Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Статус экспрессии генов и модификации хроматина на активной и неактивной X-хромосоме у обыкновенных полевок

Диссертация: Статус экспрессии генов и модификации хроматина на активной и неактивной X-хромосоме у обыкновенных полевок
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Определение статуса метилирования промоторных областей и/или 1 экзонов генов АГарПЗ, БЫ.8, И1х в соматических и экстраэмбриональных тканях обыкновенных полевок позволило выяснить роль метилирования ДНК в процессах случайной и импринтированной инактивации. В соматических тканях наблюдалось четкое соответствие между статусами экспрессии и метилирования гена: транскрипционно активные аллели… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Дозовая компенсация генов Х-хромосомы у млекопитающих
      • 1. 1. 1. Коэволюция половых хромосом и процесса дозовой компенсации у млекопитающих
      • 1. 1. 2. Дозовая компенсация генов Х-хромосомы в онтогенезе млекопитающих
        • 1. 1. 2. 1. Оогенез
        • 1. 1. 2. 2. Сперматогенез
        • 1. 1. 2. 3. Предымплантационное и раннее постимплантационное развитие
        • 1. 1. 2. 4. Соматические ткани взрослых особей
      • 1. 1. 3. Экспрессия генов Х-хромосомы в соматических тканях млекопитающих
        • 1. 1. 3. 1. Полностью сбалансированная экспрессия генов Х-хромосомы
        • 1. 1. 3. 2. Экспрессия генов Х-хромосомы, сбалансированная между полами
        • 1. 1. 3. 3. Несбалансированная экспрессия генов Х-хромосомы
      • 1. 1. 4. Экспрессия генов Х-хромосомы в экстраэмбриональных тканях млекопитающих
      • 1. 1. 5. Механизмы регуляции экспрессии генов Х-хромосомы млекопитающих
    • 1. 2. Модификации хроматина Х-хромосомы млекопитающих
      • 1. 2. 1. Модификации хроматина неактивной Х-хромосомы в ходе эмбриогенеза самок млекопитающих
      • 1. 2. 2. Распределение модификаций хроматина на неактивной Х-хромосоме
      • 1. 2. 3. Модификации хроматина на Х-хромосоме в сперматогенезе самцов млекопитающих
      • 1. 2. 4. Статус метилирования генов Х-хромосомы млекопитающих
    • 1. 3. Х-хромосома группы обыкновенных полевок рода М1сго1ш
  • ЗАКЛЮЧЕНИЕ
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 56 2.1. Объект исследования 56 2.2 Методы работы с клеточными культурами
    • 2. 2. 1. Состав культуральных сред и условия культивирования
    • 2. 2. 2. Получение первичной культуры фибробластов легкого и ее субклонирование
    • 2. 2. 3. Замораживание клеток
    • 2. 2. 4. Размораживание клеток
    • 2. 3. Приготовление препаратов метафазных хромосом
    • 2. 4. Выявление позднореплицирующегося хроматина
    • 2. 5. РНК-ДНК флуоресцентная гибридизация in situ
    • 2. 6. Выделение РНК
    • 2. 7. Синтез кДНК методом обратной транскрипции
    • 2. 8. Полимеразная цепная реакция
    • 2. 9. Электрофорез ДНК в агарозном геле
    • 2. 10. Выделение фрагментов ДНК из гелей
    • 2. 11. Определение нуклеотидной последовательности ДНК
    • 2. 12. SNuPE (single nucleotide primer extension)
    • 2. 13. Выделение геномной ДНК
    • 2. 14. Саузерн блот-гибридизация геномной ДНК
    • 2. 15. Иммунофлуоресцентное окрашивание ядер и метафазных хромосом
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Статус экспрессии генов Х-хромосомы в соматических и экстраэмбриональных тканях обыкновенных полевок
      • 3. 1. 1. Получение и цитогенетическая характеристика линий фибробластов самок гибридов M. rossiaemeridionalis х M. arvalis
      • 3. 1. 2. Поиск межвидовых различий нуклеотидных последовательностей генов X-хромосомы у М. arvalis и М. rossiaemeridionalis
      • 3. 1. 3. Определение статуса экспрессии генов Х-хромосомы в соматических и экстраэмбриональных тканях обыкновенных полевок
        • 3. 1. 3. 1. Статус экспрессии генов Х-хромосомы в соматических тканях
        • 3. 1. 3. 2. Статус экспрессии генов Х-хромосомы в экстраэмбриональных тканях
    • 3. 2. Статус метилирования генов Х-хромосомы в соматических и экстраэмбриональных тканях обыкновенных полевок
    • 3. 3. Модификации хроматина Х-хромосомы обыкновенных полевок при случайной и импринтированной инактивации
      • 3. 3. 1. Модификации хроматина Х-хромосомы в фибробластах обыкновенных полевок
      • 3. 3. 2. Модификации хроматина Х-хромосомы в клетках экстраэмбриональной эндодермы обыкновенных полевок
      • 3. 3. 3. Модификации хроматина Х-хромосомы в трофобластных стволовых клетках обыкновенных полевок

Статус экспрессии генов и модификации хроматина на активной и неактивной X-хромосоме у обыкновенных полевок (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность. Дозовая компенсация генов половых хромосом является одной из наиболее интересных и интенсивно разрабатываемых проблем современной биологии. Необходимость дозовой компенсации возникает у организмов, половые хромосомы которых значительно отличаются по морфологии и генетическому содержанию. У млекопитающих специализация и деградация генов на Y-хромосоме нарушает соотношение уровней экспрессии генов Х-хромосомы и аутосом у самцов, а также соотношение уровней экспрессии генов Х-хромосомы между полами. Несбалансированная экспрессия генов Х-хромосомы у млекопитающих устраняется с помощью сложной системы дозовой компенсации, которая включает удвоение уровня экспрессии генов на Х-хромосоме у самцов и одной из Х-хромосом у самок и подавление транскрипции, инактивацию, генов на второй Х-хромосоме у самок. Однако если убедительные доказательства удвоения уровня экспрессии генов на активной Х-хромосоме были получены сравнительно недавно (Gupta et al., 2006; Nguyen, Disteche, 2006; Johnston et al, 2008), то процесс инактивации изучается уже на протяжении нескольких десятилетий. И хотя в понимании механизмов инактивации Х-хромосомы достигнут значительный прогресс, остается еще целый ряд невыясненных вопросов.

Несмотря на общую сбалансированность уровня экспрессии, гены X-хромосомы самок млекопитающих в различной степени вовлечены в систему дозовой компенсации. Так, ряд генов избегает инактивации и сохраняет экспрессию на неактивной Х-хромосоме. Имеющиеся данные о статусе экспрессии генов X-хромосомы у человека, мыши и некоторых других видов (Jegalian, Page, 1998; Disteche et al., 2002; Carrel, Willard, 2005; Yen et al, 2007) указывают на то, что избегающие инактивации гены характерны для Х-хромосомы многих таксонов плацентарных млекопитающих. Было выдвинуто несколько гипотез, объясняющих различия в статусе экспрессии генов Х-хромосомы, однако причины, по которым те или иные гены избегают инактивации, на сегодняшний день не известны.

Существует две формы процесса инактивации Х-хромосомы: импринтированная и случайная. Импринтированная инактивация Х-хромосомы, унаследованной от отца, наблюдается у некоторых видов плацентарных млекопитающих (например, грызунов) на предымплантационных стадиях развития эмбриона и сохраняется в клетках экстраэмбриональных тканей. В клетках, из которых формируются ткани собственно эмбриона, во время имплантации происходит реактивация отцовской Х-хромосомы и последующий процесс случайной инактивации либо отцовской, либо материнской Х-хромосомы. Оба типа инактивации зависят от экспрессии гена Xist. Установление неактивного состояния сопровождается распространением Xist РНК вдоль инактивируемой Х-хромосомы, утратой модификаций, характерных для транскрипционно активного хроматина, и приобретением модификаций транскрипционно неактивного хроматина (Heard, 2005; Heard, Disteche, 2006; Шевченко и др., 2006; Wulz, Gribnau, 2007; Erwin, Lee, 2008). Было показано, что при случайной инактивации в соматических тканях человека и коровы модификации хроматина на неактивной Х-хромосоме формируют два типа гетерохроматина, которые ассоциированы с различными типами G-бэидов и отличаются по времени репликации в поздней S-фазе (Chadwick, Willard, 2004; Coppola et al., 2008). Тем не менее, остается неясным, свойствена ли такая организация хроматина неактивной Х-хромосомс других видов плацентарных млекопитающих, а также принимают ли эти два типа гетерохроматина участие в поддержании неактивного состояния Х-хромосомы при импринтированной инактивации.

Случайная инактивация Х-хромосомы в отличие от импринтированной стабильно поддерживается в ряду клеточных поколений. Принято считать, что за стабильность случайной инактивации у человека и мыши отвечает метилирование ДНК промоторных областей генов неактивной Х-хромосомы. Роль метилирования ДНК в процессе импринтированной инактивации еще только предстоит выяснить, поскольку в настоящее время существует очень мало данных как о статусе метилирования, так и о статусе экспрессии генов Х-хромосомы в экстраэмбриональных тканях самок млекопитающих.

Решению вопросов о том, с чем связаны различия в статусе экспрессии генов на неактивной Х-хромосоме, и о роли модификаций хроматина в процессах случайной и импринтированной инактивации, будет способствовать детальное изучение процесса инактивации Х-хромосомы у других видов млекопитающих. В лаборатории эпигенетики развития Института цитологии и генетики СО РАН проводится исследование процесса инактивации Х-хромосомы у обыкновенных полевок рода МгсгоШ. Показано, что виды полевок группы 'аюаИз' отличаются разнообразием морфологий Х-хромосомы, а у самок межвидовых гибридов инактивация Х-хромосомы происходит неслучайным образом. Кроме того, установлена локализация и нуклеотидные последовательности целого ряда генов X-хромосомы. Все это делает полевок группы 'агуаШ' очень перспективной моделью для изучения механизмов инактивации Х-хромосомы.

В данной работе на примере обыкновенных полевок впервые проведено сравнение статусов экспрессии и метилирования генов, а также распределения модификаций хроматина на активной и неактивной Х-хромосоме при случайной и импринтированной инактивации.

Цели и задачи работы.

Цель работы — установление статуса экспрессии генов и модификаций хроматина на активной и неактивной Х-хромосоме в соматических и экстраэмбриональных тканях обыкновенных полевок.

Задачи работы:

1. Определение статуса экспрессии генов Х-хромосомы в соматических и экстраэмбриональных тканях обыкновенных полевок;

2. Сравнение статуса метилирования промоторных областей и/или первых экзонов генов Х-хромосомы в соматических и экстраэмбриональных тканях обыкновенных полевок;

3. Выяснение характера распределения модификаций хроматина на активной и неактивной Х-хромосоме в фибробластах, трофобластных стволовых клетках и клетках экстраэмбриональной эндодермы обыкновенных полевок.

Научная новизна. На основе клеточных линий самок межвидовых гибридов М. гозягаетепсИопаИя х М. агуаНз создана модельная система для изучения статуса экспрессии генов Х-хромосомы, и определен статус экспрессии 15 генов в соматических и экстраэмбриональных тканях обыкновенных полевок. Проведено сравнение профиля экспрессии генов Х-хромосомы обыкновенных полевок с данными, имеющимися по человеку и мыши. Впервые установлен статус метилирования промоторных областей и/или первых экзонов 4 генов Х-хромосомы в соматических и экстраэмбриональных тканях обыкновенных полевок. На примере трофобластных стволовых клеток и клеток эксграэмбриональной эндодермы обыкновенных полевок впервые исследован характер распределения модификаций хроматина на метафазных хромосомах при импринтированной инактивации X-хромосомы.

Практическая значимость. Результаты данной работы вносят вклад в понимание эпигенетических механизмов случайной и импринтированной инактивации X-хромосомы, а также механизмов регуляции экспрессии генов Х-хромосомы у самок млекопитающих.

Апробация работы. Результаты работы представлены на второй международной конференции по инактивации Х-хромосомы (Париж, 17−22 сентября 2006 г.), на международной молодежной научно-методической конференции «Проблемы молекулярной и клеточной биологии» (Томск, 9−12 мая 2007 г.), на международной' конференции «Хромосома 2009» (Новосибирск, 31 августа — 6 сентября 2009 г.), семинарах и отчетных сессиях Института цитологии и генетики СО РАН.

По теме диссертации опубликованы три работы. Одна — в рецензируемом отечественном журнале, две — в рецензируемых зарубежных журналах.

Вклад автора. Основные результаты получены автором самостоятельно. Саузерн блот-гибридизация геномной ДНК выполнялась совместно с к.б.н. А. И. Шевченко. Анализ результатов иммунофлуоресцентного окрашивания метафазных хромосом клеточных линий обыкновенных полевок проводился совместно с к.б.н. C.B. Павловой и к.б.н. А. И. Шевченко.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, 3-х глав, заключения, выводов и списка литературы. Работа изложена на 124 страницах, содержит 12 рисунков и 8 таблиц.

108 ВЫВОДЫ.

1. В фибробластах гибридных самок М. rossiaemeridionalis * М. arvalis выявлены все основные типы экспрессии генов Х-хромосомы. 11 генов (Atrx, Chm, Hprt, Midi, NapllS, Pgkl, Rab9, Rbbp7, Slc7a3, Sybil, Ubelx) подвергаются инактивации, ген Xist транскрибируется только с неактивной Х-хромосомы, ген Utx избегает инактивации, гены Sbl.8 и Ddx3x демонстрируют гетерогенную экспрессию;

2. В экстраэмбриональных тканях обыкновенных полевок инактивация X-хромосомы является менее полной и/или стабильной по сравнению с фибробластами. Гены Atrx, Chm, Midi, Ubelx, подвергающиеся инактивации в фибробластах, в плацентах и клетках экстраэмбриональной эндодермы гибридных самок М. rossiaemeridionalis х М. arvalis экспрессируются не только на активной, но и на неактивной Х-хромосоме;

3. В соматических тканях обыкновенных полевок в отличие от трофобластных стволовых клеток и клеток экстраэмбриональной эндодермы наблюдается четкое соответствие между статусом метилирования промоторной области и/или 1 экзона генов Х-хромосомы и их транскрипционной активностью. Данный факт предполагает, что при случайной инактивации метилирование ДНК имеет большее значение для поддержания неактивного состояния генов Х-хромосомы, чем при импринтированной инактивации;

4. При случайной и импринтированной инактивации у обыкновенных полевок поддержание неактивного состояния Х-хромосомы осуществляется с помощью двух неперекрывающихся типов гетерохроматина: первый образован триметилированным НЗК27 и убиквитинированным Н2А, второй триметилированным НЗК9 и гетерохроматиновым белком НР1;

5. В недифференцированных трофобластных стволовых клетках обыкновенных полевок, соответствующих ранним стадиям импринтированной инактивации, триметилированный НЗК9, НР1 и убиквитинированный Н2А равномерно распределены на неактивной Х-хромосоме, а триметилированный НЗК27 отсутствует. Триметилирование НЗК27 на неактивной Х-хромосоме происходит в процессе дифференцировки трофобластных стволовых клеток и сопровождается снижением уровня триметилированного НЗК9 и НР1.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Представленная работа направлена на изучение механизмов инактивации X-хромосомы у самок млекопитающих. В ходе работы впервые установлены статусы экспрессии и метилирования генов, а также распределение модификаций хроматина на активной и неактивной Х-хромосоме в соматических и экстраэмбриональных тканях обыкновенных полевок.

Анализ статуса экспрессии 15 генов Х-хромосомы в субклонах фибробластов гибридных самок М. rossiaemeridionalis * М. arvalis, являющихся примером соматических тканей, выявил практически все известные на сегодняшний день типы экспрессии генов Х-хромосомы. Так, гены Atrx, Chm, Hprt, Midi, Napll3, Pgkl, Rab9, Rbbp7, Slc7a3, Sybll, Ubelx подвергаются инактивации, ген Xist экспрессируется только на неактивной Х-хромосоме, ген Utx избегает инактивации, еще два гена Sbl.8 и Ddx3x демонстрируют гетерогенную экспрессию. Сравнение полученных результатов с данными, имеющимися по человеку и мыши, показало, что по профилю экспрессии генов Х-хромосома обыкновенных полевок сходна с мышиной X-хромосомой и, скорее всего, заметно отличается по набору избегающих инактивации генов от Х-хромосомы человека. Различия в морфологии Х-хромосом М. arvalis и М. rossiaemeridionalis и локализации исследуемых генов позволили рассмотреть возможность влияния прицентромерного гетерохроматина, как препятствия для распространения сигнала инактивации, и хромосомных перестроек на экспрессию генов. Было сделано заключение о том, что они не играют решающей роли в установлении статуса экспрессии генов Х-хромосомы.

Исследование статуса экспрессии генов Х-хромосомы в плацентах и субклоне клеток XEN гибридных самок М. rossiaemeridionalis х М. arvalis дало возможность установить статус экспрессии целого ряда генов Х-хромосомы в экстраэмбриопальных тканях и сравнить его со статусом экспрессии генов X-хромосомы в соматических тканях. Было показано, что в плацентах и субклоне клеток XEN гибридных самок большинство генов Х-хромосомы имеет тот же статус экспрессии, что и в фибробластах. Однако несколько генов Х-хромосомы Atrx, Chm, Midi и Ubelx, которые подвергались инактивации в фибробластах, экспрессировались на обеих Х-хромосомах, по крайней мере, в одном из типов экстраэмбриональных тканей. Этот факт подтвердил высказанные ранее предположения о меньшей полноте и/или стабильности инактивации Х-хромосомы в экстраэмбриональных тканях.

Определение статуса метилирования промоторных областей и/или 1 экзонов генов АГарПЗ, БЫ.8, И1х в соматических и экстраэмбриональных тканях обыкновенных полевок позволило выяснить роль метилирования ДНК в процессах случайной и импринтированной инактивации. В соматических тканях наблюдалось четкое соответствие между статусами экспрессии и метилирования гена: транскрипционно активные аллели не подвергались метилированию, в то время как транскрипционно неактивные аллели были метилированы. Этот результат согласуется с данными, имеющимися по мыши и человеку, и свидетельствует о важности метилирования ДНК для поддержания неактивного состояния генов при случайной инактивации Х-хромосомы. В экстраэмбриональных тканях данная закономерность соблюдалась лишь для части генов, что предполагает, что при импринтированной инактивации ведущая роль в поддержании неактивного состояния генов принадлежит другим модификациям хроматина.

Изучение распределения модификаций хроматина на метафазных хромосомах фибробластов, а также ХЕ1Ч и ТС клеток самок М. говягаетепсИопаИз, предоставило возможность сравнить структуру хроматина неактивной Х-хромосомы при случайной и импринтированной инактивации. Нами было показано, что и в фибробластах, где инактивация является случайной, и в клетках ХЕ1М, где инактивация импринтирована, на неактивной Х-хромосоме устанавливается два неперекрывающихся типа гетерохроматина: один образован триметилированным НЗК27 и убиквитинированиым Н2А, другой — триметилированным НЗК9 и гетерохроматиновым белком НР1.

В недифференцированных ТС клетках, соответствующих ранним стадиям импринтированной инактивации, триметилированный НЗК9, НР1 и убиквитинированный Н2А были равномерно распределены на неактивной X-хромосоме, в то время как триметилированный НЗК27 не был выявлен. Аналогичную структуру хроматина имеет Х-хромосома в сперматогенезе самцов млекопитающих, что указывает на существование связи между М8С1 и импринтированной инактивацией Х-хромосомы в предымплантационном развитии. Триметилированный НЗК27 устанавливался на неактивной Х-хромосоме в процессе дифференцировки ТС клеток, что сопровождалось снижением уровня триметилированного НЗК9 и белка.

НР1. Таким образом, у обыкновенных полевок два типа гетерохроматина, образованные триметилированным НЗК27/иН2А и триметилированным НЗК9/белком НР1 соответственно, принимают участие в поддержании неактивного состояния X-хромосомы как при случайной, так и при импринтированной инактивации. Поскольку те же самые типы гетерохроматина были ранее обнаружены у человека и коровы, то они, по-видимому, являются универсальными для неактивной Х-хромосомы плацентарных млекопитающих.

Полученные данные способствуют пониманию эпигенетических механизмов случайной и импринтированной инактивации Х-хромосомы, а также механизмов регуляции экспрессии генов Х-хромосомы у самок млекопитающих.

Показать весь текст

Список литературы

  1. П.М., Саблина О. В., Закиян С. М. и др. Морфология и поведение в мейозе половых хромосом у четырех видов полевок рода Microtus // Генетика. 1991. Т. 27. № 6. С. 1059−1065. --------
  2. Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. Москва: Мир, 1984. 397с.
  3. М.Н., Радэ/сабли С.И., Булатова Н. Ш. и др. Кариологические особенности и вероятные родственные связи полевок группы «arvalis» (Rodentia, Cricetidae) // Зоол. журн. 1985. Т. 64. С. 417−428.
  4. С.Я., Павлова М. Е., Федоров А. Н. и др. ^/"МП-семейство тандемно организованных последовательностей байкальских коттоидных рыб (Cottoidei) //Молекулярная биология. 1994. Т. 28. С. 419−428.
  5. А.И., Павлова C.B., Дементьева Е. В. и др. Модификации хроматина в процессе инактивации Х-хромосомы у самок млекопитающих // Генетика. 2006. Т. 42. № 9. С. 1225−1234.
  6. А.И., Демина В. В., Мазурок H.A. и др. Линии стволовых клеток экстраэмбриональной эндодермы обыкновенных полевок рода Microtus // Генетика. 2008. Т. 44. № 11. С. 1477−1485.
  7. Akhtar A. Dosage compensation: an intertwined world of RNA and chromatin remodelling // Curr. Opin. Genet. Dev. 2003. V. 13. № 2. P. 161−169.
  8. Avner P., Heard E. X-chromosome inactivation: counting, choice and initiation // Nat. Rev. Genet. 2001. V. 2. № 1. P. 59−67.
  9. Baarends W.M., Hoogerbrugge J. W., Roest H.P. et al. Histone ubiquitination and chromatin remodeling in mouse spermatogenesis // Dev. Biol. 1999. V. 207. № 2. P. 322−333.
  10. Baarends W.M., Wassenaar E., van der Laan R. et al. Silencing of unpairedchromatin and histone H2A ubiquitination in mammalian meiosis // Mol. Cell. Biol.2005. V. 25. № 3. P. 1041−1053.
  11. Backer C.P., Guggiari M., Brors B. et al. Transient colocalization of X-inactivation centres accompanies the initiation of X inactivation // Nat. Cell. Biol. 2006. V. 8. № 3. P.293−299.
  12. Bailey J.A., Carrel L., Chakravarti A. et al. Molecular evidence for a relationship between LINE-1 elements and X chromosome inactivation: the Lyon repeat hypothesis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. V. 97. № 12. P. 6634−6639.
  13. Bannister A. J., Zegerman P., Partridge J.F. et al. Selective recognition of methylated lysine 9 on histone H3 by the HP1 chromo domain // Nature. 2001. V. 410. № 6824. P. 120−124.
  14. Boumil R.M., Lee J.T. Forty years of decoding the silence in X-chromo'some inactivation // Hum. Mol. Genet. 2001. V. 10. № 20. P. 2225−2232.
  15. Boumil R.M., Ogawa Y., Sun B.K. et al. Differential methylation of Xite and CTCF sites in Tsix mirrors the pattern of X-inactivation choice in mice // Mol. Cell Biol.2006. V. 26. № 6. P. 2109−2117.
  16. Brockdorff N. X-chromosome inactivation: closing in on proteins that bind Xist RNA // Trends Genet. 2002. V. 18. № 7. P. 352−358.
  17. Brown C.J., Carrel L., Willard H.F. Expression of genes from the human active and inactive X chromosomes // Am. J. Hum. Genet. 1997. V. 60. № 6. P. 1333−1343.
  18. Brown C.J., Greally J.M. A stain upon the silence: genes escaping X inactivation // Trends Genet. 2003. V. 19. № 8. P. 432−438.
  19. Cao R., Zhang Y The functions of E (Z)/EZFI2-mediated methylation of lysine 27 in histone H3 // Curr. Opin. Genet. Dev. 2004. V. 14. № 2. P. 155−164.
  20. Carrel L., Clemson CM., Dunn J.M. et al. X inactivation analysis and DNA methylation studies of the ubiquitin activating enzyme El and PCTAIRE-1 genes in human and mouse // Hum. Mol. Genet. 1996. V. 5. № 3. P. 391−401.
  21. Carrel L., Cottle A.A., Goglin K.C. et al. A first-generation X-inactivation profile of the human X chromosome // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. № 25. P. 14 440−14 444.
  22. Carrel L., Willard H.F. Heterogeneous gene expression from the inactive X chromosome: an X-linked gene that escapes X inactivation in some human cell lines but is inactivated in others // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. № 13. P. 7364−7369.
  23. Carrel L., Willard H.F. X-inactivation profile reveals extensive variability in X-1 inked gene expression in females //Nature. 2005. V. 434. № 7031. P. 400−404.
  24. Chadwick B.P. Variation in Xi chromatin organization and correlation of the H3K27me3 chromatin territories to transcribed sequences by microarray analysis // Chromosoma. 2007. V. 116. № 2. P. 147−157.
  25. Chadwick B.P., Willard H.F. Multiple spatially distinct types of facultative heterochromatin on the human inactive X chromosome // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004. V. 101. № 50. P. 17 450−17 455.
  26. Charchar F.J., Svartman M., El-Mogharbel N. et al. Complex events in the evolution of the human pseudoautosomal region 2 (PAR2) // Genome Res. 2003. V. 13. № 2. P. 281−286.
  27. Charlesworth B. The evolution of sex chromosomes // Science. 1991. V. 251. № 4997. P. 1030−1033.
  28. Chaumeil J., Okamoto I., Guggiari M. et al. Integrated kinetics of X chromosome inactivation in differentiating embryonic stem cells // Cytogenet. Genome Res. 2002. V. 99. P. 75−84.
  29. Chiba H., Hirasawa R., Kaneda M. et al. De novo DNA methylation independent establishment of maternal imprint on X chromosome in mouse oocytes // Genesis. 2008. V. 46. № 12.
  30. Ciccodicola A., D’Esposito M, Esposito T. et al. Differentially regulated and evolved genes in the fully sequenced Xq/Yq pseudoautosomal region // Hum. Mol. Genet. 2000. V. 9. № 3. P. 395−401.
  31. Cooper D.W., Johnston P.G., Watson J.M. et al. X-inactivation in marsupials and monotremes // Semin. Dev. Biol. 1993. V. 4. P. 117−128.
  32. Coppola G., Pinton A., Joudrey E.M. et al. Spatial distribution of histone isoforms on the bovine active and inactive X chromosomes // Sex. Dev. 2008. V. 2. № 1. P. 1223.
  33. Costanzi C., Pehrson J.R. Histone macroH2Al is concentrated in the inactive X chromosome of female mammals //Nature. 1998. V. 393. № 6685. P. 599−601.
  34. Dandolo L., Stewart C.L., Mattel M.G. et al. Inactivation of an X-linked transgene in murine extraembryonic and adult tissues // Development. 1993. V. 118. № 2. P. 641 649.
  35. Disteche C.M. Escape from X inactivation in human and mouse // Trends Genet. 1995. V. 11. № l.P. 17−22.
  36. Disteche C.M. Escapees on the X chromosome // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. № 25. P. 14 180−14 182.
  37. Disteche C.M. The not-so-silent X // Nat. Genet. 2008. V. 40. № 6. P. 689−690.
  38. Disteche C.M., Dinulos M.B., Bassi M.T. et al. Mapping of the murine tbll gene reveals a new rearrangement between mouse and human X chromosomes // Mamm. Genome. 1998. V. 9. № 12. P. 1062−1064.
  39. Disteche C.M., Filippova G.N., Tsuchiya K.D. Escape from X inactivation // Cytogenet. Genome Res. 2002. V. 99. P. 36−43.
  40. Duret L., Chureau C., Samain S. et al. The Xist RNA gene evolved in eutherians by pseudogenization of a prolein-coding gene // Science. 2006. V. 312. № 5780. P. 1653−1655.
  41. Duthie S.M., Nesterova T.B., Formstone E.J. et al. Xist RNA exhibits a banded localization on the inactive X chromosome and is excluded from autosomal material in eis // Hum. Mol. Genet. 1999. V. 8. № 2. P. 195−204.
  42. Erwin J.A., Lee J.T. New twists in X-chromosome inactivation // Curr. Opin. Cell Biol. 2008. V. 20. N° 3. P. 349−355.
  43. Fang J., Chen T., Chadwick B. et al. Ring lb-mediated H2A ubiquitination associates with inactive X chromosomes and is involved in initiation of X inactivation // J. Biol. Chem. 2004. V. 279. № 51. P. 52 812−52 815.
  44. Fantes J.A., Oghene K., Boyle S. et al. A high-resolution integrated physical, cytogenetic, and genetic map of human chromosome 11: distal pl3 to proximal pi 5.1 // Genomics. 1995. V. 25. № 2. P. 447−461.
  45. Filippova G.N., Cheng M.K., Moore J.M. et al. Boundaries between chromosomal domains of X inactivation and escape bind CTCF and lack CpG methylation during early development//Dev. Cell. 2005. V. 8. № 1. P. 31−42.
  46. GarrickD., Sharpe J.A., Arkell R. et al. Loss of Atrx affects trophoblast development and the pattern of X-inactivation in extraembryonic tissues // PLoS Genet. 2006. V. 2. № 4. e58.
  47. Gilbert S.L., Sharp P.A. Promoter-specific hypoacetylation of X-inactivated genes // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1999. V. 96. № 24. P. 13 825−13 830.
  48. Goldman M.A., Stokes K.R., Idzerda R.L. et al. A chicken transferrin gene in transgenic mice escapes X-chromosome inactivation // Science. 1987. V. 236. № 4801. P. 593−595.
  49. Goto T., MonkM. Regulation of X-chromosome inactivation in development in mice and humans // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1998. V. 62. № 2. P. 362−378.
  50. Goto T., Wright E., Monk M. Paternal X-chromosome inactivation in human trophoblastic cells //Mol. Hum. Reprod. 1997. V. 3. № 1. P. 77−80.
  51. Goto Y., Gomez M., Brockdorff N. et al. Differential patterns of histone methylation and acetylation distinguish active and repressed alleles at X-linked genes // Cytogenet. Genome Res. 2002. V. 99. P. 66−74.
  52. Grant M., Zuccotti M., Monk M. Methylation of CpG sites of two X-linked genes coincides with X-inactivation in the female mouse embryo but not in the germ line // Nat. Genet. 1992. V. 2. № 2. P. 161−166.
  53. Graves J.A. The origin and function of the mammalian Y chromosome and Y-borne genes an evolving understanding // BioEssays. 1995. V. 17. № 4. P. 311−320.
  54. Graves J.A., Disteche C.M. Does gene dosage really matter? // J. Biol. 2007. V. 6. № l.P. 1.
  55. Graves J.A., Disteche C.M., Toder R. Gene dosage in the evolution and function of mammalian sex chromosomes // Cytogenet. Cell Genet. 1998. V. 80. P. 94−103.
  56. Greaves I.K., Rangasamy D., Devoy M. et al. The X and Y chromosomes assemble into H2A. Z-containing facultative heterochromatin following meiosis // Mol. Cell Biol. 2006. V. 26. № 14. P. 5394−5405.
  57. Greenfield A., Carrel L., Pennisi D. et al. The UTX gene escapes X inactivation in mice and humans // Hum. Mol. Genet. 1998. V. 7. № 4. P. 737−742.
  58. Grigor’eva E.V., Shevchenko A.I., Mazurok N.A. et al. FGF4 independent derivation of trophoblast stem cells from the common vole // PLoS ONE. 2009. V. 4. № 9. e7161.
  59. Gupta V., Parisi M., Sturgill D. et al. Global analysis of X-chromosome dosage compensation//J. Biol. 2006. V. 5. № 1. P. 3.
  60. Hadjantonakis A.K., Cox L.L., Tarn P.P. et al. An X-linked GFP transgene reveals unexpected paternal X-chromosome activity in trophoblastic giant cells of the mouse placenta//Genesis. 2001. V. 29. № 3. P. 133−140.
  61. Hansen R.S. X inactivation-specific methylation of LINE-1 elements by DNMT3B: implications for the Lyon repeat hypothesis // Hum. Mol. Genet. 2003. V. 12. № 19. P. 2559−2567.
  62. Hansen R.S., Canfield. T.K., Fjeld A.D. et al. Role of late replication timing in the silencing of X-linked genes // Hum. Mol. Genet. 1996. V. 5. № 9. P. 1345−1353.
  63. Hansen R.S., Stoger R., Wijmenga C. et al. Escape from gene silencing in ICF syndrome: evidence for advanced replication time as a major determinant // Hum. Mol. Genet. 2000. V. 9. № 18. P. 2575−2587.
  64. Heard E. Delving into the diversity of facultative heterochromatin: the epigenetics of the inactive X chromosome // Curr. Opin. Genet. Dev. 2005. V. 15. № 5. P. 482−489.
  65. Heard E., Clerc P., Avner P. X-chromosome inactivation in mammals // Annu. Rev. Genet. 1997. V. 31. P. 571−610.
  66. Heard E., Disteche C.M. Dosage compensation in mammals: fine-tuning the expression of the X chromosome // Genes Dev. 2006. V. 20. № 14. P. 1848−1867.
  67. Heard E., Rougeulle C., Arnaud D. et al. Methylation of histone H3 at Lys-9 is an early mark on the X chromosome during X inactivation // Cell. 2001. V. 107. № 6. P. 727−738.
  68. Hellman A., Chess A. Gene body-specific methylation on the active X chromosome // Science. 2007. V. 315. № 5815. P. 1141−1143.
  69. Holstein A.F., Schidze W., Davidoff M. Understanding spermatogenesis is a prerequisite for treatment // Reprod. Biol. Endocrinol. 2003. V. l.P. 107.
  70. Hoyer-Fender S., Costanzi C., Pehrson J.R. Histone macroH2A1.2 is concentrated in the XY-body by the early pachytene stage of spermatogenesis // Exp. Cell Res. 2000. V. 258. № 2. P. 254−260.
  71. Hunt P.A. Survival of XO mouse fetuses: effect of parental origin of the X chromosome or uterine environment? // Development. 1991. V. 111. № 4. P. 11 371 141.
  72. Huynh K.D., Lee J.T. Inheritance of a pre-inactivated paternal X chromosome in early mouse embryos //Nature. 2003. V. 426. № 6968. P. 857−862.
  73. Itoh Y, Melamed E., Yang X. et al. Dosage compensation is less effective in birds than in mammals // J. Biol. 2007. V. 6. № 1. P. 2.
  74. Jegalian K., Page D.C. A proposed path by which genes common to mammalian X and Y chromosomes evolve to become X inactivated // Nature. 1998. V. 394. № 6695. P. 776−780.
  75. Johnston C.M., Lovell F.L., Leongamornlert D.A. et al. Large-scale population study of human cell lines indicates that dosage compensation is virtually complete // PLoS Genet. 2008. V. 4. № 1. e9.
  76. Kaslow D.C., Migeon B.R. DNA methylation stabilizes X chromosome inactivation in eutherians but not in marsupials: evidence for multistep maintenance of mammalian X dosage compensation // Proc. Natl. Acad. Sci." U S A. 1987. V. 84. № 17. P.6210−6214.
  77. Ke X., Collins A. CpG islands in human X-inactivation // Ann. Hum. Genet. 2003. V. 67. P. 242−249.
  78. Keohane A.M., O’Neill L.P., Belyaev N.D. et al. X-Inactivation and histone H4 acetylation in embryonic stem cells // Dev. Biol. 1996. V. 180. № 2. P. 618−630.
  79. Khalil A.M., Boyar F.Z., Driscoll D.J. Dynamic histone modifications mark sex chromosome inactivation and reactivation during mammalian spermatogenesis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004. V. 101. № 47. P. 16 583−16 587.
  80. Kohlmaier A., Savarese F., Lachner M. et al. A chromosomal memory triggered by Xist regulates histone methylation in X inactivation // PLoS Biol. 2004. V. 2. № 7. E171.
  81. Koopman P., Gubbay J., Vivian N. et al. Male development of chromosomally female mice transgenic for Sry //Nature. 1991. V. 351. № 6322. P. 117−121.
  82. Kratzer P.G., Chapman V.M., Lambert H. et al. Differences in the DNA of the inactive X chromosomes of fetal and extraembryonic tissues of mice // Cell. 1983. V. 33. № l.P. 37−42.
  83. Krumlauf R., Chapman V.M., Hammer R.E. et al. Differential expression of alpha-fetoprotein genes on the inactive X chromosome in extraembryonic and somatic tissues of a transgenic mouse line //Nature. 1986. V. 319. № 6050. P. 224−226.
  84. Kunath T., Arnaud D., Uy G.D. et al. Imprinted X-inactivation in extra-embryonic endoderm cell lines from mouse blastocysts // Development. 2005. V. 132. № 7. P. 1649−1661.
  85. Kvaloy K., Galvagni F., Brown W.R. The sequence organization of the long arm pseudoautosomal region of the human sex chromosomes // Hum. Mol. Genet. 1994. V. 3.№ 5.P. 771−778.
  86. Lachner M., O’Carroll D., Rea S. et al. Methylation of histone H3 lysine 9 creates a binding site for HP1 proteins // Nature. 2001. V. 410. № 6824. P. 116−120.
  87. Lahn B.T., Page D.C. Four evolutionary strata on the human X chromosome // Science. 1999. V. 286. № 5441. P. 964−967.
  88. Lawrence J.B., Singer R.H., Marselle L.M. Highly localized tracks of specifictranscripts within interphase nuclei visualized by in situ hybridization // Cell. 1989. V. 57. P. 493−502.
  89. Li N., Carrel L. Escape from X chromosome inactivation is an intrinsic property of the Jaridlc locus // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008. V. 105. № 44. P. 1 705 517 060.
  90. Lin H., Gupta V., Vermilyea M.D. et al. Dosage compensation in the mouse balances up-regulation and silencing of X-linked genes // PLoS Biol. 2007. V. 5. № 12. e326.
  91. Lingenfelter P.A., Adler D.A., Poslinski D. et al. Escape from X inactivation of Smcx is preceded by silencing during mouse development // Nat. Genet. 1998. V. 18. № 3. P. 212−213.
  92. Lock L.F. Takagi N., Martin G.R. Methylation of the Hprt gene on the inactive X occurs after chromosome inactivation // Cell. 1987. V. 48. № 1. P. 39−46.
  93. S. ?V., Jegalian K., Lee A. et al. CpG islands in human ZFX and ZFY and mouse Zfx genes: sequence similarities and methylation differences // Genomics. 1995. V. 29. № 2. P. 353−363.
  94. Lyon M.F. Gene action in the X-chromosome of the mouse (Mus musculus L.) // Nature. 1961. V. 190. P. 372−373.
  95. Lyon M.F. X-chromosome inactivation: a repeat hypothesis // Cytogenet. Cell Genet. 1998. V. 80. P. 133−137.
  96. Mahadevaiah S.K., Turner J.M., Baudat F. et al. Recombinational DNA doublestrand breaks in mice precede synapsis // Nat. Genet. 2001. V. 27. № 3. P. 271−276.
  97. Mak W., Baxter J., Silva J. et al. Mitotically stable association of polycomb group proteins eed and enxl with the inactive x chromosome in trophoblast stem cells // Curr. Biol. 2002. V. 12. № 12. P. 1016−1020.
  98. Mak W, Nesterova T.B., de Napoles M. et al. Reactivation of the paternal X chromosome in early mouse embryos // Science. 2004. V. 303. № 5658. P. 666−669.
  99. Matarazzo M.R., Boyle S., D’Esposito M. et al. Chromosome territory reorganization in a human disease with altered DNA methylation // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2007. V. 104. № 42. P. 16 546−16 551.
  100. Matarazzo M.R., Cuccurese M., Strazzullo M. et al. Human and mouse SYBL1 gene structure and expression // Gene. 1999. V. 240. № 1. P. 233−238.
  101. Matarazzo M.R., De Bonis M.L., Gregory R.I. et al. Allelic inactivation of the pseudoautosomal gene SYBL1 is controlled byepigenetic mechanisms common to the X and Y chromosomes //Hum. Mol. Genet. 2002. V. 11. № 25. P. 3191−3198.
  102. Mazurok N.A., Rubtsova N.V., Isaenko A.A. et al. Comparative chromosome and mitochondrial DNA analyses and phylogenetic relationships within common voles (Microtus, Arvicolidae) // Chromosome Res. 2001. V. 9. № 2. P. 107−120.
  103. McCarrey J.R., Watson C., Atencio J. et al. X-chromosome inactivation during spermatogenesis is regulated by an Xist/Tsix-independent mechanism in the mouse // Genesis. 2002. V. 34. № 4. P. 257−266.
  104. McNeil J.A., Smith K.P., Hall L.L. et al. Word frequency analysis reveals enrichment of dinucleotide repeats on the human X chromosome and GATA. n in the X escape region // Genome Res. 2006. V. 16. № 4. P. 477−484.
  105. Mermond J.E., Costanzi C., Pehrson J.R. et al. Histone macroH2A1.2 relocates to the inactive X chromosome after initiation and propagation of X-inactivation // J. Cell Biol. 1999. V. 147. № 7. P. 1399−1408.
  106. Metzler-Guillemain C., Luciani J., Depetris D. et al. HP 1 beta and HP 1 gamma, but not PIP 1 alpha, decorate the entire XY body during human male meiosis // Chromosome Res. 2003. V. 11. № 1. P. 73−81.
  107. Migeon B.R., Schmidt M., Axelman J. et al. Complete reactivation of X chromosomes from human chorionic villi with a switch to early DNA replication // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986. V. 83. № 7. P. 2182−2186.
  108. Mine E" Allory Y., Worman H.J. et al. Localization and phosphorylation of HP1 proteins during the cell cycle in mammalian cells // Chromosoma. 1999. V. 108. № 4. P. 220−234.
  109. Mohandas T.K., Speed R.M., Passage M.B. et al. Role of the pseudoautosomal region in sex-chromosome pairing during male meiosis: meiotic studies in a man with a deletion of distal Xp //Am. J. Hum. Genet. 1992. V. 51. № 3. P. 526−533.
  110. Mondello C., Goodfellow P. J., Goodfellow P.N. Analysis of methylation of a human X located gene which escapes X inactivation // Nucleic Acids Res. 1988. Y. 16. № 14B.P. 6813−6824.
  111. Monk M., Boubelik M., Lehnert S. Temporal and regional changes in DNA methylation in the embryonic, extraembryonic and germ cell lineages during mouse embryo development // Development. «1987. V.997№f3. P. 371−382. «
  112. Mueller J.L., Mahadevaiah S.K., Park P.J. et al. The mouse X chromosome is enriched for multicopy testis genes showing postmeiotic expression // Nat. Genet. 2008. V. 40. № 6. P. 794−799.
  113. Namekawa S.H., Park P. J., Zhang L.F. et al. Postmeiotic sex chromatin in the male germline of mice // Curr. Biol. 2006. V. 16. № 7. P. 660−667.
  114. Namekawa S.H., VandeBerg J.L., McCarrey J.R. et al. Sex chromosome silencing in the marsupial male germ line // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2007. V. 104. № 23. P. 9730−9735.
  115. Navarro P., Pichard S., Ciaudo C. et al. Tsix transcription across the Xist gene alters chromatin conformation without affecting Xist transcription: implications for X-chromosome inactivation// Genes Dev. 2005. V. 19. № 12. P. 1474−1484.
  116. Nesterova T.B., Duthie S.M., Mazurok N.A. et al. Comparative mapping of X chromosomes in vole species of the genus Microtus // Chromosome Res. 1998. V. 6. № l.P. 41−48.
  117. Nguyen D.K., Disteche C.M. Dosage compensation of the active X chromosome in mammals //Nat. Genet. 2006. V. 38. № 1. P. 47−53.
  118. Norris D.P., Patel D., Kay G.F. et al. Evidence that random and imprinted Xist expression is controlled by preemptive methylation // Cell. 1994. V. 77. № l.P. 4151.
  119. Ogata T., Matsuo N. Turner syndrome and female sex chromosome aberrations: deduction of the principal factors involved in the development of clinical features // Hum. Genet. 1995. V. 95. № 6. P. 607−629.
  120. Ohhata T., Tachibana M., Tada M. et al. X-inactivation is stably maintained in mouse embryos deficient for histone methyl transferase G9a // Genesis. 2004. V. 40. № 3. P. 151−156.
  121. Ohno S. Sex chromosomes and sex-linked genes // Springer. Berlin. Heidelberg. New York. 1967.
  122. Okamoto I., Arnaud D., Le Baccon P. et al. Evidence for de novo imprinted X-chromosome inactivation independent of meiotic inactivation in mice // Nature. 2005. V. 438. № 7066. P. 369−373.
  123. Okamoto I., Heard E. The dynamics of imprinted X inactivation during preimplantation development in mice // Cytogenet. Genome Res. 2006. V. 113. P. 318−324.
  124. Okamoto I., Otte A.P., Allis C.D. et al. Epigenetic dynamics of imprinted X inactivation during early mouse development // Science. 2004. V. 303. № 5658. P. 644−649.
  125. Palmer S., Perry J., Kipling D. et al. A gene spans the pseudoautosomal boundary in mice // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1997. V. 94. № 22. P. 12 030−12 035.
  126. Patrat C., Okamoto I., Diabangouaya P. et al. Dynamic changes in paternal X-chromosome activity during imprinted X-chromosome inactivation in mice // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 2009. V. 106. № 13. P. 5198−5203.
  127. Pauler F.M., Sloane M.A., Huang R. et al. H3K27me3 forms BLOCs over silent genes and intergenic regions and specifies a histone banding pattern on a mouse autosomal chromosome // Genome Res. 2009. V. 19. № 2. P. 221−233.
  128. Perry J., Palmer S., Gabriel A. et al. A short pseudoautosomal region in laboratory mice//Genome Res. 2001. V. 11. № 11. P. 1826−1832.
  129. Plath K., Fang J., Mlynarczyk-Evans S.K. et al. Role of histone H3 lysine 27 methylation in X inactivation // Science. 2003. V. 300. № 5616. P. 131−135.
  130. Plath K., Talbot D., Hamer K.M. et al. Developmentally regulated alterations in Polycomb repressive complex 1 proteins on the inactive X chromosome // J. Cell Biol. 2004. V. 167. № 6. P. 1025−1035.
  131. Raefski A.S., O’Neill M.J. Identification of a cluster of X-linked imprinted genes in mice // Nat. Genet. 2005. V. 37. № 6. P. 620−624.
  132. Reik W., Santos F., Mitsuya K. et al. Epigenetic asymmetry in the mammalian zygote and early embryo: relationship to lineage commitment? // Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 2003. V. 358. № 1436. P. 1403−1409.
  133. Ross M.T., Grafliam D.V., Coffey A.J. et al. The DNA sequence of the human X chromosome //Nature. 2005. V. 434. № 7031. P. 325−337.
  134. Rougeulle C., Chaumeil J., Sarma K. et al. Differential histone H3 Lys-9 and Lys-27 methylation profiles on the X chromosome // Mol. Cell Biol. 2004. V. 24. № 12. P. 5475−5484.
  135. Rougeulle C., Navarro P., Avner P. Promoter-restricted H3 Lys 4 di-methylation is an epigenetic mark for monoallelic expression // Hum. Mol. Genet. 2003. V. 12. № 24. P. 3343−3348.
  136. Rubtsov N.B., Rubtsova N.V., Anopriyenko O.V. et al. Reorganization of the X chromosome in voles of the genus Microtus // Cytogenet. Genome Res. 2002. V. 99. P. 323−329.
  137. Sado T., Fenner M.H., Tan S.S. et al. X inactivation in the mouse embryo deficient for Dnmtl: distinct effect of hypomethylation on imprinted and random X inactivation // Dev. Biol. 2000. V. 225. № 2. P. 294−303.
  138. Sado T., Hoki Y, Sasaki H. Tsix silences Xist through modification of chromatin structure // Dev. Cell. 2005. V. 9. № 1. P. 159−165.
  139. Schoeftner S., Sengupta A.K., Kubicek S. et al. Recruitment of PRC 1 function at the initiation of X inactivation independent of PRC2 and silencing // EMBO J. 2006. V.25. № 13. P. 3110−3122.
  140. Sharman G.B. Late DNA replication in the paternally derived X chromosome of female kangaroos //Nature. 1971. V. 230. № 5291. P. 231−232.
  141. Shevchenko A.I., Pavlova S. V., Dementyeva E. V. et al. Mosaic heterochromatin of the inactive X chromosome in vole Microtus rossiaemeridionalis // Mamm. Genome. 2009. V. 20. № 9−10. P. 644−653.
  142. Silva J., Mak W., Zvetkova I. et al. Establishment of histone h3 methylation on the inactive X chromosome requires transient recruitment of Eed-Enxl polycomb group complexes // Dev. Cell. 2003. V. 4. № 4. P. 481−495.
  143. Singer-Sam J., Grant M., LeBon J.M. et al. Use of a Hpall-polymerase chain reaction assay to study DNA methylation in the Pgk-1 CpG island of mouse embryos at the time of X-chromosome inactivation // Mol. Cell Biol. 1990. V. 10. № 9. P. 49 874 989.
  144. Skaletsky H., Kuroda-Kawaguchi T., Minx P.J. et al. The male-specific region of the human Y chromosome is a mosaic of discrete sequence classes // Nature. 2003. V. 423. № 6942. P. 825−837.~ ~
  145. Smith K.P., Byron M., Clemson C.M. et al. Ubiquitinated proteins including uH2A on the human and mouse inactive X chromosome: enrichment in gene rich bands // Chromosoma. 2004. V. 113. № 6. P. 324−335.
  146. Stucki M., Clapperton J.A., Mohammad D. et al. MDC1 directly binds phosphorylated histone H2AX to regulate cellular responses to DNA double-strand breaks // Cell. 2005. V. 123. № 7. P. 1213−1226.
  147. Sugawara O., Takagi N., Sasaki M. Allocyclic early replicating X chromosome in mice: genetic inactivity and shift into a late replicator in early embrogenesis // Chromosoma. 1983. V. 88. № 2. P. 133−138.
  148. Sun B.K., Deaton A.M., Lee J.T. A transient heterochromatic state in Xist preempts X inactivation choice without RNA stabilization // Mol. Cell. 2006. V. 21. № 5. P. 617 628.
  149. Takagi N., Sugawara O., Sasaki M. Regional and temporal changes in the pattern of X-chromosome replication during the early post-implantation development of the female mouse // Chromosoma. 1982. V. 85. № 2. P. 275−286.
  150. Tsuchiya K.D., Greally J.M., Yi Y. et al. Comparative sequence and x-inactivation analyses of a domain of escape in human xpll.2 and the conserved segment in mouse // Genome Res. 2004. V. 14. № 7. P. 1275−1284.
  151. Tsuchiya K.D., Willard H.F. Chromosomal domains and escape from X inactivation: comparative X inactivation analysis in mouse and human // Mamm. Genome. 2000. V. 11. № 10. P. 849−854.
  152. Turner J.M. Meiotic sex chromosome inactivation // Development. 2007. V. 134. № 10. P. 1823−1831.
  153. Turner J.M., Mahadevaiah S.K., Elliott D.J. et al. Meiotic sex chromosome inactivation in male mice with targeted disruptions of Xist // J. Cell Sci. 2002. V. 115. P. 4097−4105.
  154. Turner J.M., Mahadevaiah S.K., Ellis P.J. et al. Pachytene asynapsis drives meiotic sex chromosome inactivation and leads to substantial postmeiotic repression in spermatids //Dev. Cell. 2006. V. 10. № 4. P. 521−529.
  155. Wakefield M.J., Keohane A.M., Turner B.M. et al. Histone underacetylation is an ancient component of mammalian X chromosome inactivation // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997. V. 94. № 18. P. 9665−9668.
  156. Wang J., Mager J., Chen Y. et al. Imprinted X inactivation maintained by a mouse Polycomb group gene //Nat. Genet. 2001. V. 28. № 4. P. 371−375.
  157. Wang P.J., Page D.C., McCarrey J.R. Differential expression of sex-linked and autosomal germ-cell-specific genes during spermatogenesis in the mouse // Hum. Mol. Genet. 2005. V. 14. № 19. P. 2911−2918.
  158. Wang Z., Willard H.F., Mukherjee S. et al. Evidence of influence of genomic DNA sequence on human X chromosome inactivation // PLoS Comput. Biol. 2006. V. 2. № 9.ell3.
  159. Wilcox S.A., Watson J.M., Spencer J.A. et al. Comparative mapping identifies the fusion point of an ancient mammalian X-autosomal rearrangement // Genomics. 1996. V. 35. № l.P. 66−70.
  160. Wu H., Fassler R., Schnieke A. et al. An X-linked human collagen transgene escapes X inactivation in a subset of cells // Development. 1992. V. 116. № 3. P. 687−695.
  161. Wutz A., Gribnau J. X inactivation Xplained // Curr. Opin. Genet. Dev. 2007. V. 17. № 5. P. 387−393.
  162. Wutz A., Jaenisch R. A shift from reversible to irreversible X inactivation is triggered during ES cell differentiation // Mol. Cell. 2000. V. 5. № 4. P. 695−705.
  163. Xu J., Burgoyne P. S., Arnold A.P. Sex differences in sex chromosome gene expression in mouse brain // Hum. Mol. Genet. 2002. V. 11. № 12. P. 1409−1419.
  164. Xu J., Watkins R., Arnold A.P. Sexually dimorphic expression of the X-linked gene Eif2s3x mRNA but not protein in mouse brain // Gene Expr. Patterns. 2006a. V. 6. № 2. P. 146−155.
  165. Xu N., Tsai C.L., Lee J.T. Transient homologous chromosome pairing marks the onset of X inactivation// Science. 2006b. V. 311. № 5764. P. 1149−1152.
  166. Yen Z.C., Meyer I.M., Karalic S. et al. A cross-species comparison of X-chromosome inactivation in Eutheria // Genomics. 2007. V. 90. № 4. P. 453−463.
  167. Zakian S.M., Kulbakina N.A., Meyer M.N. et al. Non-random inactivation of the X-chromosome in interspecific hybrid voles // Genet. Res. 1987. V. 50. № 1. P. 23−27.
  168. Zhao J., Sun B.K., Erwin J.A. et al. Polycomb proteins targeted by a short repeat RNA to the mouse X chromosome // Science. 2008. V. 322. № 5902. P. 750−756.
  169. Zinn A.R., Page D.C., Fisher E.M. Turner syndrome: the case of the missing sex chromosome // Trends Genet. 1993. V. 9. № 3. P. 90−93.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!