Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Использование сомаклональной изменчивости в создании форм пшеницы, устойчивых к фузариозу

Диссертация: Использование сомаклональной изменчивости в создании форм пшеницы, устойчивых к фузариозу
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Фузариями поражаются все районированные сорта злаковых культур. Ситуация осложняется тем, что пока в мире нет биологически приемлимых и экономически эффективных способов детоксикации зерна, загрязненного микотоксинами (Монастырский, Ярошенко, 2000). Можно констатировать, что культивирование устойчивых к фузариозу колоса сортов является не только радикальным, но и экологически безопасным методом… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. ФУЗАРИОЗ КОЛОСА ПШЕНИЦЫ И
  • ИСПОЛЬЗОВАНИЕ СИСТЕМЫ КУЛЬТУРЫ IN VITRO В СЕЛЕКЦИИ СОРТОВ, УСТОЙЧИВЫХ К ФУЗАРИОЗУ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
    • 1. 1. Фузариоз колоса и его вредоносность
    • 1. 2. Культура тканей пшеницы in vitro: каллусогенез, регенерация, сомаклональная изменчивость
    • 1. 3. Селекция в системе культуры in vitro
  • Глава 2. УСЛОВИЯ, МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ПРОВЕДЕНИЯ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Условия проведения экспериментов
    • 2. 2. Исходный материал
    • 2. 3. Методы исследований
  • Глава 3. ВНУТРИВИДОВАЯ СТРУКТУРА ПОПУЛЯЦИИ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ФУЗАРИОЗА КОЛОСА И ЗЕРНА В ГРУЗИИ
    • 3. 1. Видовая структура популяции возбудителей фузариоза колоса и зерна на территории Грузии
    • 3. 2. Внутривидовая дифференциация популяции гриба Fusarium
  • си 50 gramineanum Schw
    • 3. 2. 1. Токсичность моноконидиальных изолятов F. graminearium
    • 3. 3. Токсичность гетерогенного штамма
  • Глава 4. ПОЛУЧЕНИЕ СОМАКЛОНОВ ПШЕНИЦЫ, УСТОЙЧИВЫХ К ФУЗАРИОЗУ
    • 4. 1. Получение каллусных культур и растений-регенерантов
    • 4. 2. Оценка и отбор каллусов, устойчивых к действию культу-рального фильтрата гриба Fusarium graminearium и получение растений-регенерантов
  • Глава 5. ОЦЕНКА ПОЛУЧЕННЫХ В СИСТЕМЕ IN VITRO СОМАКЛОНАЛЬНЫХ ЛИНИЙ ЯРОВОЙ МЯГКОЙ ПШЕНИЦЫ НА УСТОЙЧИВОСТЬ К FUSARIUM
  • СЫАМШЕАШиМ 8СН¥
  • ВЫВОДЫ
  • ПРЕДЛОЖЕНИЯ ДЛЯ СЕЛЕКЦИИ

Использование сомаклональной изменчивости в создании форм пшеницы, устойчивых к фузариозу (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Фитопатогенные грибы рода Fusarium, поражающие злаковые культуры, повсеместно распространены в агроценозах всех зерносеющих стран. При поражении продуктивных органов растений, данные возбудители болезней не только снижают урожайность, но и загрязняют зерно митокеинами, которые обладают нефротоксичным, гепатоксичным, иммуносупрессивным или канцерогенным действием по отношению к млекопитающим (Левитин, 2002). По данным ФАО, в настоящее время мировые ежегодные потери сельскохозяйственной продукции, связанные с заражением токсигенными грибами и загрязнением микотоксинами, составляют в год 16 млрд.дол. Эпифитотии фузариоза колоса регулярно наблюдаются во всех зерносеющих странах мира с начала XX века. Очевидно, что данное заболевание преобрело характер пандемии и при благоприятных условиях постоянно развиваются эпифитотии фузариоза колоса. Масштабные и часто неконтролируемые экспорт и импорт зерна между странами способствуют быстрому распространению возбудителей фузариозов по всему миру (Монастырский, 1998,2001; Санин, Макаров, 1999). В связи с этим необходимо проведение глобального мониторинга по целому ряду показателей, основными из которых являются видовая принадлежность, специфика и уровень токсинообразования штаммов основных видов грибов данного рода.

Фузариями поражаются все районированные сорта злаковых культур. Ситуация осложняется тем, что пока в мире нет биологически приемлимых и экономически эффективных способов детоксикации зерна, загрязненного микотоксинами (Монастырский, Ярошенко, 2000). Можно констатировать, что культивирование устойчивых к фузариозу колоса сортов является не только радикальным, но и экологически безопасным методом сохранения урожая. Селекция таких сортов остается важнейшим звеном защиты растений. Использование системы культуры in vitro, дающей возможность применения самоклональной изменчивости, может повысить эффективность селекционной работы и многократно сократить время селекционного процесса. В связи с этим решение многих вопросов по каллусогенезу и регенерации на селективных средах с метаболитами грибов рода Fusarium представляет теоретический и практический интерес.

Цели и задачи исследований. Целью проводимых исследований являлось получение in vitro устойчивых к возбудителю фузариоза колоса форм пшеницы при использовании в качестве селективного агента культурального фильтрата гриба Fusarium graminearum Schw. В задачи исследований входило: -изучение видового состава возбудителей фузариоза колоса в Грузии- -изучение внутривидовой структуры популяции гриба Fusarium graminearum по морфолого-культуральным признакам, токсичности и способности продуцировать ДОН;

— изучение каллусогенной и регенерационной способности ряда сортов мягкой пшеницы саратовской селекции;

— подбор оптимальных условий для наибольшего выхода морфогенных калуссов сортов мягкой пшеницы, используемых в эксперименте;

— отбор каллусов, устойчивых к действию культурального фильтрата гриба F. graminearum и получение растений-регенерантов из отселектированных каллусов;

— оценка полученных сомаклонов мягкой пшеницы на устойчивость к грибу F. graminearum на жестком инфекционном фоне.

Научная новизна исследовании. Впервые изучен видовой состав возбудителей фузариоза колоса на территори Грузии. Изучена внутривидовая дифференциация популяции доминирующего вида Fusarium graminearum по морфолого-культуральным признакам, токсичности и способности продуцировать ДОН. Создана коллекция чистых культур возбудителей фузариоза колоса в Грузии для иммунологических, генетических и биохимических исследований.

Установлен диапазон концентраций культурального фильтрата гриба F. graminearum пригодный для проведения работы по селекции каллусов мягкой пшеницы на устойчивость к данному патогену. Отобраны устойчивые к действию фильтрата каллусы и получены растения-регенеранты. В полевых условиях проведена оценка на устойчивость к F. graminearum полученных in vitro линий пшеницы на жестком инфекционном фоне и отобраны формы, толерантные к фузариозу колоса.

Практическая значимость. Предложенная схема получения устойчивых к фузариозу форм пшеницы с использованием индуцируемой сомаклональной изменчивости, где селективным фактором является культуральный фильтрат патогена, может быть рекомендована в качестве составной части селекционного процесса. Полученные линии мягкой пшеницы (СКЛ 1063−3- CKJI 29−7-CKJI58−19—22—24—26) используются в селекции сортов, устойчивых к этому патогену.

Апробация работы. Материалы диссертации изложены на Международной научной конференции «Развитие научного наследия академика Н. ЛВавилова» (Саратов, 1997), на научно-практической конференции, посвященной 40-летию ВНИИ фитопатологии (Грузия, г. Кобулетти, 1998), на научно-практической конференции СГАУ им. Н. И. Вавилова (Саратов, 2002).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 4 работы.

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, 4 глав, выводов, практических рекомендаций, списка литературы, приложения.

1. Установлено, что видовой состав популяции возбудителей фузариоза колоса в Грузии представлен несколькими видами грибов рода Fusarium: F.graminearumF. culmorumF. avenaciumF. gibbosumF. moniliforme. Констатировано, что популяция доминирующего вида F. graminearum включает 5 морфотипов, различающихся по морфолого-культуральным признакам, токсичности и способности продуцировать дезоксиниваленол (ДОН).2. Установлено, что культуральный фильтрат гетерогенного штамма гриба F. graminearum оказывает ингибирующее действие на рост, как корней, так и надземной части проростков испытуемых сортов яровой мягкой пшеницы Саратовская 29, Саратовская 58 и Саратовская 62. Рекомендуется использование фильтрата патогена в концентрации ниже 30% в качестве селективного агента в системе культуры in vitro.3. В качестве подходящей для каллусогенеза подобрана среда Линсмайер-Скуга (ЛС) с гидролизатом казеина (ГК), на которой происходит активное нарастание каллусной массы и повышение частоты регенерации у клеточных линий испытуемых генотипов. Среда ЛС+ГК может быть рекомендована в качестве инициальной для отбора резистентных каллусных культур на фоне селективного агента.4. К Т Ф гриба F. graminearum в концентрации 5% и 10%Ьказывает ингибирз^щее действие на процессы каллусогенеза, регенерации и ризогенеза при добавлении в питательную среду. Фильтрат является эффективным селективным фактором, позволяющим дифференцировать сортовые популяции пшеницы на формы, различающиеся по устойчивости к данному селективному агенту.5. При проведении оценки семенного потомства регенерантов на жестком инфекционном фоне F. graminearum показала наличие связи между устойчивостью, выявленной в системе культуры in vitro на селективных средах и устойчивостью потомства регенерантов к патогену in vivo.6. Впервые в результате селекции каллусных культур на культуральном фильтрате гриба Р. § г, а т т е, а г и т получены линии яровой мягкой пшеницы,.

(СКЛ1063−3-СКЛ29−7-СКЛ58−19,-22—24—2б)толерантные к данному патогену и отличающиеся от родительских форм более низкой интенсивностью поражения колоса, а также более низким содержанием ДОН в зерне. П Р Е Д Л О Ж Е Н И Я Д Л Я СЕЛЕКЦИИ Схема создания сомаклональных линий, устойчивых к фузариозу колоса Получение чистой культуры Получение культураль, Посадка Получение незрелых — • калусных, соцветий культур Селекция Получение Получение Тестирован Получение Оценка Кг каллусной регенерант. семенного. ие К1 на семенного на жестком ткани на ов Ко потомства 100% КТФ потомства инфекцион 3 4 5 6 7 8 1 — 8 — этапы проведения работ по схеме.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.О. Методы культуры in vitro в селекции томатов наустойчивость к грибным патогенам // Тезисы докладов. Всероссийский съезд по защите растений. — Санкт-Петербург, декабрь 1995.- 562 563.
  2. Л.К., Волкова Г. В. Методы создания искусственныхинфекционных фонов и оценки сортообразцов пшеницы на устойчивость к вредоносным болезням (фузариозу колоса, ржавчинам, мучнистой росе) / /Краснодар, 2000, 28 с.
  3. Л.К. Оценка устойчивости сортообразцов // Защитарастений. — 1994. № 2. — 14−15.
  4. Л.К., Андросова В. М., Бессемельцев В. И. Минимизациянакопления фузариотоксинов в урожае озимой пшеницы. В сб.: Производство экологически безопасной продукции растениеводства. Пущино — 1997. 198−206.
  5. А. Биотехнология в растениеводстве. 1993. Новосибирск.
  6. Л.Т., Мирось С Л ., Тоцкий В. Н., Бабаянц О. В. Генетическаядетерминация и наследование признака устойчивости пшеницы к Fusarium graminearum // Цитология и генетика. — 2001. — № 3. — 23−29.
  7. В.П., Барабанова Е. А. Индукция и гистологическиеособенности соматического эмбриогенеза в культуре ткани злаков // Цитология и генетика. — 1990. 24. № 2. — 60−63.
  8. O.A. Определение фитотоксической активности культурмикроскопических грибов // В кн.: Методы экспериментальной микологии: — Киев, 1973. 165−175.
  9. В.И. Фузарии. Киев: Наук. Думка, 1955, 318 с.
  10. В.И. Фузарии. Киев: Наук. Думка, 1977, 442 с.
  11. В.И., Гвоздяк Р. И., Скрипаль И. Г., Краев В. Г., Эланская И.А, Зирка Т. Н., Мурас В. И. Микроорганизмы — возбудители болезней растений. Киев: Наукова думка, 1988. 552 с.
  12. В.И., Курбацкая З. А. Определитель токсинообразующихмикромицетов. — Киев: Наукова думка, 1990.
  13. A. M. Клеточные технологии и сомаклональнаяизменчивость в селекции пшеницы // Физиология и биохимия культурных растений. — 1996. 28. № 3. — 183−195.
  14. A. M. Сомаклональная изменчивость и биотехнологическиеметоды в селекции злаковых культур // Физиология и биохимия культурных растений. — 1991. 23. № 3. — 222−230.
  15. A. M. Сомаклональная изменчивость и биотехнологическиеметоды в-селекции злаковых культур // Физиология и биохимия культурных растений. — 1991. 23. № 3. — 222−230.
  16. Л.С. Школа цветов. М.-Л. 1954. 154 с.
  17. A. B. , Берестецкий O.A. Фитотоксические метаболиты грибоврода Fusarium Fr. // Микология и фитопатология. — 1983. Т. 17. Вып. 4. — 349−357.
  18. З.Л. Результаты изучения корневых гнилей озимойпшеницы на Кубани и агробиологическое обоснование мер борьбы с ними // Корневые гнили хлебных злаков и меры борьбы с ними, 1970. 53−69.
  19. А.И., Попушой И. С., Гринберг Ш. М., Плачинта Т. В., Фока Е.Е.Влияние грибов рода Fusarium на активность окислительньж ферментов озимой пшеницы // «Бул.Акад. Штинце РСС Молд., Изв. А Н Молд. ССР. Сер. Биохим. и хим. н.», 1978, № 6, с. 29−34.
  20. Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro ибиотехнологии на их основе. / Учебн. Пособие. — М.: ФБК-ПРЕСС, 1998. 160 с.
  21. Р.Г. Культура изолированных тканей и физиологияморфогенеза растений. М.: Наука, 1964. — 272 с.
  22. Р.Г. Экспериментальный морфогенез и дифференциация вкультуре клеток растений. М.: Наука, 1975. — 51 с.
  23. Р.Г., Джардемалиев Ж. К., Гаврилова И.Ф.Каллусообразующая способность эксплантов из разных органов различных сортов озимой пшеницы // Физиология растений. 1986. 33, вып. 2. — С. 350−355.
  24. Р.Г., Джардемалиев Ж. К., Гаврилова Н. Ф. Регенерациярастений из каллусных тканей, полученных из разных органов озимой пшеницы //Физиология растений. — 1986. 33, вып. 5. — 837−842.
  25. Вавилов Н И. Мировые ресурсы зерновых культур и льна. М., Л., 1957.462 с.
  26. Витанова 3., Влахова М., Денчев П., Маринова Е., Ватанов В., Атанасов А. Сомаклональная изменчивость // Физиология и биохимия культурных растений. — 1990. — 22. № 5. — 419−426.
  27. В.А., Аш O . A. Об использовании селективных сред длясоздания in vitro форм пшеницы, устойчивых к корневой гнили // Сельскохозяйственная биология. — 1992. № 3, — 52−55.
  28. В.А., Чеботарева Т. М., Аветисова Л. В. Индукция in vitroкаллуса и растений пшеницы из незрелых зародышей // Сельскохозяйственная биология. — 1987. № 1. — 34−37.
  29. М. С О пьяном хлебе в Южно-Уссурийском крае // Ботан.Записки. 1890−1892. 13−21.
  30. O.E. Действующее начало «пьяного хлеба»: Д и с с: СПб., 1906. 107 с.
  31. А.К., Маликова Н. И., Охрименко Г. Н., СозиновА.А.Получение сомаклональных линий у злаков (Triticum aestivum L. и Hordeum vulgare L.) / /ДАН СССР. — 1985. T.283. № 6. — 1471−1475.
  32. Э.Э. Фузариоз семян яровой пшеницы в Западной Сибири иСеверном Казахстане // Селекция и семеноводство. -1949. № 4. — 5861.
  33. М.В. Семена как источник распространения инфекции //Микология и фитопатология. — 1970. Т. 4. № 2. — 165−169.
  34. М.Ф. Методические указания по изучения устойчивостизерновых культур к корневым гнилям. Л.: ВИР, 1986. 59 с.
  35. H. H. , Афанасенко О. С., Высоцкая Р. И., Мироненко Н. В., Плащев В. М., Белявский Ю. В. Биотехнология и проблемы селекции растений на устойчивость // Защита растений. — 1990. № 8. — 3−5.
  36. .К., Карабаев М. К. Получение каллусов изэксплантатов разных органов пшеницы /Методы молекулярной биологии, биохимии и биотехнологии растений. Алма-Ата: Анука, 1 9 8 8. — С. 120−125.
  37. .К., Карабаев М. К. Получение растений-регенеранговиз каллусов, индуцированных из разных органов пшеницы/Методы молекулярной биологии, биохимии и биотехнологии растений. АлмаАта: Анука. 1988. — 125−129.
  38. Джое Лети, Калашникова Е. А. Влияние генотипа и условийкультивирования зародышей яровой пшеницы на процессы каллусогенеза и морфогенеза // Изв. ТСХА. — 1998. № 3. — 94−99.
  39. В.Ф. Пшеницы Закавказья // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. Л. 1972. — Т 47. вып. 1. 202 с.
  40. .А. Методика полевого опыта. — М.: Агропромиздат, 1985.3 5 1 с .
  41. П.А., Носова H. H. , Тучин C.B., Иванова Ю. Е. Особенностикаллусообразования и регенерации растений в культуре соматических тканей яровых сортов мягкой и твердой пшеницы // Сельскохозяйственная биология. — 1990. № 3. — 56−59.
  42. М.И., Гоник А. Г. Агротехника и развитие фузариоза колоса //Защ, ита растений. — 1994. № 2. — 16.
  43. В.Л. Фузариоз колоса в Западной Европе / / Защитарастений. — 1987. № 12. — 12−13.
  44. М.Я. Фузариоз колоса пшеницы и его вредоносность вусловиях Северо-Осетинской АССР //Тр. Северо-Осетинского с.-х. института. -1960. Т. 21. — 83−94.
  45. В.Г., Шипилова Н. П., Кирцидели И. Ю. Экологическиймориторинг возбудителей фузариоза семян зерновых культур на северо-западе России// Микол. и фитопатол. — 1997. — Т. 31, вып. 2. — 64−69.
  46. В.Г., Назаровская Л. А. Географическая распространенностьи особенности биоэкологии Fusarium graminearum // Микология и фитопатология. — 1998. — Т.32. № 5. — 1−10.
  47. В.Г., Назаровская Л. А. Источники инфекции фузариозаколоса зерновых культур в Краснодарском крае // Защита растений. 1998. № 1 1. — С. 30−31.
  48. В.Г., Шипилова Н. П., Левитин М. М. Видовой составгрибов рода Fuserium на злаках в азиатской части России//Микол. и фотопал.-1999 Т. 34, вып. 4. — 54−58.
  49. М.К., Михайлова И. А. Устойчивость сельскохозяйственныхкультур к болезням // Защита растений. — 1997. № 1. — 0. 11−13.
  50. М. Культивируемые клетки пшеницы и кукурузы:физиологические и Биотехнологические аспекты // Автореф. дисс. доктора биол. наук. — М 1994. 49 с.
  51. М.К., Джаржемалиев Ж. К., Бегалиев М. К., Курбаков О.И, Санабаева Б. А., Шевченко Е. Л. Культура пшеницы in vitro // Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука. 1991. 252−256.
  52. Л.В. Фузариозы полевых культур. «Штиинца», 1989, 254 с.
  53. Л.В., Беляева Н. Патогены, вызывающие пустоколость ищуплость зерна у пшеницы // Сельское хозяйство Молдавии. — 1976. № 7. — С. 31−32.
  54. E .G. Фузариоз пшениц в Азово-Черноморском крае // Изв. Ростовской ст. защ. Раст. 1938. № 9. — 36−38.
  55. Кириенкова А. Е, Павлова Т. В. Фузариоз колоса: от чего зависит егоразвитие // Защита растений. — 1996. № 3. — 19.
  56. Ф.Г., Бабаянц Л. Т. Клечковская Е.А. О селекции озимойпщеницы на устойчивость к фузариозной корневой гнили // Сельскохозяйственная биология. — 1986. № 8. — 96−99.
  57. Т.И. Распространенность и видовой состав возбудителейфузариоза колоса зерновых культур в лесостепной зоне Украины// Микол. и фотопатол. — 2000. — Т. 34, вып. 1. — 42−47.
  58. Е.А. Основные компоненты устойчивости к фузариознымгрибам // Методы биотехнологии в селекции сельскохозяйственных растений. Сб. научных трубов. — Одесса. СГИ, 1992. — 81−88.
  59. Е.А. Эколого-биохимическая характеристика FuseriumSpp. на озимой пшенице в причерноморской степи Украины//Микол. фитопатол. — 1999. — Т. 33, вып. 4. — 280−289.
  60. О.Г., Дунаева С Е . Генетика регенерации в культуре in vitroзлаков // Генетика. — 1994. 30. № 10. — 1432−1440.
  61. О.Л., Монастырский О. А. Фитосанитарное состояниефуражного зерна и зерновых кормов // // АГРО X X I. — 2001. № 5. — 14−15.
  62. Л.Г. Особенности процесса регенерации в каллуснойкультуре зрелых зародышей пшеницы (Triticum aestivum L.) // Сельскохозяйственная биология. — 1995. № 1. — С 78−84.
  63. В.А. Геномная изменчивость соматических клеток растений. 4. Изменчивость в процессе редифференцировки и каллусообразрвания in vitro //Биополимеры и клетка. — 1998. — Т. 14. 4. — 298−319.
  64. Ф.М. Морфофизиология растений. — М.: Высшая школа.1984. 288 с.
  65. М.М. Генетические основы изменчивости фитопатогенныхгрибов. Л: Агропромиздат, 1986.
  66. М.М. Микотоксины // Защита растений. — 1994. № 2. — 1213.
  67. М.М. Фузариоз колоса зерновых культур // Защита и карантинрастений. — 2002. № 1. — 16−17.
  68. М.М., Тачкаева Т. Ю. Сравнительный анализ популяцийFusarium graminearum Schwabe, выделенных с разных органов озимой пшеницы // Микология и фитопатология. — 1991. 25. Х2 1. — 73−79.
  69. А.Н., Кононенко Г. П., Соболева H. A. Содержаниетрихотецинов в колосьях и соломе, пшеницы сорта Обрий, пораженной фузариозом, в момент уборки // Микология и фитопатология. 1989. Т. 23. № 2. — С. 147−150.
  70. Ф., Овсюк Т. Н. Методы in vitro для отбора люцерны нафузариоустойчивость //Методы биотехнологии в селекции сельскохозяйственных растений. Сб. научных трудов. — Одесса. СГИ. 1 9 9 2. — С. 39−48.
  71. Л.С., Мальцев В. А. О новом порядке приемки, контроля ииспользования фузариозной пшеницы и ячменя // Защита растений. 1997. № 8. — С. 23−25.
  72. Масленников С Е. Методы культуры каллусов и клеток в созданииформ люцерны, устойчивых к фузариозу // Автореф. дисс. канд. биол. н, а у к. — М. 1992.21 с.
  73. А. Фузариоз — реальная опасность считают ученые ФРГ//Агропромыпшенный комплекс России. — 1990. № 5. — 20−23.
  74. О.Ю. Получение сомаклональных вариантов пшеницы илюцерны, устойчивыз к фузариозу // Биология культивируемых клеток растений и биотехнология / Тезисы доклада на II Международной конференции. Алма-Ата. 1993. Т. 1. — 112.
  75. Методические рекомендации по обнаружения, идентификации иопределению содержания дезоксиниваленола (валитоксина) и зеараленона в зерне и зернопродуктах. № 5177−90./ Минздрав СССР. М, 1990.
  76. Методы селекции и оценки устойчивости пшеницы и ячменя кболезням в странах-членах СЭВ // Прага, 1988, с. 321.
  77. М. Определение некоторых происхождений рода Fusarium, возбуждающих фузариоз пшеницы в Болгарии // Растен. Науки. — 1974. Хо 1 0. — С. 142−145.
  78. O.A. Зараженность семян токсинообразующимигрибами // АГРО X X I. — 2000. № 4. — 6−7.
  79. O.A. Мониторинг токсинообразующих грибовзерновых злаков // Агрохимия. — 2001. № 8. — 79−87.
  80. O.A. Проблемы токсикогенеза возбудителей фузариозазерновых культур // Фузариоз колоса зерновых злаковых кльтур. Тезисы докладов. Научно-координационное совещание, Краснодар, 1922 октября 1992 г. Краснодар, 1992.
  81. O.A. Состояние и проблемы исследования опасных длятеплокровных микотоксинов //Вестник Российской Академии сельскохозяйственных, наук. — 1993. JVfe 6. — 26−29.
  82. O.A. Токсины фитопатогенных грибов // Защитарастений. — 1996. № 3. — 12−14.
  83. O.A. Факторы эволюции высокотоксичных штаммоврода Fusarium в агроценозе // Сельскохозяйственная биология. — 1998. № 1. — С. 28−34.
  84. O.A., Коган Ю. Д. Проблемы исследованиятоксиногенных грибов, поражаюпщх зерновые культуры // Сельскохозяйственныя биология. — 1998. № 3. — 27−36.
  85. O.A., Ярошенко В. А. Биопрепараты против развитиятоксиногенных грибов на зерне // Защита и карантин растений. — 2000. № 3. — С. 32−33.
  86. O.A. Скрытая токсичность продуктов питания и кормов/ /Агрохимия. 1995. № 7. с. 14−20.
  87. Г. С., Бутенко Р. Г., Тихоненко Т. И., Прокофьев М.И.Основы сельскохозяйственной биотехнологии. М.: Агропромиздат. 1990.384 с.
  88. .Г., Гогава Т. И., Мепаришвили У.ю горчиладзеЛ.А., Пыжикова Г. В. Методические аспекты оценки устойчивости пшеницы к септориозу // Сообщения, А Н Груз. ССР. — 1989. 136 (3). 685−688.
  89. Наумов Н. А, Пьяный хлеб //Наблюдения над несколькими видами родаFusarium. Пг. 1916. 216 с.
  90. Н.М. Болезни сельскохозяйственных растений. Сельхозгиз. Л.:1940. с. 268−278.
  91. H. A. Анализ семян на грибную и бактериальную инфекциюЛ., изд-во Колос. — 1970. — 208 с.
  92. Ф.Е. Болезни кукурузы. Сельхозгиз, 1957. 230 с.
  93. Т.Ф., Чкаников Д. И. Токсины фитопатогенных грибов и ихроль в развитии болезней растений. М., 1987. 53 с.
  94. К.В., Левитин М. М. Направление исследований длярешения проблемы фузариоза колоса зерновых культур //Вестник сельскохозяйственной, науки. — 1990. № 10 (409). — 64−67.
  95. Т.В., Измайлова А. Г. Фузариоз колоса пшеницы вКраснодарском крае / / Защита растений. -1995. № 11. — 28−29.
  96. Т.В., Тимофеева О. В., Измайлова А. Г., Кочубей К.Ю.Первичное заражение пшеницы возбудителем фузариоза колоса // Защита растений. — 1994. № 11. — 29.
  97. Л.В. Возобновление, развитие и сохранение желтойржавчины в Грузии // Сообщения, А Н Грузинской ССР. — 1976. 76 (1). 173−176.
  98. H. A. Болезни культурных злаков Южно-Уссурийскогокрая. СПб. 1981.43 с.
  99. Н.Д. Эффективный путь получения регенерантов пшеницы иячменя в культуре соматических клеток на основе органогенных штаммов // Тр. IV Всесоюзн. Съезда ВОГиС им. Н. И. Вавилова. Кишинев: Штиинца. 1981. ч. 1. — 186.
  100. Н.М. Грибная флора грубых кормов. Киев: Изд-во, А НУССР, 1953.486 с.
  101. В.А. Генетический контроль размножения клеток иэволюция клеточного цикла // Цитология. — 1982. 24. № 12. — 13 791 392.
  102. А.И. Грибы рода фузариум М.: Сельхозгиз, 1950. 415 с.
  103. С., Макаров A. A. Биологические, агроэкономические иэкономические аспекты фитосанитарного мониторинга // Вестник защиты растений. — 1999. № 1. 62−66.
  104. А.Х. Микотоксикозы. М.: Сельхозгиз., 1954. 216 с.
  105. А.И., Мартынов С П ., Мамонов Л. К. Генетикостатистические подходы к теории селекции самоопыляющихся растений. — Алма-Ата. — Наука. — 1982. — 198 с.
  106. А.Я., Федорова Р. И. Инфекция семян хлебных злаков. М.:Колос, 1984, 95 с.
  107. В.А. Биотехнология растений. Клеточная селекция. Киев: Наук. Думка, 1990. 280 с.
  108. И.А., Есауленко Е. А. Фузариоз колоса пшеницы // Защита икарантин растений. — 2000. № 9. — 24−25.
  109. И.А., Есауленко Е. А. Фузариоз колоса пшеницы // Защитарастений и карантин растений. — 2000. № 9 — 24−25.
  110. Т.М. Роль фунгистатических соединений пшеницы вустойчивости к ржавчине и фузариозу колоса // Автореф. дис. канд. биол. наук. Краснодар 2001. — 24 с.
  111. Л.А., Миладзе Л. А., Наскидашвили Ш. Г., Рогожина Е. А. Обединстве популяции гриба Puccinia graminis Pers. F. Sp. Tritici Eriks на территории Закавказья // Сообщения, А Н Грузинской ССР. — 1989. 134 (2). -С .405−407 .
  112. М. С, Жариков Г.А., Терехов В. И., Глебов Е. И., Денисов Д. В., Бегунов И. И. Проблема фузариоза пшеницы // АГРО X X L — 2000. № 1. — С 2−3.
  113. Г. Д. Клональная изменчивость токсичности и вегетативнаясовместимость Fuserium graminearum// Микол. и фитопатол. — 2000. Т.34, вьш.2. — С 63−66.
  114. Г. Д., Павлова В. В., Дорофеева Л. Л., Девяткина Г. А., Кошуховская В. А. Влияние степени токсичности Fuserium graminearum на поражение озимой пшеницы фузариозом колоса// Микол. и фитопатол. -1999. — Т. 33, вып. 2. — 125 -129.
  115. В.М., Папазян Н. Д. Условия получения каллуса ирегенерантов в культуре зрелых зародышей пшеницы. Апомикс и эмбриология растений. Изд-во Саратовского университета, 1983, вып. 5. 124−130.
  116. Л.Г., Козырева ОТ. Каллусогенез и регенерация в культуретканей пшеницы // Генетические механизмы устойчивости растений к неблагоприятным факторам среды: Тезисы сообщ. Иркутск. Новосибирск. 1991. ПО.
  117. О.В. Культура тканей in vitro короткостебельной мягкой итвердой пшеницы //Автореф. дисс. канд. сельскохоз. наук. Саратов. 2001.24 с.
  118. Тупеневич С М. Фузариоз пшеницы и результаты его изучения //Труды Воронежской оп. ст. 1936. Вып. 1 (XII). 1−29.
  119. В.А., Кравченко Л. В. Микотоксины. — М., Медицина, 1985.319 с.
  120. Тучин С В. Моделирование стресса обезвоживания в культуреизолированных тканей пшеницы и его биологриеские последствия //Автореф. дисс. доктора биол. наук. Москва. 2000. 46 л.
  121. H. A. , Симон А.М Фузариоз колоса озимой пшеницы вцентральных районах России // Защита растений. -1994. № 1. — 3034.
  122. В.А., Торопова Е. Ю., Чулкин Ю. И., Стецов Г.Я.Агротехнический метод защиты растений. М. ООО «Изд-во ЮКЭЛ». 2 0 0 0. — С. 198−204.
  123. И.Ф. Культура клеток и тканей пшеницы in vitro исоматический эмбриогенез // Автореф. дисс. канд. биол. наук. СанктПетербург. 2001. 45 с.
  124. И.Ф. Соматический эмбриогенез и селекция злаковыхкультур (Монография). Уфа. Изд-во Баш. ГУ. 1999. 166 с.
  125. И.Ф., Асфандиярова P.P. Влияние фитотоксиныхметаболитов Bipolaris sorokiniana (Sacc.) S H. на рост каллусной ткани и регенерацию растений пшеницы // Физиология растений. — 1991. — Т. 38, вып. 82. — 399−404.
  126. Л.А., Тырнов B. C. , Папазян Н. Д., Ишин А. Г. Морфогенез истабильная регенерация растений в каллусных культурах, полученных от зрелых видов Sorghum (Роасеае) // Бот. Журнал. — 1989. Т. 74. № 12. — С. 1740−1746.
  127. Л.А., Тырнов B. C. , Суханов В. М. Регенерация растений вкультуре тканей сорго. Докл. ВАСХНИЛ, 1984, № 4, с. 7.
  128. А.А. Очерк распространения болезней растений в 1907 г.СПб. 1908. с.534−550.
  129. Abbas П.К., Mirocha Ch. S., Berdal B.P. Isolation and toxicity of Fusariumspecies from various areas of Norvay //Acta Apric. Scand. — 1987. — V.37, № 4. — P. 427−534.
  130. Ahloavalia B.S. , Sherington J. Transmission of somaclonal variation inwheat // Euphytyca 1985, 34, № 2, p. 525−537.
  131. Arcioni S., Pezzotti M., Daminiani F. In vitro selection of alfalfa plantsresistant to Fusarium oxysporum f sp. medicaginis // Theor. Appl. Genet. 1987.-74.-P.700−705.
  132. Baenzinger D.S., Kudirka D.T., Schaeffer G.W., Lasar M. D. Thesignificance of doubled haploid variation // Gene manipulation in plant improvement: X V I Stadler genet. Symp. Columbia. 1984. — P. 385−414.
  133. Bajaj Y .P. Biotechnology in wheat breeding // Biotechnology in agricultureand forestry. Berlin. 1990. V. 13. -P .3−23.
  134. Ban T., Sumaga K. Genetic analysis of. Proceedings of the 9* Intemat. Wheat Genetics Symposium, 2−7 August, 1998, Canada. V. 3. P. 192−196.
  135. Behnke M. Selection of dihaploid potato callus for resistance to the culturefiltrate of Fusarium oxysporum //Z.Pflanzenzucht, 1980. V o l. 85, H. 2. S. 254−259.
  136. Betina V. Mycotoxins: chemical, biological and environmental aspects. Amsterdam eds., 1989/
  137. Blaydes D.F. Interaction of kinetin and various inhibitors in the growth ofsoybean tissue //Physiol. Plant., 1966. 19, p. 748−753.
  138. Brown C, Brools F.J., Pearson D., Mathias R.J. Control of embryogenesisin immature wheat embryo callus using increased medium osmolarity and abscisic acid // J. Plant Physiol. — 1989. — 133, № 6. — P. 727−733.
  139. Carman J.G., Campbell W.F. Factors affecting somatic embryogenesis inwheat // Biotechnology in Agriculture and Forestry. Berlin, 1990, v. 13. P. 66−87.
  140. Carman J.G. Improved somatic embryogenesis in wheat by partialsimulation of the inovulo oxygen, growth-regulator and dessication environments//Planta, 1988. 175/P.417−425.
  141. Chawla H.S., Wensel Y. In vitro selection for fusaric acid resistance barleyplants // Plants Breeding, 1987. V. 99. № 2. P. 159.
  142. Chelkovski J., Manka M. The ability of Fusaria pathogenic to wheat, barleyand com to produce zearalenone // Phytopathol. Z. — 1983. — V. 106. P.203.
  143. Chin J.C., Scott K. J. Studies on the formation of roots and shots in wheatcultures // Ann. Bot. (Gr.Brit.) 1977, 47, № 173, p. 473−481.
  144. De Klerk G. How to measure somaclonal variation // Acta bot, 1990, 39, X22, p. 129−144.
  145. Eapen S., Rao P. S. Plant regeneration from callus cultures of durum andemmer wheat //Plant Cel l. Rep., 1982. 1. P.215−218.
  146. Evans D .A. Genetic basis o f somaclonal variation in tomato // Plant Tissueand Cel l Culture Application to Crop Improvement: Proc. Int. Symp. Olomouc. Sept. 24−29, 1984. Prague, 1984. — P. 259−265.
  147. Evans D .A. Somaclonal variation — genetic basis and breeding applications. Trends Genet. -1989. — 5, № 2. — P. 46−50.
  148. Freeling M. , Woodman J.C., Cheng D.S. Developmental potentials of maisetissue cultures // Maydica. — 1976. V .2. — P. 97.
  149. Gamborg O.L., L a Rue T .A .G. Ethylene produced by plant cells insuspension cultures. — Nature, 1968. v. 220, № 5167, p. 604.
  150. Greco B. , Tanzarella O.A., Blanco A. Plant regeneration from leaf basecallus in durum wheat (Triticum durum Desf.). //Cereal Res. Commun., 1984, 12. P. 171−177.
  151. Hewlett P .D. Cereal seed-bom disease-changing control procedures // Adas.Q. Rev. — 1974., № 14. — P.41−52.
  152. Ingram D.S., MacDonald M. V. In vitro selection of mutants. In: NuclearTechniques and in Vitro Culture for Plant Improvement. — Vienne. 1986, p.241−258.
  153. Larkin P.J., Ryan S.A., Brettel R.J.S., Scowcroft W.R. Heritable somaclonalvariation in wheat // Theor. Appl. Genet/. 1984. 67. P. 443−456.
  154. Larkin P.J., Scowcroft W.R. Somaclonal variation — a novel source ofvariability from cell cultures for plant improvement // Theor. A n d Appl. Genet, 1981. V. 60, № 4. p. 197
  155. Larkin P.J., Scowcroft W.R. Somaclonal variation and eyespot toxintolerance in sugarcane // Plant Cell Tissue Organ Cu l t, 1983, v. 2, № 1. P. m. 1. l l
  156. Larkin P J. , Brettel RJ .S. , Ryan S.A. Somaclonal variation: impact on plantbiology and breeding strategies. Biotechnology in Plant Science. Relevance to Agriculture in the Eighties. Orlando-San-Diego-New York. E.a., 1985: 83−100.
  157. Lazar M .D. , Collins G.B., Vian W.E. Genetic and Environmental effects onthe growth and differentiation of wheat somatic cell cultures // Herd., 1983. 74. № 5. P. 353−357.
  158. Linsmaier E. M. , Scoog F. Organic growth factor requirement of tobaccotissue cultures // Physiol. Plant, 1965. 18 № 1. P. 100−127.
  159. Lor i G. , Monaco C, Wolean C. Pathogenic and toxicogenic behaviour ofFusarium graminearum population in Argentina. Cereal Research Communication, 1997, 3: 367−368.
  160. Maddock S.E., Semple J.T. Field assessment of somaclonal variation inwheat // Exp. Bot. — 1986. — 37. — P. 1065.
  161. Nedelnik J., Binarova P., Nedbalkova B. Select Medicago sativa L. na212. resistance vuici fytotoxinum Fusarium spp. In vitro. Orch. Rostl., 1990, 26, 1: 1−9.
  162. Ozias-Akms P., Vasil J .K. Plant regeneration from cultured immatureembryos and inflorescence ofFriticum aestivum L. (wheat): Evidence for somatic embriogenesis // Protoplasma, 1982, 110, 2, p. 1166−1168.
  163. Petterson H. Trichothecines occurrence in European cereals — e review. Fusarium taxonomy and pathogenesis. Martin Frana. Italia. 1995.
  164. Proctor R., Hohn F., McCormick S. Reduced virulence of Gibberella zeaecaused by disraption of a trichothecene toxin biosynthetic gene. Molecular Plant-Microbe Interaction, 1996, 8. P. 593−601.
  165. Purss G.S. The relationship between strains of Fusarium graminearumSchwabe causing crown rot various gramineous hosts and Stalk rot of maize in Queensland // Austral. J. Agrie Res. — 1969. — V. 17, № 2. — P. 257−264.
  166. Rines H.W., McCoy T.J. Tissue culture initiation and plant regeneration inhexaploid species of oats // Crop Sci., 1981, V. 21, № 6. P. 837.
  167. Scheffer R.P., Livingston R.S. Host-selective toxins and their role in plantdisease // Science, 1984, V. 223, № 4631, p. 17−21.
  168. Schroeder H.W., Christensen J.J. Factors affecting resistance of wheat scabcaused by Gibberella zeae // Phytopathology. 1963. V o l. 53, 7. P. 381 382.
  169. Scott P.R., Benedikt P.W. Septoria, Fusarium ear blight // Annual Report ofthe Plant Breeding Institute, 1986, p. 97−99.
  170. Sidhu G.S. Sexual and Parasexual variability in soil fungi with specialreference ro Fusarium monilifoirme // Phytopathology. — 1983. V. 73, № 6. — P. 952−955.
  171. Sikharulidze Z., Naskidashvili G., Smimova L. A. Virulence structure of thewheat leaf rust population in Georgia during 1987−1991. Cereal Rust and Powdery Mildew Bulletin. 21 (182) c. 35−40.
  172. Singh R.P., M a H. , Rajarem S. Genetic analysis of Inheritance to scab inspring in spring wheat Frontana // Plant Dis. — 1995. — 10, № 3. — P.238 240.
  173. Sitton J.W., Cook R.J. Comparative morphology and survival ofchlamidospores of Fusarium roseum «Culmoram» and «Graminearum» //Phytopathology. — 1981. — V.71. Xo 1. — P. 85−90.
  174. Smith J., Levis C, Anderson J. Mycotoxins in human nutrition and health //Glasgow, University of Strathclyde. — 1998. — X2 10. — P. 20−24.
  175. Snijders C, Krechting C. Inhibition of deoxynivalenol translocation andfungal colonization in Fusarium head blight wheat. In: Durability of disease resistance. Dordrecht. — 1993. — P. 348−349.
  176. Snijders C .H .A. The inheritance of resistance to head blight caused by F. culmorum in winter wheat // Euphytica. — 1990. 50. — P. 11−18.
  177. Teich A. H. Epidemiology o f wheat (Triticum aestivum L.) scab caused btFusarium spp. // Fusarium- Mycotoxins, Taxon and Pathogenecity: Semin. Warsaw. Sept. 8−10 1987. Amsterdam eds., 1989. -P. 262−282.
  178. Tomasovic S., Javor P. Improvement of resistance to Fusarium head blight (Fusarium graminearum Schw.) in common wheat at the Be Institute Zagrev // Ann. Wheat Newsletter, 1997, vol. 43, p.88−91, Kansas State Unversity, U S A
  179. Toth Attila. Dominance condition of Fusarium species occurring in winterwheat kernels in pest county. Cereal Research Communication, 1997, 3: 625−627.
  180. Turner J .A. Fusarium ear blight and rises of mycotoxin contamination ofgrain in the U K. Annual Science Review, 1997−1998, p. 10−13.
  181. Vasi l J .K. Developing cell and tissue culture systems for improvement ofcereal and grass crops // J. Plant Physiol. 1987. Vo l. 128. P. 193−218.
  182. Vasi l J .K. Somatic embryogenesis and plant regeneration in cereals andgrasses //Plant Tissue Culture. 1982, Proc. Int. Congr. Tokyo, 1982. P. l O l 104.
  183. Vassilev V. Fusarium head blight resistance in wheat // Proc. of the 5*1.ternational Wheat Conference, 10−14 June, 1996, Ancara, Turkey, p. 164 165.
  184. Visconti A. , Chelkowski J., Bottalico A. Deoxinivalenol and 3acetylvalenol-mycotoxins associated with wheat head fusariosis in Poland //Mycotoxin Res., 1986, vol. 2. P.59−64.
  185. Wang G., Mil le r J. Effect of Fusarium graminearum metabolites on wheattissue in relation to Fusarium head blight resistance / / Phytopathol. Zeitschrift. — 1998. 2. — P. 118−125.
  186. Wick i W., Messmer M. , Winzeler M. , Stamp P., Schmid J.L. In vitroscreening for resistance against Septoria nodurum blotch in wheat // Theor. Appl. Genet., 1999, 8/P/1273−1280.
  187. Wiese M. V. Compendium of wheat disease // Phytopathol. Sco. — 1987. — P.112.
  188. Yoder O.C. Genetic analysis of toxin production in fungi. In: Phytotoxinsand plat pathogenesis. Berlin etc., 1989. p.43−60.
  189. Yoder O.C. Use of pathogen-produced toxins in genetic engineering ofplants. A n Agricultural Perspictive. Ed. T. Kosuge et al., N. Y. , London, 1983, p.335−353.
  190. Zhuping Yang, Xiaoyan Yang, Dechong Huang. Studies on somaclonalvariations for resistance to scab in bread wheat (Triticum aestivum L.) through in vitroselection for tolerance to geoxynivalenon //Euphytica, 1998, 101 (2), p. 213−219.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!