Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Экофизиологические и молекулярно-генетические свойства микроскопических грибов представителей группы Aspergillus versicolor, выделенных из разных местообитаний

Диссертация: Экофизиологические и молекулярно-генетические свойства микроскопических грибов представителей группы Aspergillus versicolor, выделенных из разных местообитаний
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Установлены отличия сапротрофных и клинических штаммов A. sydowii, которые выражались в более низких скоростях роста у клинических штаммов при исследованной температуре и влажности, но более высоких уровнях спорообразования, чем у сапротрофных штаммов. При этом по молекулярно-генетическим свойствам (ITS, D1/D2 28S рДНК) сапротрофные и клинические штаммы образуют смешанные группы. Международные… Читать ещё >

Содержание

  • ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • ГЛАВА 1. Свойства и распространение микроскопических грибов группы Aspergillus versicolor
    • 1. 1. Свойства и распространение вида Aspergillus versicolor (Vuill.) Tirab. 1908 .И
    • 1. 2. Свойства и распространение вида Aspergillus sydowii (Bain, et Sart.) Thorn et Church
  • ГЛАВА 2. Микроскопические мицелиальные грибы как возбудители заболеваний человека
    • 2. 1. Общие представления
    • 2. 2. Свойства оппортунистических микроскопических грибов-возбудителей заболеваний человека и животных, на примере Aspergillus fumigatus Fresen
    • 2. 3. Особенности организма человека как среды обитания оппортунистических грибов
    • 2. 4. Свойства сапротрофных и клинических штаммов одного вида микроскопических грибов, на примере видов рода Aspergillus
  • ГЛАВА 3. Основные направления популяционных исследований почвенных микромицетов
  • ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
  • ГЛАВА 4. Объекты и методы исследования
    • 4. 1. Объекты исследования
    • 4. 2. Методы исследования
  • РЕЗУЛЬТАТЫ
  • ГЛАВА 5. Исследования штаммов вида Aspergillus versicolor
    • 5. 1. Исследование культурально-морфологических свойств
    • 5. 2. Экологические условия роста
    • 5. 3. Исследование спорообразования
    • 5. 4. Изучение молекулярно-генетических свойств
  • ГЛАВА 6. Исследования штаммов вида Aspergillus sydow
    • 6. 1. Исследование культурально-морфологических свойств
    • 6. 2. Экологические условия роста
    • 6. 3. Сопоставление экологических свойств сапротрофных и клинических штаммов
    • 6. 4. Исследование спорообразования
    • 6. 5. Изучение молекулярно-генетических свойств
  • ГЛАВА 7. Сравнение свойств видов Aspergillus versicolor и Aspergillus sydowi
  • ОБСУЖДЕНИЕ
  • ВЫВОДЫ

Экофизиологические и молекулярно-генетические свойства микроскопических грибов представителей группы Aspergillus versicolor, выделенных из разных местообитаний (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Микроскопические грибы рода Aspergillus Mich, широко распространены в наземных экосистемах, но преимущественно являются типичными обитателями южных почв. Однако в результате антропогенных изменений современной биосферы грибы рода Aspergillus приобретают более широкое распространение в северных и умеренных широтах, в первую очередь, в городских экосистемах, рекреационных территориях, агроценозах, во внутренней среде помещений (Марфенина, 2005). В последние десятилетия установлено, что многим видам рода Aspergillus принадлежит важная роль в заболеваниях человека, т.к. они способны образовывать микотоксины, могут быть аллергенами и возбудителями микозов.

Представители рода Aspergillus не являются облигатными патогенами человека и животных, а проявляют свойства оппортунистов, т. е. могут развиваться во внешней среде как сапротрофы, но одновременно обладают способностью вызывать вторичные микозы.

Поэтому для прогноза развития и предотвращения негативных эффектов от распространения грибов рода Aspergillus в окружающей среде важно знать особенности их роста и репродукции в разных экологических условиях. Однако специфика прохождения их жизненных циклов в разных средах обитания, особенно в почвах, условия спорообразования, исследованы явно недостаточно и для небольшого количества видов (Иванушкина, 1984; Попова, 1990).

Безусловный интерес представляют и сведения об объеме варьирования свойств отдельных штаммов видов микроскопических грибов, известных как опасные для здоровья человека, выделенных из различных местообитаний.

Среди практически неисследованных — широко распространенные в окружающей среде и известные как экотоксикологически значимые — виды группы Aspergillus versicolor (Raper, Fennell, 1965) по современной классификации (Samson, 1994): род Aspergillus, подрод Nidulantes, секция Versicolors — A. versicolor (Vuill.) Tirab. и A. sydowii (Bain, et Sart.) Thorn et Church.

Цель работы

Изучение и сравнительный анализ экофизиологических и молекулярно-генетических свойств микроскопических грибов представителей группы Aspergillus versicolor, выделенных из разных местообитаний.

Задачи исследования

1. Определение влияния температуры на рост и спорообразование штаммов видов A. versicolor, A. sydowii, выделенных из разных природных местообитаний и клинического материала.

2. Выяснение влияния влажности среды на рост и спорообразование штаммов видов A. versicolor, A. sydowii.

4. Определение молекулярно-генетических свойств и их отличий у штаммов видов A. versicolor, A. sydowii, выделенных из разных природных местообитаний и клинического материала.

Научная новизна

Описаны экологические условия роста и спороношения двух широко распространенных и экотоксикологически значимых микромицетов А. versicolor, A. sydowii. Впервые показаны отличия этих двух близких видов по экологическим свойствам — температурным оптимумам и интервалам роста, выявлено, что вид A. sydowii является более термотолерантным. Впервые, на примере A. sydowii установлены отличия сапротрофных и клинических штаммов грибов рода Aspergillus по экофизиологическим свойствам. Исследованные клинические штаммы были способны активно расти в более широком интервале температур при пониженной влажности по сравнению с сапротрофными.

Получены данные о молекулярно-генетических свойствах (последовательности участков ITS1−5.8S-ITS2, D1/D2 28S рДНК) штаммов видов A. versicolor и A. sydowii, выделенных из разных местообитаний. Выявлен уровень внутривидовой и межвидовой молекулярно-генетической гетерогенности исследованных видов.

Практическая значимость

Получены новые экологические и молекулярно-генетические данные, важные для идентификации видов A. versicolor и A. sydowii.

Международные базы генетических данных GenBank/EMBL/DDJB пополнены полученными последовательностями локусов рДНК для исследованных микроскопических грибов. Для вида A. versicolor полученные данные составили 40% всех имеющихся в международных банках генетических данных (GenBank) последовательностей для участков ITS1−5.8S-ITS2 этого вида и 50% на участке D1/D2 28S рДНКдля A. sydowii 30% и 40% соответственно.

Показано, что вид A. sydowii обладает большим патогенным потенциалом (способность роста при 37°С), чем A. versicolor, что необходимо учитывать при оценке присутствия опасных микроскопических грибов в окружающей среде. Результаты работы используются в курсе лекции «Почвенная микология».

Благодарности

Автор выражает искреннюю признательность научному руководителю д.б.н. О. Е. Марфениной за неоценимую помощь и поддержку на всех этапах работы, в.н.с. ГНЦ РАМН к.б.н. О. В. Василенко, который принимал участие в руководстве при выполнении молекулярно-генетических анализов, за полученные знания, практические навыки и ценные научные консультации в этой области, к.б.н. А. Е. Ивановой, д.б.н. И. И. Судницыну, д.б.н. И. Ю. Чернову, к.б.н. A.M. Юркову, к.б.н. М. В. Горленко, а так же всему коллективу кафедры биологии почв МГУ за поддержку и ценные советы.

Автор выражает благодарность н.с. кафедры микологии и альгологии МГУ к.б.н. А. В. Александровой, с.н.с. ВКМ РАН к.б.н. Н. Е. Иванушкиной, с.н.с. МНПЦБТ к.б.н. А. Б. Кулько, сотруднику РКПГ к.б.н Т. С. Богомоловой за предоставление штаммов, использованных в работе.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

выводы

1. Показано, что близкие по культурально-морфологическим свойствам виды A. versicolor и A. sydowii отличаются по экофизиологическим свойствам. Штаммы A. sydowii имеют наибольшие скорости роста при более высокой температуре (30°С), чем A. versicolor (25°С) и способны к активному росту при 37 °C, т. е. обладают большим патогенным потенциалом.

2. У исследованных штаммов A. versicolor и A. sydowii не установлено температурной адаптации к условиям местообитания. Для штаммов одного вида выделенных в разных климатических зонах (арктическая — степная зона для A. versicolorАнтарктика — субтропики, организм человека для A. sydowii) показан один температурный оптимум роста.

3. В изученном интервале активности воды (0,80−0,99aw) показатели роста сапротрофных штаммов A. versicolor коррелировали с условиями влажности местообитания штаммов. Штаммы, выделенные из более влажных местообитаний имели оптимумы роста при более высокой влажности по сравнению со штаммами из южных и засушливых почв.

4. По молекулярно-генетическим свойствам (участки ITS рДНК) штаммы А. versicolor, выделенные из определенного типа местообитаний (разнообразных современных почв, погребенных почв возрастом несколько тысяч лет, засоленных местообитаний) были сходны между собой.

5. Установлены отличия сапротрофных и клинических штаммов A. sydowii, которые выражались в более низких скоростях роста у клинических штаммов при исследованной температуре и влажности, но более высоких уровнях спорообразования, чем у сапротрофных штаммов. При этом по молекулярно-генетическим свойствам (ITS, D1/D2 28S рДНК) сапротрофные и клинические штаммы образуют смешанные группы.

6. Подтверждено, что по молекулярно-генетическим свойствам (последовательностям участков D1/D2 28S рДНК) вид A. versicolor представляет гомогенную группу, в то время как вид A. sydowiiгетерогенен. Исследованные штаммы A. sydowii по данному участку разделяются на две клады.

Показать весь текст

Список литературы

  1. С.С., Белякова JT.A. Мицелиальные грибы из толщи ледника центральной Антарктики // Известия АН СССР. сер. биологическая. 1982. № 3. С. 432−436.
  2. А.Б. Микромицеты как источник аллергенов в жилых помещениях г. Москвы. Автореф. дис. к.б.н. М., 2005. 24с.
  3. Р.А., Климко Н. Н., Васильева Н. В. Диагностика микозов. Санкт-Петербург: Издательский дом СПбМАПО, 2004.186с.
  4. К.Б., Иванова А. Е., Блажеевская Ю. В., Жданова Н. Н., Белозеркая Т.А, Резистенстность микроскопических грибов к окислительному стрессу //Доклады АН. 2003. Т. 392. № 1. С. 119−122.
  5. Е.Н. Сравнительно-экологическое исследование микромицетов из почв отдаленных географических районов. Дисс. к.б.н. М. 1983.158с.
  6. В.И., Коваль Э. З. Аспергиллы. Киев: Наукова думка, 1988. 204с.
  7. Т.С., Васильева Н. В., Горшкова Г. И. Микобиота некоторых жилых помещений в г. Санкт-Петербурге и Ленинградской области // Проблемы медицинской микологии. 1999. № 3. С. 41−43.
  8. Т.Н., Тастанбекова Л. К. Частота выделения и соотношение Aspergillus species при микозах лор-органов // Проблемы медицинской микологии. 2004. Т. 6. № 3 с. 14−16.
  9. С.Н. Почвы урболандшафтов г. Ростов-на-Дону, их экологическое состояние и оценка загрязнения. Автореф. дис.. к.б.н. Ростов-на-Дону, 2002. 25с.
  10. Ю.Т. Популяционная биология фитопатогенных грибов. М.: ИД «Муравей», 1998. 384с.
  11. Н.П. Краткий микологический словарь. Санкт-Петербург: MEDEM, 2004.174с.
  12. Н.П. Токсигенные грибы в патологии человека // Проблемы медицинской микологии. 2002. Т. 4. № 4. С. 3−7.
  13. Н.Н., Васильевская А. И. Меланинсодержащие грибы в экстремальных условиях. Киев: Наукова думка, 1988.196с.
  14. Н.Е. Влияние температуры и водного потенциала на рост и развитие почвенных грибов. Дисс. к.б.н. М., 1984. 218с.
  15. А.Г., Марфенина О. Е., Винокурова Н. Г., Желифонова В. П., Аданин В. М. Микотоксины микроскопических грибов рода Penicillium, выделенных из почв естественных и антропогенно нарушенных экосистем // Микробиология. 1997. Т. 66. № 2. С. 206−210.
  16. Л.А., Сизова Т. П. Значение температурного фактора для некоторых почвенных грибов // Вестник МГУ. сер. биология. 1978. № 3. С. 31−34.
  17. А.В. Грибы в круговороте азота в почвах. Дисс. .д.б.н. М., 2003. 289с.
  18. А.Н. Грибы рода Botrytis Micheli (Fungi, Deuteromycota). Биология, экология, микроэволюция. Автореф. дисс. д.б.н. М., 2000. 37с.
  19. Т.Г. Почвенная микология. М.: Изд-во МГУ, 1988. 220с.
  20. Е.Н. Ассоциации почвенных микроорганизмов. М.: Наука, 1975.102с.
  21. Э., Леффлер В. Микология. М.: Мир, 1995. 343с.
  22. А.Ф. Экологические особенности микроорганизмов подземных горных выработок северной фенноскандии. Автореф. дис.. к.б.н. Петрозаводск, 2002. 34с.
  23. А.Ю., Жарикова Н. Е., Сергеев Ю. В., Маликов В. Е. Новые возбудители онихомикоза // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2002. Т. 4. Приложение 1. С. 38−39.
  24. А.Ю., Сергеев Ю. В. Грибковые инфекции. Руководство для врачей. М.: Бином, 2003. 440с.
  25. А.Ю., Сергеев Ю. В. Кандидоз. Природа инфекции, механизмы агрессии и защиты, лабораторная диагностика, клиника, лечение. М: Триада-Х, 2001.472с.
  26. Т.П., Бабьева Е. Н. Экологические и морфологические особенности почвенных микромицетов из разных природных зон // Микология и фитопатология. 1981. Т. 15. № 3. С. 197−199.
  27. Л.В., Светличная В. А., Лебедева Е. В. Микромицеты в музее // Проблемы медицинской микологии. 2002. Т. 4. № 2. С. 71.
  28. .А. Адаптация грибов к условиям существования в Арктике и микофлора тундр // Микология и фитопатология. 1974. Т.8. № 6. С. 465 470.
  29. A.M. Сравнительный анализ структуры дрожжевых сообществ в березняках европейской части России и Западной Сибири. Автореф. дис.. к.б.н. М., 2005.24с.
  30. Abba I.T. Are indoor molds causing new diseases? // J. Allergy Clin. Immunol. 2004. February. P. 221−226.
  31. Abdalla M.H., EI-Tayeb N.M. Spoilage of stored cotton fibre from Sudan Gezira // Mycopathologia. 1981. 75. P. 173−177.
  32. Abdel-Hafez S.I.I., Abdel-Kader M.I.A. Cellulose-decomposing fungi of barley grains in Egypt // Mycopathologia. 1980. N. 70. Vol. 2. P. 77−82.
  33. Abdel-Sater M.A., Eraky S.A. Bulbs mycoflora and their relation with three stored product mites // Mycopathologia. 2001. N. 153. P. 33−39.
  34. Ali-Shtayeh M.S., Arda H.M., Hassouna M., Shaheen S.F. Keratinophilic fungi on sheep hairs from the West Bank of Jordan // Mycopathologia. 1989. N. 106. P. 95−101.
  35. Alker A.P., Smith G. W., Kim K. Characterization of Aspergillus sydowii (Thom et Church), a fungal pathogen of Caribbean sea fan corals // Hydrobiologia. 2001. N. 460. P. 105−111.
  36. Alonso-Monge R., Navarro-Garcia F., Roman E., Eisman В., Nombela C., Pla J. Strategies for the identification of virulence determinants in human pathogenic fungi // Curr. Genet. 2003. 42. P. 301−312.
  37. G. (2005) Secondary metabolites trivial name versicolorin A. The Aspergillus Website. WWW document. URL http://www.aspergillus.man.ac.uk.
  38. Aufauvre-Brown A., Brown J.S., Holden D.W. Comparison of virulence between clinical and environmental isolates of Aspergillus fumigatus II Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 1998.17. P. 778−780.
  39. Autrup J.L., Schmidt J., Seremet T. et al. Determination of exposure of aflotoxins among Danish workers in animal-feed production through the analysis of aflotoxin B1 adducts to serum albumin // Scand. J. Work Environm. Health. 1991. V. 17. P. 436−440.
  40. Barnes S.E., Dola T.P., Bennett J.W., Bhatnagar D. Synthesis of sterigmatocystin on a chemically defined medium by species of Aspergillus and Chaetomium // Mycopathologia. 1994. N. 125. P. 173−178.
  41. Bart-Delabesse E., Humbert J.-F., Delabesse E., Bretagne S. Microsatellite markers for typing Aspergillus fumigatus isolates // J. Clin. Microbiol. 1998. V. 36. N. 9. P. 2413−2418.
  42. Beguin H., Nolard N. Mould biodiversity in homes I. Air and surface analysis of 130 dwellings //Aerobiologia. 1994.10. P. 157−166.
  43. Beguin H., Nolard N. Relationship between mycobiota in wall-to-wall carpet dust and age of carpet //Aerobiologia. 1999.15. P. 299−306.
  44. Benezet H., Knowles C.O. Microbial degradation of thidiazuron and its photoproduct //Arch. Environm. Contain. Toxicol. 1982.11. P. 107−110.
  45. Bhabhra R., Askew D.S. Thermotolerance and virulence of Aspergillus fumigatus: role of the fungal nucleolus // Medical Mycology. 2005. 43. 1. P. S87-S93.
  46. Bhattacharyya D., Basu S., Chattapadhyay J. P., Bose S. K. Biocontrol of Macrophomina root-rot disease of jute by an antagonistic organism, Aspergillus versicolor//Plant and Soil. 1985. 87. P. 435−438.
  47. Bidochka M.J., Menzies F.V., Kamp A.M. Genetic groups of the insect-pathogenic fungus Beauveria bassiana are associated with habitat and thermal growth preferences //Arch. Microbiol. 2002.178. P. 531−537.
  48. Birch M., Denning D.W., Robson F.D. Comparison of extracellular phospholipase activities in clinical and environmental Aspergillus fumigatus isolates // Medical Mycology. 2004. 42. P. 81−86.
  49. Bjurman J., Kristensson J. Volatile production by Aspergillus versicolor as a possible cause of odor in houses affected by fungi I I Mycopathologia. 1992. 118. P. 173−178.
  50. Bouchara J.P., Tronchin G., Larcher G., Chabasse D. The search for virulence determinants in Aspergillus fumigatus // Trends in Mycrobiology. 1995. 3 (8). P. 327- 330.
  51. Brakhage A.A., Liebmann B. Aspergillus fumigatus conidial pigment and cAMP signal transduction: significans for virulence // Medical Mycology. 2005. 43.1. P. S75-S82.
  52. Butler M.J., Day A.W. Fungal melanins: A review // Canadian Journal Mycrobiolgy. 1998. V. 44. P. 1115−1136.
  53. Carlile M. J., Watkinson S.C., Gooday G.W. The Fungi. 2nd Ed. Academic press. San Diego. San Francisco. New York. Boston, 2001.588p.
  54. Casadevall A. Fungal virulence, vertebrate endothermy, and dinosaur extinction: is there a connection? // Fungal Genetics and Biology. 2005. V. 42. P. 98−106.
  55. Casadevall A., Pirofski L.-A. Host-Pathogen interactions: basic concepts of microbial commensalism, colonization, infection, and disease // Infection and Immunity. 2000. V. 68. N. 12. P. 6511−6518.
  56. Casadevall A., Pirofski L.-A. Host-pathogen interactions: redefining the basic concepts of virulence and pathogenicity // Infection and Immunity. 1999. V. 67. N. 8. P. 3703−3713.
  57. Chavant L., Bars J. L., Sancholle M. Metabolisme lipidique chez VAspergillus versicolor (Vuill.) Tiraboschi. Relations avec la biogenese de la sterigmatocystine // Mycopathologia. 1977. V. 60.3. P. 151−155.
  58. Chiu Y.L., Liaw S.J., Wu V.C., Hsueh P.R. Peritonitis caused by Aspergillus sydowii in a patient undergoing continuous ambulatory peritoneal dialysis // J. Infect. 2005. 51(3). P. 159−161.
  59. Ciferri O. Microbial Degradation of paintings // Appl. Environ. Microbiol. 1999. V. 65. N. 3. P. 879−885.
  60. Denning D.W., demons K.V., Hanson L.H., Stevens D.A. Restriction endonuclease analysis of total cellular DNA of Aspergillus fumigatus isolates of geographically and epidemiological^ diverse origin // J. Infect. Dis. 1990. 162 (5). P. 1151−1158.
  61. Dhar A.K., Bose S.K. studies on versicolin, a new antifungal antibiotic from Aspergillus versicolor II. Isolation and purification // Applied Microbiology. 1968. V. 16. N. 5. P. 749−752.
  62. Domsch K.H., Gams W., Anderson T.-H. Compendium of soil fungi. Vol. I. IHW- Verlag reprint, 1993.180p.
  63. Duchaine C., Meriaux A. The importance of combining air sampling and surface analysis when studying problematic houses for mold biodiversity determination //Aerobiologia. 2001.17. P. 121−125.
  64. El-Shanawany A.A., Mostafa M. E., Barakat A. Fungal populations and mycotoxins in silage in Assiut and Sohag governorates in Egypt, with a special reference to characteristic Aspergilli toxins // Mycopathologia. 2005. 159. P. 281−289.
  65. Ezeonu I.M., Noble J.A., Simmons R.B., Price D.L., Crow S.A., Ahearn D.G.
  66. Effect of relative humidity on fungal colonization of fiberglass insulation. // Appl. Environ. Microbiol. 1994a. 60 (6). P. 2149−2151.
  67. Ezeonu I.M., Price D.L., Crow S. A, Ahearn D.G. Effects of extracts of fiberglass insulations on the growth of Aspergillus fumigatus and A. versicolor // Mycopathologia. 1995.132. P. 65−69.
  68. Ezeonu I.M., Price D.L., Simmons R.B., Crow S.A., Ahearn D.G. Fungal production of volatiles during growth on fiberglass //Appl. Environ. Microbiol. 1994b. 60 (11). P. 4172−3.
  69. Fenice M., Selbmann L., Zucconi L., Onofri S. Production of extracellular enzymes by Antarctic fungal strains // Polar Biol. 1997.17. P. 275−280.
  70. Fischer G., Schwalbe R., Miiller Т., Ostrowski R., Dott W. Species-specific production of microbial volatile organic compounds (MVOC) by airborne fungi from a compost facility // Chemosphere. 1999. V. 39. N. 5. P. 795−810.
  71. Freire F.C.O., Kozakiewicz Z., Paterson R.R.M. Mycoflora and mycotoxins in Brazilian black pepper, white pepper and Brazil nuts // Mycopathologia. 2000. 149. P. 13−19.
  72. Fujii K., Kurata H., Odashima S., Hatsuda Y. Tumor induction by a single subcutaneous injection of sterigmatocystin in newborn mice // Cancer research. 1976. 36. P. 1615−1618.
  73. Galimberti, R., Kowalczuk A., Parra I.H., Ramos M.G., Flores V. Cutaneous aspergillosis: a report of six cases // Brit. J. Dermatol. 1998.139. P. 522−526.
  74. Gardes M., Bruns T.D. ITS primers with enhanced specificity for basidiomycetes application to the identification of mycorrhizae and rusts // Mol. Ecol. 1993.2. P.113−118.
  75. Geiser D., Taylor J., Ritchie K., Smith G., Cause of sea fan death in the West Indies // Nature. 1998. 394. P. 137−138.
  76. GenBank/EMBL/DDJB (2006). International Nucleotide Sequence Database Collaboration. Database. URL http://www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/collab/
  77. Ghisalberti E.L., Sivasitamparam K. Antifungal antibiotics produced by Trichoderma spp. // Soil. Biol. Biochem. 1991. 23 (11). P. 1011−1020.
  78. Girardin H., Sarfati J., Traore F., Camet D.J., Derouin F., Latge J. P. molecular epidemiology of nosocomial invasive aspergillosis // J. Clin. Microbiol. 1994. V. 32. N. 3. P. 684−690.
  79. Gopinath S.C.B., Anbu P., Hilda A. Extracellular enzymatic activity profiles in fungi isolated from oil-rich environments // Mycoscience. 2005. 46. P. 119— 126.
  80. Gorny R.L., Reponen Т., Grinshpun S.A., Willeke K. Source strength of fungal spore aerosolization from moldy building material // Atmospheric Environment. 2001. 35. P. 4853^1862.
  81. Gorny R.L., Reponen Т., Willeke K., Schmechel D., Robine E., Boissier M., Grinshpun S.A. Fungal fragments as indoor air biocontaminants // Appl. Environ. Microbiol. 2002. 68. P. 3522−3531.
  82. Gravesen S., Nielsen P.A., Iversen R., Nielsen K.F. Microfungal Contamination of damp buildings-examples of risk constructions and risk materials // Environ. Health. Perspect. 1999.107.3. P. 505−508.
  83. Gu J.D., Mitton D.B., Ford Т.Е., Mitchell R. Microbial degradation of polymeric coatings measured by electrochemical impedance spectroscopy // Biodegradation. 1998. 9. P. 3915.
  84. Hasan H.A. Fungal utilization of organophosphate pesticides and their degradation by Aspergillus flavus and A. sydowii in soil // Folia Microbiol. (Praha). 1999.44 (1). P. 77−84.
  85. Henry Т., Iwen P.C., Hinrichs S.H. Identification of Aspergillus species using1. ternal Transcribed Spacer regions 1 and 2 // J. Clin. Microbiol. 2000. 38 (4). P. 1510−1515.
  86. Hicks J.B., Lu E.T., De Guzman R., Weingart M. Fungal types and concentrations from settled dust in normal residences // J. Occup. Environm. Hygiene. 2005. 2. P. 481−492.
  87. Hitokoto H., Morozumi S., Wauke Т., Sakai S., Yoshikawa S. Chemically defined medium for high yields of sterigmatocystin // Mycopathologia. 1982. 78. P. 99−105.
  88. Holden D.W., Tang C.M., Smith J.M. Molecular genetics of Aspergillus pathogenicity //Antonie van Leeuwenhoek. 1994. 65(3). P. 251−255.
  89. Hunter C.A., Grant C., Flannigan В., Bravery A.F. Mould in buildings: the air spora of domestic dwellings // Internatinal Biodeterioration. 1988. 24. P. 81 101. (Цит. no Beguin, Nolard, 1994).
  90. Hyvarinen A., Vahteristo M., Meklin, T. Jantunen M., Nevalainen A., Moschandreas D. Temporal and spatial variation of fungal concentrations in indoor air //Aerosol Science and Technology. 2001. 35. P. 688−695.
  91. Jacobson E.S. Pathogenic roles for human melanins // Clinical Microbiological
  92. Revue. 2000. V.13. P. 708−717.
  93. Jarvis J.Q., Morey P.R. Allergic respiratory disease and fungal remediation in a building in a subtropical climate. //Appl. Occup. Environ. Hyg. 2001 16 (3). P. 380−388.
  94. Kakde U.B., Kakde H.U., Saoji A.A. Seasonal variation of fungal propagules in a fruit market environment, Nagpur (India) // Aerobiologia. 2001. 17. P.177−182.
  95. Kamei K., Watanabe A. Aspergillus mycotoxins and their effect on the host // Medical Mycology. 2005. 43.1. P. S95-S99.
  96. Keegan K.G., Dillavou C.L., Turnquist S.E., Fales W.H. Subcutaneous mycetoma-like granuloma in a horse caused by Aspergillus versicolor // J. Vet. Diagn. Invest. 1995. 7. P. 564−567.
  97. Keller N., Bok J., Chung D., Perrin R.M., Shwab E.K. LaeA, a global regulator of Aspergillus toxins // Medical Mycology. 2006. 44. S83-S85.
  98. Kim K., Harvell C.D., Kim P.D., Smith G.W., Merkel S.M. Fungal disease resistance of Caribbean sea fan corals (Gorgonia spp.) // Marine Biology. 2000. 136. P. 259−267.
  99. Kis-Papo Т., Oren A., Wasser S.P., Nevo E. Survival of filamentous fungi in hypersaline Dead sea water // Microb. Ecol. 2003.45. P.183−190.
  100. Mich M.A. Biogeography of Aspergillus species in soil and litter I I Mycologia. 2002. 94 (1). P. 21−27.
  101. Mich M.A. Morphological studies of Aspergillus Section Versicolores andrelated species // Mycologia. 1993. V. 85. N. 1. P. 100−107.
  102. Klich M.A., Mullaney E. J., Daly С. B. Analysis of intraspecific and interspecific variability of three common species in Aspergillus section Versicolores using DNA restriction fragment length polymorphisms // Mycologia. 1993. V. 85. N. 5. P. 852−855.
  103. Klich M.A., Pitt J.I. A laboratory guide to a common Aspergillus species and their teleomorphs. Commonwealth scientific and industrial research organisation, division of food processing. 1992.116p.
  104. Korpi A., Kasanen J.-P., Raunio P., Pasanen A.-L. Acute effects of Aspergillus versicolor aerosols on murine airways I I Indoor Air. 2003.13. P. 260−266.
  105. Kosalec I., Pepeljnjak S. Mycotoxigenicity of clinical and environmental Aspergillus fumigatus and A. flavus isolates // Acta. Pharm. 2005. 55. P. 365 375.
  106. Kozel T.R. Activation of the Complement System by Pathogenic Fungi // Clinical Microbiology Reviews. 1996. V. 9. N. 1. P. 34−46.
  107. Kupfahl C., Michalka A., Lass-Florl C., Fischer G., Haased G., Ruppert Т., Geginat G., Hof H. Gliotoxin production by clinical and environmental Aspergillus fumigatus strains // Int. J. Med. Microbiol. 2007. doi:10.1016/ j.ijmm.2007.04.006.
  108. Kurtzman C.P., Robnett C.J. Identification of clinically important ascomycetous yeasts based on nucleotide divergence in the 5' end of the large-subunit (26S) ribosomal DNA gene // J. Clin. Microbiol. 1997. 35 (5). P.1216 -1223.
  109. Lafont P., Lafont J. Production de nidulotoxine par des Aspergillus appartenant a differentes especes // Cellular and Molecular Life Sciences. 1970. 26. 7. P. 807−808.
  110. Latge J.-P. Aspergillus fumigatus and Aspergillosis // Clinical Microbiology Reviews. 1999. V. 12. N. 2. P. 310−350.
  111. Latge J.-P. The pathobiology of Aspergillus fumigatus // Trends in Microbiology. 2001. V. 9. N. 8. P. 382−389.
  112. Lepom P., Kloss H. Production of sterigmatocystin by Aspergillus versicolor isolated from roughage // Mycopathologia. 1988.101 (1). P. 25−29.
  113. Levetin E., Shaughnessy R., Rogers C. A., Scheir R. Effectiveness of germicidal UV radiation for reducing fungal contamination within air-handling units //Appl. Environ. Microbiol. 2001. V. 67. N. 8. P. 3712−3715.
  114. В., Gattung S., Jahn В., Brakhage A. A. // cAMP signaling in Aspergillus fumigatus is involved in the regulation of the virulence gene pksP and in defense against killing by macrophages // Mol. Gen. Genomics. 2003. 269. P. 42035.
  115. Liu, Z., Hou Т., Shen Q., Liao W., Xu H. Osteomyelitis of sacral spine caused by Aspergillus versicolor with neurologic deficits I I Chin. Med. J. (Engl). 1995. 108. P. 472−475.
  116. Lugauskas A., Krikstaponis A., Sveistyte L. Airborne Fungi in industrial environments potential agents of respiratory diseases // Ann. Agric. Environ. Med. 2004. N.ll.P.19−25.
  117. Maggi O., Persiani A.M., Gallo F., Valenti P., Pasquariello G., Sclocchi M.C., Scorrano M. Airborne fungal spores in dust present in archives: proposal for a detection method, new for archival materials //Aerobiologia. 2000. 16. P. 429
  118. Marin M., Castro В., Gaitan A., Preisig 0., Wingfield B. D., Wingfield M. J. Relationships of Ceratocystis fimbriata isolates from Colombian coffee-growing regions based on molecular data and pathogenicity. // J. Phytopathology. 2003.151. P. 395−405.
  119. McGinnis M.R. Pathogenesis of indoor fungal disease // Medical Mycology. 2004. V. 42. P. 107−118.
  120. Mehrad В., Paciocco G., Martinez F.J., Ojo T.C., Iannettoni M.D., Lynch J.P. Spectrum of Aspergillus infection in lung transplant recipients: case series and review of the literature // Chest. 2001.119. P. 169−175.
  121. Meneau I., Sanglard D. Azole and fungicide resistance in clinical and environmental Aspergillus fumigatus isolates I I Medical Mycology. 2005. 43. Suppl. 1. P. S307-S311.
  122. Mishra P.K., Fox R.T., Culham A. Restriction analysis of PCR amplified nrDNA regions revealed intraspecific variation within populations of Fusarium culmorum // FEMS Microbiol. Lett. 2002. 215 (2). P. 291−306.
  123. Misra N. Influence of temperature and relative humidity on fungal flora of some spices in storage // Z. Lebensm. Unters. Forsch. 1981.172. P. 30−31.
  124. Mojtahedi H., Rabie C.J., Lubben A., Steyn M., Danesh D. Toxic aspergilli from pistachio nuts // Mycopathologia. 1979. V. 67. 2. P. 123−127.
  125. Molla A. H, Fakhru’l-Razi A., Abd-Aziz S., Hanafi M.M., Alam M. Z. In-vitrocompatibility evaluation of fungal mixed culture for byconversion of domestic wastewater sludge I I World Journal of Microbiology & Biotechnology. 2001. 17. P. 849−856.
  126. Mondon P., De Champs C., Donadille A., Ambroise-Thomas P., Grillot R. Variation in virulence of Aspergillus fumigatus strains in a murine model of invasive pulmonary aspergillosis // J. Med. Microbiol. 1996.45(3). P. 186−91.
  127. Morey P.R., Hull M.C., Andrew M. El Nino water leaks identify rooms with concealed mould growth and degraded indoor air quality // Int. Biodeter. Biodegrad. 2003.52. P. 197−202.
  128. Moubasher A.H., Abdel-Hafez S.I. Further study on seasonal fluctuations of egyptian soil fungi // Mycopathologia. Vol. 63, L: LI 19,1978.
  129. Moubasher A.H., Abdel-Kader M.I.A., El-Kady I.A. Toxigenic fungi isolated from roquefort cheese // Mycopathologia. 1978.vol. 66. 3. P. 187−190.
  130. Mullen K.M., Harvell C.D., Alker A.P., Dube D., Jordan-Dahlgren E., Ward J.R., Petes L.E. Host range and resistance to aspergillosis in three sea fan species from the Yucatan // Marine Biology. 2006.149. P. 1355−1364.
  131. Muller J. Requirements for establishing a country-wide diagnostic service in medical mycology // International Society for Human and Animal Mycology. 13 Congress, Salsomaggiore Terme, Parma, Italy. 1997. S. 94. P.64.
  132. Naumov G.I., Naumova E.S., Hagler A.N., Mendonka-Hagler L.C., Louis E.J. A new genetically isolated populations of the Saccharomyces sensu stricto complex from Brazil. //Antonie van Leeuwenhoek. 1995a. 67. P. 351−355.
  133. Naumov G.I., Naumova E.S., Louis E.J. Two new genetically isolated populations of the Saccharomyces sensu stricto complex from Japan. // J. Gen. Appl. Microbiol. 1995b. 41. P. 499−505.
  134. NCBI (2007.04.13) Basic Local Alignment Search Tool (BLAST). On-line search query. URL http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/Blast.cgi
  135. Nielsen K.F., Gravesen S., Nielsen P.A., Andersen В., Thrane U., Frisvad J.C. Production of mycotoxins on artificially and naturally infested building materials // Mycopathologia. 1999.145. P. 43−56.
  136. Nierman W.C., May G., Kim H.S., Anderson M.J., Chen D., Dennind D.W. What the Aspergillus genomes have told us // Medical Mycology. 2005. 43. Suppl. 1. P. S3-S5.
  137. Nilsson A., Kihlstr E., Lagesson V., Wess В., Szponar В., Larsson L., Tagesson
  138. C. Microorganisms and volatile organic compounds in airborne dust from damp residences. // Indoor Air. 2004.14. P. 74−82.
  139. O’Donnell K. Fusarium and its near relatives / The fungal holomorph: mitotic, meiotic and pleomorphic speciation in fungal systematics. Edited by Reynolds
  140. D.R., Taylor J.W. United Kingdom. Wallingford. CAB International. 1993. P.225−233.
  141. Olutiola P.O., Cole O.O. Some environmental and nutritional factors affecting growth and sporulation of Aspergillus sydowii I I Physiologia Plantarum. 1977. 39.3. P. 239−242.
  142. Oyeyiola G.P. Fermentation of millet to produce kamu a Nigerian starch-cake food // World Journal of Microbiology and Biotechnology. 1991. 7. P. 196−201.
  143. Parekh T.V., Chhatpar H.S. Effect of salt stress on the respiratory activity of Aspergillus sydowii II Current Microbiology. 1989. V. 19. P. 297−301.
  144. Pasanen P., Korpi A., Kafliokoski P., Pasanen A.L. Growth and volatile metabolite production of Aspergillus versicolor in house dust. // Inveronment International. 1997. 23 (4). P. 425−432.
  145. Pathogenic Fungi in Humans and Animals. Second Edition. Ed. by Howard D.H. New York, Basel: Marcel Dekker Inc., 2002. 790p.
  146. Perkhofer S., Speth C., Dierich M.P., Lass-Florl C. In vitro determination of phagocytosis and intracellular killing of Aspergillus species by mononuclear phagocytes// Mycopathologia. 2007.163. P. 303−307.
  147. Perri P., Campa C., Incorvaia C., Parmeggiani F., Lamberti G., Costagliola C., Sebastiani A. Endogenous Aspergillus versicolor endophthalmitis in an immuno-competent HIV-positive patient // Mycopathologia. 2005.160. P. 259 261.
  148. Phillips S.I., Wareing P.W., Dutta A., Panigrahi S., Medlock V. The mycoflora and incidence of aflatoxin, zearalenone and sterigmatocystin in dairy feed and forage samples from Eastern India and Bangladesh // Mycopathologia. 1996. 133. P. 15−21.
  149. Pieckova E., Wilkins K. Airway toxicity of house dust and its fungal composition //Ann. Agric. Environ. Med. 2004.11. 67−73.
  150. Piercey M.M., McPherson M.A., GrahamS.W., Currah R.S. Genetic heterogeneity in Phialocephala fortinii populations along a latitudinal transect. / The 7th International Mycological Congress. Book of abstracts. Oslo. 2002. P.ll.
  151. Pitt J.I. A laboratory guide to common Penicillium species. 2nd ed. CSIRO Division of Food Processing. North Ryde. NSW. Australia. 1988.187p.
  152. Pitt J. I., Hocking A. D. Influence of solute and hydrogen ion concentration on the water relations of some xerophilic fungi // J. Gen. Microbiol. 1977. 101. P. 35−40.
  153. Pivkin M.V. Filamentous fungi associated with holothurians from the sea of Japan, off the Primorye coast of Russia // Biol. Bull. 2000.198. P. 101−109.
  154. Prasad S., Nema H.V. Mycotic infections of cornea // Ind. J. Ophth. 1982. 30. P. 81−85.
  155. Price D.L., Simmons R.B., Ezeonu I.M., Crow S.A., Ahearn D.G. Colonizationof fiberglass insulation used in heating, ventilation and air conditioning systems//J. Industr. Microbiol. 1994.13. P. 154−158.
  156. Rabie C. J., Lubben A., Steyn M. Production of sterigmatocystin by Aspergillus versicolor and Bipolaris sorokiniana on semisynthetic liquid and solid media // Appl. Environ. Microbiol. 1976. V. 32. N. 2. P. 206−208.
  157. Rainer J., Peintner U., Poder R. Biodiversity and concentration of airborne fungi in a hospital environment // Mycopathologia. 2000.149. P. 87−97.
  158. Raper K.B., Fennell D.I., The genus Aspergillus. Baltimore: The Williams & wilkins company, 1965.453p.
  159. Rhodes J., Bode R., McCuan-Kirsch C. Elastase production in clinical isolates of Aspergillus //Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 1988. 10. P. 165−170. (Цит. no Holden et al., 1994).
  160. Richardson M.D. Effect of Lamisil and azole antifungals in experimental nail infection // Dermatology. 1997.194. Suppl. 1. P. 27−31.
  161. Rinyu E., Varga J., Ferenczy L. Phenotypic and genotypic analysis of variability in Aspergillus fumigatus // J. Clin. Microbiol. 1995. V. 33. N. 10. P. 2567−2575.
  162. Rizzo A., Eskola M., Atroshi F. Ochratoxin A in cereals, foodstuffs and human plasma // Eur. J. Plant Pathol. 2002.108. P. 631−637.
  163. Rosehart K., Richards M.H., Bidochka M.J. Microsatellite analysis of environmental and clinical isolates of the opportunist fungal pathogen
  164. Aspergillus fumigatus // J. Med. Microbiol. 2002. V. 51. P. 1128−1134.
  165. Rotoli M., Sascaro G., Cavalieri S. Aspergillus versicolor infection of the external auditory canal successfully treated with terbinafine // Dermatology. 2001. 202. P. 143.
  166. Rowan N.J., Johnstone C.M., Mclean R.C., Anderson J.G., Clarke J. A. Prediction of toxigenic fungal growth in buildings by using a novel modelling system //Appl. Environ. Microbiol. 1999. Vol. 65. No. 11. P. 4814−4821.
  167. Sandhu D.K., Sandhu R.S. Survey of aspergillus species associated with the human respiratory tract // Mycopathologia et mycologia applicata. 1973. V. 49. 1. P. 77−87.
  168. Scheff P.A., Paulius V.K., Curtis L., Conroy L.M. Indoor air quality in a middle school, part II: development of emission factors for particulate matter and bioaerosols //Appl. Occup. Environm. Hygiene. 2000. V. 15 (11). P. 835−842.
  169. Schroeder H.W., Kelton W.H. Production of sterigmatocystin by some species of the genus Aspergillus and its toxicity to chicken embryos // Applied Microbiology. 1975. V. 30. N. 4. P. 589−591.
  170. Shukla P.K., Jain M., Lai В., Agrawal P.K., Srivastava O.P. A study on keratomycoses caused by the species of Aspergillus // Biol Mem. 1985. 11. P. 161−166. (Цит. no Summerbell 2002).
  171. Simeray J., Mandin D., Mercier M., Chaumont J.P. Survey of viable airborne fungal propagules in French wine cellars // Aerobiologia. 2001.17. P. 19−24.
  172. Simmons R.B., Noble J.A., Rose L., Price D.L., Crow S.A., Ahearn D.G. Fungal colonization of automobile air conditioning systems. // J. Industr. Microbiol. Biotechnol. 1997.19. P. 150−153.
  173. Singh A., Gangal S.V., Singh A.B. Airborne fungi in the hospitals of metropolitan Delhi //Aerobiologia. 1994. 10. P. 11−21.
  174. Singh A., Singh A.B. Aspergillus spp. as an important occupational risk factor among susceptible individuals//Aerobiologia. 1999.15. P. 233−240.
  175. M. (1998) List of fungi presenting at the wild state a biological risk for immunocompetent humans and/or animals and corresponding maximum biological risk WWW document. URL http://www.biosafety.be/ RA/Class/ListFungi.html
  176. Sugiura Y., Sugita-Konishi Y., Kumagaij S., Reiss E. Experimental murine hyalohyphomycosis with soil-derived isolates of Fusarium solani // Medical Mycology. 2003.41. P. 241 -247.
  177. Sumi Y., Nagura H., Miyakawa M. Induction of pituitary tumors in germ-free rats exposed to Aspergillus versicolor // Cancer Res. 1990.50 (2) P. 400−402.
  178. Sumi Y., Nagura H., Takeuchi M., Miyakawa M. Granulomatous lesions in the lung induced by inhalation of mold spores // Virchows Archiv. 1994. 424. P. 661−668.
  179. Summerbell R. Ascomycetes Aspergillus, Fusarium, Sporothrix, Piedraia, and Their Relatives / Pathogenic Fungi in Humans and Animals. Second Edition. Ed. by Howard D.H. New York, Basel: Marcel Dekker Inc., 2002. P. 236−497.
  180. Summerbell R.C., Kane J., Krajden S. Onychomycosis, tinea pedis and tinea manuum caused by non-dermatophytic filamentous fungi // Mycoses. 1989. 32 (12). P. 609−619.
  181. Sur В., Bihari V., Sharma A., Basu K. Survey of termite-inhabited soil and mosquito breeding sites in Lucknow, India for potential mycopathogens of Anopheles stephensi // Mycopathologia. 1999.144. P. 77−80.
  182. Tang C.M., Cohen J., Rees A.J., Holden D.W. Molecular epidemiological study of invasive pulmonary aspergillosis in a renal transplantation unit // Eur. J. Clin.
  183. Microbiol. Infect. Dis. 1994. V. 13. P. 318−321.
  184. Tell L.A. Aspergillosis in mammals and birds: impact on veterinary medicine // Medical Mycology. V. 43. Suppl. 1. 2005. P. 71 73.
  185. Thau N., Monod M., Crestani В., Rolland C., Tronchin G., Latgi J.-P., Paris S. Rodletless mutants of Aspergillus fumigatus I I Infection and Immunity. 1994. V. 62. N. 10. P. 4380−4388.
  186. Venugopal P.V., Venugopal T.V., Thiruneelakantan K., Subramanian S., Shetty B.M. Cerebral aspergillosis: report of two cases // Sabouraudia. 1977. 15 (3). P. 225−230.
  187. Vinokurova N. G., Khmel’nitskaya I. I., Baskunov B. P., Arinbasarov M. U.
  188. Occurrence of Indole Alkaloids among Secondary Metabolites of Soil Aspergillus spp. //Appl. Biochem. Microbiol. 2003. V. 39. N. 2. P. 192−196.
  189. Wanqing L., Hai W., Yuchong C., Qian L., Zhilong Y., Jianghua W., Hong X., Deqian X. The first case of obstructing bronchial aspergillosis caused by Aspergillus sydowii // Int. J. Infect. Dis. 2004. 8 (2). P. 132−133.
  190. Warris. A, Verweij P.E. Clinical implicants of environmental sources for Aspergillus I/ Medical Mycology. 2005.43. Suppl. 1. P. S59-S65.
  191. Watanabe A., Kamei K., Sekine Т., Higurashi H., Ochiai E., HashimotoY., Nishimura K. Cytotoxic substances from Aspergillus fumigatus in oxygenated or poorly oxygenated environment // Mycopathologia. 2004.158. P. 1−7.
  192. Weig M., Reichard U., Grab U. Aspergillus fumigatus virulence or opportunism I I Mycoses. 2001.44. P. 351−355.
  193. Weir-Brush J.R., Garrison V.H., Smith G.W., Shinn E.A. The relationship between gorgonian coral (Cnidaria: Gorgonacea) diseases and African dust storms //Aerobiologia. 2004.20. P. 119−126.
  194. Wheeler K.A., Hocking A.D. Water relations of Paecilomyces variotii, Eurotium amstelodami, Aspergillus candidus and Aspergillus sydowii, xerophilic fungi isolated from Indonesian dried fish // Int. J. Food. Microbiol. 1988. 7 (1). P. 73−78.
  195. Zucconi L., Pagano S., Fenice M., SelbmannL., Tosi S., Onofri S. Growth temperature preferences of fungai strains from Victoria Land, Antarctica // Polar Biol. 1996.16. P. 53−61.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!