Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Формообразование у представителей семейства Araceae Juss. в ходе эмбриогенеза и постэмбрионального развития

Диссертация: Формообразование у представителей семейства Araceae Juss. в ходе эмбриогенеза и постэмбрионального развития
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Объект исследования. Объектами наших исследований стали два представителя обширного (около 200 родов) семейства Агасеае Juss.: Calla palustris L. и Anubias heterophylla Schott. Изученные растения относятся к одному подсемейству Philodendroideae (Grayum, 1990), сходны по местообитанию, но распространены, соответственно, в умеренных широтах северного полушария и в тропиках Африки (Crusio, 1979… Читать ещё >

Содержание

  • 1. Введение
  • 2. Обзор литературы
    • 2. 1. Биология развития и структурное многообразие ароидных
      • 2. 1. 1. Развитие зародыша и эндосперма
      • 2. 1. 2. Прорастание и строение проростка
      • 2. 1. 3. Разнообразие листовых органов ароидных
      • 2. 1. 4. Разнообразие строения побеговой системы ароидных
      • 2. 1. 5. Особенности листорасположения ароидных
    • 2. 2. Общая характеристика объектов
    • 2. 3. Механизмы формообразования
      • 2. 3. 1. Механизмы формообразования на субклеточном уровне
      • 2. 3. 2. Клеточные механизмы гистогенеза и органогенеза
      • 2. 3. 3. Механизмы контроля формообразовательных процессов
    • 2. 4. Методология описания и интеграции структурных данных различных уровней организации
      • 2. 4. 1. Графические представления структуры и процессов развития растений
      • 2. 4. 2. Информационные представления морфогенетических процессов
      • 2. 4. 3. Формализационные представления морфогенетических процессов
      • 2. 4. 5. Интеграция данных, полученных с помощью различных представлений
    • 2. 5. Развитие современных взглядов на клеточные механизмы формообразовательных процессов и актуальность настоящей работы
  • 3. Материалы и методы
    • 3. 1. Источники растительного материала
    • 3. 2. Микроскопические исследования
    • 3. 3. Использованная терминология при описании эмбриогенеза и строения побеговой системы
    • 3. 4. Условные обозначения, принятые в работе
  • 4. Результаты
    • 4. 1. Объёмная реконструкция тканей и описание клеточной архитектуры
      • 4. 1. 1. Полная реконструкция клеточной архитектуры образца ткани
      • 4. 1. 2. Частичная реконструкция клеточной архитектуры
      • 4. 1. 3. Анализ клеточных линий при изучении формообразования
    • 4. 2. Calla palustris L
      • 4. 2. 1. Анатомо-морфологическое описание
      • 4. 2. 2. Объёмная реконструкция образовательных тканей
    • 4. 3. Anubias heterophylla Schott
      • 4. 3. 1. Анатомо-морфологическое описание
      • 4. 3. 2. Объёмная реконструкция образовательных тканей
  • 5. Обсуждение
    • 5. 1. Взаимосвязь клеточной архитектуры образовательных тканей и органогенеза
    • 5. 2. Роль клеточных линий в раннем эмбриогенезе
      • 5. 2. 1. Регулярность делений клеток при образовании бластомеров
      • 5. 2. 2. Регулярность делений клеток при развитии глобулярного зародыша
    • 5. 3. Роль клеточных линий в органогенезе в эмбриональном и постэмбриональном развитии
      • 5. 3. 1. Закономерности распределения скорости и направленности делений клеток при образовании эмбрионального апекса побега
      • 5. 3. 2. Роль клеточных линий в деятельности апекса побега
      • 5. 3. 3. Роль клеточных линий в строении побеговой системы
    • 5. 4. Сепарация и гибель клеток в ходе морфогенетических процессов
  • 6. Выводы
  • Благодарности

Формообразование у представителей семейства Araceae Juss. в ходе эмбриогенеза и постэмбрионального развития (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность исследования. Трансформация наследственной информации в структуру организма — это центральный вопрос современной биологии развития. В отличие от большинства животных у растений не происходит одномоментного образования основных органов тела. Однако, эмбриогенез и первые этапы постэмбрионального развития являются определяющими в структурном отношении у всех высших растений. Специфика этих этапов онтогенеза заключается в том, что у нового растения происходит закладка апикально-базальной оси и основных образовательных тканей побега и главного корня (Яковлев, 1960; Jurgens, 2003; Laux et al, 2004). Формообразовательные процессы на последующих этапах развития обусловлены, главным образом, деятельностью и преобразованиями уже существующих меристем, которые определяют видоспецифичное анатомическое и морфологическое строение тела растения. Это даёт нам возможность рассматривать постэмбриональное развитие как комбинаторное проявление гистогенетической активности клеточеных комплексов, возникших в эмбриогенезе.

Несмотря на множество современных работ по эмбриологии и генетике развития растений, остаётся неясной степень и принципы предопределения постэмбриональных видоспецифичных образовательных процессов побеговой системы морфогенезом на первых этапах развития зародыша. Существует два основных подхода, которых можно было бы использовать для решения этого вопроса: молекулярно-генетический и классический сравнительно-анатомический.

Молекулярно-генетические подходы в современной эволюционной биологии развития строятся на выявлении регуляторных генов, активных в течение определённых этапов онтогенеза растения и поиске гомологий в организации контроля морфогенетических процессов у растений разных групп. Именно молекулярно-генетические механизмы гормонального контроля формообразования в данный момент в центре внимания многих исследователей (Doebley, Lukens, 1998; Friedmann et al, 2004). Классические сравнительные анатомо-морфологические подходы в изучении закономерностей развития клеточной и тканевой архитектуры растений основаны на выявлении гомологичных тканей и органов. Они позволили в общих чертах выявить происхождение и особенности образовательных тканей, ответственных за развитие видоспецифичных структур. К сожалению, в чистом виде ни один из этих подходов не может быть использован для выявления видоспецифичной эмбриональной детерминации образовательных процессов в побеговой системе растений. Первый — из-за ограниченности в применимости только к модельным растениям, второй — по причине трудности в идентификации и сопоставлении одноимённых структур зародыша и побеговой системы в постэмбриональном развитии у многих растений (Rutishauser et al, 2008).

Таким образом, для выяснения взаимосвязи эмбриональных и постэмбиональных образовательных процессов необходимо преодолеть методические трудности обоих вышеупомянутых подходов. Мы предлагаем следующее решение. В основе морфогенетических преобразований у большинства растений лежат рост и деления клеток. Клеточные механизмы органогенеза, выражающиеся в числе и ориентации делений инициальных и дифференцирующихся клеток, являются обязательной составляющей трансформации субклеточной молекулярно-генетической наследственной информации в видоспецифичное анатомическое и морфологическое строение растения. Эти вопросы до сих пор являются мало изученными. По нашему мнению, необходимым и актуальным шагом в решении вопросов идентификации органов и преемственности образовательных процессов в ходе онтогенеза является изучение клеточных механизмов формообразования, начиная с эквивалентного для всех одноклеточного состояния — зиготы. Клеточные механизмы развития зародыша у большинства растений практически не изучены на глубину более чем 4−5 клеточных генераций. Также неизученными остаются клеточные механизмы развития апикальной меристемы побега и органогенез, особенно у однодольных, в ходе постэмбрионального развития. Причину этой ситуации мы видим, прежде всего, в сложности клеточной архитектуры высших растений, в частности, образовательных тканей семенных, и в отсутствии удобных подходов для её изучения и описания. Таким образом, актуальность нашей работы заключается в выявлении клеточных механизмов морфогенетических процессов и в разработке необходимых подходов для исследования развития клеточной архитектуры в ходе эмбрионального и постэмбрионального развития на примере однодольных цветковых растений.

Объект исследования. Объектами наших исследований стали два представителя обширного (около 200 родов) семейства Агасеае Juss.: Calla palustris L. и Anubias heterophylla Schott. Изученные растения относятся к одному подсемейству Philodendroideae (Grayum, 1990), сходны по местообитанию, но распространены, соответственно, в умеренных широтах северного полушария и в тропиках Африки (Crusio, 1979). Эти растения являются водными травами с эпигеогенным корневищем, обладают симподиальным нарастанием. Эмбриогенез С. palustris изучен слабо, а у А. heterophylla он не изучался вообще. Несмотря на структурное разнообразие, характерное для всего семейства (Ray, 1987;1988; Hay, Mabberley, 1991), эти два вида имеют относительно сходное строение побеговых систем. Использование как минимум двух объектов в данной работе было необходимо для проверки достоверности выявленной взаимосвязи клеточной архитектуры образовательных тканей в ходе эмбрионального и постэмбрионального развития.

Цель работы:

Изучение и выявление закономерностей образования побега в ходе эмбриогенеза и при постэмбриональном развитии у представителей семейства Агасеае Juss. Calla palustris L. и Anubias heterophylla Schott.

Задачи:

1. Разработать методику реконструкции объёмного строения тканей по сериальным срезам.

2. Изучить развитие зародыша от зиготы до зрелого состояния, включая процессы заложения органов и их анатомо-морфологические характеристики.

3. Описать морфогенез побеговой системы (нарастание, ветвление, становление филлотаксиса и типов листьев) в ходе прорастания и на последующих этапах онтогенеза.

4. Выявить ключевые механизмы возникновения и деятельности образовательных тканей в ходе эмбриогенеза и становления видоспецифичных признаков побеговой системы (образование органов зародыша, становление филлотаксиса, ветвление и разнообразие листьев) на клеточном уровне.

5. Выявить ключевые механизмы поддержания пространственно-временной организации побеговой системы в постэмбриональном развитии на клеточном уровне.

6. Оценить значение формообразовательных процессов, протекающих при эмбриональном развитии, для постэмбрионального морфогенеза побега.

Работа была выполнена в лаборатории эмбриологии и репродуктивной биологии Ботанического института им. B.JI. Комарова РАН, изучение объектов с использованием конфокального микроскопа проводилось в центре коллективного пользования «ХРОМАС» Биологического Научно-Исследовательского института СПбГУ.

Научная новизна. В представленной работе разработан и впервые применён метод реконструкции объёмного строения тканей по сериальным срезам, позволяющий установить генеалогические и пространственные отношения между клетками образца на глубину (в прошлое) до 15-ти клеточных делений. Эмбриогенез А. heterophylla изучен впервые. Исследование эмбрионального развития С. palustris позволило найти решение ранее спорного вопроса о типе эмбриогенеза у этого вида. Впервые описана клеточная архитектура апексов побегов у С. palustris и А. heterophylla и выявлена их отличная от модели «туника-корпус» секторная организация, которая может быть свойственна многим однодольным, не только ароидным. Впервые для изученных видов установлено формообразовательное значение гибели клеток в апикальной части зародыша на ранних этапах эмбриогенеза, в деятельности апекса побега и при образовании листовых органов. На примере двух представителей семейства Агасеае показана взаимосвязь клеточной архитектуры зародыша на ранних стадиях развития, апикальной меристемы побега и пространственной и метамерной организации побеговой системы.

Практическая значимость. Полученные в работе результаты могут быть использованы для решения фундаментальных вопросов соматической эволюции однодольных и цветковых вообще. Разработанная методика исследования клеточной архитектуры тканей растений может быть использована для выявления клеточных механизмов морфогенеза любых органов, а также для анализа отклонений в развитии мутантных растений. Данная методика и полученные с её помощью результаты являются основой для применения математических подходов в описании программ развития клеточной архитектуры растений (Rudskiy, 2012). Материалы диссертации могут быть использованы в образовательном процессе.

Апробация. Материалы, содержащиеся в диссертационной работе, были представлены на конференции, посвященной 200-летию кафедры высших растений МГУ (Москва, 26−30 января 2004 г.), на X школе по теоретической морфологии растений «Конструкционные единицы в морфологии растений» (Киров, 2−8 мая 2004 г.), VIII Молодёжной конференции ботаников в Санкт-Петербурге (Санкт-Петербург, 17−21 мая 2004 г.), XVII International Botanical Congress (Vienna, Austria, Europe, July 17−23, 2005), конференции «Биология стволовых клеток: фундаментальные аспекты» (17−18 ноября, 2005 г., Москва, Россия), I International School for Young Scientists «Embryology and biotechnology». 5−9 декабря 2005 г. Ботанический институт им. B.JI. Комарова РАН (Санкт-Петербург, Россия), Н-й международной Школе для молодых учёных «Эмбриология и Биотехнология» (Уфа, БГПУ, 3−7 декабря 2007 г.).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 15 работ, в том числе статей в рецензируемых журналах — 5 2 из них в списке ВАК, в сборниках материалов научных мероприятий — 9, препринт — 1.

Структура и объём диссертации. Диссертация состоит из следующих глав: введение, обзор литературы, материалы и методы, результаты, обсуждение, выводы и список литературы. Список цитированной литературы включает 249 наименований, 209 из которых на иностранном языке. Работа изложена на 133 странице, включая 36 рисунков и таблиц.

6. Выводы.

1. Разработан и опробован метод объёмной реконструкции тканей, позволяющий описать и сравнить клеточную архитектуру и историю развития образца ткани или зародыша на глубину до 15 клеточных генераций.

2. До пяти первых клеточных генераций в эмбриональном развитии у С. palustris развиваются закономерно по схеме 6-го мегархетипа серии В (по Soueges, 1939).

3. До семи первых клеточных генераций в эмбриональном развитии у А. heterophylla развиваются закономерно по схеме 5-го мегархетипа серии, А (по Soueges, 1939).

4. Глобулярные зародыши С. palustris и А. heterophylla имеют видоспецифичное секторное строение, обусловленное числом и пространственным положением клеточных линий происходящих из не менее чем 20-ти основных бластомеров и особенностями первых этапов развития образовательных тканей побега и корня.

5. Апекс побега у С. palustris и А. heterophylla в ходе эмбриогенеза и постэмбрионального развития имеет отличное от «туника-корпус» секторное строение, обусловленное поверхностным расположением гистогенных инициалей. Видоспецифичность его структуры определяется числом, происхождением и пространственной смежностью клеток основных гистогенетических клеточных линий, а также специфичным распределением скорости делений клеток в линиях.

6. Устойчивость и самоподдержание клеточной архитектуры апекса побега у С. palustris и А. heterophylla в постэмбриональном развитии обеспечивается регулярным вхождением основных гистогенетических линий с сохранением ориентации своих границ в состав нового листового примордия и ассоциированной с ним почки бокового побега.

7. У С. palustris и А. heterophylla гибель и расхождение отдельных клеток апекса побега и раннего примордия листа закономерны. Они обусловлены деформациями, связанными с разной направленностью роста на границе основных гистогенетических клеточных линий, и типом образующегося органа.

8. Пространственное положение и согласованность гистогенеза бокового побега с вышележащим на главной оси листом свидетельствует о наружном (внепазушном) положении боковой почки в метамере побега у С. palustris и А. heterophylla.

Благодарности.

Автор глубоко признателен Батыгиной Т. Б. за вдумчивое и последовательное руководство и поддержку на протяжении всей работы над настоящей диссертацией. Искренне благодарит Карцеву JI.A. за помощь в проведении исследований с использованием сканирующего электронного микроскопа, Цитрина Е. Б. и сотрудников центра коллективного пользования «ХРОМАС» научно-исследовательского института СПбГу и лично Гагинскую Е. Р. за помощь в проведении исследований с помощью конфокального микроскопа, Иванову А. Н. за помощь в исследованиях, связанных с применением трансмиссионного электронного микроскопа. Автор также сердечно благодарен Бутузовой О. Г., Тихомирову И. А., Виноградовой Г. Ю., Андроновой Е. В., Титовой Г. Е, Степановой A.B. и Жуку A.B. за неоценимую помощь в обсуждении и подготовке финального текста диссертации.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , O.E. (2003). Дискретная математика: логика, группы, графы. 376 е., Лаборатория1. Базовых Знаний, М.
  2. , Т.Б. (1974). Эмбриология пшеницы. 206 е., Колос, Ленинград.
  3. , Т.Б., Красников, Л.Г. (1997). Новая концепция происхождения зародышаоднодольных. В: Т. Б. Батыгина (Ред.). Эмбриология цветковых растений, терминология и концепции: Семя, т.2,470−492 е., Мир и семья-95, СПб.
  4. Т.Б., Рудский И. В. (2006). Роль стволовых клеток в морфогенезе растений.
  5. Доклады Академии Наук 410(5): 1−3.
  6. , В.Б. (1993). Развитие зародыша пиона in vivo и in vitro. Авторефератдиссертации на соискание степени кандидата биологических наук, 21с., СПб.
  7. , Г. (2003). Симметрия. (Переизд.), 192 е., Едиторал УРСС, М.
  8. , Т.Д. (1985). Семейство Агасеае. В: А. Л. Тахтаджян (Ред.) Сравнительнаяэмбриология семян, т.1,264−275 е., Наука, Л.
  9. , Н.С. (1969). Апикальные меристемы в корнях голосеменных растений ипринципы их графической интерпретации. Ботанический журнал 54(1):67−76.
  10. , Ю.В. (1994). Эндоплазматическая сеть растений. Происхождение, структура ифункции. 80 е., БИН РАН, СПб. П. Гамалей, Ю.В. (2004). Транспортная система растений. 422 е., Издательство Санк-Петербургского Университета, СПб.
  11. , И.А. (1982). Семейство арониковые (Агасеае). В: А. Л. Тахтаджян (Ред.).
  12. Жизнь растений: Цветковые растения, т.6,466−492 е., Просвещение, М.
  13. , В.Б. (1973). Биологическая изомерия. 267 с. Наука, Л.
  14. , Д. (1962). Практическая микротехника и гистохимия. 400 е., Academiai Kiado, 1. Budapest.
  15. , С.Н., Жинкина, H.A. (1990). Семейство Агасеае. В: Т. Б. Батыгина, М.С.
  16. Яковлев (Ред.). Сравнительная эмбриология цветковых. Однодольные Butomaceae -Lemnaceae. 275−279 е., Наука, Л.
  17. , В.В. (1987). Основы структурного анализа в морфологии растений. 272 е., Изд-во
  18. Уральского университета, Свердловск.
  19. , Н.П. (1928). Хирургия растений (травматология). 658 е., Новая деревня, М.
  20. , В.И. (1988). К происхождению однодольных. 87 с. Томск. Гос. Унив., Томск.
  21. , Л.И. (2000). Морфология и анатомия цветковых растений. 528 е., Эдиторал1. УРСС, М.
  22. , Б. (2002). Фрактальная геометрия природы. 656 е., Институт
  23. Компьютерных Исследований, М.
  24. , E.H. (1971). Сравнительное анатомическое и морфологическое исследованиерепродуктивных органов некоторых представителей ароидных (Агасеае Автореферат диссертации на соискание степени кандидата биологических наук. 22 с. Кишенёв.
  25. , М.С. (1947). Расположение хромосом в метафазе и динамика ядра. Доклады
  26. Академии Наук СССР 57(6):613−616.
  27. , С.Г. (1997). Опыт структурного изображения свойств половых ядер. (Переизд.)
  28. В: Т. Б. Батыгина (Ред.). Эмбриология цветковых растений, терминология и концепции: Семя, т.2, 67−86 е., Мир и Семья-95, СПб.
  29. , И.Г. (1952). Морфология вегетативных органов высших растений. 392 е., 1. Советская Наука, Москва.
  30. , Т.И. (1971). Морфогенез побегов и эволюция жизненных форм злаков. 360е., Наука, Москва.
  31. A.JI. (1954). Вопросы эволюционной морфологии растений. 215 е., Изд-во1. Ленингр. ун-та, Л.
  32. , Э.С. (1977). Паразитные цветковые растения. 220 е., Наука, Л.
  33. , Э.С. (1991). Проблемы эволюции онтогенеза семенных растений. 70 е., БИН АН1. СССР, СПб.
  34. , А.К. (2001). Динамическая морфология Р. Саттлера. В: А. А. Оскольский, Д.Д.
  35. Соколов и А. К. Тимонин (Ред.). Гомологии в ботанике: опыт и рефлексия. 57−64 с. Санкт-Петербургский Союз Учёных, СПб.
  36. , А.П. (1965). Происхождение однодольных по данным строения проводящейсистемы листа. Труды Московского Общества Испытателей Природы 13:190−200.
  37. , А.П. (1975). Соматическая эволюция однодольных. 196 е., Наука, Москва.
  38. , Н.Н. (1993). Эволюция фитомера у высших растений. Бюлл. Моск. Общ. Естест.98(2):53−77.
  39. , Н.Н. (1997). Фитомеры и профиллы как составные части побегов сосудистыхрастений. Бюлл. Моск. Общ. Естест. 102(5):54−57.
  40. Чуб, В.В. (2009). Роль позиционной информации в регуляции развития органов цветка илистовых серий побегов. Диссертация на соискание учёной степени доктора биологических наук. 232 е., Москва.
  41. , И.И. (1997). Принципы классификации типов эмбриогенеза. В: Т.Б. Батыгина
  42. Ред.). Эмбриология цветковых растений, терминология и концепции: Семя, т.2, 493 508 е., Мир и Семья-95, СПб.
  43. , А.В., Копцик, В.А. (2004). Симметрия в науке и искусстве. 560 е., Институткомпьютерных Исследований, Москва-Ижевск.
  44. , К. (1969). Анатомия растений. 564 е., Мир, Москва.
  45. , М.С. (1960). Эмбриогенез и его значение для филогении растений. 40 е., Изд-во1. Академии Наук СССР, М-Л.
  46. , М.С., Йоффе, М.Д. (1957). Особенности эмбриогенеза рода Paeonia L.
  47. Ботанический журнал 42(10):1491−1502.
  48. Adler, I., Barabe, D. and Jean, R.V. (1997). A history of the study of phyllotaxis. Annals of1. Botany 80:231−244.
  49. Baluska, F., Volkmann, D., and Barlow, P.W. (2004). Eukaryotic cells and their cell bodies: celltheory revised. Annals of Botany 94:9−32.
  50. Banks, J.A., Hickok, L. and Webb, A.M. (1993). The programming of sexual phenotype in thehomosporous fern Ceratopteris richardii. Int. J. Plant Sci. 154(4):522−534.
  51. Barabe, D., Labrecque, M. (1983). Vascularisation de la fleur de Calla palustris (Araceae).
  52. Canadian Journal of Botany 61:1718−1726.
  53. , P.W. (1994). Structure and function at the root apex — phylogenetic and ontogeneticperspectives on apical cells and quiescent centres. Plant and Soil 167:1−16.
  54. Barlow, P.W., Luck, J. (2004). Deterministic cellular descendance and its relationship to thebranching of plant organ axes. Protoplasma 224:129−123.
  55. Barlow, P.W., Luck, J. (2005). Repetitive cellular patterns in the secondary phloem of coniferand dicot trees, and a hypothesis for their development. Plant Biosystems 139(2): 164−179.
  56. Barlow, P.W., Luck, H.B., Luck, J. (2001). The natural philosophy of plant form: autoreproduction as a component of a structural explanation of plant form. Annals of Botany 88:1141−1152.
  57. T.B. (2011). Morphogenetic Developmental Programs. Stem cells. New York: Nova Science Publishers, Inc. USA, 163 p.
  58. Berleth, T., Sachs, T. (2001). Plant morphogenesis: long-distance coordination and localpatterning. Current Opinion in Plant Biology 4:57−62.
  59. Bleecker, A.B., Patterson, S.E. (1997). Last exit: senescence, abscission, and meristem arrest in
  60. Arabidopsis. The Plant Cell 9:1169−1179.
  61. Blilou, I., Xu, J., Wildwater, M., Willemsen, V., Papanov, I., Friml, J., Heidstra, R., Aida, M.,
  62. Bossinger, G., Maddaloni, M., Motto, M., Salamini, F. (1992). Formation and cell lineagepatterns of the shoot apex of maize. The Plant Journal 2(3):311 -320.
  63. , L. (1932). Monocotylous seedling. Morphological studies in the post seminaldevelopment of the embryo. Trans. Proc. Bot. Soc. 31:5−224.
  64. Bunney, .T.D., De Boer, A.H. and Levin, M. (1999). Fusicoccin signaling reveals 14−3-3protein function as a novel step in left-right patterning during amphibian embryogenesis. Development 130:4847−4858.
  65. Caldreon-Urrea, A., Dellaporta, S.L. (1999). Cell death and cell protection genes determine thefate of pistils in maize. Development 126:435−441.
  66. , R.S. (1967). Relationship between liverworts and mosses. Phytomorphology 17:70−78.
  67. Clowes, F.A.L. (1967). The quiescent centre. Phytomorphology 17:132−140.
  68. , W. (1979). A revision of Anubias Schott. (Araceae), 48 pp. Wageningen, Veenman.
  69. , S.E. (1997). Organ formation at the vegetative shoot meristem. The Plant Cell 9:10 671 076.
  70. , N.G. (1999). Anisophylly and dorsiventral shoot symmetry. Int. J. Plant Sci. 160(61. Suppl.):S67-S80.
  71. Doebley, J., Lukens, L. (1998). Transcriptional regulators and the evolution of plant form. The
  72. Plant Cell 10(7):1075−1082.
  73. Dolan, L., Poethig, R.S. (1998). Clonal analysis of leaf development in cotton. American
  74. Journal of Botany 85(3):315−321.
  75. Dubrovsky, J.G., Doener, P.W., Colon-Carmona, A. and Rost, T. (2000). Pericycle cellproliferation in Arabidopsis. Plant Physiol. 124(12):1648−1657.
  76. Dumais, J., Kwiatkowska, D. (2001). Analysis of surface growth in shoot apices. The Plant1. Journal 31 (2):229−241.
  77. , N.A. (2004). The role of PHANTASTICA in leaf development. The Plant Cell16(5): 1073−1075.
  78. Ehlers, K., Binding, H., Kollmann, R. (1999). The formation of symplasmic domains byplugging of plasmodesmata: a general event in plant morphogenesis? Protoplasma 209:181 192.
  79. Ehlers, K., Kollmann, R. (2001). Primary and secondary plasmodesmata: structure, origin, andfunctioning. Protoplasma 216:1−30.
  80. , A. (1911). Das Pflanzenreich. IV. 23C Araceae-Lasioideae, 130 pp. Verlag von1. Wilhelm Englmann, Lepzig.
  81. Engler, A., Krause, K. (1912). Das Pflanzenreich. IV. 23Da Araceae-Philodendroideae
  82. Philodendeae, 134 pp. Verlag von Wilhelm Englmann, Lepzig.
  83. Engler, A., Prantl, K. (1889). Die naturlicen pflanzenfamilien. II.3. Araceae (Engler.) pp. 102
  84. Verlag von Wilhelm Englmann, Lepzig.
  85. Engstrom, E.M., Izhaki, A. and Browman, J.L. (2004). Promoter bashing, microRNAs, and
  86. Knox genes. New insights, regulators, and target-ofregulation in the establishment of lateral organ polarity in Arabidopsis. Plant Physiol. 135:685−694.
  87. , D.E. (2003). Aerenchyma formation. New Phytologist 161:35−49.
  88. Filonova, L.H., von Arnold, S., Daniel, G., Bozhkov, P.V. (2002). Programmed cell deatheliminates all but one embryo in a polyembryonic plant seed. Cell Death and Differentiation 9:1057−1062.
  89. , A. J. (2006). The integration of cell proliferation and growth in leaf morphogenesis.
  90. Journal of Plant Research 119:31−36.
  91. , A. S. (1939). Problems of structure, growth and evolution in the shoot apex of seedplants. The Botanical Review 5(8):454−470.
  92. Foster, T., Veit, B. and Hake, S. (1999). Mosaic analysis of the dominant mutant, Gnarleyl-R, reveals distinct lateral and transverse signaling pathways during maize leaf development. Development 126:305−303.
  93. Freeberg, J.A., Wetmore, R.H. (1967). The Lycopopsida a study in development.1. Phytomorphology 17:78−91.
  94. Friedman, W.E., Moore, R.C., Purugganan, M.D. (2004). The evolution of plant development.
  95. American Journal of Botany 91 (10): 1726−1741.
  96. Frumkin, D., Wasserstrom, A., Kaplan, S., Feige, U., Shapiro, E. (2005). Genomic variabilitywithin an organism exposes its cell lineage tree. PLoS Computational Biology l (5):382−394.
  97. , H. (2000). Programmed cell death of tracheary elements as a paradigm in plants. Plant
  98. Molecular Biology 44:245−253.
  99. Gatin, C.-L. (1921). Premiere contribution a l’etude de Tembryon et de la germination des
  100. Aracees. Ann. Sci. Nat., Bot. ser.10. 3:145−169.
  101. Gifford, E.M., Corson, G.E. (1971). The shoot apex in seed plants. The Botanical Review 37(2): 143−229.
  102. Giuliani, C., Consonni, G., Gavazzi, G., Colombo, M., Dolfini, S. (2002). Programmed celldeath during embryogenesis in maize. Annals of Botany 90:287−292.
  103. Gordon, S.P., Heisler, M.G., Reddy, G.V., Ohno, C., Das, P., Meyerovitz, E.M. (2007). Patternformation during de novo assembly of the Arabidopsis shoot meristem. Development 134:3539−3548.
  104. Gow, J.E. (1913). Observations on the morphology of the aroids. Botanical Gazette 56(2):127 142.
  105. , V. (2003). Incongruence between cladistic and taxonomic systems. Amer. J. Bot.90:1263−1270.
  106. , M.H. (1990). Evolution and phylogeny of the Araceae. Ann. Missouri Bot. Gard.77:628−697.
  107. , M.H. (1991). Systematic embryology of the Araceae. The Botanical Review57(3): 167−203.
  108. , P.B. (1994). Connecting gene hormone action to form, pattern and organogenesis: biophisical transductions. J. Exp. Bot. 145:1775−1788.
  109. , P.B. (1999). Expression of pattern in plants: combining molecular and calculus-basedbiophysical paradigms. Amer. J. Bot. 86:1059−1078.
  110. , J.T. (1996). Programmed cell death: A way of life for plants. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93:12 094−12 097.
  111. Grob, V., Pfeifer, E., Rutishauser, R. (2007). Sympodial construction of Fibonacci-type leaf rosettes in Pinguicula moranensis (Lentibulariaceae). Annals of Botany 100:857−863.
  112. Groff, P.A. and Kaplan, D.R. (1988). The relation of root systems to shoot systems in vascular plants. Bot. Rev. 54(4):387−422.
  113. Gunawardena, A.H.A.N., Greenwood, J.S., Dengler, N. (2004). Programmed cell death remodels lase plant shape during development. The Plant Cell 16:60−73.
  114. Gunawardena, A.H.A.N., Sault, K., Donnely, P., Greenwood, J.S., Dengler, N. (2005). Programmed cell death and leaf morphogenesis in Monstera obliqua (Araceae). Planta 221:607−618.
  115. , N. (1977). Ontogeny f the reproductive shoot apex of Clethra barbinervis. Especally on the superficial vieiw. Bot. Mag. Tokyo 90:89−102.
  116. , N. (1995). Developmental anatomy of the three-dimentional structure of the vegetative shoot apex. Journal of Plant Research 108:115−125.
  117. Hay, A., Mabberley, D.J. (1991). «Transference of function» and the origin of aroids: their significance in early angiosperm evolution. Bot. Jahrb. Syst. 113:339−428.
  118. , M.C. (2000). Hypersensitive response-related death. Plant Molecular Biology 44:321 334.
  119. , A.W. (1906). The morphology and seedling structure of the geophilous species of Peperomia, with some views on the origin of monocotyledons. Annals of Botany 20(80):395−427.
  120. Hiyama, Y., Tsukamoto, I., Imachi, R. and Kato, M. (2002). Developmental anatomy and branching of roots of four Zeylanidium species (Podostemaceae), with implications for evolutions of foliose roots. Ann. Bot. 90:735−744.
  121. Holloway, D. M., Lantin, M. (2002). Maintaining apical dominance in fern gametophyte. Annals of Botany 89:409−417.
  122. , A. (1999). Axiom and axes in leaf formation? Curr. Opin. Plant Biol. 2(l):56−60.
  123. , A. (2000). Development of symmetry of plants. Annu. Rev. Plant Mol. Biol. 51:34 970.
  124. Imaichi, R., Hiratsuka, R. (2007). Evolution of shoot apical meristem structures in vescular plants with respect to plasmodesmatal network. American Journal of Botany 94(12):1911−1921.
  125. Imaichi, R., Hiyama, Y., Kato, M. (2005). Leaf development in the absence of a shoot meristem in Zeylanidium subulatum (Podostemaceae). Annals of Botany 96:51−58.
  126. Jarvis, M.C., Briggs, S.P.H., Knox, J.P. (2003). Intercellular adhesion and cell separation in plants. Plant, Cell and Environment 26:977−989.
  127. Jean, R.V., Barabe, D. (2001). Aplication of two mathematical models to the Araceae, a family of plants with enigmatic phyllotaxis. Annals of Botany 88:173−186.
  128. , D.A. (1950). Plant embryology. 310 p., Chronica Botanica, Waltham MA.
  129. Johri, M.M., Coe, E.H. Jr. (1996). Clonal analysis of corn plant development. II. The formation of lower nodes. Genetica 97:291−303.
  130. , C.S. (1999). An essay on juvenility, phase change, and heteroblasty in seed plants. Int J. Plant Sci. 160(6 Suppl.):S105-Sl 11.
  131. Jong, K. and Burt, B.L. (1975). The evolution of morphological novelty exemplified in the growth patterns of some Gesneriaceae. New Phytologist 75:297−311.
  132. , G. (2003). Growing up green: cellular basis of plant development. Mechanisms of Development 120:1395−1406.
  133. Kaltschmidt, J.A., Brand, A.H. (2002). Asymmetric cell division: microtubule dynamics and spindle asymmetry. J. CellSci. 115:2257−2264.
  134. , D.R. (2001). The science of plant morphology: definition, history, and role in modern biology. American Journal of Botany 88(10):1711−1734.
  135. Kaplan, D.R., Cooke, T.J. (1997). Fundamental concepts in the embryogenesis of dicotyledons: a morphological interpretation of embryo mutants. The Plant Cell 9:1903−1919.
  136. , E.A. (2004). Evolution of developmental traits. Curr. Opin. Plant Biol. 7:92−98.
  137. , R.W. (1974). The three-dimensional shape of plant cells and its relationship to pattern of tissue growth. New Phytologist 73:927−935.
  138. , R.W. (1993). Apical cells as meristems. Acta Biotheretica 41:175−189.
  139. , R.W. (2007). Watermelon stripes. A case for the clonal mosaic model in plants. Journal of Theoretical Biology 247:859−861.
  140. Korn, R.W., Spalding, R.M. (1973). The geometry of plant epidermal cells. New Phytologist 72:1357−1365.
  141. Kragler, F., Lucas, W.J., Monzer, J. (1998). Plasmodesmata: dynamics, domains and patterning. Annals of Botany 81:1−10.
  142. Kuriyama, H., Fukuda, H. (2002). Developmental programmed cell death in plants. Current Opinion in Plant Biology 5:568−573.
  143. , D. (2006). Flower primordium formation at the Arabidopsis shoot apex: quantitative analysis of surface geometry and growth. Journal of Experimental Botany 57(3):571−580.
  144. Lam, E. (2004). Controlled cell death, plant survival and development. Nature Reviews 5ROSSIS.
  145. Lam, E., Pontier, D., del Poso, O. (1999). Die or let live programmed cell death in plants. Current Opinion in Plant Biology 2:502−507.
  146. Laux, T., Wurschum, T., Breuninger, H. (2004). Genetic Regulation of embryonic pattern formation. The Plant Cell 16: S190-S202.
  147. Lemon, G.D., Posluszny, U. (2000). Shoot development and evolution in Pistia stratiotes (Araceae). International Journal of Plant Sciences 161(5):721−732.
  148. Longstreth, D.J. Borkhsenious, O.N. (2000). Root cell ultrastructure in developing aerenchyma tissue of three wetland species. Annals of Botany 86:641−646.
  149. , R.F. (1982). Changes in polarity of growth during leaf initiation in the pea, Pisum sativum L. Ann. Bot. 49:281−290.
  150. , R.F. (1994). Control of organogenesis at the shoot apex. New Phytologist 128:1−19.
  151. Macior, W.A., Matzke, E.B. (1951). An expiremental analysis of cell-wall curvatures, and approximisations to minimal tetrakaidecahedra in the leaf parenchyma of Rhoeo discolor. American Journal of Botany 38:783−793.
  152. Marc, J. and Hackett, W. (1991). Gibberellin-induced reorganization of spatial relationships of emerging primordial at the shoot apical meristem in Hedera helix L. Planta 185:171−178.
  153. Matsui, T., Omasa, K., Horie, T. (1999). Mechanism of anther dehiscence in rice (Oryza sativa L.). Annals of Botany 84:501−506.
  154. Meinhardt, H., Koch, A. and Bernasconi, G. (1998). Models of pattern formation applied to plant development. In: R.V. Jean, D. Barabe (eds.). «Symmetry in plants», pp. 723−758. World Scientific Publishing, Singapure.
  155. , H.N. (1951). Changes in the three dimensional shape during growth and division of living epidermal cells in the apical meristem of Phleum pratense roots. American Journal of Botany 38:495−511.
  156. Muehlbauer G.J., Fowler, J.E. and Freeling, M. (1997). Sectors expressing the homeobox gene liguleless3 implicate a time-dependent mechanism for cell fate acquisition along the proximal-distal axis of the maize leaf. Development 124(24):5097−5106.
  157. Nakajima, K., Benfey, P.N. (2002). Signalling in and out: control of cell division and proliferation in the shoot and root. The Plant Cell 14(Suppl.):S265-S276.
  158. Nardmann, J., Werr, W. (2009). Patterning of the maize embryo and the perspective of evolutionary developmental biology. In: J.L. Bennetzen, S.C. Hake (eds.). Handbook of maize: its biology. Springer Science + Business Media, LLC.
  159. Nelson, J.M., Lane, B. and Freeling, M. (2002). Expresson of a mutant maize gene in the ventral leaf epidermis is sufficient to signal a switch of the leafs dorsoventral axis. Development 129:4581−4589.
  160. Neumann, U., Brandizzi, F. and Hawes, C. (2003). Protein transport in plant cells: in and out of the Golgi. Ann. Bot. 92:167−180.
  161. , K.J. (2000). The evolution of plant body plans a biomechanical perspective. Annals of Botany 85:411−438.
  162. Park, S.-Y., Jauh, G.-Y., Mollet, J.-C., Eckard, K.J., Nothnagel, E.A., Walling, L.L., Lord, E.M. (2000). A lipid transfer-like protein is necessary for lily pollen tube adhesion to an in vitro stylar matrix. Plant Cell 12:151−164.
  163. Pennell, R.I., Lamb, C. (1997). Programmed cell Death in Plants. The Plant Cell 9:11 571 168.
  164. Piazza, P., Jasinski, S., Tsiantis, M. (2005). Evolution of leaf developmental mechanisms. New Phytologist 167:693−710.
  165. , W.R. (1991). A new approach to the origin of vascular plants. Bot. Jahrb. Syst. 113:443−460.
  166. Pickett-Heaps, J.D., Gunning, B.E.S., Brown, R.C., Lemmon, B.E. and Cleary, A.L. (1999). The cytoplast concept in dividing plant cells: cytoplasmic domains and the evolution of spatially organized cell division. Amer. J. Bot. 86:153−182.
  167. , M. (1929). The regeneration of the stem apex. New Phytologist, Vol. 28, No. 1 (Mar. 11,1929), pp. 37−53.
  168. , R.S. (1997). Leaf morfogenesis in flowering plants. The Plant Cell 9:1077−1087.
  169. , R. A. (1951). Principal types of vegetative shoot apex organization in vascular plants. The Ohio Journal of Plant Science 51(5):249−270.
  170. Pozzi, C., Rossini, L., Agosti, F. (2001). Patterns and symmetries in leaf development. Cell and Developmental Biology 12:363−372.
  171. , H. (1948). Histo-physiological gradients and plant organogenesis. The Botanical Review 14(10):603−643.
  172. , H. (1951). Histo-physiological gradients and plant organogenesis (Part II). The Botanical Review 17(10):693−746.
  173. , J.H. (1929). Cell growth and cell division in the shoot of the flowering plant. New Phytologist 28(l):54−84.
  174. , P. (2004). Modeling plant growth and development. Curr. Opin. Plant Biol. 7:79−83.
  175. , V. (2004). Plant embryology during and after Panchan Maheshwari’s time -Changing face of research in the embryology of flowering plants. Current Science 87(12):1660−1665.
  176. Ramirez-Parra, E., Desvoyes, B., Gutierrez, C. (2005). Balance between cell division and differentiation during plant development. International Journal of Developmental Biology 49:467−477.
  177. , R.M. (2007). Asymmetric cell division how plant cells get their unique identity. In: A. Maceira-Coelho (Ed.) Progress in molecular and subcellular biology: Asymmetric cell division, 45:39−60.
  178. Ray, T.S. (1986). Growth correlation within the segment in the Araceae. American Journal of Botany 73(7):993−1001.
  179. Ray, T.S. (1987a). Leaf types in the Araceae. American Journal of Botany 74(9):1359−1372.
  180. Ray, T.S. (1987b). Diversity of shoot organization in the Araceae. American Journal of Botany 74(9):1373−1387.
  181. Ray, T.S. (1988). Survey of shoot organization in the Araceae. American Journal of Botany 75(l):56−84.
  182. Reddy, G.V., Heisler, M.G., Ehrhardt, D.W., Meyerowitz, E.M. (2004). Real-time lineage analysis reveals oriented cell divisions associated with morphogenesis at the shoot apex of Arabidopsis thaliana. Development 131:4225−4237.
  183. Reinhardt, D., Mandel, T., Kuhlemeier, C. (2000). Auxin regulates the initiation and radial position of plant lateral organs. The Plant Cell 12(4):507−518.
  184. Reinhardt, D., Frenz, M., Mandel, T., Kuhlemeier, C. (2003a). Microsurgical and laser ablation analysis of interactions between the zones and layers of the tomato shoot apical meristem. Development 130:4073−4083.
  185. Reinhardt, D., Pesce E-R., Stieger, P., Mandel, T., Baltenspergeger, K., Bennett, M., Traas, J., Kuhlemeier, C. (2003b). Regulation of phyllotaxis by polar auxin transport. Nature 426:255−260.
  186. Reinhardt, D., Frenz, M., Mandel, T. and Kuhlemeier, C. (2004). Microsurgical and laser ablation analisys of leaf positioning and dorsoventral patterning in tomato. Development 132:15−26.
  187. Rinne, P.L.H., van der Schoot, C. (1998). Symplastic fields in the tunica of shoot apical meristem coordinate morphogenetic events. Development 125:1477−1485.
  188. Roberts, J.A., Whitelaw, C.A., Gonzales-Carranza, Z.H., McManus, M.T. (2000). Cell separation processes in plants models, mechanisms and manipulation. Annals of Botany 86:223−235.
  189. , P. (1928). Histologische Studien am Vegetationspunkt von Triticum vulgare. Planta 5:28−69.
  190. Rudskiy, I.V., Khodorova, N.V. (2012). Reconstruction of the 3D structure and developmental history of plant cells and tissues. /4rX/v:1205.0225vlq-bio.QM.:l-15.
  191. Rudskiy, I.V., Titova, G.E., Batygina, T.B. (2011). Analysis of space-temporal symmetry in the early embryogenesis of Calla palustris L., Araceae. Mathematical Modelling of Natural Phenomena 6(2):82−106.
  192. , R. (1999). Polymerous leaf whorls in vascular plants: developmental morphology and fuzziness of organ identities. Int. J. Plant Sci. 160(6 Suppl.):S81-S103.
  193. Rutishauser, R., Grob, V., Pfeifer, E. (2008). Plants are used to having identity crisis. In: A. Minelli, G. Fusco (ed.). Evolving pathways: key themes in evolutionary developmental biology. Cambridge University Press, Cambridge.
  194. , T. (1981). The control of the patterned differentiation of vascular tissues. Advances in Botanical Research 9:152−262.
  195. , B. (1956). Studies on the development of the embryo of Oryza sativa L. and homologies of its parts. Proc. Nat. Inst. Sci. India 22:86−101.
  196. Sanders, P.M., Bui, A.Q., Le, B.H., Goldberg, R.B. (2005). Differentiation and degeneration of cells that play a major role in tobacco anther dehiscence. Sexual Plant Reproduction 17:219−241.
  197. , R. (1996). Classical morphology and continuum morphology: opposition and continuum. Annals of Botany 78:577−581.
  198. Sattler, R., Rutishauser, R. (1997). The fundamental relevance of morphology to plant research. Annals of Botany 80:571−582.
  199. Sauer, M., Balla, J., Luschnig, C., Wisnewska, J., Reinohl, V., Friml, J., Benkova, E. (2006). Canalisation of auxin flow by Aux/IAA-ARF-dependent feedback regulation of PIN polarity. Genes and Development 20:2902−2911.
  200. Scanlon, M.J., Chen, K.D. and McKnight IV, C.C. (2000). The narrow sheath duplicale genes: sectors of dual aneuploidy reveal ancestrally conserved gene functions during maize leaf development. Genetics 155(7):1379−1389.
  201. Scarpella, E., Marcos, D., Friml, J., Berleth, T. (2006). Control of leaf vascular patterning by polar auxin transport. Genes and Development 20:1015−1027.
  202. , B. (2001). Plant cell identity. The role of position and lineage. Plant Physiology 125:112−114.
  203. Scheres, B., McKhann, H.I., van den Berg, C. (1996). Roots redefined: anatomical and genetic analysis of root development. Plant Physiology 111 :959−964.
  204. Scheres, B., Wolkenfelt, H., Willemsen, V., Terlouw, M., Lawson, E., Dean, C., Weisbeek, P. (1994). Embryonic origin of the Arabidopsis primary root and root meristem initials. Development 120:2475−2487.
  205. Scheres, B., Xu, J. (2006). Polar auxin transport and patterning: grow with flow. Genes and Development 20:922−926.
  206. Schmid, M., Simpson, D. and Gietl, C. (1999). Programmed cell death in castor bean endosperm is associated with the accumulation and release of a cysteine endopeptidase from ricinosomes. PNAS 23(11):14 159−14 164.
  207. Scribailo, R. W and Tomlinson, P.B. (1996). Shoot and floral development in Calla palustris (Araceae Calloideae). Int J. Plant Sci. 153(1): 1−13.
  208. , N. (1951). Three-dimensional cell shape in coconut endosperm. American Journal of Botany 38:811−822.
  209. , B.C. (1940). A periclinal division in the «dermatogen» at the tip of the maize growing point. Nature 146:778.
  210. , B.C. (1943). A periclinal division in the «dermatogen» at the growing point of couch grass, Agropyron repens, Beauv. Nature 152:276−277.
  211. Shuma, J.M., Raju, M.V.S. (1991). Is the wild oat embryo monocotylous? Bot. Mag. Tokyo 104:15−21.
  212. Smith, R.S., Guyomarc’h, S., Mandel, T., Reinhardt, D., Kuhlemeier, C., Prusinkiewicz, P. (2006). A plausible model of phyllotaxis. PNAS 103(5):1301−1306.
  213. , R.S. (2008). The role of auxin transport in plant patterning mechanisms. PLoS Biology 6(12) :2631−2633.
  214. Snow M, Snow R. 1937. Auxin and leaf formation. New Phytologist 36:1−18.
  215. , R. (1936). Exposes d’embryologie et de morphologie vegetales. V. La segmentation. Deuxieme fascicule: III. Les phenomenes externes. IV. — Les blastomeres. 82 p., Hermann et Cie, Paris.
  216. , R. (1937). Exposes d’embryologie et de morphologie vegetales. VIII. Les lois du development. 96 p., Hermann et Cie, Paris.
  217. R. Soueges. Exposes d’embryologie et de morphologie vegetales. X. Embryogenie et classification. Deuxieme fascicule: Essai d’un systeme embryogenique (Partie generale). Hermann et Cie, Paris, 1939.
  218. , R. (1959). Embryogenie des Lemnacees. Developpment de l’embryon chez le Lemna minor L. Comptes Rendus Herdomadaires Des Seances De L’Academie Des Sciences 248:1896−1900.
  219. Speller, T.H. Jr., Whitney, D., Crawley, E. (2007). Using shape grammar to derive cellular automata rule patterns. Complex Systems 17:79−102.
  220. Steeves T. A (2006). The shoot apical meristem: an historical perspective. Canadian Journal of Botany 84:1629−1633.
  221. Steeves, T., Hicks, G., Steeves, M. and Retallack, B. (1993). Leaf determination in the fern Osmunda cinnamomea a reinvestigation. Annals of Botany 71:511−517.
  222. , G. (1998). Developmental cell lineage. Int. J. Dev. Biol. 42:237−241.
  223. Stewart, R.N., Dermen, H. (1970). Determination of number and mitotic activity of shoot apical initial cells by analysis of mericlinal chimeras. Amer. J. Bot. 57(7):47−58.
  224. Stewart, R.N., Dermen, H. (1979). Ontogeny in monocotyledons as revealed by studies of the developmental anatomy of periclinal chloroplast chimeras. Amer. J. Bot. 66(l):47−58.
  225. Suzuki, K., Kita, Y. and Kato, M. (2002). Comparative developmental anatomy of seedlings in nine species of Podostemaceae (subfamily Podostemoideae). Annals of Botany 89:755−765.
  226. Swarup, R., Bennett, M. (2003). Auxin transport: the fountain of life in plants? Developmental Cell 5(6):824−826.
  227. Sylvester, A.W., Cande, W.Z. and Freelihg, M. (1990). Division and differentiation during normal and liguleless-1 maize leaf development. Development 110(3):985−1000.
  228. , D. (2000). Evolution of transcriptional regulation. Curr. Opin. In Gen. & Dev. 10:575 579.
  229. , E.S. (2001). The origin of «dust» seeds in parasitic and mycoparasitic angiosperms: a hypothesis of symbioses. Beitr. Biol. Pflanzen 72:381−397.
  230. Theise, N.D. and Krause, D.S. (2002). Toward a new paradigm of cell plasticity. Leukemia 16:542−548.
  231. TheiBen, G. (2005) Birth, life and death of developmental control genes: new challenges for the homology concept. Theory in Biosciences 124:199−212.
  232. Thomas, H., Ougham, H.J., Wagstaff, C., Stead, A.D. (2003). Defining senescence and death. Journal of Experimental Botany 54:1231−1238.
  233. Tillich, H.-J. (1995). Seedlings and systematics in monocotyledons. In: P.J. Rudall, P.J. Cribb, D.F. Cutler and C.J. Humphries (Editors). Monocotyledons: systematics and evolution, pp. 303−352, Royal Botanic Gardens, Kew.
  234. Timmermans, M.C.P., Schultes, N.P., Jankovsky, J.P. and Nelson, T. (1998). Laefbladelessl is required for dorzoventrality of lateral organs in maize. Development 125:2813−2823.
  235. , P.B. (1995). Non-homology of vascular organisation in monocotyledons. In: P.J. Rudall, P.J. Cribb, D.F. Cutler and C.J. Humphries (Editors). Monocotyledons: systematics and evolution, pp.589−622. Royal Botanic Gardens, Kew.
  236. Tooke, F. and Battey, N. (2003). Models of shoot apical meristem function. New Phytologist 159:37−52.
  237. , H. (2003). Organ shape and size: a lesson from studies of leaf morphogenesis. Curr. Opin. Plant Biol. 6:57−62.
  238. , H. (2008). Controlling size in multicellular organs: focus on the leaf. PLos Biology 6(7): 1373−1376.
  239. Tsukaya, H., Beemster, G.T.S. (2006). Genetics, cell cycle and expansion in organogenesis in plants. Journal of Plant Research 119:1−4.
  240. , B. (2004). Determination of cell fate in apical meristems. Curr. Opin. Plant Biol. 7:57
  241. , J.A. (1993). Cell communication and the coordination of differentiation. In: R.M. Amasino (Editor). Cellular communication in plants, pp.99−104, Plenum Press, New York.
  242. Wagers, A.J., Christensen, J.L. and Weissman, I.L. (2002). Cell fate determination from stem cells. Gene Therapy 9:606−612.
  243. Waites, R., Hudson, A. (1995). phantastica: a gene required for dorsoventrality of leaves in Antirrinum majus. Development 121:2143−2154.
  244. Waites, R., Hudson, A. (2001). The Handlebars gene required with Phantastica for dorsoventral asymmetry of organs and for stem cell activity in Antirrinum. Development 128:1923−1931.
  245. Ward, S.P., Leyser, O. (2004). Shoot branching. Current Opinion in Plant Biology 7:73−78.
  246. C.W. (1956a). Experimental and analytical studies of Pteridophytes. XXXII. Futher investigations on the effect of undercutting fern leaf primordial. Annals of Botany 20(77):
  247. C.W. (1956b). The reactivity of the apical meristem as ascertained by cytological and other techniques. New Phytologist 56:221−229.
  248. , C.W. (1961). Morphology. In: A.M. MacLeod, L.S. Cobley, (ed.). Contemporary botanical thought. Quadrangle Books, Chicago.
  249. Wardlaw C.W., Cutter, E.G. (1956). Experimental and analytical studies of Pteridophytes. XXXII. The effect of shallow incisions on organogenesis in Dryopteris aristata Druce. Annals of Botany 20(77):39−58.
  250. , A. (1893). The germ-plasm. A theory of heredity. 477 p., Charles Scribner’s Sons, New York.
  251. Wu, H., Cheung, A.Y. (2000). Programmed cell death in plant reproduction. Plant Molecular Biology 44:267−281.
  252. Zimmermann, W., Schneider, A.M. (1967). Mesozoische pteridophylle. Phytomorphology64.121.133.17:336−345.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!