—18.
  59. Johnson-Schlitz D.M., Flores C., Engels W.R. 2007. Multiple-pathway analysis of double-strand break repair mutations in Drosophila II PLoS Genet. V4: e50.
  60. M.S., Stoddard B.L. 1999. Homing endonucleases: structure, function and evolution. // Cell Mol Life Sci. V.55. P. 1304−26.
  61. M., Kranz E., Woolcock K., Georgiev O., Schaffner W. 2008. Drosophila bloom helicase maintains genome integrity by inhibiting recombination between divergent DNA sequences. Nucleic Acids Res.V.36. № 21. P.6907−17.
  62. R.E., Rubin G.M. 1984. Analysis of P transposable element functions in Drosophila II Cell. V.38. № 1. P. 135−46.
  63. M.G. 1992. Horizontal transfer of P elements and other short inverted repeat transposons // Genetica. V. 86. № 1−3. P. 275−286.
  64. A.G., Loukeris T.G., Pavlopoulos A., Savakis C. 2000a. Mobility assays confirm the broad host-range activity of the Minos transposable element and validate new transformation tools // Insect Mol. Biol.V.9. P.269−275.
  65. A.G., Zagoraiou L., Vassilatis D.K., Savakis C. 2000b. Genome-wide insertional mutagenesis in human cells by the Drosophila mobile element Minos. //EMBO Rep. β„–lio P:416−21.
  66. E.F. 1985. Sterile insect technique for screwworm suppression -the concept and its development // ESA Miscellaneous Publication. V. 62. P. 4−7.
  67. Koyama J., Kakinohana H, Miyatake T. 2004. Eradication of the melon fly, Bactrocera cucurbitae, in Japan: importance of behavior, ecology, genetics and evolution // Ann. Rev. Entomology. V. 49. № 1. P. 331−349.
  68. E.S. 1998. Sterile insect technique for suppressing and eradicating insect population: 55 years and counting // J. Agricultural Entomology. V. 15. P. 303−317.
  69. E.S., Lindquist D.A. 1996. Did the sterile insect technique or weather eradicate screwworms (Diptera:Calliphoridae) from Libya? // J. Med. Entomol. V. 33. № 6. P. 877−887.
  70. L.A., Undeen A.H. 1986. Microbial control of black flies and mosquitoes // Ann. Rev. Entomology. V. 31. № 1. P. 265−296.
  71. Li C., Marrelli M.T., Yan G., Jacobs-Lorena M. 2008. Fitness of transgenic Anopheles stephensi mosquitoes expressing the SMI peptide under the control of a vitellogenin promoter// J. Hered. V. 99. № 3. P. 275−282.
  72. Li X., Lobo N., Bauser C.A., Fraser M.J. Jr. 2001. The minimum internal and external sequence requirements for transposition of the eukaryotic transformation vector piggyBac // Mol. Genet. Genomics. V.266. № 2. P. 190−198.
  73. Lindquist D.A., Abusowa M., Hall M.J.R. 1992. The New World screw-worm fly in Libya: a review of its introduction and eradication // Medical and Veterinary Entomology. V. 6. № 1. P. 2−8.
  74. D. L., Zimm G.G. 1992. The genome of Drosophila melanogaster. San Diego: Academic Press
  75. T.G., Livadaras I., Area B., Zabalou S., Savakis C. 1995. Gene transfer into the medfly, Ceratitis capitata, with a Drosophila hydei transposable element. // Science. 1995 V.270. P.2002−5.
  76. E.R., Nurminsky D., Wimmer E.A., Hartl D.L. 2002. Unexpected stability of mariner transgenes in Drosophila II Genetics. V. 160. № 2. P. 527−535.
  77. K. 2000. Natural animal coloration can be determined by a non-fluorescent green fluorescent protein homolog //J. Biol. Chem. V.275. P. 2 587 925 882.
  78. D., 2003. Ethical, legal and social issues of genetically modified disease vectors in public health // WHO, special programme for research and training in tropical diseases. Geneva: TDR. P. 1−47
  79. M., Franz G. 1996. Gamma radiation as a quarantine treatment for the Mediterranean fruit fly (Diptera: Tephritidae) // Journal of Economic Entomology. V.89. P. l 175−1180.
  80. Marec F., Neven L.G., Robinson A.S., Vreysen M., Goldsmith M.R., Naga-raju J., Franz G., 2005. Development of genetic sexing strains in Lepidoptera: from traditional to transgenic approaches // J. Econ. Entomol. V. 98. № 2. P. 248−259.
  81. M., Pitsouli C., Villalta C., Celniker S.E., Perrimon N., 2008. Exploiting position effects and the gypsy retrovirus insulator to engineer precisely expressed transgenes //Nat. Genet. V. 40. № 4. P. 476−483.
  82. J.M. 2009. The effect of gene drive on containment of transgenic mosquitoes // J. Theor. BioL.V. 258. № 2. P. 250−265.
  83. L., Izsvak Z., Ivies Z., 2007. Technology transfer from worms and flies to vertebrates: transposition-based genome manipulations and their future perspectives // Genome Biol. V. 8 Suppl. 1. P. SI.
  84. Medhora M.M., MacPeek A.H., Hartl D. L'. 1988. Excision of the Drosophila transposable element mariner: identification and characterization of the Mos factor. //EMBO J. V.7. P.2185−9.
  85. A., Oehler S., Klinakis A., Savakis C. 2005. Minos as a genetic and genomic tool in Drosophila melanogaster. II Genetics.- V.171. № 2.P.571−81.
  86. J.K., Haber J.E., 1996. Cell cycle and genetic requirements of two pathways of nonhomologous end-joining repair of double-strand breaks in Saccha-romyces cerevisiae II Mol. Cell Biol. P. 2164−73.
  87. Moreira L.A., Wang J., Collins F.H., Jacobs-Lorena M. 2004. Fitness of anopheline mosquitoes expressing transgenes that inhibit Plasmodium development // Genetics. V. 166. № 3. P. 1337−1341.
  88. C.M., Gimble F.S., Quiocho F.A. 2008. Crystal structures of I-Scel complexed to nicked DNA substrates: snapshots of intermediates along the DNA cleavage reaction pathway. //Nucleic Acids Research V. 36, β„–.10.P. 3287—3296
  89. Mullins M.C., Rio D.C., Rubin G.M. 1989. Cis-acting DNA sequence requirements for P-element transposition // Genes Dev. V.3 № 5. P.729−38.
  90. J.M., Marshall P., Sinnis P., 2004. The Plasmodium circumsporo-zoite protein is involved in mosquito salivary gland invasion by sporozoites // Mol. Biochem. Parasitol. V. 133. № 1. p. 53−59.
  91. X., James A.A. 2003. Engineering Plasmodium-refractory pheno-types in mosquitoes // Trends Parasitol. V. 19. № 9. P. 384−387.
  92. Nuclear technology review Internatianal Atomic Energy Agency, 2001−2009 / URL http://www.iaea.org/Publications/Reports/index.html
  93. O’Brochta D.A., Warren W.D., Saville K.J., Atkinson P.W. 1996. Hermes, a functional non-drosophilid insect gene vector I I Genetics. V.142, p. 907−914.
  94. A., Parel A., Kaplan L., Smal S. 2005. Site-specific transgenesis by Cre-mediated recombination inDrosophila. //Nature methods. V.2. № 8. P. 1−3
  95. O’Brochta D.A., Atkinson P.W., Lehane M.J., 2000. Transformation of Sto-moxys calcitrans with a Hermes gene vector // Insect Mol. Biol. V. 9. № 5. P. 531 538.
  96. T., Belknap W.R., Garlick B., 1995. Mariner transposons in humans //Nature. V. 378. β„–> 6558. P. 672.
  97. Penalva L.O.F., Sanchez L., 2003. RNA binding protein sex-lethal (Sxl) and control of Drosophila sex determination and dosage compensation // Microbiol. Mol. Biol. Rev. V. 67. № 3. P. 343−359.
  98. O.P., Harrell I.R., Handler A.M., 2002. Germ-line transformation of the South American malaria vector, Anopheles albimanus, with a piggyBac/EGFP transposon vector is routine and highly efficient // Insect Mol. Biol. V. 11. № 4. P. 291−297.
  99. C.R., Flores C.C., Engels W.R. 2006. Differential usage of alternative pathways of double-strand break repair in Drosophila II Genetics.V.172. № 2. P.1055−68.
  100. C.R., Engels W., Flores C. 2002. Efficient repair of DNA breaks in Drosophila'. evidence for single-strand annealing and competition with other repair pathways 11 Genetics V. 161. P. 711 -20
  101. P., Mclnnis D., Lance D., Stewart J. 2004. Medfly (Diptera: Tephri-tidae) genetic sexing: large-scale field comparison of males-only and bisexual sterile fly releases in Guatemala // J. Econ. Entomol. V. 97. № 5. P. 1547−1553.
  102. Riehle M.A., Srinivasan P., Moreira C.K., Jacobs-Lorena M. 2003. Towards genetic manipulation of wild mosquito populations to combat malaria: advances and challenges // J. Exp. Biol. V. 206. № 21. P. 3809−3816.
  103. H. M., Lampe D.J. 1995. Recent horizontal transfer of a mariner transposable element among and between Diptera and Neuroptera // Mol. Biol. Evol. V. 12. № 5. P. 850−862.
  104. H.M. 1993. The mariner transposable element is widespread in insects //Nature. V. 362. № 6417. P. 241−245.
  105. H.M., 1995. The Tel-mariner superfamily of transposons in animals // J. Insect Physiology. V. 41. P. 99−105.
  106. Robertson H.M., MacLeod E.G. 1993. Five major subfamilies of mariner transposable elements in insects, including the Mediterranean fruit fly, and related arthropods II Insect Mol. Biol. V.2. P. 125−139.
  107. A. 1989. In: Robinson A, Hooper G, eds. Fruit flies. Their biology, natural enemies and control. /Vol. 3A. Amsterdam. Elsevier.: pp. 57−65.
  108. A., Franz G., Fisher K. 1999. Genetic sexing strains in the medfly, Ceratitis capitata: Development, mass rearing and field application // Trends En-tomol. V.2. P. 81−104.
  109. A.S., 2002. Genetic sexing strains in medfly, Ceratitis capitata, sterile insect technique programmes // Genetica. V. 116. № 1. P. 5−13.
  110. S., Georgiev P. 2005. Handling three regulatory elements in one transgene: combined use of cre-lox, FLP-FRT, and I-Scel recombination systems // BioTechniques V.39. P.871−876
  111. Rong Y.S., Titen S.W., Xie H.B., Golic M.M., Bastiani M., Bandyopadhyay P., Olivera B.M., Brodsky M., Rubin G.M., Golic K.G. 2002. Targeted mutagenesis by homologous recombination in D. melanogaster II Genes Dev. V.16. № 12. P.1568−81.
  112. G.M., Spradling A.C. 1982. Genetic transformation of Drosophila with transposable element vectors // Science. V. 218. № 4570. P. 348−353.
  113. G.M., Spradling A.C. 1983.Vectors for P element gene transfer in Drosophila II Nuc. Acids Res. V.ll. P.6341−6351.
  114. P. 1995. The Flp recombinase of the 2-jim plasmid of Saccharo-myces cerevisiae. //Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. V.51. P.53−91.
  115. J., Fritsch E.F., Maniatis T. 1989. Molecular Cloning: a laboratory manual. 2nd' / ed. N.Y., Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor Laboratory Press, p. 1659
  116. B. 1987. Functional expression of the Cre-Lox site-specific recombination system in the yeast Saccharomyces cerevisiae. II Mol. Cell Biol. V.7. P. 2087−2096
  117. B., Henderson N. 1988. Site-specific DNA recombination in mammalian cells by the Cre recombinase of bacteriophage PI. // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. V.85. P. 5166−5170
  118. P., Gould F. 2000. Pest control by the release of insects carrying a female-killing allele on multiple loci II J. Econ. Entomol.V.93. P. 1566−1579.
  119. F., Schetelig M.F., Bertin S., Malacrida A.R., Gasperi G., Wimmer E.A. 2008. Fluorescent sperm marking to improve the fight against the pest insect Ceratitis capitata (Wiedemann- Diptera: Tephritidae) // Nat. Biotechnol. V. 25. β„– LP. 76−84.
  120. M.M., Hudson S.J., Everson B., Morgan P.G. 1994. Identification of a mariner-like repetitive sequence in C. elegans II Nucleic Acids Res. V. 22. № 9. P. 1719−1723.
  121. Sethuraman N., Fraser M.J., Eggleston P., O’Brochta D.A., 2007. Postintegration stability of piggyBac in Aedes aegypti II Insect Biochem. Mol. Biol. V. 37. № 9. P. 941−951.
  122. M., Fields I., Bulet P., Hoffmann J.A., Miller L.H. 1998. Plasmodium gallinaceum: differential killing of some mosquito stages of the parasite by insect defensin // Exp. Parasitol. V. 89. № 1. P. 103−112.
  123. Sherman A., Dawson A., Mather C., Gilhooley H., Li Y., Mitchell R., Finnegan D., Sang H. 1998. Transposition of the Drosophila element mariner into the chicken germ line //Nat. Biotechnol. V.16. № 11. P. 1050−3.
  124. Smith, R.C., Walter M.F., Hice R.H., O’Brochta D.A., Atkinson P.W. 2007. Testis-specific expression of the beta2 tubulin promoter of Aedes aegypti and itsapplication as a genetic sex-separation marker // Insect Mol. Biol. V. 16. № 1. P. 61−71.
  125. Speranca M.A., Ribolla P.E., Lara Capurro M. de. 2008. Transgenic vectors: Anopheles and Aedes // Bioinformatics in tropical disease research: a practical and case-study approach B04 URL http://www.ncbi.nlm.nih.gov/bookshelf/br.fcgi?book=bioinfo.
  126. Sundararajan P., Atkinson P.W., O’Brochta D.A. 1999. Transposable element interactions in insects: crossmobilization of hobo and Hermes 11 Insect Mol. Biol. V.8. P. 359−368.
  127. F.H., Coppedge J.R., Snow J.W., 1980. Screwworm (Diptera: Cal-liphoridae) myiasis on Curacao: reinvasion after 20 years // J. Medical Entomology. V. 17. № 3.
  128. H.M., Smith M.C. 1998. In vitro site-specific integration of bacteriophage DNA catalyzed by a recombinase of the resolvase/invertase family // Proc. Natl Acad. Sci. USA. V.95. P.5505−5510.
  129. K., Povirk L.F. 2003. Regulation and mechanisms of mammalian double-strand break repair// Oncogene. V22. P. 5792−812.
  130. K.J., Bellen H.J. 2005. Emerging technologies for gene manipulation in Drosophila melanogaster. II Nat Rev Genet. V.6. № 3. P. 167−78.
  131. Venken K.J., He Y., Hoskins R.A., Bellen H.J. 2006. Pacman.: a BAC transgenic platform for targeted insertion of large DNA fragments in D. melano-gaster. // Science. V.314. P. 1747−51.
  132. M.J., Beeman R.W. 1994. The population dynamics of maternal-effect selfish genes // Genetics. V. 138. № 4. P. 1309−1314.
  133. Wan-en W.D., Atkinson P.W., O’Brochta D.A. 1994. The Hermes transpos-able element from the house fly, Musca domestica, is a short inverted repeat-type element of the hobo, Ac, and Tam3 (hAT) element family // Genet. Res. Camb. V.64. P.87−97.
  134. D. E., Breeland S.G., Lofgren C.S., Dame D.A., Kaiser R. 1974. Release of chemosterilized males for the control of Anopheles albimanus in El Salvador: IV. Dynamics of the test population // Am. J. Trop. Med. Hyg. V. 23. № 2. P. 298−308.
  135. N., Rong Y.S., 2010. The past, present and future of gene targeting in Drosophila II Fly (Austin). V4. № 1. P53−59.
  136. D.L., Gartman S.C., Hourrigan J.L. 1977. Screwworm eradication in Puerto Rico and the Virgin Islands // FAO World Animal Review. V. 21. № 1. P. 31−35.
  137. J.IT. 2000. Screwworm eradication in the Americas // Annals New York Acad. Sci. V. 916. β„– Tropical veterinary diseases: control and prevention in context of the new world order. P. 186−193.
  138. M., Honda H., Kimura K. 2000. Successful transformation of the housefly, Musca domestica (Diptera: Muscidae) with the transposable element, mariner // Appl. Entomol. Zool.V.35. P.321−325.b t
  139. Yu A.M., McVey M. 2010. Synthesis-dependent microhomology-mediated end joining accounts for multiple types of repair junctions II Nucleic Acids Res. V. 38. № 17. P. 5706−17
  140. Y.G., Eggleston P. 1998.Transformation of an Anopheles gambiae cell line mediated by the Hermes mobile genetic element // Insect Biochem. Mol. Bi-ol.V.28. P. 213−219.
  141. Zhu Z., Zheng Π’., Lee C.G., Homer R.J., Elias J.A. 2002. Tetracycline-controlled transcriptional regulation systems: advances and application in transgenic animal modeling // Seminars in Cell and Developmental Biology. V. 13. № 2. P. 121−128.
  142. А.Π‘., 1940. О Π½ΠΎΠ²ΠΎΠΌ Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎΠΌ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π΅ Π±ΠΎΡ€ΡŒΠ±Ρ‹ с Π²Ρ€Π΅Π΄Π½Ρ‹ΠΌΠΈ насСкомыми // Π—ΠΎΠΎΠ». ΠΆΡƒΡ€Π½., Π’. 19. № 4. Π‘. 618−630.
  143. А.Π‘., 1971. ВСорСтичСскиС основания транслокационного ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° Π±ΠΎΡ€ΡŒΠ±Ρ‹ с Π²Ρ€Π΅Π΄Π½Ρ‹ΠΌΠΈ насСкомыми. М.: Наука. 87 с.
Π—Π°ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚ΡŒ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡƒ Ρ‚Π΅ΠΊΡƒΡ‰Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ