Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Клеточные и физиологические механизмы инициации боковых корней у кабачка

Диссертация: Клеточные и физиологические механизмы инициации боковых корней у кабачка
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В нашей работе показано, что локальные максимумы клеточного ответа на ауксин в трансгенных корнях кабачка, несущих DR5: gfp-gusA, наблюдались только после завершения первых периклинальных делений клеток перицикла, инициирующих развитие примордия бокового корня. В ходе дальнейшего развития примордия бокового корня происходит вовлечение нескольких внутренних слоев коры. Ответ на ауксин наблюдался… Читать ещё >

Содержание

  • Список сокращений
  • Глава I. Обзор литературы. j
    • 1. Структурные аспекты инициации примордиев боковых корней
      • 1. 1. Стратегии инициации примордиев боковых корней у цветковых растений
      • 1. 2. Планы первых делений у представителей стратегий, различающихся положением зоны инициации боковых корней
      • 1. 3. Факторы, определяющие положение примордия бокового корня по отношению к группам проводящих тканей
      • 1. 4. Участие рецептор-подобных протеин-киназ в определении положения примордия бокового корня относительно окружающих его клеток
      • 1. 5. Факторы, детерминирующие клетки перицикла к инициации примордия бокового корня
    • 2. Роль фитогормонов в инициации и развитии примордия бокового корня
      • 2. 1. Роль ауксина в инициации и развитии примордия бокового корня
      • 2. 2. Роль цитокининов в инициации и развитии примордия бокового корня
      • 2. 3. Взаимодействие фитогормонов при инициации и развитии бокового корня
    • 3. Композитные растения как модель для изучения физиологических и молекулярно-генетических механизмов развития корня
      • 3. 1. Теоретические аспекты агробактериальной трансформации растений
      • 3. 2. Использование метода агробактериальной трансформации штаммами Agrobacterium rhizogenes для фундаментальных исследований и в биотехнологии
      • 3. 3. Технологии трансформации растений штаммами Agrobacterium rhizogenes
      • 3. 4. Агробактериальная трансформация Тыквенных штаммами Agrobacterium rhizogenes
      • 3. 5. Использование промоторов генов первичного ответа на фитогормоны в изучении процессов развития корня

Клеточные и физиологические механизмы инициации боковых корней у кабачка (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

4. Создание генетических конструкций для визуализации ответа на ауксин и.

ЦИТОКИНИНЫ.gj.

4.1. Построение эксперимента по визуализации ответа на ауксин и цитокинины.81.

4.2. Получение генетической конструкции для визуализации ответа на ауксин.83.

4.3. Получение генетической конструкции для визуализации ответа на цитокинины 85.

5. Агробактериальная трансформация растений штаммами Agrobacterium rhizogenes. 86.

5.1. Получение асептического материала.86.

5.2. Трансформация растений Agrobacterium rhizogenes.87.

5.3. Отбор ко-трансформированных корней.88.

5.4. Анализ активности репортерного белка GFP.88.

5.5. Гистохимическое окрашивание на активность [З-глюкоронидазы.88.

6. Методы микроскопии.gp.

6.1. Начальные этапы пробоподготовки. g9.

6.2. Приготовление и анализ препаратов в воске Стидмана.90.

6.3. Приготовление и анализ препаратов в гистологической эпоксидной смоле Technovit7100.93.

6.4. Приготовление и анализ толстых срезов сегментов гипокотиля или кончиков корня.

7. Обработка проростков кабачка экзогенным ауксином или блокатором активного транспорта ауксина.95.

7.1. Постановка эксперимента по обработке проростков кабачка экзогенными агентами.95.

7.2. Получение растительного материала.96.

7.3. Фиксация и обработка материала. 96.

7.4. Оценка индекса инициации боковых корней.97.

8. Статистические методы и компьютерные программы, используемые в работе.97.

Основные выводы.

1. В меристеме родительского корня кабачка (Cucurbita реро L. var. giromontina), в участке, где происходит инициация бокового корня, все клетки коры, эндодермы, перицикла и стелярной паренхимы пролиферируют. В рядах перицикла и эндодермы, клетки которых участвуют в инициации боковых корней, пролиферация продолжается и в выше расположенных участках меристемы.

2. Наиболее ранним признаком инициации боковых корней кабачка являются периклинальные деления в клетках двух соседних слоев перицикла. Вовлечение в формирование примордия клеток эндодермы происходит позже, также периклинальными делениями. Клетки нескольких внутренних слоев коры вовлекаются в формирование примордия за счёт антиклинальных делений.

3. Впервые разработана технология получения композитных растений кабачка, позволяющая визуализировать ответ на ауксин и цитокинины в тканях его корня.

4. Ауксин не участвует на начальных этапах инициации примордия бокового корня кабачка, что подтверждается отсутствием локального повышения клеточного ответа на ауксин, а также отсутствием влияния на этот процесс как повышенных доз экзогенного ауксина, так и блокатора его активного транспорта.

5. Участие ауксина в инициации примордиев боковых корней кабачка начинается только после завершения первых периклинальных делений перицикла, инициирующих формирование примордиев боковых корней. В ходе вовлечения других тканей корня в развитие примордия в них происходит запуск локального ответа на ауксин.

6. Ингибирование полярного транспорта ауксина не оказывает существенного влияния на определение числа и места инициации примордиев боковых корней, но подавляет выход примордиев на поверхность материнского корня кабачка.

7. При повышении концентрации экзогенного ауксина (НУК) до 50 нМ формируются дополнительные серии боковых корней между уже сформированными ранее в акропетальной серии боковыми корнями.

8. Цитокинины не оказывают определяющего воздействия на инициацию и развитие примордиев боковых корней кабачка. В зоне инициации бокового корня отсутствуют максимумы клеточного ответа на цитокинины.

Публикации по теме диссертации.

Статьи:

1. Ilina E.L., Logachov A.A., Laplaze L., Demchenko N.P., Pawlowski К., Demchenko K.N. Composite Cucurbita pepo L. plants with transgenic roots as a tool to study root development. Annals of Botany (Special Issue on Root Biology). 2012. 109: 1−11. doi: 10.1093/aob/MCS 1086.

Тезисы конференций:

2. Ilina E.L., Logachov A.A., Demchenko N.P., Demchenko K.N. Agrobacterium rhizogenes mediated transformation of cucurbitaceous as a tool to study root development. 7ht International Symposium on Structure and Function of roots. Novy Smokovec, Slovakia, September 5−9, 2011, Copycentrum PACI. 2011. 78−79.

3. Demchenko K.N., Ilina E.L., Demchenko N.P., Logachov A.A. Structural and molecular genetic aspects of lateral root initiation and formation in the main root meristem. 7ht International Symposium on Structure and Function of roots. Novy Smokovec, Slovakia, September 5−9, 2011, Copycentrum PACI. 2011. 44−45.

4. Демченко K.H., Ильина E.JI., Демченко Н. П. Пространственная и временная организация функционирования мёристем-специфичных генов в ходе инициации латеральных меристем корней растений. Биологическое разнообразие: Генофонды и генетическое разнообразие. Сборник материалов отчетной конференции. Захаров-Гезехус И.А., Кудрявцев A.M. Москва, ИОГен. 2011. 245−248.

5. Ильина Е. Л., Логачёв А. А., Демченко Н. П., Демченко К. Н. Агробактериальная трансформация тыквенных как подход к изучению физиологических механизмов инициации боковых корней. VII Съезд Общества физиологов растений России «Физиология растений — фундаментальная основа экологии и инновационных биотехнологий» и Международная научная школа «Инновации в биологии для развития биоиндустрии сельскохозяйственной продукции». Материалы докладов. Часть I. Нижний Новгород, Россия. 4−10 июля 2011, Издательство НГУ. 2011. 288−289.

6. Ильина Е. Л., Логачёв А. А., Демченко Н. П., Демченко К. Н. Роль ауксина и цитокининов в инициации боковых корней в апикальной меристеме родительского корня. VII Съезд Общества физиологов растений России «Физиология растенийфундаментальная основа экологии и инновационных биотехнологий» и Международная научная школа «Инновации в биологии для развития биоиндустрии сельскохозяйственной продукции». Материалы докладов. Часть I. Нижний Новгород, Россия. 4−10 июля 2011, Издательство НГУ. 2011. 287−288.

7. Ilina E.L., Demchenko N.P., Demchenko K.N. Agrobacterium rhizogenesmediated transformation of squash (Cucurbita pepo) as a tool to study lateral root development. The International Conference Plant Transformation Technologies II. Vienna, Austria (19−22 February, 2011). 2011. 103.

8. Ильина EJL, Демченко Н. П., Демченко K.H. Трансформация кабачка штаммами Agrobacterium rhizogenes как модель для изучения механизмов инициации боковых корней в апикальной меристеме материнского корня. III Всероссийский симпозиум «Физиология трансгенного растения и проблемы биобезопасности», 18−21 октября 2010. Москва. 2010.51.

9. Ilina E.L., Demchenko K.N. A high-throughput method to study cell proliferation during lateral root initiation in higher plants. International conference «Modern Microscopy techniques in Biology and Medicine» 9−10 November 2009 Saint-Petersburg, Saint-Petersburg University. 2009. 61.

Заключение

.

В процессе проведённых исследований получены новые данные о малоизученных структурных и физиологических основах инициации боковых корней в апикальной меристеме родительского корня кабачка (Cucurbita реро L. var. giromontina). Впервые показано, что первые деления, приводящие к инициации примордия бокового корня в апикальной части меристемы родительского корня, являются периклинальными и происходят во внешнем и внутреннем рядах перицикла (на расстоянии 350−500 мкм от инициальных клеток ряда). Установлено, что в зоне первых периклинальных делений, инициирующих развитие примордия бокового корня, синтез ДНК и деление клеток происходят не только в перицикле, но и в рядах клеток стелярной паренхимы, эндодермы и коры.

Для большинства видов цветковых растений ауксин и цитокинины являются главными регуляторами инициации примордия бокового корня. Для изучения роли этих фитогормонов в инициации и развитии боковых корней у кабачка, впервые была разработана методика получения композитных растений с надземной частью дикого типа и трансгенными корнями. Распределения клеточного ответа на ауксин и цитокинины изучены по флуоресценции репортерного белка GFP или гистохимической активности ß—глюкуронидазы под контролем синтетического ауксин-чувствительного промотора DR5 или промотора гена первичного ответа на цитокинин ARR6.

Анализ распределения ответа на цитокинины в трансгенных корнях кабачка, несущих ARR6: gfp-gusA, не выявил существования локальных максимумов клеточного ответа на этот фитогормон в зоне инициации примордиев боковых корней. На этом основании мы полагаем, что цитокинины не принимают непосредственного участия в инициации примордия бокового корня у кабачка.

В нашей работе показано, что локальные максимумы клеточного ответа на ауксин в трансгенных корнях кабачка, несущих DR5: gfp-gusA, наблюдались только после завершения первых периклинальных делений клеток перицикла, инициирующих развитие примордия бокового корня. В ходе дальнейшего развития примордия бокового корня происходит вовлечение нескольких внутренних слоев коры. Ответ на ауксин наблюдался во всех клетках примордия и в стелярной паренхиме напротив него. В процессе дальнейшего развития примордия бокового корня максимум ответа на ауксин смещался в апикальную часть примордия, а также обнаруживался в окружающих его клетках коры родительского корня.

Установлено, что воздействие экзогенного синтетического ауксина (нафтилуксусной кислоты) и блокатора активного транспорта ауксина (1-нафтоксиуксусной кислоты) не приводило к изменению индекса инициации боковых корней (ОиЬгоузку еГ а/., 2009), а также среднего числа формируемых боковых корней. Отсутствие различий индекса инициации боковых корней у контрольных растений и у растений, подвергнутых действию экзогенного ауксина или подавлению активного транспорта ауксина, подтверждает неизменность паттерна инициации боковых корней при изменении активного транспорта и концентрации ауксина в тканях материнского корня.

Совокупность полученных нами данных позволяет заключить, что начальный этап инициации примордия бокового корня у кабачка не зависит от локального повышения уровня ауксина (или ответа на него) в клетках, вовлекаемых в этот процесс. Клеточный ответ на ауксин присутствует во всех клетках, вовлечённых в формирование тела примордия бокового корня, но не наблюдается до момента завершения первых периклинальных делений, инициирующих его развитие. Вероятно, у кабачка ауксин необходим не для инициации примордия бокового корня, а только для прохождения более поздних стадий его развития. Локальный максимум ответа на ауксин в апикальной части развивающегося примордия бокового корня создаёт условия для становления центробежного осевого вектора роста бокового корня.

Таким образом, в ходе эволюции высших растений также был сформирован иной тип инициации бокового корня — в меристеме родительского корня с отсутствием зависимости от локальных максимумов ауксина. Полученные данные вносят новые представления о физиологических механизмах инициации примордия бокового корня у представителей альтернативной стратегии ветвления корня с инициацией примордиев боковых корней в апикальной меристеме родительского корня.

Показать весь текст

Список литературы

  1. НС. 1957. Об эволюции корней у растений. 2. Эволюция корнерождения. В: Бюлл. МОИП, отд. биол.
  2. НС. 1964. Эволюция первичных структур в корнях растений. Калуга: Минпрос РСФСР, Калужский Государственный пединститут.
  3. Высоцкая ЛБ, Ахиярова ГР, Веселое СЮ, Кудоярова ГР. 2011. Содержаниецитокининов в клетках разных зон корней пшеницы. Цитология 53: 884−890.
  4. Высоцкая ЛБ, Веселов СЮ, Веселов ДС, Филиппенко ВН, Иванов ЕА, Иванов ИИ, Кудоярова ГР. 2007а. Иммуногистохимическая локализация и количественное определение ИУК при исследованиях регуляции роста корней. Физиология Растений 54: 926−931.
  5. Высоцкая ЛБ, Черкозьянова AB, Веселов СЮ, Кудоярова ГР. 20 076. Роль ауксинов и цитокининов в формировании боковых корней у растений Физиология Растений 54: 455−460.
  6. ВА. 1964. Заложение и формирование боковых корешков у некоторых растений семейства тыквенных. Ботанический Журнал 49: 1482−1485.
  7. Данилова МФ, Сердюк ЕМ. 1982. Закладка боковых корней у Hordeum vulgare /Роасеае/ (данные электронной микроскопии). Ботанический Журнал 67: 140−145.
  8. Демченко КН, Демченко НИ. 2002а. Влияние изменения гормонального баланса наформирование боковых корней у Triticum. В Труды II Международной конференции по анатомии и морфологии растений, С. 227. С.-Петербург.
  9. Демченко КН, Демченко НП, Данилова МФ. 2001. Инициация и развитие примордиев боковых корней у проростков Triticum aestivum L. (Роасеае) и Cucurbita pepo L. (Cucurbitaceae). Ботанический Журнал 86: 14−30.
  10. НП. 1990. Зависимость последовательности ингибирования переходов клеток перицикла и ксилемы к синтезу ДНК и делению от их локализации в корне пшеницы. Цитология 32: 209−219.
  11. Демченко НП, Демченко КН. 2001. Возобновление синтеза ДНК и деления клеток вкорнях пшеницы в связи с инициацией боковых корней. Физиология Растений 48: 869−878.
  12. Демченко НП, Демченко КН. 20 026. Инициация боковых корней у Triticum aestivum L.: Gl фаза и способность клетки к возобновлению пролиферации. В: Труды II Международной конференции по анатомии и морфологии растений, С. 227−228. С.Петербург.
  13. ИГ. 1986. Происхождение тканей зародышевого бокового корня огурца, межтканевые взаимодействия и позиционный контроль в его развитии. Онтогенез 17: 176−189.
  14. ИГ. 1987. Латентная зародышевая корневая система огурца. Ботанический Журнал72: 171−176.
  15. Дубровский ИГ, Иванов ВБ. 1984. Некоторые закономерности закладки боковых корней в корнях кукурузы при прорастании. Физиология и Биохимия Культурных Растений 16: 279−284.
  16. ВБ. 1974. Клеточные основы роста растений. Москва: Наука.
  17. ВБ. 1987. Пролиферация клеток в растениях. В: Итоги науки и техники. ВИНИТИ, Цитология.
  18. ФГ. 1974. О путях эволюции морфологических и анатомических признаков в семействе тыквенных. Ташкент: «Фан».
  19. Лутова Л А. 2000. Взаимодействие растений с агробактериями: концепция генетической колонизации. В: Инге-Вечтомов СГ Ред. Генетика развития растений. Санкт-Петербург: Наука.
  20. Полевой ВВ, Полевой АВ. 1992. Эндогенные фитогормоны этиолированных проростков кукурузы Физиология растений 39: 1165−1174.
  21. ЕМ. 1983. Дифференциация клеток стелярной паренхимы при закладке боковых корней у Hordeum vulgare (Роасеае). Ботанический Журнал 68: 218−223.
  22. Abadia-Fenoll F, Lloret PG, Vidal MR, Casero PJ. 1982. Pattern distribution of lateral root primordia in Allium сера. Phyton 42: 175−177.
  23. Aloni R, Langhans M, Aloni E, Dreieicher E, Ullrich CI. 2005. Root-synthesized cytokinin in Arabidopsis is distributed in the shoot by the transpiration stream. Journal of Experimental Botany 56: 1535−1544.
  24. Aoyama T, Oka A. 2003. Cytokinin signal transduction in plant cells. Journal of Plant Research 116:221−231.
  25. Bai-Ling L, Raghavan V. 1991. Lateral root initiation in Marsilea quadrifolia. I. Origin and histogenesis of lateral roots. Canadian Journal of Botany 69: 123−135.
  26. Bais HP, Loyola-Vargas VM, Flores HE, Vivanco JM. 2001. Invited review: Root-specificmetabolism: The biology and biochemistry of underground organs. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant 37: 730−741.
  27. Barlow PW, Adam JS. 1988. The position and growth of lateral roots on cultured root axes of tomato, Lycopersicon esculentum (Solanaceae). Plant Systematics and Evolution 158: 141−154.
  28. Beeckman T, Burssens S, Inze D. 2001. The peri-cell-cycle in Arabidopsis. J.Exp.Bot. 52: 403 411.
  29. Beemster GTS, Fiorani F, Inze D. 2003. Cell cycle: the key to plant growth control? Trends in Plant Science 8: 154−158.
  30. Bell JK, McCully ME. 1970. A histological study of lateral root initiation in Zea mays. Protoplasma 70: 179−205.
  31. Benfey PN, Chua N-H. 1990. The cauliflower mosaic virus 35S promoter: combinatorial regulation of transcription in plants. Science 250: 959−966.
  32. Benkova E, Michniewicz M, Sauer M, Teichmann T, Seifertova D, Jurgens G, Friml J. 2003. Local, efflux-dependent auxin gradients as a common module for plant organ formation. Cell 115: 591−602.
  33. Bennett MJ, Marchant A, Green HG, May ST, Ward SP, Millner PA, Walker AR, Schulz B, Feldmann KA. 1996. Arabidopsis AUX1 gene: a permease-like regulator of root gravitropism. Science 273: 948−950.
  34. Blakely LM, Durham M, Evans ТА, Blakely RM. 1982. Experimental studies on lateral root formation in radish seedling roots. 1. General methods, developmental stages, and spontaneous formation of laterals. Botanical Gazette 143: 341−352.
  35. Blakeslee JJ, Peer WA, Murphy AS. 2005. Auxin transport. Current Opinion in Plant Biology 8: 494−500.
  36. Blilou I, Xu J, Wildwater M, Willemsen V, Paponov I, Friml J, Heidstra R, Aida M, Palme K, Scheres B. 2005. The PIN auxin efflux facilitator network controls growth and patterning in Arabidopsis roots. Nature 433: 39−44.
  37. Boerjan W, Cervera MT, Delarue M, Beeckman T, Dewitte W, Bellini C, Caboche M, Onckelen HV, Montagu MV, Inze D. 1995. superroot, a Recessive mutation in Arabidopsis, confers auxin overproduction. The Plant Cell Online 7: 1405−1419.
  38. Bouillenne R, Went FW. 1933. Recherches experimentales sur la neoformation des racines dans les plantules et les boutures des plantes superieures. Annales du Jardin botanique de Buitenzorg 43: 25−202.
  39. Butenko MA, Vie AK, Brembu T, Aalen RB, Bones AM. 2009. Plant peptides in signalling: looking for new partners. Trends in Plant Science 14: 255−263.
  40. Casero PJ, Casimiro I, Lloret PG. 1995. Lateral root initiation by asymmetrical transversedivisions of pericycle cells in four plant species Raphanus sativus, Helianthus annuus, Zea mays, and Daucus carota. Protoplasma 188: 49−58.
  41. Casero PJ, Casimiro I, Lloret PG. 1996. Pericycle proliferation pattern during the lateral root initiation in adventitious roots of Allium cepa. Protoplasma 191: 136−147.
  42. Casero PJ, Casimiro I, Rodriguez-Gallardo L, Martin-Partigo G, Lloret PG. 1993. Lateral root initiation by asymmetrical transverse divisions of pericycle cells in adventitious roots of Allium cepa. Protoplasma 176: 138−144.
  43. Casimiro I, Beeckman T, Graham N, Bhalerao R, Zhang H, Casero P, Sandberg G, Bennett MJ. 2003. Dissecting Arabidopsis lateral root development
  44. Trends in Plant Science 8: 165 -171.
  45. Casimiro I, Marchant A, Bhalerao RP, Beeckman T, Dhooge S, Swarup R, Graham N, Inze D, Sandberg G, Casero PJ, Bennett M. 2001. Auxin transport promotes Arabidopsis lateral root initiation. Plant Cell 13: 843−852.
  46. Celenza JL, Grisafi PL, Fink GR. 1995. A pathway for lateral root formatuion m Arabidopsis thaliana. Gene Development 9: 2131−2142.
  47. Chabaud M, Boisson-Dernier A, Zhang J, Taylor CG, Yu O, Barker DG. 2006.
  48. Agrobacterium rhizogenes-mediated root transformation. In Medicago truncatula handbook.
  49. WA. 1991. Lateral root initiation. In Plant roots: the hidden half, pp. 103−128. Edited by Waisel Y, Eshel A, Kafkafi U. New York: Marcel Dekker.
  50. PP. 1990. Transformation of Cucumis sativus tissue by Agrobacterium tumefaciens and the regeneration of transformed plants. Plant Cell Reports 9: 245−248.
  51. Cheng JC, Seeley KA, Sung ZR. 1995. RML1 and RML2, Arabidopsis genes required for cell proliferation at the root tip. Plant Physiology 107: 365−376.
  52. Cheng Y, Dai X, Zhao Y. 2006. Auxin biosynthesis by the YUCCA flavin monooxygenases controls the formation of floral organs and vascular tissues in Arabidopsis. Genes Development 20: 1790−1799.
  53. Christey M, Braun R. 2005. Production of hairy root cultures and transgenic plants by
  54. Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation. Methods in Molecular Biology 286: 47−60.
  55. MC. 2001. Invited review: Use of Ri-mediated transformation for production of transgenic plants. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant 37: 687−700.
  56. SE. 2001. Cell signaling at the shoot meristem Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 2: 276−284.
  57. Clowes FAL. 1961. Origin of root apices. In: James WO ed. Apical meristems. Oxford: Blackwell.
  58. Clowes FAL. 1982. Changes in cell population kinetics in an open meristem during root growth. New Phytologist 91: 741−748.
  59. Clowes FAL. 1985. Origin of epidermis and development of root primordia in Pistia, Hydrocharis and Eichhornia. Annals of Botany 55: 849−857.
  60. Collier R, Fuchs B, Walter N, Kevin Lutke W, Taylor CG. 2005. Ex vitro composite plants: an inexpensive, rapid method for root biology. Plant Journal 43: 449−457.
  61. Correa-Aragunde N, Graziano M, Lamattina L. 2004. Nitric oxide plays a central role in determining lateral root development in tomato. Planta 218: 900−905.
  62. Coudert Y, Perin C, Courtois B, Khong NG, Gantet P. 2010. Genetic control of root development in rice, the model cereal. Trends in Plant Science 15: 219−226.
  63. Curtis MD, Grossnikiaus U. 2003. Gateway cloning vector set for high-throughput functional analysis of genes in planta. Plant Physiology 133: 462−469.
  64. Agrobacterium tumefaciens: a natural tool for plant transformation. Electronic Journal of Biotechnology 1: 1−16.
  65. De Smet I. 2012. Lateral root initiation: one step at a time. New Phytologist 193: 867−873.
  66. De Smet I, Jurgens G. 2007. Patterning the axis in plants auxin in control. Current Opinion in Genetics & Development 17: 337−343.
  67. De Smet I, Lau S, Vo? U, Vanneste S, Benjamins R, Rademacher EH, Schlereth A, De
  68. De Smet I, Signora L, Beeckman T, Inze D, Foyer CH, Zhang H. 2003. An abscisic acid-sensitive checkpoint in lateral root development of Arabidopsis. Plant Journal 33: 543 555.
  69. De Smet I, Vanneste S, Inze D, Beeckman T. 2006. Lateral root initiation or the birth of a new meristem. Plant Molecular Biology 60: 871−887.
  70. De Smet I, Vassileva V, De Rybel B, Levesque MP, Grunewald W, Van Damme D, Van
  71. De Smet I, Voss U, Jurgens G, Beeckman T. 2009. Receptor-like kinases shape the plant. Nature Cell Biology 11: 1166−1173.
  72. Dean G, Casson S, Lindsey K. 2004. KNAT6 gene of Arabidopsis is expressed in roots and is required for correct lateral root formation. Plant Molecular Biology 54: 71−84.
  73. Delarge 1.1944. Etude de la croissance et de la ramification des racines in vitro. MWm. Soc. Roy. Sei. Li’ege 2e Se’r. 1−221.
  74. Dewitte W, Murray JAH. 2003. The plant cell cycle. Annual Review of Plant Biology 54: 235 264.
  75. DiDonato RJ, Arbuckle E, Buker S, Sheets J, Tobar J, Totong R, Grisafi PL, Fink GR, Celenza JL. 2010. Arabidopsis ALF4 encodes a nuclear-localized protein required for lateral root formation. Plant Cell 22: 2618−2629.
  76. Ditengou FA, Teale WD, Kochersperger P, Flittner KA, Kneuper I, van der Graaff E,
  77. Nziengui H, Pinosa F, Li X, Nitschke R, Laux T, Palme K. 2008. Mechanical induction of lateral root initiation in Arabidopsis thaliana. Proceedings of the National Academy of Sciences 105: 18 818−18 823.
  78. Dubrovsky JG, Doerner PW, Colon-Carmona A, Rost TL. 2000. Pericycle cell proliferation and lateral root initiation in Arabidopsis. Plant Physiology 124: 1648−1657.
  79. Dubrovsky JG, Forde BG. 2012. Quantitative analysis of lateral root development: pitfalls and how to avoid them. The Plant Cell Online 24: 4−14.
  80. Dubrovsky JG, Napsucialy-Mendivil S, Duclercq J, Cheng Y, Shishkova S, Ivanchenko
  81. MG, FrimI J, Murphy AS, Benkova E. 2011. Auxin minimum defines a developmental window for lateral root initiation. New Phytologist: no-no.
  82. Dubrovsky JG, Rost TL, Colon-Carmona A, Doerner P. 2001. Early primordiummorphogenesis during lateral root initiation in Arabidopsis thaliana. Planta 214: 30−36.
  83. Dubrovsky JG, Soukup A, Napsucialy-Mendivil S, Jeknic Z, Ivanchenko MG. 2009. Thelateral root initiation index: an integrative measure of primordium formation. Annals of Botany 103: 807−817.
  84. K. 1940. Developmental anatomy of the fleshy storage organ of Daucus carota. Hilgardia 13:175−226.
  85. K. 1965. Plant anatomy. 2 edn. New York: Wiley.
  86. Felten J, Legue V, Ditengou FA. 2010. Lateral root stimulation in the early interaction between Arabidopsis thaliana and the ectomycorrhizal fungus Laccaria bicolor: is fungal auxin the trigger? Plant signaling and behavior 5: 864−867.
  87. Ferreira FJ, Kieber JJ. 2005. Cytokinin signaling. Current Opinion in Plant Biology 8: 518 525.
  88. Foard DE, Haber AH, Fishman TN. 1965. Initiation of lateral primordia without completion of mitosis and without cytokinesis in uniseriate pericycle. American Journal of Botany 52: 580−590.
  89. FrimI J. 2003. Auxin transport shaping the plant. Current Opinion in Plant Biology 6:7−12.
  90. FrimI J, Benkova E, Blilou I, Wisniewska J, Hamann T, Ljung K, Woody S, Sandberg G, Scheres B, Jurgens G, Palme K. 2002a. AtPIN4 mediates sink-driven auxin gradients and root patterning in Arabidopsis. Cell 108: 661−673.
  91. FrimI J, Wisniewska J, Benkova E, Mendgen K, Palme K. 2002b. Lateral relocation of auxin efflux regulator PIN3 mediates tropism in Arabidopsis. Nature 415: 806−809.
  92. Fukaki H, Tameda S, Masuda H, Tasaka M. 2002. Lateral root formation is blocked by a gain-of-function mutation in the SOLITARY-ROOT/1AA14 gene of Arabidopsis. Plant Journal 29:153−168.
  93. Fukaki H, Tasaka M. 2009. Hormone interactions during lateral root formation. Plant Molecular Biology 69: 437−449.
  94. Galweiler L, Guan C, Muller A, Wisman E, Mendgen K, Yephremov A, Palme K. 1998.
  95. Regulation of polar auxin transport by AtPINl in Arabidopsis vascular tissue. Science 282: 2226−2230.
  96. SB. 1990. Crown gall disease and hairy root disease a sledgehammer and a tackhammer. Plant Physiology 92: 281−285.
  97. Gonzalez-Rizzo S, Crespi M, Frugier F. 2006. The Medicago truncatula CRE1 cytokinin receptor regulates lateral root development and early symbiotic interaction with Sinorhizobium meliloti. The Plant Cell Online 18: 2680−2693.
  98. Gunning BES. 1982. The root of the water fern Azolla: cellular basis of development andmultiple roles for cortical mictotubules. In 40th Symposium of Society for Developmental Biology, pp. 379−421. Edited by Subtelny S, Green PB. London: Academic Press.
  99. Gutierrez-Gonzalvez M, Stockert J, Ferrer J, Tato A. 1984. Ruthenium red staining of polyanion containing structures in sections from epoxy-resin embedded tissues. Acta Histochemica 74: 115−120.
  100. Hamill JD, Lidgett, A.T. 1997. Hairy root cultures opportunities and key protocols for studies in metabolic engineering. In: Doran PM ed. Hairy roots: Culture and Applications. Amsterdam: Harwood Academic.
  101. Haworth KE, Kotecha S, Mohun TJ, Latinkic BV. 2008. GAT A4 and GATA5 are essential for heart and liver development in Xenopus embryos. BMC Developmental Biology 8.
  102. Himanen K, Boucheron E, Vanneste S, de Almeida Engler J, Inze D, Beeckman T. 2002.
  103. Auxin-mediated cell cycle activation during early lateral root initiation. Plant Cell 14: 2339−2351.
  104. Hoagland DR, Arnon DT. 1938. The water-culture method for growing plants without soil. In. California Agriculture Experiment Station Circular 347. Berkeley, USA: University of California.
  105. Hobbie L, Estelle M. 1995. The axr4 auxin-resistant mutants of Arabidopsis thaliana define a gene important for root gravitropism and lateral root initiation. Plant Journal 7: 211−220.
  106. Hobbie L, McGovern M, Hurwitz LR, Pierro A, Liu NY, Bandyopadhyay A, Estelle M.2000. The axr6 mutants of Arabidopsis thaliana define a gene involved in auxin response and early development. Development 127: 23−32.
  107. Hornung E, Krueger C, Pernstich C, Gipmans M, Porzel A, Feussner 1.2005. Production of (lOE, 12Z)-conjugated linoleic acid in yeast and tobacco seeds. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) Molecular and Cell Biology of Lipids 1738: 105−114.
  108. Karas I, McCully ME. 1973. Further studies of the histology of lateral root development in Zea mays. Protoplasma 77: 243−269.
  109. Karimi M, Inze D, Depicker A. 2002. GATEWAY™ vectors for Agrobacterium-mediated plant transformation. Trends in Plant Science 7: 193−195.
  110. Katavic V, Jelaska S, Bakran-Petricioli T, David C. 1991. Host-tissue differences intransformation of pumpkin (Cucurbita pepo L.) by Agrobacterium rhizogenes. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 24: 35−42.
  111. Kelly MO, Bradford KJ. 1986. Insensitivity of the diageotropica tomato mutant to auxin. Plant Physiology 82: 713−717.
  112. Kereszt A, Li D, Indrasumunar A, Nguyen CDT, Nontachaiyapoom S, Kinkema M,
  113. PM. 2007. Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation of soybean to study root biology. Nature Protocols 2: 948−952.
  114. Kifle S, Shao M, Jung C, Cai D. 1999. An improved transformation protocol for studying gene expression in hairy roots of sugar beet (Beta vulgaris L.). Plant Cell Reports 18: 514−519.
  115. Klee HJ, Horsch RB, Hinchee MA, Hein MB, Hoffmann NL. 1987. The effects ofoverproduction of two Agrobacterium tumefaciens T-DNA auxin biosynthetic gene products in transgenic petunia plants. Genes and development 1: 86−96.
  116. Kumagai H, Kouchi H. 2003. Gene silencing by expression of hairpin RNA in Lotus japonicus roots and root nodules. Molecular Plant-Microbe Interactions 16: 663−668.1.nkova M, Smith RS, Pesek B, Kubes M, Zazimalova E, Petrasek J, Hoyerova K. 2010.
  117. J, Mo XR, Wang JR, Chen NN, Fan H, Dai CY, Wu P. 2009. BREVIS RADIX is involved in cytokinin-mediated inhibition of lateral root initiation in Arabidopsis. Planta 229: 593 603.
  118. X-Q, Stahl R, Brown GG. 1995. Rapid micropreps and minipreps of Ti-plasmids and binary vectors from Agrobacterium tumefaciens. Transgenic Research 4: 349−351.
  119. Malamy JE, Benfey PN. 1997. Lateral root formation in Arabidopsis thaliana. Journal of Plant Physiology 114: 72.
  120. Mallory TE, Chiang S-H, Cutter EG, Gifford EM. 1970. Sequence and pattern of root formation in five selected species. American Journal of Botany 57: 800−809.
  121. McCully ME. 1975. The development of lateral roots. In: Torrey JG, Clarkson DT eds. The development and function of roots, Third Cabot Symposium. London, New York, San Francisco: Acad. Press.
  122. Mironova V, Omelyanchuk N, Yosiphon G, Fadeev S, Kolchanov N, Mjolsness E, 1. khoshvai V. 2010. A plausible mechanism for auxin patterning along the developing root. BMC Systems Biology 4: 98.
  123. Miyawaki K, Matsumoto-Kitano M, Kakimoto T. 2004. Expression of cytokinin biosynthetic isopentenyltransferase genes in Arabidospis: tissue specificity and regulation by auxin, cytokinin, and nitrate. The Plant Journal 37: 128−138.
  124. Moore L, Warren G, Strobel G. 1979. Involvement of a plasmid in the hairy root disease of plants caused by Agrobacterium rhizogenes. Plasmid 2: 617−626.
  125. Moreno-Risueno MA, Van Norman JM, Moreno A, Zhang J, Ahnert SE, Benfey PN. 2010. Oscillating Gene Expression Determines Competence for Periodic Arabidopsis Root Branching. Science 329: 1306−1311.
  126. Morris DA, Robinson JS. 1998. Targeting of auxin carriers to the plasma membrane: differential effects of brefeldin A on the traffic of auxin uptake and efflux carriers. Planta 205: 606−612.
  127. J. 1988. Establishment of new axenic hairy root lines by inoculation with Agrobacterium rhizogenes. Plant Cell Reports 7: 9−12.
  128. J. 1997. Mycorhizal interactions and the effects of fungicides, nematacides andherbicides on hairy root cultures In: Doran PM ed. Hairy roots Culture and Applications Amsterdam: Harwood Academic.
  129. Muller B, Sheen J. 2008. Cytokinin and auxin interaction in root stem-cell specification during early embryogenesis. Nature 453: 1094−1097.
  130. Muller B, Sheen J. 2007. Adnances in cytokinin signalling. Science 318: 68−69.
  131. Murashige T, Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum 15: 473−497.
  132. Murphy AS, Hoogner KR, Peer WA, Taiz L. 2002. Identification, purification, and molecular cloning of N-l-naphthylphthalmic acid-binding plasma membrane-associated aminopeptidases from Arabidopsis. Plant Physiology 128: 935−950.
  133. Negi S, Ivanchenko MG, Muday GK. 2008. Ethylene regulates lateral root formation and auxin transport in Arabidopsis thaliana. The Plant Journal 55: 175−187.
  134. Nieuwland J, Maughan S, Dewitte W, Scofield S, Sanz L, Murray J AH. 2009. The D-type cyclin CYCD4−1 modulates lateral root density in Arabidopsis by affecting the basal meristem region. Proceedings of the National Academy of Sciences 106: 22 528−22 533.
  135. O’Dell DH, Foard DE. 1969. Presence of lateral root primordia in the radicle of buckwheat embryos. Bulletin of the Torrey Botanical Club 96: 1−3.
  136. Oka A. 2003. New insights into cytokinins. Journal of Plant Research 116: 217−220.
  137. Oka A, Sakai H, Iwakoshi S. 2002. His-Asp phosphorelay signal transduction in higher plants: receptors and response regulators for cytokinin signaling in Arabidopsis thaliana. Genes and Genetic Systems 77: 383−389.
  138. Okushima Y, Fukaki H, Onoda M, Theologis A, Tasaka M. 2007. ARF7 and ARF19 regulate lateral root formation via direct activation of LBD/ASL genes in Arabidopsis. Plant Cell 19: 118−130.
  139. Okushima Y, Inamoto H, Umeda M. 2011. A high concentration of nitrate causes temporalinhibition of lateral root growth by suppressing cell proliferation. Plant Biotechnology 28: 413−416.
  140. M. 1976. Autoradiographic and ultrastructural study of Cucurbita pepo root cells during their growth and differentiation. Histochemistry 49: 157−175.
  141. Op den Camp R, De Mita S, Lillo A, Cao Q, Limpens E, Bisseling T, Geurts R. 2011. A phylogenetic strategy based on a legume-specific whole genome duplication yields symbiotic cytokinin type-A response regulators. Plant Physiology 157: 2013−2022.
  142. Overvoorde P, Fukaki H, Beeckman T. 2010. Auxin control of root development. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology 2.
  143. Paciorek T, Zazimalova E, Ruthardt N, Petrasek J, Stierhof Y-D, Kleine-Vehn J, Morris DA, Emans N, Jiirgens G, Geldner N, Friml J. 2005. Auxin inhibits endocytosis and promotes its own efflux from cells. Nature 435: 1251−1256.
  144. Parry G, Delbarre A, Marchant A, Swarup R, Napier R, Perrot-Rechenmann C, Bennett
  145. M. 2001. Novel auxin transport inhibitors phenocopy the auxin influx carrier mutation auxl. Plant Journal 25: 399−406.
  146. Pelosi A, Lee MCS, Chandler SF, Hamill JD. 1995. Hormonal control of root primordiadifferentiation and root formation in cultured explants of Eucalyptus globulus seedlings. Functional Plant Biology 22: 409−415.
  147. Peret B, De Rybel B, Casimiro I, Benkova E, Swarup R, Laplaze L, Beeckman T, Bennett MJ. 2009. Arabidopsis lateral root development: an emerging story. Trends in Plant Science 14: 399−408.
  148. Peret B, Larrieu A, Bennett MJ. 2009. Lateral root emergence: a difficult birth. Journal of Experimental Botany 60: 3637−3643.
  149. Petit A, Stougaard J, Kuhle A, Marcker KA, Tempe J. 1987. Transformation and regeneration of the legume Lotus corniculatus a system for molecular studies of symbiotic nitrogen-fixation. Molecular & General Genetics 207: 245−250.
  150. Quandt HJ, Puhler A, Broer 1.1993. Transgenic root-nodules of Vicia hirsuta a fast and efficient system for the study of gene expression in indeterminate-type nodules. Molecular Plant-Microbe Interactions 6: 699−706.
  151. Quint M, Gray WM. 2006. Auxin signaling. Current Opinion in Plant Biology 9: 448−453.
  152. Rademacher EH, Moller B, Lokerse AS, Llavata-Peris CI, van den Berg W, Weijers D.2011. A cellular expression map of the Arabidopsis AUXIN RESPONSE FACTOR gene family. The Plant Journal: no-no.
  153. Reed RC, Brady SR, Muday GK. 1998. Inhibition of auxin movement from the shoot into the root inhibits lateral root development in Arabidopsis. Plant Physiology 118: 1369−1378.
  154. Riefler M, Novak O, Strnad M, Schmulling T. 2006. Arabidopsis cytokinin receptor mutants reveal functions in shoot growth, leaf senescence, seed size, germination, root development, and cytokinin metabolism. Plant Cell 18: 40−54.
  155. Riou-Khamlichi C, Huntley R, Jacqmard A, Murray JA. 1999. Cytokinin activation of Arabidopsis cell division through a D-type cyclin. Science 283: 1541−1544.
  156. Rogg LE, Lasswell J, Bartel B. 2001. A gain-of-function mutation in IAA28 suppresses lateral root development. Plant Cell 13: 465−480.
  157. Ruegger M, Dewey E, Gray WM, Hobbie L, Turner J, Estelle M. 1998. The TIR1 protein of Arabidopsis functions in auxin response and is related to human SKP2 and yeast grrlp. Genes Development 12: 198−207.
  158. Sabatini S, Beis D, Wolkenfelt H, Murfett J, Guilfoyle T, Malamy J, Benfey P, Leyser O, Bechtold N, Weisbeek P, Scheres B. 1999. An auxin-dependent distal organizer of pattern and polarity in the Arabidopsis root. Cell 99: 463−472.
  159. Salic A, Mitchison TJ. 2008. A chemical method for fast and sensitive detection of DNA synthesis in vivo. Proceedings of the National Academy of Sciences 105: 2415−2420.
  160. Sanita di Toppi L, Pecchioni N, Durante M. 1997. Cucurbita pepo L. can be transformed by Agrobacterium rhizogenes. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 51: 89−93.
  161. Sarkar AK, Luijten M, Miyashima S, Lenhard M, Hashimoto T, Nakajima K, Scheres B,
  162. Heidstra R, Laux T. 2007. Conserved factors regulate signalling in Arabidopsis thaliana shoot and root stem cell organizers. Nature 446: 811−814.
  163. Sawada H, Ieki H, Matsuda 1.1995. PCR detection of Ti and Ri plasmids fromphytopathogenic Agrobacterium strains. Applied and Environmental Microbiology 61: 828−831.
  164. Scofield S, Murray JAH. 2006. KNOX gene function in plant stem cell niches. Plant Molecular Biology 60: 929−946.
  165. JL. 1973. Developmental anatomy in roots of Ipomoea purpurea. 2. Initiation and development of secondary roots. American Journal of Botany 60: 607−618.
  166. Shanks JV, Morgan J. 1999. Plant 'hairy root' culture. Current Opinion in Biotechnology 10: 151−155.
  167. Shen WH, Petit A, Guern J, Tempe J. 1998. Hairy roots are more sensitive to auxin thannormal roots. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 85: 3417−3421.
  168. Sheres B, McKhann HI, Van den Berg C. 1996. Roots redefined: anatomical and genetic analysis of root development. Plant Physiology 111: 959−964.
  169. Shishova M, Lindberg S. 2004. Auxin induces an increase of Ca2+ concentration in the cytosol of wheat leaf protoplasts. Journal of Plant Physiology 161: 937−945.
  170. Shiu SH, Bleecker AB. 2001. Receptor-like kinases from Arabidopsis form a monophyletic gene family related to animal receptor kinases. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 98: 10 763−10 768.
  171. Skoog F, Miller CO. 1957. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissues cultured in vitro. Symp. Soc. Exp. Biol. 54: 118−130.
  172. Smarelli J, Waiters MT, Diba LH. 1986. Response of various cucurbits to infection by plasmid-harboring strains of Agrobacterium. Plant Physiology 82: 622−624.
  173. Sonti RV, Chiurazzi M, Wong D, Davies CS, Harlow GR, Mount DW, Signer ER. 1995. Arabidopsis mutants deficient in T-DNA integration. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 92: 11 786−11 790.
  174. Sreevidya VS, Hernandez-Oane RJ, Gyaneshwar P, Lara-Flores M, Ladha JK, Reddy PM. 2010. Changes in auxin distribution patterns during lateral root development in rice. Plant Science 178: 531−538.
  175. HA. 2000. Crown gall disease and Agrobacterium tumefaciens: a study of the history, present knowledge, missing information, and impact on molecular genetics. Botanical Review 66: 99−118.
  176. Stahl Y, Wink RH, Ingram GC, Simon R. 2009. A signaling module controlling the stem cell niche in Arabidopsis root meristems. Current Biology 19: 909−914.
  177. HF. 1957. Polyester wax: a new ribboning embedding medium for histology. Nature 179: 1345−1345.
  178. Sutherland J, McCully ME. 1976. A note on the structural changes in cells of pericycle cellsinitiating lateral root meristems in Zea mays. Canadian Journal of Botany 54: 2083−2087.
  179. Swarup K, Benkova E, Swarup R, Casimiro I, Peret B, Yang Y, Parry G, Nielsen E, De
  180. Swarup R, Benett M. 2003. Auxin Transport: The Fountain of Life in Plants? Developmental Cell 5: 824 826.
  181. Swarup R, Friml J, Marchant A, Ljung K, Sandberg G, Palme K, Bennett M. 2001.1.calization of the auxin permease AUX1 suggests two functionally distinct hormone transport pathways operate in the Arabidopsis root apex. Genes Development 15: 26 482 653.
  182. Tan X, Calderon-Villalobos LIA, Sharon M, Zheng C, Robinson CV, Estelle M, Zheng N.2007. Mechanism of auxin perception by the TIR1 ubiquitin ligase. Nature 446: 640−645.
  183. KV. 1936. Auxins and the growth of roots. American Journal of Botany 23: 561−569.
  184. Tian Q, Reed JW. 1999. Control of auxin-regulated root development by the Arabidopsis thaliana SHY2/IAA3 gene. Development 126: 711−721.
  185. To JPC, Haberer G, Ferreira FJ, Deruere J, Mason MG, Schaller GE, Alonso JM, Ecker JR, Kieber JJ. 2004. Type-A Arabidopsis response regulators are partially redundant negative regulators of cytokinin signaling. Plant Cell 16: 658−671.
  186. JG. 1950. The induction of lateral roots by indoleacetic acid and root decapitation. American Journal of Botany 37: 257−264.
  187. Ulmasov T, Murfett J, Hagen G, Guilfoyle TJ. 1997. Aux/IAA proteins repress expression of reporter genes containing natural and highly active synthetic auxin response elements. Plant Cell 9: 1963−1971.
  188. Van Tieghem P, Douliot H. 1889. Recherches comparatives sur l’origine des membres endogenes dans les plantes vasculaires. Ann.Sci.Nat.Bot. (Paris) 7 1−660.
  189. Vanneste S, Friml J. 2009. Auxin: a trigger for change in plant development. Cell 136: 10 051 016.
  190. Vasudevan A, Selvaraj N, Ganapathi A, Choi CW. 2007. Agrobacterium-mediated genetictransformation in cucumber (Cucumis sativus L.). American Journal of Biochemistry and Biotechnology 3: 24−32.
  191. Vitha S, Baluska F, Mews M, Volkman D. 1997. Immunofluorescence detection of F-actin on low melting point wax sections from plant tissues. Journal of Histochemistry and Cytochemistry 45: 89−95.
  192. Von Bodman SB, Bauer WD, Coplin DL. 2003. Quorum sensing in plant-pathogenic bacteria. Annual Review of Phytopathology 41: 455−482.
  193. Vuylsteker C, Dewaele E, Rambour S. 1998. Auxin induced lateral root formation in chicory. Annals of Botany 81: 449−454.
  194. Vysotskaya LB, Timergalina LN, Simonyan MV, Veselov SY, Kudoyarova GR. 2001. Growth rate, IAA and cytokinin content of wheat seedling after root pruning. Plant Growth Regulation 33: 51−57.
  195. Botanical Gazette 99: 497−528. Wilkinson S, Morris DA. 1994. Targeting of auxin carriers to the plasma membrane: effects of monensin on transmembrane auxin transport in Cucurbitapepo L. tissue. Planta 193: 194−202.
  196. Wongsamuth R, Doran PM. 1997. Production of monoclonal antibodies by tobacco hairy roots.
  197. Biotechnology and Bioengineering 54: 401−415. Woodward AW, Bartel B. 2005. Auxin: regulation, action and interaction. Annals of Botany 95: 707−735.
  198. Zheng XL, Deng W, Luo KM, Duan H, Chen YQ, McAvoy R, Song SQ, Pei Y, Li Y. 2007.
  199. The cauliflower mosaic virus (CaMV) 35S promoter sequence alters the level and patterns of activity of adjacent tissue- and organ-specific gene promoters. Plant Cell Reports 26: 1195−1203.
  200. Zimmermann PW, Hitcicoci AE. 1935. Responses of roots to «root-forming» substances. Contrib. Boyce Thompson Inst 7: 439−445.1. Благодарности
  201. Автор выражает уважение и благодарность всем сотрудникам лаборатории Анатомии и морфологии БИН РАН, в особенности заведующей лабораторией к.б.н. Ольге Васильевне Яковлевой, к.б.н. Людмиле Евгеньевне Муравник и Ольге Евгеньевне Миргородской.
  202. Большое спасибо за дружескую поддержку и внимание моим друзьям и коллегам из отдела Микологии БИН РАН Светлане Сеник и Сергею Волобуеву, а также моему ближайшему коллеге по изучению боковых корней Антону Логачёву.
  203. Автор искренне благодарит к.б.н. Ольгу Владимировну Войцеховскую (лаборатория Экологической физиологии БИН РАН), за готовность помочь советом и обсудить работу, за её помощь и доброту ко мне.
  204. Мне также хотелось бы выразить всё своё уважение, восхищение и любовь моим родителям, Леониду Егоровичу и Валентине Николаевне Ильиным, без постоянной помощи и заботы которых в моей жизни вообще ничего бы не реализовалось.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!