Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Изменение пространственной организации хромосомы 6 в ядрах трофоцитов и клеток слюнных желез Calliphora erythrocephala Mg. (Diptera: Calliphoridae) в процессе политенизации

Диссертация: Изменение пространственной организации хромосомы 6 в ядрах трофоцитов и клеток слюнных желез Calliphora erythrocephala Mg. (Diptera: Calliphoridae) в процессе политенизации
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Муха Calliphora erythrocephala является интересным объектом с точки зрения изучения пространственной организации хромосом в ядре. У С. erythrocephala политенные хромосомы обнаружены в ядрах клеток слюнных желез (Handa et al., 1981), клетках эпидермиса (Pearson, 1974), трофоцитах (Ribbert, В ier, 1969), трихогенных клетках (Ribbert, 1967), клетках мальпигиевых сосудов (Thomson, Gunson, 1970… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Архитектура хромосом в ядре
      • 1. 1. 1. История развития представлений о расположении хромосом в ядре
      • 1. 1. 2. Современные представления о ядерной архитектуре. Хромосомные территории и их расположение в пространстве ядра
      • 1. 1. 3. Территории активных и неактивных генов в ядре
      • 1. 1. 4. Взаимодействие хромосомных территорий и отдельных генетических локусов
      • 1. 1. 5. Изменение архитектуры ядра в ходе клеточной дифференцировки
      • 1. 1. 6. Современные модели пространственной организации ядра
    • 1. 2. Ядрышко — динамичная структура ядра 3 О
    • 1. 3. Анатомо-физиологическая организация Diptera. Политенизация ядер Diptera
      • 1. 3. 1. Слюнные железы Diptera
      • 1. 3. 2. Особенности оогенеза Diptera
      • 1. 3. 3. Политенизацияядер Diptera
    • 1. 4. Пространственная организация хромосом в ядре у представителей Diptera
  • Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Объект исследования
    • 2. 2. Получение хромосомоспецифичной ДНК хромосомы
    • 2. 3. Приготовление ДНК-зонда хромосомы 6 С. erythrocephala
    • 2. 4. Амплификация кластера рибосомных генов С. erythrocephala
    • 2. 5. Получение ДНК-зонда рДНК С. erythrocephala
    • 2. 6. Двуцветная 3D флуоресцентная in situ гибридизация (3D FISH) ДНК хромосомы 6 и генов рРНК с политенными хромосомами трофоцитов и клеток слюнных желез С. егу№госерка1а
    • 2. 7. Получение недавленных препаратов ядер трофоцитов и клеток слюнных желез С. егуЖгосерка1а, окрашенных азотнокислым серебром
    • 2. 8. Приготовление препаратов для изучения ультраструктуры ядер трофоцитов С. егуЖгосерка1а
    • 2. 9. Микроскопический анализ
  • Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Пространственная организация хромосомы 6 в ядрах трофоцитов
  • С. егуШгосеркаШ
    • 3. 2. Ядрышки в ядрах трофоцитов С. егуЛгосеркЫа на стадии с вторичной ретикулярной структурой
    • 3. 3. Пространственная организация ядер клеток слюнных желез
  • С. егу&госерка1а
    • 3. 4. Организация ядрышка в пространстве ядер клеток слюнных желез
  • С. егу^госеркЫа,

Изменение пространственной организации хромосомы 6 в ядрах трофоцитов и клеток слюнных желез Calliphora erythrocephala Mg. (Diptera: Calliphoridae) в процессе политенизации (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность работы.

Пространственная Пространственная организация хромосом в ядре является одной из ключевых проблем современной клеточной биологии. Утверждение, что хромосомы занимают в интерфазном ядре определенные хромосомные территории в настоящий момент не подвергается сомнению и экспериментально доказано для клеток большинства животных (Cremer, 2001), растений (Pecinka et al., 2004; Berr et al., 2006), а также одноклеточных эукариот, таких как почкующиеся и делящиеся дрожжи (Bystricky et al., 2005; Molnar, Kleckner, 2008). В основе трехмерной организации интерфазного ядра эукариот лежит дифференциальное позиционирование различных районов хромосом относительно друг друга и ядерной оболочки. Известно, что гены, хромосомные сегменты и геном как целое, трехмерно упорядочены в пространстве ядра, и их специфические ассоциации, очевидно, позволяют регулировать позиции определенных генных продуктов внутри ядра и их транспорт в цитоплазму. Жёсткая пространственная организация и функциональность ядра обеспечиваются наличием двух типов связеймежхромосомных взаимодействий (Куличков, Жимулев, 1976) и хромосомно-мембранных (Стегний, 1979).

Муха Calliphora erythrocephala является интересным объектом с точки зрения изучения пространственной организации хромосом в ядре. У С. erythrocephala политенные хромосомы обнаружены в ядрах клеток слюнных желез (Handa et al., 1981), клетках эпидермиса (Pearson, 1974), трофоцитах (Ribbert, В ier, 1969), трихогенных клетках (Ribbert, 1967), клетках мальпигиевых сосудов (Thomson, Gunson, 1970). Выявляются четкие тканеспецифичные особенности в степени политении и типе организации политенных ядер, что вероятно связано с разным функциональным значением этих тканей. В ядрах клеток слюнных желез С. erythrocephala на всех этапах политенизации выявляются политенные хромосомы. Синапсис хроматид у таких хромосом ослаблен, хромосомы рыхлые. Поперечный рисунок сохраняется только в области наиболее крупных дисков. Организация ядер трофоцитов существенно отличается от стандартных типов организации политенного ядра. В ядрах трофоцитов политенные хромосомы в ходе эндоредупликации претерпевают ряд морфологических изменений (Bier, 1957). На начальных этапах политенизации ядра трофоцитов организованы в первичную ретикулярную структуру, далее в ходе эндоредупликации происходит формирование политенных хромосом, затем, помпоновидных хромосом. Помпоновидные хромосомы декомпактизуются и происходит формирование ядра с ретикулярной структурой, но только с высоким уровнем политении.

Столь существенные различия в характере организации хромосом в ходе политенизации в органах одного организма, вероятно, связаны с функциональной особенностью данных типов клеток и, следовательно, особенностью функционирования генома.

Ранее было показано, что в ядрах трофоцитов С. erythrocephala взаиморасположение хромосом подчиняется определенным закономерностям. Центромерные районы хромосом трофоцитов не объединены в хромоцентр и рассредоточены в пространстве ядра. Хромосома 6 всегда связана тонким тяжом с хромосомой 2. Хромосома 4 располагается рядом с хромосомой 3 и 5, а 5 — с хромосомой 1. Таким образом, зачастую можно обнаружить следующее ассоциированное распределение хромосом: 6 — 2, 4 — 3, 5 — 1 (Стегний и др., 1999). Было показано, что хромосомы 3 и 6 сохраняют локальные хромосомные территории в объеме ядра на протяжении всего процесса политенизации ядер трофоцитов (Ананьина, 2005). Эти результаты по пространственной организации ядер трофоцитов С. erythrocephala были получены на давленых препаратах ядер на стадии с политенными хромосомами. Как известно, ядро трехмерно и поэтому наиболее полное представление о расположении хромосом может быть получено только при изучении трехмерного пространства ядра.

В работах Бойса (Boyes at al., 1975) было показано, что хромосома 6 С. erythrocephala содержит гены рРНК, транскрипция которых сопровождается образованием ядрышка. Однако, до сих пор не было получено данных относительно того, только ли хромосома 6 является ядрышкообразующей.

Ядрышко — эволюционно-консервативный и наиболее крупный структурный домен клеточного ядра, который принято называть «фабрикой рибосом» (Oison et al., 2002; Andersen et al., 2005). За последние годы получены убедительные доказательства того, что большое количество биологических процессов, таких как старение клеток, модификация РНК, контроль клеточного цикла и ответ на стрессирующие факторы регулируется ядрышком (Olson, 2002; Tschochner, 2003; Grummt, 2005; Boisvert, 2007; Mayer, 2005; Sirri, 2008; McKeown, Shaw, 2009). Эти наблюдения позволяют говорить о многофункциональности ядрышка и его основных белков. Кроме того, было показано, что в клетках человека ядрышко и ядерная оболочка являются своеобразным каркасом для организации ядра (Chubb et al. 2002). Не вызывает сомнения, что ядрышко играет важную роль в пространственной организации ядра. Однако, как происходит влияние ядрышка на архитектуру ядра все же остается не известно. Понимание законов организации хромосом в пространстве ядра и роли ядрышка в этом процессе существенно приблизит к разгадке принципов реализации генетического материала в ядре.

В настоящее время успехи молекулярной биологии в сочетании с развивающимися технологиями позволяют изучать организацию хромосом в трехмерном пространстве ядра. Это достигается путем получения серии оптических срезов ядра при помощи специальных микроскопических подходов. Дальнейшая их реконструкция и моделирование объемного изображения позволяют детально анализировать пространственную организацию хромосом в ядре.

Изучение организации хромосомы 6 и ядрышка в пространстве ядер трофоцитов и клеток слюнных желез С. erythrocephala имеет большое значение для понимания особенностей организации и функционирования генома в ядрах соматических клеток и клеток генеративной системы, клеток с разной морфологической структурой политенных хромосом, выполняющих разные функции.

Цель работы.

Целью исследования является анализ организации ядрышкообразующей хромосомы 6 и ядрышка в пространстве ядер трофоцитов и клеток слюнных желез С. erythrocephala с разным уровнем политенизации. Для достижения цели исследования были поставлены следующие задачи:

1. В пространстве ядер трофоцитов С. erythrocephala изучить организацию ядрышкообразующей хромосомы 6 и генов рРНК в ходе политенизации с помощью метода 3D флуоресцентной in situ гибридизации (3D FISH).

2. В пространстве ядер клеток слюнных желез С. erythrocephala изучить организацию ядрышкообразующей хромосомы 6 и генов рРНК в ходе политенизации с помощью метода 3D флуоресцентной in situ гибридизации (3D FISH).

3. Определить локализацию кластера генов рРНК в пространстве ядер трофоцитов и клеток слюнных желез С. erythrocephala.

4. Провести анализ пространственной организации ядрышка в ядрах трофоцитов и клеток слюнных желез С. erythrocephala с разным уровнем политенизации с помощью окрашивания недавленных препаратов ядер азотнокислым серебром.

Научная новизна.

Установлено, что ядрышкоорганизующей хромосомой у С. егу№госерЬа1а является только хромосома 6, так как кластер генов рРНК локализован исключительно в пределах хромосомной территории хромосомы 6. Впервые показано, что в ходе политенизации ядер происходит изменение организации ядрышкоорганизующей хромосомы 6 как в ядрах соматических клеток, так и клеток генеративной системы С. егу^госеркаШ (клетки слюнных желез и трофоциты). Показано, что распад ядрышка, занимающего центральное положение в ядре на начальных этапах политенизации на микроядрышки, распределенные в пространстве ядра в высокополитенных ядрах, коррелирует с изменением организации ядрышкоорганизующей хромосомы 6.

Научно-практическая значимость работы.

Результаты проведенного исследования позволяют расширить представления о закономерностях пространственной организации хромосом в ядре эукариотических организмов. Результаты данной работы могут быть использованы в курсах лекций по клеточной биологии для студентов биологических факультетов.

Положения, выносимые на защиту.

1. Ядрышкоорганизующей хромосомой у С. егуЖгосерксйа является хромосома 6;

2. Процесс политенизации ядер трофоцитов и клеток слюнных желез сопровождается перемещением хромосомы 6 и рибосомных генов на периферию ядра и распадом ядрышка на микроядрышки.

Апробация работы.

Полученные результаты исследования были представлены: на международной научной студенческой конференции «Студент и научно-технический прогресс» (Новосибирск, 2009) — на международной конференции «Хромосома-2009» (Новосибирск, 2009) — на международной конференции молодых ученых «Биология: от молекулы до биосферы» .

Харьков, Украина, 2009) — на международной конференции по кариосистематике «KARYO V» (Новосибирск, 2010) — на международной научной конференции «Молодежь и прогресс в биологии» (International scientific conference «Youth and progress of biology»), (Львов, Украина, 2011) — По теме диссертации опубликовано 14 печатных работ, из них 5 статей в журналах перечня ВАК.

Вклад автора.

Основные результаты работы были получены автором самостоятельно.

Анализ ультраструктуры ядер трофоцитов С. erythrocephala проводился совместно с Андреем Александровичем Миллер (НПО «Вирион», г. Томск).

Благодарности.

Автор работы выражает глубокую благодарность всем сотрудникам лаборатории эволюционной цитогенетики Научно-исследовательского Института биологии и биофизики Томского государственного университета, которые наставляли, помогали и поддерживали.

Также хотелось бы выразить особую благодарность Владимиру Николаевичу Стегнию и Татьяне Викторовне Ананьиной за поддержку, ценные советы, помощь в осмыслении результатов и написании диссертации.

Структура и объем диссертации

.

ВЫВОДЫ.

1. В ядрах трофоцитов С. егуМгосерка1а в ходе политенизации и морфологических преобразований ядра происходит изменение организации хромосомы 6 в пространстве ядра. На ранних этапах политенизации хромосома 6 занимает центральную часть ядрана поздних этапах часть хромосомы 6 перемещается на периферию, а по всему ядру распределяются ядрышкоорганизующие районы хромосомы 6.

2. В ядрах клеток слюнных желез С. егу1кгосерка1а происходит изменение пространственной организации ядрышкоорганизующей хромосомы 6 в ходе политенизации. На ранних этапах политенизации хромосома 6 занимает компактную область в центральной части ядра. На поздних этапах политенизации происходит распределение хромосомы б на блоки в пространстве ядра.

3. Ядрышкоорганизующей у С. егуЛгосерка1а является только 6 хромосома, так как кластер генов рРНК локализован в пределах хромосомной территории хромосомы 6.

4. В ядрах трофоцитов и ядрах клеток слюнных желез С. егу1кгосерка1а распад крупного ядрышка, занимающего центральное положение в ядре, на микроядрышки, распределенные в пространстве ядра, коррелирует с изменением организации ядрышкоорганизующей хромосомы 6 в пространстве ядра.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В результате проведенного исследования показано, что в ядрах, относящихся к двум типам клеток с разным функциональным значением для организма (трофоциты и клетки слюнных желез С. егуМюсеркЫа) в ходе политенизации происходит изменение пространственной организации ядра. Было выявлено, что организация ядрышкообразующей хромосомы 6 и ассоциированного с ней ядрышка в объеме ядра существенно изменяется в ходе политенизации. На начальных этапах политенизации, как в ядрах трофоцитов, так и клеток слюнных желез хромосома 6 расположена в центральной части ядра. На этих стадиях происходит формирование крупного ядрышка, ассоциированного с хромосомой 6 и занимающего центральное положение в ядре. В ходе политенизации происходит изменение организации хромосомы 6 в пространстве ядра. В ядрах трофоцитов на стадии с вторичной ретикулярной структурой, как и высокополитенных ядрах клеток слюнных желез, ядрышкоорганизующие районы хромосомы 6 распределены в пространстве ядра и ассоциированы с микроядрышками. Кроме того, гены рРНК, расположенные в объеме высокополитенных ядер, являются активно экспрессирующимися, так как выявленные с помощью окрашивания азотнокислым серебром микроядрышки являются белковым компонентом ядрышка, связанным с транскрипционно активной рДНК.

Наличие схожих механизмов реорганизации ядер, которые происходят в клетках с совершенно разным функциональным значением, может объясняться особенностями функционирования рибосомных генов и ядрышка в высокополитенных ядрах. Вероятно, описанное явление распределения ядрышкоорганизующей хромосомы и ассоциированного с ним ядрышка в пространстве ядра является характерным для всех политенных ядер.

Однако, наряду с описанными закономерностями в изменении организации хромосомы 6 в ходе политенизации существуют и различия в пространственной организации хромосомы 6 в ядрах трофоцитов и клеток слюнных желез С. егуШгосерка1а. В ядрах трофоцитов наблюдается перемещение хромосомы 6 на периферию ядра. В ядрах на стадии с вторичной ретикулярной структурой на периферии ядра расположена часть хромосомы 6, в составе которой находится так же и рибосомные гены. В ходе политенизации ядер клеток слюнных желез подобного перемещения хромосомы 6 на периферию ядра не происходит. В высокополитенных ядрах клеток слюнных желез хромосома 6 распределяется во всем пространстве ядра.

Перемещение хромосомы 6 на периферию ядра трофоцитов может объясняться изменением экспрессионной активности всех хромосом в ядре. Часть генов, не только гены рРНК, расположенные на 6 хромосоме становятся неактивными, что приводит к перемещению основной массы хромосомы 6 на периферию ядра. В ядрах клеток слюнных желез активность генов хромосомы 6 сохраняется, в результате чего перемещения на периферию не происходит.

Были описаны различия в локализации рибосомных генов на блоках хромосомной территории хромосомы 6 в ядрах трофоцитов и клеток слюнных желез. На начальных этапах политенизации в ядрах обоих органов рибосомные гены располагаются в центральной части блоков хромосомной территории хромосомы 6. В ходе политенизации ядер трофоцитов происходит перемещение рибосомных генов на периферию блоков хромосомной территории. Подобное расположение сохраняется и на завершающих этапах политенизации. В ядрах клеток слюнных желез рибосомные гены на всем протяжении политенизации сохраняют центральное положение блоков хромосомной территории хромосомы 6.

Вероятно, в ядрах трофоцитов в ходе политенизации экспрессия генов рРНК существенно выше, чем в ядрах клеток слюнных желез. В результате активной и, все возрастающей транскрипции рибосомных генов, происходит синтез огромного количества белков ядрышка. Ядрышко увеличивается в размерах, что приводит к смещению ядрышкоорганизующих районов на периферию блоков хромосомной территории хромосомы 6. Однако, в высокополитенных ядрах экспрессия генов рРНК в ядрах трофоцитов ниже, чем в высокополитенных ядрах клеток слюнных желез, что связано с перемещением рДНК в ядрах трофоцитах на периферию ядра.

В целом существуют общие закономерности расположения хромосомных территорий внутри ядра. Расположение хромосомных территорий в активно транскрибируемых клетках динамично, что указывает на возможный механизм генной регуляции через внутриядерное позиционирование отдельных локусов хромосом. Кроме того, ядрышко, как значительный домен ядра, играет важную роль в пространственной организации ядра.

Описанная динамика хромосомной территории ядрышкоорганизующей хромосомы и ассоциированного с ней ядрышка в пространстве ядра, вероятно, связана с изменением общей экспрессионной активности ядра. Кроме того, вероятно, описанное распределение ядрышкоорганизующих районов и микроядрышек в пространстве высокополитенных ядер является особенностью функционирования ядрышка на завершающих этапах политенизации. Таким образом, изменения транскрипционной активности коррелируют с изменением пространственной организации ядра.

Исходя из полученных результатов по изучению организации ядер трофоцитов и клеток слюнных желез С. erythrocephala, можно утверждать, что принцип пространственной организации ядра, когда генетически неактивный хроматин располагается преимущественно на периферии, а активный хроматин — в центральной области ядра, сформулированный для диплоидных интерфазных ядер, сохраняется для политенных ядер разных тканей, имеющих различную организацию хромосом. Следовательно, существуют общие принципы пространственной организации ядер, которые с теми или иными вариациями, реализуются в клетках, имеющих различный транскрипционный статус.

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.A., Ананьина T.B., Стегний В.H. Внутриядерная динамика хромосомы 6 в трофоцитах Calliphora erythrocephala Mg. (Diptera: Calliphoridae) II Генетика. 2010. — T. 46. — № 9. — С. 1178−1180.
  2. А.Е., Ананьина Т. В., Коханенко A.A., Стегний В. Н. Анализ гомологии половых хромосом представителей семейства Calliphoridae II Генетика. 2010. — Т. 46, — № 9. — С. 1305−1306.
  3. Т.В., Коханенко A.A., Ходжанов А. Э., Стегний В. Н. Особенности строения яйцевых трубок яичников Calliphora erythrocephala (Mg.) (Diptera: Calliphoridae) II Вестник Томского государственного университета. 2007. — № 297. — С. 175−180.
  4. Т.Б. Цитология оогенеза. М.: Наука, 1984. 247с.
  5. М.Д. Нуклеотипическая основа пространственной упорядоченности хромосом эукориот и ее значение для эволюции генома и фенотипической изменчивости. В кн.: Эволюция генома. М.:Мир. 1986. -С.234−255.
  6. Т.В. и др. M/SAR-элементы bithorax комплекса Drosophila melanogaster / Т. В. Бойкова, В. Орландо, Р. Лупо и др. // Генетика.- 2005. -Т.41, №Ц.- С. 1467−1479.
  7. В .Я., Урываева И. В. Клеточная полиплоидия. Пролиферация и дифференцировка. М.: Наука. 1981. 259с.
  8. Вассерлауф И. Э и др. Организация и дифференциальная окраска хромосом эндомитотических ядер трофоцитов Calliphora erythrocephala (Diptera: Calliphoridae)/ Вассерлауф И. Э., Ананьина Т. В., Унгер М. Ф. и др. // Генетика. 2003. — № 9.
  9. Е.Б. Мясная муха (Calliphora vicina) модельный объект экологических и физиологических исследований // Л.: Наука. — 1984. -272 с.
  10. В.А. Пространственное расположение хромосом в клеточном ядре определяет активность генов // Соросовскийобразовательный журнал. 2001. Т. 2. № 2. С. 4−10.
  11. М.Н. Политенные хромосомы в развивающемся макронуклеусе инфузорий // Цитология. 1964. — Т. 6, № 2. — С250−253.
  12. М.Н. Ядро в оогенезе // В кн.: Современные проблемы оогенеза. Наука. М. 1977. — С. 51−98.
  13. О.О., Зацепина О. В. Динамика и механизмы реорганизации ядрышка в митозе // Цитология. 2007. — Т. 49. — №. 5. — С. 355−369.
  14. И.Ф. Политенные хромосомы : морфология и структура. Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1992
  15. Е.В. Цитология трофобласта. JL: Наука. 1986. — 192 с.
  16. В.Я. Электронная микроскопия Киев: «Вища школа», 1984.-208 с.
  17. И.И. Политенные хромосомы как модель интерфазной хромосомы//Цитология. -1971.-Т. 13, № 6.-С. 716−733.
  18. H.H., Кокоза В. А. Строение слюнной железы Drosophila melanogaster и ее дифференцировка в онтогенезе // Организация и экспрессия генов тканеспецифической функции у Diptera. Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1985. — С.30−36.
  19. В.А., Жимулев И. Ф. Анализ пространственной организации генома Drosophila melanogaster на основе данных по эктопической конъюгации политенных хромосом // Генетика. 1976. — Т. 12, № 5.-С. 81−89
  20. Г. Ф. Биометрия. Москва: Высшая школа, 1990
  21. М.И., Ченцов Ю. С. Белки ядерного мат-рикса с молекулярными массами 38 и 50кДа, транспортируемые хромосомами в митозе //Цитология. 2010. — Т. 52. — № 9. — С. 760−769.
  22. Н.М., Оленкина О. М., Гвоздев В. А. Инактивация репортерных генов клонированными гетерохроматированными повторами Drosophila melanogaster сопровождается компактизацией хроматина //
  23. Генетика. 2003. Т.39. № 5. С.682−686.
  24. О.И. Роль некодирующей ДНК в трехмерной организации хроматина // Цитология. 2003. — Т. 45, № 3 — С. 899.
  25. C.B. Пространственная организация эукариотического генома и работа эпигенетических механизмов // Генетика. 2006. — Т.42, № 12. — С.1605−1614.
  26. Н. Б., Алексеенко А. А., Беляева Е. С. и др. Микроклонирование и характеристика ДНК из районов прицентромерного гетерохроматина политенных хромосом Drosophila melanogaster II Генетика. 1999. T. 35. № 1. С. 55−61.
  27. Н.Б. Методы работы с хромосомами млекопитающих: Учеб. пособие / Новосиб. гос. ун-т. Новосибирск, 2006.152 е., 63 ил.
  28. О.Л. Генный и хромосомный уровни контроля развития // Вестник ВОГиС. 2003. № 24−25. С.2−8.
  29. В.Н. Реорганизация структуры интерфазных ядер в онто-и филогенезе малярийных комаров // Докл. АН СССР. 1979. Т. 249. № 5. С. 1231.
  30. В.Н., Вассерлауф Н. Э. Особенности взаимного расположения политенных хромосом в генеративной ткани у Drosophila melanogaster II Генетика. 1991а. Т.27. N7. С.1163−1168.
  31. В.Н., Вассерлауф Н. Э. Межвидовые отличия коориентации первично политенных хромосом трофоцитов у Drosophila melanogaster, D.simulans и D. mauritiana Н Генетика. 19 916. Т.27. N7. С.1196−1173.
  32. В.Н. Архитектоника генома, системные мутации иэволюция. Н.: Изд-во Н-ого ун-та. 1993. с. 110.
  33. В.Н., Вассерлауф И. Э., Ананьина Т. В. Взаиморасположение первичных политенных хромосом яичников у 12 видов группы «virilis» рода Drosophila (Sophophora) // Генетика. 1996. Т.32. N6. С.750−754.
  34. . Электронная микроскопия для начинающих / Под ред. Ю. В. Полякова. -М: «Мир», 1975. 326 с.
  35. П.В., Зацепина О. В. Морфофункциональная классификация ядрышек // Успехи соврем, биол. 1989. — Т. 105 (2). — С. 252—268.
  36. Ю.С. Введение в клеточную биологию. Москва: Академкнига, 2005.
  37. А.И. О структуре кариотипа и порядке расположения хромосом в интерфазном ядре // Цитология. 1971. — Т.13. — № 9. — С. 11 571 163.
  38. Akhtar A, Gasser SM. The nuclear envelope and transcriptional control // Nat Rev Genet. 2007. — Vol. 8. — P. 507−517.
  39. Alberts B. et al. Molecular biology of the cell / B. Alberts, A. Johnson, J. Lewis, M. Raff, K. Roberts, P. Walter.// Garland Science: New York. -2008.
  40. Alexandrova O. et al. Replication labeling patterns and chromosometerritories typical of mammalian nuclei are conserved in the early metazoan Hydra / O. Alexandrova, I. Solovei, T. Cremer, C.N. David // Chromosoma. 2003. — № 112.
  41. Ammermann D. Risenchromosomen in der Macronucleusanlage des Ciliaten Stylonchia species // Naturwissenschafiten. 1964. — Bd. — 51. — S. 249
  42. Andersen J.S. et al. Nucleolar proteome dynamics / J.S. Andersen, Y.W. Lam, A.K. Leung, S.E. Ong, C.E. Lyon, A.I. Lamond, M. Mann // Nature. -2005.-Vol. 433. P. 77—83.
  43. Andrulis E.D. et al. Perinuclear localization of chromatin facilitates transcriptional silensing / E.D. Andrulis, A.M. Neiman, D.C. Zappula, R. Sternglanz //Nature. 1998. V.394. — P.592−595.
  44. Ashburner M. Function and structure of polytene chromosomes during insect development/ M. Ashburner, J.W.L. Beament, J.E. Treherne, V.B. Wigglesworth // Advances in insect physiology. L. N.Y. — 1970. — Vol. 7. — P. 195.
  45. Babu D.A. et al. Pdxl and b2/NeuroDl participate in a transcriptional complex that mediates short-range DNA looping at the insulin gene / D.A. Babu, S.K. Chakrabarti, J.C. Garmey, R.G. Mirmira // J Biol Chem. 2008. — Vol. 283. -P.8164−8172.
  46. Balbiani E.G. Sur la structure du noyau des cellules salivares chez les larves de Chironomus // Zool. Anz. 1881. — Vol. 4. P. 637−641, 662−666
  47. Barr M.L., Bertram E.G. A morphological distinction between neurons of the male and female, and the behavior of the nucleolar satellite during accelerated nucleoprotein synthesis // Nature. — 1949. Vol. 163. P. 676−677.
  48. Bartkuhn M., Renkawitz R. Long range chromatin interactionsinvolved in gene regulation // Biochim Biophys Acta. 2008. — Vol. 1783. P. 2161−2166.
  49. Beermann W., Clever U. Chromosome puffs // Sei. Amer. 1964. -Vol. 210.-P. 50−58.
  50. Belmont A.S., Bruce K. Visualization of Gl chromosomes: A folded, twisted, supercoiled chromonema model of interphase chromatid structure // J Cell Biol. 1994. — Vol. 127. -P. 287−302.
  51. Bennett M.D. Genotypic control of centromere position of parental genomes in Hordeum Secale hybrid metaphases // J. Cell Sei. 1987. — V8. -P.291−304.
  52. Berendes H.D., Ashburner M. The salivary glands // The genetics and biology of Drosophila / M. Ashburner, T.R.F. Wright // London- New York- San Francisko: Acad. Press, 1978. — Vol. 2b. — P. 453−492.
  53. Berezney R., Mortillaro M.J., Ma H. et al. The nuclear matrix: a structural milieu for genomic function // Int. Rev. Cytol. 1995. — V. 162A. — P. 165.
  54. Berezney R. et al. Spatio-temporal dynamics of genomic organization and function in the mammalian cell nucleus / R. Berezney, K.S. Malyavantham, A. Pliss, S. Bhattacharya, R. Acharya // Adv Enzyme Regul. 2005. — Vol. 45. — P. 17−26.
  55. Bier K. Endomitose und politanie in den Nahrzellenkernen von Calliphora erythrocephala Meigen // Chromosoma. 1957. — Vol. 8. — P. 493−522.
  56. Bier K. Der Karyotyp von Calliphora erythrocephala Meigen unter besonderer berucksichtigung der Nahrzellkernchromosomen im debundelten und gepaarten zustand // Chromosoma. 1960. Vol. 11. — P. 335−364.
  57. Bodenstein D. The postembryonic development of Drosophila //
  58. Biology of Drosophila / Ed. M. Demerec. N.Y.: John Wiley and Sons, Inc. 1950. -Ch. IV.-P. 275−367.
  59. Boisvert F.M. et al. The multifunctional nucleolus / F.M. Boisvert, S. van Koningsbruggen, J. Navascues, A.I. Lamond // Nat Rev Mol Cell Biol. 2007. -Vol. 8. P. 574−585.
  60. Borden J., Manuelidis L. Movement of the X chromosome in epilepsy // Science. 1988. — Vol. 242. P. 1687−1691.
  61. Bornfleth H. et al. Quantitative motion analysis of subchromosomal foci in living cells using four-dimensional microscopy/ H. Bornfleth, P. Edelmann, D. Zink, T. Cremer, C. Cremer // Biophys J. 1999. — Vol. 77. P. 2871−2886.
  62. Boveri J. Die Blastomerenkerne von Ascaris megalocephala und die Iheorie der Chromosomenindividualitat // Arch. Zellforsch. 1909. — V.3. — P. 181 268.
  63. Boyes J.W. et al. Cytotaxonomy of Calliphoridae (Diptera) / J.W. Boyes, G.E. Shewell // Genetica. 1975. — V. 45. — P. 435−488.
  64. Boyle S. et al. The spatial organization of human chromosomes within the nuclei of normal and emerin-mutant cells / S. Boyle, S. Gilchrist, J.M. Bridger et al. // Hum. Mol. Genet. 2001. — V. 10. — P. 211−219.
  65. Branco M.R. et al. Intermingling of chromosome territories in interphase suggests role in translocations and transcription-dependent associations / M.R. Branco, A. Pombo // PLoS Biol. 2006. — V.4. — P. 138
  66. Bridger J.M. et al. Nuclear RNAs confined to a reticular compartment between chromosome territories / J.M. Bridger, C. Kalla, H. Wodrich, S. Weitz, J.A. King, K. Khazaie, H.G. Krausslich, P. Lichter// Exp Cell Res. 2005. — Vol. 302. P. 180−193.
  67. Callow R.S. Comments on Bennett’s model of somatic chromosome disposition//Heredity. 1985. — V.54. — P.171−177.
  68. Cavalli G. Chromosome kissing // Curr Opin Genet Dev. 2007. Vol. 17. P. 443−450.
  69. Chambeyron S. et al. Nuclear re-organisation of the Hoxb complex during mouse embryonic development / S. Chambeyron, N.R. Da Silva, K.A. Lawson, W.A. Bickmore //. Development. 2005. — Vol. 132. — P. 2215−2223.
  70. Chattopadhyay S., Pavithra L. MARs andMARBPs: key modulators ofgene regulation anddisease manifestation //Subcell. Biochem. 2007. — V. 41. -P. 213−230.
  71. Chubb J.R., Boyle S., Perry P., Bickmore W.A. Chromatin motion is constrained by association with nuclear compartments in human cells // Curr Biol. -2002.-Vol. 12.-P. 439−445.
  72. Chubb J.R., Bickmore W.A. Considering nuclear compartmentalization in the light of nuclear dynamics // Cell. 2003. — Vol. 112.-P. 403−406
  73. Clemson C.M. et al. The X chromosome is organized into a gene-rich outer rim and an internal core containing silenced nongenic sequences/ C.M.
  74. Clemson, L.L. Hall, M. Byron, J. McNeil, J.B. Lawrence // Proc Natl Acad Sei. -2006.-Vol. 103.-P. 7688−7693.
  75. Coates D.J., Smith D. The spatial distribution of chromosomes in metaphase neuroblast cells from subspecific Fl hybrids of the grasshopper Caledia captiva // Chromosoma. 1984. V.90. — P.338−348.
  76. Comings D.E. The rationale for an ordered arrangement of chromatin in the interphase nucleus // The Amer. J. Human. Genet. 1968. — V. 20.- № 5. -P. 440.
  77. Cremer C. et al. Preparative dual-beam sorting of the human Y chromosome and in situ hybridization of cloned DNA probes / C. Cremer, G. Rappold, J.W. Gray, C.R. Muller, H.H. Ropers // Cytometry. 1984. — Vol. — 5. -P. 572−579.
  78. Cremer T., Cremer M. Chromosome territories // Cold Spring Harbor Laboratory Press. 2010. — doi:10.1101/cshperspect.a003889
  79. Croft J.A. et al. Differences in the localization and morphology of chromosomes in the human nucleus / J.A. Croft, J.M. Bridger, S. Boyle et al. // J. Cell Biol. 1999. — V.145, № 6. — P. 1119−1131.
  80. Dehghani H., Dellaire G., Bazett-Jones D.P. Organization of chromatin in the interphase mammalian cell // Micron. 2005. — 36. — P. 95−108.
  81. Dekker J. et al. Capturing chromosome conformation / J. Dekker, K. Rippe, M. Dekker, N. Kleckner// Science. 2002. — Vol. 295. P. 1306−1311.
  82. Dekker J. Gene regulation in the third dimension // Science. 2008. -Vol. 319.-P. 1793−1794.
  83. Deniaud E., Bickmore W.A. Transcription and the nuclear periphery: Edge of darkness / Curr Opin Genet Dev. 2009. — Vol. 19. — P. 187−191.
  84. Drygin D. et al. Anticancer Activity of CX-3543: A Direct Inhibitor of rRNA Biogenesis / D. Drygin, A. Siddiqui-Jain, S. O’Brien, M. Schwaebe, A. Lin // Cancer Research. 2009. — Vol. 69. P. 7653−7661.
  85. Edelmann P. et al. Morphology and dynamics of chromosome territories in living cells / P. Edelmann, H. Bornfleth, D. Zink, T. Cremer, C. Cremer // Biochim Biophys Acta. 2001. — Vol. 1551. — P. 29−39.
  86. Erazo A., Yee M.B., BanfieldB.W., Kinchington P.R. The alphaherpesvirus US3/ORF66 protein kinases direct phosphorylation of the nuclear matrix protein matrin 3 //J. Virol. 2011. — V. 85. — N 1. — P. 568−581.
  87. Erbrich P. Uber Endopolyploidie und Kernstrukturen in Endospermhaustorien // Osterr. bot. Z. 1965. — Bd. 112. — S. 114−124.
  88. Fakan S., van Driel R. The perichromatin region: A functional compartment in the nucleus that determines large-scale chromatin folding // Semin Cell Dev Biol. 2007. — Vol. 18. P. 676−681.
  89. Fawcett J.J. et al. Large-scale chromosome sorting / J.J. Fawcett, J.L. Longmire, J.C. Martin, L.L. Deaven, L.S. Cram // Methods Cell Biol. 1994. -Vol. 42. P. 319−330.
  90. Federico C. et al. The pig genome: compositional analysis and identification of the gene-richest regions in chromosomes and nuclei / C. Federico, S. Saccone, L. Andreozzi, S. Motta, V. Russo, N. Carels, G. Bernardi // Gene. -2004. Vol. 343. P. 245−251.
  91. Fedorova E., Zink D. Nuclear architecture and gene regulation // Biochim Biophys Acta. 2008. — Vol. 1783. — P. 2174−2184.
  92. Fedorova E., Zink D. Nuclear genome organization: common themes and individual patterns // Curr Opin Genet Dev. 2009. — Vol. 19. P. 166−171.
  93. Finch R.A., Smith J.B., Bennett M.D. Hordeum and secale mitotic genomes lie apart in a hybrid // J. Cell Sci. 1981.
  94. Finlan L.E. et al. Recruitment to the nuclear periphery can alter expression of genes in human cells / L.E. Finlan, D. Sproul, I. Thomson, S. Boyle, E. Kerr, P. Perry, B. Ylstra, J.R. Chubb, W.A. Bickmore // PLoS Genet. 2008. -Vol. 4. — el000039.
  95. Fraenkel G.A. Function of the salivary glands of the larvae of Drosophila and other flies // Biol. Bull. (Woods Hole). 1952. — Vol. 103. — P. 285−286.
  96. Fraenkel G., Brookes V.J. The process by which the puparia of many species of flies become attached to a substrate // Biol. Bull. (Woods Hole). 1953. -Vol. 105.-P. 442−449.
  97. Fraser P., Bickmore W. Nuclear organization of the genome and the potential for gene regulation // Nature. 2007. — Vol. 447. — P. 413−417.
  98. Gasser S.M. Visualizing chromatin dynamics in interphase nuclei // Science. 2002. — Vol. 296. — P. 1412−1416.
  99. Gilbert N. et al. Chromatin architecture of the human genome: generich domains are enriched in open chromatin fibers / N. Gilbert, S. Boyle, H.
  100. Fiegler, K. Woodfine, N.P. Carter, W.A. Bickmore // Cell. 2004. — Vol. 118. P. 555−566.
  101. Gray J.W. et al. High-speed chromosome sorting/ J.W. Gray, P.N. Dean, J.C. Fuscoe, D.C. Peters, B.J. Trask, G.J. van den Engh, M.A. Van Dilla // Science. 1987. — Vol. — 238. P. 323−329.
  102. Gregg T.C. et al. Insectivory and social digestion in Drosophila / Gregg T.C., McCrate A., Reveal G., Hall S., Rypstra A.L. // Biochem. Genet. -1990. Vol. 28. — P. 197−207.
  103. Grunstein M. Yeast heterochromatin: regulation of its assembly and inheritance by histones // Cell. 1998. V.93. P.325−328.
  104. Guarda A. et al. Interaction between the inner nuclear membrane lamin B receptor and the heterochromatic methyl binding protein, MeCP2 / A. Guarda, F. Bolognese, I. M. Bonopace et al. // Exp. Cell Res. 2009. — V.315, № 11.-P. 1895−1903.
  105. Guelen L., Pagie L., Brasset E. et.al. Domain organization of human chromosomes revealed by mapping of nuclear lamina interactions // Nature. -2008. V. 453. — N 7197. — P. 948−951.
  106. Guillot P. V., Martin S., Pombo A. The organization of transcription in the nucleus of mammalian cells // In: Vision of the cell nucleus. California: Amer. Sci. Publ. 2005. — P. 95—105
  107. Habermann F.A. et al. Arrangements of macro- and microchromosomes in chicken cells / F.A. Habermann, M. Cremer, J. Walter, G.
  108. Kreth, J. von Hase, K. Bauer, J. Wienberg, C. Cremer, T. Cremer, I. Solovei // Chromosome Res. 2001. — № 9.
  109. Hancock R. A role for macromolecular crowding effects in the assembly and function of compartments in the nucleus // J Struct Biol. 2004. -Vol. 146.-P. 281−290.
  110. Handa S.M. et al. Mapping of the salivary glands chromosomes of Chrysomia megacephala (Calliphoridae: Diptera) // Cytologia. 1981. — Vol. 46. -P. 161−167
  111. Hasitschka-Jenschke G. Die Entwicklung der Samenanlage von Allium ursinum mit besonderer Berucksichtigung der endopolyploiden Kerne in Synergiden und Antipoden // Osterr. bot. Z. 1957. — Bd. 104. — S. 1−24.
  112. Hasitschka-Jenschke G. Das Langenverhaltnis der eu und heterochromatischen Abschnitte riesenchromosomenartiger Bildungen vergleichen mit dem Prophasehromosomen bei Bryonia dioica // Chromosoma. — 1961. — Vol. 12. -P. 466−483.
  113. Hepperger C. et al. Three-dimensional positioning of genes in mouse cell nuclei / C. Hepperger, A. Mannes, J. Merz, J. Peters, S. Dietzel // Chromosoma .-2008.-Vol. 117-P. 535−551.
  114. Hilliker A.J. Assaying chromosome arrangment in embryonic interphase nuclei of Drosophila melanogaster by radiation-induced interchanges // Genet.Res. 1985. — Vol. 90. -P. 340−351
  115. Hutchison C.J. Lamins: buildingblocks or regulators ofgene expression? // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2002. — V. 3. — N 11. — P. 848−858.
  116. Jackson D.A., Pombo A. Replicon clusters are stable units of chromosome structure: evidence that nuclear organization contributes to the efficient activation and propagation of S phase in human cells / J Cell Biol. 1998. -Vol. 140. P. 1285−1295.
  117. Khalil A. et al. Chromosome territories have a highly nonspherical morphology and nonrandom positioning / A. Khalil, J.L. Grant, L.B. Caddie, E. Atzema, K.D. Mills, A. Arneodo // Chromosome Res. 2007. — Vol. 15. P. 899
  118. Kind J., van Steensel B. Genome-nuclear lamina interactions andgene regulation // Curr. Opin. Cell Biol. 2010. — V. 22. — N 3. — P. 320−325.
  119. King R.C. The cell cycle and cell differentiation in the Drosophila ovary // Results and problems in cell differentiation. 1975. — P. 85−109.
  120. Kioussis D. Gene regulation: Kissing chromosomes // Nature. 2005. -Vol. 435. P. 579−580.
  121. Kourmouli N. et al. Binding of heterochromatin protein 1 to the nuclear envelope is regulated bu soluble form of tubulin / N. Kourmouli, G. Dialynas, C. Petraki et al. // J. Biol. Chem. 2001. — V.276, № 16. — P. 1 300 713 014.
  122. Kumaran R.I., Spector D.L. A genetic locus targeted to the nuclear periphery in living cells maintains its transcriptional competence // J Cell Biol. -2008.-Vol. 180. P. 51−65.
  123. Lamond A.I., Spector D.L. Nuclear speckles: a model for nuclear organelles // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2003. — V. 4. — P. 605−612.
  124. Lanctot C. et al. Dynamic genome architecture in the nuclear space: regulation of gene expression in three dimensions / C. Lanctot, T. Cheutin, M.
  125. Cremer, G. Cavalli, T. Cremer // Nat Rev Genet. 2007. — Vol. 8. — P. 104−115
  126. Ling J.Q. et al. CTCF mediates interchromosomal colocalization between Igf2/H19 and Wsbl/Nfl / J.Q. Ling, T. Li, J.F. Hu, T.H. Vu, H.L. Chen, X.W. Qiu, A.M. Cherry, A.R. Hoffman // Science. 2006. — Vol. 312. — P. 269 272.
  127. Maeshima K. et al. Chromatin structure: does the 30-nm fibre exist in vivo / K. Maeshima, S. Hihara, M. Eltsov // Curr. Opin. Cell Biol. 2010. — Vol. 22.-P. 291−297.
  128. Mahy N.L. et al. Spatial organization of active and inactive genes and noncoding DNA within chromosome territories / N.L. Mahy, P.E. Perry, S. Gilchrist, R.A. Baldock, W.A. Bickmore // J Cell Biol. 2002. — Vol. 157. P. 579 589.
  129. Marshall W.F. Gene expression and nuclear architecture during development and differentiation // Mechanisms of Development. 2003. — V. 120. -P. 1217−1230.
  130. Martou G., De Boni U. Nuclear topology of murine, cerebellar Purkinje neurons: changes as a function of development // Exp Cell Res. 2000. -Vol. 256. P. 131−139.
  131. Matarazzo M.R. Chromosome territory reorganization in a human disease with altered DNA methylation // PNAS. 2007. — V. 104. — № 42 — P. 16 546−16 551.
  132. Mayer C., Grummt I. Cellular stress and nucleolar function // Cell Cycle. 2005. — Vol. 4. — P. 1036−1038.
  133. Mayer R. et al. Common themes and cell type specific variations of higher order chromatin arrangements in the mouse / R. Mayer, A. Brero, J. von Hase, T. Schroeder, T. Cremer, S. Dietzel // BMC Cell Biol. 2005. — Vol. 6. — P.
  134. Mayr C. et al. Comparative analysis of the functional genome architecture of animal and plant cell nuclei / C. Mayr, Z. Jasencakova, A. Meister, I. Schubert, D. Zink // Chromosome Res. 2003. — № 11.
  135. McKeown P.C., Shaw P.J. Chromatin: linking structure and function in the nucleolus // Chromosoma. 2009. — Vol. 118. P. 11−23.
  136. Mitchell H.K., Tracy U.W., Lipps L.S. The prepupal salivary glands of Drosophila melanogaster//Biochem. Genet. 1977. — Vol. 15. -P. 563−573.
  137. Molnar M., Kleckner N. Examination of interchromosomal interactions in vegetatively growing diploid Schizosaccharomyces pombe cells by Cre/loxP site-specific recombination // Genetics. 2008. — Vol. 178. P. 99−112.
  138. Moorefield H.H., Fraenkel G. The character and ultimate fate of the larval salivary secretion of Phormia regina Meig. (Diptera: Calliphoridae) // Biol. Bull.-1954.-Vol. 106.-P. 178−184.
  139. Mora L. et al. Chromosome territory positioning of conserved homologous chromosomes in different primate species / L. Mora I. Sanchez, M. Garcia et al. // Chromosoma. 2006. — V. l 15. — P. 367−375.
  140. Mosgoeller W. Nucleolar ultrastructure in vertebrate // In: The nucleolus. New York: Kluwer Academic/Plenium Publishers. 2004. — P. 10—20.
  141. Nazar R.N. Ribosomal RNA processing and ribosome biogenesis in eukaryotes // IUBMB Life. 2004. — Vol. 56. — P. 45765.
  142. Nemeth A. et al. Initial genomics of the human nucleolus / A. Nemeth,, A. Conesa, J. Santoyo-Lopez, I. Medina, D. Montaner, B. Peterfla, I. Solovei, T. Cremer, J. Dopazo, G. Langst // Plos Genet. 2010. — Vol. 6. — el 889.
  143. Neusser M. et al. Evolutionarily conserved, cell type and species-specific higher order chromatin arrangements in interphase nuclei of primates / Neusser M., Schubel V., Koch A., Cremer T., Muller S. // Chromosoma. 2007. № 116.-P. 307−320.
  144. Nickerson J. Experimental observations ofa nuclear matrix // J. Cell Sei. 2001.-V. 114.-P. 46374.
  145. Olson M.O., Hingorani K., Szebeni A. Conventional and nonconventional roles of the nucleolus // Int. Rev. Cytol. 2002. — Vol. 219. — P. 199—266.
  146. Pearson M.J. The abdominal epidermis of Calliphora erythrocephala (Diptera).I. Polyteny and growth in the larval cells // J. Cell. Sei. 1974. — Vol.16. -P. 113−131.
  147. Pederson T. The spatial organization of the genome in mammalian cells // Curr. Opin. Genet. Devel. 2004. — № 14.
  148. Postberg J. et al. Exploiting nuclear duality of ciliates to analyze topological requirements for DNA replication and transcription / J. Postberg, O. Alexandrova, T. Cremer, H.J. Lipps // J. Cell Sei. 2005.
  149. Prabhoo N.R. A note on giant chromosomes in the salivary glands of Womersleya sp. (Collembola, Insecta) // Bull. Entomol., Madras. -1961. Vol. 2. -P. 21−22
  150. Rabl C. Uber Zelllheilung // Morphologisches Jahrbuch. 1885. -P.214−330.
  151. Rambousek F.J. Cytologick pomery slinnych zlaz u lerev Chironomus plumosus L. // Vestnik Kral. Ces. Spol. Nauk. Trida II. 1912. — P. 1−25
  152. Reddy K.L. et al. Transcriptional repression mediated by repositioning of genes to the nuclear lamina / K.L. Reddy, J.M. Zullo, E. Bertolino, H. Singh // Nature. 2008. Vol. 452. — P. 243−247.
  153. Ribbert D., Bier K. Multiple nucleoli and enhanced nucleolar activity in the nurse cells of the insect ovary // Chromosoma. 1969. — Vol. 27. — P. 178 197.
  154. Ribbert D. Chromosomes and puffing in experimentally induced polytene chromosomes of Calliphora erythrocephala // Chromosoma (Berl.). 1979. V.74. — P.269−298.
  155. Richards G., Hoffman J.A. Introduction to the insect neuroendocrine system // Handbook of natural Pesticides. Vol. Ill Insect Growth regulators / G. Richards, J.A. Hoffman, E.D. Morgan, N.B. Mandava // Boca Ration: CRC press, 1986.-PtA.-P. 1−14.
  156. Saccone S. et al. Localization of the generichest and the gene-poorest isochores in the interphase nuclei of mammals and birds / S. Saccone, C. Federico, G. Bernardi // Gene. 2002. — Vol. 300. — P. 169−178.
  157. R., Grosschedl R. 2007. Dynamics and interplay of nuclear architecture, genome organization, and gene expression // Genes Dev. Vol. 21. — P. 3027−3043.
  158. Sehnal F. Growth and life cycles // Comprehensive insect physiology, biochemistry and pharmacology / F. Sehnal, G.A. Kerkut, L.I. Gilbert // Oxford- New York- Toronto- Sydney- Paris- Frankfurt- Pergamon Press, 1985. — Vol. 2. -P.34−53.
  159. Shinkura N. et al. Pushing the envelope: chromatin boundaries at the nuclear pore / N. Shinkura, W.C. Forrester // Molecular Cell. 2003. — P. l 156 -1158.
  160. Sirri V. Nucleolus: the fascinating nuclear body / V. Sirri, S. Urcuqui-Inchima, P. Roussel, D. Hernandez-Verdun //. Histochem Cell Biol. 2008. — Vol.129.-P. 13−31.
  161. Solovei I. et al. Nuclear architecture of rod photoreceptor cells adapts to vision in mammalian evolution /1. Solovei, M. Kreysing, C. Lanctot, S. Kosem, L. Peichl, T. Cremer, J. Guck, B. Joffe // Cell. 2009. — Vol. 137. P.356−368.
  162. Spilianakis C.G. et al. Interchromosomal associations between alternatively expressed loci / C.G. Spilianakis, M.D. Lalioti, T. Town, G.R. Lee, R.A. Flavell // Nature. 2005. — Vol. — 435. P. 637−645.
  163. Steffensen D.M. Chromosome architecture and the interphase nucleus: Data and theory on the mechanisms of differentiation and determination // Chromosomes Today. 1977. — Amsterdam: Elsever. — V.6. — P.247.
  164. Strasburger E. Die stofflichen Grundlagen der Vererbung im organischen Reich // Gustav Fischer. 1905.
  165. Swedlow J.R. et al. Nuclear dynamics: where genes are how they got there / J.R. Swedlow, A. Lamond // Genome biology. 2001. — V.2. — № 3. P. 0002.1−0002.7.
  166. Taddei A. et al. Nuclear pore association confers optimal expression levels for an inducible yeast gene / A. Taddei, G. Van Houwe, F. Hediger, V. Kalck, F. Cubizolles, H. Schober, S.M. Gasser. // Nature. 2006. Vol. 441. -P.774−778.
  167. Tajbakhsh J. et al. Spatial distribution of GC- and AT-rich DNA sequences within human chromosome territories / J. Tajbakhsh, H. Luz, H. Bornfleth, S. Lampel, C. Cremer, P. Lichter // Exp. Cell Res. 2000. — V.255(2) -P.229−37.
  168. Thiry M., Lafontaine D.L. Birth a nucleolus: the evolution of nucleolar compartments // Trends Cell Biol. 2005. — Vol. 15. — P. 194—199.
  169. Thomson J.A., Gunson M.M. Developmental changes in the majorinclusion bodies of polytene nuclei from larval tissues of the blowfly, Calliphora stygia // Chromosoma. 1970. -Vol. 30. — P. 193−201.
  170. Towbin B.D., Meister P., Gasser S.M. The nuclear envelope a scaffoldfor silencing //Curr. Opin. Genet. Dev. — 2009. — V. 19. — N 2. — P. 180−186.
  171. Visser A.E., Aten J.A. Chromosomes as well as chromosomal subdomains constitute distinct units in interphase nuclei // J Cell Sei. 1999. — Vol.112. P. 3353−3360.
  172. Visser A.E. et al. High resolution analysis of interphase chromosome domains / A.E. Visser, F. Jaunin, S. Fakan, J.A. Aten // J Cell Sei. 2000. — Vol.113.-P. 2585−2593.
  173. Williams R.R. et al. Subchromosomal positioning of the epidermal differentiation complex (EDC) in keratinocyte and lymphoblast interphase nuclei / R.R. Williams, S. Broad, D. Sheer, J. Ragoussis // Exp Cell Res. 2002. — Vol. 272.-P. 163−175.
  174. Wischnitzer S. The submicroscopic morphology of the interphase nucleus // Int Rev Cytol. 1973. — Vol. 34. — P. 1−48.
  175. Zhimulev I.F., Kolesnikov N.N. Synthesis and secretion of mucoprotein glue in the salivary of Drosophila melanogaster // Wilhelm Roux’s Arch.- 1975.-Vol. 178.-P. 15−28.
  176. Zorn C. et al. Unscheduled DNA synthesis after partial UV irradiation of the cell nucleus: distribution in interphase and metaphase / C. Zorn, C. Cremer, T. Cremer, J. Zimmer // Exp. Cell Res. 1979. — V. 124, № 1. — P. 111−119.
  177. Zuckerkandl E., Cavalli G. Combinatorial epigenetics, «junk DNA», and the evolution of complex organisms // Gene. 2007. — Vol. 390. -P. 232−242.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!