Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Молекулярно-эпидемиологическое исследование норовирусной инфекции у детей раннего возраста Новосибирска

Диссертация: Молекулярно-эпидемиологическое исследование норовирусной инфекции у детей раннего возраста Новосибирска
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Острые кишечные инфекции (ОКИ) являются одной из важных проблем современного здравоохранения во всем мире. В течение длительного времени возникновение кишечных инфекций связывали с употреблением загрязненной воды и продуктов питания, и ОКИ считались проблемой развивающихся стран, в которых источники водоснабжения и пищевые продукты могут стать причиной масштабных вспышек кишечных инфекций… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Норовирусная инфекция
      • 1. 1. 1. История открытия норовирусов
      • 1. 1. 2. Патогенез норовирусиой инфекции
      • 1. 1. 3. Клиническая картина норовирусиой инфекции
      • 1. 1. 4. Осложнения норовирусиой инфекции
      • 1. 1. 5. Лечение норовирусиой инфекции
    • 1. 2. Структурная организация норовирусов
      • 1. 2. 1. Морфология вирионов норовирусов
      • 1. 2. 2. Организация генома норовирусов
      • 1. 2. 3. Свойства и функции неструктурных белков норовирусов
      • 1. 2. 4. Структура и вариабельность главного белка капсида
    • 1. 3. Классификация калицивирусов
    • 1. 4. Эпидемиология норовирусиой инфекции
      • 1. 4. 1. Методы и подходы для детекции норовирусов
      • 1. 4. 2. Генотипирование норовирусов
      • 1. 4. 3. Преобладающие генетические варианты норовирусов
      • 1. 4. 4. Пути и механизмы передачи норовирусов
      • 1. 4. 5. Распространенность норовирусиой инфекции
      • 1. 4. 6. Вспышечная и спорадическая заболеваемость
      • 1. 4. 7. Норовирусы как антропозоонозная инфекция
      • 1. 4. 8. Сезонность норовирусиой инфекцин
      • 1. 4. 9. Возрастные особенности норовирусиой инфекции
      • 1. 4. 10. Исследование норовирусов в РФ
  • 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Общая характеристика исследования
    • 2. 2. Материалы
    • 2. 3. Методы
      • 2. 3. 1. Формирование базы данных
      • 2. 3. 2. Забор материала
      • 2. 3. 3. Получение осветленного экстракта фекалий
      • 2. 3. 5. Синтез комплементарной ДНК
      • 2. 3. 7. Электрофоретический анализ образцов
      • 2. 3. 8. Элюция фрагментов ДНК из агарозного геля
      • 2. 3. 9. Определение нуклсотидных последовательностей
      • 2. 3. 10. Филогенетический анализ
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ
    • 3. 1. Оценка встречаемости норовирусиой инфекции у детей в Новосибирске
    • 3. 2. Норовирусная инфекция у детей раннего возраста Новосибирска с 2005 по 2008 ггбО
      • 3. 2. 1. Организация исследования
      • 3. 2. 2. Значимость норовирусов в этиологической структуре ОКИ
      • 3. 2. 3. Встречаемость норовирусов в сочетании с другими патогенами
      • 3. 2. 4. Исследование сезонности норовирусиой инфекции
      • 3. 2. 5. Анализ возрастных особенностей норовирусиой инфекции
      • 3. 2. 6. Клинические особенности норовирусиой инфекции
      • 3. 2. 7. Генотипирование и филогенетический анализ изолятов норовирусов

Молекулярно-эпидемиологическое исследование норовирусной инфекции у детей раннего возраста Новосибирска (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Острые кишечные инфекции (ОКИ) являются одной из важных проблем современного здравоохранения во всем мире. В течение длительного времени возникновение кишечных инфекций связывали с употреблением загрязненной воды и продуктов питания, и ОКИ считались проблемой развивающихся стран, в которых источники водоснабжения и пищевые продукты могут стать причиной масштабных вспышек кишечных инфекций (Parashar U. D. et al., 2003; Steele A. D. et al., 2003; Bresee J. et al., 2004). Однако, несмотря на постоянное улучшение качества питьевой воды и продуктов питания, а также строгий санитарно-эпидемиологический контроль за объектами окружающей среды, и в экономически развитых странах проблема кишечных инфекций стоит достаточно остро (de Wit М.А. et al., 2007; Marvin H. et al., 2009). Как в России, так и в США случаи заболевания кишечными инфекциями занимают одно из ведущих мест среди инфекционных заболеваний, уступая по распространенности лишь инфекциям респираторного тракта.

ОКИ проявляются в виде острых гастроэнтеритов, основными симптомами которых, как правило, являются тошнота, рвота, диарея, сопровождающиеся обезвоживанием. Эти симптомы наиболее тяжело переносятся детьми раннего возраста, у которых вследствие незрелости системы гомеостаза наиболее часто возникают угрожающие жизни состояния. По данным ВОЗ, около 700 миллионов случаев ОКИ регистрируется в мире ежегодно у детей младше 5 лет. Смертность, ассоциированная с гастроэнтеритами, составляет 5−7 миллионов человек ежегодно.

В связи с развитием и усовершенствованием средств диагностики спектр известных патогенов — возбудителей ОКИ постоянно расширяется, и в настоящее время значительную часть из них составляют вирусные патогены: ротавирусы групп А, В, С, астровирусы серотипов 1−8, аденовирусы типов 40, 41, норовирусы и саповирусы, входящие в семейство калицивирусов, энтеровирусы и другие (Atmar R. L. et al., 2001; Maltezou H. С. et al., 2001; Koopmans M. et al., 2002; Koopmans M. et al., 2004; Carter M. J. et al., 2005). Наименее изученными из них являются калицивирусы. Это связано со значительными трудностями культивирования этих вирусов (Duizer Е. et al., 2004), а также с отсутствием адекватной модели заболевания на животных. Тем не менее, благодаря развитию и усовершенствованию молекулярно-биологических методов диагностики достигнуты значительные успехи в изучении патогенеза и эпидемиологии калицивирусной инфекции.

Семейство Caliciviridae состоит их четырех родов, патогенными для человека являются представители родов Norovirus и Sapovirus, при этом наиболее часто в клинических образцах от больных выявляются норовирусы. Их распространенность при спорадической заболеваемости составляет 10−15% от всех случаев ОКИ (Buesa J. et al., 2002; Bon F. et al., 2005), однако норовирусы играют важную роль в возникновении вспышек этого заболевания. Так, 60−85% вспышек гастроэнтеритов в США, Европе и Японии ассоциированы с норовирусами (Fankhauser R. L. et al., 2002; Lopman В. et al., 2003; de Wit M. A. et al., 2007). С 1997 no 2000 гг. из 233 вспышек кишечных инфекций, зарегистрированных в CDC (США, Атланта), в 86% (201 вспышка) выявлялись норовирусы (Fankhauser R. L. et al., 2002). Описаны также вспышки ОКИ, вызванные и другими представителями семейства калицивирусовсаповирусами (Phan Т. G. et al., 2006).

В России показатели заболеваемости от ОКИ ниже, чем в развитых странах. Вероятно, это объясняется недостаточной диагностикой и регистрацией этой инфекции. По данным Федерального Центра Госсанэпиднадзора, в 2007;2008 гг. в РФ официально регистрировалось более 650 тыс. случаев ОКИ в год. При этом этиология кишечных заболеваний была установлена только у 28% пациентов, из них более половины являлись детьми до 14 лет (http://www.fcgsen.ru). Санитарно-эпидемиологический контроль над норовирусной инфекцией вследствие ограниченности средств диагностики в России не проводится.

Среди существующих прямых методов выявления вирусных возбудителей ОКИ наиболее перспективным является подход с использованием полимеразной цепной реакции. Учитывая, что систематические исследования этиологической значимости норовирусов, вызывающих ОКИ, а также их генотипическая характеристика на территории Западной Сибири не проводились, целью данной работы являлась оценка этиологической значимости норовирусов первой и второй геногруппы у детей раннего возраста и исследование молекулярно-генетического разнообразия циркулирующих изолятов норовирусов в г. Новосибирске.

Цель работы — изучить особенности норовирусной инфекции у детей до 3-х лет, госпитализированных с диагнозом ОКИ, и исследовать молекулярно-генетическое разнообразие выявленных изолятов норовирусов.

Основные задачи исследования:

— оценить этиологическую значимость норовирусов I и II геногрупп в структуре ОКИ у детей до 3-х лет;

— исследовать сезонные особенности норовирусной инфекции и возрастное распределение больных этой инфекцией;

— провести анализ клинических особенностей норовирусной инфекции у детей раннего возраста;

— определить нуклеотидные последовательности кДНК региона О геномов выявленных норовирусов, соответствующих поверхностному субдомену Р2 белка капсида;

— провести филогенетический анализ полученных нуклеотидных и соответствующих аминокислотных последовательностей норовирусов второй геногруппы.

Научная новизна исследования. Впервые проведено многолетнее комплексное молекулярно-эпидемиологическое исследование норовирусной инфекции у детей раннего возраста Новосибирска. Показан вклад норовирусов в этиологическую структуру ОКИ, представлены данные о распространенности сочетанной инфекции норовирусно-вирусной и норовирусно-бактериальной этиологии.

Впервые проведено исследование генетического разнообразия изолятов норовирусов, выявленных в Новосибирскепродемонстрирована циркуляция норовирусов первой и второй геногрупп, установлено, что норовирусы первой геногруппы являются редкой этиологической причиной ОКИ у детей раннего возраста в Новосибирске. Оценена значимость различных генетических вариантов норовирусов второй геногруппы в структуре ОКИ у детей раннего возраста. Впервые определены и зарегистрированы в базе данных ОепВапк (ЪТСВ1, США) нуклеотидные последовательности региона Э геномов норовирусов, выявленных в Новосибирске.

Практическая значимость работы.

Проведенное исследование распространенности норовирусной инфекции показало значимость норовирусов в заболеваемости ОКИ и позволило определить этиологическую причину в случаях, раннее относившихся к кишечным инфекциям неустановленной этиологии (КИНЭ).

Мониторинг норовирусной инфекции в течение трех лет позволил выявить подъем заболеваемости ОКИ норовирусной этиологии с декабря 2006 г. по март 2007 г. и расшифровать этиологию заболевания более чем в 50% случаев госпитализаций с диагнозом ОКИ в этот период.

Результаты проведенных исследований могут быть использованы при разработке методических рекомендаций для практикующих врачей и эпидемиологов по контролю и профилактике норовирусной инфекции, а также внедрению современных методов диагностики ОКИ норовирусной этиологии.

Результаты изучения генетического спектра норовирусов второй геногруппы могут быть использованы при создании диагностических тест-систем для экспресс-диагностики этих патогенов, а также для разработки вакцинных препаратов.

V Положения, выносимые на защиту.

1. Частота встречаемости норовирусной инфекции у детей раннего возраста Новосибирска, госпитализированных с диагнозом ОКИ, составила 17,3%.

2. В 38,4% образцов, содержащих норовирусы, одновременно регистрировалось присутствие других энтеропатогенов вирусной или бактериальной природы.

3. Зарегистрирован значительный подъем заболеваемости норовирусной инфекцией в январе-марте 2007 г., однако выраженной сезонности норовирусной инфекции в Новосибирске в 2005;2008 гг. выявлено не было.

4. Норовирусная инфекция в целом характеризовалась менее острым началом и более легким течением по сравнению с ротавирусной инфекцией.

5. Норовирусы первой геногруппы являлись редкой этиологической причиной острых кишечных инфекций у детей раннего возраста г. Новосибирска-1,8%.

6. На территории Новосибирской области доминировали норовирусы второй геногруппыпреобладали изоляты 3-го и 4-го генотипов норовирусов этой геногруппы.

Апробация работы и публикации.

Результаты работы представлены на 2-х российских и 4-х международных конференциях: V Российская научно-практическая конференция «Генодиагностика инфекционных болезней», Новосибирск, 2005; III Российская научная конференция «Проблемы инфекционной патологии в регионах Сибири, Дальнего Востока и Крайнего Севера», Новосибирск, 2006; 7th Internaitonal Rotavirus Symposium, Lisbon, Portugal, 2006; 3rd International Conference «Basic Science for Medicine», Novosibirsk, Russia, 2007; 4th.

Inernational Conference on Vaccines for Enteric Diseses — VED 2007, Lisbon, Portugal, 2007; 26th Annual Meeting of the European Society for Paediatric Infectious Diseases (ESPID), Graz, Austria, 2008. По материалам диссертации опубликованы пять статей.

Вклад автора.

Диссертационная работа была выполнена в лаборатории разработки средств экстренной профилактики ФГУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора в рамках выполнения проекта МНТЦ № 2935.

Выделение препаратов РНК/ДНК и комплексная ПЦР-диагностика вирусных (ротавирусы, астровирусы) и бактериальных {Salmonella spp., Shigella spp., Campylobacter) патогенов проводилось автором совместно с Е. В. Жираковской, А. Ю. Тикуновым и Т. Э. Юн. ПЦР-диагностика норовирусной инфекции проводилась лично автором.

Бактериологический посев на Salmonella spp., Shigella spp. и условно-патогенную флору проводился сотрудниками микробиологической лаборатории МУЗ ДГКБ № 3.

Эпидемиологический анализ норовирусной инфекции у детей раннего возраста, а также генотипирование выявленных изолятов норовирусов выполнено автором лично. Секвенирование фрагментов генов норовирусов проводилось автором совместно с к.б.н. Е. В. Жираковской. Филогенетический анализ генетической вариабельности изолятов норовирусов проводился автором лично.

Структура и объём диссертации.

Диссертация выполнена на 133 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, главы «Материалы и методы», главы «Результаты и обсуждение», заключения, выводов и списка литературы. Работа иллюстрирована 20 рисунками, включает 8 таблиц и 2 приложения. Библиография включает 260 работ: 11 — отечественных авторов и 249 -зарубежных.

выводы.

1. Впервые показано, что в структуре острых кишечных инфекций у детей до трех лет, госпитализированных в специализированную клинику Новосибирска, норовирусы являлись второй по значимости этиологической причиной и были выявлены в 17,3% клинических образцов.

2. Норовирусная моноинфекция была выявлена в 63,1% образцов, содержащих норовирусы, в 36,9% образцов норовирусы были обнаружены совместно с другими патогенами: с бактериальными энтеропатогенами — в 7,1% проб, с ротавирусами — в 18,8% проб, с астровирусами — в 5,5% проб, с несколькими патогенами одновременно — в 4,8% проб.

3. В период с декабря 2006 г. по март 2007 г. норовирусы определялись более чем в половине исследованных проб, что превышало распространенность в этот период традиционно превалирующей ротавирусной инфекцииоднако, выраженной сезонности за весь период исследования отмечено не было.

4. Наибольшее число случаев норовирусной инфекции было зафиксировано у детей в возрасте от 3 месяцев до полутора лет жизнипик заболеваемости отмечался в возрасте 9−11 месяцев, когда норовирусы обнаруживались в 23,5% проб.

5. Установлено, что у больных норовирусной инфекцией заболевание характеризуется менее острым началом и более легким течением, чем при ротавирусной инфекции.

6. Впервые показано генетическое различие циркулирующих изолятов норовирусов, выделенных от детей до трех лет с симптомами ОКИ: в период исследования в нашем регионе доминировали норовирусы геногруппы GII (91,5%), представленные генотипами GII.3 и GII.4, причем большее распространение имел вариант GII.4.

7. Группирование норовирусов в кластеры зависело от времени выделения изолятов, наблюдалось изменение с течением времени генетической принадлежности преобладающих вариантов изолятов норовирусов.

БЛАГОДАРНОСТИ.

Автор выражает глубокую признательность и благодарность научному руководителю, доктору биологических наук Тикуновой Нине Викторовне за помощь и поддержку в написании диссертации, а также рецензентам, доктору медицинских наук Малковой Елене Михайловне и кандидату биологических наук Петровой Ирине Дмитриевне за глубокий и всесторонний анализ диссертационного исследования и сделанные ими ценные замечания.

Автор выражает искреннюю благодарность коллегам Жираковской Елене Владимировне, Тикунову Артему Юрьевичу, Юн Татьяне Эверестовне, Денисовой Наталье Тимофеевне, Сафоновой Наталье Сергеевне за всестороннюю помощь в организации исследования и плодотворное сотрудничество, а также врачам МУЗ ДГКБ № 3 Новосибирска Никифоровой Наталье Алексеевне, Корсаковой Татьяне Георгиевне и Клемешевой Вере Владимировне за помощь в организации данного исследования.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В нашем многолетнем исследовании впервые было показано, что норовирусы являются важной этиологической причиной спорадических случаев ОКИ у детей раннего возраста г. Новосибирска. Наибольшее распространение имели норовирусы второй геногруппы, доля которых составила 91,5% от всех выявленных норовирусов. В целом, за весь период исследования норовирусы были обнаружены в 17,3% проб (602/3496), в 10,9% всех исследованных нами образцов фекалий норовирусы были выявлены как единственный патоген (381/3496). В 6,4% (231/3496) проб, наряду с норовирусами, были обнаружены другие патогены вирусной или бактериальной природы. При этом наиболее часто наблюдались сочетанные пробы с ротавирусами (18,8%), астровирусами (5,5%), бактериальными энетропатогенами (7,1%), а также сочетание двух и более возбудителей ОКИ (4%). Норовирусные микст-инфекции выявлялись с различной частотой в различное время года с набольшим числом таких выявленных проб в холодные месяцы года.

В целом, для норовирусной инфекции не была характерна выраженная зимняя сезонность. Случаи норовирусной инфекции регистрировались в течение всего трехлетнего периода исследования, при этом в различные годы эпидемические показатели несколько различались. Однако в период с декабря 2006 г. по март 2007 г. норовирусы определялись более чем в половине исследованных проб, что оказалось выше, чем распространенность в этот период традиционно превалирующей ротавирусной инфекции.

Возрастными особенностями норовирусной инфекции являлась ее значительная распространенность среди детей в возрасте до полутора лет жизни, при этом пик заболеваемости у пациентов этой возрастной подгруппы отмечался в возрасте 9−11 месяцев, когда норовирусы обнаруживались в 23,5% проб фекалий. Исследование также показало, что у детей до трех месяцев в группе сопоставления норовирусы встречались в меньшем количестве проб по сравнению с группой детей до 3-месяцев, госпитализированных с диагнозом кишечная инфекция, что может свидетельствовать о возможности бессимптомного протекания заболевания у детей данной возрастной группы и, возможно, у более старших.

Клиническая картина норовирусной ОКИ характеризовалась сочетанием гастроинтестинальных нарушений и интоксикационного синдрома. Однако, в целом, ОКИ норовирусной этиологии протекало в более легкой форме, чем ротавирусная инфекция. При этом для норовирусной инфекции было характерно более длительное сохранение рвоты и более частые нарушения системы ЖКТ в виде реактивного панкреатита. У части пациентов наблюдались катаральные явления, без сопутствующих клинических проявлений инфекции верхних дыхательных путей, что также было характерно и для ротавирусной инфекции.

Молекулярно-биологическое исследование выявленных изолятов норовирусов показало, что вся циркулирующая популяция разделяется на отдельные генотипы и группы внутри генотипов. Основное количество норовирусов относилось к генотипу 011.4, описанному ранее как источник масштабных вспышек кишечных инфекций во всем мире. Кроме того, в нашем регионе была зарегистрирована циркуляция генотипа вЮ. Проведенное исследование продемонстрировало изменение спектра генотипов циркулирующих изолятов норовирусов с течением времени.

Таким образом, в данном исследовании впервые была показана значимость норовирусов в структуре острых кишечных инфекций у детей раннего возраста г. Новосибирска и проведена молекулярно-генетическая характеризация циркулирующих вариантов этого возбудителя.

Показать весь текст

Список литературы

  1. .Я., Васильева Р. И., Лобзин Ю. В. Острые кишечные заболевания : Ротавирусы и ротавирусная инфекция. // СПб.: Лань. 2000 -268 с.
  2. В.Г., Коржев М. О., Виринская A.C. Современные проблемы инфекционной патологии человека. // Материалы II научно-практической конференции/ 2001. — С. 217−222.
  3. Э.В. Современные взгляды на кишечный дисбактериоз у детей. // Южно-Российский медицинский журнал. 2002. — № 2. — С. 28−34.
  4. Е.В., Никифорова H.A., Корсакова Т. Г. Ротавирусная инфекция у детей раннего возраста в Новосибирске. Генотипирование циркулирующих изолятов. // Эпидемиология и инфекционные болезни. -2007.- № 3 С. 36−45.
  5. Г. М., Горегляд Н. С., Булдык Е. А. Диагностика и лечение острых кишечных инфекций у детей в условиях поликлиники. // Методические рекомендации. 2000. — Москва: Мн.: МГМИ. — С. 41.
  6. , A.A., Шипулин, Г.А., Боковой А. Г. Первый опыт изучения калицивирусной инфекции у детей в Москве. // Вопросы вирусологии. -2002.-№ 6-С. 28−34.
  7. В.Л. Современные представления о кишечном дисбактериозе. // Сборник лекций и научных работ «Практические вопросы детской гастрорэнтерологии Санкт-Петербурга». С.-П. — 1999. — С. 133−138.
  8. А.Т., Фенске Е. Б., Абрамычева Н. Ю. Сезонность и возрастная структура заболеваемости острыми кишечными инфекциями на территории РФ. // Терапевтический архив. 2007. — Т. 79 — № 11 — С. 10−16.
  9. В.М. Инфекционные болезни у детей : Учеб. для педиатр, фак. мед. вузов. // СПб.: СпецЛит 2001. — 559 с.
  10. В.Ф. Руководство по инфекционным болезням у детей : Учеб. пособие для студентов мед. вузов. // М.: ГЭОТАР Медицина 1998. — С. 540.
  11. С.А. Дисбактериоз кишечника у детей. // Методические рекомендации. Краснодар. — 1999 — С. 36.
  12. Norovirus activity United States, 2002. — MMWR Morb Mortal Wkly Rep -2003.-V. 52 (3)-P. 41−5.
  13. Norovirus activity-United States, 2006−2007. MMWR Morb Mortal Wkly Rep- 2007. V. 56 (33) — P. 842−6.
  14. J.L., Zickl R. // Winter vomiting disease. J Infect Dis — 1969. — V. 119 (6)-P. 668−73.
  15. Т., Noel J.S., Fankhauser R.L. // Genetic classification of «Norwalk-like viruses. J Infect Dis — 2000. — V. 181 Suppl 2- P. S336−48.
  16. R.L., Estes M.K. // Diagnosis of noncultivatable gastroenteritis viruses, the human caliciviruses. Clin Microbiol Rev — 2001. — V. 14 (1) — P. 15−37.
  17. C.A., Clarke I.N., Kempster S.L., Oliver S.L., Bridger J.C., Lambden P.R. // Characterization of a cross-reactive linear epitope in human genogroup Iand bovine genogroup III norovirus capsid proteins. Virology — 2006. — V. 356 (1−2)-P. 179−87.
  18. Bereciartu A., Bok K., Gomez J. // Identification of viral agents causing gastroenteritis among children in Buenos Aires, Argentina. J Clin Virol — 2002.- V. 25 (2)-P. 197−203.
  19. Berg D.E., Kohn M.A., Farley T.A., McFarland L.M. // Multi-state outbreaks of acute gastroenteritis traced to fecal-contaminated oysters harvested in Louisiana.- J Infect Dis 2000. — V. 181 Suppl 2- P. S381−6.
  20. Bertolotti-Ciarlet A., White L.J., Chen R., Prasad B.V., Estes M.K. // Structural requirements for the assembly of Norwalk virus-like particles. J Virol — 2002. -V. 76 (8) — P. 4044−55.
  21. N., Dolin R., Fedson D. // Acute infectious nonbacterial gastroenteritis: etiology and pathogenesis. Ann Intern Med — 1972. — V. 76 (6) -P. 993−1008.
  22. B., Wirblich C., Sibilia M., Meyers G., Thiel H.J., Rossi C. // Identification and characterization of a 3C-like protease from rabbit hemorrhagic disease virus, a calicivirus. J Virol — 1994. — V. 68 (10) — P. 6487−95.
  23. J.C., Hall G.A., Brown J.F. // Characterization of a calici-like virus (Newbury agent) found in association with astrovirus in bovine diarrhea. Infect Immun — 1984. — V. 43 (1) — P. 133−8.
  24. Bull R.A., Tu E.T., Mclver C.J., Rawlinson W.D., White P.A. // Emergence of a new norovirus genotype II.4 variant associated with global outbreaks of gastroenteritis. J Clin Microbiol — 2006. — V. 44 (2) — P. 327−33.
  25. J.N., Brown F. // Presence of a covalently linked protein on calicivirus RNA. J Gen Virol — 1978. — V. 41 (2) — P. 443−6.
  26. S., Putallaz T., Sanchez G. // Procedure for rapid concentration and detection of enteric viruses from berries and vegetables. Appl Environ Microbiol — 2007. — V. 73 (1) — P. 186−92.
  27. M.C., Nicholson L., Lomonossoff G.P. // Use of viral vectors for vaccine production in plants. Immunol Cell Biol — 2005. — V. 83 (3) — P. 263−70.
  28. MJ. // Enterically infecting viruses: pathogenicity, transmission and significance for food and waterborne infection. J Appl Microbiol — 2005. — V. 98 (6)-P. 1354−80.
  29. E.O. // Small round structured viruses: airborne transmission and hospital control. Lancet — 1994. — V. 343 (8908) — P. 1240−2.
  30. E.O. // Viral gastroenteritis: small round structured viruses, caliciviruses and astroviruses. Part I. The clinical and diagnostic perspective. J Clin Pathol -1996.- V. 49 (11)-P. 874−80.
  31. Chadwick P.R., McCann R. // Transmission of a small round structured virus by vomiting during a hospital outbreak of gastroenteritis. J Hosp Infect — 1994. -V. 26 (4)-P. 251−9.
  32. S., Hutson A.M., Estes M.K., Prasad B.V. // Evolutionary trace residues in noroviruses: importance in receptor binding, antigenicity, virion assembly, and strain diversity. J Virol — 2005. — V. 79 (1) — P. 554−68.
  33. I.N., Lambden P.R. // The molecular biology of caliciviruses. J Gen Virol — 1997. — V. 78 (Pt 2) — P. 291−301.
  34. V. // Talking dirty: how to save a million lives. Int J Environ Health Res — 2003. — V. 13 Suppl 1- P. S73−9.
  35. K.F., Fraser C.S., Hershey J.W., Hardy M.E. // The genome-linked protein VPg of the Norwalk virus binds eIF3, suggesting its role in translation initiation complex recruitment. Embo J — 2003. — V. 22 (11) — P. 2852−9.
  36. D., Laurichesse H., Caul E.O., Wall P.G. // Surveillance of small round structured virus (SRSV) infection in England and Wales, 1990−5. Epidemiol Infect — 1998. — V. 121 (1) — P. 139−49.
  37. Dey S.K., Nguyen T.A., Phan T.G., Nishio O., Salim A.F., Rahman M., Yagyu F., Okitsu S., Ushijima H. // Molecular and epidemiological trend of norovirus associated gastroenteritis in Dhaka City, Bangladesh. J Clin Virol — 2007. — V. 40(3)-P. 218−23.
  38. K.E. // Mutation in a Lordsdale norovirus epidemic strain as a potential indicator of transmission routes. J Clin Microbiol — 2004. — V. 42(9) — P.3950−7.
  39. Dolin R., Blacklow N.R., DuPont H., Buscho R.F., Wyatt R.G., Kasel J.A., Hornick R., Chanock R.M. // Biological properties of Norwalk agent of acute infectious nonbacterial gastroenteritis. Proc Soc Exp Biol Med — 1972. — V. 140 (2) — P. 578−83.
  40. J.C., Druce J.D., Birch C.J., Bowden D.S., Marshall J.A. // Inactivation of feline calicivirus, a Norwalk virus surrogate. J Hosp Infect — 1999. — V. 41 (1)-P. 51−7.
  41. E., Schwab K.J., Neill F.H., Atmar R.L., Koopmans M.P., Estes M.K. // Laboratory efforts to cultivate noroviruses. J Gen Virol — 2004. — V. 85 (Pt 1) -P. 79−87.
  42. D.W., Schaffer F.L. // RNA synthesized in calicivirus-infected cells is atypical of picornaviruses. J Virol — 1977. — V. 22 (2) — P. 572−6.
  43. M.K., Ball J.M., Guerrero R.A., Opekun A.R., Gilger M.A., Pacheco S.S., Graham D.Y. // Norwalk virus vaccines: challenges and progress. J Infect Dis -2000. — V. 181 Suppl 2- P. S367−73.
  44. K., Hardy M.E. // Norwalk virus nonstructural protein p48 forms a complex with the SNARE regulator VAP-A and prevents cell surface expression of vesicular stomatitis vims G protein. J Virol — 2003. — V. 7 (21) — P. 11 790−7.
  45. Evans H.S., Madden P., Douglas C., Adak G.K., O’Brien S.J., Djuretic T., Wall P.G., Stanwell-Smith R. // General outbreaks of infectious intestinal disease in England and Wales: 1995 and 1996. Commun Dis Public Health — 1998. — V. 13.-P. 165−71.
  46. R.L., Noel J.S., Monroe S.S., Ando T., Glass R.I. // Molecular epidemiology of «Norwalk-like viruses» in outbreaks of gastroenteritis in the United States. J Infect Dis — 1998. — V. 178 (6) — P. 1571−8.
  47. Foley B., O’Mahony J., Morgan S.M., Hill C., Morgan J.G. // Detection of sporadic cases of Norwalk-like virus (NLV) and astrovirus infection in a single Irish hospital from 1996 to 1998. J Clin Virol — 2000. — V. 17 (2) — P. 109−17.
  48. S., Talcao S., Kuwayama M., Shimazu Y., Miyazaki K. // Rapid detection of norovirus from fecal specimens by real-time reverse transcriptionloop-mediated isothermal amplification assay. J Clin Microbiol — 2006. — V. 444.-P. 1376−81.
  49. Gehrke C., Steinmann J., Goroncy-Bermes P. // Inactivation of feline calicivirus, a surrogate of norovirus (formerly Norwalk-like viruses), by different types of alcohol in vitro and in vivo. J Hosp Infect — 2004. — V. 56 (1) — P. 49−55.
  50. Glass P.J., White L.J., Ball J.M., Leparc-Goffart I., Hardy M.E., Estes M.K. // Norwalk virus open reading frame 3 encodes a minor structural protein. J Virol — 2000. — V. 74 (14) — P. 6581−91.
  51. R.I., Bresee J., Jiang B., Gentsch J., Ando T., Fankhauser R., Noel J., Parashar U., Rosen B., Monroe S.S. // Gastroenteritis viruses: an overview. -Novartis Found Symp 2001. — V. 238 — P. 5−19- discussion 19−25.
  52. Gonin P., Couillard M., d’Halewyn M.A. // Genetic diversity and molecular epidemiology of Norwalk-like viruses. J Infect Dis — 2000. — V. 182 (3) — P. 691−7.
  53. Gray J J., Green J., Cunliffe C., Gallimore C., Lee J.V., Neal K., Brown D.W. // Mixed genogroup SRSV infections among a party of canoeists exposed to contaminated recreational water. J Med Virol — 1997. — V. 52 (4) — P. 425−9.
  54. J., Gallimore C.I., Norcott J.P., Lewis D., Brown D.W. // Broadly reactive reverse transcriptase polymerase chain reaction for the diagnosis of SRSV-associated gastroenteritis. J Med Virol — 1995. — V. 47 (4) — P. 392−8.
  55. J., Norcott J.P., Lewis D., Arnold C., Brown D.W. // Norwalk-like viruses: demonstration of genomic diversity by polymerase chain reaction. J Clin Microbiol — 1993. — V. 31 (11) — P. 3007−12.
  56. J., Vinje J., Gallimore C.I., Koopmans M., Hale A., Brown D.W., Clegg J.C., Chamberlain J. // Capsid protein diversity among Norwalk-like viruses. -Virus Genes 2000. — V. 20 (3) — P. 227−36.
  57. K.Y., Ando T., Balayan M.S., Berke T., Clarke I.N., Estes M.K., Matson D.O., Nakata S., Neill J.D., Studdert M.J., Thiel HJ. // Taxonomy of the caliciviruses. J Infect Dis — 2000. — V. 181 Suppl 2- P. S322−30.
  58. Greenberg H.B., Valdesuso J.R., Kalica A.R., Wyatt R.G., McAuliffe V.J., Kapikian A.Z., Chanock R.M. // Proteins of Norwalk virus. J Virol — 1981. -V. 37 (3) — P. 994−9.
  59. Guntapong R., Hansman G.S., Oka T., Ogawa S., Kageyama T., Pongsuwanna Y., Katayama K. // Norovirus and sapovirus infections in Thailand. Jpn J Infect Dis — 2004. — V. 57 (6) — P. 276−8.
  60. D., Hubner P., Luthy J. // Outbreak of viral gastroenteritis due to sewage-contaminated drinking water. Int J Food Microbiol — 2000. — V. 54 (1−2)-P. 123−6.
  61. A., Mattick K., Lewis D., Estes M., Jiang X., Green J., Eglin R., Brown D. // Distinct epidemiological patterns of Norwalk-like virus infection. J Med Virol — 2000. — V. 62 (1) — P. 99−103.
  62. A.D., Tanaka T.N., Kitamoto N., Ciarlet M., Jiang X., Takeda N., Brown D.W., Estes M.K. // Identification of an epitope common to genogroup 1 «norwalk-like viruses». J Clin Microbiol — 2000. — V. 38 (4) — P. 1656−60.
  63. M.E. // Noro virus protein structure and function. FEMS Microbiol Lett -2005.-V. 253 (1)-P. 1−8.
  64. M.E., Kramer S.F., Treanor J.J., Estes M.K. // Human calicivirus genogroup II capsid sequence diversity revealed by analyses of the prototype Snow Mountain agent. Arch Virol — 1997. — V. 142 (7) — P. 1469−79.
  65. M.E., Tanaka T.N., Kitamoto N., White L.J., Ball J.M., Jiang X., Estes M.K. // Antigenic mapping of the recombinant Norwalk virus capsid protein using monoclonal antibodies. Virology — 1996. — V. 217 (1) — P. 252−61.
  66. M.E., White L.J., Ball J.M., Estes M.K. // Specific proteolytic cleavage of recombinant Norwalk virus capsid protein. J Virol — 1995. — V. 69 (3) — P. 1693−8.
  67. C.W., Osterholm M.T. // Outbreaks of food-borne and waterborne viral gastroenteritis. Clin Microbiol Rev — 1993. — V. 6 (3) — P. 199−210.
  68. Hedlund K.O., Rubilar-Abreu E., Svensson L. // Epidemiology of calicivirus infections in Sweden, 1994−1998. J Infect Dis — 2000. — V. 181 Suppl 2- P. S275−80.
  69. J.E., Nowak N.A., Blacklow N.R. // Detection of Norwalk virus in stools by enzyme immunoassay. J Med Virol — 1985. — V. 17 (2) — P. 127−33.
  70. J., Malorny B., Abdulmawjood A., Cook N., Wagner M., Fach P. // Practical considerations in design of internal amplification controls for diagnostic PCR assays. J Clin Microbiol — 2004. — V. 42 (5) — P. 1863−8.
  71. J.B., Sharma M., Petric M. // Inactivation of Norovirus by ozone gas in conditions relevant to healthcare. J Hosp Infect — 2007. — V. 66 (1) — P. 40−5.
  72. A.M., Atmar R.L., Estes M.K. // Norovirus disease: changing epidemiology and host susceptibility factors. Trends Microbiol — 2004. — V. 12 (6) — P. 279−87.
  73. A.M., Atmar R.L., Graham D.Y., Estes M.K. // Norwalk virus infection and disease is associated with ABO histo-blood group type. J Infect Dis — 2002. -V. 185 (9)-P. 1335−7.
  74. A.M., Atmar R.L., Marcus D.M., Estes M.K. // Norwalk virus-like particle hemagglutination by binding to h histo-blood group antigens. J Virol -2003.-V. 77 (1)-P. 405−15.
  75. Ike A.C., Brockmann S.O., Hartelt K., Marschang R.E., Contzen M., Oehme R.M. // Molecular epidemiology of norovirus in outbreaks of gastroenteritis in southwest Germany from 2001 to 2004. J Clin Microbiol — 2006. — V. 44 (4) -P. 1262−7.
  76. E.T., Widdowson M.A., Beard R.S., Bulens S.N., Mullins J., Monroe S.S., Bresee J., Sassano P., Cramer E.H., Glass R.I. // Norovirus transmission on cruise ship. Emerg Infect Dis — 2005. — V. 11 (1) — P. 154−8.
  77. Jiang X., Matson D.O., Ruiz-Palacios G.M., Hu J., Treanor J., Pickering L.K. // Expression, self-assembly, and antigenicity of a snow mountain agent-like calicivirus capsid protein. J Clin Microbiol — 1995. — V. 33 (6) — P. 1452−5.
  78. X., Wang J., Graham D.Y., Estes M.K. // Detection of Norwalk virus in stool by polymerase chain reaction. J Clin Microbiol — 1992. — V. 30 (10) — P. 2529−34.
  79. X., Wang M., Graham D.Y., Estes M.K. // Expression, self-assembly, and antigenicity of the Norwalk virus capsid protein. J Virol — 1992. — V. 66 (11) -P. 6527−32.
  80. Kanerva M., Maunula L., Lappalainen M., Mannonen L., von Bonsdorff C.H., Anttila V.J. // Prolonged norovirus outbreak in a Finnish tertiary care hospital caused by GII.4−2006b subvariants. J Hosp Infect — 2009. — V. 71 (3) — P. 20 613.
  81. A.Z. // Overview of viral gastroenteritis. Arch Virol Suppl — 1996. -V. 12-P. 7−19.
  82. A.Z., Wyatt R.G., Dolin R., Thornhill T.S., Kalica A.R., Chanock R.M. // Visualization by immune electron microscopy of a 27-nm particle associated with acute infectious nonbacterial gastroenteritis. J Virol — 1972. -V. 10 (5)-P. 1075−81.
  83. J.E., Feldman R., Campbell D.S., Lookabaugh C., Gary G.W. // The frequency of a Norwalk-like pattern of illness in outbreaks of acute gastroenteritis. Am J Public Health — 1982. — V. 72 (12) — P. 1329−32.
  84. Karst S.M., Wobus C.E., Lay M., Davidson J., Virgin H.W.t. // STAT1-dependent innate immunity to a Norwalk-like virus. Science — 2003. — V.299 (5612)-P. 1575−8.
  85. B., Abrok M.P., Deak J. // Sporadic norovirus infections among hospitalized and non-hospitalized 0−3-year-old infants. Scand J Infect Dis -2009.- V. 41 (1)-P. 67−9.
  86. Kim H.Y., Kwak I.S., Hwang I.G., Ko G. // Optimization of methods for detecting norovirus on various fruit. J Virol Methods — 2008. — V. 153 (2) — P. 104−10.
  87. C.D., Bishop R.F. // Molecular detection of human calicivirus in young children hospitalized with acute gastroenteritis in Melbourne, Australia, during 1999. J Clin Microbiol — 2001. — V. 39 (7) — P. 2722−4.
  88. S., Kageyama T., Fukushi S., Hoshino F.B., Shinohara M., Uchida K., Natori K., Takeda N., Katayama K. // Genogroup-specific PCR primers for detection of Norwalk-like viruses. J Virol Methods — 2002. — V. 100 (1−2) — P. 107−14.
  89. E.V., Dolja V.V. // Evolution and taxonomy of positive-strand RNA viruses: implications of comparative analysis of amino acid sequences. Crit Rev Biochem Mol Biol — 1993. — V. 28 (5) — P. 375−430.
  90. M., Duizer E. // Foodborne viruses: an emerging problem. Int J Food Microbiol — 2004. — V. 90 (1) — P. 23−41.
  91. Koopmans M., Vennema H., Heersma H., van Strien E., van Duynhoven Y., Brown D., Reacher M., Lopman B. // Early identification of common-source foodborne virus outbreaks in Europe. Emerg Infect Dis — 2003. — V.9 (9) — P. 1136−42.
  92. Koopmans M., Vinje J., Duizer E., de Wit M., van Duijnhoven Y. // Molecular epidemiology of human enteric caliciviruses in The Netherlands. Novartis Found Symp — 2001. — V.238 — P. 197−214- discussion 214−8.
  93. Koopmans M., von Bonsdorff C.H., Vinje J., de Medici D., Monroe S. // Foodborne viruses. FEMS Microbiol Rev — 2002. — V. 26 (2) — P. 187−205.
  94. J., Ayers M., Nishikawa J., Mclntyre L., Petric M., Tellier R. // Amplification by long RT-PCR of near full-length norovirus genomes. J Virol Methods — 2008. — V. 149 (2) — P. 226−30.
  95. Kuhn R.J., Tada H., Ypma-Wong M.F., Semler B.L., Wimmer E. // Mutational analysis of the genome-linked protein VPg of poliovirus. J Virol — 1988. — V. 62 (11)-P. 4207−15.
  96. P.R., Caul E.O., Ashley C.R., Clarke I.N. // Sequence and genome organization of a human small round-structured (Norwalk-like) virus. Science -1993. — V. 259 (5094) — P. 516−9.
  97. G.T., Putallaz T., Joosten H., Marugg J.D. // Reverse transcription-PCR analysis of bottled and natural mineral waters for the presence of noroviruses. Appl Environ Microbiol — 2003. — V.69 (11) — P. 6541−9.
  98. Le Guyader F.S., Mittelholzer C., Haugarreau L., Hedlund K.O., Alsterlund R., Pommepuy M., Svensson L. // Detection of noroviruses in raspberries associated with a gastroenteritis outbreak. Int J Food Microbiol — 2004. — V. 97 (2) — P. 179−86.
  99. Le Pendu J., Ruvoen-Clouet N., Kindberg E., Svensson L. // Mendelian resistance to human norovirus infections. Semin Immunol — 2006. — V. 18 (6) -P. 375−86.
  100. LeBaron C.W., Furutan N.P., Lew J.F., Allen J.R., Gouvea V., Moe C., Monroe S.S. // Viral agents of gastroenteritis. Public health importance and outbreak management. MMWR Recomm Rep — 1990. — V. 39 (RR-5) — P. 1−24.
  101. D. // Norwalk agent and other small-round structured viruses in the U.K. -J Infect -1991. V. 23 (2) — P. 220−2.
  102. Lindesmith L., Moe C., Marionneau S., Ruvoen N., Jiang X., Lindblad L., Stewart P., LePendu J., Baric R. // Human susceptibility and resistance to Norwalk virus infection. Nat Med — 2003. — V. 9 (5) — P. 548−53.
  103. Liu B.L., Lambden P.R., Gunther H., Otto P., Elschner M., Clarke I.N. // Molecular characterization of a bovine enteric calicivirus: relationship to the Norwalk-like viruses. J Virol — 1999. — V. 73 (1) — P. 819−25.
  104. V.P., Jutila K.L., Graff J.W., Hardy M.E. // Epitopes in the P2 domain of norovirus VP1 recognized by monoclonal antibodies that block cell interactions. J Gen Virol — 2005. — V. 86 (Pt 10) — P. 2799−806.
  105. Lodder W.J., Vinje J., van De Heide R., de Roda Husman A.M., Leenen E.J., Koopmans M.P. // Molecular detection of Norwalk-like caliciviruses in sewage. Appl Environ Microbiol — 1999. — V. 65 (12) — P. 5624−7.
  106. Logan C., O’Leary J.J., O’Sullivan N. // Real-time reverse transcription PCR detection of norovirus, sapo virus and astro virus as causative agents of acute viral gastroenteritis. J Virol Methods — 2007. — V. 146 (1−2) — P. 36−44.
  107. B.A., Adalc G.K., Reacher M.H., Brown D.W. // Two epidemiologic patterns of norovirus outbreaks: surveillance in England and wales, 1992−2000. -Emerg Infect Dis 2003. — V. 9 (1) — P. 71−7.
  108. Lopman B.A., Reacher M.H., Van Duijnhoven Y., Hanon F.X., Brown D., Koopmans M. // Viral gastroenteritis outbreaks in Europe, 1995−2000. Emerg Infect Dis — 2003. — V. 9 (1) — P. 90−6.
  109. Machin A., Martin Alonso J.M., Parra F. // Identification of the amino acid residue involved in rabbit hemorrhagic disease virus VPg uridylylation. J Biol Chem — 2001. — V. 276 (30) — P. 27 787−92.
  110. H.C., Zafiropoulou A., Mavrikou M., Bozavoutoglou E., Liapi G., Foustoukou M., Kafetzis D.A. // Acute diarrhoea in children treated in an outpatient setting in Athens, Greece. J Infect — 2001. — V. 43 (2) — P. 122−7.
  111. J. // Identification and classification of viruses that have not been propagated. Arch Virol — 1995. — V. 140 (8) — P. 1515−20.
  112. Mao Y., Zhu C., Boedeker E.C. // Foodborne enteric infections. Curr Opin Gastroenterol — 2003. — V. 19 (1) — P. 11−22.
  113. Marcos L.A., DuPont H.L. // Advances in defining etiology and new therapeutic approaches in acute diarrhea. J Infect — 2007. — V. 55 (5) — P. 385−93.
  114. Marie-Cardine A., Gourlain K., Mouterde O., Castignolles N., Hellot M.F., Mallet E., Buffet-Janvresse C. // Epidemiology of acute viral gastroenteritis in children hospitalized in Rouen, France. Clin Infect Dis — 2002. — V. 34 (9) — P. 1170−8.
  115. J.A., Dimitriadis A., Wright P.J. // Molecular and epidemiological features of norovirus-associated gastroenteritis outbreaks in Victoria, Australia in 2001. J Med Virol — 2005. — V. 75 (2) — P. 321−31.
  116. Martin Alonso J.M., Casais R., Boga J.A., Parra F. // Processing of rabbit hemorrhagic disease virus polyprotein. J Virol — 1996. — V. 70 (2) — P. 1261−5.
  117. Marvin H.J.P., Kleter, G.A., Prandini, A., Dekkers, S., Bolton D.J. // Early identification systems for emerging foodborne hazards. Food and Chemical Toxicology — 2009. — V. 47 (5) — P. 915−926.
  118. Maunula L., Von Bonsdorff C.H. // Norovirus genotypes causing gastroenteritis outbreaks in Finland 1998−2002. J Clin Virol — 2005. — V. 34 (3) — P. 186−94.
  119. Mead P. S., Slutsker L., Dietz V., McCaig L.F., Bresee J.S., Shapiro C., Griffin P.M., Tauxe R.V. // Food-related illness and death in the United States. Emerg Infect Dis — 1999. — V. 5 (5) — P. 607−25.
  120. J.C., Schreiber D.S., Trier J.S., Blacklow N.R. // Abnormal gastric motor function in viral gastroenteritis. Ann Intern Med — 1980. — V. 92 (3) — P. 370−3.
  121. N., Belak S., Hedlund K.O., Blomberg J. // Experience from the development of a diagnostic single tube real-time PCR for human caliciviruses, Norovirus genogroups I and II. J Virol Methods — 2006. — V. 132 (1−2) — P. 6976.
  122. Moreno-Espinosa S., Farkas T., Jiang X. // Human caliciviruses and pediatric gastroenteritis. Semin Pediatr Infect Dis — 2004. — V. 15 (4) — P. 237−45.
  123. A.W., Ando T., Koopmans M., Bresee J.S., Noel J., Glass R.I. // Cold weather seasonality of gastroenteritis associated with Norwalk-like viruses. J Infect Dis — 2000. — V. 181 Suppl 2- P. S284−7.
  124. E.K. // Global control of rotavirus disease. Adv Exp Med Biol -2004.- V. 549-P. 161−8.
  125. C.J., Lopez A.D. // Mortality by cause for eight regions of the world: Global Burden of Disease Study. Lancet — 1997. — V. 349 (9061) — P. 1269−76.
  126. A., Goodfellow I.G., Belsham G.J. // Factors required for the Uridylylation of the foot-and-mouth disease virus 3B1, 3B2, and 3B3 peptides by the RNA-dependent RNA polymerase (3Dpol) in vitro. J Virol — 2005. — V. 79 (12) — P. 7698−706.
  127. J.D. // Nucleotide sequence of a region of the feline calicivirus genome which encodes picornavirus-like RNA-dependent RNA polymerase, cysteine protease and 2C polypeptides. Virus Res — 1990. — V.17 (3) — P. 145−60.
  128. J.D., Mengeling W.L. // Further characterization of the virus-specific RNAs in feline calicivirus infected cells. Virus Res — 1988. — V. 11 (1) — P. 5972.
  129. J.S., Fankhauser R.L., Ando T., Monroe S.S., Glass R.I. // Identification of a distinct common strain of «Norwalk-like viruses» having a global distribution. J Infect Dis — 1999. — V. 179 (6) — P. 1334−44.
  130. M., Ogawa T., Kaiho I., Shinozaki K. // Genetic analysis of noroviruses in Chiba Prefecture, Japan, between 1999 and 2004. J Clin Microbiol — 2005. -V. 43 (9)-P. 4391−401.
  131. S.L., Asobayire E., Dastjerdi A.M., Bridger J.C. // Genomic characterization of the unclassified bovine enteric virus Newbury agent-1 (Newbury 1) endorses a new genus in the family Caliciviridae. Virology — 2006. — V. 350 (1)-P. 240−50.
  132. X.L., Honma S., Nakata S., Vesikari T. // Human caliciviruses in acute gastroenteritis of young children in the community. J Infect Dis — 2000. — V. 181 Suppl 2- P. S288−94.
  133. X.L., Joensuu J., Vesikari T. // Human calicivirus-associated sporadic gastroenteritis in Finnish children less than two years of age followed prospectively during a rotavirus vaccine trial. Pediatr Infect Dis J — 1999. — V. 18 (5)-P. 420−6.
  134. Pang X.L., Preiksaitis J.K., Lee B. // Multiplex real time RT-PCR for the detection and quantitation of norovirus genogroups I and II in patients with acute gastroenteritis. J Clin Virol — 2005. — V. 33 (2) — P. 168−71.
  135. D.C., Dove W., Cunliffe N.A., Nakagomi O., Combe P., Grosjean P., Hart C.A. // Norovirus infection in children with acute gastroenteritis, Madagascar, 2004−2005. Emerg Infect Dis — 2007. — V. 13 (6) — P. 908−11.
  136. U.D., Hummelman E.G., Bresee J.S., Miller M.A., Glass R.I. // Global illness and deaths caused by rotavirus disease in children. Emerg Infect Dis -2003. — V. 9 (5) — P. 565−72.
  137. Park S.I., Jeong C., Kim H.H., Park S.H., Park S.J., Hyun B.H., Yang D.K., Kim S.K., Kang M.I., Cho K.O. // Molecular epidemiology of bovine noroviruses in South Korea. Vet Microbiol — 2007. — V. 124 (1−2) — P. 125−33.
  138. Park Y., Cho Y.H., Jee Y., Ko G. // Immunomagnetic separation combined with real-time reverse transcriptase PCR assays for detection of norovirus in contaminated food. Appl Environ Microbiol — 2008. — V. 74 (13) — P. 4226−30.
  139. S., Cubitt D., Jiang J.X., Estes M. // Efficacy of a recombinant Norwalk virus protein enzyme immunoassay for the diagnosis of infections with Norwalk virus and other human «candidate» caliciviruses. J Med Virol — 1993. — V. 41 (3)-P. 179−84.
  140. Paul A.V., Peters J., Mugavero J., Yin J., van Boom J.H., Wimmer E. // Biochemical and genetic studies of the VPg uridylylation reaction catalyzed by the RNA polymerase of poliovirus. J Virol — 2003. — V. 77 (2) — P. 891−904.
  141. T., Wimmer E. // Polypeptide p41 of a Norwalk-like virus is a nucleic acid-independent nucleoside triphosphatase. J Virol — 2001. — V. 75 (4) — P. 1611−9.
  142. T.G., Kaneshi K., Ueda Y., Nakaya S., Nishimura S., Yamamoto A., Sugita K., Takanashi S., Okitsu S., Ushijima H. // Genetic heterogeneity, evolution, and recombination in noroviruses. J Med Virol — 2007. — V. 79 (9) -P. 1388−400.
  143. T.G., Trinh Q.D., Yagyu F., Sugita K., Okitsu S., Muller W.E., Ushijima H. // Outbreak of sapovirus infection among infants and children with acute gastroenteritis in Osaka City, Japan during 2004−2005. J Med Virol — 2006. -V. 78 (6) — P. 839−46.
  144. T.G., Yagyu F., Kozlov V., Kozlov A., Okitsu S., Muller W.E., Ushijima H. // Viral gastroenteritis and genetic characterization of recombinant norovirus circulating in Eastern Russia. Clin Lab — 2006. — V. 52 (5−6) — P. 247−53.
  145. B.V., Hardy M.E., Dokland T., Bella J., Rossmann M.G., Estes M.K. // X-ray crystallographic structure of the Norwalk virus capsid. Science — 1999. -V. 286 (5438)-P. 287−90.
  146. B.V., Rothnagel R., Jiang X., Estes M.K. // Three-dimensional structure of baculovirus-expressed Norwalk virus capsids. J Virol — 1994. — V. 68 (8) -P. 5117−25.
  147. C.R. // The universal system of virus taxonomy of the International Committee on Virus Taxonomy (ICTV), including new proposals ratified since publication of the Sixth ICTV Report in 1995. Arch Virol — 1998. — V. 143 (1) -P. 203−10.
  148. H., Nilsson M., Abreu E.R., Hedlund K.O., Johansen K., Zaori G., Svensson L. // Viral diarrhea in children in Beijing, China. J Med Virol — 1999.- V. 57 (4) P. 390−6.
  149. G., Biro H., Szucs G. // Enteric caliciviruses in domestic pigs in Hungary.- Arch Virol 2007. — V. 152 (3) — P. 611−4.
  150. G., Pankovics P., Szucs G. // Genetic drift of norovirus genotype GII-4 in seven consecutive epidemic seasons in Hungary. J Clin Virol — 2008. — V. 42 (2)-P. 135−40.
  151. G., Vennema H., Koopmans M., Szucs G. // Epidemic spread of recombinant noroviruses with four capsid types in Hungary. J Clin Virol -2006.-V. 35(1)-P. 84−8.
  152. Rockx B., De Wit M., Vennema H., Vinje J., De Bruin E., Van Duynhoven Y., Koopmans M. // Natural history of human calicivirus infection: a prospective cohort study. Clin Infect Dis — 2002. — V. 35 (3) — P. 246−53.
  153. J., Munch J., Rethwilm A. // Evidence of recombination in the norovirus capsid gene. J Virol — 2005. — V. 79 (8) — P. 4977−90.
  154. J., Robel I., Jager K., Scheffler U., Rudolph W. // Protein-primed and de novo initiation of RNA synthesis by norovirus 3Dpol. J Virol — 2006. — V. 80 (14) — P. 7060−9.
  155. K.J., Parmar S., Mururi D., Wreghitt T.G., Jalal H., Zhang H., Curran M.D. // An internally controlled, one-step, real-time RT-PCR assay for norovirus detection and genogrouping. J Clin Virol — 2007. — V. 39 (4) — P. 318−21.
  156. Roman E., Negredo A., Dalton R.M., Wilhelmi I., Sanchez-Fauquier A. // Molecular detection of human calicivirus among Spanish children with acute gastroenteritis. J Clin Microbiol — 2002. — V. 40 (10) — P. 3857−9.
  157. Sakai Y., Nakata S., Honma S., Tatsumi M., Numata-Kinoshita K., Chiba S. // Clinical severity of Norwalk virus and Sapporo virus gastroenteritis in children in Hokkaido, Japan. Pediatr Infect Dis J — 2001. — V. 20 (9) — P. 849−53.
  158. Sanchez-Fauquier A., Wilhelmi I., Roman E., Colomina J., Montero V., Negredo A. // Surveillance of human calicivirus in Spain. Emerg Infect Dis -2005.-V. 11 (8)-P. 1327−9.
  159. S.A., Oshiro R.K. // Public health concerns about caliciviruses as waterborne contaminants. J Infect Dis — 2000. — V. 181 Suppl 2- P. S374−80.
  160. D.S., Blacklow N.R., Trier J.S. // The mucosal lesion of the proximal small intestine in acute infectious nonbacterial gastroenteritis. N Engl J Med1973.- V. 288 (25)-P. 1318−23.
  161. D.S., Blacklow N.R., Trier J.S. // The small intestinal lesion induced by Hawaii agent acute infectious nonbacterial gastroenteritis. J Infect Dis1974.- V. 129 (6)-P. 705−8.
  162. E.L., Gunesekere I.C., Marshall J.A., Wright P.J. // Variation in ORF3 of genogroup 2 Norwalk-like viruses. Arch Virol — 1999. — V. 144(5) — P. 1007−14.
  163. I.J., Appleton H. // Foodborne viruses and fresh produce. J Appl Microbiol — 2001. — V. 91 (5) — P. 759−73.
  164. G.A., Sobsey M.D. // Reduction of Norwalk virus, poliovirus 1, and bacteriophage MS2 by ozone disinfection of water. Appl Environ Microbiol -2003.- V. 69 (7)-P. 3975−8.
  165. Siebenga J.J., Vennema H., Renckens B., de Bruin E., van der Veer B., Siezen R.J., Koopmans M. // Epochal evolution of GGII.4 norovirus capsid proteins from 1995 to 2006. J Virol — 2007. — V. 81 (18) — P. 9932−41.
  166. M.I., Hellard M.E., Wolfe R., Mitakakis T.Z., Leder K., Fairley C.K. // Pathogens causing community gastroenteritis in Australia. J Gastroenterol Hepatol — 2005. — V. 20 (11) — P. 1685−90.
  167. A.D., Ivanoff B. // Rotavirus strains circulating in Africa during 19 961 999: emergence of G9 strains and P6. strains. Vaccine — 2003. — V. 21 (5−6) -P. 361−7.
  168. M., Nagaoka H., Kakishima Y., Ohshita T., Nakamura S., Nakajima S. // Detection of Norwalk-like virus genes in the caecum contents of pigs. Arch Virol — 1998.-V. 143 (6)-P. 1215−21.
  169. M., Nakajima K., Nakajima S. // Outbreaks of Norwalk-like virus-associated gastroenteritis traced to shellfish: coexistence of two genotypes in one specimen. Epidemiol Infect — 1996. — V. 116 (3) — P. 339−46.
  170. C.O. // Plant-based vaccines against diarrheal diseases. Trans Am Clin Climatol Assoc — 2007. — V. 118 — P. 79−87.
  171. Tan M., Hegde R.S., Jiang X. // The P domain of norovirus capsid protein forms dimer and binds to histo-blood group antigen receptors. J Virol — 2004. — V. 78 (12) — P. 6233−42.
  172. Tan M., Huang P., Meller J., Zhong W., Farkas T., Jiang X. // Mutations within the P2 domain of norovirus capsid affect binding to human histo-blood group antigens: evidence for a binding pocket. J Virol — 2003. — V. 77 (23) — P. 12 562−71.
  173. N., Sanderson I.R. // Diarrhoea in children: an interface between developing and developed countries. Lancet — 2004. — V. 363(9409) — P. 641−53.
  174. Thornton A.C., Jennings-Conklin K.S., McCormick M.I. // Noroviruses: agents in outbreaks of acute gastroenteritis. Disaster Manag Response — 2004. — V. 2 (1)-P. 4−9.
  175. Torner N., Dominguez A., Ruiz L., Martinez A., Bartolome R., Buesa J., Ferrer M.D., Catalan Viral Gastroenteritis Study G. // Acute gastroenteritis outbreaks in
  176. Catalonia, Spain: norovirus versus Salmonella. Scand J Gastroenterol — 2008. -V. 43 (5) — P. 567−73.
  177. Tsang O.T., Wong A.T., Chow C.B., Yung R.W., Lim W.W., Liu S.H. // Clinical characteristics of nosocomial norovirus outbreaks in Hong Kong. J Hosp Infect — 2008. — V. 69 (2) — P. 135−40.
  178. Tseng F.C., Leon J.S., MacCormack J.N., Maillard J.M., Moe C.L. // Molecular epidemiology of norovirus gastroenteritis outbreaks in North Carolina, United States: 1995−2000. J Med Virol — 2007. — V. 79 (1) — P. 84−91.
  179. R.M., Widdowson M.A., Sulka A.C., Mead P. S., Glass R.I. // Reevaluation of epidemiological criteria for identifying outbreaks of acute gastroenteritis due to norovirus: United States, 1998−2000. Clin Infect Dis -2006. — V. 42 (7) — P. 964−9.
  180. J., Altena S.A., Koopmans M.P. // The incidence and genetic variability of small round-structured viruses in outbreaks of gastroenteritis in The Netherlands. J Infect Dis — 1997. — V. 176 (5) — P. 1374−8.
  181. J., Green J., Lewis D.C., Gallimore C.I., Brown D.W., Koopmans M.P. // Genetic polymorphism across regions of the three open reading frames of «Norwalk-like viruses». Arch Virol — 2000. — V. 145 (2) — P. 223−41.
  182. J., Hamidjaja R.A., Sobsey M.D. // Development and application of a capsid VP1 (region D) based reverse transcription PCR assay for genotyping of genogroup I and II noroviruses. J Virol Methods — 2004. — V. 116 (2) — P. 10 917.
  183. J., Koopmans M.P. // Molecular detection and epidemiology of small round-structured viruses in outbreaks of gastroenteritis in the Netherlands. J Infect Dis — 1996. — V. 174 (3) — P. 610−5.
  184. J., Koopmans M.P. // Simultaneous detection and genotyping of «Norwalk-like viruses» by oligonucleotide array in a reverse line blot hybridization format. J Clin Microbiol — 2000. — V. 38 (7) — P. 2595−601.
  185. Wang J., Jiang X., Madore H.P., Gray J., Desselberger U., Ando T., Seto Y., Oishi I., Lew J.F., Green K.Y., et al. // Sequence diversity of small, round-structured viruses in the Norwalk virus group. J Virol — 1994. — V. 68 (9) — P. 5982−90.
  186. Wang Q.H., Han M.G., Cheetham S., Souza M., Funk J.A., Saif L.J. // Porcine noroviruses related to human noroviruses. Emerg Infect Dis — 2005. — V. 11 (12)-P. 1874−81.
  187. A., Coughlan S., Hall W.W. // Characterisation of a novel recombination event in the norovirus polymerase gene. Virology — 2007. — V. 363 (1) — P. 11−4.
  188. L.J., Ball J.M., Hardy M.E., Tanaka T.N., Kitamoto N., Estes M.K. // Attachment and entry of recombinant Norwalk virus capsids to cultured human and animal cell lines. J Virol — 1996. — V. 70 (10) — P. 6589−97.
  189. White P.A., Hansman G.S., Li A., Dable J., Isaacs M., Ferson M., Mclver C.J., Rawlinson W.D. // Norwalk-like virus 95/96-US strain is a major cause of gastroenteritis outbreaks in Australia. J Med Virol — 2002. — V. 68 (1) — P. 1138.
  190. L., Trier J.S., Blacklow N.R., Schreiber D.S. // Structure of the gastric mucosa in acute infectious bacterial gastroenteritis. Gastroenterology — 1975. -V. 68 (3) — P. 425−30.
  191. Wilhelmi I., Roman E., Sanchez-Fauquier A. // Viruses causing gastroenteritis. -Clin Microbiol Infect 2003. — V. 9 (4) — P. 247−62.
  192. Wolf S., Williamson W., Hewitt J., Lin S., Rivera-Aban M., Ball A., Scholes P., Savill M., Greening G.E. // Molecular detection of norovirus in sheep and pigs in New Zealand farms. Vet Microbiol — 2008.
  193. M., Taylor M.B., Booysen H.F., Engelbrecht L., Grabow W.O., Jiang X. // Incidence of human calicivirus and rotavirus infection in patients with gastroenteritis in South Africa. J Med Virol — 1997. — V. 51 (4) — P. 290−6.
  194. G.N., Bridger J.C. // Isolation of small viruses resembling astroviruses and caliciviruses from acute enteritis of calves. J Med Microbiol — 1978. — V. 11 (4)-P. 441−52.
  195. P.J., Gunesekere I.C., Doultree J.C., Marshall J.A. // Small round-structured (Norwalk-like) viruses and classical human caliciviruses in southeastern Australia, 1980−1996. J Med Virol — 1998. — V. 55 (4) — P. 312−20.
  196. Wu F.T., Oka T., Katayama K., Wu H.S., Donald Jiang D.S., Miyamura T., Takeda N., Hansman G.S. // Genetic diversity of noroviruses in Taiwan between November 2004 and March 2005. Arch Virol — 2006. — V. 151 (7) — P. 1319−27.
  197. Xi J.N., Graham D.Y., Wang K.N., Estes M.K. // Norwalk virus genome cloning and characterization. Science — 1990. — V. 250 (4987) — P. 1580−3.
  198. Xu J., Yang Y., Sun J., Ding Y. // Molecular epidemiology of norovirus infection among children with acute gastroenteritis in Shanghai, China, 2001−2005.-J Med Virol-2009. V. 81 (10)-P. 1826−30.
  199. J. // Hyperemesis hiemis or thewinter vomiting disease. Arch Pediatr — 1929.-V. 46-P. 391−395.
  200. D.P., Ando T., Fankhauser R.L., Beard R.S., Glass R.I., Monroe S.S. // Norovirus classification and proposed strain nomenclature. Virology — 2006. -V. 346 (2)-P. 312−23.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!