Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Система метаболической регуляции транспорта слабых органических анионов в клетках проксимальных канальцев почки

Диссертация: Система метаболической регуляции транспорта слабых органических анионов в клетках проксимальных канальцев почки
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В заключение, следует отметить, что выводы проведенного в работе анализа, направленного на выявление метаболических путей, вовлеченных в регуляцию транспорта COA в ПКП, применимы только для почки крысы. Клетки ПКП почек представителей разных видов позвоночных отличаются в отношении организации метаболических процессов, участвующих в образовании глюкозы, что обусловлено различиями в распределении… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Общая характеристика ПКП
    • 1. 2. Методы исследования механизмов секреции COA в ПКП
    • 1. 3. Этапы секреции COA в ПКП
    • 1. 4. Кинетические аспекты транспорта COA в ПКП
    • 1. 5. Зависимость транспорта COA от энергетического метаболизма
    • 1. 6. Влияние физико-химических факторов на транспорт COA
    • 1. 7. Механизмы сопряжения транспорта COA с энергетическим метаболизмом клеток ПКП
  • Часть 2. Материалы и Методы
    • 2. 1. Регистрация накопления флуоресцеина в ПКП
      • 2. 1. 1. Почка лягушки
      • 2. 1. 2. Почка крысы
        • 2. 1. 2. 1. Метаболически активные канальцы
        • 2. 1. 2. 2. Метаболически неактивные канальцы
      • 2. 1. 3. Определение концентрации флуоресцеина, накопленного в ПКП
    • 2. 2. Определение степени восстановленности митохондриальных пиридиннуклеотидов
    • 2. 3. Оценка состояния клеток ПКП в срезах коры почки крысы
    • 2. 4. Определение содержания метаболитов в ПКП крысы
      • 2. 4. 1. Получение суспензии фрагментов коры почки крысы
      • 2. 4. 2. Измерение концентрации метаболитов
    • 2. 5. Регистрация потребления кислорода суспензией фрагментов коры почки крысы
    • 2. 6. Оценка жизнеспособности фрагментов коры почки крысы
    • 2. 7. Статистическая обработка и воспроизводимость результатов
    • 2. 8. Реактивы
  • Часть 3. Результаты и Обсуждение
    • 3. 1. Роль №, К-АТФазы в метаболической регуляции транспорта COA
      • 3. 1. 1. Влияние ацетата на Na-зависимое накопление флуоресцеина в ПКП лягушки
      • 3. 1. 2. Влияние ацетата на Na-независимое накопление флуоресцеина в ПКП крысы
      • 3. 1. 3. Влияние этанола на накопление флуоресцеина в ПКП крысы
      • 3. 1. 4. Влияние ионов кадмия на накопление флуоресцеина в ПКП лягушки и крысы
      • 3. 1. 5. Влияние сукцината на накопление флуоресцеина в ПКП крысы роль редокс-состояния митохондрий
    • 3. 2. Роль редокс-потенциала цитоплазмы в регуляции транспорта COA в ПКП крысы
      • 3. 2. 1. Влияние ингибиторов ГНГ на эффекты лактата и пирувата на накопление флуоресцеина
      • 3. 2. 2. Влияние ингибиторов ГНГ на базальное накопление флуоресцеина
    • 3. 2.3. Влияние ингибиторов ГНГ на стимуляторный эффект ионов кадмия на базальное накопление флуоресцеина
    • 3. 2.4. Влияние ингибиторов ГНГ на эффект этанола на накопление флуоресцеина
    • 3. 3. Роль внутриклеточного КГ в регуляции транспорта COA в ПКП крысы
      • 3. 3. 1. Влияние ингибиторов аспартатаминотрансферазы на базальное накопление флуоресцеина
      • 3. 3. 2. Влияние пент-4-еновой кислоты на базальное накопление флуоресцеина
      • 3. 3. 3. Влияние вальпроата на накопление флуоресцеина
    • 3. 3 .4. Влияние интермедиатов ЦТК на накопление флуоресцеина
      • 3. 3. 5. Влияние ингибиторов ГНГ на накопление флуоресцеина в среде с низким содержание Na+

Система метаболической регуляции транспорта слабых органических анионов в клетках проксимальных канальцев почки (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы: На протяжении нескольких десятилетий не ослабевает интерес к механизмам транспорта органических веществ через плазматические мембраны клеток. Данные функциональных транспортных исследований, полученные при использовании экспериментальных моделей разного уровня организации (от пузырьков плазматических мембран до тканевых срезов), в последние годы находят подтверждение в молекулярно-биологических работах, посвященных клонированию и иммуноцитохимической локализации полипептидных транспортеров. Результаты как функциональных, так и молекулярно-биологических исследований свидетельствуют о том, что значение систем транспорта органических веществ для жизнедеятельности клеток обусловлено не только их ролью в обеспечении внутриклеточного накопления нутриентов (сахаров, аминокислот и т. д.), но связано также с необходимостью защиты содержимого клеток от потенциально токсичных конечных продуктов обмена веществ и чужеродных соединений, попадающих в организм из внешней среды.

Наиболее известным примером транспортных систем второго типа являются работающие за счет гидролиза АТФ переносчики семейств Gpl70 и MRP, которые откачивают из клеток большую группу лекарственных веществ и известны в связи с явлением так называемой множественной лекарственной устойчивости опухолевых клеток [Silverman, 1999]. Велика роль подобных транспортных систем (например, локализованных в нейроэпителии хориоидного сплетения мозга и в эндотелии сетчатки глаза) в удалении конечных продуктов обмена из жидкостей, отделенных гисто-гематическими барьерами, путем однонаправленного трансцеллюлярного переноса органических веществ в кровь [Бреслер, Никифоров, 1981]. И, наконец, важная роль в механизмах поддержания постоянства внутренней среды организма принадлежит транспортным системам, обеспечивающим очищение плазмы крови от ненужных и вредных веществ посредством их экскреции в почках и печени [Pritchard, Miller, 1993].

Отличительными чертами процесса почечной экскреции органических соединений являются его высокая эффективность и широкий спектр веществ, воспринимаемых как транспортные субстраты [Ullrich, 1997]. Данные молекулярно-биологических работ свидетельствуют, что в процесс почечной экскреции органических веществ вовлечен целый ряд полипептидных транспортеров, обладающих сродством к химическим соединениям разных групп [Jacquemin et al., 1994; Saito et al., 1996; Lopez-Nieto et al., 1997; Masuda et al., 1997; Sekine et al., 1997; Sweet et al., 1997]. К ним относится и так называемая классическая мультиспецифичная система (ОАТ система в современной классификации) транспорта веществ, собирательно именуемых слабыми органическими анионами (COA), локализованная в почках только в клетках проксимальных канальцев [Sekine et al., 1997; 1998; Sweet et al., 1997; Race et al., 1999].

В литературе, посвященной изучению транспорта COA в проксимальных канальцах почки (ПКП), острую полемику всегда вызывал вопрос о движущей силе их противоградиентной транслокации через базолатеральную плазматическую мембрану внутрь клетоклимитирующего этапа трансэпителиального переноса [Haberle, 1981; Бреслер, Никифоров, 1981; Moller, Sheikh, 1983]. В настоящее время наиболее обоснованной выглядит схема, согласно которой противоградиентное накопление COA в клетках ПКП происходит по механизму антипорта с а-кетоглутаратом (КГ), цитоплазматический уровень которого поддерживается за счет его обратного симпорта с Na+ и/или его образования из других интермедиатов [Pritchard, Miller, 1993]. В последнее время получены данные, позволяющие предполагать, что антипорт с КГ осуществляют упоминавшиеся выше ОАТ транспортеры, а в симпорте КГ с Na+ участвуют SDCT2 транспортеры [Chen et al., 1999]. В рамках этой модели, транспорт COA в ПКП является третично-активным по способу сопряжения с энергетическим метаболизмом клеток — движущую силу противоградиентного переноса COA через базолатеральную мембрану создает направленный навстречу градиент КГ, величина которого, в свою очередь, зависит от градиента Na+, создаваемого ИаД-АТФазой. В то же время, активность НаД-АТФазы является основным детерминантом в энергетическом метаболизме клеток ПКП — уровень активного трансцеллюлярного транспорта Na+ не только зависит от скорости протекания процессов окислительного обмена, сопряженных с образованием АТФ, но и в значительной степени определяет энергетический статус клеток через влияние на метаболическое состояние митохондрий [Наточин, 1976; Balaban, 1990]. Следовательно, в регуляцию транспорта COA в ПКП через влияние как на внутриклеточный метаболизм КГ, так и на величину градиента Na+ на базолатеральной мембране неизбежно должны быть вовлечены метаболические процессы. Механизмы зависимости транспорта COA в клетках ПКП от клеточного энергетического метаболизма до наших работ оставались практически неизученными, что в немалой степени можно было объяснить отсутствием адекватных экспериментальных моделей для исследований такого рода.

Цель и задачи исследования

: Цель работы состояла в изучении механизмов энергетического контроля транспорта COA в эпителиальных клетках ПКП. Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

1. Разработать экспериментальную модель с минимальными структурно-функциональными повреждениями ткани, позволяющую регистрировать в разных экспериментальных условиях in vitro как активность системы транспорта COA, так и биохимические параметры, отражающие метаболическое состояние клеток ПКП.

2. Используя возможности фармакологической и функциональной модуляции скорости транспорта Na+, исследовать роль активности Ма, К-АТФазы в механизмах сопряжения транспорта COA с энергетическим метаболизмом клеток ПКП.

3. С помощью метода ингибиторного анализа исследовать связь транспорта COA в клетках ПКП с процессами взаимопревращений метаболических интермедиатов и выявить метаболические пути, вовлеченные в регуляцию изучаемого транспортного процесса через изменения цитоплазматического уровня КГ.

Научная новизна работы: Впервые на уровне интактных клеток изучена роль митохондрий в обеспечении энергией транспорта органических веществ в ПКП: показано, что транспорт COA в клетках ПКП регулируется в зависимости от (1) окислительно-восстановительного (редокс) состояния митохондрий, (2) потоков внутримитохондриальных реакций с участием пируваткарбоксилазы, аспартатаминотрансферазы и малатдегидрогеназы и (3) активности систем транспорта метаболических интермедиатов через внутреннюю мембрану митохондрий (малат-аспартатный челночный механизм и дикарбоксилатный, трикарбоксилатный, а-кетоглутаратный и пируватный переносчики).

Выявлена роль начальных этапов глюконеогенеза (ГНГ) в метаболической регуляции транспорта COA, обусловленная их участием в экспорте восстановительных эквивалентов из митохондрий в цитоплазму.

Показано, что стимуляция транспорта COA такими метаболическими субстратами, как ацетат, пируват или лактат происходит без активации ЦТК, тогда как для развития эффектов интермедиатов ЦТК необходима активация отдельных его стадий, но не цикла как целого.

Теоретическое и практическое значение работы: В работе дано обоснование нового подхода к изучению зависимости специализированной транспортной функции клетки от энергетического метаболизма, заключающегося в том, что механизмы метаболической регуляции рассматриваются как система связей с внутриклеточными процессами, обеспечивающих «встроенность» исследуемой транспортной системы в клеточный энергетический метаболизм. Анализ результатов проведен на основе представления о том, что, как и при регуляции биохимических процессов [Atkinson, 1977], регуляторными факторами для транспорта COA в клетках ПКП являются аденилатный статус клетки, редокс-потенциал митохондрий и цитоплазмы и уровень ацетил-КоА в митохондриях.

Разработанная экспериментальная модель может быть применима для исследования механизмов влияния чужеродных веществ на почечный транспорт и метаболизм, в том числе, побочных эффектов лекарственных препаратов, на уровне интактных клеток. При использовании в качестве одного из фармакологических агентов вальпроата, широко применяемого при лечении эпилепсии [Chadwick, 1985], в работе показано, что этот терапевтический препарат не только замедляет транспорт других органических анионов, конкурируя с ними за транспортные переносчики, но и воздействует на энергетический обмен в клетках ПКП, влияя на метаболизм пирувата. Обнаружено, что малеат, пент-4-еноат и ионы кадмия, вызывающие, как известно [Bergeron, Gougoux, 1989], нарушение процессов реабсорбции Сахаров, аминокислот и фосфата в клетках ПКП при хроническом применении, в краткосрочных опытах in vitro стимулируют транспорт COA на фоне повышения внутриклеточного содержания КГ. Дальнейшие исследования в этом направлении могут пролить свет на роль метаболических сдвигов в развитии нефротоксических эффектов. Основные положения работы, выносимые на защиту:

1. Полученные данные находятся в соответствии с теоретической моделью, согласно которой транспорт COA в клетки ПКП сопряжен с энергетическим метаболизмом по механизму антипорта с КГ через базолатеральную плазматическую мембрану.

2. Роль КГ в энергетическом сопряжении транспорта COA в ПКП обусловливает участие метаболических процессов в контроле этой специализированной клеточной функции, что проявляется как зависимость транспорта COA от аденилатного статуса 9 клетки, окислительно-восстановительного потенциала митохондрий и цитоплазмы и от доступности метаболических субстратов. 3. Относительный вклад процессов внутриклеточного образования КГ и его обратного симпорта с Na' в поддержание градиента КГ — движущей силы транспорта СОА через базолатеральную мембрану — варьирует в зависимости от условий, в которых находятся клетки.

Апробация работы: Материалы работы были представлены на: советско-финском симпозиуме по биомембранам (Ленинград, 1981) — IX всесоюзном совещании по эволюционной физиологии памяти Л. АОрбели (Ленинград, 1986) — всесоюзном семинаре «Спектроскопические методы исследования в физиологии и биохимии» (Ленинград, 1987) — VIII всесоюзной конференции по физиологии почек и водно-солевого обмена (Харьков, 1989) — всероссийском симпозиуме «Мембранный транспорт и функции клетки» (Санкт-Петербург, 1994) — семинаре факультетов физиологии и фармакологии Медицинской школы Университета штата Нью-Йорк (Buffalo, 1994) — семинаре секции сравнительной фармакологии мембран и внутриклеточной регуляции Национального института здоровья США (Research Triangle Park, 1994) — симпозиуме физиологического общества Великобритании (Aberdeen, 1994) — XXXIII международном конгрессе по физиологическим наукам (Санкт-Петербург, 1997).

5. Результаты работы находятся в соответствии с общепринятой моделью, согласно которой транслокация COA в клетки ПКП осуществляется по механизму антипорта с цитоплазматическим КГ при участии ОАТ транспортера. Стимуляция накопления флуоресцеина в ПКП крысы под влиянием ионов кадмия, пент-4-еновой или малеиновой кислот сопровождается повышением уровня КГ в клетках и блокируется в присутствии ионов лития, ингибирующих, как известно, обратный транспорт КГ в клетки. Фармакологический анализ эффектов субстратов окисления (ацетат, лактат, пируват, интермедиаты ЦТК) на транспорт флуоресцеина в ПКП крысы показывает, что они также могут быть опосредованы возрастанием уровня КГ в цитоплазме.

6. В поддержание уровня КГ в цитоплазме клеток ПКП вовлечены биохимические процессы, вследствие чего транспорт COA находится под контролем регуляторных параметров, таких как аденилатный статус клетки, редокс-потенциал митохондрий и цитоплазмы и внутримитохондриальный уровень ацетил-КоА, относящихся к системе регуляции клеточного энергетического метаболизма.

В заключение, следует отметить, что выводы проведенного в работе анализа, направленного на выявление метаболических путей, вовлеченных в регуляцию транспорта COA в ПКП, применимы только для почки крысы. Клетки ПКП почек представителей разных видов позвоночных отличаются в отношении организации метаболических процессов, участвующих в образовании глюкозы, что обусловлено различиями в распределении между цитоплазмой и митохондриями одного из ключевых ферментов ГНГ, фосфоенолпируваткарбоксикиназы (ФЕПКК) [обзор: Wirthensohn, Guder, 1986]. Поэтому механизмы контроля редокс-потенциала и поддержания уровня КГ в цитоплазме могут быть видоспецифичными. В эксперименте, это может проявляться отличиями в действии метаболических субстратов на накопление COA в ПКП почек представителей разных видов. Тем не менее, можно полагать, что общие принципы метаболической регуляции транспорта COA в ПКП универсальны. В нашей работе показано, что зависимость исследуемого транспортного процесса от аденилатного статуса клетки и редокс-потенциала митохондрий одинаковым образом проявляется на препаратах почек лягушки и крысы. Одной из задач будущих исследований является изучение роли редокс-потенциала цитоплазмы и митохондриального ацетил-КоА в регуляции транспорта COA в почках представителей других видов позвоночных.

Показать весь текст

Список литературы

  1. БерхинЕ.Б. Секреция органических веществ в почке. Л.: Наука. 1979.156с.
  2. В.М., Качман АН., Никифоров А. А. Прямое микрофлуориметрическое изучение прохождения органической кислоты через клетки проксимальных канальцев переживающей почки лягушки Rana temporaria// Журн.эвол.биохим. и физиол. 1976. Т. 12. С. 120−127.
  3. В.М., Наточин Ю. В. Угнетение секреции флуоресцеина в проксимальных канальцах почки лягушки (прижизненное исследование методом контактной микроскопии)//Бюлл.экспер.биол. и мед. 1973. Вып.6, С.67−69.
  4. В.М., Никифоров А. А. Кинетический анализ механизмов Na-зависимого транспорта органических кислот в проксимальных канальцах переживающей почки лягушки. I. Транспорт флуоресцеина и уранина в безнатриевой среде// Цитология. 1977а. Т. 19. С.82−89.
  5. В.М., Никифоров А. А. Активный транспорт органических кислот в проксимальных канальцах переживающей почки крысы в норме и при некоторых воздействиях. I. Влияние температуры, условий аэрации и ионов Na// Цитология. 1978. Т.20. С.1005−1011.
  6. В.М., Никифоров А. А. Транспорт органических кислот через плазматические мембраны. Л.: Наука. 1981. 203с.
  7. Дынник В В. Регуляция цикла трикарбоновых кислот. В сб. Молекулярные механизмы клеточного гомеостаза. Новосибирск: Наука. 1987. С. 113−129.
  8. А. Биохимия. Молекулярные основы структуры и функций клетки. М.: Мир. 1974. 957с.
  9. Мелвин-Хьюз Э. А. Физическая химия. М.: Изд.иностр.лит. 1962. Т.1.
  10. М.Г., Никифоров А. А., Бреслер В. М. Характеристика Na-зависимой системы активного транспорта слабых органических кислот в проксимальных канальцах переживающей почки степной черепахи//Цитология. 1980. Т.22. С.938−943.
  11. М.Г., Бреслер В.M., Никифоров А. А. Влияние искусственных градиентов NaCl и КС1 на активный транспорт органических кислот в деэнергизованных проксимальных канальцах почки I. Градиент NaCl// Цитология. 1982. Т.24. С.673−679.
  12. НаточинЮ.В. Ионорегулирующая функция почки. Л.: Наука. 1976.
  13. А. А. Сравнительное изучение систем активного транспорта органических кислот через клеточные слои у амфибий и млекопитающих// Автореф. дисс. канд. биол. наук. Ленинград. 1978.
  14. А. А. Влияние ацетата на Na-независимый транспорт органической кислоты в проксимальных канальцах почки крысы// Цитология. 1982. Т.24. С.449−456.
  15. А. А. Стимулирующее действие кадмия на Na-зависимый транспорт органической кислоты в почке лягушки// Цитология. 1985. Т.27. С.834−837.
  16. А. А., Бреслер В. М. Стимулирование кадмием Na-независимого транспорта органической кислоты в почечных канальцах// Цитология. 1984. Т.26. С.75−82.
  17. А.А., Острецова И. Б. Влияние метаболических субстратов и ингибиторов на транспорт слабых органических анионов в проксимальных канальцах почки крысы//Росс, физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1997. Т.83. С. 165−177.
  18. Ньюсхолм Э, Старт К. Регуляция метаболизма. М.: Мир. 1977. 397с.
  19. Г. И., Рудзит Э. А. Влияние условий инкубации на накопление пенициллина срезами коркового слоя почек кролика// Антибиотики. 1971. Т. 16. С.940−944.
  20. Э.А., Резниченко Г. И. Накопление пенициллина в срезах коркового слоя почек//Антибиотики. 1967. Т. 12. С.506−509.
  21. ХочачкаП., Сомеро Дж. Биохимическая адаптация. М.: Мир. 1988. 568с.
  22. Adkison K.D., Shen D.D. Uptake of valproic acid into rat brain is mediated by a medium-chain fatty acid transporter// J.Pharmacol.Exp. Ther. 1996. V. 276. P. 1189−1200.
  23. Alston T.A. Suicide substrates for mitochondrial enzymes// Pharmacol. cmd Ther. 1981. V. 12. P.1−41.
  24. Ammann HNoel J., Boulanger Y., Vinay P. Relationship between intracellular ATP and the sodium pump activity in dog renal tubules// CanJ.Physiol.Pharmacol. 1990. V. 68. P. 5767.
  25. Ammann H., Noel J., Tejedor A., Boulanger Y., Vinay P., Vinay P. Could cytoplasmic concentration gradients for sodium and ATP exist in intact cells?// Can.J.Physiol. Pharmacol. 1995. V.73. P.421−435.
  26. Ammer U., Natochin Y., Ullrich K.J. Tissue concentration and urinary excretion pattern of sulfofluorescein by the rat kidney// J.Am.Soc.Nephrol. 1993. V. 3. P. 1474−1487.
  27. Anagnostopoulos T. Electrophysiological study of the antiluminal membrane in the proximal tubule ofNecturus: effect of inorganic anions and SCN// J.Physiol., Lond. 1977. V. 267. P.89−111.
  28. Aronson P S. The renal proximal tubule: a model for diversity of anion exchangers and stilbene- sensitive anion transporters// Annu.Rev.Physiol. 1989. V. 51. P.419−441.
  29. Atkinson D.E. Cellular energy metabolism and its regulation. New York: Academic Press. 1977.
  30. Bagnasco S., Good D., Balaban R.S., Burg M.B. Lactate production in isolated segments of the rat nephron// Amer.J.Physiol. 1985. V. 248. P. F522-F526.
  31. Baker J.T. Dependence of p-aminohippurate transport on calcium in canine renal cortical slices// J.Physiol., Lond. 1979. V. 288. P.425−435.
  32. Balaban R.S. Regulation of oxidative phosphorylation in the mammalian cellJ! Amer. J.Physiol. 1990. V. 258. P. C377-C389.
  33. Balaban R.S., Mandel L.J. Coupling aerobic metabolism to active ion transport in the kidney// J.Physiol., Lond. 1980. V. 304. P.331−348.
  34. Balaban R.S., Soltoff S.P., Storey J.M., Mandel L.J. Improved renal cortical tubule suspension. Spectrophotometric study of 02 delivery// Amer.J.Physiol. 1980. V. 238. P. F50-F59.
  35. Balagura-Baruch S., Stone W.J. Renal tubular secretion of p-aminohippurate in the dog: effects of alpha-ketoglutarate// Nephron 1969. V. 6. P.633−642.
  36. Barac-Nieto M. Renal uptake of p-aminohippuric acid in vitro. Effects of palmitate and L-carnitine// Biochim.Biophys.Acta 1971. V. 233. P.446−452.
  37. Bergeron M., Gougoux A. The renal Fanconi syndrome// In: The metabolic basis of inherited disease. (Scriver CR, Beaudet W S., Valle D. eds.) New York: McGraw Hill. 1989. P.2569−2580.
  38. Bergmeyer H.U. Methods of enzymatic analysis. Veinham, New York, London: Verlag Chemie. 1974.
  39. Beyer K.H., Painter R.H., Wiebelhouse V.D. Enzymatic factors in the renal tubular secretion of phenol redH Amer. J.Physiol. 1950. V. 161. P.259−267.
  40. Blond D.M., Whittam R. Effects of sodium and potassium ions on oxidative phosphorylation in relation to respiratory control by a cell membrane adenosine triphosphatase// Biochem.J. 1965. V. 97. P.523−531.
  41. Bosackova J. The transport of inorganic ions and p-aminohippurate in isolated cells of the renal cortex of the rabbit// Biochim.Biophys.Acta 1963. V. 71. P.345−354.
  42. Boumendil-Podevin E.F., Podevin R.A. Stimulatory and inhibitory effects of sulfhydryl reagents on p-aminohippuric acid transport by isolated renal tubules// Biochim.Biophys.Acta 1977. V. 467. P.364−375.
  43. Bowman H.M., Hirsch GH., Hook J. B Effect of medium pH on p-aminohippurate accumulation by slices of rat renal cortex// Experientia 1973. V. 29. P.955−956.
  44. Bresler V.M., Bresler S.E., Nikiforov A.A. Structure and active transport in the plasma membrane of the tubules of frog kidney// Biochim. Biophys. A eta 1975. V. 406. P.526−537.
  45. Bresler V.M., Mozhayeva M.G., Nikiforov A.A. The role of CI in organic acid active transport in renal proximal tubules of rat// Gen.Physiol.Biophys. 1983. V. 2. P. 39−50.
  46. Bressler R, Corredo C., Brendel K. Hypoglycin and hypoglycin- like compounds// Pharmacol. Rev. 1969. V. 21. P. 105−130.
  47. Brien J.F., Loomis C.W. Pharmacology of acetaldehyde// CanJ.Physiol.Pharmacol. 1983. V. 61. P. 1−22.
  48. Brokl O H., Braun E.J., Dantzler W.H. Transport of PAH, urate, TEA, and fluid by isolated perfused and nonperfiised avian renal proximal tubules// Amer. J.Physiol. 1994. V. 266. P. R1085-R1094.
  49. Burckhardt G. Sodium-dependent dicarboxylate transport in rat renal basolateral membrane vesicles// Pfluegers Arch. 1984. V. 401. P.205−261.
  50. Burckhardt G, Ullrich K.J. Organic anion transport across the contraluminal membrane -Dependence on sodiumI I Kidney Intern. 1989. V. 36. P.370−377.
  51. Burg MB., Grantham J.J., Abramow M., Orloff J. Preparation and study of fragments of single rabbit nephron// Amer. J.Physiol. 1966. V. 210. P. 1293−1298.
  52. Burg M B., Orloff J. Effect of strophanthidin on electrolyte content and PAH accumulation of rabbit kidney slices// Amer.J.Physiol. 1962. V. 202. P.565−571.
  53. Cederbaum A.I., Dicker E. Effect of cyanamide on the metabolism of ethanol and acetaldehyde and on gluconeogenesis by isolated rat hepatocytes// Biochem.Pharmacol. 1981. V. 30. P.3079−3088.
  54. Chadwick D.W. Concentration-effect relationships of valproic acid// Clin.Pharmacokinet. 1985. V. 10. P. 155−163
  55. Chambers R., Kempton R.T. Indication of function of the chick mesonephros in tissue culture with phenol red// J.Cell.Comp.Physiol. 1933. V. 3.P.131−160.
  56. Chance B, Williams C M. The respiratory chain and oxidative phosphorylation// Adv.Enzymol. 1956. V. 17. P.65−134.
  57. Chatsudthipong V., Dantzler W.H. PAH-aKG countertransport stimulates PAH uptake and net secretion in isolated snake renal tubules// Amer. J.Physiol. 1991. V. 261. P. F858-F867.
  58. Chen X., Tsukaguchi H., Chen X -Z, Berger U.V., Hediger M.A. Molecular and functional analysis of SDCT2, a novel rat sodium-dependent dicarboxylate transporter// J.Clin.Invest. 1999. V.103. P.1159−1168.
  59. Cherian M.G., Goyer R.A. Metallothioneins and their role in the metabolism and toxicity of metals// Life Sci. 1978. V. 23. P. l-10.
  60. Chung S T., Park Y.S., Hong S.K. Effect of cations on transport of weak organic acids in rabbit kidney slices// Amer. J.Physiol. 1970. V. 219. P.30−36.
  61. Cohen J.J., Barac-Nieto M. Renal metabolism of substrates in relation to renal function// In: Handbook of Physiology, sect.8: Renal Physiology (Orloff J., Berliner R.W. eds.) Washington: American Physiological Society. 1973. P.909−1001.
  62. Copenhaver J.H., Davis J R. Effects of hydrogen ion concentration on transport characteristics of p-aminohippurate by rabbit kidney slices// Proc.Soc.Exp.Biol.Med. 1965. V. 119. P.611−614.
  63. Cornell N.W., Lund P., Krebs H.A. The effect of lysine on gluconeogenesis from lactate in rat hepatocytesII Biochem.J. 1974. V. 142. P.327−337.
  64. Crane R. K The gradient hypothesis and other models of carrier- mediated active transport// Rev.Physiol.Biochem.Pharmacol. 1977. V. 78. P.99−159.
  65. Cross R.J., Taggart J.V. Renal tubular transport: accumulation of p-aminohippurate by rabbit kidney slices// Amer. J.Physiol. 1950. V. 161. P. 181−190.
  66. Cunarro J.A., Weiner M.W. Effects of ethacrynic acid and furosemide on respiration of isolated kidney tubules: the role of ion transport and the source of metabolic energy// J.Pharmacol. Exp.Ther. 1978. V. 206. P.198−206.
  67. Cuthbert A.W. Interaction of sodium channels in transporting epithelia: a two-state model// Mol. Pharmacol. 1974. V. 10. P.892−903.
  68. Dantzler W.H. Comparison of renal tubular transport of urate and PAH in water snakes: evidence for differences in mechanisms and sites of transport// Comp.Biochem.Physiol. 1970. V. 34. P.609−623.
  69. W.H. К Effects on PAH transport and membrane permeability in isolated snake renal tubules// Amer.J.Physiol. 1974. V. 227. P. 1361−1370.
  70. Dantzler W.H. Comparative aspects of renal function// In: The kidney: physiology and pathophysiology (Seldin D.W., Giebisch G. eds.) New York: Raven Press. 1985. P.333−364.
  71. Dantzler W.H., Bentley S.K. High К effects on PAH transport and permeabilities in isolated snake renal tubules// Amer.J.Physiol. 1975. V. 229. P. 191−199.
  72. Dantzler WH, Bentley S.K. Low Na effects on PAH transport and permeabilities in isolated snake renal tubules// Amer.J.Physiol. 1976. V. 230. P.256−262.
  73. Dantzler W. H, Evans K.K. Effect of alpha-KG in lumen on PAH transport by isolated perfused rabbit renal tubules// Amer.J.Physiol. 1996. V. 271. P. F521-F526.
  74. Deetjen P., Sonnenberg H. Der tubulare Transport von p-Aminohippursaure// Pfluegers Arch. 1965. V. 285. P.35−44.
  75. Des Rosiers С., Di Donato L., Comte В., Laplante A., Marcoux C., David F., Fernandez C.A., Brunengraber H. Isotopomer analysis of citric acid cycle and gluconeogenesis in rat liver.
  76. Reversibility of isocitrate dehydrogenase and involvement of ATP-citrate lyase in gluconeogenesis// J.Biol.Chem. 1995. V. 270. P. 10 027−10 036.
  77. Despopoulos A. A definition of substrate specificity in renal transport of organic anions// J.Theoret. Biol. 1965. V. 8. P. 163−192.
  78. Despopoulos A., Gallhan P.X. Molecular features of sulfamide transport in renal excretory processesIIAmer.J.Physiol. 1962. V. 203. P. 19−26.
  79. Dickman KG., Mandel L.J. Glycolytic and oxidative metabolism in primary renal proximal tubule cultures// Amer. J.Physiol. 1989. V. 257. P. C333-C340.
  80. Doval M., Culebras M., Lopez-Farre A., Rengel M., Gougoux A., Vinay P., Lopez-Novoa J.M. Effect of valproate on lactate and glutamine metabolism by rat renal cortical tubules// Proc.Soc.Exp.Biol.Med. 1989. V. 190. P.357−365.
  81. Dudley RE., Gammal L.M., Klaassen D.D. Cadmium- induced hepatic and renal injury in chronically exposed rats, likely role of hepatic cadmium- metallothionein in nephrotoxicity// Toxicol.Appl.Pharmacol. 1985. V. 77. P.414−426.
  82. Edwards R.M., Stack E., Trizna W. alpha-Ketoglutarate transport in rat renal brush-border and basolateral membrane vesicles// J.Pharmacol.Exp. Ther. 1997, V. 281. P. 1059−1064.
  83. Evan A.P., Park Y.S., Solomon S. Changes in structure and function of rat kidney slices produced by low sodiumII Nephron 1978. V. 21. P.209−220.
  84. Eveloff J., Morishige W.K., Hong S.K. The binding of phenol red to rabbit renal cortex// Biochim.Biophys.Acta 1976. V. 448. P. 167−180.
  85. Farah A., Frazer M., Porter E. Studies on the uptake of N'-methylnicotinamide by renal slices of the dog// J.Pharmacol. Exp. Ther. 1959. V. 126. P.202−211.
  86. Forster R.P. Use of thin kidney slices and isolated renal tubules for direct study of cellular transport kinetics// Science 1948. V. 108. P.65−67.
  87. Forster R.P. Renal transport mechanisms// Eed.Proc. 1967. V. 26. P. 1008−1019.
  88. Forster R.P., Copenhaver J.H. Intracellular accumulation as an active process in a mammalian renal transport system in vitro. Energy dependence and competitive phenomena// Amer J.Physiol. 1956. V. 186. P. 167−171.
  89. Forster R P, Hong S.K. In vitro transport of dyes by isolated renal tubules of the flounder as disclosed by direct visualisation. Intracellular accumulation and transcellular movement// J. Cell Comp.Physiol. 1958. V. 51. P.259−272.
  90. Foulkes E.C., Miller B.F. Transport of p-aminohippurate from cell to lumen in kidney tubule// Amer.J.Physiol. 1959. V. 196. P.83−85.
  91. Foulkes E C., Miller B.F. The role of potassium in renal transport of p-aminohippurate// In. Membrane Transport and Metabolism (Kleinzeller A., Kotyk A. eds.) Praha: Publishing House of the Czechoslovak Academy of Sciences. 1961. P.559−565.
  92. Fowler B.A. Mechanisms of kidney cell injury from metals// Environ.Hea.lth Perspect. 1993. V. 100. P. 57−63.
  93. Franke H., Barlow C.H., Chance B. Fluorescence of pyridine nucleotide and flavoprotein as an indicator of substrate oxidation and oxygen demand of the isolated perfused rat kidney// Int.J.Biochem. 1980. V. 12. P.269−275.
  94. Franke H., Malyusz M., Runge D. Improved sodium and PAH transport in the isolated fluorocarbon-perfused rat kidneyII Nephron 1978. V. 22. P.423
  95. FribergL. Cadmium and the kidney// Environ. Health Perspect. 1984. V. 54. P. 1−11.
  96. Friedrichs D. On the stimulation of gluconeogenesis by L-lysine in isolated rat kidney cortex tubules// Biochim. Biophys. A eta 1975. V. 392. P.255−270.
  97. Friedrichs D., Schoener W. Stimulation of renal gluconeogenesis by inhibition of the sodium pump//Biochim.Biophys.Acta 1973. V. 304. P. 142−160.
  98. Gabbay R.A. Quinolinate inhibition of gluconeogenesis is dependent on cytosolic oxaloacetate concentration. An explanation for the differential inhibition of lactate and pyruvate gluconeogenesis//FEBSLett. 1985. V. 189. P.367−372.
  99. Gabriels G., Kramer C., Stark U., Greven J. Role of calcium/calmodulin-dependent protein kinase II in the regulation of the renal PAH and dicarboxylate transporters// Fundam. Clin. Pharmacol. 1999a. V. 13. P.59−66.
  100. Gabriels G., Werners A., Mauss S., Greven J. Evidence for differential regulation of renal proximal tubular p-aminohippurate and sodium-dependent dicarboxylate transport// J.Pharmacol.Exp.Ther. 1999b. V. 290. P.710−715
  101. Gerencser G.A., Chaisetseree C, Hong S.K. Acetate influence upon the transport kinetics of p-aminohippurate at 37o C in rabbit kidney slices// Proc.Soc.Exp.Biol.Med. 1977. V. 154. P.397−400.
  102. Gerencser G.A., Hong S.K. Roles of sodium and potassium ions on p-aminohippurate transport in rabbit kidney slices//Biochim.Biophys.Acta 1975. V. 406. P. 108−119.
  103. Gerencser G A, Park Y.S., Hong S.K. Sodium dependence upon the transport kinetics of p-aminohippurate in rabbit kidney slices// Proc.Soc.Exp.Biol.Med. 1973. V. 144. P.440−444.
  104. Gesek F. A., Strandhoy J.W. Alpha adrenoreceptor agonist stimulation of oxygen consumption in rat proximal and distal nephrons// J.Pharmacol.Exp.Ther. 1989. V. 249. P.529−534.
  105. Goegelein H. Ion channels in mammalian proximal renal tubule// Renal Physiol.Biochem. 1990. V. 13. P.8−25.
  106. Goldin H., Zmudka M., Tio F., Vasquez A., Preuss H.G. Paraaminohippurate and tetraethylammonium transport in fragments of rat renal cortex// Proc.Soc.Exp.Biol.Med. 1973.V. 144. P.692−696.
  107. Goldinger J.M., Erasmus B.D., Song Y.K., Koschier F. J, Hong S.K. Effects of SCN and N03 on organic anion transport in rabbit kidney cortical slices// Biochim.Biophys.Acta 1980. V. 598. P.357−365.
  108. Goldinger J.M., Khalsa B.D.S., Hong S.K. Photoaffinity labelling of organic acid transport system in proximal tubule// Amer.J.Physiol. 1984. V. 247. P. C217-C227.
  109. Gougoux A., Vinay P. Metabolic effects of valproate on dog renal cortical tubules// Can.J.Physiol.Pharmacol. 1988. V. 67. P.88−97.
  110. Gougoux A., Zan N., Danserean D., Vinay P. Experimental Fanconi’s syndrome resulting from 4-pentenoate infusion in the dogH Amer. J.Physiol. 1989. V. 257. P. F959-F966.
  111. Gougoux A., Zan N., Dansereau D., Vinay P. Metabolic effects of 4-pentenoate on isolated dog kidney tubules// Kidney Intern. 1992. V. 42. P. 586−594.
  112. Greville G.D. Intracellular compartmentation and the citric acid cycle// In: Citric Acid Cycle. Control and Compartmentation (Lowenstein J.M. ed.) New York and London: Marcel Dekker. 1969. P. 1−136.
  113. Gstraunthaler G., Thurner B, Weirich-Schwaiger H., Pfaller W. A novel gluconeogenic strain of OK cells with metabolic properties different from gluconeogenic LLC-PK1 cells// Cellular Physiol.Biochem. 1993. V. 2. P. J78−88.
  114. Guder W.G., Purschel S. The intracellular compartmentation of metabolites in isolated kidney cortex tubulesH Int.J.Biochem. 1980. V. 12. P.63−67.
  115. Guder W.G., Siess E., Wieland OH Studies on glucose synthesis in rat kidney cell suspensions//FEBSLett. 1969. V. 3. P.31−33.
  116. Gullans S R., Brazy PC, Dennis V.W., Mandel L.J. Interactions between gluconeogenesis and sodium transport in rabbit proximal tubule// Amer., J.Physiol. 1984. V. 246. P. F859-F869.
  117. Haberle D.A. Characteristics of p-aminohippurate transport in the mammalian kidney// In: Renal Transport of Organic Substances (Greger R. ed.) Berlin: Springer. 1981. P. 189 209.
  118. Harris S.I., Balaban R.S., Barrett L., Mandel L.J. Mitochondrial respiratory capacity and Na±and K±dependent adenosine triphosphate-mediated ion transport in the intact renal cell// J.Biol.Chem. 1981. V. 256. P. 10 319−10 328.
  119. Hawkins R.D., Kalant H. The metabolism of ethanol and its metabolic effects// Pharmacol.Rev. 1972. V. 24. P.67−157.
  120. Hayashi H, Hoshi T. Sodium-dependence of p-aminohippurate transport by rat kidney cortex slices// Arch.Int.Pharmacodyn. Ther. 1979. V. 240. P. 103−115.
  121. Hayashi H., Hoshi T. Effect of potassium on p-aminohippurate transport in rat kidney cortex slicesII Renal Physiol. 1982. V. 5. P. 10−17.
  122. Hayashi H., Takada M., Arita A. Effects of cadmium on the active transport of sodium by abdominal skin of a bullfrog (Rana catesbiana)// Japan., J.Physiol. 1977. V. 27. P.337−3 52.
  123. Hewitt W.R., Clark R.L., Hook J.B. Investigations on metabolic modulation of p-aminohippurate accumulation by rabbit renal cortical slices// J.Pharmacol.Exp.Ther. 1976. V. 199. P.498−509.
  124. Hillyard S.D., Gonick H.C. Effects of Cd++ on short-circuit current across epithelial membranes. I. Interactions with Ca+* and vasopressin on frog skin// J. Membrane Biol. 1976. V. 26. P. 109−119.
  125. Hillyard S.D., Sera R., Gonick H.C. Effects of Cd++ on short-circuit current across epithelial membranes, n. Studies with the isolated frog skin epithelium, urinary bladder and large intestindl JMembrane Biol. 1979. V. 46. P.283−291.
  126. Hiltunen J.K. Metabolic effects of pent-4-enoate in isolated rat heart// Biochem.J. 1978. V. 170. P.241−247.
  127. Hiltunen J.K., Jauhonen VP., Savolainen M.J., Hassinen I.E. Effects of pent-4-enoate on cellular redox state, glycolysis and fatty acid oxidation in isolated perfused rat heart// BiochemJ. 1978. V. 170. P.235−240.
  128. Hirsch G.H. Effects of potassium depletion in rats on renal organic ion transport// Can.J.Biochem. 1974. V. 52. P.90−92.
  129. Hoek J.B., Thomas A.P., Rooney T.A., Higashi K., Rubin E. Ethanol and signal transduction in the liver// FASEB J. 1992. V. 6. P.2387−2396.
  130. Hohage H., Lohr M., Querl U., Greven J. The renal basolateral transport system for organic anions: properties of the regulation mechanism// J.Pharmacol.Exp.Ther. 1994. V. 269. P.659−664.
  131. Hohage H., Mehrens T., Mergelsberg U., Lohr M., Greven J. Effects of extracellular cadmium on renal basolateral organic anion transport// Toxicol.Lett. 1998. V. 98. P. 189−194.
  132. Hohage H., Querl I.U., Morth D.M., Greven J. The basolateral organic cation transport system of rabbit kidney proximal tubules. Influence of inorganic anions// J.Pharmacol.Exp. Ther. 1996. V. 279. P.1086−1091.
  133. Hohenegger M. Lipid metabolism related to kidney function and electrolyte homeostasis// In: Renal Metabolism in Relation to Renal Function (Schmidt U., Dubach U.C. eds.) Bern: 1976. P.99−107.
  134. Holcomb T., Curthoys N.P., Gstraunthaler G. Subcellular localisation of PEPCK and metabolism of gluconeogenic substrains of renal cell lines// Amer.J.Physiol. 1995. V. 268. P. C449-C457.
  135. Hong S.K., Forster R.P. Further observations on the separate steps involved in the active transport of chlorophenol red by isolated renal tubules of the flounder in vitro// J. Cell.Comp.Physiol. 1959. V. 54. P.237−242.
  136. Hong S.K., Park Y.S. Transport of bromcresol green in the rabbit kidney slice// Amer. J.Physiol. 1971. V. 221. P. 1779−1784.
  137. Hori R, Okamura M., Takayama A., Hirozane K., Takano M. Transport of organic anion in the OK kidney epithelial cell lind/ Amer. J.Physiol. 1993. V. 264. P. F975-F980.
  138. Hori R., Takano M., Okano T., Kitojava S., Inui K.-I. Mechanisms of p-aminohippurate transport by brush border and basolateral membrane vesicles isolated from rat kidney cortex// Biochim. Biophys. A eta 1982. V. 692. P.97−100.
  139. Jacquemin E., Hagenbuch B., Stieger B, Wolkoff A. W, Meier P.J. Expression cloning of a rat liver Na-independent organic anion transporter// Proc.N.Y.Acad.Sci. 1994. V. 91. P. 133 137.
  140. Janssens P., Hems R., Ross B.D. The metabolic fate of lactate in renal cortical tubules// BiochemJ. 1980. V. 190. P.27−37.
  141. Jorgensen P L. Structure, function and regulation of Na, K-ATPase in the kidney// Kidney Intern. 1986. V. 29. P. 10−20.
  142. Jungwirth A., Paulmichl M., Lang F. Cadmium enhanced potassium conductance in cultured renal epitheloid (MDCK) cells// Kidney Intern. 1990. V. 37. P. 1477−1486.
  143. Kahn A.M., Shelat H., Weinman E.J. Urate and p-aminohippurate transport in rat renal basolateral vesicles// Amer J.Physiol. 1985. V. 249. P. F654-F661.
  144. Kanai N., Lu R, Bao Y., Wolkoff A.W., Schuster V.L. Transient expression of oatp organic anion transporter in mammalian cells: identification of candidate substrates// Amer.J.Physiol. 1996. V. 270. P. F319-F325.
  145. Karnovsky M.J., Himmelhoch H. Seasonal and starvation- induced changes in enzymatic pattern of the frog nephronII Amer J.Physiol. 1961. V. 201. P.781−785.
  146. Kasher J.S., Holohan P.D., Ross C.R. Na-Gradient-dependent p-aminohippurate (PAH) transport in rat basolateral membrane vesicles// J.Pharmacol.Exp.Ther. 1983. V. 227. P. 122−129.
  147. Kikuta Y., Hayashi H., Saito Y. Effect of changes in Na electrochemical potential gradient on p-aminohippurate transport in newt kidney// Biochim. Biophys. A eta 1979. V. 556. P.354−365.
  148. Kikuta Y., Hoshi T. Role of sodium ions in p-aminohippurate transport by newt kidney// Biochim.Biophys.Acta 1979. V. 553. P.404−416.
  149. Kim J.H., Hook J.B. On the mechanism of acetate enhancement of renal p-aminohippurate transportII Biochim.Biophys.Acta 1972. V. 290. P.368−374.
  150. Kim Y.K., Choi J.K., Kim J.S., Park Y.S. Changes in renal functions in cadmium- intoxicated ratsII Pharmacology and Toxicology 1988. V. 63. P.342−350.
  151. Kinne R. Selectivity and direction: plasma membranes in renal transport// Amer.J.Physiol. 1991. V. 260. P. F153-F162.
  152. Kinne R, Kinne-Saffran E. Renal metabolism: coupling of luminal and antiluminal transport processes// In: The Kidney: Physiology and Pathophysiology (Seldin D.W., Giebisch G. eds.) New York: Raven Press. 1985. P.719−737.
  153. Kinne R, Schwartz I.L. Isolated membrane vesicles in the evaluation of the nature, localisation and regulation of renal transport processes// Kidney Intern. 1978. V. 14. P.547−556.
  154. Kinne-Saffran E., Hulseweh M, Pfaff C., Kinne R.K.H. Inhibition of Na, K-ATPase by cadmium. Different mechanisms in different species// Toxicol.Appl.Pharmacol. 1993. V. 121. P.22−29.
  155. Kinsella J.L., Holohan P.D., Pessah N.I., Ross R. Transport of organic ions in renal cortical luminal and antiluminal membrane vesicles// J.Pharmacol.Exp. Ther. 1979. V. 209. P.443−450.
  156. Kinter W.B. Chlorphenol red influx and efflux, microspectrophotometry of flounder kidney tubulesII Amer. J.Physiol. 1966. V. 211. P. 1152−1164.
  157. Kinter W.B., Wong M.D. Peritubular membrane transport of PAH into proximal cells in Necturus kidney slicesII Amer.J.Physiol. 1974. V. 227. P.50−57.
  158. Kippen I., Klinenberg J R. Effects of renal fuels on uptake of PAH and uric acid by separated renal tubules of the rabbit// Amer. J.Physiol. 1978. V. 235. P. F137-F141.
  159. Klahr S. Methodology for study of kidney intermediary metabolism// In: Methods in Pharmacology, vol.4B: Renal Pharmacology. 1978. P.325−349.
  160. Klahr S., Hammerman M. Renal metabolism// In: The Kidney: Physiology and Pathophysiology (Seldin D.W., Giebisch G. eds.) New York: Raven Press. 1985. P.699−718.
  161. Klein K.L., Wang M.-S., Torikai S., Davidson W., Kurokawa K. Substrate oxidation by isolated single nephron segments of the rat// Kidney Intern. 1981. V. 20. P .29−3 5.
  162. Kliger A.S., Eastman S.T., Zachek K.M., Kullick M., Preuss H G. Effect of renal fuels on p-aminohippurate transport in rat renal cortical fragments// Metabolism 1977. V. 26. P.979−988.
  163. Kliger A.S., Hollyer R A., Preuss H.G. The mechanism of acetate stimulation of PAH transport in rat kidney fragmentsII Renal Physiol. 1982. V. 5. P. 18−26.
  164. Kliger A.S., Resing J. A., Eastman A.H., Eastman S T., Preuss H.G. Effects of medium pH on p-aminohippurate transport in rat kidney fragments// Nephron 1978. V. 20. P.32−39,
  165. Knoefel P.K., Huang K.C. Biochemorphology of renal tubular transport: hippuric acid and relative substances// J.Pharmacol.Exp.Ther. 1959. V. 126. P.296−303.
  166. Koschier F.J., Eisner R.W., Holleman D.F., Hong S.K. Organic anion transport by renal cortical slices of harbor seals (Phoca vitulina)// Comp.Biochem.Physiol. 1978. V. 60A. P.289−292.
  167. Krebs H.A., Freedland R.A., Hems R., Stubbs M. Inhibition of hepatic gluconeogenesis by ethanolH Biochem.J. 1969. V. 112. P. 117−124.
  168. Krebs H.A., Gasqoyne T., Notton B.M. Generation of extramitochondrial reducing power in gluconeogenesis// Biochem.J. 1967. V. 102. P.275−282.
  169. Kriz W., Bankir L. A standard nomenclature for structures of the kidney// Amer. J.Physiol. 1988. V. 254. P. F1-F8.
  170. Kriz W., Kaissling B. Structural organisation of the mammalian kidney// In: The kidney: physiology and pathophysiology (Seidin D.W., Giebisch G. eds.) New York: Raven Press. 1985. P.265−306.
  171. Kurokawa K. Use of isolated single nephron segments to study metabolic heterogeneity of the nephronIIMiner.ElectrolyteMetab. 1983. V. 9. P.260−269.
  172. Kutzer M., Meer S., Haller S., Greven J. Basolateral glutarate transport by isolated S2 segments of rabbit kidney proximal tubules// J.Pharmacol.Exp. Ther. 1996. V. 277. P. 316 320.
  173. Kwon O., Kwon H.M., Hong S.K., Goldinger J M. Size selected mRNA induces expression of p-aminohippurate transport in Xenopus oocytes// Proc.Soc. Exp. Biol.Med. 1989. V. 192. P.205−208.
  174. R., Chan B.S., Schuster V.L. Cloning of the human kidney PAH transporter: narrow substrate specificity and regulation by protein kinase C// Amer. J.Physiol. 1999. V. 276. P. F295-F303.
  175. Malvin R.L., Wilde W.S., Sullivan LP. Localisation of nephron transport by stop-flow analysis// Amer. J.Physiol. 1958. V. 194. P. 135−142.
  176. Mandel L.J. Metabolic substrates, cellular energy production, and the regulation of proximal tubular transport// Annu.Rev.Physiol. 1985. V. 47. P.85−101.
  177. Mandel L.J. Primary active sodium transport, oxygen consumption, and ATP: coupling and regulationH Kidney Intern. 1986. V. 29. P.3−9.
  178. Mandel L.J. Bioenergetics of membrane transport processes// In: Membrane Physiology (Andreoli T.E., Hoffman J.F., Fanestil D.D., Schultz S.G. eds.) New York: Plenum Medical Book Company. 1988. P.295−310.
  179. Markwell M.A.K., Haas S.M., Beiler L.L., Tolbert ME. A modification of Lowry procedure to simplify protein determination in membrane and lipoprotein samples// Analyt.Biochem. 1978. V. 87. P.206−210.
  180. Marshall E.K., Vickers J.L. The mechanism of the elimination of phenolsulphophtalein by the kidney II Bull. Johns Hopkins Hosp. 1923. V. 34. P. l-6.
  181. Martin G., Durozard D., Besson J., Baverel G. Effect of the antiepileptic drug sodium valproate on glutamine and glutamate metabolism in isolated human kidney tubules// Biochim. Biophys. Acta 1990. V. 1033. P.261−266.
  182. Martin G., Michoudet C., Baverel G. Stimulation of glutamine metabolism by the antiepileptic drug, sodium valproate, in isolated dog kidney tubules// Biochem.Pharmacol. 1989. V. 38. P.3947−3952.
  183. Masereeuw R., Saleming W.C., Miller D.S., Russel F.G. Interaction of fluorescein with the dicarboxylate carrier in rat kidney cortex mitochondria// J.Pharmacol.Exp. Ther. 1996. V. 279. P.1559−1565.
  184. Masereeuw R, van den Bergh E.J., Bindels R.J., Russel F.G. Characterisation of fluorescein transport in isolated proximal tubular cells of the rat: evidence for mitochondrial accumulation// J.Pharmacol.Exp. Ther. 1994. V. 269. P. 1261−1267.
  185. Masuda S., Saito H., Nonoguchi H., Tomita K, Inui K. mRNA distribution and membrane localisation of the OAT-K1 organic anion transporter in rat renal tubules// FEBS Lett. 1997. V. 407. P. 127−131.
  186. Matsushima Y., Gemba M. Stimulatory effect of calcium ions on p-aminohippurate accumulation by rat kidney cortical slices// Renal Physiol. 1981. V. 4. P. 191−198.
  187. Maude D.L. Effect of substrates and inhibitors of tricarboxylic acid cycle on proximal tubular fluid transport in vitro// Biochim.Biophys.Acta 1970. V. 215. P.216−219.
  188. Maxild J. Role of fatty acid metabolism on renal transport of p-aminohippurate in vitro// Biochim.Biophys.Acta 1971. V. 233. P.434−445.
  189. Maxild J. Energy requirements for active transport of p-aminohippurate in renal cortical slices// Arch.Internat.Physiol.Biochim. 1973. V. 81. P.501−521.
  190. Maxild J., Moller J.V. Metabolic studies on renal transport of p-aminohippurate in vitro// Biochim.Biophys.Acta 1969. V. 184. P.614−624.
  191. Maxild J., Moller J.V., Sheikh M.I. An energy-dependent, sodium-independent component of active p-aminohippurate transport in rabbit renal cortex// J.Physiol., Lond. 1981. V. 310. P.273−283.
  192. Meijer A.J., Van Dam K. The metabolic significance of anion transport in mitochondria// Biochim.Biophys.Acta 1974. V. 346. P.213−244.
  193. Meijer A.J., Williamson JR. Transfer of reducing equivalents across the mitochondrial membrane. I. Hydrogen transfer mechanisms involved in the reduction of pyruvate to lactate in the isolated liver cellsIIBiochim.Biophys.Acta 1974. V. 333. P.1−11.
  194. Michoudet CBaverel G. Characteristics of acetaldehyde metabolism in isolated dog, rat and guinea- pig kidney tubules// Biochem.Pharmacol. 1987. V. 36. P.3987−3991.
  195. Miller D.S. Heavy metal inhibition of para-aminohippurate transport in flounder renal tissue. Sites ofHgC12 actionII J.Pharmacol.Exp.Ther. 1981. V. 219. P.428−434.
  196. Miller D.S., Pritchard J.B. Nocodazole inhibition of organic anion secretion in teleost renal proximal tubulesII Amer. J.Physiol. 1994. V. 267. P. R695-R704.
  197. Miller DS, Pritchard J.B. Dual pathways for organic anion secretion in renal proximal tubule// J.Exp.Zool. 1997. V. 279. P.462−470.
  198. Miller D.S., Stewart D.E., Pritchard J.B. Intracellular compartmentation of organic anions within renal cellsII Amer. J.Physiol. 1993. V. 264. P. R882-R890.
  199. Miller J.H. Sodium-sensitive, probenecid-insensitive p-aminohippuric acid uptake in cultured renal proximal tubule cells of the rabbit// Proc.Soc.Exp.Biol.Med. 1992. V. 199. P.298−304.
  200. Misanko B.S., Park Y.S., Solomon S. Effect of hypophysectomy on p-aminohippurate transport kinetics in rat renal cortical slices// J.Endocrynol. 1977. V. 74. P. 121−128.
  201. Moller J. V., Sheikh M L Renal organic anion transport system pharmacological, physiological and biochemical aspects// Pharmacol.Rev. 1983. V. 34. P.315−358.
  202. Morel F., Chabardes D. Functional segmentation of the nephron// In: The kidney: physiology and pathophysiology (Seldin D.W., Giebisch G. eds.) New York: Raven Press. 1985. P.519−530.
  203. Murer H., Burckhardt G. Membrane transport of anions across epithelia of mammalian small intestine and kidney proximal tubules// Rev.Physiol.Biochem.Pharmacol. 1983. V. 96. P. 1−51.
  204. Murer H., Gmaj P. Transport studies in plasma membrane vesicles isolated from renal cortex// Kidney Intern. 1986. V 30. P. 171−186.
  205. Murthy L., Foulkes E C. Movement of solutes across luminal cell membranes in kidney tubules of the rabbit// Nature 1967. V. 213. P. 180−181.
  206. Nagai J., Takano M., Hirozane K., Yasuhara M, Inui K. Specificity of p-aminohippurate transport system in the OK kidney epithelial cell line// J.Pharmacol.Exp.Ther. 1995. V. 274. P.1161−1166.
  207. Natochin Y.V., Chernigovskaya T V. Evolutionary physiology: history, principles// Comp.Biochem. Physiol. 1997. V. 117A. P. 1−17.
  208. Nechay B.R., Saunders J.P. Inhibition of renal adenosine triphosphatase by cadmium// J.Pharmacol.Exp.Ther. 1977. V. 200. P.623−629.
  209. Nielsen P., Rasmussen F. Relationships between molecular structure and excretion of drugs// LifeSci. 1975. V. 17. P. 1495−1512.
  210. Nikiforov A.A. Effect of acetate on transport of organic acid (fluorescein) in renal proximal tubules of frog// Biochim.Biophys. Acla 1982. V. 686. P.36−46.
  211. Nikiforov A.A. Stimulation by aminooxyacetate of fluorescein uptake in rat renal tubules in vitro: role of intracellular alpha-ketoglutarate// J.Pharmacol.Exp.Ther. 1995. V. 274. P. 1204−1208.
  212. Nikiforov A. A., Ostretsova IB. Effects of inhibitors of gluconeogenesis on weak organic acid uptake in rat renal tubules// Biochem. Pharmacol. 1992. V. 44. P.2213−2221.
  213. Nikiforov A.A., Ostretsova I B. Stimulatory effect of ethanol on weak organic acid uptake in rat renal tubules// Biochem.Pharmacol. 1994a. V. 47. P.821−825.
  214. Nikiforov A. A., Ostretsova I.B. Stimulation of weak organic acid uptake in rat renal tubules by cadmium and nystatin// Biochem.Pharmacol. 1994b. V. 47. P.815−820.
  215. Noe B., Hagenbuch B., Stieger B., Meier P.J. Isolation of a multispecific organic anion and cardiac glycoside transporter from rat brain// Proc.N.Y.Acad.Sci. 1997. V. 94. P. 1 034 610 350.
  216. Nowak G., Schnellmann R.G. Improved culture conditions stimulate gluconeogenesis in primary cultures of renal proximal tubule cellsII Amer. J.Physiol. 1995. V. 268. P. C1053-C1061.
  217. Ohtomo Y., Aperia A., Sahlgren B., Johansson B.L., Wahren J. C-peptide stimulates rat renal tubular Na+, K (+)-ATPase activity in synergism with neuropeptide YII Diabetologia 1996. V. 39. P. 199−205.
  218. Orlov Yu. N-, Zherebtsova M.A., Kazbekov E.N. Affinity identification of organic anion transporters in brush-border membrane vesicles from rat kidney// Biochim.Biophys.Acta 1994. V.1192. P. 117−124.
  219. Ostretsova IB., Nikiforov A.A. Weak organic acid uptake in rat renal tubules in vitro: stimulation by pent-4-enoic acid// Comp.Biochem.Physiol. 1997. V. 117C. P. 1−6.
  220. Palmer L.G. Epithelial Na channels, function and diversityII Annu.Rev.Physiol. 1992. V. 54. P.51−66.
  221. Papa S., Lofrumento N.E., Paradies G., Quagliariello E. The inhibition of succinate oxidation in isolated mitochondria by uncouplers// Biochim.Biophys.Acta 1968. V. 153. P.306−308.
  222. Park Y.S., Solomon S. pH-Temperature dependence of organic acid transport in rat kidney slicesI I Amer. J.Physiol. 1977. V. 233. P. F382-F387.
  223. Park Y.S., Yoo H.S., Hong S.K. Kinetic transport of organic acids in rabbit kidney slices// Amer. J.Physiol. 1971. V. 220. P.95−99.
  224. Pegg D.G., Hook J.B. Glutathione-S-transferases: an evaluation of their role in renal organic anion transport// J.Pharmacol.Exp. Ther. 1977. V. 200. P.65−74.
  225. Podevin R.A., Boumendil-Podevin E.F. Monovalent cation and ouabain effects on PAH uptake by rabbit kidney slices// Amer. J.Physiol. 1977. V. 232. P. F239-F247.
  226. Podevin R.A., Boumendil-Podevin E.F., Priol C. Concentrative PAH transport by rabbit kidney slices in the absence of metabolic energy// Amer. J.Physiol. 1978. V. 235. P. F278-F285.
  227. Pouliot J.-F., Gougoux A., Beliveau R. Brush border membrane proteins in experimental Fanconi’s syndrome induced by 4-pentenoate and maleate// CanJ.Physiol.Pharmacol. 1992. V. 70. P. 1247−1253.
  228. Pritchard J.B. Coupled transport of p-aminohippurate by rat kidney basolateral membrane vesiclesII Amer.J.Physiol. 1988. V. 255. P. F597-F604.
  229. Pritchard J.B. Rat renal cortical slices demonstrate p-aminohippurate/glutarate exchange and sodium/glutarate coupled p-aminohippurate transport// J.Pharmacol.Exp.Ther. 1990. V. 255. P.969−975.
  230. Pritchard J.B. Intracellular alpha-ketoglutarate controls the efficacy of renal organic anion transport//J.Pharmacol.Exp. Ther. 1995. V. 274. P. 1278−1284.
  231. Pritchard J.B., Miller D.S. Comparative insights into the mechanisms of renal organic anion and cation secretion// AmerJ.Physiol. 1991. V. 261. P. R1329-R1340.
  232. Pritchard J. B, Miller D.S. Proximal tubular transport of organic anions and cations// In: The Kidney: Physiology and Pathophysiology (Seldin D.W., Giebisch G. eds.) New York: Raven Press, Ltd. 1992. P.2921−2945.
  233. Pritchard J.B., Miller D.S. Mechanisms mediating renal secretion of organic anions and cations/IPhysiol.Rev. 1993. V. 73. P.765−796.
  234. Pritchard J.B., Miller D.S. Intracellular compartmentation of organic anions and cations during renal secretion// Cellular Physiol.Biochem. 1996. V. 6. P.50−59.
  235. Puck T.T., Wasserman K, Fishman A.F. Some effects of inorganic ions on the active transport of phenol red by isolated kidney tubules of the flounder// J.Cell.Comp.Physiol. 1952. V. 40. P.73−88.
  236. Quebbemann A.J., Anders M.W. Renal tubular conjugation and excretion of phenol and p-nitrophenol in the chicken: differing mechanisms of renal transfer// J.Pharmacol.Exp. Ther. 1973. V. 184. P.695−702.
  237. Race J.E., Grassl S.M., Williams W.J., Holtzman E.J. Molecular cloning and characterisation of two novel human renal organic anion transporters (hOATl and hOAT3)// BBRC 1999. V. 255. P.508−514.
  238. Rennick B.R., Prior M.Z. Effects of autonomic drugs on renal tubular transport of catecholamines in the chicken// J Pharmacol Exp Ther 1965. V. 148. P.267−269.
  239. Richards AN., Barnwell J.B. Experiments concerning the question of secretion of phenolsulphonephtalein by renal tubule// Proc.Roy.Soc., London 1927. V. 102. P.72−91.
  240. Rifkin R.J. In vitro inhibition of Na-K and Mg-ATPase by mono-, di- and trivalent cations// Proc. Soc.Exp.Biol.Med. 1965. V. 120. P.802−804.
  241. Rognstad R. Gluconeogenesis in the kidney cortex. Flow of malate between compartments// BiochemJ. 1970. V. 116. P.493−502.
  242. Rognstad R., Katz J. Gluconeogenesis in the kidney cortex: effects of D-malate and aminooxyacetate// Biochem.J. 1970. V. 116. P.483−491.
  243. Rognstad R, Katz J. Gluconeogenesis in the kidney cortex. Quantitative estimation of carbon flow// J.Biol.Chem. 1972. V. 247. P.6047−6054.
  244. Ross C.R., Pessah N.I., Farah A. Studies of the uptake and runout of p-aminohippurate and N-methylnicotineamide in dog renal slices// J.Pharmacol.Exp. Ther. 1968. V. 160. P.381−386.
  245. Ross C.R., Weiner I.M. Adenine nucleotides and PAH transport in slices of renal cortex: effects of DNP and CNII Amer. J. Physiol 1972. V. 222. P.356−359.
  246. Rover N, Kramer C., Stark U., Gabriels G, Greven J. Basolateral transport of glutarate in proximal S2 segments of rabbit kidney: kinetics of the uptake process and effect of activators of protein kinase A and CI/ Pfluegers Arch. 1998. V. 436. P.423−428.
  247. Rumbach L., Cremel G., Marescaux C., Warter J.M., Waksman A. Valproate-induced hyperammonemia of renal origin. Effects of valproate on glutamine transport in rat kidney mitochondria// Biochem.Pharmacol. 1989. V. 38. P.3963−3967.
  248. Russel F.G.M., Linden van der P.E.M., Vermeulen W.G., Heiji M., Os van C.H., Ginnekan van C A M. Na and H gradient-dependent transport of p-aminohippurate in membrane vesicles from dog kidney cortex// Biochem.Pharmacol. 1988. V. 37. P.2639−2649.
  249. Rutman J.Z., Meltzer L.E., Kitchell JR., Rutman R, George P. Effect of metal ions on in vitro gluconeogenesis in rat kidney cortex slices// Amer.J.Physiol. 1965. V. 208. P.841−846.
  250. Sacktor B. L-Glutamate transport in renal plasma membrane vesicles// Mol.Cell.Biochem. 1981. V. 39. P.239−252.
  251. Saito H., Masuda S ., Inui K.-I. Cloning and functional characterisation of a novel rat organic anion transporter mediating basolateral uptake of methotrexate in the kidney// J.Biol.Chem. 1996. V. 271. P.20 719−20 725.
  252. Schachter D., Manis J.G., Taggart J.V. Renal synthesis, degradation and active transport of aliphatic acyl amino acids. Relationship to p-aminohippurate transport// Amer. J.Physiol. 1955.V. 182. P.537−544.
  253. Schafer J.A., Williams J.C. Transport of metabolic substrates by the proximal nephron// Annu.Rev.Physiol. 1985. V. 47. P. 103−125.
  254. Schannon J. The excretion of phenol red by the dog// Amer.J.Physiol. 1935. V. 113. P.602−610.
  255. Schmidt U., Dubach U.C. Na±K±stimulated adenosinetriphosphatase: intracellular localisation within the proximal tubule of the rat nephron// Pfluegers Arch. 1971. V. 330. P.265
  256. Schmitt C., Burckhardt G. Modulation by anions of p-aminohippurate transport in bovine renal basolateral membrane vesicles// Pfluegers Arch. 1993. V. 425. P.241−247.
  257. Schoolwerth A C., LaNoue K.F. Transport of metabolic substrates in renal mitochondria// Annu.Rev.Physiol. 1985. V. 47. P.143−171.
  258. Schoolwerth AC., Smith B.C., Culpepper R.M. Renal gluconeogenesis// Miner. Electrolyte Metab. 1988. V. 14. P.347−361.
  259. Schreiner G.E. Toxic nephropathy due to drugs, solvents and metals// In: Drugs Affecting Kidney Function and Metabolism. Progr. Biochem. Pharmacol., vol.7 (Edwards K.D.G. ed.) Basel: Karger. 1972. P.248−284.
  260. SchulzH. Inhibitors of fatty acid oxidation// Life Sci. 1987. V. 40. P. 1443−1449.
  261. Segal S ., Thier S O. Renal handling of amino acids// In. Handbook of Physiology. Sect. 8: Renal Physiology (Orloff J., Berliner R. W, eds.).) Washington: American Physiological Society. 1973. P.653−676.
  262. Sehr P.A., Bore P.J., Papatheofanis J., Radda G.K. Non-destructive measurement of metabolites and tissue pH in the kidney by 31P nuclear magnetic resonance// Brit. J.Exper.Pathol. 1979. V. 60. P.632−641.
  263. Seiler W., Echsel H., Hohenegger M. Further studies on acute cadmium poisoning// Pfluegers Arch. 1978. V. 377, suppl. P.26.
  264. Seki G., Coppola S., Yoshitomi K., Burckhardt B.C., Samarzija I., Muller-Berger S., Fromter E. On the mechanism of bicarbonate exit from renal proximal tubular cells// Kidney Int 1996. V. 49. P. 1671−1677.
  265. Sekine T., Cha S.H., Tsuda M., Apiwattanakul N., Nakajima N., Kanai Y., Endou H. Identification of multispecific organic anion transporter 2 expressed predominantly in the liver// FEBSLett. 1998. V. 429. P. 179−182.
  266. Sekine T., Watanabe N., Hosoyamada M., Endou H. Expression cloning and characterisation of a novel multispecific organic anion transporter// J.Biol.Chem. 1997. V. 272. P. 1 852 618 529.
  267. Sheikh M.I., Moller J.V. Gradient-dependent stimulation of renal transport of p-aminohippurate// Biochem.J. 1982. V. 208. P.243−246.
  268. Sheikh M.I., Moller J.V. Nature of Na±independent stimulation of renal transport of p-aminohippurate by exogenous metabolites// Biochem.Pharmacol. 1983. V. 32. P.27 452 749.
  269. Sheikh M.I., Stahl M. Characteristics of accumulation of probenecid by rabbit kidney cortical slices//Amer.J.Physiol. 1977. V. 231. P. F513-F523.
  270. Sheikh M.I., Stahl M., Jacobsen C. A comparative study of the accumulation of probenecid and analogues in rabbit kidney tubules in vitro// Biochem.Pharmacol. 1979. V. 28. P. 1522.
  271. Shideman F.E., Rathbum R, Stoneman F. Inhibition of the renal tubular transport of p-aminohippurate (PAH) and phenolsulfophthalein as affected by acetate// Amer.J.Physiol. 1952. V. 170. P.31−37.
  272. Shideman F.E., Rene R.M. Succinate oxidation and Krebs cycle as an energy source for renal tubular transport// Amer. J.Physiol. 1951. V. 166. P. 104−112.
  273. Shimada H., Moewes B., Burckhardt G. Indirect coupling to Na+ of p-aminohippuric acid uptake into rat renal basolateral membrane vesicles// Amer.J.Physiol. 1987. V. 253. P. F795-F801.
  274. Silva P. Renal fuel utilisation, energy requirement, and function// Kidney Intern. 1987. V. 32, suppl.22. P. S9-S14.
  275. Silverman J. A. Multidrug-resistance transporters//Pharm.Biotechnol. 1999. V.12. P.353−386. Silverman M., Turner R.J. The renal proximal tubule// In. Biomembranes, vol. lO (Manson L A.ed.) 1979. P. 1−50.
  276. Slater E C. Application of inhibitors and uncouplers for a study of oxidative phosphorylation//
  277. MethEnzymol. 1967. V. 10. P.48−57. Smith B.C., Clotfelter LA, Cheung J.Y., LaNoue K.F. Differences in 2-oxoglutarate dehydrogenase regulation in liver and kidney see comments.// Biochem.J. 1992. V. 284. P.819−826.
  278. Soltoff S.P., Mandel L.J. Active ion transport in the renal proximal tubule. I. Transport and metabolic studies// J.Gen.Physiol. 1984. V. 84. P.601−622.
  279. Spencer A.M., Sack J., Hong S.K. Relationship between PAH transport and Na, K-ATPase activity in the rabbit kidney// Amer.J.Physiol. 1979. V 236. P. F126-F130.
  280. Sperber J. A new method for the study of renal tubular excretion in birds// Nature 1946. V. 158. P.131
  281. Stark U., Vanden Bergh H, Rover N., Greven J. Effect of activation of protein kinase A and of protein kinase C on the kinetics of the renal basolateral PAH transporter// Fundam.Clin.Pharmacol. 1998. V. 12. P.44−49.
  282. Sullivan LP., Grantham J.A., Rome L, Wallace D, Grantham J.J. Fluorescein transport in isolated proximal tubules in vitro: epifluorometric analysis// Amer.J.Physiol. 1990. V. 258. P. C46-C51.
  283. Sullivan L P., Grantham J.J. Specificity of basolateral organic anion exchanger in proximal tubule for cellular and extracellular solutesI! J.Am.Soc.Nephrol. 1992. V. 2. P. 1192−1200.
  284. Sweet D.H., Miller D.S., Pritchard J.B. Localization of an organic anion transporter-GFP fusion construct (rROATl-GFP) in intact proximal tubules// Amer.J.Physiol. 1999. V.276. P. F864-F873
  285. Sweet D.H., Wolff N. A., Pritchard J.B. Expression cloning and characterisation of ROAT1. The basolateral organic anion transporter in rat kidney// J.Biol.Chem. 1997. V. 272. P.30 088−30 095.
  286. Taggart J. V., Forster R.P. Renal tubular transport: Effect of 2,4-dinitrophenol and related compounds on phenol red transport in the isolated tubules of the flounder// Amer.J.Physiol. 1950. V. 161(1). P. 167−172.
  287. Taggart J.V., Silverman L., Trayner E.M. Influence of renal electrolyte composition in the tubular excretion of p-aminohippurate// Amer. J.Physiol. 1953. V. 173. P. 345−3 50.
  288. Takada M., Hayashi H. Effects of cadmium ion on the Na, K-ATPase of microsomes obtained from frog skin11 Japan. J.Physiol. 1978. V. 28. P.473−483.
  289. Takano M., Hirozane K, Okamura M., Takayama A., Nagai J., Hori R. p-Aminohippurate transport in apical and basolateral membranes of the OK kidney epithelial cells// J.Pharmacol.Exp. Ther. 1994. Y. 269. P.970−975.
  290. Takano M., Nagai J., Yasuhara M., Inui K. Regulation of p-aminohippurate transport by protein kinase C in OK kidney epithelial cells// Amer.J.Physiol. 1996. V. 271. P. F469-F475.
  291. Tanner G.A., Isenberg M.I. Secretion of p-aminohippurate by rat kidney proximal tubules// Amer.J.Physiol. 1970. V. 219. P. 889−892.
  292. Taub M., Saier M.H. Regulation of 22Na transport by calcium in an established kidney epithelial cell line// J.Biol.Chem. 1979. V. 254. P. 11 440−11 444.
  293. Trimble M.E. Palmitate transport by rat renal basolateral membrane vesicles in the presence of albumin// J.Am.Soc.Nephrol. 1993. V. 3. P. 1920−1929.
  294. Tse S.S., Bildstein C.L., Lin D., Mamelok R.D. Effects of divalent cations and sulfhydryl reagents on the para-aminohippurate (PAH) transporter of renal basal-lateral membranes// J.Pharmacol.Exp.Ther. 1983. V. 226. P. 19−26.
  295. Tsuchiya K., Wang W., Giebisch GWelling P A. ATP is a coupling modulator of parallel Na, K-ATPase-K-channel activity in the renal proximal tubule// Proc Natl Acad Sci USA 1992. V. 89. P.6418−6422.
  296. Tune B.M., Burg M B., Patlak C.S. Characteristics of p-aminohippurate transport in proximal renal tubules// Amer.J.Physiol. 1969. V. 217. P. 1057−1063.
  297. Uchida S., Endou H. Substrate specificity to maintain cellular ATP along the mouse nephron// Amer .J.Physiol. 1988. V. 255. P. F977-F983.
  298. Ullrich K.J. Specificity of transporters for «organic anions» and «organic cations» in the kidney// Biochim.Biophys.Acta 1994. V. 1197. P.45−62.
  299. Ullrich K.J. Renal transporters for organic anions and organic cations. Structural requirements for substratesH J. Membrane Biol. 1997. V. 158. P.95−107.
  300. Ullrich K.J., Fasold H., Rumrich G., Kloss S. Secretion and contraluminal uptake of dicarboxylic acids in the proximal convolution of rat kidney// Pfluegers Arch. 1984. V. 400. P.241−249.
  301. Ullrich K.J., Greger R. Approaches to the study of tubule transport functions// In: The kidney: physiology and pathophysiology (Seidin D.W., Giebisch G. eds.) New York: Raven Press. 1985. P.427−469.
  302. Ullrich K.J., Papavassiliou F. Contraluminal transport of small carboxylates in the proximal tubule of the rat kidney in situ II Pfluegers Arch. 1986. V. 407. P.488−492.
  303. Ullrich K.J., Rumrich G., Fritzsch G., Kloss S. Contraluminal para-aminohippurate (PAH) transport in the proximal tubule of the rat kidney. II. Specificity: aliphatic dicarboxylic acidsII Pfluegers Arch. 1987. V. 408. P.38−45.
  304. Uwai Y., Okuda M., Takami K., Hashimoto Y., Inui K. Functional characterisation of the rat multispecific organic anion transporter OAT1 mediating basolateral uptake of anionic drugs in the kidney// FEBSLett. 1998. V. 438. P.321−324.
  305. Vander A.J. Effect of cadmium on renal tubular sodium transport// Amer.J.Physiol. 1962. V. 203. P.1−5.
  306. Veech R.L. Pyridine nucleotides and control of metabolic processes// In: Pyridine Nucleotide Coenzymes. Chemical, Biochemical and Medical Aspects, pt.B. New York: 1987. P.79−104.
  307. Vidaver G.A., Shepherd S.L., Lagow J.B., Wiechelman K.J. Glycine transport by hemolysed and restored pigeon red cells. Effects of a Donnan-induced electrical potential on entry and exit kineticsII Biochim.Biophys.Acta 1976. V. 443. P.494−514.
  308. Vinay P., Gougoux A., Lemieux G. Isolation of a pure suspension of rat proximal tubules// Amer.J.Physiol. 1981. V. 241. P. F403-F411.
  309. Vogel G., Kroger W. Das T^pah der Niere als Na-abhangige Grosse// Pfluegers Arch. 1965. V. 286. P.317−322.
  310. Vogel G, Kurten M. Untersuchungen zur Na-Abhanggigkeit der renalen-tubularen HarnstoffSekretion bei Rana ridibunda// Pfluegers Arch. 1967. V. 295. P.42−55.
  311. Vogel G., Stoeckert I. Die Bedeutung des Aniones fur den renalen tubularen Transport von Na und die Transporte von Glucose und PAH// Pfluegers Arch. 1966. V. 292. P.309−315.
  312. Wallenstein S., Zucker C.L., Fleiss J.L. Some statistical methods useful in circulation research// Circuities. 1980. V. 47. P. 1−9.
  313. Wasserman K., Becker E L., Fishman A.F. Transport of phenol red in the flounder renal tubule// J.Cell.Comp.Physiol. 1953. V. 42. P.385−393.
  314. Depth of uptake// Kidney Intern. 1973a. V. 3. P.214−221. Wedeen R.P., Weiner B. The distribution of p-aminohippuric acid in rat kidney slices. I.
  315. Tubular localisation// Kidney Intern. 1973b. V. 3. P.205−213. Weidemann M.J., Krebs H.A. The fixel of respiration of rat kidney cortex// Biochem.J. 1969. V. 112. P. 149−166.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!