Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Состояние половых желёз лососевых рыб в условиях интродукции

Диссертация: Состояние половых желёз лососевых рыб в условиях интродукции
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Научная новизна. Впервые проведена оценка состояния половых желёз у радужной форели, выращиваемой в тропическом климате южного Вьетнама, на разных этапах жизненного цикла, установлены критические факторы окружающей среды, а также особенности технологии выращивания, влияющие на гаметогенез рыб в данных условиях. Впервые показано, что искусственное гормональное воздействие андрогенами при… Читать ещё >

Содержание

  • глава 1. обзор литературы
    • 1. 1. биология и распространение радужной форели
    • 1. 2. зоны толерантности радужной форели
    • 1. 3. биология нерки и её жилой формы
    • 1. 4. Состояние воспроизводительной системы у рыб в связи с нестандартными условиями их выращивания
    • 1. 5. Дифференцировка пола у рыб
    • 1. 6. Гормональный статус половой системы лососевых рыб на разных стадиях развития гонад. 1.7. Искусственная гормональная регуляция пола у рыб
    • 1. 8. Триплоидия у рыб
  • глава 2. материал, условия обитания и методики
  • глава 3. гонадо- и гаметогенез радужной форели в условиях аквакулбтуры южного вьетнама 56,
    • 3. 1. Гидрохимия форелевого хозяйства Клонг-Кланх
    • 3. 2. Биологические показатели и анатомические нарушения у сеголеток (икра США) и двухлеток (финская икра) радужной форели
  • 2009 г.)
    • 3. 3. Биологические показатели и анатомия радужной форели в южном Вьетнаме в возрасте 0+ (сеголетки вьетнамской генерации),
    • 1. + (икра США) и 2+ (икра из Финляндии) (2010 г.)
      • 3. 4. Состояние половых желез у радужной форели американского происхождения в 2009 г
      • 3. 5. Состояние половых желез у радужной форели в 2010 г
      • 3. 6. Визуальная оценка состояния половых желез производителей радужной форели (финская икра)
  • глава 4. гонадо- и гаметогенез жилой азиатской нерки кокани ожопнтсниз ШЯКА из толмачёвского водохранилища и оз. демидовское (камчатский п-ов)
    • 4. 1. Некоторые биологические показатели кокани Толмачевского водохранилища
    • 4. 2. Морфология гонад и состояние половых клеток кокани из Толмачёвского водохранилища
    • 4. 3. Морфология гонад и состояние половых клеток кокани из оз. Демидовское
  • глава 5. биохимические показатели крови радужной форели южного вьетнама
    • 5. 1. Содержание глюкозы в крови радужной форели из рыбоводного 1 хозяйства Клонг-Кланх
    • 5. 2. Содержание гонадотропных и половых стероидных гормонов в плазме крови радужной форели
    • 5. 3. к вопросу о плоидности радужной форели на хозяйстве клонг-Кланх

Состояние половых желёз лососевых рыб в условиях интродукции (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Лососевые являются одной из наиболее изученных групп рыб из-за их высокой гастрономической ценности, промыслового значения, быстрого темпа роста, широко применяемого и повсеместно распространённого искусственного разведения и • товарного выращивания. Наряду с хозяйственной ценностью и высокой рыночной стоимостью, особенности онтогенеза лососевых являются основой для использования их в качестве объектов культивирования.

Многие из имеющихся научных публикаций позволяют оценить возможности разведения лососей в новых регионах, расположенных вне ареала на границах зон толерантности для конкретного вида. Однако, большинство таких работ, например, по радужной форели ОпсогИупскиБ тукгяБ (=Рагаш1то туЫ$$), основаны на относительно краткосрочных экспериментах продолжительностью 96−168 ч (Сите е! а1., 1998), либо проведены в камеральных условиях, не отражающих в полной мере естественные климатические «условия-(Рогшор^ е1 а1., 2007). Поэтому, как правило, не» удаётся проследить долгосрочные последствия вселения или разведения рыб, такие, как изменения темпа роста, либо функционирования воспроизводительной системы. Некоторые факторы среды (фотопериод, условия выращивания на рыбоводном хозяйстве) не учитываются при проведении экспериментов, но оказывают своё специфичное, не всегда предсказуемое действие на организм объекта аквакультуры. Основываясь на результатах продолжительных экспериментальных работ в этом направлении, рыб, адаптированных для выращивания в несвойственных для них условиях окружающей среды, можно успешно культивировать, в том числе при широком диапазоне температуры воды и воздуха (Мо1опу, 2001).

При культивировании или акклиматизации любого объекта в новых природных зонах одной из первостепенных задач является оценка возможности его успешного размножения (Сакун, 1965; Стороженко,.

Тютюник, 1973), так как функционирование воспроизводительной системы рыб тесно взаимосвязано с условиями окружающей среды и отражает адаптивную способность вида к новым условиям обитания или культивирования. Изучение размножения приобретает особое значениетак как в течение раннего онтогенеза рыб происходят важнейшие события, в том числе дифференцировка пола, формирование фонда половых клеток и" становление будущей плодовитости (Персов, 1975). Изучение протекания гаметогенеза рыб в новых условиях позволяет уже на ранних этапах оценить состояние их воспроизводительной системы, выявить нарушения' в формировании их половых желёз и разработать методы, позволяющие снизитьотрицательную нагрузку на организм того или иного фактора.

В свете изложенного, представляется актуальным морфофункциональное исследование воспроизводительной системы у лососевых рыб в специфических условиях их обитания или культивирования*.

Целью настоящей работы является оценка состояния воспроизводительной системы лососевых рыб (радужной форели, О. тукш и жилой формы" нерки — кокани' О. пегка) в специфических условиях их интродукции.

Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1) Охарактеризовать условия обитания радужной форели в южном Вьетнаме и жилой нерки — кокани, в Камчатском крае.

2) Изучить динамику состояния половых желёз радужной форели южного Вьетнама, в том числе у рыб, подвергнутых инверсии пола.

3) Изучить состояние гонад кокани, интродуцированной в озёра Камчатского края.

4) Изучить биохимические и морфологические показатели крови радужной форели.

Научная новизна. Впервые проведена оценка состояния половых желёз у радужной форели, выращиваемой в тропическом климате южного Вьетнама, на разных этапах жизненного цикла, установлены критические факторы окружающей среды, а также особенности технологии выращивания, влияющие на гаметогенез рыб в данных условиях. Впервые показано, что искусственное гормональное воздействие андрогенами при определённых условиях снижает долю и типы нарушений в процессе сперматогенеза радужной форели. Впервые изучен гормональный статус радужной форели при её культивировании в условиях южного Вьетнама. Впервые описано состояние гонад кокани более чем через 20 лет после её интродукции в Толмачёвское водохранилище и в оз. Демидовское (Куренков, 1999) и охарактеризованы морфологические и цитологические нарушения.

Практическое значение. Подготовлены материалы к разработке нормативов по выращиванию радужной форели в условиях южного Вьетнама. Показано, что для обеспечения полноценного воспроизводства радужной форели в условиях южного Вьетнама необходимо кардинально видоизменить используемую технологию культивирования. Для организации ежегодного промышленного лова кокани в Толмачёвском водохранилище рекомендовано оценить её численность и проводить её регуляцию с помощью промысла. —- - • ;

Апробация работы. Основные результаты исследований представлены на «Чтениях памяти В.Я. Леванидова» (Владивосток, 2008), Международной конференции «Воспроизводство естественных популяций ценных видов рыб» (Санкт-Петербург, 2010), III Международной конференции с элементами школы для молодых учёных, аспирантов и студентов (Петрозаводск, 2010), Всероссийской молодёжной конференции «Вклад молодых учёных и специалистов в рыбохозяйственную науку России» (Санкт-Петербург, 2010).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 7 работ, две из них в издании, рекомендованном ВАК РФ.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. У лососевых рыб, часть жизненного цикла которых проходит в нестандартных условиях со смещением некоторых абиотических показателей к границам-толерантных зон, развитие и морфофункциональное состояние репродуктивной системы отклоняется от нормы.

2. Цитологические нарушения в гонадах радужной форели и кокани сходны с возникающими у других видов рыб при воздействии различных неблагоприятных факторов, что свидетельствует о неспецифической у реакции.

3. Кратковременное (2.5−3.0 мес) искусственное гормональное воздействие на форель синтетическим метилтестостероном' (МТ) стабилизирует формирование и интенсифицирует развитие её гонад.

Структура и объём диссертации. Диссертация состоит из введения, 5 глав, заключения, выводов, практических рекомендаций, списка литературы. Работа изложена на 180 страницах текста, содержит 37 рисунков иЛ2 таблиц. Список цитируемой литературы включает 349 источников, из которых 215 на иностранных языках.

выводы.

1. Абиотические факторы культивирования интродуцированной в тропические условия южного Вьетнама радужной форели — фотопериод, температура воды и содержание в ней кислорода, находятся за пределами зон толерантности. Интродуцированная кокани обитает в ранее безрыбных водоёмах.

2. Условия среды, в которых обитают радужная форель и кокани, отрицательно влияют на развитие и строение их гонад, приводя к деструкции половых клеток, появлению стерильных особей, снижению конечной плодовитости.

3. Воздействие на радужную форель МТ на ранних этапах онтогенеза интенсифицирует её сперматогенез, стабилизирует формирование и развитие семенников, снижает долю цитологических аномалий. Эффект от действия экзогенного гормона наиболее ярко выражен при его использовании в течение 2.5 мес.

4. Высокая индивидуальная вариабельность содержания ФСГ и тестостерона в крови радужной форели одного возраста финского и американского происхождения свидетельствует о дисбалансе её гормональной регуляции, что приводит к десинхронизации и пролонгированию сроков нереста у диплоидных производителей.

5. Несколько критериев: достоверно увеличенный размер ядер эритроцитов, их сегментированность, высокая доля амитозов, достоверно большее ядерно-плазменное соотношение, аномалии в строении половых клеток и гонад, высокая доля (51%) стерильных рыб, указывают на триплоидию радужной форели американского происхождения.

6. Сегрегация цитоплазматического слоя в превителлогенных ооцитах яичников кокани, интродуцированной в Толмачёвское водохранилище и оз. Демидовское, видоспецифична, и исчезает в процессе вителлогенеза.

7. Аномалии половых клеток в гонадах самок и самцов двух изученных видов лососей, возникающие под воздействием различных факторов окружающей среды, цитологически сходны, что отражает неспецифическую реакцию половых клеток на неблагоприятные внешние воздействия.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

В связи с неадекватными условиями культивирования радужной форели на рыбоводном хозяйстве Клонг-Кланх (южный Вьетнам) до проведения мероприятий по созданию национального маточного стада и искусственной инверсии пола необходимо оптимизировать наиболее критические для этого вида факторы среды — снизить температуру воды, увеличить концентрацию в воде кислорода, приблизить освещённость бассейнов к естественному фотопериоду, характерному для средней полосы, нормализовать и стандартизировать поступление воды в бассейны, снизить плотность посадки, либо увеличить полезный объём бассейнов.

Кокани из Толмачёвского водохранилища (Камчатский край) может иметь промысловую ценность только после увеличения её размеров, снизившихся в результате высокой численности популяции и недостаточного количества корма в водоёме. Для этого необходимо провести точную оценку численности популяции в данном водоёме и организовать отлов её избытка. Это увеличит кормовую базу, снизит пищевую конкуренцию и позволит кокани перейти на питание специализированным кормом.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.В. 1985. Гаметогенез и половая цикличность сибирского осетра в естественных и экспериментальных условиях. В кн.: Особенности репродуктивных циклов у рыб в водоёмах разных широт. М.: Наука. С. 111−122.
  2. С.А., Чмилевский Д. А. 1987. Функциональные корреляции процессов формирования фонда половых клеток радужной форели с условиями питания в раннем онтогенезе. Л. ГосНИОРХ. Вып. 263. С. 35−43.
  3. И.В., Сутулов Л. С. 1978. Атлас по гистологии и эмбриологии. М.: Медицина. 544 с.
  4. О.В. 2008. Филогенетический анализ двух форм серебряного карася Carassius auratus gibelio Bloch на основе изменчивости митохондриальной ДНК. Автореф. диссертации на соискание учёной степени канд. биологических наук. Владивосток. 25 с.
  5. М.М., Федеров К. Е. 1994. Влияние экзогенного эстрадиола на формирование яичников у молоди стерляди Acipenser ruthenus II Вопр.ихт. Т. 34. № 4. С. 557−563.
  6. H.H., Грезе Б. С., Дрягин П. А. и др. 1941. Рыбные хозяйства Ленинградской области. М.: Пищепромиздат, 112 с.
  7. И.А., Болонова Л. В., Гераскин П. П., Семенкова Т. Б. 2000.
  8. Содержание половых стероидных гормонов в сыворотке крови осетровых (Acipenseridae) в морской период жизни при различных состояниях половых желёз // Вопр. ихтиологии. Т. 40. Вып. 2. С. 269−274.
  9. И.А., Дюбин В. П., Буковская О. С. 1989. Гонадотропная функция гипофиза и динамика гонадотропных и половых стероидов крови осенней кеты (Oncorhynchus keta) р. Амур при завершении полового цикла // Вопр. ихтиологии. Т. 29. Вып. 5. С. 823−830.
  10. В.Э. 1959. О влиянии плотности населения рыб на их рост и воспроизводительную способность (на примере золотого карася). //Труды Мосрыбвтуза. Вып. 10. С.210−218.
  11. Н.В. 2008. Радиационное воздействие на воспроизводительную систему костистых рыб последствия Чернобыльской катастрофы. Автореф. дисс.. доктора биол. наук. М.: МГУ, 56 с.
  12. Н.В., Веригин Б. В., Емельянова Н. Г., Макеева А. П., Рябов И. Н. 1993.
  13. Радиобиологический анализ белого толстолобика в водоёме-охладителе Чернобыльской АЭС в послеаварийный период. //Вопр. ихтиологии. Т.ЗЗ. № 6 С. 814−828.
  14. Н.В., Емельянова Н. Г., Макеева А. П., Рябов И. Н. 2006а. Состояние репродуктивных желёз щуки из водоёмов чернобыльского следа в 1994—2004 гг. //Вопр. ихтиологии. Т.46, № 5 С. 686−693.
  15. Н.В., Емельянова Н. Г., Макеева А. П., Рябов И. Н. 20 066. Состояние репродуктивной системы линя Tinca tinca (в 1999—2005 гг.) из водоёмов, загрязненных в результате аварии на Чернобыльской АЭС.//Вопр. ихтиологии. Т.46. № 5 С. 686−693.
  16. Jl.С. 1949а. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран. М.- Л.: Изд-во АН СССР, Т.2. С. 469−929.
  17. Л.С. 19 496. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран. М.- Л.: Изд-во АН СССР, Т.З. С. 930−1381.
  18. А.К. 2006. Породы радужной форели (Oncorhynchiis ту kiss W.). М.: ФГНУ «Росинформагротех», 316 с.
  19. Е.А. 1969. Радужная форель. Минск.: Наука и техника, 156 с.
  20. В.Ф. 1995. Азиатская нерка. М. Изд-во Колос, 464 с.
  21. А.Б. 1978. Гонадотропные гормоны гипофиза рыб и их таксономическая специфичность // Тр. Всес. НИИ морск. Рыбн. Хоз-ва и океанограф. Т. 130. Ч. 11. С. 17−24.
  22. А.Б. 1997. Половая специфичность гипофизарных гонадотропинов у икромечущих рыб. М.: МГУ, 208 с.
  23. А.Б. 2002. Гормональная регуляция репродуктивной функции у икромечущих рыб. Автореф. дисс.. доктора биол. наук. М.: МГУ, 56 с.
  24. В.П., Лебедева Е. Б., Васильева Е. Д., Левенкова Е. С., Рысков А.П.2005. Уникальный диплоидно-тетраплоидный однополо-двуполый комплекс рыб (Pisces, Cobitidae) // ДАН. Т. 404. № 4. С. 559−561.
  25. Е.В. 2008. Биохимические показатели крови тихоокеанских лососей р.
  26. Большая Воровская (Западная Камчатка) // Повышение эффективности использования водных биологических ресурсов. Мат-лы 2-ой межд. научно-практ. конф. Москва, ВВЦ, 26−27 ноября 2008 г. М.: Изд-во ВНИРО. С. 197−200.
  27. А.Д. 1986. Пути интенсификации роста рыб при выращивании. Обзорная информация ЦНИИТЭИРХ, М., Вып. 1. С. 1−66.
  28. . В.М., Терентьева Е. Г. 2006. Породы радужной форели {Oncorhynchus mykiss W.). М.: Росинформагротех, 316 с.
  29. .Ф. 1977. Гормональная регуляция вителлогенеза и созревания у рыб и амфибий // Современные проблемы оогенеза. М.: Наука. С. 173−199.
  30. Ю.Н. 1988. Сравнительный анализ динамики раннего онтогенеза лососей рода Salmo II Вопр. ихтиол. Т. 28. № 2. С. 230−241.
  31. Ю.Н. 1998. Зародышевое и личиночное развитие атлантического лосося // В кн.: Атлантический Лосось (ред. Р. В. Казаков). СПб.: Наука. С. 142−158.
  32. Ю.Н., Мельникова Е. Л. 2003. Сравнение раннего онтогенеза между лососями атлантических (род Salmo) и тихоокеанских (род Oncorhynchus) видов // Atlantic salmon: biology, conservation and restoration, 2003. C. 123−135.
  33. С.Б. 2008. Влияние факторов среды на гаметогенез нерки р.
  34. Озерная (западная Камчатка). Автореф. дис.. канд. биол. наук. М.: ВНИРО, 25 с.
  35. Л.Е. 1968. Некоторые данные о плодовитости тихоокеанских лососей И Изв. Тихоокеан. НИИ рыб. хоз-ва и океанографии. Т. 64. С. 4351.
  36. М.Н. 1954. Метод выращивания товарной радужной форели в два года. ВНИОРХ. Рукопись.
  37. А.Б. 2004. Стероидные гормоны в осуществлении репродуктивной функции русского осетра (Acipenser gueldenstaedtii Вг.) в природе и в искусственных условиях. Автореф. дисс.. канд. биол. наук. СПб.: СПбГУ, 17 с.
  38. В.В., Дума JI.H. 1982. О направленном формировании пола у радужной форели // Материалы V-й Всесоюзной конф. по экологии, физиологии и биохимии рыб. Том II. С. 22.
  39. Н.Г. 1994. Ультраструктура превителлогенных ооцитов форели. //Вопр. ихтиологии. Т.34. № 3 С. 420123.
  40. Н.Г., Макеева А. П., Зеленков В.М., Кулида C.B., Белова Н. В.2000. Развитие половых желёз у радужной форели в условиях марикультуры Белого моря. //Вопр. ихтиологии. T.4O. Вып. 3. С. 370−378.
  41. Н.И., Чмилевский Д. А. 1983. Влияние пониженной температуры на развитие гонад радужной форели (Salmo gairdneri) II Сборник научных трудов ГосНИОРХ. Вып. 203. С. 40−46.
  42. Н.И., Чмилевский Д. А. 1985. Влияние пониженной температуры на развитие гонад радужной форели (Salmo gairdneri) Сообщение II. Воздействие на рыб в возрасте 5,5 месяца после вылупления // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ. Вып. 229. С. 95−104.
  43. О.В. 1999. Гаметогенез радужной форели Parasalmo mykiss, выращенной в системе с оборотным водоснабжением отвылупления до полного созревания при оптимальной температуре // Вопр. ихтиологии. Т. 39. № 1. С. 89−97.
  44. В.Н. 1968. Особенности биологии тихоокеанских лососей ЮжноКурильских островов в связи с проблемой внутривидовой дифференцировки. Некоторые вопросы биологии и медицины Дальнего Востока. СО АН СССР, Владивосток. С. 88−92.
  45. В.Н. 1984. Проходная и жилая формы нерки о. Итуруп (Курильские острова). //Биология проходных рыб Дальнего Востока. С. 65−73.
  46. В.Н. 1985. Плодовитость рыб. Методы определения, изменчивость, закономерности формирования. // Владивосток. Изд-во Дальневост. ун-та. 85 с.
  47. Г. М. 1975. Радужная форель Salmo gairdneri Richardson // Объекты биологии развития. М. С 278−307.
  48. .Г. 1955. Плодовитость рыб и определяющие её факторы. //Вопр. ихтиологии. Вып. 3. С. 57−68.
  49. М.М. 2003. Ультраструктурные аспекты приспособительных особенностей клеток печени позвоночных. М.: Россельхозакадемия, 194 с.
  50. Н.В. 2003. Экологические последствия крупномасштабного разведения кеты. Бюллетень журнала «Вопросы рыболовства». Изд.: ВНИРО, 162 с.
  51. В.И., Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А. Л. 2004. Аквакультура. ' М.:Изд-во МГУТУ, 433 с.
  52. .В. 1985. Особенности воспроизводства рыб в различных водоёмах. В кн.: Особенности репродуктивных циклов у рыб в водоёмах разных широт. Изд-во Наука. С. 5−11.
  53. Е.М. 1936. Исследование Кроноцкого озера в марте-мае 1935 г. Изв. Госуд. географ, общ. № 5. С. 41−50.
  54. Е.М. 1967. Материалы к познанию карликовой красной в Дальнем озере (Камчатка). //Вопр. ихтиологии. Т.6. Вып. 3(44). С. 433 445.
  55. С.И. 1998. Зачатковые клетки в семенниках половозрелого речного окуня {Perca Fhiviatilis L.) // Проблемы репродуктивной биологии в трудах профессора С. И. Кулаева и его последователей. М.: МГУ. С. 161−183.
  56. С.И. 1972. Морфологические особенности жилой красной Кроноцкого озера. //Известия ТИНРО. Т.82.
  57. С.И. 1974. Возраст и линейный рост кокани Кроноцкого озера. //Известия ТИНРО. Т.90. С.111−118.
  58. С.И. 1999. Результаты интродукции кокани в озера Камчатки. К //Проблемы охраны и рационального использования биоресурсов Камчатки. Петропавловск-Камчатский. С. 30−39.
  59. В. 2007. Цветной атлас по цитологии, гистологии и микроскопической анатомии. М.: ACT: Астрель, 533 с.
  60. В.И., Лапина Н. Н., Шатуновский М. И. 1985. Закономерности внутривидовой изменчивости обменных процессов и характера воспроизводства у рыб. В кн.: Особенности репродуктивных циклов у рыб в водоёмах разных широт. Изд-во Наука. С. 65−77.
  61. Е.Б. 2007. Структура и распространение клонально-бисексуальных комплексов рыб p. Cobitis (Cobitidae) // Автореф. на соиск. учен, степ. к.б. н. Москва. 25 с.
  62. A.A., Шарова Ю. Н. 2002. Патологии микроструктуры генеративных органов самок сига оз. Имандра. //Вопр. ихтиологии. Т.42. № 1. С. 114−120.
  63. Д.К. 1985. Закономерности изменения гаметогенеза и половых циклов у рыб в водоёме-охладителе Литовской ГРЭС. В кн.: Особенности репродуктивных циклов у рыб в водоёмах разных широт. Изд-во Наука. С. 88−98.
  64. А.П., Микодина Е. В. 1977. Строение яйцевых оболочек карповых рыб и некоторые данные об их химической природе // Науч. докл. высш. шк. Биол. науки. № 9. С. 60−64.
  65. А.П. 1992. Эмбриология рыб. М. Изд-во МГУ, 216 с.
  66. А.П., Емельянова Н. Г., Белова Н. В., Рябов И. Н. 1994.
  67. Радиобиологический анализ белого толстолобика в водоёме-охладителе Чернобыльской АЭС в послеаварийный период. //Вопр. ихтиологии. Т.34. № 5 С. 681−696.
  68. Г. Н. 2008. Возрастная структура и рост жилой нерки кокани Oncorhynchus пегка в естественной и интродуцированных популяциях водоёмов Камчатского полуострова // Вопр. ихтиологии. Т. 48. № 4. С. 494−500.
  69. Г. Н. 2009. Результаты интродукции жилой нерки кокани Oncorhynchus пегка в Толмачёвское озеро (Камчатка) // Вопр. ихтиологии. Т. 49. № 1. С. 85−92.
  70. К.В. 1987. Результаты воздействия тестостерон-пропионата на молодь радужной форели Salmo gairdnery (G) // Генетические исследования морских гидробионтов. С. 156−164.
  71. К.В. 1989. О влиянии тестостерон-пропионата на некоторые биологические показатели лососевых рода Salmo и гибрида бестера Huso huso х Acipenser ruthenus II Современные проблемы рыбохозяйственных исследований. М.: ВНИРО. С. 89−99.
  72. К.В. 1992. Влияние синтетических аналогов тестостерона на передифференцировку пола у стальноголового лосося (Oncorhynchus mykiss (Walb.)) Автореф. на соиск. учен. степ. к.б. н.-М.: ВНИРО. 16с.
  73. К.В. 1995. Опыт применения метилтестостерона для реверсии пола у лососевых видов рыб в Заполярье. // Матер. Совещ. по товарному форелеводству. Мурманск. С. 48−51.
  74. Е.В. 2002. Методические рекомендации по изучению фенодевиантов семенников у дальневосточных лососей. М. ВНИРО. 94 с.
  75. Е.В., Микулин А. Е. 1990. Анализ возможного механизма воздействия даларгина на физиологические процессы в организме рыб // Сб. науч. тр. «Эколого-физиологические и токсикологические аспекты и методе рыбохозяйственных исследований». С. 130−143.
  76. Е.В., Пукова Н. В., Кловач Н. В. 2000. Некоторые особенности оогенеза кеты Oncorhynchus keta в период морского нагула в норме и у рыб с дегенерацией мышц // Сб. тр. ВНИРО. С. 231 241.
  77. Е.В., Пукова Н. В., Хоревин Л. Д., Коваленко С. А. 2001. О редком случае гермафродитизма у тихоокеанских лососей // Морфол. и физиол. особенности гидробионтов (Мат. Межрегион, конференции). М.: ВНИРО. С. 404. '
  78. Е.В., Седова М. А., Чмилевский Д. А. и др. 2009. Гистология для ихтиологов: опыт и советы. М.: Изд-во ВНИРО, 112 с.
  79. И. Г., Христофоров О. JI. 1991. Определение степени зрелости гонад и прогнозирование возраста достижения половой зрелости у атлантического лосося и кумжи. Ленинград.: Изд. ГосНИОРХ, 102 с.
  80. Г. И., Кишкун А, А. 2000. Клиническая оценка результатов лабораторных исследований. М.: Медицина, 544 с.
  81. Г. Г. 2000. Рост и энергетика развития костистых рыб в раннем онтогенезе. М.: Эдиториал УРСС, 295 с.
  82. Т.К. 1985. Особенности репродуктивных циклов леща в различных водоёмах. В кн.: Особенности репродуктивных циклов у рыб в водоёмах разных широт. Изд-во Наука. С. 5−11.
  83. А.Г. 1977. Жилая нерка Oncorhynchiis nerka kennerlyi (Suckley) в бассейне р. Воровской (западная Камчатка). //Вопр. ихтиологии. Т. 17. Вып. 5 (100). СГ941−943.
  84. И.Н. 1969. Рост и развитие эмбрионов радужной форели при разной концентрации кислорода в воде // Изв. ГосНИОРХ. Т. 68. С. 202−216.
  85. Д.С., Савваитова К. А., Груздева М. А. и др. 1999. Разнообразие рыб Таймыра: систематика, экология, структура видов как основа биоразнообразия в высоких широтах, современное состояние в условиях антропогенного воздействия. М.: Наука, 206 с.
  86. Д.С., Савваитова К. А., Кузищин К. И. и др. 2001. Тихоокеанские благородные лососи и форели Азии. М.: Научный мир, 200 с.
  87. Г. М. 1959. Возраст и рост организма и состояние гонад у стерляди в период до дифференцировки пола В кн.: Биол. основы рыбн. хоз-ва. Изд-во Томского ун-та. С. 56−63.
  88. Г. М. 1965. Состояние половых желёз у кеты и горбуши при переходе к морскому этапу жизни и темп их полового созревания. //Тр. Мурман. биол. ин-та. Вып. 9(13). С. 95−105.
  89. Г. М. 1966. Ранний период гаметогенеза у проходных лососей. // Тр. Мурман. биол. ин-та. Вып. 12 (6), 44 с.
  90. Г. М. 1975. Дифференцировка пола у рыб. //Ленинград. Изд-во ЛГУ, 148 с.
  91. Г. Д. 1960. Приспособительные изменения размерно-весовой структуры одновозрастной популяции рыб в связи с условиями питания. Вопр. ихтиологии. Вып. 16. С. 11−33.
  92. Г. Д. 1961. Приспособительное значение изменчивости признаков и свойств популяции рыб. //Тр. Совещ. по динамике численности рыб. Изд-во АН СССР. С. 158−172
  93. И.Ф. 1966. Руководство по изучению рыб. М.: Пищ. пром-сть, 376 с.
  94. Т.И. 1976. Регулирование скорости развития гонад радужной форели при помощи температуры // Изв. ТосНИОРХ. Вып. 113. С. 32−35.
  95. Н. В. 2002. Особенности строения и развития репродуктивной системы кеты в жизненном цикле. Дис. на соиск. уч. степ. канд. биол. наук. М.: ВНИРО, 167 с.
  96. Д.В. 1982. Зависимость качества потомства от обеспеченности пищей производителей радужной форели. В кн.: Биологические особенности ценных видов рыб. Ленинград. С. 76−83.
  97. С. В., Кокорин Н. В. 2010. Цитоморфология половых желёз самок и самцов антарктического клыкача /Эш'о^/с/ш,? тсмБот (1Чо1:оЙ1епис1ае) из моря Росса в летний период // Вопр. ихтиол. Т. 50. № 3. С. 366−377.
  98. . 1953. Микроскопическая техника. М.: Изд-во иностр. лит-ры, 719 с.
  99. А., Парсонс Т. 1992. Анатомия позвоночных. М.: Мир. Т. 2., 406 с.
  100. К. А., Максимов В. А., Мина М. В., Новиков Г. Г., Кохменко JI.
  101. В., Мацук В. Е. 1973. Камчатские благородные лососи (систематика, экология, перспективы использования как объекта форелеводства и акклиматизации). Воронеж: ВГУ, 120 с.
  102. К.А., Чеботарева Ю. В., Пичугин М. Ю. 1995. Аномалии в строении рыб как показатели состояния природной среды. //Вопр. ихтиологии. Т.35. Вып. 2. С. 182−188.
  103. Г. Г. 1976. Происхождение, разведение и селекция радужной форели в СССР и за рубежом // Изв. ГосНИОРХ. Т.117. С. 3−13.
  104. О.Ф. 1965. Возникновение изменений в гаметогенезе и половом цикле у горбуши за пределами естественного ареала. //Вопр. ихтиологии. Т. 5. Вып. 4. С. 639−651.
  105. М.А. 1991. Влияние олигопептида даларгина на морфо-физиологические показатели рыб. Автореф.дисс.канд.биол.наук. М.: ВНИРО, 22 с.
  106. М.А. 2010. Перерождение половых клеток в семенниках-фенодевиантах кеты Oncorhynchus keta II Воспроизводство естественных популяций ценных видов рыб: Тез. докл. Межд. конф. Санкт-Петербург, СПб.: ГосНИОРХ. С. 192−194.
  107. М.А., Самарский В. Г., Павлов Е. Д. 2008. Состояние гонад заводской молоди кеты {Oncorhynchus keta) в зависимости от сроков началаеё кормления // Чтения памяти В. Я. Леванидова. Вып. 4. С. 339 345.
  108. А.И. 1975. Биология, размножение и развитие тихоокеанских лососей. М.: Изд-во МГУ, 336 с.
  109. И.И. 1979. Сибирский осетр в бассейнах Конаковского завода. В кн.: Осетровое хозяйство внутренних водоёмов СССР: Тез. И реф. II Всесоюз. Совещ. Астрахань. С. 238−239.
  110. Л.И. 1973. Сибирский осетр реки Лены, новые данные поего экологии и перспективы рыбохозяйственного использования. В кн.: Водоёмы Сибири и перспективы их рыбохозяйственного использования. Томск: Изд-во Том. ун-та. С. 111—112.
  111. С.С., Тютюник С. Н. 1973. Состояние гонад растительноядных рыб в зависимости от условий их содержания. // Биологические ресурсы водоёмов Молдавии. Вып. 11. С. 88−95.
  112. Н.С. 1962. Экологическая физиология рыб. Т. 1. М.: Изд-во МГУ, 444 с.
  113. Е.К. 1948. Основы ихтиологии. Ленинград, 334 с.
  114. Ф.М., Сивердов А. П. 1975. Прудовое рыбоводство. М.: Пищевая промышленность, 470 с.
  115. А.Б. 1999. Липофусцин в старении и патологии: Дис.. докт. биол. наук. Пущино: Ин-т биофизики РАН, 50 с.
  116. Е.Ф. 1980. Форелеводство. М.:Пищевая промышленность, 167 с.
  117. Е.Ф. 1994. Фермерские форелевые хозяйства // Аквакультура: ОИ/ВНИЭРХ.-М. Вып.2. 55 с.
  118. Е.Ф. 2005а. Холодноводная аквакультура: Учеб. пособие. Ч. 1. Холодноводное форелевое хозяйство. Рыбное, 124 с.
  119. Е.Ф. 20 056. Холодноводная аквакультура: Учеб. пособие. Ч. 2.
  120. Разведение и выращивание тихоокеанских и атлантического лососей. Рыбное, 70 с.
  121. А.Ф. 1972. Воспроизводительная система самцов рыб. Фрунзе: Илим, 280 с.
  122. Т.И. 1965. Анализ атрезии овоцитов у рыб в связи с адаптационным значением этого явления .// Вопр. ихтиологии. Т.5. В.3(36). С.455−470.
  123. Т.И. 2008.Сравнительный экспериментальный анализ атрезии овариальных фолликулов при нарушениях размножения рыб. С— П.: Изд-во С.-Петербургского университета. 128 с.
  124. К.Е. 1997. Гормональные аспекты регуляции раннего гамето- и гонадогенеза рыб // Проблемы надежности функционирования репродуктивной системы у рыб. С.-П.: изд-во СПбГУ, 184 с.
  125. Хон Ю.С., Новоженин Н. П., Гамыгин Е. А. 1984. Влияние корма на рост и качество производителей радужной форели // Сб. тр. ВНИИПРХ. С. 109−116.
  126. Ю.С. 2004. Введение в клеточную биологию. М.: Академкнига, 260 с.
  127. Д.А. 1968. Половой цикл гольяна (Phoxinus lagowskii Dybowski) и его изменение под влиянием низких температур // Учёные записки ДВГУ. Т. XVa. С. 118−125.
  128. Д.А., Лаврова Т. В. 1990. Влияние пониженной температуры на оогенез тиляпии Oreochromis mossambicus II Вопросы ихтиологии. Т.32. Вып. 1. С. 76−84.
  129. Д.А. 1998. Влияние повышенной температуры на различные периоды и фазы оогенеза тиляпии Oreochromis mossambicus II Вопросы ихтиологии. Т.38. № 5. С. 676−683.
  130. Д.А. 2000. Оогенез рыб в норме и при экстремальных воздействиях. Автореферат диссертации на соискание учёной степени дбн., 25 с.
  131. Д.А. 2003. К вопросу о периодизации оогенеза у костистых рыб (обзор). //Вопр. ихтиологии. Т. 43. №. 3. С. 375−387.
  132. Adkins-Regan, Е., 1987. Hormones and sexual differentiation. In: Norris, D.O., Jones, R.E. Eds. Hormones and Reproduction in Fishes, Amphibians, and Reptiles. Plenum, New York. P. 1−29.
  133. S. K., Stanley J. G. 1978. Reproductive sterility in polyploid brook trout, Salvelinus fontinalis II Transactions of the American Fisheries Society. V. 107. P. 473−478.
  134. M., Aida K., Okumoto N., Hasegawa Y. 1993. Changes in levels of GnRH in the brain and pituitary and GTH in the pituitary in male masu salmon, Oncorhynchus masou, from hatching to ovulation // Fish Physiol. Biochem. V. 11. P. 233−240.
  135. M., Ikuta K., Kitamura S., Aida K. 1997. The maturation of the salmon GnRH system and its regulation by gonadal steroids in masu salmon // Fish physiology and biochemistry. V. 17 P. 6−70.
  136. E., Mayer I., Borg В., Swanson P., Murza I., Christoforov O. 1999.
  137. Effects of testosterone on gonadotropins, testes, and plasma 17a, 20p -dihydroxy-4-pregnene-3-one levels in postbreding mature Atlantic salmon, Salmo salar, male parr // J. Exp. Zool. V. 284. P. 425−436.
  138. I.J. Solar I.I., Donaldson E. M. 1988. Masculinization of chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) by immersion treatments using 17amethyltestosterone around the time of hatching // Aquaculture V. 72. P. 359−367.
  139. E.K. 1980. Early ontogeny of the lake chair, Salvelinus (Cristivomer) namaycush // Charrs: Salmonid fishes of the Genus Salvelinus, Perspectives in Vertebrate Science 1/ Ed. E.K. Balon. The Hague: Dr. W. JunkPubl. P. 485−562.
  140. B.T., Hindar A., Kleiven E., Hogberget R. 1996. Incomplete mixing of limed water and acidic runoff restricts recruitment of lake spawning brown trout in Howatn, southern Norway // Environ. Biol. Fishes. V. 53. P. 47−63.
  141. J.F., Guiguen Y., Fostier A. 1999. Endocrine and environmental aspects of sex differentiation in fish // Cell. Mol. Life Sci. V. 55. P. 910−931.
  142. Baroiller J.F., D’Cotta H. 2001. Environment and sex determination in farmed fish // Comparative Biochemistry and Physiology Part C. V. 130. P. 399 409.
  143. J.C. 1990. Tolerance of acid waters by native brown trout (Salmo trutta L.) Comp // Biochem. Physiol. V. 96C. P. 377−380.
  144. T.D., Murray C.B. 1983. Sexual dimorphism in the adipose fin of Pacific salmon (iOncorhynchus) // Canadian J. of Fisheries and Aquatic Sciences. V. 40. P. 2019−2024.
  145. T.H. 1891. Kenne leys Salmon. Trans. Amer. Fish. Soc. 20. P. 41−46.
  146. N. M., Lega Yu. V., Chernitskiy A. G. 1991. Disruption of water-salt metabolism in rainbow trout, Salmo gairdneri, in seawater at low temperatures // J. Ichth. V. 31. P. 134−141.
  147. T. J., Sutterlin A. M. 1984a. Growth and gonadal development in triploid landlocked Atlantic salmon (Salmo salar) // Canadian J. of Fisheries and Aquatic Sciences. V. 41. P. 1387−1392.
  148. T. J., Sutterlin A. M. 1984b. Triploidy induced by heat shock and hydrostatic pressure in landlocked Atlantic salmon (Salmo salar L.) // Aquaculture. V. 36. P. 359−367.
  149. Benfey T.J., Dye H.M., Donaldson E.M. 1989. Estrogen-induced vitellogenin production by triploid coho salmon (Oncorhynchus kisutch), and its effect on plasma and pituitary gonadotropin // Gen. Comp. Endocrinol. V. 75. P. 83−87.
  150. T.J. 1996. Use of all-female and triploid salmonids for aquaculture in Canada // Bull. Aquaculture Assoc. Can. № 2. P. 6−8.
  151. TJ. 1999. The physiology and behaviour of triploid fishes // Rev. Fish. Sci. V. 7. P. 39−67.
  152. T.J. 2001. Use of sterile triploid Atlantic salmon (Salmo salar L.) for aquaculture in New Brunswick//ICES J. Mar. Sci. 58: 525−529.
  153. B.F. 1980. Tolerance of rainbow trout to direct changes in water temperature. Fish. Res. Rep. Fish Wildl. Div. № 15, 11pp.
  154. Billard R., Reinaud P., Le Brenn P. 1981. Effects of changes of photoperiod on gametogenesis in the rainbow trout (Salmo gairdneri) // Reprod Nutr Dev. V. 21(6A). P. 1009−1014.
  155. R. 1992. Reproduction in rainbow trout: sex differentiation, dynamics of gametogenesis, biology and presewation of gametes // Aquaculture. V. 100. P. 263−298.
  156. M., Felip A., Zanuy S., Carrillo M., Piferrer F. 2001. Critical period of androgen-inducible sex differentiation in a teleost fish, the European sea bass // J. of Fish Biology V. 58 P.342−358.
  157. E., Montfort J., Esquerre D., Hugot K., Fostier A., Bobe J. 2007. Effect of photoperiod manipulation on rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) egg quality: A genomic study // Aquaculture. V. 268. Is. 1−4. P. 1322.
  158. T., Labbe L., Auperin B. 2002. Feeding behaviour, energy expenditure and growth of rainbow trout in relation to stocking density and food accessibility // Aquaculture Research. V. 33. P. 1233−1242.
  159. C.E., Tucker C.S. 1998. Pond aquaculture water quality management. Boston: Kluwer Academic Publishers,. 700 pp.
  160. B., Roelants Y., Ollevier F., Epler P., Mikolajczyk T. 1998. Improved bioavailability of orally delivered peptides and polypeptides in teleost fish // J. Appl. Ichthyol. V. 14. P. 251−257.
  161. R. L. 1991. Life history of sockeye salmon (Oncorhynchus nerka). In Pacific Salmon Life Histories (edited by C. Groot and L. Margolis). UBC Press, Vancouver. P. 1−118.
  162. Busack C.A., Gall G. A E. 1980. Ancestry of artificially propagated California Rainbow Trout strains // Calif. Fish Game. V. 66. P. 17−24.
  163. C.A., Hinshaw J.M. 1995. Tolerance of rainbow trout to dissolved oxygen supplementation and a Yersinia ruckeri challenge // J. Aquat. Anim. Health. V. 7. P. 168−171.
  164. J. R., Caton W. E. 1986. Efficient production of triploid grass carp (Ctenopharyngodon idelld) using hydrostatic pressure // Aquaculture. V. 55. P. 43−50.
  165. Chevassus B, Devaux A, Chourrout D, Jalabert B. 1988 Production of YY rainbow trout males by self-fertilization of induced hermaphrodites // J. Hered. V. 79, P. 89−92.
  166. E. 1959. Functional hermaphroditism and self-fertilization in a serranid fish // Science. V. 129. P. 215−216.
  167. Cousin-Gerber M., Burger G., Boisseau C., Chevassus B. 1989. Effect of methyltestosterone on sex differentiation and gonad morphogenesis in rainbow trout Oncorhynchus mykiss // Aquatic Living Resources. V. 2. P. 225−230.
  168. C. B., Knox D., Walton M. J., Adron J. W. 1977. The regulation of gluconeogenesis by diet and insulin in rainbow trout {Salmo gairdneri) // Br. J. Nutr. V. 38. P. 463−470.
  169. L.W., Evans D.M. 1983. Influence of testosterone and luteinizing hormone analogue on precocious sexual development in the juvenile rainbow trout // Biol. Reprod. V. 29. P. 137−142.
  170. O., Uyeno T. 1972. Triploidy in rainbow trout // Cytogenetics. V. 11. P. 508−515.
  171. R.J., Bennett W.A., Beitinger T.L. 1998. Critical thermal minima and maxima of three freshwater game-fish species acclimated to constant temperatures //Environ. Biol. Fish. V. 51. P. 198−200.
  172. P.G. 1980. Attempts to acclimate embryos and alevins of Atlantic salmon, Salmo salar, and rainbow trout, S. gairdneri, to low pH // Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 37. P.1035−1038.
  173. R. H., Nagahama Y. 2002. Sex determination and sex differentiation in fish: an overview of genetic, physiological, and environmental influences // Aquaculture. V. 208. P. 191−364.
  174. J.T., Swanson P. 1998. Effect of sex steroids on gonadotropin (FSH and LH) regulation in coho salmon (Oncorhynchus kisutch) // J. Mol. Endocrinol. V. 21. P. 291−306.
  175. C.J., Schill D.J., Teuscher D.M. 2000. Relative Return to Creel of Triploid and Diploid Rainbow Trout Stocked in Eighteen Idaho Streams // North American J. of Fisheries Management. V. 20. P. 1−9.
  176. D.P. 1967. Some biology and vital statistics of rainbow trout, (Salmo gairdineri) of Bothwells Creek, Lake Huron. M. Sc. Thesis, University of Guelph. Guelph, Ontario. 126 pp.
  177. A., Katz M. 1964.Rainbow trout brood stocks and strains in American hatcheries as factors in the occurrence of hepatoma // Progressive Fish Culturist. V. 26. P. 167−174.
  178. E. M., Devlin R. H., Piferrer F., Solar I.I. 1996. Hormones and sex control in fish with particular emphasis on salmon // Asian Fisheries Science V. 9(1). P. 1−8.
  179. F.B., Jankun M., Woznicki P. 2006. Chromosome number and erythrocyte nuclei length in triploid Siberian sturgeon Acipenser baeri (Brandt) // Caryologia. V.59. № 4. P. 319−321.
  180. DuBois R.B., Plaster S.D. 1989. Fecundity of spring- and fall-run steelhead from two western Lake Superior tributaries // Transactions of the American Fisheries Society. V. 118. P. 311−316.
  181. J., Bromage N. 2006. Photoperiodic mechanisms and rhythms of reproduction in the female rainbow trout // Fish physiol. and biochem. V. 2. № 1−4. P. 35−51.
  182. D.J. 1978. Salmon and trout culture in Norway. England: Fishing News Books Limited, 195 pp.
  183. N., Ishie S. 1962. Hypophyseal control of reproductive function in teleost fishes // Gen. Comp. Endocrinol. Suppl. V. 1. P. 248−253.
  184. J.M., Elliott J.A. 1995. The effect of the rate of temperature increase on the critical thermal maximum for parr of Atlantic salmon and brown trout II J. Fish Biol. V. 47. P. 917−919.
  185. G., Yeoh C.G., Fitzpatrick M.S., Schreck C.B. 1995. The production of functional sex-reversed male rainbow trout with 17a-methyltestosterone and 1 lb-hydroxyandrostenedione // Aquaculture. V. 131, P.145−152.
  186. B., Staurnes M., Reite O.B. 1988. Effect of low temperature on sea-water tolerance in rainbow trout, Salmo gairdneri II Aquaculture. V. 72. P. 319−328.
  187. E.A. 1980. The relationship between mating system and simultaneous hermaphroditism in the coral // Animal Behaviour. V. 28. Is. 2. P. 620−633.
  188. E. A. 1981. Sexual allocation in a simultaneously hermaphroditic coral reef fish // Am. Nat. V. 117. P. 64−82.
  189. L. 1970. Protogynous sex reversal in the fish Anthias squamipinnis (Teleostei, Anthiidae) regulated by presence or absence of male fish // Nature. V. 227. P. 90−91.
  190. R.E. 1968. The sockeye salmon, Oncorhynchus nerka II Bull. Fish. Res. Board Can. V.162, 422 pp.
  191. A., Jalabert B., Billard R., Breton B., Zohar Y. 1983. The gonadal steroid.1.: Hoar W.S., Randal D.J., Brett J.R. (eds) II Fish Physiology. Academic Press. New York. P. 277−372.
  192. R., Pauly D. (Editors) Fish Base World Wide Web electronic publication. www.fishbase.org, version (10/2010).
  193. E.V., Mikodina E.V. 2009. Blood Serum Proteins of Pink, Chum, Coho and Sockeye Salmons from Two South Kamchatka Water Bodies // Arctic marine ecosystems in an era of rapid climate change. Abstracts. Arctic Ocean Governance, 124 pp.
  194. D. L., Tanner H. A. 1985a. The use of heat shock to induce triploidy in chinook salmon (Oncorhyncus tshawytscha). Department of Fisheries and Wildlife, Michigan State University. (Unpublished paper).
  195. D. L., Tanner H. A. 1985b. Triploidy research progress report. Department of Fisheries and Wildlife, Michigan State University. (Unpublished paper).
  196. J., Peter S., Nagy A., Horvath L., Csanyi V. 1980. Induced triploidy in carp, Cyprinus carpio L. I I J. of Fish Biol. V. 17. P. 667−671.
  197. T. 1862. Notes on some genera of fishes of Western North America. Proc. Acad. Nat. Sci. Phil. 14. P. 329−332.
  198. Goetz F.W., Donaldson E.M., Hunter G.A., Dye H.M. 1979. Effects of estradiol-17b and 17a-methyltestosterone on gonadal differentiation in the coho salmon, Oncorhynchus kisutch. Aquaculture. V. 17. P. 267−278.
  199. K., Bieniarz K., Dobosz S., Grudniewska J. 1991.The effects of 17-betaestradiol on rainbow trout (iOncorhynchus mykiss Walb.) // Pol.Arch.Hydrobiol. V.38. P. 303−309.
  200. C.A., Redner B.D., Simco B.A., Davis K.B. 1983. Feminization of channel catfish by oral administration of steroid sex hormones // Transactions of the American Fisheries Society. V. 112. P. 670−672.
  201. J.R. 1932. The spawning habits of brook, brown and rainbow trout and the problem of egg predators // Transactions of the American Fisheries Society. V. 62. P. 238−248.
  202. Groves D J., Batten, T.F.C., 1986. Direct control of the gonadotropin a teleost,
  203. Poecilia litipinna: gonadal steroids // Gen. Comp. Endocrinol. V. 61. P. 402−416.
  204. S., Yoruk M., Gullu K., Karaca T. 2008. Effects of oral administration of estradiol valerate on gonadal sex differentiation in the rainbow trout, Oncorhynchus mykiss II J. of animal and veterinary advances. V. 7 (11). P. 1400−1404.
  205. G. 1923. Reconnaissance between Skeena River and Stewart, British Columbia. Geol. Surv., Canada. Rep. Par A. P. 290.
  206. Hardy R.W., Fornshell G.C.G., Brannon E.L. 2000. Rainbow trout culture // Fish Culture. P. 716−722.
  207. Harrington, Jr. R. W. 1961. Oviparous hermaphroditic fish with internal self-fertilization// Science. V. 134(3492). P. 1749−1750.
  208. Harrington Jr. R. W. 1967. Environmentally controlled induction of primary male gono-chorists from eggs of the self-fertilizing hermaphroditic fish, Rivulus marmoratus Poey // Biol. Bull. V. 132(2). P. 174−199.
  209. Harrington Jr. R. W. 1968. Delimitation of the thermolabile phenocritical period of sex determination and differentiation in the ontogeny of the normally hermaphroditic fish, Rivulus marmoratus Poey // Physiol. Zool. V. 41(4). P. 447460.
  210. J. M. 1999. Trout production feeds and feeding methods // SRAC Publication. № 223.
  211. J., Olsson P. 2005. Zebrafish sex determination and differentiation: involvement ofFTZ-Fl genes //Reprod. Biol. Endocrinol. V. 3. P. 63.
  212. Horns W.H. Differences in early development among lake trout (Salvelinus namaycitsh) populations // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1985. V. 42. № 4. P. 737−743.
  213. Hou T. 2001. Immunoglobulin M (IgM) secretions suppressed by intraperitoneal injection of testosterone in immature rainbow trout (Oncorhynchus mikiss) II Can. J. Fish. Aquat. Sci. V.40. № 3. P. 78−82.
  214. Jankun M., Kuzminski H., Furgala-Selezniow G. 2007. Cytologic ploidy determination in fish an example of two salmonid species // Environmental biotechnology. V. 3 (2). P. 52−56.
  215. H.R., Oryan S., Ghomi M.R. 2008. Hematological characteristics and correlations of diploid and triploid Caspian salmon Salmo trutta caspius in juvenile stage // J. of Cell and Animal Biol. V. 2. № 12. P. 195−198.
  216. S., Sumpter J.P. 1993. Detergent components in sewage effluent are weakly oestrogenic to fish: an in vitro study using rainbow trout (
  217. R., Simpson T.H., Youngson A.F. 1978. Sex reversal in salmonid culture // Aquaculture. V. 12. P. 115−134.
  218. R., Simpson T.H., Youngson A.F., Whitehead C. 1979. Sex reversal in salmonid culture, part II // The progeny of sex-reversed rainbow trout. Aquaculture. V. 18. P. 13−19.
  219. R., Maclachlan P.M. 1994. Further observations on the sex inversion of Atlantic salmon, Salmo salar L., using 17a-methyltestosterone // Aquaculture and Fisheries Management. Y. 25. P. 855−859.
  220. Jones H.F.R. 1984. A view from the ocean / Mechanisms of migration of fishes.
  221. New York, London. NATO Conference Series. Series IV: Marine Sciences. P. 1−26.
  222. Jordan D.S., McGregor E.M. 1925. Record of fishes obtained by David Starr Jordan in Japan, 1922. Mem. Carnegie Museum. P. 122−126.
  223. . P.J. 1991. Production of non-maturing Atlantic salmon in Tasmania // Canadian Technical Report of Fisheries and Aquatic Sciences. V. 1789. P. 47−71.
  224. M., Urawa S., Fukuwaka M. 1995. Variation in Body Size, Fecundity and Egg Size of Sockeye and Kokanee Salmon, Oncorhynchus nerka // Hatchery Scientific Reports of the Hokkaido Salmon Hatchery. № 49. P. 1−9.
  225. Kaiser J. .1996. Scientists Angle for Answers // Science. V. 274. P. 1837−1838.
  226. H., Suzuki K., Itoh H., Swanson P., Naito N., Nagahama Y., Nozaki M., Nakai Y., Itoh S. 1989. The duality of teleost gonadotropins // Fish Physiol. Biochem. V. 7. P. 29−38.
  227. C.M. 1978. Thermal resistance of rainbow trout from a permanently heated stream, and of two hatchery strains // Prog. Fish-Cult. V. 40. P. 138— 142.
  228. E.D. 1953. Dezadeash map area, Yukon Territory. //Canad Dept. Mines Tech. Serv., Geol. Surv. Canada, Mem 268. P. 68.
  229. M., Aida K., Sakai H., Kaneko T., Asahina K. Hanyu I., Isnii S. 1987.
  230. Radioimmunoassay for salmon gonadotropin // Nippon Suisan Gakkaishi. V. 53. P. 995−1003.
  231. M., Cloud J.G. 1999. Gonadal sex reversal in triploid Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) II J. Exp. Zool. V. 284. P. 466−472.
  232. Endocrine profiles in the females of a twice-annually spawning strain of rainbow trout // Aquaculture. V. 43. P. 13—22.
  233. MacConnell E. 1989. Effects of water reuse on lake trout // Prog. Fish. Cult. V. 51. P. 33−37.
  234. MacCrimmon H.R. 1971. World Distribution of rainbow trout (Salmo gairdneri) // J. of Fisheries Research Board of Canada. V. 28. P. 663−704.
  235. MacCrimmon H.R., Gots. B.L. 1972. Rainbow trout in the Great Lakes // Ontario Ministry of Natural Resources, 66 pp.
  236. MacCrimmon H.R., Gordon J.D. 1981. Salmonid spawning runs and estimated ova production in Normandale Creek of Lake Erie // J. of Great Lakes Research. V. 7. P. 155−161.
  237. E.F., Hoar W.S. 1956. The early development of the chum salmon, Oncorhynchus keta (Walbaum) // J. Morph. V. 98 (1). P. 1−48.
  238. J.A., Held J.A., Weil L.S., Kayes T.B., Thorgaard G.H. 2001.
  239. Manipulation of ploidy in walleyes by heat shock and hydrostatic pressure shock//N. Am. J. Aquacult. V. 63. P. 17−24.
  240. A.J. 1985. Fish Endocrinology // 1st Edn. Timber Press Ltd, Portland. P. 220−241.
  241. McDonald D. G., Freda J., Cavdek V., Gonzalez R., Zia S. 1991. Interspecific differences in gill morphology of freshwater fish in relation to tolerance of low-pH environments // Physiol. Zool. V. 64. P. 124−144.
  242. Reproductive development of male and female tilapia hybrids (Oreochromis niloticus x O. aureus) and changes in mRNA levels of gonadotropin (GtH) Ip and lip subunits // J. Exp. Zool. V. 286. P. 6475.
  243. B. 2001. Environmental requirements and tolerances of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and brown trout (Salmo trutta) with special reference to Western Australia // Fish. Res. rep. West Aust. № 130. P. 1−28.
  244. J.K., Piper R.G. 1988. The effect of reused water on Atlantic Salmon.
  245. . V. 7. P. 29−38. Needham P.P., Tail A.S. 1934. Observation on the spawning of steelhead trout //
  246. Trans. Amer. Fish. Soc. V.64. P. 341−346. Needham P.R., Behnke R.J. 1962. The origin of hatchery rainbow trout // Prog. Fish-Cult. V. 24. P. 156−158.
  247. J.S. 1968. Distribution and nomenclature of North American kokanee Oncorhynchus nerka // J. Fish. Res. Board Canada. V. 25. № 2. P. 409−414.
  248. Oshima M.1934. Life-history and distribution of the fresh-water salmons found in the waters of Japan. Proc. Fifh Pac. Sci. Congr. 5. P. 3751−3773.
  249. T.J., Sheela S.G. 1995. Hormonal induction of sex reversal in fish. Aquaculture. V. 138, P. 1−22.
  250. Pankhurst N.W., Purser G.J., Kraak G., Thomas P.M., Forteath G.N.R. 1996.
  251. Effect of holding temperature on ovulations, egg fertility, plasma levels of reproductive hormones and in vitro ovarian steridogenesis in the rainbow trout Oncorhynchus mykiss II Aquaculture. V. 146. P. 277−290.
  252. Perera W. M. K., Carter C. G., Houlihan D. F. 1995. Feed consumption, growth and growth efficiency of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss (Walbaum)) fed on diets containing a bacterial single-cell protein // British J. of Nutr. V. 73. P. 591−603.
  253. M.S., Meador M.R. 1994. Effects of salinity on freshwater fishes in coastal plain drainages in the southeastern U.S. Rev. Fish. Sci. V. 2. P. 95−121.
  254. Piferrer F, Donaldson E.M. 1991. Dosage-dependent differences in the effect of aromatizable and nonaromatizable androgens on the resulting phenotype of coho salmon (Oncorhynchus kisutch) II Fish Physiology and Biochemistry. V. 9, P. 145−150.
  255. F., Donaldson E.M. 1992. The comparative effectiveness of the natural and a synthetic estrogen for the direct feminization of chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) II Aquaculture. V. 106. P. 183—193.
  256. F. 2001. Endocrine sex control strategies for the feminization of teleost fish // Aquaculture. V. 197, P. 229−281.
  257. Purdom C. E.- Hardiman P. A.- Bye V. V. J.-. Eno N. C.- Tyler C. R.- Sumpter J. P.1994. Estrogenic effects of effluents from Sewage treatment Works // Chemistry and ecology. V. 8. P. 275−285.
  258. Randall C. F., Bromage N. R.3 Duston J., Symes J. 1998. Photoperiod-induced phase-shifts of the endogenous clock controlling reproduction in the rainbow trout: a circannual phase-response curve // J. of reproduction and fertility. V. 112. P. 399−405.
  259. Ray A. K, Bhujel R.C. 2005. Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) culture in the Himalayan Kingdom of Nepal: a success story. APAARI Publication, 43 pp.
  260. Recoubratsky A.V., Gomelsky B.I., O.V. Emelyanova, Pankratyeva E.V. 1992.
  261. Triploid common carp produced by hear shock with industrial fish-farm technology // Aquaculture. V. 108. P. 13—19.
  262. J.M., Patino R. 1993. Reproductive physiology // The physiology of fishes. Edited by Evans D.H. CRC Press. Florida. P. 503−534.
  263. T., Vassvik V., Gjedrem T. 1977. Induction of polyploidy in salmonids by cytochalasin B //Aquaculture. V. 10. P. 65−74.
  264. T., Stoss J., Donaldson E. M. 1982. Production of all female coho salmon (iOnchorhyncus kisutch) by diploid gynogenesis using irradiated sperm and cold shock // Aquaculture. V. 29. P. 67−82.
  265. R. 1962. Morphologische und funk-tionelle Zweigeschlecht Hchkeit bei marinen Teleostiern (Serranidae, Sparidae, Centracanthidae, Labridae) HZool. Jb. Abt. Allg. Zool. Physiol. V. 69. P. 405−480.
  266. , R. 1967. Biandric teleost species. // Gen. Corp. Endocrinol. V. 9, 146 pp.
  267. R. 1972. Hormonal control of the teleost ovary // Amer. Hatching. Cell. Tissue Res. V. 224. № 2. P. 361−368.
  268. R. 1980. Can Sex Inversion Be Environmentally Induced? // Biol, of reproduction. V. 22. P. 49−59.
  269. W.E. 1940. On the origin of the kokanee a fresh-water type of sockey salmon. // Trans. Roy. Soc. Canada, Ser. in, Sect. V.34. P. 121−135.
  270. W.E. 1954. Stock and recruitment. J. Fish. Res. Bd. Can. 11. P. 559−623.
  271. D.R. 1972. Social control of sex reversal in a coral-reef fish // Science. V.177. P. 1007−1009.
  272. D.W., Griffiths J.S. 1983. Effects of elevated thermal regimes on survival of rainbow trout {Salmo gairdneri) // J. Great Lakes Res. V. 9. P. 421−424.
  273. J.F. 1998. Survival and emergence pattern of sea trout fry in substrata of different compositions // J. Fish Biol. V. 53. P. 84−92.
  274. Sacobie C.F.D., Benfey T.J. 2005. Sex differentiation and early gonadal development in brook trout // North American J. of Aquaculture. V. 67. P. 181−186.
  275. S. S., Reza I. M., Bagher A. F., Saeed G. 2010. Study on Levels of 17-Beta Estradiol and Testosterone in Female Kutum Rutilus frisii kutum (Kamenskii, 1901) of Southern Caspian Sea // World J. of Zoology. V. 5. № 3. P. 217−224.
  276. D.P. 1962. Effect of food quantity on fecundity of Rainbow trout. Salmo gaidneri // Fish. Res. Board. Canada V. 19. № 4. P. 715−731.
  277. Schafhauser-Smith D., Benfey T .J. 2002. The reproductive physiology of three age classes of female diploid and triploid brook trout (Salvelinus fontinalis) // Fish Physiol. Biochem. V. 25. № 4. P. 319−333.
  278. Schafhauser-Smith D., Benfey T.J. 2003. The effects of long-term estradiol-17p treatment on the growth and physiology of female triploid brook trout (Salvelinus fontinalis) // General and Comparative Endocrinology. V. 131.1s. 1. P. 9−20.
  279. P. D., Thorgaard G. H. 1983. Increased survival in salmonid hybrids by induced triploidy // Canadian J. of Fisheries and Aquatic Sciences. V. 40. P. 2040−2044.
  280. Scott A.P., Baynes S.M., Skarphedinsson O., Bye Y.J. 1984. Control of spawning time in rainbow trout, Salmo gairdneri, using constant long daylengths // Aquaculture. V. 43. № 1. p. 225−233.
  281. B.G. 1999. A Case History: The Kokanee Stocks of Okanagan Lake // Proc. Biol, and Management of Species and Habitats at Risk. P. 1519.
  282. J. V. 1984. Control of aquatic weeds with exotic fishes. In Courtenay R. and Stauffer J.R. eds. Distribution, biology, and management of exotic fishes. Johns Hopkins University Press, Baltimore, Maryland. P. 302−312.
  283. L. T., Lemoine H. L. 1979. Colchicine-induced polyploidy in brook trout // The Progressive Fish-Culturist. V. 41. P. 86−88.
  284. Solar I J., Donaldson E. M., Hunter G.A. 1984a. Induction of triploidy in rainbow trout (Salmo qairdneri Richardson) by heat shock, and investigation of early growth // Aquaculture. V. 42. P. 57−67.
  285. D.J. 2002. The potential for restocking using all-female triploid brown trout to avoid genetic impact upon // Trout news. № 35. P. 28−31.
  286. Sowers J.R., Beck F.W.J., Eggena P. 1984. Effect of ganglionic blockade withtrimethapan on corticosteroid responses to metoclopramide in Rhesus monkeys // J. Hypertens. V. 2. P. 367−360.
  287. J., Schnell J. 1991. Trout. Stackpole, Pennsylvania, 370 pp.
  288. C.A., Saito T., Takashima F. 1998. Heat induced germ cell deficiency in the teleosts Odonthesthes bonariensis and Patagonina hatchery II Comparative Biochemistry and Physiology. V. 119A (2). P. 637−644.
  289. C. 1861. Notices of certain new species of North America Salmonidae // Ann. Zyc. Nat. Hest. V. 30. P. 306−313.
  290. J. P. 1995. Feminized responses in fish to environmental estrogens // Toxicology letters. V. 82−83. P. 737−742.
  291. J.P., Jobling S. 1995. Vitellogenesis as a biomarker for estrogenic contamination of the Aquatic Environment // Environmental health perspectives. V. 103. P. 173−177.
  292. K., Nagahama Y., Kawauchi H. 1988. Steroidogenic activities of two distinct salmon gonadotropins // Gen. Comp. Endocrinol. V. 71. P. 452−458.
  293. P. Suzuki K., Kawauchi H., Dickhoff W.W. 1991. Isolation and characterization of two coho salmon gonadotropins, GTH I and GTH II // Biol. Reprod. V. 44. P. 229−240.
  294. P., Dickey J.T., Campbell B. 2003. Biochemistry and physiology of fish gonadotropins // Fish Physiol, and Biochem. V. 28. P. 53−59.
  295. A.B. 1998. Lipofuscin in aging and pathology. Vilnius: Publ. House Seimas, 210 pp.
  296. A., Korsgaard B., Joensen J. 1988. Effect of aluminium and calcium ions on survival and physiology of rainbow trout Salmo gairdneri (Richardson) eggs and larvae exposed to acid stress // Aquatic Toxicol. V. 12. P. 291−300.
  297. Thorgaard G. H., Gall G. A. E. 1979. Adult triploids in a rainbow trout family // Genetics. V. 93. ?. 961−973.
  298. Thorgaard G H., Jazwin M. E., Stier A. R. 1981. Polyploidy induced by heat shock in rainbow trout // Transactions of the American Fisheries Society. V. 110. P. 546−550.
  299. B.K. 2001. Plasmalevels of Gonadotropin-II and gonadal sex steroids in triploid catfish, Heteropneustes fossilis (Bloch) // Fish Physiology and Biochemistry. V. 24. P. 9−14.
  300. Tiwary B.K., Kirubagaran R., Ray A.K. 2001. Plasma levels of gonadotropin-II and gonadal sex steroids in triploid catfish, Heteropneustes fossilis (Bloch) // Fish Physiol, and Biochem. № 24. P. 9−14.
  301. Tiwary B. K., Kirubagaran R., Ray A. K. 2002. Gonadotropin releasing hormone (GnRH) neurones of triploid catfish, Heteropneustes fossilis (Bloch): an immunocytochemical study // Comparative Biochemistry and Physiology. Part A. V. 132. P. 375−380.
  302. C.R., Sumpter J.P., Kawauchi H., Swanson P. 1991. Involvement of gonadotropin in the uptake of vitellogenin into vitellogenic oocytes of rainbow trout, Oncorhyncus mykiss I I Gen. Comp. Endocrinol. V. 84. P. 291−299.
  303. C.R., Pottinger T.C., Coward K., Prat F., Beresford N., Maddix S. 1997.
  304. Salmonid follicle-stimulating hormone (GtH I) mediates vitellogenic development of oocytes in rainbow trout, Oncorhyncus mykiss II Biol. Reprod. V. 57. P. 1238−1244.
  305. Van den Hurk R., Slof G. A. 1981. A morphological and experimental study of gonadal sex differentiation in the rainbow trout, Salmo gairdneri II Cell Tissue Research. V. 218. P. 487197.
  306. J.H. 1939. General report of investigations on the McCloud River drainage in 1938 // Calif. Dept. Fish, Game. V. 25(4). P. 272−309.
  307. A.S., Haas M.A. 1984. Effects of dissolved-oxygen depletion on the rainbow trout fishery in Lake Taneycomo, Missouri // Trans. Am. Fish. Soc. V. 113. P. 109−124.
  308. T., Kuzminsi H., Woznicki P., Ziomek E. 2004. Blood cell alteration in triploid brook trout Salvelinus fontinalis (Mitchill) // Acta vet. Brno. № 73. P. 115−118.
  309. W. R., Libey G. S., Chrisman C. L. 1981. Induction of triploidy in channel catfish // Transactions of the American Fisheries Society. V. 110. P. 310−312.
  310. . T. 1969. Sex differentiation // Fish physiology, volume III. Academic
  311. Press, New York. P. 117−177. Yamamoto A., Iida T. 1994. Oxygen consumption and hypoxic tolerance of triploid rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) // Fish Path. (Japan). Y. 29. P. 245−251.
  312. F. 1983. Sex control and manipulation in fish // Aquaculture. V. 33. P. 329−354.
  313. Regulation of fish gonadotropins // International review of cytology. Y. 225. P. 131−185.
  314. Y., Klenke U., Palevitch O., Abraham E., Zohar Y., Gothilf Y. 2006.
  315. Ontogeny of gonadotropin-releasing hormone (GnRH) neurons in hybrid striped bass Morone sp. whole-mount in situ hybridization analysis // Journal of Fish Biology. Supplement A. V. 69. P. 20−30.1.O
  316. Yildiz H.Y.^2006. Plasma lysozyme levels and secondary stress response in Rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum) after Exposure to /' ^ Leteux-Meyer Mixture // Turk. J. Vet. Anim. Sci. № 30. P. 265−269.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!