Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Изменения структурной организации бактериальных клеток при стрессовых воздействиях

Диссертация: Изменения структурной организации бактериальных клеток при стрессовых воздействиях
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Особое значение в структуре клеток бактерий имеет наличие жесткой клеточной оболочки, которая, прежде всего, обеспечивает защиту клетки от внутреннего давления, связанного с более высокой концентрацией веществ в клетке по сравнению с окружающей средой. Различные бактерии разнятся по строению клеточной стенки, подразделяясь на две основные группы: грамотрицательные и грамположительные… Читать ещё >

Содержание

  • 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Влияние физических агентов на структуру и биохимические процессы жизнедеятельности бактериальных клеток
      • 1. 1. 1. Общая характеристика физических факторов
      • 1. 1. 2. Влияние гравитации на бактерии
      • 1. 1. 3. Влияние давления (гидростатическое или гидравлическое) на бактерии
      • 1. 1. 4. Влияние магнитных и электромагнитных полей на бактерии
      • 1. 1. 5. Влияние внешних электрических полей на бактерии
      • 1. 1. 6. Влияние радиоактивного излучения на бактерии
      • 1. 1. 7. Влияние рентгеновского излучения на бактерии
      • 1. 1. 8. Влияние высокочастотных воздействий (СВЧ, КВЧ) на бактерии
      • 1. 1. 9. Влияние оптического излучения (инфракрасный, видимый, ультрафиолетовый спектры) на бактерии
    • 1. 2. Возможность формирования мелких бактериальных форм из клеток бактерий обычного размера в неблагоприятных условиях
      • 1. 2. 1. Возможные (расчетные) минимальные размеры жизнеспособных бактериальных клеток
      • 1. 2. 2. Образование наноформ из обычных клеток
    • 1. 3. Мелкие бактериальные формы в природных источниках и общие представления о нанобактериях
  • 2. Экспериментальная часть
    • 2. 1. Материалы и методы
      • 2. 1. 1. Объекты исследования
      • 2. 1. 2. Среды культивирования
      • 2. 1. 3. Определение таксономических признаков
    • 2. 2. Методы разделения бактериальных симбионтов и бактериальных клеток разного размера
      • 2. 2. 1. Разделение бинарной культуры в градиенте плотности фиколла
      • 2. 2. 2. Отделение мелких клеток от клеток «рутинного» размера в градиенте плотности сахарозы
    • 2. 3. Методы микроскопического анализа
      • 2. 3. 1. Световая микроскопия
      • 2. 3. 2. Флуоресцентная микроскопия
      • 2. 3. 3. Электронная микроскопия
    • 2. 4. Анализы химического состава бактерий
      • 2. 4. 1. Рентгеновский микроанализ
    • 2. 4. 2. Выделение экстрацеллюлярных образований
    • 2. 4. 3. Определение общего количества углеводов антроновым методом
    • 2. 4. 4. Определение состава полисахарида
    • 2. 4. 5. Определение белков по методам Бредфорд, Лоури и с применением двумерного гель-электрофореза
    • 2. 4. 6. Анализы содержания соединений фосфора
    • 2. 5. Проведение экспериментов по определению влияния физических агентов
    • 2. 5. 1. Эксперименты с воздействием постоянного и переменного магнитного поля на бактерии
    • 2. 5. 2. Эксперименты с воздействием постоянным электрическим током на бактерии
    • 2. 5. 3. Эксперименты по влиянию высокочастных излучений (радиоизлучений) на бактерии
    • 2. 5. 4. Эксперименты по влиянию прямого света и ультрафиолетового света на бактерии
  • 3. Результаты и их обсузвдение
    • 3. 1. Формирование бактериями коммунальных экстрацеллюлярных структур, обладающих радиозащитным действием при облучении культур УФ-светом
      • 3. 1. 1. Краткое описание штаммов на этапе выделения
      • 3. 1. 2. Таксономическая характеристика штаммов
      • 3. 1. 3. Исследование штаммов устойчивых к ультрафиолету на наличие плазмид
      • 3. 1. 4. Световая микроскопия
      • 3. 1. 5. Определение жизнеспособности клеток внутри коммунальных оболочек
      • 3. 1. 6. Электронно-микроскопические исследования
      • 3. 1. 7. Исследование состава коммунальной оболочки бактерий, устойчивых к ультрафиолету
    • 3. 2. Влияние геомагнитного поля на активность бактерий и на формирование экстраклеточных и внутриклеточных структур
      • 3. 2. 1. Фазы роста бактериальной культуры

      3.2.2. Сравнительное влияние «магнитного вакуума», естественного геомагнитного поля и «магнитного возмущения» на удельную скорость ассимиляции карбонатного углерода без дополнительного внесения железа в питательную среду.

      3.2.3. Сравнительное влияние «магнитного вакуума», естественного геомагнитного поля и «магнитного возмущения» на удельную скорость ассимиляции карбонатного углерода с дополнительным внесением ферромагнетика в питательную среду.

      3.2.3. Формирование дополнительных клеточных структур бактериями Pseudomonas fluorescens ВКМВ-2170 при наличии в питательной среде железа. .90 З. З. Образование наноформ при воздействии на бактерии электрическим током, видимым светом, радиоволновым излучением.

      3.3.1. Влияние электрического тока на бактерии.

      3.3.2. Влияние прямого света на клеточную структуру бактерий.

      3.3.3. Влияние радиоволнового излучения.

Изменения структурной организации бактериальных клеток при стрессовых воздействиях (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Известно, что внешние воздействия на бактерии могут изменять численность и активность клеток в популяции. Эти изменения зависят от типа, мощности и продолжительности воздействия. Вместе с тем было известно, что длительные неблагоприятные воздействия (голодание и т. п.) сказываются не только на физиологической активности, но также и на морфологии и структурной организации бактерий.

Несмотря на относительную простоту организации, бактерии имеют хорошо развитую клеточную структуру, которая ответственна за многие биологические особенности и свойства. Клеточная структура бактерий является одним из первых объектов классической микробиологии, включающей изучение морфологии микроорганизмов. Форма клеток является характеристикой для ряда видов и более высоких таксонов, но может изменяться в зависимости от условий роста. Столь же значимой для морфологии характеристикой, как и форма, обычно является размер клеток, также типичный для вида или на уровне вышестоящего таксона. Изменение формы и размера клетки в сочетании с переменой соотношения площади поверхности и объема клетки является показателем изменений в активности протекающих процессов. При этом обычно увеличение размеров клеток по сравнению с исходными рассматривают как снижение активности и/или увеличение резервов.

Особое значение в структуре клеток бактерий имеет наличие жесткой клеточной оболочки, которая, прежде всего, обеспечивает защиту клетки от внутреннего давления, связанного с более высокой концентрацией веществ в клетке по сравнению с окружающей средой. Различные бактерии разнятся по строению клеточной стенки, подразделяясь на две основные группы: грамотрицательные и грамположительные. Грамположительные бактерии отличаются мощным слоем пептидогликана. Общие характеристики типа клеточной стенки недостаточны для описания ее защитных свойств, — так, относительно устойчивые к радиации бактерии рода Ветососсш и устойчивые к воздействиям высоких температур бактерии группы ТИегтш имеют грамотрицательное строение стенки при формальном классическом окрашивании как грамположительные.

Грамотрицательная клеточная стенка имеет менее мощный слой пептидогликана, но кроме него содержит дополнительную внешнюю мембрану, выполненную фосфолипидами и липополисахаридами. Химическая структура липополисахаридов внешней мембраны может быть высоко специфичной и ответственной за антигенные свойства штаммов. Функции компонентов поверхности клеточной стенки бактерий включают барьерную роль, адгезивную, размещение ряда энзимов, а также сигнальных белков, реагирующих на воздействия температуры, осмоса, солености, света, кислорода, химических соединений и другое. Клеточная оболочка обеспечивает все контакты бактериального организма с окружающей его внешней средой, таким образом, именно она является первичной организационной структурой воспринимающей воздействия любых внешних воздействий.

Известно, что внешние воздействия на бактерии могут изменять численность и активность клеток в популяции. Эти изменения зависят от типа, мощности и продолжительности воздействия. Вместе с этим известно, что длительные неблагоприятные воздействия (голодание и т. п.) сказываются не только на физиологической активности, но также и на морфологии и структурной организации бактерий. Литературные сведения о структурных изменениях клеток бактерий при кратковременных неблагоприятных (стрессовых) воздействиях более ограничены. В настоящее время все живые организмы подвержены возрастающему влиянию техногенных агентов, что не может не отражаться на ответных реакциях клеток не только у высших организмов, но и у бактерий.

Влияние внешних факторов на морфологию и организацию клеток бактерий изучено в основном при сильных стерилизующих воздействиях и как эффекты длительных неблагоприятных воздействий, а не кратковременных неблагоприятных (здесь и далее по тексту — стрессовых). Вместе с тем не стерилизующие стрессовые воздействия также могут сказываться на организации клеток, и исследование структурных особенностей бактерий в неблагоприятных условиях представляет интерес для получения новых цитологических сведений. Возрастающее давление физических техногенных факторов на окружающую среду увеличивает актуальность таких исследований.

Актуальность проблемы.

Реакции микроорганизмов на воздействие различных внешних факторов являются объектом постоянного внимания различных исследователей. Бактерии подвержены воздействиям агентов, способным вызывать изменения в биохимических и физико-химических процессах, а в дальнейшем — в морфологии и структурной организации клеток. Литературные сведения о влиянии экстремальных внешних факторов на морфологию и организацию клеток бактерий посвящены в основном разрушению клеток при сильных стерилизующих воздействиях (высокая температура, ультрафиолетовое излучение, СВЧ высокой мощности) или эффектам длительных неблагоприятных воздействий (голоданию, накоплению метаболитов и т. д.), а не кратковременных неблагоприятных (здесь и далее по тексту — стрессовых). Вместе с тем при не стерилизующих стрессовых воздействиях также могут происходить изменения в организации клеток, и исследование структурных особенностей бактерий, возникающих в неблагоприятных условиях, представляет значительный интерес для получения новых цитологических сведений. Возрастающее давление физических техногенных факторов на окружающую среду увеличивает актуальность таких исследований.

Цель и задачи исследования

.

Целью исследований явилось изучение структурной организации бактерий после воздействия физическими агентами (ультрафиолетовым излучением, магнитным вакуумом, электрическим током, радиоволновым излучением, видимым светом). В соответствии с целью работы в задачи исследования входило:

1. Выявить наличие специализированных структур или структурных модификаций бактериальных клеток, возникающих в результате кратковременных неблагоприятных (стрессовых) воздействий физических агентов (магнитные/геомагнитные поля, электрический ток, радиоволновое и световые излучения).

2. Изучить защитные коммунальные экстрацеллюлярные структуры грамотрицательных бактерий Pseudomonas и их изменения при ультрафиолетовом облучении культур.

3. Проверить возможное влияние магнитных полей на бактерии и изучить структурные особенности клеток бактерий при изменении магнитной обстановки в присутствии ионов железа в среде.

4. Изучить возможность образования наноформ бактерий у грамотрицательных и грамположительных бактерий при неблагоприятных воздействиях, создаваемых постоянным электрическим током, радиоволновым облучением, видимым светом, и провести цитологическое сопоставление образующихся наноформ с обнаруживаемыми в естественных местообитаниях.

5. Выявить закономерности в структурных изменениях бактериальных клеток, возникающих под воздействием различных физических стрессовых факторов.

Научная новизна.

При отборе путем скрининга культур грамотрицательных бактерий, переживающих условия стерилизации облучением в ультрафиолетовом диапазоне (УФ, «жесткий ультрафиолет»: Ая^Ю" 8 м), впервые выделены штаммы Pseudomonas, образующие ранее неизвестные коммунальные экстрацеллюлярные структуры. Коммунальные структуры у одноклеточных бактерий Pseudomonas представляют новый цитологический феномен. Показана защитная роль этих специализированных структур бактерий, обеспечивающих рост и размножение в условиях постоянного облучения УФ.

Впервые показано, что «магнитный вакуум» (компенсированное геомагнитное поле) в присутствии в среде соединений ферримагнитного железа приводит к формированию дополнительной микрокристаллической экстраклеточной структуры у Pseudomonas fluorescens ВКМ В-2170, в то время как в обычных геомагнитных условиях таковой нет, но формируются магниточувствительные включения.

Обобщены экспериментальные данные по структурным ответным реакциям клеток бактерий при стрессовых воздействия электрическим током, радиоволновым излучением, видимым светом. Показано, что во всех случаях грамотрицательные и грамположительные бактерии способны формировать жизнеспособные наноформы, однако, у грамотрицательных образование наноформ происходит путем множественного деления или нанопочкования и сопровождается образованием множественных везикул внешних мембран.

Практическая значимость работы.

Отработаны методики экспериментов с применением различных физических агентов и их мощностей, позволяющие изучать структурные изменения бактериальных клеток. Получены новые сведения о ранее неизвестных коммунальных экстрацеллюлярных структурах формирующих многоклеточные радиоустойчивые ассоциаты бактерий, которые должны учитываться при обеззараживаниях с применением УФ-стерилизации.

Апробация работы.

Результаты, полученные при выполнении данной работы, были представлены на международном конгрессе FEMS, 2003, на международной конференции молодых ученых «Биология — наука XXI века» Пущино 2004, междисциплинарном семинаре «Биологические эффекты солнечной активности» Пущино 2004, на семинарах и постерных сессиях Института биохимии и физиологии микроорганизмов РАН в 2003;2007 гг., на семинаре (Workshop) МНТЦ в Южной Корее, Чонгбук, 2004 г., а также на семинарах в Центре исследований окружающей среды UFZ, Лейпциг, 2007 г.

1. Обзор литературы.

Представляемая в обзоре литературы информация об организации и структуре бактерий в условиях воздействия различных факторов подобрана с учетом наиболее известного общего проявления реакции бактерий на стресс — измельчание клеток и формирование клеткоподобных наноформ различных морфотипов. В этом отношении наиболее показательны физические агенты, так как возможность их одномоментного включения или выключения допускает кратковременное (стрессовое) приложение фактора — в отличие, например, от химических воздействий, для прекращения которых может потребоваться отделение биомассы от среды.

Выводы.

1. Показано, что неблагоприятные кратковременные (стрессовые) воздействия исследованных физических факторов (магнитные/геомагнитные поля, электрический ток, радиоволновое и световые излучения) вызывают ответные структурные реакции бактериальных клеток.

2. Впервые у представителей бактерий рода Pseudomonas обнаружены специфические структуры сложного строения: коммунальные оболочки, окружающие группы клеток. Показана способность коммунальных оболочек к делению, в том числевместе с размножением заключенных в них клеток. Охарактеризованы ультраструктурная организация и состав экстраклеточных структур в цикле развития. Установлено участие везикул внешних мембран в процессе формирования стенок экстрацеллюлярных оболочек, представленных системой многослойных дифференцированных покровов и наличие вмещающего клеток матрикса. В отношении стрессовых воздействий на бактерии показано, что описываемые экстрацеллюлярные оболочки выполняют защитную функцию, содействуя устойчивости бактерий к высыханию, агрессивному химическому воздействию окружающей среды, а также к ультрафиолетовому излучению.

3. Впервые показано, что изменения геомагнитной обстановки («магнитный вакуум» или компенсированное геомагнитное поле) в присутствии в среде соединений ферримагнитного железа приводят к формированию у Pseudomonas fluorescens ВКМ В-2170 новой экстраклеточной структуры с микрокристаллической организацией. Сопоставление удельных скоростей гетеротрофной ассимиляции карбонатного углерода при росте бактерий в геомагнитном поле и магнитном вакууме позволяет предположить, что образуемая экстраклеточная микрокристаллическая оболочка играет компенсаторную роль, обеспечивая более высокую биохимическую активность при иной организации клетки.

4. Экспериментально показана возможность получения жизнеспособных бактериальных наноформ у разных групп бактерий под воздействием электрического тока, прямого света и радиоволнового излучения с последующим их восстановлением до обычных размеров в благоприятных условиях. Формирование различных морфотипов наноформ является общей ответной реакцией для всех изучаемых тест-объектов. Цитологическое сопоставление экспериментально получаемых наноформ с выявленными природными нанобактериями и ультрамикробактериями из различных местообитаний (см. Приложение) подтверждает возможность переживания неблагоприятных условий наноформами в жизнеспособном состоянии.

5. Обобщение результатов проведенных исследований по влиянию различных физических стрессовых факторов на организацию бактериальных клеток позволяет предположить, что способность к модификации структуры клеток представляет собой общее свойство бактерий, а пути ее реализации могут быть различны в зависимости от действующего агента, мощности и времени его воздействия, а также принадлежности бактерии-объекта к конкретной таксономической группе.

Заключение

.

Бактерии всех таксономических и физиологических групп чувствительны к неблагоприятным воздействиям внешних факторов. Несмотря на то, что ответные реакции клеточной организации не являются первичными, они обнаружены даже при краткосрочных неблагоприятных (стрессовых) воздействиях ряда физических агентов.

В ходе исследования возможных структурных перестроек бактериальных клеток выявлены ранее неизвестные для псевдомонад естественные коммунальные экстрацеллюлярные структуры, а также экспериментально стимулируемые изменения в организации клеток различных бактерий, функционально связанные с неблагоприятным действием внешних факторов.

Природные коммунальные экстрацеллюлярные комплексы обеспечивают защиту клеток от воздействия жесткого ультрафиолетового излучения за счет коммунальных оболочек (образуемых при участии везикул внешних мембран). При долговременном воздействии УФ-облучения отмечены модификации как самих оболочек, так и заключенного в них экстраклеточного матрикса.

К числу основных изменений, связанных с воздействиями электрического тока, светового и радиоволнового излучений относятся: деформация (округление палочковидных форм, уменьшение размеров) бактериальных клетокобразование внутриклеточных и внеклеточных наноформ (везикул наружной и цитоплазматической мембраны, нанопочек, изолированных наноклеток, в том числе и жизнеспособных) — лизис части исходной популяции бактериальных клеток. Показано, что независимо от выбора действующего агента образование наноформ у представителей разных групп бактерий шло по единому пути структурных трансформаций: перераспределению цитоплазмы с ее уплотнением в отдельных участках и подразделением клетки на отдельные субъединицы и последующим множественным неравномерным делением. При этом образование наноформ у грамотрицательных бактерий сопровождалось также множественным образованием везикул внешней мембраны. Жизнеспособность образуемых бактериями наноформ подтверждена их дальнейшими пересевами и микроскопией в динамике роста, подтверждающей восстановление прежних размеров клеток. Цитологические исследования наноформ из естественных местообитаний показали, что наноформы бактерий или ультрамикробактерии распространены в природе и способны к активным жизненным процессам. Таким образом, образование наноформ бактериальных клеток при стрессовых воздействиях можно рассматривать как ответную реакцию и переход к существованию бактерий в виде иного типа клеточных форм.

Проведенные в ходе выполнения диссертационной работы исследования привели к получению новых сведений о цитологии изученных видов бактерий, а также позволили обобщить данные о структурных преобразованиях бактериальных клеток при стрессовых воздействиях.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В. С. 1973. Кондуктометрическне методы и приборы в биологии и медицине. М.: Медицина. 335с.
  2. В. С. 1974. Проблемы создания аппаратуры для медицинских лабораторных исследований. JL, Ч. 4. С. 5−17.
  3. В. С., Акатова Н. С., Гранстем К. О., Марченко JI. А. 1973а. Ферменты в лабораторной диагностике. М.: Медицина, Т. 3. С. 111−113.
  4. В. С., Акатова С., Марченко JI. А., Баштанов А. В. 1972. Биологическая и медицинская электроника. Свердловск: Изд-во Свердл. ун-та. Ч. 3. С. 53−55.
  5. В. С., Баштанов А. В., Горшенина Е. С. 1973b. Лаб. дело. № 7. С. 392−396.
  6. В. С., Баштанов А. В., Гранстрем К. О., Марченко Л. А. 1974а. Электрон, обраб. материалов. № 4. С. 73−75.
  7. Ю. Н., Петкин К. Д., Брызгунова Н. И., Сарочан Т. Н. 1977. Тез. Докл XVI Всесоюз. Съезда микробиологов и эпидемиологов. Ульяновск, ч. 1, с. 179−180.
  8. Биологический энциклопедический словарь. 1986. Ред. М. С. Гиляров. М, Советская энциклопедия, 831 с.
  9. М. Б., Кудряшова Е. Б. 2000.0 нанобактериях. Микробиология.
  10. М.Б., Гоготова Г. И. 1982. Влияние давления на интенсивность сульфатредукции иловой микрофлоры. Тез. докл. Всес. конф. «Анаэробные микроорганизмы», с.48−50. Пущино, НЦБИ.
  11. М.Б., Гоготова Г. И. 1987. Влияние окислительно-восстановительного потенциала среды на интенсивность образования сероводорода сульфатредуцирующими бактериями. Микробиология. Т.56 (1), с.31−35
  12. Вопросы гематологии, радиобиологии и биологического действия магнитных полей, 1965. Томск
  13. Г. 1974. Электронная гистохимия. М. Мир. с. 488.
  14. . В. 1985. Строение бактерий. Л. ЛГУ. 190 с.
  15. М. В. Минеева Л. А. 1992. Микробиология. М.
  16. В.В., Сузина Н. Е., Баринова Е.С, Дуда В. И., Воронин A.M. 2004. Электронно-микроскопическое изучение ультраструктуры микробных клеток in situ вэкстремальных биотопах. Микробиология. Т. 73. № 6. с. 832−840
  17. JI. А., Каулен А. Д., Скулачев В. П. 2004.Молекуляр. Биология. Вып. И, с. 1377−1382.
  18. . М., Дубянский М. А., Шатаев М. А. 1978. Проблемы особо опасных инфекций. Саратов, Вып. 1, с. 59−64.
  19. А. Б., Дорожкина JI. И., Сачева Т. С., Гольцева И. Н., Остапенко JI. Б. 1965. О некоторых проявлениях биологического действия постоянного магнитного поля. Материалы XV научной конференции физиологии, биохимиков и фармакологов Юга РСФСР.
  20. А. Б., Тихонова Н. А. 1965. Действие постоянного магнитного поля на движения парамеций. Биофизика, 10, вып. 2, с.292
  21. А. Е., Мицкевич И. Н. 1967. Влияние питательной среды на толерантность баротолерантных бактерий к высоким давлениям. Микробиология, т. 36, с. 247−250
  22. А.Е. 1976. Микробиологическая океанография. М.: Наука.
  23. JI. А., Дейнега Ю. Ф., Савлук О. С. и др.//Коллоид, журн., 1980. Вып. 4. С. 755−761.
  24. Р., Мацумура П. 1981. Жизнь микроорганизмов в условиях повышенного давления. В кн.: Жизнь микробов в экстремальных условиях. М.: Мир, с. 124−185
  25. Ф. Ю., Алипов Е. Д., Беляев И. Я. 1996. Модель фазовой модуляции высокочастотных колебаний нуклеотида в реакции клеток E. coli на слабые постоянные и низкочастотные магнитные поляю Биофизика, 41(3), с. 642−649.
  26. Мишустина И.Е. Bull. Ecol. Res. Comm. (Stockholm) 1973.17. с. 143−149.
  27. С. A. 1971. Влияние магнитных полей на микроорганизмы. В кн.: Влияние магнитных полей на биологические объекты. С. 59−85.
  28. М. А. 1955. Цитология бактерий. М-Л. Изд. Ан СССР. 220 с.
  29. М. А. 1966. Сравнительная цитология синезеленых водорослей, бактерий и актиномицетов. М. Изд. «Наука». 246 с.
  30. А. 1972. Молекулярная цитология мембранных систем животной клетки. М.: Мир, 63 с.
  31. С. В., Кац JI. Н., Каган Г. Я. 1981. L-формы бактерий. Механизм образования. Структура, роль в патологии. М. Изд. «Медицина». 237 с.
  32. И. JI. 1975. Успехи микробиологии. Вып. 10. С. 120−126
  33. В.И., Кузнецов С. И. 1981. Экология микроорганизмов пресных водоемов: Лабораторное руководство. JL, Наука.
  34. Руководство к практическим занятиям по микробиологии. Под ред. Егорова Н. С. 1995.
  35. Совещание по изучению влияния магнитных полей на биологические объекты.-Тезисы докладов. 1966
  36. В. Д., Каган Г. Я. 1973. L-формы бактерий и семейство Mycoplasmataceae в патологии. М. Медицина. 392 с.
  37. Н. Г. 1978. Электрон обраб. Материалов. № 4, с. 78−79.
  38. С. К., Пикуленко А. Я., Возари Э. 1984. Изв. АН СССР. Серия биол. № 2, с. 294−298.
  39. А. И., Душкин С. С. 1965. Бактерицидное действие внешнего магнитного поля. Гигиена и санитарии, № 9, с. 106
  40. В.А., Вайнштейн М. Б. 2000. Образование метана сульфатвосстанавливающей бактерией Desulfosarcina variabilis. Микробиология. Т.69(3), с.341−344
  41. JI. А., Мельникова О. Н., Постоев А. К. 1978. Электронная обработка материалов. № 1, с. 67−68.
  42. . М., Детлаф А. А. 1979. Справочник по физике. М.
  43. М., Soike К. 1966. Sterilization by electrohydraulic treatment. Science, v. 154, pp. 155−157.
  44. Anderson J. I. W., Heffernan W. P. 1965. Isolation and characterization of filterable marine bacteria. J. Bacteriol., v. 90, pp. 1713 1718.
  45. Bae H. C., Cota-Robles E. H., Casida L. E., Jr. 1972. Microflora of soil as viewed by transmission electron mnicroscopy. Appl. Microbiol., v. 23. P. 637 648.
  46. Z. С. E., Morita R. Y. 1957. Barophilic bacteria in the deep sea sediments. J. Bacteriol., v. 73, pp. 563−568.
  47. Belyaev I. Ya., Alipov Ye. D., Harms-Ringdahl M. 1997. Effects of zero magnetic field on the conformation of chromatin in human cells. Biochim. Biophys. Acta, v. 1336, pp. 465 473.
  48. Benning L. G., Phoenix V. R., Yee N., Konhauser К. O. 2004. The dynamics ofcyanobacterial silicification: An infrared micro-spectroscopic investigation. Geochimica et Cosmochimica Acta, Vol. 68, No. 4, pp. 743−757.
  49. U., Ochman H. 1998. Distribution of chromosome length variation in natural isolates of Escherichia coli. Molecular Biology and Evolution, v .15, pp.6−16.
  50. Borisevich G. P., Lukashev E. P., Kononenko A. A, Rubin A. B. 1979. Biochim. et biophys. Acta, v. 546, pp. 171−175.
  51. M.M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem., v. 72(1), pp.248.
  52. A. P. 1922. Modification of the Bell-Doisy phocphate method. J. Biol. Chemistry, v 53(1), pp 13−16
  53. G., Morrison W. 1956. Trans. Ire Med. Electronics. PGME, v. 4, pp. 16−20.
  54. C. H., Jacobson A. P., Whipple G. H. 1965. The reversible depression of bacterial luminescence during exposure to X-radiation. Radiat. Res., v. 24(3), pp. 494−502.
  55. D. K., Robertson B. R., Juttner F. 1996. Microflora of a subalpine lake: Bacterial populations, size and DNA distributions, and their dependence on phosphate. FEMS Microbiol.Ecol., v. 21. P. 87 101.
  56. Cavichioly R., Ostrowski M. Ultramicrobacteria. 2003. Encyclopedia of Life Sciences. MacMillan Publishers Ltd, Nature Publishing Group. P. 1−3. www. els. net
  57. Chen P. S., Toribara Jr. T. Y., Warner H. 1956. Microdetermination of Phosphorus. Analytical Chemistry, v. 28(11), pp. 1756−1758.
  58. P. S., Totibara T. Y., Warner H. 1956. Microdetermination of phosphorus. Analitical chemistry, v. 28 (11), pp. 1756−1758.
  59. Clegg C. D., van Elsas J. D., Anderson J. M., Lappin Scott H. M. 1996. Survival of parental and genetically modified derivatives of a soil isolated Pseudomonas fluorescens under nutrient-limiting conditions. J. Appl. Bacteriol., v. 81, pp. 19 26.
  60. Crisogono V., McKenzie J. A. 1997. Microbial mediation of modern dolomite precipitation and diagenesis under anoxic conditions (Lagoa Vermelha, Rio de Janereiro, Brazil) Sediment. Res., v. 67, pp. 378 390.
  61. Cyrus H. Fishke, Yellapragada Subbarow. 1925. The colorimetric determination of phosphorus. Jornal of biological chemistry, v. LXVI (2), pp. 376−400
  62. B.E., Kordias N., Dobos M., Hillier A.J. 1996. Genomic organization of lactic acid bacteria. Antonie van Leeuwenhoek Intern. J, General. Molecular. Microbiology, v.70, pp. 161−183.
  63. R., Willis S.G., Hines M.E. 1997. Genome sizes of Desulfovibrio desulfuricans,
  64. Desulfovibrio vulgaris, and Desulfobulbus propionicus estimated by pulsed-field gel electrophoresis of linearized chromosomal DNA. Current Microbiol., v.34, pp.337−339.
  65. Dhawan M. D, Wise F, Baeumner A.J. 2002. Development of a laser-induced cell lysis system. Anal Bioanal Chem., v. 374(3), pp. 421−426.
  66. L. 1967. Morphology and reproductive processes of bacteria with defective cell wall Microbial Protoplasts, Spheroplasts and L-Forms. (Ed. L.B.Guze). Baltimore. Williams & Wilkins, pp.74−93.
  67. L., Weinberger H. 1951. The L-forms of bacteria. Bacteriol. Rev., v. 15, pp. 245 -288.
  68. C.J. 1996. Flexible response: DNA supercoiling, transcription and bacterial adaptation to environmental stress. Trends in Microbiology, v. 4, pp.214−216
  69. R. 1886. Influence du magnetisme sur l’orientation des colonies microbiennes. C. r. Soc. Boil., 8,3,127
  70. V.I., Lebedinshy A.V., Mushegjan M.S., Mitjushina L.L. 1987. A new anaerobic bacterium, forming up to five endospores per cell. Anaerobacter polyendosporus gen. et spec. nov. Arch. Microbiol., v. 148, pp. 121−127.
  71. K., Voelker L.L. 1996. Molecular biology of Mycoplasmas. Annual Rev. Microbiol., v. 50, pp. 25−57.
  72. H., Sato M., Naganuma T. 2001. Viable Cytophaga-lake bacterium in the 0.2(j.m-filtrate seawater. System. Appl. Microbiol. V. 24. V. 618−622
  73. Faegri A., Torsvik V.L., and Goksoyr J. 1977. Bacterial and fungial activites in soil: Separation of bacteria and fungi by a rapid fractionated centrifugation technique. Soil Biol. Biochem. V. 9. P. 105−112
  74. Feuerstein O, Persman N, Weiss E.I. 2004. Phototoxic effect of visible light on Porphyromonas gingivalis and Fusobacterium nucleatum: an in vitro study. Photochem Photobiol, v. 80(3), pp.412−415.
  75. C. H., Subbarow Y. 1925. The colorimetric determination of phosphorus. J. Biol. Chemistry, v 66(2), pp. 375−400.
  76. R. L. 1992. Bacteria and nannobacteria revealed in hardgrounds, calcite cements, native sulfur, sulfide minerals, and travertines. Proc. Geol. Soc. Amer. Ann. Meeting, p. 104.
  77. R. L. 1993. SEM imaging of bacteria and nannobacteria in carbonate sediments and rocks. J. Sediment. Petrol., v. 63, pp. 990 999.
  78. R. L. 1994. Interaction between bacteria, nannobacteria and mineral precepitation in hot springs of Central Italy. Geogr. Phys. Quat., v. 48, pp. 233 246.
  79. R. L. 1997. Nannobacteria: surely not figments, but what under heaven are they?
  80. Natural Science, v. 1. Art. 3 (http://naturalscience.com).
  81. R. L. 1998. Nannobacteria in the natural environment and in medicine. Alpe Adria Microbiol. J., v. 7, pp. 87 95.
  82. R. L., Lynch F. L. 1997a. Nannobacteria are alive on Earth as well as Mars. SPIE Proceedings, v. 3111, pp. 406 419.
  83. R. L., Lynch F. L. 1997b. The possible role of nannobacteria (dwarf bacteria) in clay mineral diagenesis and the importance of careful sample preparation. J. Sed. Res., v. 67, pp. 597−603.
  84. Folk R. L., Noble P. J., Gelato G., McLean R. J. C. 1995. Precipitation of opal-CT lepispheres, chalcedony, and chert nodules by nannobacteria (dwarf bacteria). Proc. Geol. Soc. Amer. Ann. Meeting, Abs. A 305.
  85. Garcia-Pichel, F., and Castenholz, R.W. 1991. Characterization and biological implications of scytonemin, a cyanobacterial sheath pigment: Journal of Phycology, v. 27, pp. 395−409. pp. 2021−2026.
  86. V. F., Barnothy M. F., Barnothy J. M. 1962. Inhibition of bacterial growth by magnetic field. Nature, v. 196 (4854), p.539
  87. S., Speck M. 1967. Inactivation of Microorganisms by Electrohydraulic Shock. Appl. Microbiol., v. 15(5), pp. 1031−1037.
  88. Ginard M., Lalucat J., Tummler B" Romling U. 1997. Genome organization of Pseudomonas stutzeri and resulting taxonomic and evolutionary considerations. Intern. J. Syst. Bacteriol., v.47, pp. 132−143.
  89. Giovannoni S.T., Roppe M.S., Vergin K.L., and Adiar N. L 1996. 16rRNA genes reveal stratified open ocean bacteriaplankton population to the Green Non-sulfur Bacteria. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 93. P. 7979−7984
  90. Grassi R. F, Pappalardo S, Frateiacci A, Scortechini A, De Benedittis M, Petruzzi M, Frasca M. 2004. Antibacterial effect of Nd: YAG laser in periodontal pockets decontamination: a in vivo study. Minerva Stomatol., v. 53(6), pp.355−359
  91. Hahn M.W., Lunsdorf H., Wu Q., Schaker M., Hofle M.G., Boenigk J., Stadler P. 2003. Isolation of novel ultramicrobacteria classified as Actinobactera.Appl. Environ. Microbiol., v. 69(3), pp. 1442−1451.
  92. M. H., Konikoff J. J. 1964. Effect of magnetic fields on the growth of algae. Aerospace Med., v.35(3), p.269
  93. W. A., Sale A. J. 1967. Effects of high electric fields on micro-organisms. Biochim Biophis. Acta., v. 148, pp 789−800.
  94. J. D. 1971. Faunal extinctions and reversals of the Earth’s magnetic field. Geol. Soc.
  95. Am. Bull., v. 82, pp. 2433−2447.
  96. Hedrick. 1964. Biological effects of magnetic fields. N. Y., Plenum Press
  97. B. 1978. Proc. Solvay Conf. Adv. Chem. Phys., v. 39, pp. 224−228.
  98. Hofmann 0, Murray K, Wilkinson A. S, Cox T, Manz A. 2005. Laser induced disruption of bacterial spores on a microchip. Lab Chip. V. 5(4), pp.374−377
  99. M., Iwahara M. 1979. Agr. And Biol. Chem., v., pp. 2075−2081.
  100. Hood M. A., MacDonnel M. T. 1987. Distribution of ultramicrobacteria in a Gulf Coast estuary and induction of ultramicrobacteria. Microb. Ecol., v. 14, pp. 113−127.
  101. M. W. 1937. The growth of bacteria, yeasts and molds in a strong magnetic field. J. Bacterid., v.33(l), p.3
  102. B., Renaut R.W. 1997. Formation of silica oncoids around geysers and hot springs at El Tatio, northern Chile. Sedimentology, v. 44, pp. 287 304.
  103. M. C. 1929. A developmental cycle of the tubercle bacillus as revealed by single-cell studies. Am. Rev. Tuberc., v. 20, pp. 150 200.
  104. M. C. 1930. A growth cycle of the human tubercle bacillus as determined by single-cell studies. Tubercle., v. 11, pp. 202 217.
  105. Kajander E.O. and Ciftcioglu N. 1998. Nanobacteria: An alternative mechanism for pathogenic intra- and extracellular calcification and stone formation. Proc. Natl. Acad. Sei. USA. V. 95. P. 8274−8279
  106. Klienenberger Nobel E. 1949. Origin, development and significance of L-forms in bacterial cultures. J. gen. Microbiol., v. 3, pp. 434 — 443.
  107. E. 1935. The natural occurrence of pleuropneumonia-like organisms, its apparent symbiosis with Streptobacillus moniliformis and other bacteria. J. Pathol.
  108. Bacterid., v. 40, pp. 93−105.
  109. Klienenberger-Nobel E. 1949. Origin, development and significance of L-forms in bacterial cultures. J. gen. Microbiol., v.3, pp.434−443.
  110. Klienenberger-Nobel E. 1951. Filterable forms of bacteria. Bacteriol. Rev. V.15, pp.73−103.
  111. Knepton J. C. and Beisher D. E. 1964. Effects of veryhigh magnetic fields on living organisms. Aerospace Med., v. 35(3), p. 272.
  112. Konhauser K. O., Jones B., Reysenbach A-L., Renaut R. W. 2003. Hot spring sinters: keys to understanding Earth’s earliest life forms. Can. J. Earth Sci., v. 40, pp. 1713−1724.
  113. K. 0." Phoenix V. R., Bottrell S. H., Adams D. G., Head I. M. 2001. Microbial-silica interactions in Icelandic hot spring sinter: possible analogues for some Precambrian siliceous stromatolites. Sedimentology, V. 48, pp. 415−433.
  114. M. 1940. Biologische Wirkungen magnetischer Felder. Strahlentherapie, v.67(2), p. 219
  115. F. P. 1929. Electric and magnetic effects on bacteria. Cbl. Bacteriol., v. l 11, p.321
  116. A. 1978. The molecular mechanism of excitation in visual transduction and bacteriorhodopsin. Proc. Natl. Acad. Sci. US., v. 75(2), pp. 549−557.
  117. J. H. 1966. Ruthenium red staining of the striated muscle cell membrane and the myotendinal junction. VI Internat. Congr. EM, Kyoto, pp. 65 — 66.
  118. E. P., Vozary E., Kononenko A. A., Rubin A. B. 1980. Electric field promotion of the bacteriorhodopsin BR570 to BR412 photoconversion in films of Halobacterium halobium purple membranes. Biochim. et biophys. Acta, v. 592(2), pp. 258−266.
  119. B. 1935 Culture de moisissures dans un champ magnetique. C. r. Soc. Biol., v. l 19, p.470
  120. MacDonneel M. T., Hood M. A. 1982. Isolation and haracterization of ultramicrobacteria from a Gulf Coast estuary. Appl. Environ. Microbiol., v. 43, pp. 566−571.
  121. Macherey -Nagel. Plasmid DNA purification. User manual. Macherey -Nagel Germany 2006.
  122. M., Taga N. 1983. Comparisons of cell size and bacteria from four marine localities. La Mer V. 21, pp. 207−210.
  123. J., Manigault P. 1946. Action du champ magnetique sur le development des tumeurs expeimentales chez Pelagonium zonale. C. r. Acad. Sci., v.223 (1), p.8
  124. J. A., Constantinidis I., Dillehay D., Fajman W. A. 1994. Search for influence of 1.5 Tesla magnetic field on growth of east cells. Bioelectromagnetics, v. 15, pp. 495−501.
  125. Margulis, L., Walker, J.G.C., and Rambler, M., 1976. Reassessment of roles of oxygen and ultraviolet light in Precambrian evolution: Nature, v. 264, pp. 620−624.
  126. J. A. 1961. A procedure for the isolation of deoxyribonucleic acid from microorganisms. J. Mol. Biol. V. 3, pp. 345 -350.
  127. R., Stryer L. 1976. Retinal has a highly dipolar vertically excited singlet state: implications for vision. Proc. Nat. Acad. Sci. US, v. 73(3), pp. 2169−2173.
  128. D., Grenier D. 1989. Biological activities of outer membrane vesicles. Can. J. Microbiol. V. 5, pp. 607−613.
  129. McKay D.S., Gibson E.K., Thomas-Keptra K.L., Vali H., Romanek C.S., Clemett S.T., Chillier X.D.F., Maechling C.R., and Zare R.N. 1996. Search for past life on Mars: Possible relic activity in Martian meteorite ALH 84 001. Science. V. 273. P. 924−930
  130. S.I., Bader M., Guina T. 2003. Bacterial vesicle formation as a mechanism of protein transfer to animals. Cell. V. 115, pp. 2−3.
  131. T., Iwatsuki T., Naganuma T. 2005. Phylogenetic characterization of 16 rRNA gene clones from deep-groundwater microorganisms that pass through 0,2 micrometer -pore — size filters. Appl. Environ. Microbiol. V. 71. P. 1084−1088.
  132. R. Y. 1988. Bioavailability of energy and starvation survival in nature. Can. J. Microbiol., v. 34, pp. 436 441.
  133. C. L., Morita R. Y. 1989. Effect of growth rate and starvation-survival on the viability and stability of a psychrophilic marine bacterium. Appl. Environ. Microbiol., v. 55, pp. 1122−1127.
  134. A. R., Koonin E. V. 1996. A minimal gene set for cellular life derived by comparison of complete bacterial genomes. Proc. Nat. Acad. Sci. USA., v. 93, pp. 10 268 -10 273
  135. K. 1978. Photoelectric activity of dried, oriented layers of purple membrane from Halobacterium halobium. Biochim. and Biophys. Res. Commun, v. 85(1), pp. 383−390.
  136. J. A., Morita R. Y. 1976. Morphological characterization of small cells resulting from nutrient starvation in a psychrophilic marine vibrio. Appl. Environ. Microbiol., v. 32, pp. 635−641.
  137. J. A., Morita R. Y. 1977. Survival of a psychrophilic marine vibrio under long-term nutrient starvation. Appl. Environ. Microbiol., v. 33, pp. 635 641.
  138. , J.M. 1981. Evolution of photosynthetic reaction centres. Biosystems, v. 14, pp. 8994.
  139. N. D., Glass B., Hays J. D., Foster J. 1966. Paleomagnetic study of Antarctic deep-sea cores. Science, v. 154(3747), pp. 349.
  140. C. H. 1952. The membrane filter in marine microbiology. J. Bacterid., v. 64, pp. 783−786.
  141. F. J. 1994. High-resolution analysis of nuclear DNA employing the fluorochrome DAPI. Methods in cell Biology. V. 41, pp. 211−217.
  142. , N.S. 2005. Contribution of nanosized bacteria to the total biomass and ctivity of a soil microbial community. Adv. Appl. Microbiol. V. 57. P. 245−296
  143. Paulino T. P., Magalhaes P. P., Jr G. C., Tedesco A. C" Ciancaglini P. 2005. Use of visible light-based photodynamic therapy to bacterial photoinactivation. Biochemistry and Molecular Biology Education., v. 33, pp. 46−49
  144. V. A., Folk R. L. 1996. Formation of aragonite cement by nannobacteria in the Great Salt Lake. Utah. Geology, v. 24, pp. 763 765.
  145. Phillips J. L., McChensney L. 1991. Effect of 72 Hz pulsed magnetic field exposure on macromolecular synthesis in CCRF-CEM cells. Cancer Biophys., v. 12, pp. 1−7.
  146. V. R., Adams D. G., Konhauser K. O. 2000. Cyanobacterial viability during hydrothermal biomineralisation. Chemical Geology, v. 169, pp. 329−338.
  147. V. R., Konhauser K. O., Adams D. G., Bottrell S.H. 2001. Role of biomineralization as an ultraviolet shield: Implications for Archean life. Geology- September, v. 29- no. 9- pp. 823−826
  148. Pierson, B.K., Mitchell, H.K., and Ruff-Roberts, A.L. 1993. Chloroflexus aurantiacus and ultraviolet radiation: Implications for Archean shallow-water stromatolites. Origins of Life and Evolution of the Biosphere, v. 23, pp. 243−260.
  149. R., Loferer M. 1997. Nannobacteria: size limits and evidence. Science, v. 276 (5320), pp. 1776−1777.
  150. M.B., Margulis L. 1980. Bacterial resistance to ultraviolet irradiation under anaerobiosis: Implications for pre-Phanerozoic evolution: Science, v. 210, pp. 638−640.
  151. M.S., Connon S.A., Vergin K.L., Giovannoni S.J. 2002. Cultivation of the ubiquitous SARI 1 marine bacterioplankton clade. Nature, v. 418, pp. 630−633.
  152. E. S. 1963. The use of lead citrate at high pH as an electronopaque strain in electron microscopy. J. Cell Biol., v. 17, pp. 208 212.
  153. D. D., Miller F., Barrnet R. J. 1964. Aldehyde fixation for morphological end enzyme histochemical studies with the electro microscope. J. Histochem. Cytochem., v. 12, pp. 57−71.
  154. A. J., Hamilton W. A. 1967. Effects of high electric fields on microorganisms: I. Killing of bacteria and yeasts. Biochim et biophys. Acta, v. 148, pp. 781−788.
  155. A. J., Hamilton W. A. 1967. Effects of high electric fields on microorganisms: II. Mechanism of action of the lethal effect. Biochim et biophys. Acta, v. 148, pp. 789−800.
  156. F., Gottschal J. C., Prins R. A. 1997. Isolation and characterisation of the marine ultramicrobacterium Sphingomonas sp. strain RB2256. FEMS Microbiol. Rev., v. 20, pp. 363−369.
  157. Shevchenko A, Wilm M, Vorm O, Jensen ON, Podtelejnikov AV, Neubauer G, Shevchenko A, Mortensen P, Mann M. 1996. A strategy for identifying gel-separated proteins in sequence databases by MS alone. Biochem. Soc. Trans.V. 24(3), pp. 893−896.
  158. K., Shimahara K. J. 1977. Effect of alternating current on growth lag in Escherichia coli B. Gen and Appl. Microbiol., v. 3, pp. 127−136.
  159. N. J. 1992. Biological effects of static magnetic fields: A review. International Cryogenic Materials Commission, P. O. Box 3345, Boulder, CO 80 303, USA.
  160. Size Limits of Very Small Microorganisms. 1999. Proceedings of a Workshop. National Academy Press USA. Washington, D. C.
  161. A.P., Hassinen H.I., Kajander E.O. 2002. Light-induced replication of nanobacteria: a preliminary report. J Clin Laser Med Surg., v. 20(5), pp. 241−244.
  162. E. 2006. The Family Dermatophilaceae. Prokaryotes ed. by. M. Dworkin et al. V.4. pp. 623−653.
  163. E., Schumann P. 2006. Introduction to the Taxonomy of Actinobacteria. Prokaryotes ed. by. M. Dworkin et al. V.4. pp. 623−653.
  164. Stersky A., Heldman D" Hedrick T. J. 1970. Milk and Food. Technol., v. 33(12), pp. 545 553.
  165. Streatmlined Method to Analyze 16S rRNA Gene Clone Libraries. BioTechniiques Euro Edition, pp. 20−24.
  166. B. L., Johnson F. H. 1954. The temperature-pressure inhibitor relation of bacterial luminescence in vitro. Proc. Nat. Acad. Sci., USA, v. 40, pp. 606−617.
  167. Tabrah F.L., Guernsey D.L., Chou S.-C., Batkin S. 1978. Effect of alternating magnetic fields (60−100 Gauss, 60 Hz) on Tetrahymena pyriformis. TIT life Sci., V. 8, pp. 73−77.
  168. J. 1982. Proc. 2d Europ. Conf. Bioenerg. Lion, p. 17.
  169. V., Sorheim R., Goksoyr J. 1996. Total bacterial diversity in soil and sediment communities a review. J. Industr. Microbiol., v. 17, pp. 170 — 178.
  170. S. C. 1984. Geomagnetic reversals as a explanation for periods of punctuated speciation on Earth. Genetics, v. 107, pp. 108.
  171. R. J. 1968. Influence of the Earth’s core on the origin and evolution of life. Nature, v. 198, pp. 143−144.
  172. M., Kudryashova E., Suzina N., Ariskina E., Voronkov V. 1998. Formation of bacterial nanocells. Proceedings, v. 3441, pp. 95 104.
  173. Vainshtein M., Suzina N., Kudryashova E., Ariskina E. New magnet-sensitive structures in bacterial and archaeal cells. Biology of the Cell. 2002. V. 94. pp. 29−35.
  174. Valentinuzzi, M., Ferrarest, R. W., and Vasquez, T. 1966, Abstract, Third International. Biomagnetic Symposium, University of Illinois, Chicago, III., pp. 13−15.
  175. Venkateswaran A., McFarlan S.C., Ghosal D., Minton K.W., Vasilenko A., Makarova K., Wackett L.P., Daly M.J. 2000. Physiologic Determinants of Radiation Resistance in Deinococcus radiodurans. Appl Environ Microbiol., v.66(6), pp, 2620−2626
  176. G. 2006. The Genus Actinoplanes and Related Genera. Prokaryotes ed. by. M. Dworkin et al. V.4. pp. 623−653.
  177. M.R. 1983. Archean stromatolites: Evidence of the Earth’s earliest benthos, in Schopf, W.J., ed., Earth’s earliest biosphere: Princeton, New Jersey, Princeton University Press, pp. 187−213.
  178. J.B. 2006. The Cyanobacteria Isolation, Purification and Identification. Prokaryotes ed. by. M. Dworkin et al. V.4. pp. 1053−1073.
  179. Wheeler Aim. E., Oerther D. B., Laxsen N. Stahl D. A., and Raskin L. 1996. The Oligonucleotide Probe Database. Appl. Environ. Microbiol., v. 62, pp. 3557−35 559.
  180. J., Davey M. E., Figueras J. B., Rivkina E., Gilichinsky D., Tiedje J. M. 1997. Phylogenetic diversity of a bacterial community determined from Siberian tundra soil DNA. Microbiology, v. 143, pp. 3913 3919.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!