Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Межиндивидуальная вариабельность частот спонтанных и химически индуцированных сестринских хроматидных обменов

Диссертация: Межиндивидуальная вариабельность частот спонтанных и химически индуцированных сестринских хроматидных обменов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Для каждой возрастной группы характерна значительная межиндивидуальная вариабельность частот спонтанных СХО, раз мах колебаний которых находится в пределах от 6,98 до 11,35 у новорожденных, а у взрослых от 8,85 до 14,20 обменов на клетку.3. Культуры лимфоцитов от индивидов разного возраста ге терогенны по скорости прохождения клеток по циклу, оценивае мой соотношением клеток, находящихся… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Введение
    • 1. 2. Спонтанная частота СХО в клетках человека
    • 1. 3. Влияние индивидуальной чувствительности к химическим мутагенам на индукцию СХО
    • 1. 4. Сопоставление частот СХО и соотношения митозов в контроле и при действии мутагенов
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Характеристика обследованных групп
    • 2. 2. Методика проведения эксперимента
    • 2. 3. Характеристика мутагенов
    • 2. 4. Методы статистического анализа
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ЭКСПЕРИМЕНТОВ
    • 3. 1. Изучение спонтанного уровня СХО в зависимости от условий эксперимента
    • 3. 2. Спонтанный уровень СХО в двух разных возрастных группах
    • 3. 3. Изучение чувствительности индивидов разного возраста к действию мутагенов
    • 3. 4. Изучение межиндивидуальных вариаций скорости прохождения клеточного цикла в клетках лиц разного возраста
    • 3. 5. Изучение корреляционных связей между частотой СХО и скоростью прохождения клеточного цикла в контроле и при действии мутагенов у новорожденных и в группе взрослых доноров
  • ГЛАВА 4. ОВСПдаШЕ
  • Выводы

Межиндивидуальная вариабельность частот спонтанных и химически индуцированных сестринских хроматидных обменов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

В связи с обнаружением различий организмов в их реакциях на действие факторов внешней среды, в частности, на мутагенные воздействия, большую актуальность приобретает решение вопроса о межиндивидуальных вариациях интенсивности мутагенного ответа на действие некоторых химических соединений (Н.П.Бочков, 1981).

В последнее время для решения этого и ряда других вопросов используется метод учёта СХО. Точная природа образования СХО пока не установлена, хотя в литературе выдвигаются гипотезы относительно механизмов и причин появления СХО (Kato, 1975; Kato, 1977;Ikushima, I977-Shafer, I977-Bishun, 1980).

Большинство исследователей полагает, что СХО могут дать значительные дополнительные данные, способные расширить информацию о возможных генетических последствиях в результате воздействия химических факторов и относительно механизмов действия мутагенов на наследственный материал (В.Георгиева, 1982; Solomon and Во brow, 1975; Carrano et al. f 1978; Gebhart, 1981; Matsushita et al., 1981; Wolff, 1981) .

СХО цитологически выявляются как обмен участками между сестринскими хроматидами одной и той же хромосомы. Они могут быть чётко видны при мечении хроматид аналогом тимидина — 5-бромде-зоксиуридином (ВДУ).

Многочисленные методы изучения СХО, основанные на применении ЕДУ" подробно изложены в обзорах А. Ф. Захарова (1978), Latt et al. (1980), Perry (1980).

Основным принципом выявления СХО при всех предложенных методиках является следующее: хромосома должна включать предшественник в первом цикле (или первом и втором циклах) и исследоваться спустя два цикла репликации после добавления галоидоза-мещенного предшественника дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК).

Дифференциальная окраска неодинаково бронированных сестринских хроматид достигается с помощью либо нефлюоресцирующих основных красителей, либо флюорохромов, либо их комбинаций. Количество публикаций с описанием методических подходов к анализу межхроматидных обменов быстро увеличивается (А.Н.Чеботарев, С соавт., 1978; Fabiani and Forabosco, 1977; Li et al., 1978).

1. Новорожденные и взрослые индивиды (возрастная группа 20 — 34 лет) достоверно различаются между собой по частоте спонтанных сестринских хроматидных обменов, составляющей в среднем у новоровденных 9,50 + 0,16, у взрослых — 10,24 + i 0,18 обменов на клетку,.

2. Для каждой возрастной группы характерна значительная межиндивидуальная вариабельность частот спонтанных СХО, раз мах колебаний которых находится в пределах от 6,98 до 11,35 у новорожденных, а у взрослых от 8,85 до 14,20 обменов на клетку.3. Культуры лимфоцитов от индивидов разного возраста ге терогенны по скорости прохождения клеток по циклу, оценивае мой соотношением клеток, находящихся в первом, втором и третьих митозах. В 72-часовых культурах соотношение первых ;

вторых — третьих митозов составляет у новорожденных Ъ1% ;

— 48^ - 21^, у взрослых — 46^ - А1% - 13^, соответственно.4. Индивиды разного возраста статистически значимо раз личаются по чувствительности к действию тиофосфамида и мито мицина Частота индуцированных мутагенами СХО у новорожден ных достоверно ниже, чем у индивидов средней возрастной группы.5. При действии мутагенов скорость прохождения клеток по циклу при культивировании лимфоцитов достоверно выше у ново рожденных, чем у индивидов средней возрастной группы.6. При анализе межиндивидуальных и межвозрастных коле баний частоты СХО и показателя скорости прохождения клеток по циклу как в контроле, так и при действии мутагенов установлено,.

что между этими двумя показателями имеется отрицательно на правленная корреляционная связь: чем ниже скорость прохожде ния клеток по циклу, тем выше частота СХО и наоборот.7. Установлено, что при действии разных мутагенных аген тов в культуре клеток одних и тех же индивидов может быть раз ная ответная реакция, оцениваемая показателем частоты СХО и соотношением первых-третьих митозов,.

Показать весь текст

Список литературы

  1. С.А. Закономерности цитогенетического действия производных этиленимина разной функциональности в культуре лимфоцитов человека. — Автореферат канд.дисс., М.- Ин-т мед. генетики АМН СССР, 1974.
  2. Г. А., Дементьева Е. С. Генетический полиморфизм биохимических признаков у человека. Генетика человека (Итоги науки и техники), 1975, 2, I, 9−56.
  3. И.Р., Козачук С. Ю. Влияние этанола на генетический аппарат половых клеток млекопитающих. Цитология и генетика, 1981, 15, № 6, 29−32.
  4. Н. Статистические методы в биологии. М.-Мир, 1964.
  5. Н.П., Кулешов Н. П. Зависимость интенсивности химического мутагенеза в клетках человека от возраста и пола. -Генетика, 1971, 7, В 3, 132−138.
  6. Н.П. Генетические последствия воздействия факторов окружающей среды. Вестник АМН СССР, 1981, № 3, 13−19.
  7. Н.П., Чеботарев А. Н., Платонова В. И., Дебова Г. А. Снижение спонтанного уровня частот сестринских хроматидных обменов при делении клеток в культуре. Цитология и генетика, 1984, 18, Л" I, 54−58.
  8. Н.П., Филиппова Т. В., Яковенко К. Н. Принципы цитогенетического обследования для выявления профессиональных вредностей. Цитология и генетика, 1984, 18, $ 2,
  9. В. Генетический мониторинг проблемы, методы и достижения.- Соврем.мед., 1982, 33, № II, 610−613.
  10. Г. А., Сапачева В. А., Филиппова Т. В. Частота СХО у онкологических больных в процессе лечения циклофосфаном. -Цитология и генетика, 1983, 17, № I, 65−69.
  11. А.Ф. Сестринские хроматидные обмены: феномен имеханизмы. Генетика человека (Итоги науки и техники), 1978, 3, № I, 78−112.
  12. Ю.Е., Бочков Н. П., Яковенко К. Н. Влияние тиофосфа-мида на частоту хромосомных аберраций в клетках гетерози-гот по атаксии-телеангиоэктазии. Бюллетень эксп.биол. и мед., 1980, 89″ Я 95−97.
  13. О.П. Экспозиционные зависимости онтогенетического действия тиофосфамида. Генетика, 1974,10,Jfc 9,139−143,
  14. О.П., Чеботарев А. Н., Яковенко К. Н. Исследование разложения алкилирующих мутагенов этилениминового ряда в культуре лимфоцитов человека. Бюллетень эксп. биол. и мед., 1976, 85″ № 5, 552−553.
  15. Н.П. Индуцированные дегранолом хромосомные аберрации в культуре лейкоцитов лиц разного пола и возраста. -Генетика, 1972, 8, J6 3, I23-I3I.
  16. Г. Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1973.
  17. Т.Г., Шаталина И. Г., Чеботарев А. Н. Связь эффективности индуцирования сестринских хроматидных обменов с химической структурой мутагенеза. Генетика, 1982, 18,2, 269−274.
  18. Н.М., Боровицкая Е. Э. СХО при физиологическом и патологическом изменении состояния организма женщины. Тезисы 4-го съезда ВОГиС, 1982, 4, 124, Кишинев.
  19. Р.В., Горощенко Ю. Л. Изучение СХО в лимфоцитах человека в норме и при лейкозах. Тезисы 4-го съезда ВОГиС, 1982, 4, 133, Кишинев.
  20. Г. Основы биохимической генетики человека. М.: Мир, 1973.
  21. Ч. Основные принципы планирования эксперимента. М.: Мир, 1967.
  22. М., Георгиева В., Юлзари Р. Сестринские хроматидные обмены у человека в онтогенезе. Meд.-биол.пробл. (НРБ), 1982, 10, I05-II3.
  23. А.Н. Исследование зависимости цитогенетического действия тиофосфамида в различных концентрациях от температуры на лимфоциты человека. Генетика, 1974, 10, № 9, 147 153.
  24. А.Н., Селезнева Т. Г., Платонова В. И. Модифицированный метод дифференциальной окраски сестринских хроматид.-Воллетень эксп. биол. и мед., 1978, 85, № 2, 242−243.
  25. А.Н., Селезнева Т. Г. Индукция СХО тиофосфамидом на разных фазах клеточного цикла. Генетика, 1979, 15, № 10, I84I-I846.
  26. А.Н., Селезнева Т. Г., Ресснер П. Частота сестринских хроматидных обменов в культуре клеток китайского хомячка при длительном воздействии тиофосфамида. Генетика, 1980, 16, 12, 2164−2170.
  27. Г. Дисперсионный анализ. М.: Физматгиз, 1963.
  28. Е.Г., Чеботарев А. Н. Сопоставление уровня сестринских хроматидных обменов и хромосомных аберраций, индуцированных химическими мутагенами in vitro . Бюллетень эксп. биол. и мед., 1983, 96, № II, 91−93.
  29. К.Н. Количественные закономерности действия тиофос^ фамида на хромоеомы лимфоцитов человека. Автореферат канд. дисс., М.: Ин-т мед. генетики АМН СССР, 1974.
  30. К.Н., Платонова В. И. Спонтанный уровень СХО и их распределение по клеткам человека. Генетика, 1979, 15, № 6, III5-II23.
  31. Allen I.W., Latt S.A. Analysis of sister chromatid exchange formation un vivo in mouse spermatogonia as a new test system for environmental mutagens. Nature (London), 1976, 260, No.5549, 449−452.
  32. Alsaadi A. Incidence of SCE in newborns. Amer. J.Hum.Genet., 1978, ДО, No.6, 73A.
  33. Alvarez M.R., Cimino L.E., Cory M.J., Gordon R.E. Ethanol induction of sister chromatid exchange in human cells in vitro. Cytogenet. and Cell Genet., 1980, ?2, No.1, 66−69.
  34. Bartram C.R., Koske-Westphal Т., Passarge E. Chromatid exchanges in Ataxiatelangiectasia, Bloom-syndrome, Werner syndrome and xeroderma pigmentosum. Am. J.Hum.Genet., 1976, 40, No.1, 79−86.
  35. Bauchinger M., Schmid E., Dresp J., Kolin-Gerresheim J., Hauf R., Suhr E. Chromosome changes in lymphocytes after occupational exposure to toluene. Mutat. Res., 1982, 102, N0.4, 439−445.
  36. Bauchinger M., Dresp J., Schmid E., Hauf R. Chromosome changes in lymphocytes after occupational exposure to pen-tachlorophenol. Mutat. Res., 1982-, 102, No.1, 83−88.
  37. Becher R., Schmidt C.G., Theis G., Hossfeld D.K. The rate of SCEs in noiraal human bone marrou cells. Hum. Genet., 1979, ?0, No.2, 213−216.
  38. Веек В., Obe G. The human leukocyte test system. VI. The use of SCE as possible indicators for mutagenic activities.Hum. Genet., 1975, 2?, No.2, 127−134.
  39. Beek В., Obe G. SCEs in human leukocyte chromosomes: spontaneous and induced frequencies in early- and late-proliferating cells in vitro. Hum. Genet., 1979, No.1, 51−56.
  40. Bender M.A., Brewer J.G. Factors influencing chromosome aberration yields in the human peripheral leukocyte system. Mutat. Res., 1969, 8, No.4, 383−399.
  41. Bishun N.P. Cytogenetic assay systems for detecting chemical mutagens and carcinogens. Ghem. and Ind., 1980, Wo, 21, 850−854.
  42. Bochkov N.P., Chebotarev A.N., Pilippova T.V., Platono-va V.I., Stukalov S.V., Debova G.A. Changes of spontaneous level of sister chromatid exchanges in human lymphocyte culture through a number of cell divisions. Mutat. Res., 1984.
  43. Brewer J.G. Annotation: Human ecology, an expanding role for the human geneticist. Am. J.Hum.Genet., 1971, 22, No.1, 92−94.
  44. Carrano A.V., Thompson L.H., Lindi P.A., Minkler J.L. SCE as an indicator of mutagenesis. Nature, 1978, 271, N0.5645, 551−553.
  45. Carrano A.V., Minkler J.L., Stetka D.G., Moore II D.N. Variation in the Baseline SCE frequency in human lymphocytes. Environmental Mutagenesis, 1980, 2, N0.3, 325−327.
  46. Carrano A.V., Harrison L.B., Mayall B.H., Minkler J.L., Cohen P. Sister chromatid exchange studies in petroleum refinery workers. Environmental Mutagenesis, 198СД, 2, No.2, 263.
  47. Chaganti R.S.K., Schonberg S., German J. A manyfold increase in SCEs in Bloom’s syndrome lymphocytes. Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1974, 71″ No, 11, 4508−4512.
  48. Chen H.H., Hsueh J.L., Sirianni S.R., Huang C.C. Induction of sister chromatid exchanges and cell cycle delay in cultured mammalian cells treated with eight organophosphorus pesticides. Mutat. Res., 1981, 88, No.3, 307−316.
  49. Ozkinay Cihangir M. Frequency and distribution of sister chromatid exchanges in cultured human lymphocytes. Turk. J.Pediat., 1982, No.2, 89−96.
  50. Cohen Maimou M., Martin Alice 0., Ober Carob, Simpson Stacy J. A family study of spontaneous sister chromatid exchange frequency. Am. J.Hum.Genet., 1982, No.2, 294−306.
  51. Cote G.B., Sarri C., Papadakou-Lagoyamu S. Increased rate of sister chromatid exchanges in -thalassaemia. Blut, 1982, M> No.6, 349−353.
  52. Craig-Holmes A.P., Shaw M.W. Cell cycle analysis in asynchronous cultures using the BUdR-Hoechst technique. Exp. Cell Res., 1976,9, No.1, 79−87.
  53. Craig-Holmes A.P., Shaw M.W. Effects of six carcinogenson SCE frequency and cell kinetics in cultured human lymphocytes. Mutat. Res., 1977, ?6, No.5, 375−384.
  54. Crossevi P.E., Morgan V/.P. Analysis of human lymphocytes cell cycle time in culture measured by sister chromatid differential staining. Exp. Cell Res., 1977, 104, N0.4, 453−457.
  55. Crossevi P.E., Morgan W.F. Identification of first division metaphases for the analysis of chromosome aberrations incultured human lymphocytes. Mutat. Res., 1978, j?2, Ho.2, 172.
  56. Croesen P.E., Morgan W.F. SCE in cigarette smokers. Hum. Genet., 1980, ?3, N0.3, 425−426.
  57. Crossen P.E., Morgan W.F. The effect of chlorpromazine on SCE frequency in human chromosomes. An in vitro and in vivo study. Mutat. Res., 1982, Д6, No.2−3, 225−232.
  58. Crossen P.E. Variation in the Sensitivity of Human lymphocytes to DNA-damaging agents measured by sister chromatid exchange frequency. Hum. Genet., 1982-, 60, No.1, 19−23.
  59. Daond C., Shaw N., Craig-Holmes A. SCEs frequency among normal individuals and breast cancer patients. Mammal. Chromos. Newsletter, 1976, No.1−2, 26.
  60. Galloway S.M., Evans H.J. SCE in human chromosomes from normal individuals and patients with Ataxiatelangiectasia. Cytogenet. and Cell Genet., 1975, 15., No.1, 17−29.
  61. Galloway S.M. Ataxiatelangiectasia: the effects of chemical mutagens and X-rays on SCEs in blood lymphocytes. Mutat. Res., 1977, 45., N0.3, 343−349.
  62. Garson O.M., Latimer N.Z., Chiu E., Dixon K. Chromosome studies of patients on long-term lithium therapy for psychiatric disorders. Med. J. Austrl., 1981, 2, Ho.1, 37−39.
  63. Gebhart E. SCE and Structural Chromosome Aberration in mutagenicity testing. Hum. Genet., 1981, 58, No.3, 235−254.
  64. Ghosh P.K., Hand R. Reduced frequency of sister chromatid exchanges in human lymphocytes cultured with autologous serum. Hum. Genet., 1979, ?1, 167−170.
  65. Gibas L., Limon J. The induction of SCE by 9-aminoacridine derivatives. I. The relation between the yield of SCE induction and cell kinetics in cultured human lymphocytes. Mutat. Res., 1979, 67″ Uo.1, 93−96.
  66. Giulotto E., Mottura A., Giorgi R., Carli de L., Nuzzo F. Frequencies of sister chromatid exchanges in relation to cell kinetics in lymphocyte cultures. Mutat. Res., 1980, 10, ITo.3, 343−350.
  67. Goh Kong-oo. SOE in the aging population. J. Med., 1981, 12, No.2−3, 195−198.
  68. Habedank M., Eber K.-J., Brull D., Kotlarek F., Sturapf C., Increased Sister chromatid exchanges in epilentic children during long-term therapy with Phenytoin, Hum. Genet., 1982, 61, No.1, 71−72.
  69. Hatcher N.H., Brinson P. S., Hook E.B. SCEs in Ataxiatelangi-ectasis. Mutat. Res., 1976, No.2, 333−336.
  70. Hatcher N.H., Hook E.B. Sister Charomatid Exchange in Newborns. Hum. Genet., 1981, N0.4, 389−391.
  71. Hayashi К., Schmid W. The rate of SCEs parallel to spontaneous chromosome breakage in Fanconi’s anemia and to trenimoninduced aberrations in human lymphocytes and fibroblasts. Hum. Genet., 1975, 29, No.3, 201−206.
  72. Hollander D.H., Tockman M.S., Liang Y.W., Borgaonkar D.S., Frost J.K. SCE in the peripheral blood of cigarette smokers and in lung cancer patients- and the effect of chemotherapy. Hum. Genet., 1978, 44, No.2, 165−171.
  73. Hungerford D.A. Leukocytes cultured from small inocula of whole blood and the preparation of metaphase chromosomes by treatment with hypotonic KC1. Stain Technology, 1965, 40, N0.6, 333−336.
  74. Husum В., Wulf J.C., Niebuhr E. SCEs in lymphocytes in women with cancer of the breast. Mutat. Res., 1981, 85, N0.4, 357−362.
  75. Husum В., Wulf J.C., Niebuhr E. Increased sister chromatid exchange frequency in lymphocytes in healthy cigarette smokers. Hereditas, 1982, ?6, No.1, 85−88.
  76. Iiebeskind D., Bases R., Mendes F., Elanin P., Roenigs-berg M. SCEs in human lymphocytes after exposure to diagnostic ultrasound. Science, 1979, 20?, No.4412, 1273−1275.
  77. Ikushima Takaji. Role of SCE in chromatid aberration formation. Nature, 1977, 268, No.5617, 235−236.
  78. Yutaka Ishii. Nature of the mitomycin^ induced lesion causing SCE. Mutat. Res., 1981, 21, No.1, 51−55.
  79. Kato H. Mechanisms for SCE. Annu, Rept.Nat.Inst.Gen.Jap., 1975, No.26, 37−38.
  80. Kato H., Shimada H. SCEs induced by mitomycin-C: a new method of detecting DNA damage at the chromosomal level.Mutat. Res., 1975-, 28, No.3, 459−464.
  81. Kato H., Stick N.F. Sister chromatid exchanges in aging and repair-deficient human fibroblasts. Nature (London), 1976, 260, Ho.5549, 447−448.
  82. Kato H. Mechanisms for sister chromatid exchanges and their relation to the production of chromosomal aberrations. Ghromosoma, 1977, 32, No.3, 179−191.
  83. Kato H. Temperature-dependence of SGE: an aplication for its mechanism. Cancer Genetics and Cytogenetics, 1980, 2, No.1, 61−67.
  84. Knuutila S., Harkki A., Ellimaki K., Salunen R., Decreased SCE in Down’s syndrome after measles vaccination. Heredi-tas, 1979, 90, No.1, 147−149.
  85. Kowalczyk Jerzy. SCE in children treated with nalidixic acid. Mutat. Res., 1980, XL, No.4, 371−375.
  86. Kram D., Schneider E.L., Tice R.R., Gianas P. Aging and sister chromatid exchange. I. The effect of aging on mi-tomycin-C induced sister chromatid exchange frequencies in mouse and rat bone marrow cells in vivo. Exp. Cell Res., 1978, No.3, 471−475.
  87. Kurvink K., Bloomfield C.D., Keenan K.M., Levitt S., Ervenka Ja. SCE in lymphocytes from patients with malignant lymphoma. Hum. Genet., 1978, No.2, 137−144.
  88. Kurvink K., Bloomfield C.D., Ervenka Ja. Sister chromatid exchanges in patients with viral disease. Exp. Cell Res., 1978—, Ш"0.2, 450−453.
  89. Lambert В., Hansson K., Lindsten J., Sten M., V/erelins B. Bromodeoxyuridine induced SCEs in human lymphocytes. Hereditas, 1976, 8J3, No.2, 163−174.
  90. Lambert В., Ringhorg U., Harper E., Lindblad A. SCE in lymphocyte cultures of patients receiving chemotherapy for malignant disorders. Cancer Treat Reports, 1978, 62, No.10, 1413−1419.
  91. Lambert В., Lindblad A., Nordenskjold M., Werelins B. Increased frequency of SCE in cigarette smokers. Heredi-tas, 1978—, 88, No.2, 147−149.
  92. Lambert В., Ehrnst A., Hanson K., Lindblad A., Morad M., Werelins B. SCE in peripheral lymphocytes of subjects vac-cinatid against measler. Hum. Genet., 1979, ?0, No.3, 291−296.
  93. Lambert В., Lindblad A. Sister chromatid exchange and chromosome aberrations in lymphocytes of laboratory personnel. J. Toxicol, and Environ. Health, 1980, 6, No.5−6, 1237−1243.
  94. Latt S.A. Sister chromatid exchanges, indices of human chromosome damage and repair: detection by fluorescence and induction by mitomycin-C. Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1974, Ц, N0.8, 3162−3166.
  95. Latt S.A., Stetten G., Jurgens L.H., Buckanam H.R., Gerald P. S. Induction by alkylating agents of SCEs and chromatid breaks in Panconi’s anemia. Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1975, 12, No.10, 4066−4070.
  96. Latt S.A., Schreck Loveday K.S., Dougherty C.P., Shuler Ch.P. Sister Chromatid Exchanges «Advances in human genetics». (ed. by H. Harris and Hirschhorn) Plenum Press., v.10, 1980, New York and London.
  97. Lezana E.A., Bianchi N.O., Bianchi M.S., Zabala-Snarez J.E., SCEs in Down syndromes and normal human beings. Mutat. Res., 1977, No.1, 85−90.
  98. Li C.C., Dattisman W.G., Davis L.M., Ran Sylvia. Automated analysis of SCE by sceletonization approach. Proc. Int. Conf. Cybern and Soc., Tokyo-Kyoto, 1978, v.1, New York, NY, SA, 79−84.
  99. Lindblad A., Lambert B. Relation between SCE, cell proliferation and proportion of В and T cells in human lymphocyte cultures. Hum. Genet., 1981, ?7, No.1, 31−34.
  100. Littlefield J.G., Colyer S.P., Da Prain R.J. Physical, chemical and biological factors affecting lymphocytes exposed to mitomycin С prior to culture. Mutat. Res., 1981, 81, N0.3, 377−386.
  101. Livingston G.K., Fineman R.M. Correlation of human lymphocyte SCE frequency with smoking history. Mutat. Res., 1983, 119, No.1, 59−64.
  102. Matsushita Т., Dornfeld S.S., Matsushita G.C., Hass B.S. Relative sensitivities of mammalian sister chromatic exchange and bacterial mutation frequency. Environmental Mutagenesis, 1981, N0.3, 341.
  103. Mazrimas V.A., Stetka D.G. Direct evidence for the role of incorporated BUdR in the induction of SCEs. Exp. Cell Res., 1978, 1J2, No.1, 23−30.
  104. Morgan W.F., Crossen P.E. The incidence of SCE in cultured human lymphocytes. Mutat. Res., 1977, ?2, No.2, 305−312.
  105. Morgan Y/.F., Crossen P.E. The frequency and distribution of SCE in human chromosomes. Hum. Genet., 1977—, 28, N0.3, 271−278.
  106. Morgan W.F., Crossen P.E. Factors influencing sister chromatid exchange rate in cultured human lymphocytes. Mutat. Res, 1981, 81, No.3, 395−402.
  107. Murthy Б.К.P. Frequency of SCE in sigarette smokers. Hum. Genet., 1979,2, No.3, 343−345.
  108. Murthy Б.К.Р., Prema K. SCEs in oral contrceptive users. Mutat. Res., 1979-, 68″ Ho*2″ 149−152.
  109. Musilova J., Musilova K., Urban J. SCEs and chromosomal breakage in patients treated with cytostatics. Mutat. Res., 1979, ?1″ No.3, 289−294.
  110. Novotna В., Goetz P., Surkova N.I. Effects of alkylating agents on lymphocytes from controls and from patients with Fanconi’s anemia. Studies of SCE, chromosome aberrations and kinetics of cell division. Hum. Genet., 1979, 42, No.1, 41−50.
  111. Obe G., Ristow H. Acetaldehyde, but not ethanol, induces SCE in Chinese hamster cells in vitro. Mutat. Res., 1977, ?6, No.2, 211−213.
  112. Otter M., Palmer C.G., Bachner R.L. SCE in lymphocytes from patients with acute lymphoblastic leukemia. Hum. Genet., 1979, 52, No.2, 185−192.
  113. Pedersen C., Olah E., Merrild U. Sister chromatid exchanges in cultured peripheral lymphocytes from twins. Hum. Genet., 1979, 52, No.3, 281−294.
  114. Perry P.E., Evans H.I. Cytological detection of mutagen-carcinogen exposure by sister chromatid exchange. Nature (London), 1975, 28, No.5531, 121−125.
  115. Perry P.E. Chemical Mutagens. Principles and Methods for their detection. (F.J. de Serres and A. Hollander, eds), v.6, 19−39, Plenum Press. New York and London, 1980.
  116. Pina Neto J.M. Frequency and distribution of SCEs in normal individuals. Rev. Brasil Genet., 1981, 4, No.1, 65−73.
  117. Riedel Lothar, Obe Gunter. Trenimon-induced SCEs and structural chromosomal aberrations in early- and late-dividing lymphocytes. Mutat. Res., 1980, 71, No.1, 125−131.
  118. Ristow H., Obe Gunter. Acetaldehyde induced cross-links in DNA and causes SCEs in human cells. %tat. Res., 1978, 58, No.1, 115−119.
  119. San Sebastian J.R., Neill J.P.O., Hsie A.W. Inductions of chromosome aberrations, SCEs and specific locus mutations in Chinese hamster ovary cells by 5-bromodeoxyuridine. Cytogenet. and Cell Genet., 1980, 28, No.1−2, 47−54.
  120. Saniesson В., Lindahl-Kiessling K., Mattson A. SCE in В and T lymphocytes. Possible implications for Bloom’s syndrome. Clin. Gen,., 1979, 1j>, N0.2, 133−135.
  121. Schmidt-Prenp U., Maack P., Bartram C.R., Riidiger H.W. Mutagen-induced SCE rate in Bloom syndrome remains unaltered in the presence of Bloom corrective factor. Hum. Genet., 1981, § 8, N0.4, 432−433.
  122. Schneider E.L., Gilman Brian. Sister chromatid exchanges and, aging. III. The effect of donor age on mutagen-inducedsister chromatid exchange in human diploid fibroblasts. Hum. Genet., 1979, 46, No.1, 57−63.
  123. Schonwald A.D., Bartram C.R., Riidiger H.W. Benzpyrene-in-duced SCE in lymphocytes of patients with lung cancer. Hum. Genet., 1977, ii, No.3, 261−264.
  124. Seshadri R.S., Baker E., Leonard P., Sutherland G.R., Morley A.A. SCE in aplastic anaemia. Cancer Genet. Cyto-genet., 1981, No.1, 81−84.
  125. Seshadri R.S., Baker E., Sutherland G.R. SCE analysis in mothers exposed to DNA-damaging agents and their newborn infants. Mutat. Res., 1982, 21, No.2, 139−146.
  126. Shafer D.A. Replication bypass model of SCE and implications for Bloom’s syndrome and Panconi’s anemia. Hum. Genet., 1977, 12, No.2, 177−190.
  127. Shiraishi Y., Pfeeman A.I., Sanberg A.A. Increased SCEs in bone marrow and blood cells from Bloom’s syndrome. Cytogenet. and Cell Genet., 1976, 17., No.4, 162−173.
  128. Shiraishi Y., Sandberg A.A. Effects of caffeine-pretreat-ments on SCE and chromosome aberrations induced by mono-functional- and bifunctional-mitromycin С in Bloom syndrome lymphocytes. Mutat. Res., 1980, ?2, No.2, 265−272.
  129. Snope A.J., Rary J.M. Cell cycle duration and SCE frequency in cultured human lymphocytes. Mutat. Res., 1979, No.4, 345−349.
  130. Sobti R.C., Krishan A., Pfaffenberger C.D. Cytokinetic and cytogenetic effects of some agricultural chemicals on human lymphoid cells in vitro: organophosphates. Mutat. Res., 1982, 102, No.1, 89−102.
  131. Solomon E., Bobrow M. SCEs a sensitive assay of agents damaging human 'chromosomes. Mutat. Res., 1975, ДО, Ho.2, 273−277.
  132. Speit G. Effects of temperature on SCEs. Hum. Genet., 1980,51, No.3, 333−336.
  133. Sperling K., Wegner R.-D., Riehm H., Obe G. Frequency and distribution of SCEs in a case of Fanconi’s anemia. Hum. Genet., 1975, ?2″ Ho.3, 227−230.
  134. Stetka D.G., Wolff S. Sister chromatid exchange as an assay for genetic damage induced by mutagen-carcinogens. I. In vivo test for compounds requiring metabolic activation. Mutat. Res., 1976, Д1, Ho.23, 333−342.
  135. Stoll C., Borgaonkar D.S., Bigel P. SCE in balanced translocation carriers and in patients with unbalanced karyotypes. Hum. Genet., 1977, Л." No.1, 27−32.
  136. Turanitz K., Wottawa A. Sister chromatid exchanges in lymphocytes of smokers. Mutat. REs., 1981, 8?, Ho.6, 455.
  137. Ved Brat S., SCE and cell cycle in fibroblasts of Bloom’s syndrome. Hum. Genet., 1979, 48, Но. Г, 73−79.
  138. Vogel F. Genetic aspects of induced mutation. Hum. Genet., 1978, suppl., Ho.1, 141−147.
  139. Waksvik H., Magnus P., Berg K. Effects of age, sexaid genes on sister chromatid exchange. Clin. Genet., 1981, Ho.6,20, 449−454.
  140. Walker A.P., Dumars K.W. Commonly used pediatric drugs, SCE and the cell cycle. Am. J. Hum.Genet., 1977, 2?, Wo.6, 110A. e
  141. Wksler M.E. The influence of immune function on lifespan. Bull. N.Y. Acad. Med., 1978, Ho.10, 964−969.
  142. Wolff S., Perry P. Differential Giemsa staining of sister chromatids end the study of sister chromatid exchanges without autoradiography. Chromosoma, 1974, No.4, 341 — -353.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!