Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Репарация и васкуляризация инфарктной зоны миокарда у крыс после трансплантации мононуклеаров красного костного мозга

Диссертация: Репарация и васкуляризация инфарктной зоны миокарда у крыс после трансплантации мононуклеаров красного костного мозга
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Также остается неясным, какой именно клеточный трансплантат (КТ) 8 является наиболее безопасным и эффективным. Многие исследователи считают, что нефракцированные мононуклеары (МН) являются наиболее удобным клеточным трансплантатом (Zhang S. et al., 2010) по ряду причин. Во-первых, МН получают из красного костного мозга, который является наиболее доступным источником получения прогениторных… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. КАРТИНА ИНФАРКТА МИОКАРДА
    • 1. 2. РЕПАРАЦИЯ МИОКАРДА ПОСЛЕ ОСТРОГО ИНФАРКТА
      • 1. 2. 1. Формирование рубца
      • 1. 2. 2. Гипертрофия и пролиферация кардиомиоцитов после инфаркта
      • 1. 2. 3. Ангиогенез
      • 1. 2. 4. Резидентные прогениторные клетки
      • 1. 2. 5. Экзогенные клетки-предшественники
    • 1. 3. КЛЕТКИ КРАСНОГО КОСТНОГО МОЗГА, ИСПОЛЬЗУЕМЫЕ ДЛЯ ТРАНСПЛАНТАЦИИ ПРИ ИНФАРКТАХ
      • 1. 3. 1. Мононуклеары
      • 1. 3. 2. Мультипотентные стромальные клетки
      • 1. 3. 3. Гемопоэтические стволовые клетки
      • 1. 3. 4. Эндотелиальные клетки
    • 1. 4. МЕХАНИЗМЫ ДЕЙСТВИЯ ТРАНСПЛАНТИРОВАННЫХ КЛЕТОК
      • 1. 4. 1. Заместительный механизм
      • 1. 4. 2. Слияние клеток
      • 1. 4. 3. Индукционный механизм
  • 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. ПОСТАНОВКА ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ИССЛЕДОВАНИЯ
      • 2. 1. 1. Содержание животных
      • 2. 1. 2. Группы исследования и схема эксперимента
      • 2. 1. 3. Получение клеточного трансплантата
      • 2. 1. 4. Экспериментальный инфаркт миокарда и интракоронарная трансплантация мононуклеаров
    • 2. 2. МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
      • 2. 2. 1. Прижизненные методы исследования
      • 2. 2. 2. Методы исследования, используемые после выведения животных из эксперимента
      • 2. 2. 3. Статистический анализ
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Разработка модели интракоронарной трансплантации мононуклеаров крысам
    • 3. 2. Изменение физического состояния крыс в ходе эксперимента
    • 3. 3. Топография меченых мононуклеаров через 14 и ЗОсуток после их интракоронарной трансвентрикулярной трансплантации
    • 3. 4. Оценка интенсивности макрофагальной реакции в миокарде в ответ на трансплантацию МН
    • 3. 5. Иммунофенотип трансплантированных клеток
    • 3. 6. Васкуляризация рубцовой зоны миокарда после трансплантации мононуклеаров
    • 3. 7. Экспрессия генов во фракции мононуклеаров красного костного мозга
    • 3. 8. Морфология рубцовой ткани постинфарктного сердца
    • 3. 9. Ремоделирование левого желудочка
  • 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
    • 4. 1. Разработка модели интракоронарной трансвентрикулярной трансплантации
    • 4. 2. Изменение функциональных показателей работы сердца после трансплантации МН у крыс в постинфарктном периоде
    • 4. 3. Локализация и выживаемость клеток, трансплантированных крысам в постинфарктном периоде
    • 4. 4. Иммунофенотип трансплантированных клеток в миокарде крыс в постинфарктном периоде
    • 4. 5. Влияние трансплантации МН на васкуляризацию миокарда крыс в постинфарктном периоде
    • 4. 6. Влияние трансплантации мононуклеаров на гены ангиогенеза
    • 4. 7. Морфология рубцовой ткани постинфарктного сердца
    • 4. 8. Постинфарктное ремоделирование ЛЖ

Репарация и васкуляризация инфарктной зоны миокарда у крыс после трансплантации мононуклеаров красного костного мозга (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Клеточная терапия — трансплантация стволовых прогениторных клеток, позволяющая стимулировать репарацию поврежденных тканей, — на сегодняшний день уже стала реальностью (Anversa" Р: et al., 2004; Gersh В. J., Simari D.R., 2006). Лечение таких заболеваний, как инфаркт миокарда (ИМ), ишемическая болезнь сердца и вызванного ими состояния хронической сердечной недостаточности (ХСН) на данныйг момент осуществляется с помощью хирургического вмешательствами медикаментозной терапии (Болл и др., 1995; Куртова А. В. и др., 2006). Однако в последнее время ведется разработка нового способа терапишс использованием, стволовых/прогениторных клеток (Шахов В.П., Попов C.B., 2004; Dai W., Kloner R.A., 2010; Li J. et al., 2010). Современная медикаментозная терапия и хирургическое лечение дают положительные клинические результаты, но не могут решить основную проблему — восстановление поврежденной инфарктом ткани^ миокарда (Потапов И.В. и др., 2001; Leri A. et al., 2005; Yacoub M. et al., 2006).

За последнее десятилетие было накоплено" большое количество экспериментальных данных, свидетельствующих об эффективности и безопасности трансплантации клеток в сердце (Joggerst S J., Hatzopoulos A.K.,.

2009; Zhang С. et al, 2010). Было выявлено, что трансплантированные клетки могут выживать и участвовать в регенерации и реваскуляризации миокарда.

Cleland J.F.G. et al., 1999; Pangonyte D. et al., 2008). Однако до сих пор нет достоверных данных о том, что трансплантация клеток позволяет не просто восстановить функцию поврежденного миокарда, но в значительной* мере устранить и само повреждение (Prockop D.J., 1997; Wang T. et al., 2008).

Также остается неясным, какой именно клеточный трансплантат (КТ) 8 является наиболее безопасным и эффективным. Многие исследователи считают, что нефракцированные мононуклеары (МН) являются наиболее удобным клеточным трансплантатом (Zhang S. et al., 2010) по ряду причин. Во-первых, МН получают из красного костного мозга, который является наиболее доступным источником получения прогениторных клеток. Во-вторых, трансплантат МН не требует культивирования и преддифференцировки, фенотипирования и отбора нужной фракции, что значительно сокращает время приготовления трансплантата и снижает финансовые затраты. Кроме того, в состав фракции МН входят и мультипотентные стромальные клетки (МСК), и гемопоэтические стволовые клетки (ГСК), и предшественники миелоидного ряда, что позволяет воспроизвести и оценить комплексное влияние клеток красного костного мозга на репарацию, так как в естественных условиях в область повреждения 1 мигрируют все типы прогениторных клеток костного мозга (Iwase Т. et al., 2005).

Экспериментальные данные, полученные после трансплантации МН, несмотря на их противоречивость, послужили основой для проведения ряда клинических испытаний. Но результаты клинических исследований не могут дать столь же подробную информацию о процессе регенерации после трансплантации клеток, как результаты экспериментальных, из-за их специфики: малых выборок, невозможности проведения многих гистологических методов анализа и др.

Однако, несмотря на недостаток данных и некоторое количество спорных вопросов, клеточная терапия приводит к положительным результатам, что свидетельствует о перспективах данного метода и целесообразности его внедрения в широкую практику. Для дальнейшего развития и совершенствования данного метода необходимо знание точных механизмов действия трансплантированных клеток и разработка эффективной методики и знание.

Цель исследования — изучить особенности ангиогенеза и репаративной регенерации инфарктной зоны миокарда крыс после трансплантации аутологичных мононуклеаров красного костного мозга.

Задачи:

1. Разработать метод интракоронарной трансвентрикулярной трансплантации мононуклеаров костного мозга при экспериментальном инфаркте миокарда.

2. Исследовать распределение трансплантированных мононуклеаров в сердце и других органах через 2 и 4 недели после трансплантации.

3. Определить иммунофенотип трансплантированных мононуклеаров через 2 и 4 недели после трансплантации.

4. Изучить особенности васкуляризации рубца после трансплантации мононуклеаров.

5. Оценить влияние трансплантации мононуклеаров на ремоделирование левого желудочка.

6. Оценить глобальную сократимость левого желудочка сердца после трансплантации мононуклеаров.

7. Оценить влияние трансплантации мононуклеаров на активность генов ангиогенеза.

Научная новизна. Разработана модель интракоронарной трансплантации мононуклеаров мелким лабораторным животным, обеспечивающая эффективную доставку клеток в место повреждения.

Модифицированы протоколы иммуногистохимического и генетического исследования для крыс.

Исследована локализация и выживаемость мононуклеарных клеток после трансплантации в условиях экспериментального инфаркта миокарда. Произведена количественная оценка эффективности разработанного метода.

Определен иммунофенотип трансплантированных клеток. Показано участие траснплантированных мононуклеаров в процессе репарации. Установлено отсутствие заместительного эффекта и клеточного слияния. Подробно изучено влияние мононуклеаров на процессы ангиогенеза как на клеточном, так и на генетическом уровне.

Показана стимуляция клеточной пролиферации после трансплантации, приводящая к укреплению рубцовой зоны.

Изучено влияние трансплантации мононуклеаров на экспрессию генов ангиогенеза. Показана оверэкпрессия факторов ангиогенеза, факторов роста и дифференцировки, цитокинов и хемоаттрактантов после трансплантации мононуклеаров. Показано индуцирующее действие трансплантированных мононуклеаров на васкуляризацию миокарда. Выявлено стабилизирующее действие мононуклеаров на процессы реорганизации внеклеточного матрикса.

Проведена комплексная оценка влияния трансплантации на процесс ремоделирования левого желудочка. Показано отсутствие патологических изменений при ремоделировании после трансплантации.

Выявлена динамика процесса рубцевания после трансплантации. Дана оценка безопасности и эффективности мононуклеаров как клеточного трансплантата.

Научно-практическая значимость. Разработана модель интракоронарной клеточной трансплантации мелким лабораторным животным после экспериментального инфаркта миокарда, по эффективности сравнимая с интрамиокардиальной, но менее инвазивная. Полученные экспериментальные данные о безопасности и эффективности трансплантации мононуклеаров послужат основой для усовершенствования методики предклинических испытаний.

Разработанные для крыс протоколы иммуногистохимического и генетичекого исследования позволяют сократить время проведения эксперимента и финансовые затраты на необходимые реактивы.

Проведенное исследование позволяет использовать полученные данные не только в сфере лечения хронической сердечной недостаточности, но и в клеточной ангиопластике.

Проведенное исследование может служить основной для проведения дальнейших клинических испытаний.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Трансплантированные мононуклеары выживают и не элиминируются имунной системой в течение всего срока наблюдения. Они мигрирут в область повреждения миокарда, где локализуются только в толще коллагеновых волокон рубцовой зоны.

2. Трансплантированные мононуклеары частично дифференцируются в реактивные фибробласты и миофибробласты, синтезируя коллаген и укрепляя ткань рубца. Мононуклеары не дифференцируются в кардиомиоциты и клетки стенки кровеносных сосудов, а также не сливаются с ними.

3. Трансплантация монуклеаров оказывает стабилизирующее действие на ангиогенез, приводит к увеличению количества капилляров и калибра новообразованных сосудов.

4. Трансплантированные мононуклеары индуцируют пролиферацию клеток стромы в зоне рубца за счет выделения факторов роста.

5. Мононуклеары оказывают паракринный эффект на поврежденный миокард. Их трансплантация приводит к оверэкспрессии факторов роста и дифференцировки, факторов ангиогенеза, цитокинов и хемоаттрактантов. Оверэкспрессия данных факторов положительно влияет на процесс репарации. 6. Трансплантация мононуклеаров не вызывает патологических изменении при ремоделировании и улучшает функцию левого желудочка.

Внедрение. Результаты диссертационного исследования используются для составления лекионных и практических занятий на кафедре гистологии и эмбриологии лечебного факультета Российского гоударственного медицинского университета. На основании полученных данных могут быть разработаны протоколы клеточных трансплантаций для клинических исследований. Проведенное исследование может служить доклиническим исследованием оценки безопасности и эффективности трансплантации мононуклеаров красного костного мозга.

Степень личного вклада автора в результаты исследования. Автор принимал участие в хирургических операциях по моделированию инфаркта миокарда и хронической сердечно недостаточности, взятии красного костного мозга и интракоронарной трансплантации. Автор принимал участие в приготовлении клеточного трансплантата и витальном маркировании мононуклеаров. Автором было самостоятельно проведено гистологическое, иммуногистохимическое, морфометрическое исследование, полимеразная цепная реакция в реальном времени. Автор принимал участие в статистическом анализе полученных данных. Апробация работы. Основные положения работы доложены на: Итоговой конференции по результатам выполнения мероприятий в рамках приорететного направления «Живые системы» ФЦП «Исследования и разработки по приоритетным направлениям развития научно-технологического комплекса Росии на 2007;2012 годы» (2009 и 2010 год, Москва, Институт молекулярной биологии им. В. А. Энгельгардта РАН) — Всероссийской научной школе-конференции «Стволовые клетки и регенеративная медицина» (25 — 28 октября 2010 года, Москва, факультет фундаментальной медицины МГУ имени М.В.Ломоносова) — Научной конференции «Актуальные опросы морфогенеза в норме и патологии» (20 Юг, Москва, ГУ НИИ морфологии человека РАМН). Публикации. По материалам диссертации опубликовано 3 научные работы, все в журналах, представленных в списках ВАК. Получен 1 патент.

Структура и объем диссертации

Диссертация изложена на 213 страницах машинописного текста и состоит из списка сокращений, введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, изложения собственных результатов и их обсуждения, заключения, выводов и списка литературы. Литературный указатель включает 227 источников, из них 206 -иностранных, 21- отечественный. Работа иллюстрирована 32 рисунками и 5 таблицами.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

На сегодняшний день существует необходимость в разработке принципиально новых, доступных и эффективных методов коррекции поврежденного миокарда (Потапов И.В. и др., 2001). Самая частая причина возникновения сердечной недостаточности — острый инфаркт миокарда (Болл С.Дж. и др., 1995).

В связи с развитием клеточной биологии в последние годы появился вспомогательный метод лечения заболеваний сердца, связанный с трансплантацией стволовых/прогениторных клеток (Reubinoff В.Е. et al., 2000; Dai W., Kloner R.A., 2010; Li J. et al., 2010). В настоящее время исследователи используют различные КТ, как-то: мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки (Orlic D. et al., 2001), гемопоэтические стволовые клетки (Hale L.S. et al., 2008), CD 133(+) клетки (Anversa P. et al., 2004), предшественники эндотелиальных клеток (Badorff С. et al., 2003), скелетные миобласты (Menasche P. et al., 2001), фетальные кардиомиоциты (Muller — Ehmsen J. et al., 2002), гладкомышечные клетки (ГМК) (Li R.K.et al., 1999). Положительные результаты предклинических и клинических испытаний позволяют использовать этот метод как вспомогательный метод при медикаментозном и хирургическом лечении ИМ и ХСН, а также перед трансплантацией сердца у больных, находящихся на листе ожидания (Шумаков В.И. и др., 2003).

Кардиомиоциты (КМЦ) являются высокодифференцированными клетками, поэтому их потенции к пролиферации и дифференцировке значительно снижены (Румянцев П.П., 1982; Anversa Р. et al., 2004). Поэтому основной вклад в регенерацию миокарда после повреждения вносит гипертрофия КМЦ (Qin D. et al., 1996). По данным последних исследований, после ИМ протекают также такие репаративные процессы, как пролиферация экзогенных клеток-предшественников кардиомиоцитов, гладкомышечных клеток сосудов и стромальных клеток (Tsiavou А. et al., 2010), мигрирующих под действием хемоаттрактантов из красного костного мозга (Anversa Р. et al., 2006; Dorreil С. et al., 2006; Bergmann О. et al., 2009).

На основании данных, полученных в экспериментальных исследованиях in vitro и in vivo, исследователи обсуждают предполагаемые механизмы влияния клеточных трансплантатов на глобальную и региональную сократимость и перфузию миокарда. Среди возможных механизмов действия трансплантированных клеток на регенерацию миокарда первоначально выделяли заместительный (Orlic D. et al., 2001; Bell A. et al., 2010), индукционный (Wollert K.C. et al., 2010; Yoon C.H. et al., 2010) и ангиогенный эффекты (Sieveking P.D. et al., 2009). Заместительный эффект реализуется благодаря высокой пролиферативной активности стволовых/прогениторных клеток и возможности слияния и/или дифференцировки их в КМЦ (Johnston P.V. et al., 2009; Zakharova L. et al., 2010). Индукция регенерации происходит за счет синтеза и выделения трансплантированными клетками различных сигнальных молекул (Sadek H. et al., 2008), которые регулируют пролиферацию, миграцию и дифференцировку клеток в зоне повреждения (Burchfield J.S., Dimmeler S., 2008; Lee W.H. et al., 2009). Ангиогенный эффект, ранее выделяемый как отдельный механизм действия трансплантированных клеток, на данный момент считается одной из составляющих индукционного эффекта (Fukuda S., 2004).

Таким образом, на данный момент существует несколько теорий касательно механизмов действия трансплантированных клеток, объясняющий терапевтическую эффективность клеточных трансплантаций. Исследователи до сих пор не могут прийти к единому мнению, поэтому вопрос о механизме действия клеточных трансплантатов остается открытым и требует дальнейшего изучения.

выводы.

1. Разработана эффективная методика интракоронарного трансвентрикулярного введения аутологичных мононуклеаров мелким лабораторным животным после индуцированного инфаркта миокарда с реперфузией.

2. При интракоронарном введении меченые клетки выживают как минимум в течение месяца после трансплантации. Трансплантированные клетки локализуются преимущественно в сердце, причем только в рубцовой зоне, и селезенке. Через 14 сут после трансплантации количество меченых клеток в сердце составило 1996,6±65,8 клеток на мм2, через 30 сут -1336,7±29,7 клеток.

3. Трансплантированные мононуклеары дифференцируются в фибробласты и миофибробласты рубцовой ткани, обладающие характерной морфологией и специфическими маркерами а-8МА и Бара. Трансплантированные мононуклеары не сливаются с кардиомиоцитами, не дифференцируются в кардиомиоциты и клетки кровеносных сосудов.

4. Трансплантация клеток стабилизирует ангиогенез, поддерживая количество артериол и капилляров на постоянном уровне, и способствует увеличению количества венул. Это может быть обусловлено сверхэкспрессией ангиогенных факторов (генов семейства факторов роста (генов семейства Tgf), хемоаттрактантов и молекул адгезии (PecamJ) во фракции мононуклеаров.

5. Трансплантация мононуклеаров стимулирует пролиферативную активность клеток стромы. Пролиферация клеток соединительной ткани и самих трансплантированных мононуклеаров увеличивает количество клеточных элементов в рубце.

6. Трансплантация мононуклеаров не увеличивает степень гипертрофии левого желудочка.

7. Трансплантация ускоряет процесс созревания коллагена в рубце, изменяя активность генов семейства Мтр и Akt, влияющих на процессы синтеза, созревания и деградации коллагена. Синтез коллагена фибробластами сердца и мононуклеарами, дифференцировавшимися в миофибробласты и фибробласты, приводит к утолщению стенки левого желудочка в области рубца, препятствуя ее разрыву и увеличивая размер рубца у животных опытной группы по сравнению контрольной.

8. Трансплантация мононуклеаров улучшает функциональное состояние левого желудочка. После трансплантации мононуклеаров увеличивается максимальное давление в левом желудочке и скорость его повышения. Это способствует увеличению глобальной сократимости сердца и систолической функции левого желудочка.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Ко времени начала нашего исследования клеточная трансплантология уже стала вспомогательным методом лечения ряда сердечно-сосудистых заболеваний. Проведенные предклинические исследования позволили определить клеточные фенотипы, подходящие для трансплантации, разработать способы трансплантации и оценить влияние того или иного клеточного трансплантата на поврежденную сердечную ткань. Тем не менее, до сих пор ведутся споры о том, какую методику введения клеток считать оптимальным, какой клеточный трансплантат более безопасен и эффективен, каким образом реализуется терапевтический посттрансплантационный эффект.

В данном исследовании были изучены миграция, направления дифференцировки трансплантированных мононуклеарных клеток красного костного мозга, их роль в стимуляции ангиогенеза и репаративных процессов миокарда.

Разработана модель интракоронарной трансвентрикулярной трансплантации клеток мелким лабораторным животным. На сегодняшний день существует три способа трансплантации клеток — интрамиокардиальный, интракоронарный и интравенозный. На практике чаще всего используют интравенозную трансплантацию прогениторных клеток так как она наименее инвазивна. Интрамиокардиальная трансплантация наиболее инвазивна, но наиболее эффективна. Однако.

169 интрамиокардиальную трансплантацию не всегда возможно применить в клинических условиях. Особенность модели состоит в том, что вследствие пережатия аорты большая часть клеток попадает в зону повреждения. Подобная модель позволяет осуществлять интракоронарные трансплантации мелким лабораторным животным, что позволяет проводить эксперименты с меньшими затратами на содержание животных и увеличить выборку.

Второе преимущество разработанной модели состоит в том, что она позволяет использовать клеточные трансплантаты с разными потенциями к направленной миграции, в том числе и преддиференцированные клетки, чьи потенции значительно снижены.

Трансплантированные клетки не элиминировались иммунной системой и сохраняли жизнеспособность в течение как минимум 4 недель после трансплантации. На гистологических срезах клетки имели вид неповрежденных, по фенотипу не отличались от клеток стромы, вокруг них не было выявлено выраженной лимфо-макрофагальной инфильтрации. Иммуногистохимический анализ мАТ к маркеру макрофагов (СБ68) показал присутствие макрофагов как в контрольной, так и в опытных группах. Окрашенные мАТ единичные флуоресцентные клетки, вероятно, элиминировались макрофагами, но при этом морфологические признаки реакции отторжения трансплантата отсутствовали. Не исключено, что единичные клетки дифференцировались в макрофаги, так как во фракции мононуклеаров присутствуют предшественники клеток миелоидного ряда.

Было показано, что при неселективном интракоронарном введении меченые МНК мигрируют в основном в сердце и селезенку. В сердце клетки располагались только в рубцовой зоне сердца. Ни одной меченой клетки не было обнаружено в перифокальной области, в неповрежденном миокарде и стенках кровеносных сосудов. Отсутствие РкН26 метки в КМЦ, клетках эндотелия и гладкомышечных клетках кровеносных сосудов свидетельствует о том, что трансплантированные мононуклеары не дифференцируются в КМЦ, клетки кровеносных сосудов и не сливаются с ними в синцитий.

Трансплантированные были окружены коллагеновыми волокнами, часть их окрашивалась АТ к маркеру реактивных фибробластов (Бара). Часть мононуклеаров также окрашивалась АТ к маркеру а-А8МА. Таким образом, учитывая особенности локализации, фенотипа и экспрессию Бара и а-АЭМА, можно сделать вывод, что по крайней мере часть трансплантированных мононуклеаров дифференцируется в фибробласты и миофибробласты.

Было обнаружено, что трансплантированные мононуклеары стабилизируют процессы ангиогенеза, поддерживая количество капилляров, артериол и венул на постоянном уровне. Стимуляцию ангиогенеза наблюдали только в увеличении калибра новообразованных сосудов. Через 30 суток после трансплантации помимо увеличения площади сосудистого поля наблюдали и увеличение количества сосудов.

Согласно результатам ЯТ-РСЯ, мононуклеары оверхэкспрессировали целый ряда ангиогенных факторов, в частности факторы семейства УЕОР.

Трансплантированные мононуклеары могли оказывать противовоспалительное действие, стимулируя экспрессию II1Ь. Кроме того, в МН повышена экспрессия хемоаттрактантов, таких, как Ресат1, необходимых для васкуляризации, и ростовых факторов и цитокинов (Т§-£ Тп: Г), ускоряющих репарацию.

Мононуклеары участвуют в процессах обратного ремоделирования левого желудочка посредством регуляции активности генов семейства ММР и АкП, стабилизируя внеклеточный матрикс и регулируя процессы деградации и синтеза коллагена.

Одним из аспектов морфологии регенерирующей ткани является количество делящихся клеток. В исследовании было выявлено три зоны пролиферации — эпикард, стенки кровеносных сосудов и рубец. При этом пролиферация активно шла в обеих группах. Ни в опытной, ни в контрольной группе не было обнаружено ни одного К167+ КМЦ. Пролиферировали только клетки стромы, эндотелиальные клетки сосудов и клетки эпикарда. Количество пролиферирующих клеток на всех сроках наблюдения было выше в опытной группе. Пролиферация, вероятно, индуцирована паракринными факторами роста, синтезируемыми трансплантированными мононуклеарами.

Трансплантация клеток приводила к утолщению стенки сердца в области рубца. Утолщение стенки связано с выработкой коллагена фибробластами сердца и мононуклеарами, дифференцировавшимися в фибробласты и миофибробласты. После трансплантации происходит ускорение созревания рубцовой ткани, состоящее в перестройке коллагена III типа в коллаген I типа. Доля зрелого коллагена достоверно выше в опытной группе по сравнению с контрольной уже на 14 сутки после трансплантации. Тем не менее, активный синтез коллагена трансплантированными клетками и фибробластами сердца привел, к увеличению размера рубца через 30 суток после трансплантации.

Согласно полученным данным, траснплантация мононуклеаров не оказывает влияния на индекс гипертрофии левого желудочка и на 30 сутки увеличивает индекс дилатации. Вероятно, выделяемых мононуклеарами паракринных факторов не достаточно для полноценного ремоделирования левого желудочка. Это связано с тем, что мононуклеары в своем составе содержат разные клеточные популяции, из которых ГСК и ЭКП практически не оказывают паракринного влияния. Мононуклеры дифференцируются в фибробласты уже через 2 недели после трансплантации, а этого времени недостаточно, чтобы осуществилось ремоделирование. Несмотря на то, что мононуклеары не стимулируют ремоделирование левого желудочка, трансплантация улучшает функцию сердца. .

Резюмируя полученные данные, можно заключить, что интракоронарная траснплантация мононуклеаров безопасна и эффективна. Мононуклеары как клеточный трансплантат оказывают стабилизирующее и стимулирующее влияние на ангиогенез, выделяя паракринные фаткоры роста и дифференцировки. Мононуклеары не дифференцируются в КМЦ и клетки стенки кровеносных сосудов, а дифференцируются в фибробласты и миофибробласты, за счет чего происходит укрепление стенки левого желудочка в области рубца. Тем не менее, мононуклеары приводят к увеличению площади рубца и не влияют на индекс гипетрофии. Этот факт позволяет сделать предположение, что в дальнейших исследованиях следует использовать отдельные фракции мононуклеаров, такие, как МСК, или проводить их преддифференцировку с целью повышения эффективности трансплантации. Трансплантация нефракционированных мононуклеаров может быть использована в качестве дополнительного метода при медикаментозном и хирургическом лечении.

Показать весь текст

Список литературы

  1. E.H. Кардиомиопатии. Киев:"Книга плюс", 1999.
  2. Болл С. Дж, Кемпбелл Р.В.Ф, Френсис Г. С. Международное руководство по сердечной недостаточности. М., 1995.
  3. В.Ф. Морфологические изменения при инфаркте миокарда // Архив патологии. -1957. № 5. — С. 20.
  4. В.Н. Руководство по кардиологии. Морион, 2008.
  5. A.B., Зуева Е. Е., Немков A.C. Постинфарктная клеточная регенерационная терапия сердечной мышцы // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия 2006. — № 2. — С. 34−43.
  6. В. О. Ортопедическая диагностика (руководство-справочник). Мн.: «Наука и техника», 1978.
  7. JI.H., Рябов В. В., Сазанова С. И. Регенерация миокарда // Успехи физиологических наук — 2004. — № 3. — С. 50−60.
  8. Е.В., Ткачук В. А. Перспективы генной терапии сердечно-сосудистых заболеваний // Российский кардиологический научно-производственный комплекс МЗ РФ. 2000. — № 3.
  9. ЛВ. Факторы регенерации нерегенерирющих органов и тканей // Вестню РАН. 2000. — № 70. — С. 597−603.
  10. C.B., Рябов В. В., Суслова Т. Е., Штатолкина М. А., Веснина Ж. В., Крылов А. Л., Афанасьев С. А., Марков В. А., Карпов B.C. Фундаментальные и прикладные аспекты клеточных технологий в кардиологии и хирургии // Бюллетень СО РАМН 2008. — № 4. — С. 5−15.
  11. И.В., Крашенинников М. Е., Онищенко H.A. Клеточная кардиомиопластика // Вестник трансплантологии и искусственных органов -2001.-№ 2.-С. 46−53.
  12. О.В., Артюхов В. Г., Колтаков И. А. Иммунология. Практикум. Часть II. Воронеж: ВГУ, 2008.
  13. B.C., Сухих Г. Т. Медицинская клеточная биология. М.: РАМН Бюлл. эксперим. биол. и мед., 1998.
  14. К.А., Мелихова B.C., Парфенова Е. В. Резидентные клетки-предшественники в сердце и регенерация миокарда // Клет. Транспл. -2007. -№ 2. -С. 29−35.
  15. Румянцев П.П. Processes of the differentiation and reproduction of different types of muscle cells // Tsitologiia 1986. — V. 28. — P. 285−294.
  16. П.П. Кардиомиоциты в процессах репродукции, дифференцировки и регенерации. JL: Наука, 1982.
  17. Д.С. Регенерация и ее клиническое значение. М.: Медицина, 1979.
  18. С.Е., Соловьева Г. А. Практикум по биохимии. М.: МГУ, 1989.
  19. Е.В. Красители в биологии и медицине. Барнаул: Азбука, 2003.
  20. В.Н., Романов Ю. А. Стволовые клетки и регенерация сердца // Кардиологический вестник. 2007. — № 2. — С.61−63.
  21. В.П., Попов C.B. Стволовые клетки и кардиомиогенез в норме и патологии. Томск: STT, 2004.
  22. А. А. Основы иммунологии. Медицина, 1999.
  23. Abbott J.D., Giordano F.J. Stem cells and cardiovascular disease // J. Nucl. Cardiol. -2003. Vol.10, № 4. — P. 40312.
  24. Alberts В., Bray D., Lewis J., Raff M., Roberts K., Watson J. D. Molecular Biology of the Cell, 3rd edition. N.Y.: Garland Science, 1994.
  25. Alvarez-Dolado M., Pardal R., Garcia-Verdugo J.M. Fusion of bone-marrow-derived cells with Purkinje neurons, cardiomyocytes and hepatocytes // Nature 2003. — Vol.425. — P. 968−973.
  26. Anversa P., Kajstura J., Leri A. Circulating Progenitor Cells Search for an Identity // Circulation — 2004. — Vol. 110. — P. 315 8−3160.
  27. Anversa P., Kajstura J., Leri A., Bolli R. Life and death of cardiac stem cells: a paradigm shift in cardiac biology // Circulation 2006. — Vol.113, № 11.-P. 1451−1463.
  28. Anversa P., Leri A., Kajstura J. Cardiac regeneration // J. Am. Coll. Cardiol. 2006. — Vol.47, № 9. — P. 1769−1776.
  29. Anversa P., Rota M., Urbanek K., Hosoda Т., Sonnenblick E.H., Leri A., Kajstura J., Bolli R. Myocardial aging—a stem cell problem // Basic Res. Cardiol. 2005. — Vol.100, № 6. — 482−493.
  30. Anversa P., Sussman M.A., Bolli R. Molecular Genetic Advances in Cardiovascular Medicine: Focus on the Myocyte // Circulation 2004. — Vol.109. -P. 2832−2838.
  31. Aviles R.J., Annex B.H., Lederman R.J. Testing clinical therapeutic angiogenesis using basic fibroblast growth factor (FGF-2) // Br. J. Pharmacol. — 2003. Vol.140, № 4. — P. 637−646.
  32. Balsam L.B., Wagers A.J., Christensen J.L., Kofidis T., Weissman I.L., Robbins R.C. Haematopoietic stem cells adopt mature haematopoietic fates in ischaemic myocardium // Nature 2004. — Vol.428, № 6983. — 668−673.
  33. Bassett E.G., Wakefield J.S. Elastic fibers in myocardial scars in rats: development teraction with other components // Connect. Tissue Res. — 2008. -Vol.49.-P. 321−327.
  34. Belema-Bedada F., Uchida S., Martire A., Kostin S., Braun T. Efficient homing of multipotent adult mesenchymal stem cells depends on FROUNT-mediated clustering of CCR2 // Cell Stem Cell 2008. — Vol.2. — P. 566 575.
  35. Bergmann O., Bhardwaj R.D., Bernard S., Zdunek S., Barnabe-Heider F., Walsh S., Zupicich J., Alkass K., Buchholz B.A., Druid H., Jovinge S., Frisen J. Evidence for Cardiomyocyte Renewal in Humans // Science -2009 -Vol.324, № 5923.-P. 98−102.
  36. Bhati R., Patterson C., Livasy C.A., Fan C., Ketelsen D., Hu Z., Reynolds E., Tanner C., Moore D.T., Gabrielli F., Perou C.M., Klauber-DeMore N.
  37. Molecular characterization of human breast tumor vascular cells // Am J Pathol. -2008.-V. 172.-P. 1381−1390.
  38. Bollano E., Tian F., Shao R. Hypoxia — induced myocardial angiogenesis preserves myocardial function after infarction in mouse // Eur. J. Echocardiography -2005. Vol.6. — P.34.
  39. Brunner S., Engelmann M.G., Franz W.M. Stem cell mobilisation for myocardial repair // Expert Opin. Biol. Ther 2008. Vol.8. — P. 1675−1690.
  40. Burchfield J.S., Dimmeler S. Role of paracrine factors in stem and progenitor cell mediated cardiac repair and tissue fibrosis // Fibrogenesis Tissue Repair 2008. -Vol.1, № 1. — P. 4.
  41. Campbell S. E, Katwa L.C. Angiotensin II stimulated expression of transforming growth factor-(31 in cardiac fibroblasts and myofibroblasts // J. Mol. Cell Cardiol. 1997. — Vol.29. -P. 1947−1958.
  42. Ceradini D. J, Gurtner G.C. Homing to hypoxia: HIF-1 as a mediator of progenitor cell recruitment to injured tissue // Trends Cardiovasc. Med. — 2005. -Vol.15, № 2.-P. 57−63.
  43. Chen M. M, Lam A, Abraham J. A, Schreiner G. F, Joly A.H. CTGF expression is induced by TGF- beta in cardiac fibroblasts and cardiac myocytes: a potential role in heart fibrosis // J. Mol. Cell Cardiol. 2000. — Vol. 32, № 10. -P.1805−1819.
  44. Cho J, Zhai P, Maejima Y, Sadoshima J. Myocardial injection with GSK-3p-overexpressing bone marrow-derived mesenchymal stem cells attenuates cardiac dysfunction after myocardial infarction// Circ. Res. -2011. Vol.108, № 4. — P. 478−489.
  45. Chung C. Y, Bien H., Sobie E. A, Dasari V, McKinnon D, Rosati B, Entcheva E. Hypertrophic phenotype in cardiac cell assemblies solely by structural cues and ensuing self-organization // FASEB J. 2010. — Vol.25, № 3. — P. 851 862.
  46. Ciulla M.M., Paliotti R., Ferrero S., Braidotti P., Esposito A., Gianelli U., Busca G., Cioffi U., Bulfamante G., Magrini F. Left ventricular remodeling after experimental myocardial cryoinjury in rats // J. Surg. Res. 2004. -Vol.116, № 1. — P. 91−97.
  47. Cleland J. F. G., Puri S. How do ACE inhibitors reduce mortality in patients with left ventricular dysfunction with and without heart failure: remodelling, resetting, or sudden death? // Br. Heart J. 1994. — Vol. 72, № 3. — P. S81-S86.
  48. Cleland J.F.G., McGowan J. Heart Failure due to Ischaemic Heart Disease: Epidemiology, Pathophysiology and Progression // J. Cardiovasc. Pharmacol. 1999. — Vol.33. — P. S17-S29.
  49. Cleutjens J. P., Blankesteijn, W. M., Daemen, M. J. & Smits, J. F. The infracted myocardium: simply dead tissue, or a lively target for therapeutic interventions // Cardiovasc. Res. -1999. Vol.44. — P. 232−241.
  50. Conway E.M., Carmeliet P. The diversity of endothelial cells: a challenge for therapeutic angiogenesis // Genome Biology 2004. -Vol.5. — P. 207.
  51. Dai W., Kloner R.A. Experimental cell transplantation therapy in rat myocardial infarction model including nude rat preparation // Methods Mol. Biol. -2010.-Vol.660.-P. 99−109.
  52. Dayan D., Hiss Y., Hirshberg A., Bubis J.J., Wolman M. Are the polarization colors of picrosirius red-stained collagen determined only by the diameter of the fibers? // Histochemistry 1989. — Vol.93, № 1. -P. 27−29.
  53. Dishart K.L., Work L.M., Denby L., Baker A.H. Gene Therapy for Cardiovascular Disease // J. Biomed. Biotechnol. 2003. -Vol.2. — P. 138−148.
  54. Donnelly D.S. and Krause D.S. Hematopoietic stem cells can be CD34+ or CD34- // Leuk. Lymphoma 2001. — Vol. 40. — P. 221−234.
  55. Dorrell C., Grompe M. Adult liver stem cells // Essentials of stem cell biology. Boston: Elsevier Academic Press, 2006.
  56. Eisenberg L.M., Eisenberg C.A. An in vitro analysis of myocardial potential indicates that phenotypic plasticity is an innate property of early embryonic tissue // Stem Cells Dev. 2004. — Vol.13. — P. 614−624.
  57. Fukuda S. Angiogenic signal triggered by ischemic stress induced myocardial repair in rat during chronic infarction // J. Mol. Cell Cardiology.2004. Vol.36, № 4. — P. 547−559.
  58. Garbade J., Schubert A., Rastan A.J., Lenz D., Walther T., Gummert J.F., Dhein S., Mohr F.W. Fusion of bone marrow-derived stem cells with cardiomyocytes in a heterologous in vitro model // Eur. J. Cardiothorac. Surg.2005.-Vol.28, № 5.-P. 685−91.
  59. Gaskill L. PKH Linker Kits for Fluorescent Cell Labeling. Sigma-Aldrich Corporation, St. Louis, MO, USA, 2006.
  60. Gersh B.J., Simari R.D. Cardiac cell-repair therapy: clinical issues // Nat. Clin. Pract. Cardiovasc. Med. 2006. — Vol.3. — P. 105. — 109.
  61. Gilbert S. F. Developmental Biology, 6th edition. Sunderland (MA): Sinauer Associates, 2000.
  62. Gnecchi M., Zhang Z., Ni A., Dzau V.J. Paracrine mechanisms in adult stem cell signaling and therapy // Circ. Res. 2008. — Vol.103. — P. 12 041 219.
  63. Guo J., Lin G.S., Bao C.Y., Hu Z.M., Hu M.Y. Anti-inflammation role for mesenchymal stem cells transplantation in myocardial infarction // Inflammation 2007. — Vol.30. — P. 97−104.
  64. Guo Z., Li H., Li X., Yu X., Wang H., Tang P. and Mao N. In Vitro Characteristics and In Vivo Immunosuppressive Activity of Compact Bone-Derived Murine Mesenchymal Progenitor Cells // Stem Cells 2006. — Vol.24. — P. 992−1000.
  65. Haissaguerre M., Shan P. Role of catheter ablation for atrial fibrillation // Curr. Opin. Cardiol. 1997. — Vol.12. — P. 18−23.
  66. Hale L.S., Daia W., Dowa S.J., Klonera A.R. Mesenchymal stem cell administration at coronary artery reperfusion in the rat by two delivery routes: A quantitative assessment // Life Sciences 2008. — Vol. 83. — P. 511−515.
  67. Henning R.J., Burgos J.D., Vasko M, Alvarado F., Sanberg C.D., Sanberg P.R., Morgan M.B. Human cord blood cells and myocardial infarction: effect of dose and route of administration on infarct size // Cell Transplant. 2007. -Vol.16.-P. 907−917.
  68. Horan P.K., Melnicoff M.J., Jensen B.D., Slezak S.E. Fluorescent cell labeling for in vivo and in vitro cell tracking // Methods Cell Biol. — 1990. Vol. 33.-P. 469−490.
  69. Hosoda Т., Kajstura J., Leri A., Anversa P. Mechanisms of myocardial regeneration // Circ. J. 2010. — Vol.74, № 1. — P. 13−17.
  70. Hoyer J., Distler A., Haase W., Gogelein H. Ca2+ influx through stretch-activated cation channels activated maxi K+ channels in porcine endocardial endotelium // PNAS 1994. — Vol.91. — P. 2367−2371.
  71. IHC-parafin protocol (IHC-P). URL: http://www.abcam.com/ps/pdf/protocols/ihcp.pdf (дата обращения: 26.11.2010).
  72. Ishikawa H. Evolution of ribosomal RNA // Сотр. Biochem. Physiol. 1977.-Vol. 58.-P. 1−7.
  73. Jin H., Aiyer A., Su J., Borgstrom R, Stupack D., Friedlander M., Varner J. A homing mechanism for bone marrow-derived progenitor cell recruitment to the neovasculature // J. Clin. Invest. 2006. — Vol. 116, № 3. — R 652−662.
  74. Joggerst S.J., Hatzopoulos A.K. Stem cell therapy for cardiac repair: benefits and barriers // Expert Rev. Mol Med. 2009. — Vol. 11. — R 20.
  75. Kajstura J., Leri A., Finato N., Di Loreto C., Beltrami C.A., Anversa P. Myocyte proliferation in end-stage cardiac failure in humans // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. — Vol. 95. P. -8801−8805.
  76. Karamysheva A.F. Mechanisms of angiogenesis. M: Biochemistry, 2008.-P. 751−762.
  77. Kim W. H, Joo C. U, Ku J.H. et al. Cell cycle regulators during human atrial development // Korean J. Intern. Med. 1998. — Vol.13. — P. 77−82.
  78. Klotz S, Burkhoff D. Vetricular remodeling in ischemic cardiomyopathy // Springer Sience+Business Media, Inc.: Stem cell therapy and tissue engineering for cardiovascular repair, 2006. P. 3−24.
  79. Kraitchman D. L, Tatsumi M, Gilson W. D, Ishimori T, Kedziorek D, Walczak P, Segars W. P, Chen H. H, Fritzges D, Izbudak I, Young R. G,
  80. Marcelino M., Pittenger M.F., Solaiyappan M., Boston R.C., Tsui B.M., Wahl R.L., Bulte J.W. Dynamic imaging of allogeneic mesenchymal stem cells trafficking to myocardial infarction // Circulation -2005. Vol. 112, № 10. — P. 1451−61.
  81. Kumar A.H., Caplice N.M. Clinical potential of adult vascular progenitor cells // Arterioscler. Thromb. Vase. Biol. 2010. — Vol.30, № 6. — P. 1080−1087.
  82. Laeremans H., Rensen S.S., Ottenheijm H.C., Smits J.F., Blankesteijn W.M. Wnt/frizzled signalling modulates the migration and differentiation of immortalized cardiac fibroblasts // Cardiovasc. Res. 2010. — Vol.87, № 3. — P. 514−523.
  83. Leask A., Abraham D. J. TGFbeta signaling and the fibrotic response // FASEB J. -2004. Vol.18. — P. 816−827.
  84. Lee W.H., Kang S., Vlachos P.P., Lee Y.W. A novel in vitro ischemia/reperfusion injury model. Arch Pharm Res. 2009. — Vol.32, № 3. — P. 421−429.
  85. Leor J., Patterson M., Qumones M.J., Kedes L.H., Kloner R.A. Transplantation of Fetal Myocardial Tissue Into the Infarcted Myocardium of Rat A Potential Method for Repair of Infarcted Myocardium? // Circulation. -1996. -Vol. 94.-P. 332−336.
  86. Leri A., Kajstura J., and Anversa P. Cardiac Stem Cells and Mechanisms of Myocardial Regeneration // Physiol Rev. 2005. — Vol.85. — P. 1373−1416.
  87. Lesman A., Gepstein L., Levenberg S. Vascularization shaping the heart//Ann. N. Y.Acad. Sci. -2010. Vol.1188. -P.46−51.
  88. Li H., Zuo S., He Z., Yang Y., Pasha Z., Wang Y., Xu M. Paracrine factors released by GATA-4 overexpressed mesenchymal stem cells increase angiogenesis and cell survival // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2010. -Vol.299, № 6. — P. 1772−1781.
  89. Li M., Yu J., Li Y., Li D., Yan D., Ruan Q. CXCR4+ progenitors derived from bone mesenchymal stem cells differentiate into endothelial cells capable of vascular repair after arterial injury // Cell Reprogram. 2010. — Vol.12, № 4.-P. 405−415.
  90. Li R.K., Jia Z.Q., Weisel R.D., Merante F., Mickle D.A. Smooth muscle cell transplantation into myocardial scar tissue improves heart function // J. Mol. Cell Cardiol. 1999. — Vol.31. — P. 513−522.
  91. Linke A., Millier P., Nurzynska D., Casarsa C., Torella D., Nascimbene A., Castaldo C., Cascapera S., Bohm M., Quaini F., Urbanek K., Leri
  92. A., Hintze T.H., Kajstura J., Anversa P. Stem cells in the dog heart are self-renewing, clonogenic, and multipotent and regenerate infarcted myocardium, improving cardiac function // Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2005. — Vol. 102, № 25. -P. 8966−8971.
  93. Logemann J., Schell J., Willmitzer L. Improved Method for the Isolation of RNA from Plant Tissues //Anal. Biochem. 1987. — Vol. 163. — P. 1620.
  94. Mackenzie T.C., Flake A.W. Multilineage differentiation of human MSC after in utero transplantation // Cytotherapy. 2001. — Vol.3. — P. 403−405.
  95. Madeddu P. Stem cell therapy for cardiovascular regeneration: the beginning or the end of all hearts' hopes // Pharmacol. Ther. 2010. — Vol.129, № l.-P. 1−2.
  96. Majumdar M.K., Thiede M.A., Mosca J.D., Moorman M., Gerson S.L. Phenotypic and functional comparison of cultures of marrow-derived mesenchymal stem cells (MSCs) and stromal cells // J. Cell Physiol. 1998. -Vol.176.-P. 57−66.
  97. Martin-Puig S., Wang Z., Chien K.R. Lives of a heart cell: tracing the origins of cardiac progenitors // Cell Stem Cell 2008. — Vol.2, № 4. — P. 320−331.
  98. Matsuura K., Wada H., Nagai T. et al. Cardiomyocytes fuse with surrounding noncardiomyocytes and reenter the cell cycle // J. Cell Biol. 2004. -Vol.167.-P.3 51−363.
  99. Medugorac I. Characterization of intramuscular collagen in mammalian left ventricle // Basic Res. Cardiol. -1982. Vol. 77. — P. 589−598.
  100. Menasche P., Hagege A., Scorsin M., Pouzet B., Desnos M., Duboc D., Schwartz K., Vilquin J.T., Marolleau J.P. Myoblast transplantation for heart failure // Lancet. 2001. — Vol.357. — P. 279−280.
  101. Moebius-Winkler S., Schuler G., Adams V. Endothelial progenitor cells and exercise-induced redox-regulation // Antioxid. Redox. Signal. 2010 Nov 21. doi:10.1089/ars.2010.3734.
  102. Molkentin J.D., Lu J.R., Antos C.L., Markham B., Richardson J., Robbins J., Grant S.R., Olson E.N. A calcineurin-dependent transcriptional pathway for cardiac hypertrophy // Cell 1998. — Vol.93, № 2. — P. 215−228.
  103. Muller Ehmsen J., Whittaker P., Kloner R. A. et al. Survival and development of neonatal rat cardiomyocytes transplanted into adult myocardium // J. Mol. Cell Cardiol. — 2002. — Vol. 34. — P. 107−116.
  104. Nadal-Ginard B., Mendez-Ferrer S. Cardiac stem cells for myocardial regeneration. Springer Sience+Business Media, Inc, 2006. P.39−57.
  105. Nervi B., Link D.C., DiPersio J.F. Cytokines and hematopoietic stem cell mobilization // J. Cell. Biochem. 2006. — Vol.99. — P. 690−705.
  106. Nishida M., Saiki S., Kitajima N., Nakaya M., Sato Y., Kurose H. Regulation of cardiovascular functions by the phosphorylation of TRPC channels // Yakugaku Zasshi. -2010. -Vol.130, № 11.-P. 1427−1433.
  107. Nishida S., Nagamine H., Tanaka Y., Watanabe G. Protective effect of basic fibroblast growth factor against myocyte death and arrhythmias in acute myocardial infarction in rats // Circ. J. 2003. — Vol.67. — P. 334−339.
  108. O’Kane S. Wound remodeling and scarring // J. Wound. Care. Vol. 11.-P. 296, 2002.
  109. Oh H., Bradfute S.B., Gallardo T.D. et al. Cardiac progenitor cells from adult myocardium: homing, differentiation, and fusion after infarction // Proc. Natl. Acad. Sci. USA- 2003.-Vol.100.-P. 12 313−12 318.
  110. Orlic D., Kajstura J., Chimenti S., Jakoniuk I., Anderson M.S., Li B., Pickel J., McKay R., Nadal-Ginard B., Bodine M.D., Leri A., Anversa P. Bonemarrow cells regenerate infracted myocardium // Nature 2001. — Vol. 410. — P. 701−705.
  111. Pangonyte D., Stalioraityte E., Ziuraitiene R., Kazlauskaite D., Palubinskiene J., Balnyte I. Cardiomyocyte remodeling in ischemic heart disease // Medicina. 2008. — Vol.44. — P. 848−854.
  112. Porter K, Turner N. A. Cardiac fibroblasts: at the heart of myocardial remodeling // Pharmacol. Ther. 2009. — Vol.123. — P. 255−278.
  113. Porter K. E, Turner N.A. Cardiac fibroblasts: at the heart of myocardial remodeling // Pharmacol. Ther. 2009. — Vol.123, № 2. — P. 255 -278.
  114. Povsic T. J, O’Connor C.M. Cell therapy for heart failure: the need for a new therapeutic strategy // Expert. Rev. Cardiovasc. Ther. 2010. — Vol.8, № 8. -P. 1107−1126.
  115. Prockop D.J. Marrow stromal cells as stem cells for nonhematopoietic tissues// Science. -1997. -Vol.276. P. 71−74.
  116. Puchtler H, Waldrop F. S, Valentine L.S. Polarization microscopic studies of connective tissue stained with picro-sirius red FBA // Beitr. Pathol. -1973.-Vol. 150, № 2.-P. 174−187.
  117. Qian L, Srivastava D. Monkeying around with cardiac progenitors: hope for the future // J. Clin. Invest. 2010. — Vol.120, № 4. — P.1034−1036.
  118. Qin D, Zhang Z. H, Caref E. B, Boutjdir M, Jain P, el-Sherif N. Cellular and ionic basis of arrhythmias in postinfarction remodeled ventricular myocardium // Circ. Res. 1996. -Vol. 79. -P.461−473.
  119. Quaini F, Urbanek K, Beltrami A. P, Finato N, Beltrami C. A, Nadal-Ginard B, et al. Chimerism of the transplanted heart // N. Engl. J. Med. -2002. Vol.346. — P. 5−15.
  120. Reeve J.L., Duffy A.M., O’Brien T., Samali A. Don’t lose heart-therapeutic value of apoptosis prevention in the treatment of cardiovascular disease //J. Cell Mol. Med. 2005. -Vol. 9, № 3. — P. 609−622.
  121. Reubinoff B.E., Pera M., Fong C.Y., Trounson A., and Bongso A. Embryonic stem cell lines from human blastocysts: somatic differentiation in vitro //Nat. Biotech. -2000. -Vol.18. P. 399−404.
  122. Riches K., Hettiarachchi N.T., Porter K.E., Peers C. Hypoxic remodelling of ca (2+) stores does not alter human cardiac myofibroblast invasion // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2010. — Vol.403, № 3−4. — P. 468−472.
  123. Ruvinov E., Leor J., Cohen S. The promotion of myocardial repair by the sequential delivery of IGF-1 and HGF from an injectable alginate biomaterial in a model of acute myocardial infarction // Biomaterials 2011. — Vol.32, № 2. -P. 565−578.
  124. Schlag G., Redi H. Pathophysiology of shock, sepsis, and organ failure. Berlin: Springer-Verlag, 1993.
  125. Schnaper H.W., Hayashida T., Hubchak S.C., Poncelet A.C. TGF-p signal transduction and mesangial cell fibrogenesis // Am. J. Physiol. Renal Physiol 2003.-Vol.284.-P. 243.
  126. Shintani S., Murohara T., Ikeda H., Ueno T., Sasaki K., Duan J., Imaizumi T. Augmentation of postnatal neovascularization with autologous bone marrow transplantation// Circulation. 2001. — Vol.103, № 6. — P. 897−903.
  127. Siepe M., Heilmann C., von Samson P., Menasche P., Beyersdorf F. Stem cell research and cell transplantation for myocardial regeneration // Eur. J. Cardiothorac. Surg. 2005. — Vol.28, № 2. — P. 318−324.
  128. Siepe M., Heilmann C., von Samson P., Menasche P., Beyersdorf F. Stem cell research and cell transplantation for myocardial regeneration // Eur. J. Cardiothorac. Surg. 2005. — Vol. 28, № 2. — P. 318−324.
  129. Sieveking D.P., Ng M.K. Cell therapies for therapeutic angiogenesis: back to the bench // Vase. Med. 2009. -Vol.14, № 2. — P. 153−166.
  130. Smart N., Risebro C.A., Clark J.E., Ehler E., Miquerol L., Rossdeutsch A., Marber M.S., Riley P.R. Thymosin beta4 facilitates epicardial neovascularization of the injured adult heart // Ann. N. Y. Acad. Sei. — 2010. -Vol.1194.-P. 97−104.
  131. Spradling A., Drummond-Barbosa D., Kai T. Stem cells find their niche // Nature 2001. — Vol.414. — P. 98−104.
  132. Springer M.L., Hortelano G., Bouley D.M., Wong J., Kraft P.E., Blau H.M. Induction of angiogenesis by implantation of encapsulated primary myoblasts expressing vascular endothelial growth factor // J. Gene Med. — 2000. — Vol.2.-P. 279−288.
  133. Squires C.E., Escobar G.P., Payne J.F., Leonardi R.A., Goshorn D.K., Sheats N.J., Mains I.M., Mingoia J.T., Flack E.C., Lindsey M.L. Altered fibroblast function following myocardial infarction // J. Mol. Cell Cardiol. -2005. Vol.39. -P. 699−707.
  134. Sun Y., Kiani M.F., Postlethwaite A.E., Weber K.T. Infarct scar as living tissue // Basic Res. Cardiol. 2002. — Vol.97, № 5. — P. 343−347.
  135. Sun Y., Weber K.T. Infarct scar: a dynamic tissue // Cardiovasc. Res. — 2000. Vol.46, № 2. — P. 250−256.
  136. Symes J.F., Losordo D.W., Vale P.R. Gene therapy with VEGF for inoperable coronary artery disease // Ann. Thorac. Surg. 1999. — Vol.68. — P. 830−836.
  137. Tada M., Morizane A., Kimura H., Kawasaki H., Ainscough J.F., Sasai Y., Nakatsuji N., Tada T. Pluripotency of reprogrammed somatic genomes in embryonic stem hybrid cells // Dev. Dyn. 2003. — Vol.227, № 4. — P. 504−510.
  138. Tang Y.L., Zhao Q., Qin X., Shen L., Cheng L., Ge J., Phillips M.I. «
  139. Paracrine action enhances the effects of autologous mesenchymal stem cell transplantation on vascular regeneration in rat model of myocardial infarction // Ann. Thorac. Surg. 2005. — Vol.80. — P. 229−236.
  140. Tendera M., Wojakowski W. Clinical trials using autologous bone marrow and peripheral blood-derived progenitor cells in patients with acute myocardial infarction // Folia Histochem Cytobiol. 2005. — Vol.43. — P. 233−235.
  141. Tomasek J. J., Gabbiani, G., Hinz, B., Chaponnier, C. & Brown, R. A. Myofibroblasts and mechano-regulation of connective tissue remodeling // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2002. — Vol.3. — P. 349−363.
  142. Tsiavou A., Manginas A. Dynamics of progenitor cells and ventricular assist device intervention // J. Cardiovasc. Transi. Res. 2010. — Vol.3, № 2. — P. 147−152.
  143. Tzahor E., Lassar A. B. Wnt signals from the neural tube block ectopic cardiogenesis // Genes Dev. 2001. — Vol.15. — P. 255−260.
  144. Urbanek K., Cesselli D., Rota M., Nascimbene A., Angelis A., HosodaT., Bearzi C, Boni A, Bolli R., Kajstura J., Anversa P., Leri A. Stem cell niches in the adult mouse heart // PNAS 2006. — Vol. 103, № 24. — P. 9226−9231.
  145. Voisine P., Bianchi C., Ruel M. Inhibition of tha cardiac angiogenic response to exogeneos vascular endothelial growth factor // Surgery. 2004. -Vol.136, № 2.-P. 407−415.
  146. Volders P.G., Willems I.E., Cleutjens J.P., Arends J.W., Havenith M.G., Daemen M.J. Interstitial collagen is increased in the non-infarcted human myocardium after myocardial infarction // J. Mol. Cell Cardiol. 1993. — Vol.25, № 11.-P. 1317−1323.
  147. Vu Т.Н., Werb Z. Matrix metalloproteinases: effectors of development and normal physiology // Genes Dev. 2000. — Vol. 14. — P. 2123.
  148. Wallace P.K., Tario J.D., Fisher J.L., Wallace S.S., Ernstoff M.S., Muirhead K.A. Tracking antigen-driven responses by flow cytometry: monitoring proliferation by dye dilution // Cytometry 2008. — Vol. 73, № 11. — P. 1019−1034.
  149. Wang Т., Tang W., Sun S., Wan Z., Xu Т., Huang Z., Weil M.H. Mesenchymal stem cells improve outcomes of cardiopulmonary resuscitation in myocardial infarcted rats // J. Mol. Cell Cardiol. 2009. — Vol.46. — P. 378−384.
  150. Wang W., Jiang Q., Zhang H., Jin P., Yuan X., Wei Y., Hu S. Intravenous administration of bone marrow mesenchymal stromal cells is safe forthe lung in a chronic myocardial infarction model I I Regen. Med. -2011.- Vol. 6, № 2.-P. 179−190.
  151. Wang, J, Chen, H, Seth, A. & McCulloch, C. A. Mechanical force regulation of myofibroblast differentiation in cardiac fibroblasts // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2003. — Vol.285. — P. 1871−1881.
  152. Wollert K. C, Drexler H. Cell therapy for the treatment of coronary heart disease: a critical appraisal // Nat. Rev. Cardiol. 2010. — Vol.7, № 4. — P. 204−15.
  153. Wu K, Mo X, Lu S, Han Z. Retrograde delivery of stem cells: promising delivery strategy for myocardial regenerative therapy // Clin. Transplant. 2011. — doi: 10.1111/j.1399−0012.2011.1 508.x.
  154. Wu R. X, Laser M, Han H, Varadarajulu J, Schuh K, Hallhuber M, Hu K, Ertl G, Hauck C. R, Ritter O. Fibroblast migration after myocardialinfarction is regulated by transient SPARC expression // J. Mol. Med. 2006. -Vol.84, № 3.-P. 241−252.
  155. Xu M., Uemura R., Dai Y., Wang Y., Pasha Z., Ashraf M. In vitro and in vivo effects of bone marrow stem cells on cardiac structure and function // J. Mo. l Cell Cardiol. 2007. — Vol.42. — P. 441−448.
  156. Yacoub M., Suzuki K. and Rosenthal N. The future of regenerative therapy in patients with chronic heart failure // Nat. Clin. Pract. Cardiovasc. Med. -2006. Vol.3, № 1.- P. 133−135.
  157. Yamagari I. Electronmicroscopic study on the cornea. 1. Mechanism of experimental new vessel formation // Jap. J. Ophthalmol. 1970. — Vol. 14. — P. 41.-58.
  158. Yang S.E., Ha C.W., Jung M., Jin H.J., Lee M., Song H., Choi S., Oh W., Yang Y.S. Mesenchymal stem/progenitor cells developed in cultures from UC blood // Cytotherapy. 2004. — Vol.6, № 5. — P. 476−86.
  159. Yin R., Feng J. Dynamic changes of serum VEGF levels in a rat myocardial infarction model // Chin. Med. Sci. 2000. -Vol.15, № 3. — P. 154 156.
  160. Zeng B., Lin .G, Ren X., Zhang .Y, Chen H. Over-expression of HO-1 on mesenchymal stem cells promotes angiogenesis and improves myocardial function in infarcted myocardium // J. Biomed. Sei. 2010. — Vol.7. — P. 80.
  161. Zeng T., Bett G.C.L., Sachs F. Stretch-activated whole cell currents in cardiac myocytes //Amer. J. Physiol. 2000. — Vol.278. — P. 548−557.
  162. Zhang Y., Li T.S., Lee S.T., Wawrowsky K.A., Cheng K., Galang G., Malliaras K., Abraham M.R., Wang C., Marban' E. Dedifferentiation and proliferation of mammalian cardiomyocytes // PLoS One 2010. — Vol.5, № 9. -P.
  163. Zhou L., Ma W., Yang Z., Zhang F., Lu L., Ding Z., Ding B., Ha T., Gao X., Li C. VEGF165 and angiopoietin-1 decreased myocardium infarct size through phosphatidylinositol-3 kinase and Bcl-2 pathways // Gene Ther. 2005. -Vol.12.-P. 196−202.12 559.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!