Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Некоторые экологические аспекты перехода холерных вибрионов в некультивируемое состояние

Диссертация: Некоторые экологические аспекты перехода холерных вибрионов в некультивируемое состояние
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Восстановление культивируемых свойств экспериментально полученных в 11 микрокосмах НФ холерных вибрионов при изменении температуры их содержания до 20 °C подтверждает прежде всего представление об адаптивном характере измененный и обратимости процесса: культивируемое состояние (КС) ←«некультивируемое состояние (НС). Получение результатов реверсии в КС предпочтительно «молодых» НФ (пяти -15… Читать ещё >

Содержание

  • ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • Глава 1. Влияние некоторых экологических факторов на продолжительность сохранения холерных вибрионов в воде поверхностных водоемов
  • Глава 2. Некультивируемые формы грамотрицательных бактерий, как форма переживания неблагоприятных условий
  • Глава 3. Люминесцентные красители в оценке жизнеспособности бактериальных клеток
  • СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • Глава 4. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 4. 1. Бактериальные штаммы
    • 4. 2. Реактивы и красители
    • 4. 3. Питательные среды
    • 4. 4. Оборудование
    • 4. 5. Методы исследования
      • 4. 5. 1. Получение некультивируемых форм холерных вибрионов
      • 4. 5. 2. Метод прямого прижизненного подсчета бактериальных клеток
      • 4. 5. 3. Использование люминесцентных красителей в оценке жизнеспособности бактериальных клеток
      • 4. 5. 4. Методы изучения возможности реверсии некультивируемых форм холерных вибрионов
    • 4. 6. Статистическая обработка данных
  • Глава 5. ИЗУЧЕНИЕ ПРОДОЛЖИТЕЛЬНОСТИ ВЫЖИВАНИЯ ХОЛЕРНЫХ ВИБРИОНОВ РАЗЛИЧНЫХ СЕРОГРУПП В КУЛЬТИВИРУЕМОМ СОСТОЯНИИ И ПОЛУЧЕНИЕ ИХ НЕКУЛЬТИВИРУЕМЫХ ФОРМ В МИКРОКОСМАХ В УСЛОВИЯХ постоянного
  • ИСКУССТВЕННОГО ОСВЕЩЕНИЯ И БЕЗ НЕГО

5.1. Продолжительность сохранения токсигенных и нетоксигенных холерных вибрионов 01 и 0139 серогрупп в культивируемом состоянии и получение некультивируемых форм в микрокосмах речной воды без искусственного освещения.

5.2. Продолжительность сохранения токсигенных и нетоксигенных холерных вибрионов Ol, Ol39 и поп 01/0139 серогрупп в культивируемом состоянии и переход в некультивируемую форму в микрокосмах морской воды без искусственного освещения.

5.3. Продолжительность сохранения токсигенных и нетоксигенных холерных вибрионов Ol, Ol39 и non Ol/Ol39 серогрупп в культивируемом состоянии и получение некультивируемых форм в

0.85% растворе NaCl без искусственного освещения.

5.4. Сохранение токсигенных и нетоксигенных холерных вибрионов

01, 0139 и поп 01/0139 серогрупп в культивируемом состоянии и образование некультивируемых форм в дистиллированной воде без искусственного освещения.

5.5. Продолжительность сохранения токсигенных и нетоксигенных холерных вибрионов Ol и 0139 серогрупп в культивируемом состоянии и получение некультивируемых форм в микрокосмах речной воды при постоянном искусственном освещении.

5.6. Сохранение токсигенных и нетоксигенных холерных вибрионов Ol, 0139 и поп Ol/Ol39 серогрупп в культивируемом состоянии и переход в некультивируемую форму в микрокосмах морской воды при постоянном искусственном освещении.

5.7. Продолжительность сохранения токсигенных и нетоксигенных холерных вибрионов 01, 0139 и поп 01/0139 серогрупп в культивируемом состоянии и получение некультивируемых форм в

0.85% растворе NaCl при постоянном искусственном освещении.

5.8. Сохранение токсигенных и нетоксигенных холерных вибрионов

01, 0139 и поп 01/0139 серогрупп в культивируемом состоянии и образование некультивируемых форм в дистиллированной воде при постоянном искусственном освещении.

5.9. Выявление различий в сроках перехода холерных вибрионов в некультивируемое состояние в различных микрокосмах.

5.10. Оценка достоверности различий в скорости перехода холерных вибрионов в некультивируемое состояние в микрокосмах различной освещенности, солености среды и температуры содержания.

Глава 6. ИЗУЧЕНИЕ ВОЗМОЖНОСТИ ОЦЕНКИ ЖИЗНЕСПОСОБНОСТИ НЕКУЛЬТИВИРУЕМЫХ ФОРМ ХОЛЕРНЫХ ВИБРИОНОВ.

6.1. Использование люминесцентных красителей для оценки жизнеспособности холерных вибрионов в культвируемом и некульти-вируемом состоянии.

6.2. Использование метода прямого прижизненного подсчета клеток для оценки жизнеспособности холерных вибрионов в некульти-вируемом состоянии.

6.3. Получение реверсии некультивируемых форм холерных вибрионов в культивируемое состояние при изменении температурного режима содержания микрокосм.

6.4. Использование высокопитательных сред для получения реверсии некультивируемых форм холерных вибрионов in vitro.

Некоторые экологические аспекты перехода холерных вибрионов в некультивируемое состояние (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы.

Седьмая пандемия холеры характеризуется широкой циркуляцией холерных вибрионов в воде поверхностных водоемов на фоне обширного загрязнения окружающей среды, в том числе гидросферы, различными продуктами, связанными с антропогенной деятельностью.

Известны сезонные колебания численности представителей рода Vibrio, в том числе и холерных вибрионов, в эстуариях, где они находятся в ассоциациях с водными растениями и животными и подвержены воздействию органических веществ, температуры, солености и др. факторов (Simidu U. et al., 1971; Sochard H.K. et al., 1979; Смоликова Л. М., 1977, 1985; Colwell R.R., 1986 и другие). Одной из форм адаптации холерных вибрионов к неблагоприятным условиям существования отдельными авторами (Colwell R.R., 1985; Roszak D.B. et al., 1987; Четина Е. В. с соавт. 1992; Гинцбург А. Л., Романова Ю. М., 1993 и др.) рассматривается способность перехода в некультивируемое состояние (НС).

Впервые факт существования некультивируемых форм (НФ) Vibrio cholerae 01 описали Colwell R.R. et al. (1981), высказав мнение о значимости этой формы холерных вибрионов в выживании возбудителя холеры в окружающей среде. Их изучению в настоящее время посвящены работы Roszak D.B. et al. (1987), Романовой Ю. М. и Гинцбурга А. Л. (1993, 1997), Marcher F. et.al.(1999), Соколенко А. В., (2000), Del Mar Leo M. et al. (2000) и других исследователей. По мнению исследователей, переход в «НФ» — это стратегия выживания бактерий в неблагоприятных для существования условиях. При наступлении благоприятных условий микроорганизмы из некультивируемого состояния возвращаются в культивируемое.

Faruque S.M. с соавт. (1998), анализируя вопросы экологии токсиген-ных холерных вибрионов, отводит НФ роль «хранителей» генетических элементов патогенности. По мнению Четиной Е. В. и Грижебовского Г. М. с соавт^ 1993), эпидемическая значимость некультивируемых форм холерного вибриона подтверждается отсутствием реорганизации фрагментов vct-оперона.

•t V тотальной ДНК холерных, вибрионов, обнаруженной в воде поверхностных водоемов.

В связи с важностью изучения экологических аспектов перехода бактерий в некультивируемое состояние особого внимания заслуживают работы, посвященные роли биотических и абиотических факторов водоёмов в этом процессе. Исследованиями Islam M.S. et al. (1998, 1999) показано влияние водорослей Anabaena variabilis на переход холерных вибрионов в НС. В отдельных сообщениях описаны факты сохранения холерных вибрионов в НФ в симбиозе с копеподами (Sochard M.R. et al., 1979). Имеются сведения о влиянии температуры на образование НФ V. vulnificus, которые в НФ переходят при +5°С, независимо от содержания питательных веществ в среде. Соколенко А. В. (2000), Савельев В. Н. с соавт. (2001) получали НФ холерных вибрионов на голодной среде и в некоторых других модельных системах (морская вода, речная и др.) при +4 °С.

По мнению Домарадского И. В. (1997), одной из причин перехода бактерий в НФ является нехватка питательных веществ и снижение температуры. По мнению автора, под влиянием голодания бактерии стремятся выжить путем перехода в НС и под влиянием температуры перестраивают свой метаболизм так, чтобы это позволило им сохранить жизнеспособность.

Большинство вспышек холеры, связанных с водными путями распространения инфекции, имеют выраженный сезонный характер. Известно, что холерные вибрионы из объектов окружающей среды в культивируемом состоянии выделяли при температуре воды 17,5- 22- 25 °C (Мединский Г. М. с соавт., 1977; Артемова Т. В. с соавт., 1978, и др.). В то же время, несмотря на большое количество работ, посвященных обнаружению и сохранению холерных вибрионов в водоёмах в культивируемом состоянии и значению отдельных факторов воздействия на их переход в НФ, закономерности и экологические аспекты процесса «Культивируемое состояние — Некультивируемая форма — Культивируемое состояние» изучены недостаточно.

Вместе с тем, только знание закономерностей формирования некуль-тивируемых форм холерных вибрионов и реверсии их в исходное состояние в объектах окружающей среды позволит объективно оценить эпидемическую значимость и роль этой формы в сохранении возбудителя в межэпидемическ-ский период.

Водные экосистемы обитания холерных вибрионов различных серологических групп характеризуются совокупностью многих показателей. Основными абиотическими факторами, определяющими характеристику, являются температура воды и освещенность, зависящие в свою очередь от географического расположения водоемов, сезонной и суточной периодичности. Температура воды при этом определяется и освещенностью, соединяющей влияние различных лучей, в т. ч. видимого света, прогревающего определенные слои воды.

Именно эти абиотические факторы — температура и освещенность в соединении с представлениями о холерных вибрионах как обитателях солоноватых вод следует рассматривать в раздельном и в сочетанном влиянии при изучении экологических закономерностей существования холерных вибрионов в культивируемом и в некультивируемом состоянии.

Цель настоящей работы — изучение раздельного и комплексного влияния некоторых абиотических факторов: температуры, освещенности и различной солености среды на переход в некультивируемое состояние токси-генных и нетоксигенных холерных вибрионов и реверсию некультивируемых форм к культивируемому состоянию.

Задачи исследования.

1. Получение некультивируемых форм токсигенных и нетоксигенных холерных вибрионов микрокосмах с различной соленостью среды.

2. Изучение влияния температуры и освещенности на скорость перехода холерных вибрионов в некультивируемое состояние и реверсию культивируемых свойств в микрокосмах с различной соленостью среды.

3. Отработка методов оценки жизнеспособности НФ холерных вибрионов.

Научная новизна результатов.

Впервые проведено исследование влияния комплекса факторов: солености среды микрокосм, температурного режима их содержания и освещенности на формирование НФ холерных вибрионов различных серогрупп и токси-генности.

Показаны наиболее короткие сроки перехода холерных вибрионов в НС при температуре 4−6 °С и минимальной минерализации среды. Выявлено увеличение сроков перехода холерных вибрионов в НФ при повышении температуры содержания микрокосм до 8−10 °С, а также под влиянием освещенности и увеличения солености среды. Установлено пролонгирующее влияние комплексного воздействия факторов: солености среды микрокосм, повышения температуры их содержания с 4−6 °С до 8−10 °С и освещенности на скорость перехода холерных вибрионов в НФ.

Выявлена большая продолжительность времени перехода в НС холерных вибрионов 0139 серогруппы по сравнению с V. cholerae Ol.

Получена реверсия «молодых» 5−20 суточных некультивируемых форм холерных вибрионов в культивируемое состояние при повышении температурного режима содержания микрокосм от 4−6 до 20 °C.

Методом прямого прижизненного подсчета бактериальных клеток (DVCdirect viable count), отработанным для оценки жизнеспособности НФ холерных вибрионов, показан различный удельный вес жизнеспособных клеток в популяции НФ различного возраста.

Научно-практическая ценность работы.

Полученные в результате исследований сведения расширяют представления о раздельном и комплексном влиянии некоторых экологических 1 абиотических факторов на переход холерных вибрионов в некультивируемое состояние и их реверсию.

Отработан метод прямого прижизненного подсчета клеток (ОУС) для оценки жизнеспособных некультивируемых форм холерных вибрионов различного возраста. Оформлены, одобрены Учёным Советом (Протокол № 26 от 17 декабря 2001 г) и утверждены директором института Методические рекомендации по использованию метода прямого прижизненного подсчета клеток (ОУС) для оценки жизнеспособности некультивируемых форм холерных вибрионов.

Положения, выносимые на защиту.

1. Температура 4−6 °С индуцирует переход холерных вибрионов в некультивируемое состояние независимо от солености среды. Соленость среды, освещенность и повышение температуры до 8−10 °С и более оказывают пролонгирующее влияние на сроки перехода холерных вибрионов в НС.

2. Повышение температурного режима экспериментальных экосистем до +20°С способствует реверсии некультивируемых форм холерных вибрионов на ранних стадиях некультивируемого состояния.

3. Метод прямого прижизненного подсчета бактериальных клеток позволяет оценить жизнеспособность некультивируемых форм холерных вибрионов на ранних стадиях некультивируемого состояния и может быть использован для ориентировочного отбора жизнеспособных вибрионов с целью их дальнейшего изучения.

Апробация работы.

Результаты экспериментальных исследований доложены на конференциях молодых ученых Ростовского-на-Дону научно-исследовательского противочумного института в 1998, 1999, 2000, 2001 и 2002 г, на заседаниях Всероссийской проблемной комиссии «Холера и патогенные для человека вибрионы» в 2000, 2001гг. и Международной научной конференции «Проблемы биологической и экологической безопасности» (Оболенск, 2000г).

План диссертационной работы утвержден Ученым Советом РПЧИ (протокол № 3 от 23.05.2002).

Исследования проведены в рамках плановой темы «Экологические параметры образования некультивируемых форм холерных вибрионов» номер гос. регистрации № 2 821 от 01. 09. 1990.

Структура работы.

Диссертация состоит из 6 глав, включающих обзор литературы по проблеме, материалы и методы, использованные в работе, результаты экспериментальных исследований, а также заключение и выводы. Работа изложена на 154 страницах, содержит 14 таблиц, 19 рисунков и список использованных отечественных (143) и зарубежных (120) работ.

Публикация работ.

По теме диссертации опубликованы тезисы научных докладов (4) и научные статьи (2) в сборнике «Проблемы особо опасных инфекций».

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

127 ВЫВОДЫ.

1. Установлено независимое и комплексное влияние различной солености среды, температурного режима и освещенности микрокосм на скорость перехода холерных вибрионов различных серогрупп в некультивируемое состояние. Наиболее быстрый переход в некультивируемое состояние холерных вибрионов независимо от солености среды микрокосм и освещенности получен при температуре 4−6 °С. Сроки перехода в НС холерных вибрионов увеличивало как повышение температуры культивирования микрокосм, так и искусственная их освещенность.

2. Впервые показана зависимость скорости перехода холерных вибрионов в НС от сочетанного влияния солености сред и температуры содержания микрокосм. В наиболее опресненных средах образование НФ происходило быстрее, чем насыщенных солями. Сочетанное влияние различной солености среды и повышение температуры содержания микрокосм от 4 до 8 °C в 1,8−7,7 раз увеличивало сроки формирования НФ холерных вибрионов.

3. Показан наиболее продолжительный период перехода холерных виб-ронов в НС в микрокосмах с водой из Черного моря, характеризующейся большим по сравнению со средами других микрокосм, содержанием солей.

4. Выявлено пролонгирующее влияние освещенности на сохранение холерных вибрионов в культивируемом состоянии, независимо от степени минерализации среды микрокосм. Искусственное освещение в 2,0−9,8 раз увеличивало сроки перехода холерных вибрионов в некультивируемое состояние.

5. Обнаружено различие в скорости образования НФ холерными вибрионами разных серогрупп. Холерные вибрионы 0139 серогруппы по сравнению с вибрионами 01 серогруппы при 4−6 °С без освещения переходили в НС в достоверно более продолжительные сроки (1,4−3,1 раз, р<0,001).

6. Показана реверсия 5−20 суточных НФ холерных вибрионов (10%) в культивируемое состояние при повышении температуры содержания микрокосм от 4−6 до 20 °C. Установлена возможность реверсии в культивируемое состояние наиболее «молодых» НФ холерных вибрионов при использовании высокопитательных сред «Игла», «199» и ХДС (бульон).

7. Метод прямого прижизненного подсчета клеток (ЭУС) НФ холерных вибрионов позволяет оценить жизнеспособность не только вибрионов в их вегетативном состоянии, но и морфологически измененных клеток, характерных для НС холерных вибрионов. Жизнеспособные клетки обнаружены в популяции 5−30 суточных некультивируемых форм, что свидетельствует о возможном использовании данного метода для ориентировочной оценки жизнеспособности НФ разного возраста.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

По мнению Луста К. А., Фихте Б.А.(1990) вопрос о том, что считать объективным дифференцирующим критерием для распознавания живых и мертвых клеток, является очень важным. Практически для этого могут быть использованы любые признаки живого: способность клеток к делению и образованию колоний, подвижность, проявление метаболической активности, ферментативные свойства, состояние барьера проницаемости, секреция мак-ромолекулярных веществ, накопление АТФ, морфологические признаки и т. д.

Для распознавания живых и мертвых микроорганизмов предложено большое число разнообразных методик и процедур. Многие из них отличаются большой трудо — и времяемкостыов других — используются весьма сложные инструментальные средства. Однако в основе их всех лежит один общий принцип — объективное (прямое или косвенное) тестирование жизнеспособности исследуемых клеток и их популяции.

Феномен перехода в НС привлекает пристальное внимание исследователей, поскольку существование таких покоящихся форм у патогенных бактерий имеет прямое отношение к закономерностям резервации возбудителей и их адаптации к неблагоприятным условиям среды, обеспечивая сохранение патогенных бактерий в межэпизоотический и межэпидемический периоды. Существование жизнеспособных бактерий в НС имеет серьёзное значение в инфекционной патологии людей и животных, так как установлено, что НФ патогенных бактерий сохраняют свои вирулентные свойства. В связи с этим проблема НФ чрезвычайно актуальна как в теоретическом, так и в практическом аспектах.

Высокая экологическая пластичность грамотрицательных патогенных бактерий позволяет им легко адаптироваться к условиям качественно различных экосистем. По мнению многих исследователей (Бароян О.В., Портер Д. Р., 1975 и др.), для холерных вибрионов, как возбудителей кишечной инфекции, пребывание во внешней среде является неизбежным и «носит не случайный характер», а обусловлено взаимоотношениями микро — и макроорганизма.

Обнаружение НС у патогенных бактерий создало возможность нового подхода к анализу экологических и молекулярно-генетических механизмов существования возбудителей инфекций в природе.

Исследования этих механизмов необходимо для знания факторов, обеспечивающих этим микроорганизмам существование в качестве естественных компонентов природных биоценозов, а это, в свою очередь, позволит понять природу эндемичности и резервации патогенных бактерий в межэпизоотические (межэпидемические) периоды.

Считается, что сигналом для перехода бактерий в НС является ухудшение условий среды. К индуцирующим переход в НС бактерий исследователи относят разные факторы. В экспериментах часто используют для инициации перехода в НС совместное действие пониженной температуры в сочетании с условиями голодания (Colwell R.R., et al., 1985; Roszak D.V., Colwell R.R., 1987; Романова Ю. М. с соавт. 1998 и другие).

Нами сделана попытка в экспериментальных экосистемах получить НФ токсигенных и нетоксигенных холерных вибрионов разных серогрупп под действием нескольких факторов, характеризующих природные экосистемы, независимо друг от друга и в комплексе: различной солености сред, температурного режима и освещенности микрокосм.

Наряду с выявлением значимости в переходе в НС холерных вибрионов каждого из перечисленных выше факторов показано достоверное значимое влияние на скорость процесса совместного действия их в различных сочетаниях.

Из четырех изученных микрокосм с различным солевым составом среды в условиях без искусственной освещенности при 4−6 °С в трех (кроме морской воды, характеризующейся более высоким, чем в остальных микрокосмах, содержанием солей) холерные вибрионы переходили в НС в одинаковые сроки. Освещенность этих же микрокосм увеличивала сроки перехода в НС холерных вибрионов во всех четырех микрокосмах. В 0,85% растворе ЫаС1 в -2,3 раза, в речной воде в 4,1 раза и в воде Азовского моря — в 1,7 раза. В морской воде, в условиях которой при искусственном освещении НФ V. сЬо1егае 01 не были получены, в отличие от аналогичных микрокосм без освещения, где холерные вибрионы перешли в НС в течение 190−210 суток.

При температуре 8−10 °С в тех же микрокосмах без искусственного освещения сроки перехода в НС удлинялись: в речной воде — в 7,4 раза, в 0,85% растворе ЫаС1 — в 1,8 раза и в морской воде в — 1,6 раза. Искусственное освещение в условиях этой температуры еще более увеличило сроки перехода в НС холерных вибрионов в 0,85% растворе ЫаС1 (2,8 раза), в речной воде (1,3 раза) и в воде Черного моря (1,3 раза).

Таким образом, сроки перехода в НС холерных вибрионов увеличивало как повышение температуры содержания микрокосм (1,6 -7,4 раза), так и искусственная их освещенность (1,3- 2,8 раза), что в сочетанном их влиянии оказывалось еще более выраженным (2,0 — 9,8 раза).

Сочетанное влияние различной солености среды и температуры показало зависимость образования НФ холерных вибрионов от солености сред, что выразилось в более продолжительных сроках формирования НФ холерных вибрионов как при 4−6 °С (без освещения) во всех средах, содержащих микроэлементы (1,8 — 3,7 раза), по сравнению с дистиллированной водой (наиболее опресненная вода), так и при 8−10 °С (2,8 — 6,4 раза). Сочетанное действие двух упомянутых выше факторов с искусственной освещенностью еще более (7,7 раза) увеличило сроки формирования НФ холерных вибрионов.

Из изученных микрокосм в дистиллированной воде образование НФ холерных вибрионов (при низких температурах) происходило приблизительно в одинаковые сроки, не сказывались на их образовании ни освещенность, ни температура содержания, что, очевидно, связано с минимальным содержанием в этой среде солей и добавлении питательных субстрата только в результате гибели и распада вибрионов.

Наиболее продолжительным оказался период перехода в НС в микрокосмах с водой из Черного моря, характеризующейся наибольшим по сравнению со средами других микрокосм, даже водой Азовского моря, содержанием солей. Очевидно, сложный или более разнообразный’минеральный состав воды Черного моря по сравнению с другими экспериментальными экосистемами способствовал более продолжительному сохранению в культивируемом состоянии холерных вибрионов, имеющих в основном прототрофный тип питания, что может косвенно свидетельствовать о значении минерализации среды в поддержании культивируемого состояния вибрионов.

Пролонгирующее в отличие от солнечной радиации влияние освещенности на сохранение холерных вибрионов в жизнеспособном состоянии, независимо от степени минерализации среды микрокосм, может быть обусловлено свойственной грамотрицательным бактериям способностью более экономично при освещении расходовать энергетический субстрат (Громов Б.В., Павленко Г. В., 1989). Возможно, в связи с этим низкие температуры, являющиеся основным фактором, запускающим переход холерных вибрионов в НС, в зависимости от состава экосистем реализуют индуцирующее действие в различные сроки. В дистиллированной воде, не содержащей солей и других факторов, влияющих на продолжительность сохранения холерных вибрионов в культивируемом состоянии, повышение температуры содержания микрокосм с 4−6 °С до 8−10 °С не удлиняло сроки перехода их в НС. Оценивая значимость экспериментальных данных о влиянии температуры на переход холерных вибрионов в НС, следует учитывать, что «в летнее время наиболее теплые слои воды располагаются у поверхности, а холодные — у дна. Зимой с понижением температуры поверхностные холодные воды с температурой ниже 4 °C располагаются над сравнительно теплыми. Наибольшей плотностью вода обладает при 4 °C. При температурах выше или ниже 4 °C вода расширяется и, следовательно, становится легче. Это уникальное свойство предохраняет водоемы от промерзания до дна» (Одум Ю., 1986). По всей вероятности температура 4−5 °С является пограничной зоной в формировании некультивируемых форм у микроорганизмов, что коррелирует с получением экспериментальных НФ именно при этой температуре (Савельев В.Н., с соавт, 2001; Соколенко A.B., 2000 и другие).

Использование в экспериментальных исследованиях холерных вибрионов Ol и 0139 серогрупп разной токсигенности не выявило значимости этого признака для скорости перехода в НС в микрокосмах с различной соленостью среды, температурой содержания и освещенностью. Обнаружено различие в скорости образования НФ холерными вибрионами разных серогрупп при 4−6 °С без освещения. Во всех микрокосмах, содержащих микроэлементы, холерные вибрионы 0139 серогруппы по сравнению с вибрионами Ol серо-группы переходили в НС в достоверно более продолжительные сроки возможно, в соответствии с представлениями о них отдельных исследователей, как о вибрионах, более устойчивых к стрессовым ситуациям (Челядинова A.B., 2000; Черепахина И. Я., 2000 и др.).

Восстановление культивируемых свойств экспериментально полученных в 11 микрокосмах НФ холерных вибрионов при изменении температуры их содержания до 20 °C подтверждает прежде всего представление об адаптивном характере измененный и обратимости процесса: культивируемое состояние (КС) <-«некультивируемое состояние (НС). Получение результатов реверсии в КС предпочтительно «молодых» НФ (пяти -15 суточных и еще 5 — не старше 20 суточных) коррелируют при этом с данными Oliver J.D., (1993) и др. исследователей. В то же время ограниченное количество восстановивших культивируемость НФ (10% - в условиях искусственного освещения и 7,5% без него) свидетельствует о необходимости дополнительных условии для реверсии НФ в культивируемое состояние. Основанием для этого предположения являются прежде всего данные оценки жизнеспособности 5, 15 и 20 суточных НФ холерных вибрионов методом прямого прижизненного подсчета клеток (DVC), позволившего сделать вывод о жизнеспособности не только типичных вибрионов, обнаруженных в их популяции, но и большого количества клеток, характерных для некультивируемого состояния. Выявляемая этим методом способность типичных для некультивируемых форм клеток усваивать питательные вещества совпадает с данными о функционировании у них электронно-транспортной цепи (Nillson L. et al., 1991 Colwell R. R 1986., 1996; Романова Ю. М., Гинцбург A.JI., 1993; Соколенко A.B., 2000).

Регистрация жизнеспособности НФ в наших исследованиях превышала частоту получения реверсии НФ в культивируемое состояние, что свидетельствует о необходимости дальнейшего изучения данного процесса. В то же время обнаружение методом DVC жизнеспособных клеток в популяции только «молодых» НФ свидетельствует о возможном ограничении периода пребывания НФ в целом в жизнеспособном состоянии.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А. К. Иванов В.А. Шмеркевич Д. Л. Гидробионтный фактор распространения холеры//Пробл. особо опасн. инф.-Саратов, 1971. Вып. 6. — С. 11−14
  2. А.К. К происхождению холеры Эль-Тор //Журн. микробиол., эпиде-миол. и иммунобиол.-1991.-№ 11.- С.70−73.
  3. М.Ю., Гаровникова Ю. С., Левина Г. А. и др. Использование метода полимеразной цепной реакции для изучения процесса перехода клеток Salmonella typhimurium в некультивируемое состояние //Мол. генет. микробиол. и вирусол.-1994.- № 2 С. 17−20.
  4. А.Я., Некрасова М. Я., Студеникина Е. И. Гидробиологический режим Азовского моря и его изменения в связи с преобразованием речного стока //Вопросы биогеографии Азовского моря и его бассейна: Сб. науч. статей Л.,-С.90−103.
  5. О.Я. Руководство по химическому анализу вод и суши. Л., Гид-рометиздат, 1973. — С.96−181.
  6. А.А., Иванов С. И., Семиотрочев В. Л. и др. Длительное обнаружение вибриона Эль-Тор в сточной воде бани //Журн. микробиол. эпидемиол. и иммунобиол. 1975. — № 2. — С.41−44.
  7. С.В., Мацуга Т. П. Материалы о выживаемости холерных вибрионов серотипа Инаба на некоторых продуктах питания //Обл. науч.-практ. конф. «Профилактика особо опасных инфекций в Северном Прикас-пии.»: Тезисы. Астрахань, 1991. — С.51−52.
  8. Ю.Артемова Т. З., Курлапова Л. Д., Мышляева Л. А. и др. К вопросу о процессах самоочищения сибирских водоемов от микробного загрязнения //Актуал. вопр. сан. микробиол. (Тез. докл. Всесоюзн. конф. по сан. Микро-биол.) М., 1978.-С.75−77.
  9. H.H. Люминесцентный анализ на службе здоровья. М., 1985. -95с.
  10. О.В., Бургасов П. Н., Гайлонская И. Н., Мединский Г. М. Экология холерных вибрионов. //Вест. АМН. — 1975, — № 2, — С.45−53.
  11. О.В., Домарадский И. В., Мединский Г. М., Краминский В. А. Научные обоснования принципов организации профилактических и противоэпидемических мероприятий при холере Эль-Тор //Пробл. особо опас. инф. Саратов, 1973, Вып.З. — С.5−13.
  12. М.Бароян О. В., Портер Д. Р. Международные и национальные аспекты современной эпидемиологии и микробиологии. М.: Медицина, 1975. — 520с.
  13. Биологическое загрязнение вод (Ф. Ранад. Основы прикладной эколо-гии.Воздействие человека на биосферу Л.: Гидрометиздат, 1981. — С.310−312.
  14. К.Г., Либинзон А. Е., Попова Г. О. К вопросу о возможности длительного сохранения холерных вибрионов в воде. //Вопр. Теоретич. и прикл. микробиол.: Тез. конф. микробиологов Сев. Кавказа. Ростов н/Д., 1973. — С.149−151.
  15. И.И., Сиренко A.A. Роль натриевого цикла энергетического сопряжения в возникновении и сохранении природных очагов современной холеры //Биохимия.- 1997. Т. 62, № 2. — С.263−269.
  16. О.В., Гриценко В. А. Экологическая детерминированность внутривидового разнообразия патогенных бактерий. //Журн. микробиол., эпиде-миол. и иммунобиол. -2000. -№ 1. С. 103−106.
  17. Ю.А., Добрецов Г. Е. Флюоресцентные зонды в исследовании биологических мембран. М.: — Наука, 1980. -320с.
  18. B.C., Марамович A.C., Вейде A.A. и др. К вопросу о вибрионах открытых водоемов Иркутска //Вопр. краев, инф. патол. Вост. Сибири. — Иркутск, 1975. -С.255−260.
  19. А.Д., Константинова М. А., Якубовская Г. В. и др. О сохраняемости возбудителей некоторых особо опасных инфекций в воде. //Докл. Ир-кут. Противочум. ин-та. Чита, 1961. — Вып.2. — С.39−40.
  20. АЛ., Брюханов А. Ф., Янишевский Н. В. и др. Применение метода генного зондирования для выявления эпидемически опасных штаммов холерных вибрионов. // Мол. ген. микрибиол. и вирусол. 1987. -№ 11. — С.9−13.
  21. АЛ., Романова Ю. М. Некультивируемые формы бактерий и их роль в сохранении возбудителей сапронозов во внешней среде //Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 1997. — № 3. — С. 116−121.
  22. A.JI., Романова Ю. М., Алексеева Н. В. и др. Механизм действия и природа факторов, индуцирующих образование некультивируемых форм у Salmonella typhimurium // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. -1999. -№ 6. С.3−8.
  23. .П. Экологические аспекты распространения вибрионов Эльтор в объектах окружающей среды: Автореф. дис.канд. мед. наук. Саратов. -1993.20с.
  24. Н.А., Ким А.С., Кизилова М. Д. Влияние СПАВ, нефтепродуктов и фенолов на холерные вибрионы эльтор в речной воде //Актуал. вопр. микробиол., лаб. диагностики и проф. холеры: Тез. Всесоюз. науч. конф. -Ростов н/Д, 1988.-С. 16−18.
  25. В.М. Экология водных микроорганизмов. М.: Наука., 1977. -288с.
  26. JI.B. Санитарная бактериология и вирусология водоёмов. -М.: Медицина, 1975. 192с.
  27. .В., Павленко Г. В. Экология бактерий: учебное пособие. Я.: Изд-во ун-та, 1989. 248с.
  28. Р. Основы экологии. М.: Прогресс, 1975. — 415с.
  29. А.А. Вибрионный режим реки Дон.: Автореф. дис. канд. мед. наук. Ростов н/Д, 1952. — 12с.
  30. И.В. Вирулентность бактерий как функция адаптации //Журн. микробиол. эпидемиол. и иммунобиол. 1997. — № 4. — С. 16−20.
  31. И.В. Некоторые проблемы адаптации патогенных бактерий к окружающей среде //Журн. микробиол. эпидемиол. и иммунобиол. 1997. -№ 4. — С.31−35.
  32. Дон. //БСЭ. 1972. — Т.8. — С.436.
  33. Е.Н., Аксенов М. Ю., Гинцбург A.JL, Литвин В. Ю. Полиме-разная цепная реакция как метод изучения некультивируемых форм иереиний в окружающей среде //Патогенные бактерии в сообществах. — М.: Рос-агросервис. 1994.-С.135−139.
  34. Ф.И. Люминесцентное микроскопическое выявление ранних изменений нуклеиновых кислот и липидов в инфицированных клетках. //Вопр. Вирусологии. 1964. -№ 1. — С. 13.
  35. A.B. Взаимодействие аминопроизводных акридина с клеткой. -М.: Наука 1971.-231с.
  36. A.B. Люминесцентная цитохимия нуклеиновых кислот. -М.: Наука 1967.- 136с.
  37. A.B., Ляпунова Е. А., Степанова Н. Г. и др. Люминесцентномикро-скопическое и авторадиографическое исследование животных клеток, подвергнутых воздействию некоторых «витальных» красителей //Тезисы докл. 7-ого Всесоюз. съезда анатомов. -1966. С. 304.
  38. В.Б. Активные красители в биологии. М: Наука, 1982. — 214с.
  39. Д.И., Мазрухо А. Б., Рожков К. К. и др. Изучение возможности использования ХДС агара для культивирования и выделения холерных вибрионов. //Пробл. комиссия «Холера и патоген, для человека вибрионы». Ростов н/Д, 2001. — Вып. 14. — С.90−92.
  40. З.Н., Анисимова Т. И. О длительности сохранения холерных вибрионов Эль-Тор в рыбе и солевых растворах //Пробл. особо опас. инф. -Саратов, 1971.-Вып. 5. С. 182−183.
  41. Е.И. Микробиология и эпидемиология холеры. -М.: Медгиз, 1959.-304с.
  42. ККрасильников H.A., Бехтерев М. Н. Применение метода флуоресцентной микроскопии для распознавания живых и мертвых клеток актиномицетов //Микробиология.- 1956. -№ 3. С.279−285.
  43. А.Е., Новожилова М. И. Количественное распределение гетеротрофных бактерий в юго-восточной части Атлантического океана. //Микробиология. 1970. — Т.39, № 5. — С.892−897.
  44. В.Б., Подледнев В. И. Экологические связи холерных вибрионов с биоценозом открытых проточных водоёмов //Микробиол. и биохим. возбудителей ООН. Саратов, 1982. — С.66−68.
  45. Г. И. Вибрионы открытых водоемов Сурхандарьинской области. //Проблемы особо опас. инф. Саратов, 1970. Вып. З, С.44−48.
  46. Лабораторная диагностика холеры: Методические указания. М., 2002. -95 с.
  47. Г. М., Тихонов С. Н., Жукова Е. А. О природной очаговости холеры //Природноочаг инф в России: Современная эпидемиол., диагн., тактика защиты населения: Тез. докл. Всерос. науч. -прак. конф. Омск, 1998. -С.21−23.
  48. А. Основы биохимии. М., Мир. 1985 т. 3. — С. 1056.
  49. В.Ю. Механизмы устойчивого сохранения возбудителя чумы в окружающей среде (новые факты и гипотезы) //Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 1997. — № 4. — С.26−31.
  50. В.Ю. Общие закономерности и механизмы существования патогенных микроорганизмов в почвенных и водных экосистемах //Экология возб. сапронозов. М., 1988. — С. 20−34.
  51. В.Ю. Холера как природно-очаговая сапронозная инфекция //Журн. микробиол, эпидемиол. и иммунобиол. — 1995. № 6 — С. 30−31.
  52. В.Ю., Гинцбург А. Л., Пушкарёва В. И., Романова Ю. М. Обратимый переход патогенных бактерий в покоящееся (некультивируемое) состояние: экологические и генетические механизмы. //Вест. РАМН, 2000. № 1. С. 713.
  53. В.Ю., Пушкарёва В. И. Факторы патогенности бактерий: функции в окружаюшей среде. //Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. -1994. -Приложение 1.-С.83−87.
  54. В.Ю., Пушкарёва В. И., Солохина Л. В. и др. Эколого-генетические механизмы перехода Salmonella typimurium в покоящееся состояние в окружающей среде. //Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2001. -№ 6. — С.32−36.
  55. Ю.М., Голубев Б. П., Власов В. П. и др. Изучение возможности выявления жизнеспособных, но не культивируемых форм холерных вибрионов //Матер. 7-го съезда Всерос общ-ва эпидемиол., микробиол. и паразитологов.-М., 1997. Т.1. — С.301.
  56. Ю.М., Голубкова Л. А. Некоторые биологические свойства L-форм холерных и НАГ вибрионов //Микробиол. журн. — 1980. — Т. 42, № 4. -С.502−507.
  57. Ю.М., Мединский Г. М. Сохранение возбудителя холеры в межэпидемический сезон //Холера: Матер. Рос. науч.-практ. конф. по пробл. «Холера». Ростов н/Д, 1995. — С. 17−24.
  58. Л.С. //Советское здравоохранение Туркмении. 1941, — № 4, — С.57−58.
  59. К.А., Фихте Б. А. Методы определения жизнеспособности микроорганизмов. Пушино, 1990. 186с.
  60. A.C., Наркевич М. И. Холера. //Руководство по эпидемиологии инфекционных болезней. М.: Медицина, 1993. -Т.2. — С. 85−104.
  61. A.C., Пинигин А. Ф. Экология вибрионов эльтор поверхностных водоемах //Совр. аспекты проф. зооноз. инф.: Тез. докл. к Всесоюз. конф. специалистов противочум. учрежд. Иркутск, 1984. -Ч.З. — С. 115 116.
  62. A.C., Пинигин А. Ф. Эндемичность холеры и угроза её распространения //Холера. Вопр. Эпидемиол. микробиол. и лаб. диагн.: Матер. Рос. науч. конф. Ростов н/Д, 1992. — С. 13−15.
  63. A.C., Пинигин А. Ф., Ганин B.C., Осауленко О. В. Сапрофитиче-ская фаза в экологии холерного вибриона //Экология возбудителей сапро-нозов, М.- 1988. С.52−65.
  64. Н.Ю., Алексеева Н. В., Романова Ю. М., Гинцбург АЛ. Взаимодействие вегетативных и некультивируемых форм Salmonella typimurium с бактериями рода Bdellovibrio. //Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2001. — № 6. С. 16−19.
  65. Г. А. Люминесцентно-микроскопические методы различия живых и мертвых микроорганизмов //Вест. АН СССР. 1951.-№ 9.- С.909−923.
  66. Г. М., Ломов Ю. М. Справочник кадастр распространения вибрионов эльтор в поверхностных водоемах и сточных водах на территории СССР во время 7-й пандемии холеры. — Ростов н/Д, 1991. — 160с.
  67. Г. М., Сомова А. Г., Подосинникова Л. С. и др. Влияние различных экологических условый на свойства вибрионов Эль-Тор. //Актуал. вопр. сан. микробиол. (Тез. докл. Всесоюз. конф. по сан. Микробиол.) — М., 1978. -С.91−92.
  68. Г. М., Ширяев Д. Т., Зайденов A.M., и др. Научные основы организации противохолерных мероприятий (Заключительный отчет). Ростов-на-Дону, 1977.-С1.
  69. М.Н., Заварзина Н.Б, Флуоресцентно-микроскопическое наблюдения над живыми клетками микроорганизмов //Микробиология. 1947. -№ 5. — С.394.
  70. М.Н., Корчагин В. Люминесцентномикроскопическое выявление нуклеиновых кислот и нуклеопротеидов //Бюл. экспер. биол. и мед. 1952.- № 3. С. 49.
  71. М.Н., Медведева Г. А., Алексеева В. М. О выявлении живых поврежденных и мертвых микроорганизмов //Микробиология. 1961. — Т. 30. -Вып. 5.-С.855−861.
  72. М.Н., Помощникова H.A. Выделительная и восстановительная функция дрожжевой клетки. — Труды Института микробиологии АН СССР.- 1952.-Т.2, С. 51.
  73. М.Н., Страхова В. А. Ускоренный люминесцентный метод обнаружения бактерий //Изд-во. АН СССР. 1955. -45с.
  74. И.Ф., Ли Ли. Обнаружение холерного вибриона в объектах внешней среды с помощью флуоресцирующих сывороток //Журн. микробиол., эпидемиолог, и иммунобиол. 1959. — № 8. -С.27−34.
  75. В.Г. Люминесцентный анализ в медицине. — Ташкент, 1963. — 170с.
  76. И.Ф., Дъяков С. И. Люминесцентная микроскопия. М., .1961. -223с.
  77. .Н., Сучков И. Ю. Вирулентность некультивируемых форм Yersinia pestis //Матер, науч-практ. конф., посвящ. 100-лет. Образов, противочумной службы России. Саратов, — 1997. — Т.2. — С. 89−90.
  78. A.M. Азовское море. //БСЭ. 1970. т. 1. — С.295.
  79. С.М., Середин В. Г., Инжеватова М. В. и др. К вопросу об экологии вибрионов 01 группы в Узбекистане. //Совр. аспекты эпиднадзора за
  80. ООН (Тез. ХШ-ой конф. противочумн. учрежд. Средн. Азии и Казахстана).- Алма-Ата, 1990. С. 184−187.
  81. Некультивируемые формы патогенных бактерий / A.JI. Гинцбург, Ю.М., Романова, Е. И. Емельяненко и др. «Эпидемиол. аспекты экологии бактерий». М.: Фармарус-Принт, — 1997. — С. 197−215.
  82. Некультивируемые формы холерных вибрионов: переход в некультиви-руемое состояние, характеристика, эпидемическая значимость // Актуал. пробл. холеры М.: ГОУВУНМЦ МЗ РФ, 2000. — С. 117−126.94.0дум Ю. Основы экологии М.: Мир. 1975. 740с.
  83. Г. Н. Влияние химиотерапевтических веществ на бактериальные ферменты. М., 1952. — 228с.
  84. Ю.П., Волкова P.C., Зиневич Л. С. и др. Микрофлора промысловой рыбы северно-западной Антлантики //Актуал. вопр. сан. микробиол. (Тез. докл. Всесоюзн. конф. по сан. Микробиол.) -Москва, 1978. -С. 147 149.
  85. М.А. Зоопланктоценозы водоемов различных почвенно-климатических зон. М.: Известия Гос НИОРХ. — 1978. — т. 135. — С. 135 227.
  86. В.И. Оценка экологических факторов, влияющих на циркуляцию вибрионов эльтор в поверхностных водоемах Сибири и Дальнего Востока.: Автореф. дис. канд. мед. наук. Саратов, 1997. — 18с.
  87. В.И., Пинигин А. Ф., Марамович А. С. и др. Холерные вибрионы и инфузории: анализ взаимодействий //Патогенные бактерии в сообществах. (Механизмы и формы существования): Сб. науч. тр. М.: Рос-агросервис, 1994. — С.42−48.
  88. JI.C., Соколенко А. В., Чепкова Е. А. и др. Экспериментальное получение и характеристика некультивируемых форм холерных вибрионов //Пробл. Комиссия «Холера и патоген, для человека вибрионы.» Ростов н/Д, 1999. В. 12.-С.39−41.
  89. В.И., Малеев В. В., Адамов A.JI. Клиника, патогенез и лечение холеры. Саратов, — 1988. — 272с.
  90. Пушкарёва В.И. Salmonella typimurium и Yersinia pestis (EV) в ассоциаций с простейшими: сохранение покоящихся бактерий в цистах. //Матер. VIII Всерос. съезда эпидемиол. микробиол. и паразитол. М., 2002. — Т. 1. -С.232−233.
  91. В.И., Емельяненко Е. Н., Литвин В. Ю. и др. Патогенные лис-терии в почве и в ассоциации с водорослями: обратимый переход в некуль-тивируемое состояние //Журн. микробиол. эпидемиол. и иммунобиол. 1997. № 3. С.3−6.
  92. В.А. Экология. Краткий курс: Учебник для биол. спец. пед. инст-тов. 1983. -320с.
  93. В.М., Святой В. И., Герасименко Р. Т., и др. Холерные вибрионы эльтор обитатели минерального термального водоисточника в подземной гарстовой пещере. //Здравоохр. Туркменистана. — 1990. -№ 12. — С.38−41.
  94. Л.В., Мишанькин Б. Н., Пичурина Н. Л. и др. Некультивируе-мые формы Francisella tularensis //Журн. микроб, эпидемиол. и иммунобиол. 2000. — № 2. — С 11−15.
  95. Ю.М., Reissbrodt R., Гинцбург А. Л. Некультивируемое состояние у патогенных бактерий: генетический контроль и факторы индукций обратимого процесса. //Матер. VIII Всерос. съезда эпидемиол., микробиол. и паразитол. М., 2002. — Т. 1. — С.236−237.
  96. Ю.М., Алексеева Н. В., Гинцбург А. Л. Некультивируемое состояние у патогенных бактерий на модели Salmonella typhimurium: феномен и генетический контроль //Журн. микробиол. эпидемиол. и иммунобиол. 1997. — № 4. — С.35−41.
  97. Ю.М., Алексеева Н. В., Степанова Т. В. и др. Влияние фактора некроза опухоли на размножение вегетативных и некультивируемых форм сальмонелл. //Журн. микробиол., эпидемиол. и имуннобиол. 2002. — № 4. -С.20−25.
  98. Ю.М., Гинцбург А. Л. Есть ли сходство в механизмах образования «некультивируемых форм» у грамотрицательных бактерий, и спор у бацилл? //Мол. Генетт, микробиол. и вирусол. 1993. — № 6. — С.34−37.
  99. Ю.М., Терехов A.A., Гинцбург А. Л. Выделение и характеристика мутантов Salmonella typimurium с нарушенным процессом образования некультивируемых форм. //Генетика. 1995. — Т.31, № 8. — С. 1073−1078.
  100. Ю.М., Чегаева Е. В., Гинцбург А. Л. Некультивируемое состояние у патогенных бактерий: известные и возможные факторы индукции обратимого процесса. //Мол. генет., микробиол. и вирусол. — 1998. -№ 3. С.3−8.
  101. Г. П. Холера. М.: Медицина, 1970. 87с.
  102. И.В., Цураева Р. И., Ломов Ю. М. и др. Экспериментальная устойчивость холерного вибриона биотипа эльтор к налидиксовой кислоте и фторхинолонам. //Антибиотики и химиотерапия. 2000. — Т.45, № 9. — С.7−12.
  103. В.Н., Грижебовский Г. М. Изучение действия синтетических моющих средств на вибрионы //Особо опас. инф. на Кавказе: Тез. докл. V краев, науч.-практ. конф., посвящ. 50-лет. образов, противочумной службы Кавказа. Ставрополь, 1984.-С. 108−109.
  104. В.Н., Грижебовский Г. Н., Брюханов А. Ф. Некультивируемые формы холерного вибриона и их эпидемиологическое значение //Пробл. комиссия «Холера и патоген, для человека вибрионы». Ростов н/Д, 2001.-№ 14. С.24−26.
  105. P.M., Зайденов A.M. Выживаемость и свойства холерных вибрионов при культивировании в минеральной воде //Журн. микробиол, эпи-демиол. и иммунобиол. -1978. -№ 11. -С.66−70.
  106. Л.М., Сомова А. Г., Мединский Г. М., и др. Сезонная динамика численности вибрионов и родственных микроорганизмов в реке Дон. //Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 1977. — № 12. — С.29−33.
  107. Л.М., Сомова А. Г., Мединский Г. М., Пащенцева Н. Ф. Зависимость численности вибрионов и аэромонад от степени биологического загрязнения водоёмов. //Всесоюз. микробиол. общ-во. Съезд, 7-ой: Тез. Т.6. -Алма-АтА, 1985.-С. 172.
  108. A.B. Морфология, ультраструктура, метоболизм некультивируемых форм холерных вибрионов.: Автореф. дис.канд. биол. наук. -Ростов н/Д., 2000.- 18с.
  109. Л.В., Пушкарёва В. И. Реверсия покоящихся форм Yersinia pseudotuberculosis из ассоциаций с цианобактериями. //Матер. VIII Всерос. съезда эпидемиол., микробиол. и паразитологов. М. 2002. — Т.1. — С.247−248.
  110. А.Д., Тесленко JI.B. Прижизненная люминесцентная микроскопия клеток //Методы культив. клеток: Сб. науч. тр. — JI., наука. 1988. -С.126−136.
  111. Ю.Г., Худяков И. В., Емельяненко E.H. и др. О возможности сохранения возбудителя чумы в почве в покоящейся (некультивируемой) форме. //Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. — 1997. -№ 4. -С.42−46.
  112. C.B. Взаимоотношения холерных вибрионов с инфузориями разных видов. Ростов н/Д, 1998. 14с. — Деп. в ВИНИТИ, 29. 05. 98, № 1671 -В98.
  113. C.B. Культивирование Vibrio cholerae с зелеными водорослями в эксперименте. //Журн. микробиол. эпидемиол. и иммунобиол. — 2000.- № 2. -С. 19−22.
  114. C.B. Характер взаимоотношений холерных вибрионов с зоо- и фитопланктоном в условиях эксперимента. //Гиг. окр. среды и экология человека: Сб. науч. тр. Саратов, 1999. С. 76.
  115. B.C., Черепахина И. Я., Гулида М. М. и др. Характеристика некоторых методов выявления мутагенного действия различных веществ на холерные вибрионы. //Мол. биол. и генет. возб. особо опас. инф. Саратов, 1982.-4.2.-С. 69−70.
  116. В.Д., Гильманов Т. Г. Экология. М., 1980.-458с.
  117. JI.M. Чёрное море. //БСЭ. 1978. т.29. — С.96−99.
  118. A.B. Изучение биологических свойств холерных вибрионов Ol 39 серогруппы: Автор, дис. канд. мед. наук. Ростов н/Д, 2000. — 18с.
  119. И.Я., Антигенная изменчивость холерных вибрионов, выделенных в период седьмой пандемии холеры: Автор, дис. докт. мед. наук. -Ростов н/Д, 2000.-43.
  120. Е.В. Влияние некоторых физиологических и генетических факторов на процесс перехода энтеротоксигенных штаммов Escherichia coli внекультивируемое состояние. //Мол. генет. микробиол. и вирусол. 1997. -№ 1. -C.8-I4.
  121. Е.В., Гинцбург АЛ., Грижебовский Г. М. и др. Исследование эпидемической значимости некультивируемых форм холерных вибрионов методом полимеразной цепной реакции. //Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 1992. № 3. -С.21−24.
  122. Е.В., Грижебовский Г. М., Брюханов А.Ф и др. О возможном механизме эндемичности современной холеры (роль некультивируемых форм Vibrio cholerae Ol) //Мол. Генетт., микробиол. и вирусол. 1993. — № 6. -С. 18−22.
  123. И.А., Ананьина Ю. В., Токарская О. Н. и др. Геномная дактилоскопия возбудителей сапронозов. //Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 1991.-№ 6.-С. 25−29.
  124. С.С. Экологические закономерности эволюции. -М.: Наука, 1980.-278с.
  125. И.А., Подосинникова Л. С., Сомова А. Г., и др. Изменение свойств холерных вибрионов при длительном их вегетирований в речной воде. //Актуальные вопрю сан. микробиол. (Тез. докл. Всесоюз. конф. по сан. микробиол.) М., 1978. — С.86−88.
  126. В.А. Отношение к ультрафиолетовым лучам мицелия пыльной головни в зерне пшеницы в зависимости от состояния мицелия. //Докл. АН СССР, -1939, Т.23, № 4. -С.392.
  127. Aleljung P., Nillson Н.О., Wang X., et al. Gastrointestinal colonisation of BALB|cA mise by Helicobacter pylori monitored by heparin magnetic separation //FEMS Immunol. Med. Microbiol.- 1996. Vol. № 4. — P.303−309
  128. Alexander E., Pham D., Steck T.R. The viable but — nonculturable condition is indused by copper in Agrobacterium tumefaciens and Rhizobium legumi-nosarum // Appl. Environ. Microbiol- 1999. — Vol. 65, № 8. — P.3754−3756.
  129. Anderson E.S., Armstrong J.A., Niven J. S. Fluorescence microscopy: observation of virus growth with aminoacridines //Sympos. Soc. Gen. Microbiol. -1959.-Vol. 9.-P.225.
  130. Arana J., Muela A., Jrberri J, et al. Role of hydrogene peroxide in loss of cul-turability mediated by visible light in Escherichia coli in a freshwater ecosystem. //Appl. Environ. Microbiol.- 1992. Vol. 58. — P.3903−3907.
  131. Baldwin Т.О., Christopher J.A., Raushel F.M. et al. Structure of bacterial luciferase. //Curr. Opin. Struct. Biol., 1995. — Vol. 5. — P.798−809.
  132. Barcina J., Gonzales J.M., Triberri J. Edea L. Survival strategy of Escherichia coli and Enterococcus fecalis in illuminated fresh and marine systems //J. Appl. Bacteriol 1990. — Vol. 68. — P. 189−198.
  133. Bassler B. L., Stevens A. M. Greenberg F. P. Gross species induction of luminescence in the guorum-sensing bacterium Vibrio harveji //J. Bacteriol. — 1997.-Vol. 179, № 12 — P.4043−4045.
  134. Berlin D.L., Herson D.S., Hicks D.S., Hoover D.G. Response of pathogenic Vibrio species to high hydrostatic pressure //Appl. Environ. Microbiol. —1999. — Vol. 65, № 6.-P. 2776−2780.
  135. Bertalanffy F. Evaluation of the acridine orange fluorescence microscope method for cytodiagnosis of cancer. Ann. N.Y. Acad. Sci. — 1962. Vol. 93, 16: P.715.
  136. Biosca E.G., Amaro C., Marco-Noales E., Oliver J.D. Effect of low temperature on starvation-survival of the eel pathogen Vibrio vulnificus biotype 2. //Appl. Environ. Microbiol. 1996, Vol. 62. № 2. P. 450−455.
  137. J. Загрязнение прибрежных вод микробами вирусами и паразитами и его значение с точки зрения общественного здравоохранения //Бюл. ВОЗ.- 1968.-Т.38,№ 1. -С76−115.
  138. Brock F. D., Dorland G.K. Limits of microbiol existence: temperature and ph. //Science 1970. — Vol. 169, № 3952, — P. 1316−1318.
  139. Buchy A. Recherches quantitatives sur la coloration vitale des cellules de levure. Rev. cytol. et cytophysiol., Veget, 1942. Vol. 5. № 3−4. P.265.
  140. Caro A., Got P., Lesne J. et al. Viability and virulens of experimentally stressed nonculturable Salmonella typhimurium //Appl. Environ. Microbiol. -1999. Vol. 65. № 7. — P.3229−3232.
  141. Chmielewski S., Venkatesh B, Lalithahumari D. Transfer and expression of a multiple antibiotic resistance plasmid in marine bacteria //Curr. Microbiol. -1998, Vol. 37. № 5. P.347−351.
  142. Colwell R.R. Global climate and infectious disease: the cholera paradigm //Science. 1996. — Vol.274, N5295. — P.2025−2031.
  143. Colwell R.R. Nonculturable but still viable and potentially pathogenic //Zbl. Bakteriol. 1993. — Bd.279, N 2. — S. 154−156.
  144. Colwell R.R., Brayton P.R., Grimes D. I. et al. Viable but non-culturable Vibrio cholerae and related pathogens in the environment: implication for release of genetically engineered microorganisms //BioTechnology.- 1985. Vol.3. -P.817−820.
  145. Colwell R.R., Huq A. Vibrio cholerae and cholerae: molecular to global perspectives / Eds. J.K. Wachsmuth, O. Olsvick, P.A. Blake. Washington, 1994 -P.l 17−133.
  146. Colwell R.R., Seidler R.J., Kaper J. et al. Occurence of Vibrio cholerae serotype 01 in Maryland and Lousiana estuaries //Appl. Environ.Microbiol. 1981.-Vol.41, № 2. — P.555−558.
  147. Colwell R.R.Vibrios in the aquatic environment an ecological paradigm //Perspect. Microbiol. Ecol.: Proc. 4th Int. Symp. Ljubljana, 1987. P.426−434.
  148. Daley K. J., Hobbie J.E., Direct counts of aquatic bacteria by a modified epif-luor-escens technique //Limnol. Oceanogr. 1975. — Vol. 20. — P.875−882.
  149. Dannkwortt P., Eischbrandt J. Lumineszenze — analyse im filtrierten ultravioletten licht. //J. Bact. 1956. — 71, № 5. P.623.
  150. Dastidar S.G., Narayanawanmi A. The occurence of chitinase in Vibrios //Ind. J. Med. Res.-1968.-Vol.56. P.654−658.
  151. De Paola A., Capers G. M., Motes M.L. et al. Isolation of Latin American epidemic strain of Vibrio cholerae 01 from US Gulf Coast //Lancet. -1992. -Vol. 339, № 8793.-P.624.
  152. Degommier J. Nouvelle tectnique de coloration des Bacillus tuberculeux pour la recherche en fluorescence //Ann. Inst. Pasteur. -1957. Vol. 92. P.692−694.
  153. Del Mar Leo M., Tafi M. C., Signoretto C. et al. Competitive polimerase chain reaction for guantification of nonculturable Enterococcus faecalis cells in lake water//FEMS Microbiol Ecol. 1999. — Vol.30. — № 4. — P.345−353.
  154. Eagle H. Media for animal cell culture //Tissue Cult. Assoc. Manual. 1977. Vol.3. -P.517−520.
  155. Ekweozor C.C., Nwoguh C.E., Barer M.R. Transient increases in colony counts observed in declining population of Campylobacter jejuni held at low temperature//FEMS Microbiol. Lett. 1998, Vol. 158. № 2. P.267−272.
  156. Epstein P.R. Cholera and the environment. //Lancet. 1992. — Vol. 339, № 8802.-P.l 167−1168.
  157. Faruque S.M., Albert M. J., Mekalonos J.J. Epydemiology, genetics and ecology of toxigenic Vibrio cholerae // Microbiolog. Mol. Biol. Rev., 1998. -Vol. 62. № 4.-P.1301−1314.
  158. Felsenfeld O. Notes on food, beverages and fomites contaminated with Vibrio cholerae //Bull. Wld. Hlth. Org. 1965. — Vol. 33. — P.725−734.
  159. Finkelstein R.A. Cholera. CRC //Crit. Rev. Microbiol. 1973. — Vol.2. -P.553−623.
  160. Francisco W.A., Abu-Soud H.M., Del-Monte A.J. et. al. Deuterium kinetic isotope effects and the mechanism of the bacterial luciferase reaction. //Biochemistry. 1998. — Vol.37. — P.2596−2606.
  161. Goodal R.R. Mepacrine metabolism: an examination of mouse liver for possible antiviral metabolites //Brit. J. Pharmacol. 1956. Vol.11. № 2 -. P.215.
  162. Gossner W. Zur Histochemie des Strugger- Effects //Verhandl. Dtsch. Ges. Pathol., 1949. -Bd.33. — S.102.
  163. Graban R.K. The basis of the determination of cell viability with the fluorochrom primuline //J. Inst. Brew. 1970. — Vol.70. № 1. — P. 16−21.
  164. Grimes D.J., Colwell R.R. Viability and virulence of Escherichia coli suspended by membrane chamber in semitrogical ocean water //FEMS Microbiol. Lett. 1986.-Vol.34.-P. 161−165.
  165. Guilliermond A., Gautheret R. Sur la propertiete des cellules vegetables d’excreter le rounde neutre apres l’avoir accumule dans leurs vacuoles. -C. r. Acad. Sci., 1937. Vol.204. № 21. P. 1520.
  166. Haun M., Duran N., Cilento G. Energy transfer from enrymically generated triplet carbonyl compounds to the fluorescent state of flavins. // Biochem. Bio-phys, Res. Cjmmun., 1978. Vol.81. — P.779−784.
  167. Hagemann P. Fluoreszenzmikroskopische Untersuchungen iiber Viren und andere Microben //Zbl. Bact. Parasitenk. 1937 Bd. 140. № 3/8. S. 184.
  168. Chowdhury M.A. R., Huq A., Xu B. et al. Effect of alum on free-living and copepodassociated Vibrio cholerae 01 and 0139 //Appl. Environ. Microbiol. -1997. -Vol. 63, № 8. P.3323−3326.
  169. Hobbie J.E., Daley K.J., Jasper S. Use of nucleopore filters for counting bacteria by fluorescencs microscopy //Appl. Enviorn. Microbiol. 1977. — Vol.33. -P.1225−1228.
  170. Hoff K.A. Survival of Vibrio anguillarum and Vibrio salmonicida at different salinities.//Appl. Environ. Microbiol. 1989. — Vol. 55.-P. 1775−1786.
  171. Hua J., Ho B. Is the coccoid form of Helicobacter pylori viable? // Micribiol. -1996. Vol.87, № 351. — P. 103−112.
  172. Huang S.Q., Tu S.C. Identification and characterization of a catalytic base in bacterial luciferase by chemical rescue of a dark mutant //Biochemistry. — 1997. Vol.36.-P.14 609−14 625.
  173. Hunter P.R., Fraser Ch. A.M. Application of the theory of adaptive poly-morfism to the ecology and epidemiology of pathogenic yeasts. //Appl. Environ. Microbiol. 1990. — Vol.56. № 7. — P. 2219−2222.
  174. Huq A., Small E.B., West P.A., et al. Ecological relationships between Vibrio cholerae and planctonic crustacean copepods //Appl. Environ. Microbiol. 1983. — Vol.45, № 1. — P.275−283.
  175. Huq.A., Huq S.A., Grimes D.J. Colonization of the gut blue crab (Callinectes sapidus) Vibrio choleraerae //Appl. Enviorn. Microbiol. -1986. -Vol. 52. № 3. -P.586−588.
  176. Hussong D., Colwell R.R., O’Brien M. et al. Viable Legionella pneumophyla not detectable by culture on agar medium //Bio/Technology. -1987. Vol.5. -P.947−950.
  177. Islam M.S., Drasar B.S., Bradley D.J. Attachment of toxigenic Vibrio cholerae 01 to varios freshwater plants and survival with a filamentous green alga, Rizoclonium fontanum //J.Trop. Med. Hyg.-1989. Vol.92, N 6. — P.396−401.
  178. Islam M.S., Drasar B.S., Bradley D.J. Long-term persistence of toxigenic Vibrio cholerae 01 in the mucilagenous sheath of a blue-green alga, Anabaena variabilis //J. Trop. Med. Hyg. 1990. — Vol.93, N 2. — P. 133−139.
  179. Islam M.S., Drasar B.S., Bradley D.J. Survival of toxigenic Vibrio cholerae 01 with a common duckweed, Lemna minor, in artificial aquatic ecosystems //Trans. Roy. Soc.Trop. Med. Hyg.-1990.-Vol.84, N 3. P.422−424.
  180. Islam M.S., Drasar B.S., Bradley D.J. Survival and attachment of toxigenic Vibrio cholerae 01 in association with four marine algae //Bangladesh J. Mic-ribiol. -1988. № 5. — P.41−48.
  181. Islam M.S., Rahim L., Alam M.J. et al. Association of Vibrio cholerae 01 with the cyanobacterium, Anabena sp., elusidated by polymerase chain reaction and trensmission electron microscopy //Trans R. Soc. Trop. Med. Hyg. — 1999. -Vol.93. -№ 1. P.36−40.
  182. Janasch H.W., Jones G.E. Bacterial population in seawater as determined by different method of enumeration //Limnol. Oceanogr. — 1959. — Vol.4. — P. 128 139.
  183. Jones D.M., Sutcliffe E.M., Curry A. Recovery of viable but nonculturable Campylobacter jejunii //Microbiol. Ecol. Health Disease. -1991. № 4. (Spec. Issue.)-P.577.
  184. Iwanaga M., Kuyyakanond T. Large production of cholera toxin by Vibrio cholerae 01 in yeast extract peptone water//J. Clin. Microbiol. -1987. —Vol.25. № 12. P.2314−2316.
  185. Kargaonkar K.S., Ranade S.S., Evolution of acridin orange fluorescence test in viability studies on Escherichia coli //Can. J. Microbiol. 1966. — Vol.12. — P. 185−190.
  186. Kogur K., Simidu U., Taga N. A tentative direct microscopic method for counting living marine bacteria //Can. J. Microbiol. -1979. -Vol.25. P415−420.
  187. Kiister H. Untersuchungen mit dem Fluoreszenzmikroskop //Dtsch. Klin. Wschr. 1939, S.92−94.
  188. Lleo del M.M., Tafi M.G., Caneperari P. Nonculturable Enterococcus faeca-les cells are metabolically active growth. //Syst. Appl. Microbiol. — 1998. — V. 21.-P. 333−339.
  189. Mac Arthur R.H. Geographical Ecology: Patterns in the Distribution of Species, New York, 1972. P.269.
  190. Megraund F. Transmission of Helicobacter pylori: faecal-oral versus oral-oral route //Aliment. Pharmacol. Ther. 1995. — Vol.9. № 2. — P.85−91.
  191. Miller C.J., Drasar B., Feachem R.C. Response of toxigenic Vibrio cholerae 01 to phisico-chemical stress in aquatic environments //J.Hyg. Camb. 1984. -Vol.93.-P.475−496.
  192. Miyaki K., Iwachara S., Sato K. et al. Basic studies on the viability of El Tor vibrios // Bull WHO.-1967. -Vol 37, № 5. P.773−778.
  193. Mizunoe Y., Wai S.N., Iskikana T. Et al. Resuscitation of viable but noncul-terable cells of Vibrio parahaemolyticus indused at low temperature unde starvation //FEMS Microbiol. Lett. -2000. Vol.186, № 1. — P. 115−120.
  194. Morgan J.A. Granwell P. A, Pickup R.W. Survival of Aeromonas salmonicida in lake water. //Appl. Environ. Microbiol. 1991, Vol.57. № 6. P.1777−1782.
  195. Morgan J.A., Rhodes W., Pickup R.W. Survival of nonculturable Aeromonas salmonicida in lake water//Appl. Environ. Microbiol. 1993. — Vol.59. — P.874−880.
  196. Morton H.J., Tolnai S. Preparation of medium 199 //Tissue Cult. Assoc. Manual. 1978.-Vol.4.-P.729−736.
  197. Mote A.A. dual fluorochroming method for Fungi and Mycobacteria in Paraffin-embedded Tissues //Staning procedures. (Baltimore), 1981. P.51 -52.
  198. Muela A, Garcina-Bringes J.M., Aranna J.J., Barcina J.J. The effect of simulated solar radiation on Escherichia coli: the relative roles of UV-D, UV-A, and photosynthetically active radiation. //Microbiol. Ecol. 2000. Vol.39. № 1. P.65−71.
  199. Munr F.M., Colwell R.R. Fate of Vibrio cholerae 01 in seawater microcosms //Water Res. 1996. — Vol. 30. — P.47−50.
  200. Navin D.R., Daya V., Reid A. et al. Adsorption and growth of Vibrio cholerae on chitin //Infect.Immun.-1979.-Vol.25.-P.768−770.
  201. Nilsson L., Oliver J.D., Kjellieberg S. Resuscitation of Vibrio vulnificus from the wiable but nonculturable state //J. Bacteriol. -1991. -Vol.173, № 16. -P.5054−5059.
  202. Oliver J.D. Formation of viable but nonculturable cells //Starvation in Bacteria New-York, 1993. P.239−241.
  203. Oliver J.D., Bockian R. In vivo resuscitation and virulence towardes mice, of viable but nonculturable cells of Vibrio vulnificus //Appl. Envirion. Micribiol. — 1995.-V.61 № 7. — P.2620−2627.
  204. Oliver J.D., Nilsson L., Kjelleberg S. Formation of nonculturable Vibrio vulnificus cells and its relationship of the starvation state. //Appl. Environ. Microbiol. 1991. — Vol.67, № 9. — P.2640−2664.
  205. Pedersen J.C., Leser T.D. Demonstration viable nonculturable cells Enterobacter cloacae on leaves and in soil //6lh. Int. Symp. Microbiol. Ecol. (ISME-6). -Barcelona, 1992. — Abstr. -P.l 17.
  206. Pitonzo B. J., Amy P. S., Rudin M. Resuscitation of microorganisms after gamma irradiation//Radiat. Res. 1999.-Vol. 152, № 1. — P.71−75.
  207. Pollitzer R. Cholera. WHO / Geneva, 1959.- 1019p.
  208. Ravel J., Knight J.T., Monahan C. E, et al. Temperature-induced recovery of Vibrio cholerae from the viable but nonculturable state: growth or resuscitation? //Microbiology. 1995.- Vol.141, № 2. — P.377−383.
  209. Robbins E. The rate of proflavin passage into single living cells with application to permeability studies //J. Gen. Physiol.-1960. Vol.43. — № 4. P.853.
  210. Rockabrand D., Austin T, Kaiser R, Blum P. Bacterial growth state disin-guished by singll-cell protein profiling: does chlorination kill coliforms in municipal effluent?//Appl. Environ. Microbiol. 1999, 65(9): 4181−4188.
  211. Rollins D., Colwell R.R. Viable but nonculturable stage of Campylobacter jejuni and its role in survival in the natural aquatic environment //Appl. Environ. Microbiol. 1986. -Vol.52. — P.531−538.
  212. Roszak D.B., Colwell R.B. Survival strategies of bacteria in the natural environment//Microbiol. Rev.-1987.-Vol.51 .№ 3. P.365−379.
  213. Roszak D.B., Grimes D.J., Colwell R.B. Viable but nonrecoverable stage of Salmanella enteritidis in aquatic systems //Can J. Microbiol. 1984. — Vol.30. -P.334−338.
  214. Roszak D.V., Colwell R.R. Metabolic activity of bacterial cells enumerated by direct viable count //Appl. Environ. Microbiol. 1987. — Vol.53. — P.2889−2893.
  215. Roth W. G., Leckie M.P., Dietzler D. N. Restoration of colony farming activity in osmotically stessed Eschericia coli. //Appl. Environ. Microbiol. -1988. Vol. 54. — P.3142 -3146.
  216. Schneider D.R., Parker C.D. Purification and characterization of the muci-nase of Vibrio cholerae //J. Infect. Dis. 1982. — Vol.145. — № 4. — P.474−482.
  217. Simidu U., Ashino R., Kaneko E. Bacterial flora of phito-and zooplankton in the inshore water in Japan //Can. J. Microbiol. 1971. — Vol.17. — P. 1157−1160.
  218. Sochard M.R., Wilson D.F., Austin B., Colwell R.R. Bacteria associted with the surface and the gut of marine copepods // Appl. Environ. Microbiol. 1979. — Vol.37.-P.750−759.
  219. Spira W. M., Huq A., Achmed Q. Sh. et al. Uptake of Vibrio cholerae biotype Eltor from contaminated water by water Hyacinth (Eichomia crassipes) //Appl. Environ. Microbiol. 1981. — Vol.42. № 3. — P.550−553.
  220. Spring J., Amann R., Zudurig W. et al. Phylogenetic diversity and identification of nonculturable magnetotactic bacteria //Syst. Appl. Microbiol. 1992. -№ 15.-P.l 16−122.
  221. Strugger S. Der gegenwartige Stand der Forschung auf dem Gebiet der fluoreszenzmikroskopischen Untersuchung der Bakterien'// Beitrage zur Fluoreszenzmikroskopie. Sonderband der Ztsch. Mikroskopie. Wien, 1949. S.86−101.
  222. Strugger S. Fluoreszenzmikroskopie und Mikrobiologie. Hanover, 1949. S.27.
  223. Strugger S. Fluoreszenzmikroskopische Untersuchungen uber die Aufnahme und Speicherung des Akridinorange durch lebende und tote Pflanzenzellen //Jenaische Z. Naturwiss.- 1940, Bd.73. S.97−134.
  224. Strugger S. Fluorescence microscope examination of bacteria in soil //Can J. Res.- 1948.-Vol.26.-P. 188.
  225. Tamplin M.L., Colwell R.R. Effects of microcosm salinity and organic substrate concentration on production of Vibrio cholerae enterotoxin // Appl. Environ. Microbiol. 1986.-Vol.52. № 2.-P.297−301.
  226. Tamplin M.L., Gauzens A.L., Huq A. et al. Attachment of Vibrio cholerae serogroup 01 to Zooplankton and phytoplankton of Bangladesh waters // Appl. Environ. Microbiol. 1990. — Vol.56. № 6. — P. 1977−1980.
  227. Tamplin M.L., Parodi C.C. Environmental spread of Vibrio cholerae in Peru //Lancet. 1991. — Vol.338. -№ 8776. — P. 1216−1217.
  228. Tholozan J.L., Cappelier J.M., Tissier J.P. Physiological characterization of viable-but-nonculturable Campylobacter jejuni cells. //Appl. Environ. Micro-biol.-1999. Vol.65. № 3. P. l 110−1116.
  229. Thom S., Warhurst D., Drasar B.S. Association of Vibrio cholerae with fresh water amoebae //J. Med. Microbiol. 1992. — Vol.36. — № 5. — P.303−306.
  230. Van de Giessen A.W., Heuvelman C.J., Abee T. et al. Experimental studies of the infectivity of Campylobacter spp. in chicks and mice //Epidemiol. Infect. -1996. Vol.117, № 3. -P.436−470.
  231. Van Overbeck L.S., Eberl L., Givskov M. Survival of, and induced stress resistance in, carbon-starved Pseudomonas fluorescens cells residing in soil. //Appl. Environ. Microbiol. 1995.-Vol.61. № 12. P.4202−4207.
  232. Vijayalakshmi N., Badrinath S., Rao R.S. Minimum inhibitory concentration (MIC) of some antibiotics against Vibrio cholerae Ol39 isolates from Pondi-cherry // Epidemiol. Infect. 1997. — Vol. 119, № 1. — P.25−28.
  233. Waldor M.K., Mekalanos J.J. Lysogenic conversion by a filamentous phage encoding cholera toxin //Science. 1996. — Vol.272, № 5270. — P. 1910−1914.
  234. Warner J.M., Oliver J. D/ Randomly amplified polymorphic DWA analysis of starved and viable but nonculturable Vibrio vulnificus cell. //Appl. Environ. Microbiol. 1998. Vol.64. № 8. P.3025−3028.
  235. Wlide M., Meyer F. Uber die Toxizitat einiger Fluorochrome //Protopl., -1955. Bd. XLIV, № 3−4 S.342−349.
  236. Wienhausen G., Deluca M. Bioluminescent assays using coimmobilized enzymes //Methods in enzymology. Bioluminescence chemiluminescence Part. B. — Orlando, 1986. — V. 133. — P. 198−209., 569−584.
  237. Willingham M.C., Pastan J. The visualization of fluorescent proteins in living cells by video intensification microscopy //Cell. 1978. — Vol.13. — P.501−507.
  238. Xu H.-Sh., Roberts N., Singleton F.L., et al Survival and viability of nonculturable Escherichia coli and Vibrio cholerae in the estuarine and marine environment//Microbiol. Ecol. 1982. — Vol. 8, № 4 — P.313−323.
  239. Zimmerman R., Ituriada R., Becker-Bzick J/ Simultaneous determination of the total number of aquatic bacteria and the nimber there of involved in respiration //Appl. Environ. Microbiol. 1978. — Vol.36. — P.926−935.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!