Π”ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, курсовая, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°
ΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² написании студСнчСских Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚

Π’Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π½ΠΎΠ²ΠΎΠΉ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ‚ΠΈΠΏΠ° ΠΈΠ· яйцСклСток костистой Ρ€Ρ‹Π±Ρ‹ Π’ΡŒΡŽΠ½ (Misgurnus fossilis L.)

Π”ΠΈΡΡΠ΅Ρ€Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΡΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² Π½Π°ΠΏΠΈΡΠ°Π½ΠΈΠΈΠ£Π·Π½Π°Ρ‚ΡŒ ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒΠΌΠΎΠ΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹

РСшСниС вопроса ΠΎ Ρ€ΠΎΠ»ΠΈ ΠΎΠ±Π½Π°Ρ€ΡƒΠΆΠ΅Π½Π½ΠΎΠΉ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Ρ‚Ρ€Π΅Π±ΡƒΠ΅Ρ‚ Π΄Π΅Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° строСния Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°, ΠΈΠ΄Π΅Π½Ρ‚ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ каталитичСской ΡΡƒΠ±ΡŠΠ΅Π΄ΠΈΠ½ΠΈΡ†Ρ‹ ΠΈ ΠΈΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ° взаимодСйствия с ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌΠΈ Π”ΠΠš-субстратами. Π€ΠΈΠ·ΠΈΠΊΠΎ-химичСский ΠΈ ΡΠ½Π·ΠΈΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΠΉ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Π‘, ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ Π²Ρ‹ΡΠ²ΠΈΡ‚ΡŒ Π½ΠΎΠ²Ρ‹Π΅ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΡ‹ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΠΉ Π”ΠΠš ΠΈ ΠΈΡ… ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΠΊΡƒ Π² Ρ€Π°Π½Π½Π΅ΠΌ Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠΈ ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ…. Π‘ ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒΡŽ Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ… Π§ΠΈΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π΅Ρ‰Ρ‘ >

Π‘ΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅

  • Бписок сокращСний
  • 1. Π’Π’Π•Π”Π•ΠΠ˜Π•
  • 2. ΠžΠ‘Π—ΠžΠ  Π›Π˜Π’Π•Π ΠΠ’Π£Π Π«
    • 2. 1. ΠŸΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΆΠ΄Π΅Π½ΠΈΡ Π² Π”ΠΠš ΠΈ Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹, ΠΈΡ… Π²Ρ‹Π·Ρ‹Π²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠ΅
    • 2. 2. ΠœΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΡ‹ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π”ΠΠš
      • 2. 2. 1. Эксцизионная рСпарация основания
      • 2. 2. 2. Эксцизионная рСпарация Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΎΡ‚ΠΈΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ остатка
    • 2. 3. Π Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Π΅ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹
      • 2. 3. 1. Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π° Ρ€
      • 2. 3. 2. Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ 5 ΠΈ Π³
      • 2. 3. 3. Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π° Π°
      • 2. 3. 4. Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π°Π‘
    • 2. 4. Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Π² Ρ€Π°Π½Π½Π΅ΠΌ Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠΈ ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ…
    • 2. 5. ΠžΠΊΠΈΡΠ»ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ стрСсс ΠΈ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΡ Π”ΠΠš
  • 3. ΠœΠΠ’Π•Π Π˜ΠΠ›Π« И ΠœΠ•Π’ΠžΠ”Π« Π˜Π‘Π‘Π›Π•Π”ΠžΠ’ΠΠΠ˜Π―
    • 3. 1. Π˜ΡΡ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΈΠΊ ΠΈ ΠΊΠ²Π°Π»ΠΈΡ„икация основных Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²ΠΎΠ² ΠΈ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ²
    • 3. 2. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ биологичСского ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Π°
    • 3. 3. Π€Ρ€Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·
      • 3. 3. 1. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΎΠ² Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π· для исслСдования Π΄ΠΈΠ½Π°ΠΌΠΈΠΊΠΈ ΠΈΡ… Π°ΠΊΡ‚ивности Π² ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π΅
      • 3. 3. 2. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΎΡ‡ΠΈΡ‰Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΎΠ² Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π· Ρ€ ΠΈ Π‘, ΠΈΠ· ΠΈΠΊΡ€Ρ‹ вьюна для сСдимСнтационного Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π°
    • 3. 4. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π”ΠΠš-субстратов
      • 3. 4. 1. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ субстратов экзонуклСазы, ΠΌΠ΅Ρ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… 3Н с Π—'-ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π°
      • 3. 4. 2. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ субстратов экзонуклСазы, ΠΌΠ΅Ρ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… 32Π  с 5'-ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π°.8 -—""^3.5. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ активности Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ²
      • 3. 5. 1. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ активности Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·
      • 3. 5. 2. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ активности 3'-«5' ΠΈ 5'→3'-экзонуклСазы
    • 3. 6. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ процСссивности Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·
    • 3. 7. Π”Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΠ΅ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹
      • 3. 7. 1. ЭлСктрофорСтичСскоС Ρ€Π°Π·Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² ΠΈ Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΈΠ½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… кислот
      • 3. 7. 2. Π­Π»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΡ„ΠΎΡ€Π΅Π· Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² Π² Π½Π΅Π΄Π΅Π½Π°Ρ‚ΡƒΡ€ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰Π΅ΠΌ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ°ΠΊΡ€ΠΈΠ»Π°ΠΌΠΈΠ΄Π½ΠΎΠΌ Π³Π΅Π»Π΅
      • 3. 7. 3. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π±Π΅Π»ΠΊΠ° ΠΈ ΡΠΎΠ»ΠΈ
  • 4. РЕЗУЛЬВАВЫ
    • 4. 1. Π’Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π· ΠΈΠ· Π·Ρ€Π΅Π»Ρ‹Ρ… яйцСклСток вьюна
    • 4. 2. ΠŸΠΎΠ»ΠΈΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄Π½Ρ‹ΠΉ состав Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ (
    • 4. 3. ΠŸΠΎΠ»ΠΈΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄Π½Ρ‹ΠΉ состав Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Π‘
    • 4. 4. ЭнзиматичСская характСристика Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Π‘
      • 4. 4. 1. ΠœΠ°Ρ‚Ρ€ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Π΅ свойства
      • 4. 4. 2. ΠŸΡ€ΠΎΡ†Π΅ΡΡΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ.®
      • 4. 4. 3. 3'→5'-экзонуклСазная Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ. ' '
      • 4. 4. 4. Π˜Π½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€Π½Ρ‹ΠΉ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·
    • 4. 5. ИзмСнСниС активности Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π· Ρ€ ΠΈ Π‘ Π² Ρ€Π°Π½Π½Π΅ΠΌ Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠΈ вьюна
    • 4. 6. ВлияниС ΠΎΠΊΠΈΡΠ»ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ стрСсса Π½Π° Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Π² ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π΅ вьюна
  • 5. ΠžΠ‘Π‘Π£Π–Π”Π•ΠΠ˜Π• Π Π•Π—Π£Π›Π¬Π’ΠΠ’ΠžΠ’
    • 5. 1. Π Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Π΅ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Π² ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΌ Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠΈ
    • 5. 2. Π₯арактСристика Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Π‘ ΠΈΠ· Π·Ρ€Π΅Π»Ρ‹Ρ… яйцСклСток вьюна
  • 6. Π’Π«Π’ΠžΠ”Π«

Π’Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π½ΠΎΠ²ΠΎΠΉ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ‚ΠΈΠΏΠ° ΠΈΠ· яйцСклСток костистой Ρ€Ρ‹Π±Ρ‹ Π’ΡŒΡŽΠ½ (Misgurnus fossilis L.) (Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚, курсовая, Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ)

РСпарация Π”ΠΠš являСтся ваТнСйшСй гСнСтичСской Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠ΅ΠΉ, Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ Π½Π° ΡΠΎΡ…Ρ€Π°Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΈΠ½Ρ‚Π°ΠΊΡ‚Π½ΠΎΠΉ структуры ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΠ³ΠΎ Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ°. Π Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Π΅ физичСскиС ΠΈ Ρ…имичСскиС Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹ Π²Ρ‹Π·Ρ‹Π²Π°ΡŽΡ‚ Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Π΅ поврСТдСния Π² Π”ΠΠš, Ρ‡Ρ‚ΠΎ опрСдСляСт ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΎΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΈΠ΅ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠΎΠ² Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ этих ΠΏΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΆΠ΄Π΅Π½ΠΈΠΉ. ΠŸΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌΠ° ΠΊΠΎΡ€Ρ€Π΅ΠΊΡ†ΠΈΠΈ структурных Π°Π½ΠΎΠΌΠ°Π»ΠΈΠΉ, Π²ΠΎΠ·Π½ΠΈΠΊΠ°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π² Π”ΠΠš, особСнно Π°ΠΊΡ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½Π° Π½Π° Ρ€Π°Π½Π½ΠΈΡ… этапах ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ развития, Ρ‚Π°ΠΊ ΠΊΠ°ΠΊ Π΄Π΅Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ Π² Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΉ систСмС ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ эмбриона Π² ΡƒΡΠ»ΠΎΠ²ΠΈΡΡ… интСнсивной ΠΏΡ€ΠΎΠ»ΠΈΡ„Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΡ€ΠΈΠ²ΠΎΠ΄ΠΈΡ‚ ΠΊ ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΎΠΊΡ€Π°Ρ‚Π½ΠΎΠΌΡƒ ΠΏΠΎΠ²Ρ‚ΠΎΡ€Π΅Π½ΠΈΡŽ ошибки. Π Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹ΠΉ синтСз Π”ΠΠš Π² Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Ρ… Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠΉ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ эмбриона обСспСчиваСтся запасСнными Π² Π·Ρ€Π΅Π»ΠΎΠΌ ΠΎΠΎΡ†ΠΈΡ‚Π΅ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹ΠΌΠΈ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π°ΠΌΠΈ. НизкоС содСрТаниС Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹? Π² Π·Ρ€Π΅Π»Ρ‹Ρ… яйцСклСтках вьюна Π² ΡΡ€Π°Π²Π½Π΅Π½ΠΈΠΈ с Π΅Π΅ ΡΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ Π² ΡΠΉΡ†Π΅ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ°Ρ… Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΡ… Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² (Mikhailov and Gulyamov, 1983; Carre et al., 1981, Matsumoto et al., 1994) ставит вопрос ΠΎ Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎΠΌ участии Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΡ… Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π· Π² Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΆΠ΄Π΅Π½ΠΈΠΉ Π”ΠΠš Π½Π° Ρ€Π°Π½Π½ΠΈΡ… этапах эмбриогСнСза.

Богласно соврСмСнной классификации, ΡΡƒΡ‰Π΅ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‚ ΠΏΡΡ‚ΡŒ Ρ‚ΠΈΠΏΠΎΠ² Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π· эукариот: Π°, ?, Ρƒ, 8 ΠΈ s (Burgers et al., 1990), ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ ΡƒΡ‡Π°ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‚ Π² Ρ€Π΅ΠΏΠ»ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π”ΠΠš. НСдавно ΠΎΠΏΡƒΠ±Π»ΠΈΠΊΠΎΠ²Π°Π½Ρ‹ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΎ Π½ΠΎΠ²ΠΎΠΉ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π΅, Π½Π°Π·Π²Π°Π½Π½ΠΎΠΉ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·ΠΎΠΉ Π‘, Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΈΠ· Ρ‚имуса Ρ‚Π΅Π»Π΅Π½ΠΊΠ° (Bialek and Grosse, 1993), Π·Ρ€Π΅Π»Ρ‹Ρ… яйцСклСток вьюна (Π¨Π°Ρ€ΠΎΠ²Π° ΠΈ Π΄Ρ€., 1994) ΠΈ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ Π΄Ρ€ΠΎΠΆΠΆΠ΅ΠΉ (Nelson et al., 1996). Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π° Π‘, участвуСт, ΠΏΠΎ-Π²ΠΈΠ΄ΠΈΠΌΠΎΠΌΡƒ, Π² Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π”ΠΠš. Если ΠΎ ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π΅, Ρ„ΠΈΠ·ΠΈΠΊΠΎ-химичСских ΠΈ ΡΠ½Π·ΠΈΠΌΠ°Ρ‚ичСских свойствах Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π· Π°, ?, Ρƒ, 5 ΠΈ Π² ΡΡƒΡ‰Π΅ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‚ многочислСнныС Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅, Ρ‚ΠΎ ΠΎ Π½ΠΎΠ²ΠΎΠΌ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π΅ извСстно ΠΊΡ€Π°ΠΉΠ½Π΅ ΠΌΠ°Π»ΠΎ.

РСшСниС вопроса ΠΎ Ρ€ΠΎΠ»ΠΈ ΠΎΠ±Π½Π°Ρ€ΡƒΠΆΠ΅Π½Π½ΠΎΠΉ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Ρ‚Ρ€Π΅Π±ΡƒΠ΅Ρ‚ Π΄Π΅Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° строСния Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°, ΠΈΠ΄Π΅Π½Ρ‚ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ каталитичСской ΡΡƒΠ±ΡŠΠ΅Π΄ΠΈΠ½ΠΈΡ†Ρ‹ ΠΈ ΠΈΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ° взаимодСйствия с ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌΠΈ Π”ΠΠš-субстратами. Π€ΠΈΠ·ΠΈΠΊΠΎ-химичСский ΠΈ ΡΠ½Π·ΠΈΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΠΉ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Π‘, ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ Π²Ρ‹ΡΠ²ΠΈΡ‚ΡŒ Π½ΠΎΠ²Ρ‹Π΅ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΡ‹ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΠΉ Π”ΠΠš ΠΈ ΠΈΡ… ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΠΊΡƒ Π² Ρ€Π°Π½Π½Π΅ΠΌ Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠΈ ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ….

2. ΠžΠ‘Π—ΠžΠ  Π›Π˜Π’Π•Π ΠΠ’Π£Π Π«.

Π²Ρ‹Π²ΠΎΠ΄Ρ‹.

1. Π’ ΡΠΉΡ†Π΅ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ°Ρ… ΠΈ ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ½Π°Ρ… вьюна ΠΎΠ±Π½Π°Ρ€ΡƒΠΆΠ΅Π½Π° Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π° Π½ΠΎΠ²ΠΎΠ³ΠΎ Ρ‚ΠΈΠΏΠ°, обозначСнная ΠΊΠ°ΠΊ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π°? (Π΄Π·Π΅Ρ‚Π°), которая отличаСтся ΠΏΠΎ Ρ„ΠΈΠ·ΠΈΠΊΠΎ-химичСским ΠΈ ΡΠ½Π·ΠΈΠΌΠ°Ρ‚ичСским свойствам ΠΎΡ‚ ΠΎΠΏΠΈΡΠ°Π½Π½Ρ‹Ρ… Ρ€Π°Π½Π΅Π΅ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π· Π°, Π , Ρƒ, 6 ΠΈ Π΅ ΡΡƒΠΊΠ°Ρ€ΠΈΠΎΡ‚.

2. Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π°? вьюна осущСствляСт дистрибутивный синтСз Π”ΠΠš Π½Π° ΠΌΠ°Ρ‚Ρ€ΠΈΡ†Π΅ Ρ€ΠΎ[Ρƒ (с1А)*с1Π’1ΠΎ ΠΊΠ°ΠΊ Π² ΠΎΡ‚сутствиС, Ρ‚Π°ΠΊ ΠΈ Π² ΠΏΡ€ΠΈΡΡƒΡ‚ствии Ρ€Π΅ΠΏΠ»ΠΈΠΊΠ°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Π° Π Π‘ΠœΠ”.

3. Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π° вьюна ΠΎΠ±Π»Π°Π΄Π°Π΅Ρ‚ высокой 3'->5'-экзонуклСазной Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ. ΠžΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΠ΅ 3'->5'-экзонуклСазной ΠΊ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π½ΠΎΠΉ активности Π² 20 Ρ€Π°Π· Π²Ρ‹ΡˆΠ΅ ΠΏΠΎΠ΄ΠΎΠ±Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΡΠΎΠΎΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΡ Ρƒ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Π΅ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ°.

4. 3'-«5'-экзонуклСаза Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΠ·ΡƒΠ΅Ρ‚ ΠΏΡ€Π΅Π΄ΠΏΠΎΡ‡Ρ‚ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎ ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ½ΠΈΡ‚Π΅Π²Ρ‹Π΅ ΠΎΠ»ΠΈΠ³ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΎΡ‚ΠΈΠ΄Ρ‹ ΠΈ Π½Π΅ΡΠΏΠ°Ρ€Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ Π—'-ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅Π²Ρ‹Π΅ Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΎΡ‚ΠΈΠ΄Ρ‹ Π΄Π²ΡƒΡ…Π½ΠΈΡ‚Π΅Π²Ρ‹Ρ… субстратов. Π“ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΠ· ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ½ΠΈΡ‚Π΅Π²Ρ‹Ρ… ΠΎΠ»ΠΈΠ³ΠΎΠΈ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΎΡ‚ΠΈΠ΄ΠΎΠ² осущСствляСтся дистрибутивным ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠΌ.

5. Π”ΠΠš-полимСразная ΠΈ 3'-«5'-экзонуклСазная активности ΡΠΎΠΎΡΠ°ΠΆΠ΄Π°ΡŽΡ‚ΡΡ совмСстно ΠΏΡ€ΠΈ ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Ρ€Π°Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€ΠΈΡ„ΡƒΠ³ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΈ Π² Π³Ρ€Π°Π΄ΠΈΠ΅Π½Ρ‚Π΅ 15−30%-Π½ΠΎΠ³ΠΎ Π³Π»ΠΈΡ†Π΅Ρ€ΠΈΠ½Π° с ΠΊΠΎΡΡ„Ρ„ΠΈΡ†ΠΈΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠΌ сСдимСнтации 6 Π‘, ΠΏΡ€ΠΈ этом ΠΎΠ±Π΅ активности ΠΊΠΎΡ€Ρ€Π΅Π»ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‚ с Ρ€Π°ΡΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ΠΌ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄Π° 68 кДА Π² Π³Ρ€Π°Π΄ΠΈΠ΅Π½Ρ‚Π΅.

6. Π‘ ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒΡŽ Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ элСктрофорСза с ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΌ элСктрофорСзом Π² Π΄Π΅Π½Π°Ρ‚ΡƒΡ€ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… условиях ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π½ΠΎ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π² ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚Π΅ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹? вьюна Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π½ΠΎΠΉ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ ΠΎΠ±Π»Π°Π΄Π°Π΅Ρ‚ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄ с ΠΊΠ°ΠΆΡƒΡ‰Π΅ΠΉΡΡ молСкулярной массой 68 ΠΊΠ”Π°. ΠŸΠΎΠ»ΠΈΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄ 68 ΠΊΠ”Π° являСтся слабокислым Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠΌ с ΠΈΠ·ΠΎΡΠ»Π΅ΠΊΡ‚ричСской Ρ‚ΠΎΡ‡ΠΊΠΎΠΉ Ρ€! 6,3.

7. АктивныС Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡ‹ кислорода, Π³Π΅Π½Π΅Ρ€ΠΈΡ€ΡƒΠ΅ΠΌΡ‹Π΅ систСмой ксантина с ΠΊΡΠ°Π½Ρ‚иноксидазой Π² ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ½Π°Ρ… вьюна, ΠΏΠΎΠ²Ρ‹ΡˆΠ°ΡŽΡ‚ Π² Π½Π΅ΡΠΊΠΎΠ»ΡŒΠΊΠΎ Ρ€Π°Π· Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π· Ρ€ ΠΈ? Π½Π΅ Π²Π»ΠΈΡΡ Π½Π° Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Π°.

8. Бвойства Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹? ΡΠ²ΠΈΠ΄Π΅Ρ‚Π΅Π»ΡŒΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‚ ΠΎ Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΉ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΈ этого Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°. Высказано ΠΏΡ€Π΅Π΄ΠΏΠΎΠ»ΠΎΠΆΠ΅Π½ΠΈΠ΅, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π° ^ осущСствляСт Ρ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ†ΠΈΡŽ Π”ΠΠš Π² ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ°Ρ… эмбрионов костистых Ρ€Ρ‹Π±.

ΠŸΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ вСсь тСкст

Бписок Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹

  1. , Π’.- Π€Ρ€ΠΈΡ‡, Π•.- Бэмбрук, Π”. II ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½ΠΎΠ΅ ΠΊΠ»ΠΎΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅. -1984. -ΠœΠΈΡ€.
  2. , A.A.- ИванСнков, Π’.Π’.- ΠœΠ΅Ρ‰Π΅Ρ€ΡΠΊΠΎΠ², Π’. Н. Π’Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ½Π° Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… стадиях развития вьюна // Биохимия, -1987, -Ρ‚. 52, -Ρ‡. 2, -с.342−347.
  3. , B.C.- Гулямов, Π”.Π‘. Π’Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ Ρ…арактСристика Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π· Π°Π»ΡŒΡ„Π°, Π±Π΅Ρ‚Π° ΠΈ Π³Π°ΠΌΠΌΠ° ΠΈΠ· ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ вьюна Misgurnus fossilis L. // Биохимия, 1981. -Ρ‚. 46, -Ρ‡. 9, -с. 1539−1547.
  4. , B.C.- АтаСва, Π”.О.- ΠœΠ°Ρ€Π»Ρ‹Π΅Π², К.А.- АтраТСв, A.M. Π‘Π΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ΅ ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ Ρ„Ρ‚ΠΎΡ€ΠΈΠ΄-ΠΈΠΎΠ½ΠΎΠΌ 3'→5'-экзонуклСазной активности Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ I Escherichia coli // ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½Π°Ρ биология, -1989, -Ρ‚. 23, -Ρ‡. 1, -с.306−314
  5. , A.A. ИспользованиС ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° Ρ€Π°Π΄ΠΈΠ°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎΠΉ ΠΈΠ½Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π°Ρ†ΠΈΠΈ ядСр для исслСдования ΠΈΡ… Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΉ Π² Ρ€Π°Π½Π½Π΅ΠΌ Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠΈ Ρ€Ρ‹Π± // Π–ΡƒΡ€Π½. ΠΎΠ±Ρ‰. Π±ΠΈΠΎΠ». 1959. -Ρ‚. 20, -с.202−213.
  6. , Н.П.- ЕлисССва, Π•.Π”.- ΠœΠΈΡ…Π°ΠΉΠ»ΠΎΠ², B.C. Π’Π·Π°ΠΈΠΌΠΎΠΎΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΠ΅ Π΄Π²ΡƒΡ… Ρ„ΠΎΡ€ΠΌ Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Π°Π»ΡŒΡ„Π° ΠΈΠ· ΠΈΠΊΡ€Ρ‹ костистой Ρ€Ρ‹Π±Ρ‹ Misgurnus fossilis L. // Биохимия -1993. -Ρ‚58. -с. 1965−1976.
  7. , Н.П.- ЕлисССва, Π•.Π”.- ΠœΠΈΡ…Π°ΠΉΠ»ΠΎΠ², B.C. ΠŸΡ€ΠΈΡΡƒΡ‚ΡΡ‚Π²ΠΈΠΈ Π² ΡΠΉΡ†Π΅ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ°Ρ… костистогй Ρ€Ρ‹Π±Ρ‹ Misgurnus fossilis L. Π”ΠΠš-ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Ρ‹ Ρ‚ΠΈΠΏΠ° Π΄Π·Π΅Ρ‚Π° // Биохимия -1994. -Ρ‚. 59, -с. 1067−1075.
  8. Arkin, M.R.- Stemp, E.D.A.- Pulver, S.C.- Barton, J.K. Long-range oxidation of guanine by Ru (lll) in duplex DNA // Chemistry & Biology. -1997. -v. 4. -No. 5. -p.389−400
  9. , G.R. — Boezi, J.A.- Lehman, I.R. A high molecular weight DNA polymerase from Drozophila melanogaster embryos. Purification, structure and partial characterization //J. Biol. Chem. -1979. -v. 254. -No. 19. -p.9886−9892
  10. Bauer, G.R.- Heller, H.M.- Burgers, M. DNA polymerase III from Saccharomyces cerevisiae. Purification and characterization // J. Biol. Chem. -1988. -v. 263. -p. 917−924
  11. , C. — Fridovich, I. Superoxide dismutase: improved assays and an assay applicable to acrylamide gels. // Anal. Biochem. -1971. -v. 44. -No. 1. -p.276−287
  12. Bennett, R.A.O.- Wilson, D.M.- Wong, D.- Demple, B. Interaction of human apurinic endonuclease and DNA polymerase beta in the base excision repair pathway // Proc.Natl. Acad. Sei. USA. -1997. -v. 94. -No. 14. -p.7166−7169
  13. , G. — Grosse, F. The DNA synthesizing subunit of polymerase primase from calf thymus //J. Biol. Chem. -1992. -v. 267. -No. 15. -p.2915−2919
  14. Bialek, G.- Grosse, F. An error-correcting proofreading exonuclease-polymerase that copurifies with DNA-polymerase alfa primase // J. Biol. Chem. -1993. -v. 268,. -No. 8. -p.6024−6033
  15. Bradford, M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of proteins utilising the principal of protein dye binding II Analyt. Biochem. -1976. -v. 72. -No. 1. -p.248−254
  16. Burgers, M.- Bambara, R.- Campbell, J.- Chang, L.- Downey, K.- Hubscher, U.- Lee, M.- Linn, S.- So, A.- Sparadi, S. Revisied nomenclature for eukariotic DNA polymerases II Eur. J. Biochem. -1990. -v. 191. -p. 617−618
  17. Burgers, M Saccharomyces cerevisiae replication factor C. Formation and activity of complexes with proliferating cell nuclear antigen and with DNA polymerases delta and epsilon II J. Biol. Chem. -1991. -v. 266, p. 22 698−22 706.
  18. , D. — Signoret, J. — Lefresne, J. David, J.C. Enzymes involved in DNA replication in the axolotl. Analysis of the forms and activities of DNA polymerase and DNA ligase during development II Develop. Biol. -1981. -v. 87. -No. 1. -p. 114 125
  19. Chui, G.- Linn, S. Futher characterization of HeLa DNA polymerase epsilon // J. Biol. Chem. -1995. -v. 270. -No. 14. -p.7799−7808
  20. Chyan, Y.J.- Strauss, P.R.- Wood, T.G.- Wilson, S.H. Identification of novel mRNA isoforms for human DNA polymerase beta // DNA and Cell Biology. -1996. -v. 15. -No. 8. -p.653−659
  21. Claycomb, W.C. DNA synthesis and DNA enzymes in terminally differentiating cardiac muscle cells // Exp. Cell Res. -1979. -v. 118. -No. 1. -p. 111 -114
  22. , S. — Chui, G. — Lehman, I.R. DNA polymerase-primase from embryos of Drosophila melanogaster // J. Biol. Chem. -1987. -v. 262. -No. 33. -p.16 105−16 108
  23. Crute, J.J. Pyrification and characterization of two new high molecular weight forms of DNA polymerase delta // Biochemistry. -1986. -v. 25. -No. 1. -p.26−36
  24. , B.J. //Ann. N.Y.Acad.Sci. -1964. -v. 121. -p. 404−427
  25. Dawid, I. Deoxyribonucleic acid in amfibian eggs // J. Mol. Biol. -1965. -v. 3. -p. 581−599
  26. , B. — Harrison, L. Repair of oxidative damage to DNA: enzymology and biology //Annu. Rev. Biochem. -1994. -v. 63. -p. 915−948
  27. Deng, G.R.- Wu, R. Terminal transferase: use of the tailing of DNA and for in vitro mutagenesis. // Methods Enzymol. -1983. -v. 100. -p.96−116
  28. , G. — Price, A. — Lindahl, T. Generation of single-nucleitide repair patches following excision of uracil residues from DNA // Mol. Cell Biol. -1992. -v. 12. -No. 4. -p.1605−1612
  29. Dizdaroglu, M. Oxidative damage to DNA in mammalian chromatin. // Mutat. Res. -1992. -v. 275. -No. 3−6. -p.331−342
  30. Dobashi, Y.- Kubota, Y.- Shuin, T.- Torigoe, S.- Yao, M.- Hosaka, M. Polymorphisms in the human DNA polymerase beta gene // Human Genetics. -1995. -v. 95. -No. 4. -p.389−390
  31. Dreher, D.- Jinod, A.F. Role of oxygen free radicals in cancer development // European J. Concer. -1996. -v. 32A. -No. 1. -p.30−38
  32. , B. — Loeb, L.A. Sea urchin nuclear DNA polymerase. Changing localization during early development // Exp. Cell Res. -1969. -v. 57. -p. 305−310
  33. Fox, A.M. — Breaux, C.B. — Benbow, R.M. Intracellular localization of DNA polymerase activities within large oocytes of the frog, Xenopus laevis- // Develop. Biol. -1980. -v. 80. -No. 1. -p.79−95
  34. Fridovich, I. Superoxide dismutases. //Annu. Rev. Biochem. -1975. -v. 44. -p. 147−159
  35. Fridovich, I. Biological effects of the superoxide radical. // Arch. Biochem. Biophys. -1986. -v. 247. -No. 1. -p.1−11
  36. Gaudette, M.F.- Benbow, R.M. Replication forks are underrepresented in chromosomal DNA of Xenopus laevis embryos // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. -1986. -v. 83. -No. 16. -p.5953−5957
  37. Grishko, V.l.- Driggers, WJ- Ledoux, SP- Wilson, GL Repair of oxidative damage in nuclear DNA sequences with different transcriptional activities // Mutat. Res. -DNA Repair. -1997. -v. 2. -No. 3388. -p.73−80
  38. Hara, K.- Tydeman, P.- Kirschner, M. A cytoplasmic clock with the same period as the division cycle in Xenopus eggs // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. -1980. -v. 77. -No. 1. -p.462−466
  39. Hindges, R.- Hubscher, U. DNA polymerase delta, an essential enzyme for DNA transactions //J. Biol. Chem. -1997a. -v. 378. -No. 5. -p.345−362
  40. Hindges, R.- Hubscher, U. Cloning, chromosomal localization, and interspecies interaction of mouse DNA polymerase delta small subunit (PolD2) // Genomics. -1997b. -v. 44. -No. 1. -p.45−51
  41. Hobart, P.M.- Infante, A.A. A low molecular weight DNA polymerase b in the sea urchin Strongylocentrorus purpuratus // J. Biol. Chem. -1978. -v. 253. -No. 22. -p.8229−8238
  42. Hubscher, U.- Kuenzle, C.C.- Spadari, S. Variation of DNA polymerase a, b and g during perinatal growth and differentiation // Nucl. Acids Res. -1977. -v. 4. -No. 8. -p.2917−2929
  43. Jinno, S.- Kida, K.- Taguchi, T. Induction of DNA polymerase beta and gamma in the lungs of age-related oxygen tolerant rats // Mechanisms of Ageing and Development. -1995. -v. 85. -No. 2−3. -p.95−107
  44. Kimura, H.- Nozaki, N.- Sugimoto, K. DNA polymerase alpha associated protein P1, a murine homolog of yeast MCM3, changes its intranuclear distribution during the DNA synthetic period // EMBO Journal. -1994. -v. 13. -No. 18. -p.4311−4320
  45. Klungland, A.- Lindahl, T. Second pathway for completion of human DNA base excision-repair: Reconstitution with purified proteins and requirement for DNase IV (FEN1) II EMBO Journal. -1997. -v. 16. -No. 11. -p.3341−3348
  46. Maga, G.- Hubscher, U. DNA polymerase epsilon interacts with proliferating cell nuclear antigen in primer recognition and elongation // Biochemistry. -1995. -v. 34. -No. 3. -p.891−901
  47. Matsumoto, Y.- Kim, K.- Bogenhagen, D. Proliferating cell nuclear antigen-dependent abasic site repair in Xenopus laevis oocytes: an alternative pathway of base excision DNA repair // Mol. Cell Biol. -1994. -v. 14. -No. 9. -p. 6187−6197
  48. Matsumoto, Y.- Kim, K. Excision of deoxyribose phosphate residues by DNA polymerase beta during DNA repair // Science. -1995. -v. 269. -No. 5224. -p.699−702
  49. Mechali M., Abadiedebat J.- A.M. DeRrecondo Eucariotic DNA polymerase alfa. Structural analysis of the enzyme from regeneration rat liver // J. Biol. Chem. -1980. -v. 255. -No. 5. -p.2114−2122
  50. Menge, K.L.- Hostomsky, Z.- Nodes, B.R.- Hudson, G.O.- Rahmati, S.- Moomaw,
  51. E.W.- Almassy, R.J.- Hostomska, Z. Structure-function analysis of the mammalian DNA polymerase beta active site: Role of aspartic acid 256, arginine 254, and arginine 258 in nucleotidyl transfer // Biochemistry. -1995. -v. 34. -No. 49. -p.15 934−15 942
  52. Mikhailov, V.S., and Gulyamov, D.B. Changes in DNA polymerase allfa, beta, gamma activities during early development of the teleost fish Misgurnus fossilis (loach) — // Eur. J. Biochem. -1983. -v. 135. -p.303−306.
  53. Mikhailov, V.S. DNA polymerases in the early development of a teleost fish Misgurnus fossilis (loach) II Sov. Sci. Rev.: Physiol. Gen. Biol. -1987. -v. 1. -p.501−527
  54. , H. — Izumi, M. — Tada, S. — Takada, R. — Masutani, M. — Ui, M.- Hanaoka,
  55. F. Molekular clonning of the four subunits of mouse DNA polymerase alfa -primase complex and their gene expression during cell proliferation and the cell cycle//J. Biol. Chem. -1993. -v. 268. -No. 11. -p.8111−8122
  56. Mossi, R.- Jonsson, Z.O.- Allen, B.L.- Hardin, S.H.- Hubscher, U. Replication factor C interacts with the C-terminal side of proliferating cell nuclear antigen // J. Biol. Chem. -1997. -v. 272. -No. 3. -p.1769−1776
  57. Mu, D.- Park, Π‘. H.- Matsunaga, Π’.- Hsu, D.S.- Reardon, J.T.- Sancar, A. Reconstitution of human DNA repair excision nuclease in a highly defined system //J. Biol. Chem. -1995. -v. 270. -No. 6. -p.2415−2418
  58. Mullen, G.P.- Antuch, W.- Maciejewski, M.W.- Prasad, R.- Wilson, S.H. Insights into the mechanism of the beta-elimination catalyzed by the N-terminal domain of DNA polymerase beta //Tetrahedron. -1997. -v. 53. -No. 35. -p. 12 057−12 066
  59. Narayan, S.- Beard, W.A.- Wilson, S.H. DNA damage-induced transcriptional activation of a human DNA polymerase beta chimeric promoter: Recruitment of preinitiation complex in vitro by ATF/CREB // Biochemistry. -1995. -v. 34. -No. 1. -p.73−80
  60. Narayan, S.- He, F.- Wilson, S.H. Activation of the human DNA polymerase beta promoter by a DNA-alkylating agent through induced phosphorylation of cAMP response element-binding protein-1 // J. of Biol. Chem. -1996. -v. 271. -No. 31. -p.18 508−18 513
  61. Navas, T.A.- Zhou, Z.- Elledge, S.J. DNA polymerase epsilon links the DNA replication machinery to the S phase checkpoint//Cell. -1995. -v. 80. -p.29−39
  62. Nelson, J.R.- Lawrence, C.W.- Hinkle, D.C. Thymine-thymine dimer bypass by yeast DNA polymerase zeta // Science. -1996. -v. 272. -No. 5268. -p. 1646−1649
  63. , R. — Woszczynski, M. — Sieelecki, J.A. Changes in the DNA polymerase beta gene expression during development of lung, brain, and testis suggest an involvement of the enzyme in DNA recombination // Exp. Cell Res. -1990. -v. 191. -No. 1. -p.51−56
  64. O’Farrell, P.H. High resolution two-dimensional electrophoresis of proteins. // J. Biol. Chem. -1975. -v. 250. -No. 10. -p.4007−4021
  65. Oakley, B.R.- Kirsch, D.R.- Morris, N.R. A simplified ultrasensitive silver stain for detecting proteins in polyacrylamide gels. //Anal. Biochem. -1980. -v. 105. -No. 2. -p.361−366
  66. Park, H.- Davis, R.- Wang, T.S.F. Studies of Schizosaccharomyces pombe DNA polymerase alpha at different stages of the cell cycle // Nucl. Acids Res. -1995. -v. 23. -No. 21. -p.4337−4344
  67. Peck, V.M.- Gerner, E.W.- Cress, A.E. Delta-type DNA polymerase characterized from Drozophila melanogaster embryos // Nucl. Acids Res. -1992. -v. 21. -No. 20. -p.5779−5784
  68. Perrino, F. W .- Loeb, L.A. Differential extension of 3'- mispair is a major contribution to the high fidelity of calf thymus DNA polymerase alfa // J. Biol. Chem. -1989. -v. 264. -No. 5. -p.2898−2905
  69. Piersen, C.E.- Prasad, R.- Wilson, S.H.- Lloyd, R.S. Evidence for an imino intermediate in the DNA polymerase beta deoxyribose phosphate excision reaction II J. of Biol. Chem. -1996. -v. 271. -No. 30. -p.17 811−17 815
  70. Plug, A.W.- Clairmont, C.A.- Sapi, E.- Ashley, T.- Sweasy, J.B. Evidence for a role for DNA polymerase beta in mammalian meiosis // Proc.Natl. Acad. Sci. USA. -1997. -v. 94. -No. 4. -p.1327−1331
  71. Podust, V.N.- Georgaki, A.- Strack, B.- Hubscher, U. Calf thymus RF-C as an essential component for DNA polymerase delta and epsilon holoenzymes function // Nucl. Acids Res. -1992. -v. 20. -No. 16. -p.4159−4165
  72. Podust, L.M.- Podust, V.N.- Floth, C.- Hubscher, U. Assembly of DNA polymerase delta and epsilon holoenzymes depends on the geometry of the DNA template // Nucl. Acids Res. -1994. -v. 22. -No. 15. -p.2970−2975
  73. Podust, V.N.- Podust, L.M.- Goubin, F.- Ducommun, B.- Hubscher, U. Mechanism of inhibition of proliferating cell nuclear antigen-dependent DNA synthesis by the cyclin-dependent kinase inhibitor p2l // Biochemistry. -1995. -v. 34. -No. 27. -p.8869−8875
  74. Povirk, L. F- Houlgrave, C.W.- Han, Y.-H. Neocarzinostatin-induced DNA base release accompanied by staggered oxidative cleavage of the complementary strand //J. Biol. Chem. -1988. -v. 263. -No. 36. -p.19 263−19 266
  75. Sabatino, R.D.- Myers, T.W. — Bambara, R.A. Calf thymus DNA polymerases alfa and delta are capable of highly processive DNA sinthesis // Biochemistry. -1988. -v. 27. -No. 8. -p.2998−3004
  76. , R.D. — Bambara, R.A. Properties of the 3−5-exonuclease associated with calf DNA polymerase delta // Biochemistry. -1988. -v. 27. -No. 7. -p.2266−2271
  77. , R.D. — Myers, T.W. — Bambara, R.A. Substrate specificity of the exonuclease associated with calf DNA polymerase // Cancer Research. -1990. -v. 50. -No. 17. -p. 5340−5344
  78. Sakumi, T.- Sekiguchi, T. Structures and functions of DNA glycosilases // Mutat. Res. -1990. -v. 236. -p. 161−172
  79. Sancar, A. Mechanisms of DNA excision repair. // Science. -1994. -v. 266. -No. 5193. -p.1954−1956.
  80. Sancar, A. Excision repair in mammalian cells // J. Biol. Chem. -1995. -v. 270. -No. 27. -p.15 915−15 918
  81. Sancar, A. DNA excision repair //Annu. Rev. Biochem. -1996. -v. 65. -p. 43−81
  82. Sawado, T.- Sakaguchi, K. A DNA polymerase alpha catalytic subunit is purified independently from the tissues at meiotic prometaphase I of a basidiomycete, Coprinus cinereus // Biochem. Biophys. Res. Commun, -1997. -v. 232. -No. 2. -p.454−460
  83. Shadan, F.F.- Villarreal, L.P. Potential role of DNA polymerase beta in gene therapy against cancer: A case for colorectal cancer // Medical Hypotheses. -1996. -v. 47. -No. 1. -p.1−9
  84. Shioda, M.- Nagano, H — Mano, Y. Association of DNA polymerase alfa and beta with rough endoplasmic reticulum in sea urchin eggs and changes in subcellular distribution during early embryogenesis // Eur. J. Biochem. -1980. -v. 108. -p.345−355
  85. , M. — Nagano, H.- Mano, Y. Transition of DNA polymerase alfa and endoplasmic reticulum during gastrulation of sea urchin // Develop. Biol. -1982. -v. 91. -No. 1. -p.111−120
  86. Shivji, M.K.K. — Kenny, M.K. — Wood, R.D. Proliferating cell nuclear antigen is required for DNA excision repair // Cell. -1992. -v. 69. -p.367−374
  87. Shivji, M.K.K.- Podust, V.N.- Hubscher, U.- Wood, R.D. Nucleotide excision repair DNA synthesis by DNA polymerase epsilon in the presence of PCNA, RFC, and RPA//Biochemistry. -1995. -v. 34. -No. 15. -p.5011−5017
  88. Singh, J.- Su, L.- Snow, E.T. Replication across 06-methylguanine by human DNA polymerase beta in vitro Insights into the futile cytotoxic repair and mutagenesis of 06-methylguanine // J. Biol. Chem. -1996. -v. 271. -No. 45. -p.28 391−28 398
  89. Singhal, R.K.- Prasad, R.- Wilson, S.H. DNA polymerase beta conducts the gap-filling step in uracil-initiated base excision repair in a bovine testis nuclear extract //J. Biol. Chem. -1995. -v. 270. -No. 2. -p.949−957
  90. Sobol, R.W.- Horton, J.K.- Kuhn, R.- Gu, H.- Singhal, R.K.- Prasad, R.- Rajewsky, K.- Wilson, S.H. Requirement of mammalian DNA polymerase-beta in base-excision repair// Nature. -1996. -v. 379. -No. 6561. -p.183−186
  91. Sparadi, S.- F., Focher- Hubcher, U. Developmental activity profile of DNA polymerase delta and alfa in rat neurons sudgests a coordinated in vivo function II In vivo. -1988. -v. 2. -p.317−320
  92. Srivastava, D.K.- Evans, R.K.- Kumar, A.- Beard, W.A.- Wilson, S.H. dNTP binding site in rat DNA polymerase beta revealed by controlled proteolysis and azido photoprobe cross-linking // Biochemistry. -1996. -v. 35. -No. 12. -p.3728−3734
  93. Sweasy, J.B.- Yoon, M.S. Characterization of DNA polymerase beta mutants with amino acid substitutions located in the C-terminal portion of the enzyme // Mol. & Gen. Genetics. -1995. -v. 248. -No. 2. -p.217−224
  94. Sweasy, J.B.- Chen, M.- Loeb, L.A. DNA polymerase beta can substitute for DNA polymerase I in the initiation of plasmid DNA replication // J. Bacteriol. -1995. -v. 177. -No. 10. -p.2923−2925
  95. Syvaoja, J.- Siromensaari, S.- Nishida, C.- Goldsmith, J.S.- Chui, G.S.J.- Jain, S.- Linn, S. DNA polymerases alfa, delta and epsilon three distinct enzymes from HeLa cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -1990. -v. 87. -No. 17. -p.6664−6668
  96. Thompson, H.C.- Sheaff, R.J.- Kuchta, R.D. Interactions of calf thymus DNA polymerase alpha with primer/templates // Nucl. Acids Res. -1995. -v. 23. -No. 20. -p.4109−4115
  97. Tsurimoto, T.- Melendy, T.- Stillman, B. Sequential initiation of lagging and leading strand synthesis by two different polymerase complexes at the SV40 DNA replication origin // Nature. -1990. -v. 346. -p. 534−539
  98. Voitenleitner, C.- Fanning, E.- Nasheuer, H.P. Phosphorylation of DNA polymerase alpha-primase by cyclin A-dependent kinases regulates initiation of DNA replication in vitro // Oncogene. -1997. -v. 14. -No. 13. -p.1611−1615
  99. Wallase, S.S. AP endonucleases and glycosylases that recognize oxidative DNA damage // Environmental and molecular mutagenesis. -1988. -v. 12. -No. 4. -p.431−478
  100. Wang, T.S.F. Eukaryotic DNA polymerases //Annu. Rev. Biochem. -1991. -v. 60. -p.513−552
  101. Wang, L.M.- Banerjee, S. Mutations in DNA polymerase beta occur in breast, prostate and colorectal tumors // Int. J. Oncol. -1995. -v. 6. -No. 2. -p.459−463
  102. Webster, R.P.- Bhattacharya, R.K. Activity of some nuclear enzymes associated with DNA repair following hepatocarcinogen administration to rats // J. Biochem. Toxicol. -1995. -v. 10. -No. 1. -p.33−40
  103. Weiser, T.- Gassmann, M.- Thommes, P.- Ferrari, E.- Hafkemeyer, P.- Hubscher, U. Biochemical and functional comparison of DNA polymerases alfa, delta and epsilon from calf thymus //J. Biol. Chem. -1991. -v. 266. -No. 16. -p. 10 420−10 428
  104. Werneburg, B.G.- Ahn, J.- Zhong, X.J.- Hondal, R.J.- Kraynov, V.S.- Tsai, M.D. DNA polymerase beta: Pre-steady-state kinetic analysis and roles of arginine 283 in catalysis and fidelity // Biochemistry. -1996. -v. 35. -No. 22. -p.7041−7050
  105. Wood, R. D. DNA repair in eukaryotes // Annu. Rev. Biochem. -1996. -v. 65. -p.135−1167
  106. Yamane, H.- Yada, N. — Katori, E.- Mashino, T. — Nagano, T.- Hirobe, M. Base liberation from nucleotides by superoxide and intramolecular enhancement effect of phosphate group. // Biochem. Biophys. Res. Commun. -1987. -v. 142. -No. 3. -p. 1104−1110
  107. Zeng, X.R.- Hao, H.- Jiang, Y.- Lee, M. Regulation of human DNA polymerase delta during cell cycle //J. Biol. Chem. -1994. -v. 269. -No. 39. -p.24 027−24 033
  108. Zhang, P.- Frugulhetti, I.- Jiang, Y. — Holt, G.- Condit, R.- Lee, M. Expression of the catalytic subunit of human DNA polymerase delta in mammalian cells using a Vaccinia virus vector system //J.Biol. Chem. -1995. -v. 270. -No. 14. -p.7993−7998
  109. Zhang, S.J.- Zeng, X.R.- Zhang, P.- Toomey, N.L.- Chuang, R.Y.- Chang, L.S.- Lee, M. A conserved region in the amino terminus of DNA polymerase delta is involved in PCNA binding //J. Biol. Chem. -1995. -v. 270. -No. 14. -p.7988−7992
  110. Zhu, F.X.- Biswas, E.E.- Biswas, S.B. Purification and characterization of the DNA polymerase alpha associated exonuclease: The RTH1 gene product // Biochemistry. -1997. -v. 36. -No. 20. -p.5947−5954
  111. Zierler, M.K.- Marini, N.J. — Stowers, D.J. — Benbow, R.M. Stockpiling of DNA polymerases during oogenesis and embryogenesis in the frog, Xenopus laevis- // J. Biol. Chem. -1985. -v. 260. -No. 2. -p.974−981
Π—Π°ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚ΡŒ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡƒ Ρ‚Π΅ΠΊΡƒΡ‰Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ