Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Основные механизмы формирования и персистенции бакуловирусных инфекций у массовых видов лесных насекомых-фитофагов

Диссертация: Основные механизмы формирования и персистенции бакуловирусных инфекций у массовых видов лесных насекомых-фитофагов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Актуальность проблемы. Одним из важнейших резервов сохранения лесного фонда и продуктивности лесного хозяйства является защита насаждений от насекомых. В России от различных негативных факторов (в основном пожаров) ежегодно погибает около 300 тыс. га лесов, на долю насекомых в этом процессе приходится в среднем 36 тыс. га, или более 10% (Матусевич, Гниненко, 2000). В отдельные годы влияние этого… Читать ещё >

Содержание

  • Страницы
  • Список сокращений
  • Введение
  • Глава 1. Объекты и методы исследований
    • 1. 1. Объекты исследований
    • 1. 2. Культивирование насекомых на ИПС
      • 1. 2. 1. Сбор яйцекладок в очагах массового размножения и их хранение
      • 1. 2. 2. Стерилизация поверхности яиц
      • 1. 2. 3. Приготовление питательной среды
      • 1. 2. 4. Культивирование гусениц
      • 1. 2. 5. Сбор и содержание куколок
      • 1. 2. 6. Культивирование имаго
    • 1. 3. Культивирование насекомых на естественном корме
    • 1. 4. Инфицирование насекомых вирусом и активация латентной вирусной инфекции
    • 1. 5. Диагностика ядерного полиэдроза
    • 1. 6. Выделение и очистка вируса
    • 1. 7. Идентификация вирусных изолятов
    • 1. 8. Идентификация скрытой вирусной инфекции у насекомых
    • 1. 9. Мониторинг непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки в очагах массового размножения
    • 1. 10. Применение ВЯП для ограничения численности непарного шелкопряда
    • 1. 11. Ограничение численности шелкопряда-монашенки
    • 1. 12. Планирование экспериментов и статистическая обработка данных
  • Глава 2. Совершенствование методов лабораторного культивирования непарного шелкопряда
    • 2. 1. Оптимизация ИПС
    • 2. 2. Разработка методики культивирования непарного шелкопряда в лабораторных условиях
    • 2. 3. Получение лабораторных культур непарного шелкопряда

Основные механизмы формирования и персистенции бакуловирусных инфекций у массовых видов лесных насекомых-фитофагов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Одним из важнейших резервов сохранения лесного фонда и продуктивности лесного хозяйства является защита насаждений от насекомых. В России от различных негативных факторов (в основном пожаров) ежегодно погибает около 300 тыс. га лесов, на долю насекомых в этом процессе приходится в среднем 36 тыс. га, или более 10% (Матусевич, Гниненко, 2000). В отдельные годы влияние этого фактора увеличивается до 30−50% (Матусевич, Гниненко, 2000), т. е. ущерб от деятельности насекомых становится сопоставим с лесными пожарами. Наиболее вредоносная роль принадлежит сибирскому шелкопряду Dendrolimus superans sibiricus., однако непарного шелкопряда Lymantria dispar и шелкопряда-монашенку L. monacha также относят к группе наиболее опасных лесных фитофагов. Эги насекомые периодически дают, крупномасштабные вспышки массового размножения в различных частях своего ареала, иногда на площадях, исчисляемых в миллионах гектаров (Marshall, 1981; Harris, Lavers, 1985). На территории России наибольшие по площади очаги среди дендрофильных насекомых образует непарный шелкопряд. Так, за последние 20 лет площадь его очагов в среднем ежегодно составляла 726 тыс. га (Матусевич, Гниненко, 2000), а шелкопряда-монашенки за последние 10 лет — 36,4 тыс. га (Сергеенко, 1999).

За последние десятилетия накопилось много данных, показывающих, что наряду с высоким эффектом, получаемым от химических пестицидов в качестве средств защиты растений, их применение связано с рядом существенных недостатков: токсичностью для человека и теплокровных животных, сравнительно быстрым развитием резистентности у насекомых, подавлением естественных регуляторов в биоценозах (Рукавишников, 1973; 1979; Oakland, 1981; Pimentel et al., 1984; Filippov, 1989). Возникла необходимость применения интегрированной системы защиты растений, предполагающей комплексное использование разработанных методов регуляции численности насекомых и повышение удельного веса биологического метода. Комплексный подход к защите растений предполагает максимальное использование разнообразных естественных регуляторов, а при необходимости защитных мероприятий — применение искусственных факторов, сдерживающих численность насекомых на экономически неощутимом уровне при возможно меньшем нарушении равновесия среды. Такой подход представляется наиболее целесообразным и к настоящему времени он получил широкое признание (Знаменский, 1973; Рукавишников, 1973; 1979; Найт, Тетчер, 1986; Штерншис, 1995; Apple, Smith, 1976; Pimentel et al., 1984; Reardon, 1988; Filippov, 1989; Howarth, 1991; Cameron, 1991). Основу интегрированного управления численностью насекомых составляет детальное изучение биологии, динамики численности и вредоносности, а также выявление естественных регуляторов и их роли в ограничении численности насекомых.

В популяциях насекомых, дающих вспышки массового размножения, распространены болезни, вызываемые энтомопатогенными вирусами, (Вейзер, 1972; Гулий и др., 1981; Гулий, Рыбина, 1988; Васечко, 1990; Anderson, May, 1980; Shapiro et al., 1984; Woods, Elkinton, 1987; Carruthers et al., 1988; Myers, 1988; Berriman, 1995; Dwyer, Elkinton, 1995; Kukan, 1999; Richards et al., 1999; Milks, Myers, 2001; Fuxa et al., 2002; Cooper et al., 2003a), которые имеют важное значение в регуляции численности фитофагов. В литературе описано много случаев, когда вирусные инфекции вызывали спонтанные заболевания у насекомых-хозяев, приводящие к значительной редукции численности последних (Воронцов, 1963; Вейзер, 1972; Гулий, Голосова, 1975; Тарасевич, 1975; Воробьева, 1976; Bird, Wallen, 1953; Bird, 1955; Bergold, 1958; Smirnoff, 1962;

Urguhart, 1966; Krieg, 1973; Woods, Elkinton, 1987; Elkinton, 1990; Bogenschutz, Kamnerer, 1995; Richards et al., 1999; Hoch et al., 2001).

Из природных популяций насекомых выделено значительное количество энтомопатогенных вирусов, часть из них освоена для массового культивирования и применяется в качестве агентов регуляции численности целого ряда насекомых (Орловская, 1984; 1989; Божко, 1988; Shieh, Bohmfalk, 1980; Hurpin, 1984; Novotny, 1988; Miller et al., 1999; Podgwaite, 1999; Slavicek, Hayes-Plazolles, 1999).

Проблема, каким образом поддерживается перманентность вирусной инфекции в популяциях насекомых-хозяев, и как инициируются массовые бакуловирусные заболевания при естественных эпизоотиях, является предметом дискуссии на протяжении последних трех десятилетий. Часть исследователей полагает, что вирусы могут длительное время сохраняться в среде обитания насекомых (Jagues, 1970; Doane, 1976; Crawford, Kalmakoff, 1977; Thompson et al., 1981; Mohamed et al., 1982; Weseloh, Andreadis, 1986; Woods, Elkinton, 1987; Carruthers et ah, 1988; Oloffson, 1988; Murray, Elkinton, 1989; Soikkonen, 1995; Dvvyer, Elkinton, 1995; Richards et al., 1999), а эпизоотии возникают на пике численности популяции, когда увеличивается вероятность контактов насекомых с вирусом. Альтернативная теория построена вокруг идеи, согласно которой в популяциях насекомых присутствует скрытый вирус, который активируется некоторыми стресс-факторами, вызывая смертность насекомых (Гершензон, 1961; Тарасевич, 1975; Bergold, 1958; Steinhays, 1958; Aruga, 1963; Vago, 1963; Tanada, 1975; Fuxa et al., 1999; Boots et al., 2003; Cooper et al., 2003b). Полярность точек зрения, вероятно, объясняется практически полным отсутствием работ, позволяющих в прямых экспериментах исследовать вертикальную передачу вирусов у насекомых и идентифицировать эндои экзогенную вирусные инфекции. Такое дифференцирование принципиально важно, поскольку на воздействие скрытого вируса ответ насекомого детерминирован в основном физиологическим статусом последнего и действием стресс-факторов. В свою очередь, реакция насекомого на экзогенное инфицирование, помимо физиологического статуса, обусловлена главным образом биологической активностью вируса и множественностью заражения.

С помощью молекулярно-биологических методов была обнаружена интеграция бакуловирусного генома в клеточный геном насекомого-хозяина у таких видов, как большая вощинная моль (Мирюта и др., 1985) и тутовый шелкопряд (Кок и др., 1983; Yamao et al., 1999). Однако для других видов насекомых, включая фитофагов, дающих вспышки массового размножения, способ существования скрытой вирусной инфекции оставался неизвестным. Кроме того, не было известно, что вертикальная передача вируса у одного и того же вида насекомого может осуществляться как за счет скрытой инфекции, так и через экзогенное инфицирование.

Первые сведения о проявлении спонтанного полиэдроза у насекомых получены более ста лет назад (Pogwaite, Mazzone, 1986), однако до настоящего времени отсутствовали прямые доказательства, подтверждающие регистрацию скрытой вирусной инфекции у насекомых и ее способность к переходу в острую форму, и все предположения строились по косвенным данным. Имеются отдельные работы по индуцированию скрытой вирусной инфекции у непарного шелкопряда (Luhl, 1974; Штерншис и др., 1977; Чернявская и др., 1979; Lindroth et al., 1991) и шелкопряда-монашенки (Yadava, 1970; Бахвалов и др., 1979), но оставалось во многом невыясненным, насколько латентные вирусные инфекции распространены в популяциях названных насекомых. Малоисследованной оставалась и проблема индуцируем ости скрытой вирусной инфекции в различные периоды онтогенеза и в динамике вспышки массового размножения насекомых.

В результате практически отсутствуют представления о характере причинно-следственных связей, обуславливающих ту или иную степень сопряжения фитофагов с, поражающими их бакуловирусами и, соответственно, закономерности проявления вирозов в популяциях насекомых. Решение вышеназванных вопросов позволяет понять механизм формирования и распространения бакуловирусных заболеваний в популяциях насекомых и рационализировать проведение защитных мероприятий в очагах массового размножения последних. Цель исследования заключалась в комплексном изучении основных механизмов формирования и персистенции бакуловирусных инфекций у непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки.

Для достижения указанной цели необходимо было решить следующие задачи:

1) Изучить возможность трансгенерационной передачи бакуловируса в виде латентной инфекции, а также через инфицирование насекомых вирусом в среде обитания, для одного и того же вида насекомого.

2) Исследовать индукцию вирусной репликации у непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки в экспериментальных условиях в различные периоды онтогенеза и фазы вспышки массового размножения насекомых.

3) Выявить распространение скрытой вирусной инфекции в очагах массового размножения непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки.

4) Исследовать особенности проявления спонтанного полиэдроза у непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки в очагах массового размножения насекомых в различные периоды вспышки.

5) Изучить возможности практического применения явления индукции вирусной репликации у насекомых.

Научная новизна работы. Впервые с применением современных диагностических методов установлено, что вертикальная передача бакуловируса у одного и того же вида насекомого может осуществляться как в виде скрытого вируса, интегрированного в геном хозяина, так и через внешнее инфицирование насекомых в среде обитания.

Впервые в прямом эксперименте продемонстрировано, что скрытая вирусная инфекция может формироваться в результате воздействия бакуловируса на выживших насекомых, и может быть индуцирована в дочернем поколении под воздействием стресс-фактора.

Впервые детально исследовано действие стресс-факторов различной природы (воздействие экстремальных температур, влажности, повышенной плотности, задержки выхода гусениц из яиц, химических агентов) в экспериментальных условиях на активацию латентной вирусной инфекции у непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки в различные периоды онтогенеза. Показано, что наибольшее индуцирующее воздействие стресс-факторы оказывают в III-IV гусеничных возрастах. Независимо от периода онтогенеза, в котором действовал индуцирующий фактор, гибель основной части особей от полиэдроза происходит в V—VI вв.озрастах гусеницы и фазу куколки.

Исследовано проявление спонтанного и индуцированного полиэдроза у непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки в лабораторных условиях на насекомых из очагов массового размножения в динамике вспышки. Впервые показано, что количество погибших особей шелкопряда-монашенки от полиэдроза и выход вируса на 1 особь при индуцировании латентной инфекции коррелируют с фазой градации численности насекомого, а средние значения указанных критериев за период вспышки увеличиваются более чем в 10 раз. В то же время количество погибших особей непарного шелкопряда от индуцированного полиэдроза относительно невелико (с максимумом 17,5% на пике численности) и слабо изменяется в динамике вспышки.

Исследовано проявление полиэдроза в популяциях непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки на территории Западной Сибири. Показано, что воздействие. вирусов на популяционную динамику насекомых-хозяев значительно различается. Если в популяциях шелкопряда-монашенки полиэдроз в комплексе с энтомофагами способен прерывать вспышки массового размножения насекомого, то у непарного шелкопряда полиэдроз проявлялся спорадически, на небольших площадях и у незначительной части популяции, не превышающей нескольких процентов. Проведен анализ причинно-следственных связей, обуславливающих различную степень сопряжения насекомых с их бакуловирусами. Показано, что уровень проявления спонтанного полиэдроза в популяциях непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки в значительной степени обусловлен биологическими особенностями насекомых и факторами среды обитания.

Практическая значимость работы. С помощью метода математического планирования экспериментов разработана оригинальная искусственная питательная среда для выращивания гусениц непарного шелкопряда и методика культивирования в лабораторных условиях, исключающая экзогенное инфицирование насекомых вирусом и позволяющая получить ряд генераций насекомого. Разработан метод оценки чувствительности гусениц к вирусу ядерного полиэдроза. В отличие от традиционных методов оценки (JIK5o и ЛД50) этот метод менее трудоемок, дает возможность контролировать количество внесенного вируса на единицу площади, позволяет получить удовлетворительные по воспроизводимости результаты. Метод может применяться для оценки биологической активности вирусов хвоеи листогрызущих насекомых.

Установлена прямая корреляция между уровнем активации скрытой вирусной инфекции и фазой вспышки массового размножения шелкопряда-монашенки. Показано, что процент гибели насекомых от индуцированного полиэдроза и количество выделенного вируса на одну особь могут служить характерными точками градационного цикла и наряду с традиционными показателями (масса куколок, плодовитость насекомых) применяться в качестве индикаторов фаз вспышки шелкопряда-монашенки.

Предложен метод получения ВЯП у шелкопряда-монашенки, заключающийся в содержании гусениц из природных популяций на пике численности или в фазу деградации насекомого, в условиях 100% влажности воздуха для индукции вирусной репродукции. Этот метод позволяет оптимизировать культивирование вирусного материала, поскольку получение вируса не связано с его расходом.

Одним из способов контроля численности непарного шелкопряда в Западной Сибири может служить весенняя обработка яйцекладок насекомого вирусом ядерного полиэдроза. Применение наземно-очагового метода показало, что в течение 2-х лет, как правило, удавалось вызвать затухание действующих очагов непарного шелкопряда.

Положения, которые выносятся на защиту.

1. Вертикальная передача бакуловируса у одного и того же вида насекомого может осуществляться как через экзогенное инфицирование в среде обитания, так и за счет передачи скрытого вируса, интегрированного в геном хозяина.

2. Скрытая вирусная инфекция может формироваться в результате воздействия бакуловируса на выживших после заражения насекомых и может быть активирована в дочернем поколении.

3. Индукция вирусной репликации зависит от характера воздействия на организм насекомого, периода онтогенеза, в котором действовал индуцирующий фактор и фазы вспышки массового размножения насекомого.

4. Скрытая вирусная инфекция, выявляющаяся у определенной части особей непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки, является основным механизмом, обеспечивающим персистенцию вируса в очагах массового размножения насекомых.

Выводы.

1. Вертикальная передача бакуловируса у одного и того же вида насекомого может осуществляться как через экзогенное инфицирование в среде обитания, так и за счет передачи скрытого вируса, интегрированного в геном хозяина.

2. Скрытая вирусная инфекция может формироваться в результате воздействия бакуловируса на выживших после заражения насекомых, и может быть активирована в дочернем поколении. Показателями уровня латентного вирусоносительства у насекомых являются количество особей-вирусоносителей, выявляемых с помощью метода ОТ-ПЦР, и частота проявления индуцированного полиэдроза.

3. Частота проявления индуцированного полиэдроза у непарного шелкопряда и шелкопряда-монашенки в экспериментальных условиях зависит от периода онтогенеза, в котором действовал индуцирующий фактор, и способа воздействия на организм насекомых. Максимальная чувствительность к индукции вирусной репликации отмечена у гусениц III-IV-го возрастов, гусеницы младших (I-II-го) и старших возрастов (V-VI-го), а также куколки менее чувствительны к индуцирующему воздействию.

4. Частота проявления индуцированного полиэдроза у шелкопряда-монашенки из очагов массового размножения на территории Западной Сибири за период развития вспышки возрастает практически в 10 раз. Количество погибших насекомых от индуцированного полиэдроза и выход полиэдров на одну особь могут служить характерными точками градационного цикла и индикаторами фаз вспышки массового размножения шелкопряда-монашенки.

5. Частота проявления индуцированного полиэдроза у непарного шелкопряда из очагов массового размножения на территории Западной.

Сибири относительно невысока и слабо изменяется в динамике вспышки. Максимальное значение смертности насекомых составляет 17,5 + 3% и совпадает с пиком численности.

6. Количество вируса при спонтанном проявлении полиэдроза в очагах массового размножения непарного шелкопряда на территории Западной Сибири относительно стабильно в период вспышки и недостаточно для инициации массовых заболеваний и превалирования передачи вируса через внешнее инфицирование насекомых в среде обитания. Основным путем вертикальной передачи вируса для непарного шелкопряда является передача в виде латентной инфекции.

7. Количество вируса при спонтанном проявлении полиэдроза в очагах массового размножения шелкопряда-монашенки на территории Западной Сибири достаточно для инициации массовых заболеваний в период фазы кризиса. В то же время в течение всего периода вспышки шелкопряда-монашенки имеется перманентная возможность получения насекомыми сублетальных доз вируса, формирования скрытого вирусоносительства и индукции вирусной репликации.

8. Вирус ядерного полиэдроза непарного шелкопряда может применяться в качестве одного из агентов контроля численности насекомого в Западной Сибири. Наиболее предпочтительным способом применения вируса является весенняя очаговая обработка яйцекладок в дозе 5*1010 полиэдров на гектар. Обработка вирусом участков в течение двух лет с зимующим запасом насекомого не свыше 3000 яйцекладок на гектар приводит к затуханию действующих очагов.

8.

Заключение

.

Анализ литературных данных и результаты собственных исследований показали, что взаимодействие насекомого-хозяина и его бакуловируса обусловлено комплексом биотических и абиотических факторов. Характер взаимодействия определяется биологическими особенностями насекомого-хозяина и его физиологическим статусом, а также множественностью заражения и патогепностью вируса. В свою очередь, степень сопряжения насекомого и его бакуловируса обуславливает эффект, который для насекомого может быть нейтральным, летальным или сублетальным (рис. 8.1.1.).

Впервые в прямом эксперименте продемонстрировано, что скрытая вирусная инфекция может формироваться в результате воздействия бакуловируса на выживших насекомых, и может быть индуцирована в дочернем поколении под воздействием стресс-фактора. Однако присутствие скрытого вируса у насекомых не означает скорой и неизбежной гибели хозяев. В этом случае возможно несколько вариантов. Во-первых, часть вирусной ДНК может полностью утратить свою инфекционность, хотя и выявляться в анализируемых образцах насекомых. Во-вторых, возможно, что воздействие стресс-фактора не всегда приводит к выходу вируса из хромосомы хозяина и формированию репродуктивного цикла развития вируса. Наконец, репликация вируса при выходе из хромосомы может подавляться механизмами преодоления вирусной инфекции в организме насекомого-хозяина. Поэтому вопрос о том, в течение какого периода (числа генераций насекомого) вирус может находиться в скрытом виде в организме хозяина, сохраняя при этом способность к репликации, на сегодняшний день остается открытым.

В будущем предстоит выяснить механизмы полного блокирования репликации и сборки вируса при латентных инфекциях, а также детально.

Множественность заражения.

Эффект для насекомого.

Физиологический статус.

Рис. 8.1.1. Схема формирования взаимодействия между насекомым и его бакуловирусом. исследовать способность скрытого вируса к инициации острой инфекции в прямых экспериментах. Тем не менее, есть все основания полагать, что уровень скрытого вирусоносительства в популяции насекомого поддерживается за счет экзогенного инфицирования особей предшествующих генераций.

Вероятно, латентность бакуловирусов является важной составляющей в системе взаимоотношений между насекомыми-фитофагами, дающими вспышки массового размножения, и их бакуловирусами. Не исключено, что латентность бакуловирусов — это один из факторов, который способствует успешному существованию в природе как вирусам, так и их хозяевам — насекомым. С одной стороны, латентность позволяет избегать вирусам элиминирующего воздействия факторов внешней среды и пережидать периоды депрессии численности хозяев, не нарушая жизненно важных функций насекомых, связанных с репродукцией и распространением. Однако при определенных условиях латентная инфекция может переходить в острую с летальным для насекомых исходом, выполняя в этом случае роль фактора отбора и регулятора численности.

Феномен интеграции клеточного и вирусного геномов, обнаруженный у некоторых видов насекомых, придает особый статус латентности бакуловирусов. Вероятно, при выходе из хромосомы насекомого вирусная ДНК может содержать фрагменты ДНК хозяина, которые передаются другим насекомым, что создает возможность для смешивания различных генофондов.

По-видимому, высокий уровень скрытого вирусоносительства и проявления спонтанного полиэдроза в популяции насекомого обусловлен сравнительно высокой нагрузкой экзогенного вируса на биотоп. Тогда при высокой плотности насекомых возрастает вероятность их экзогенного инфицирования вирусом, что в свою очередь, увеличивает частоту получения насекомыми сублетальных доз, а также вероятность мутации или делеции вируса. Такая ситуация возникает при совпадении действия ряда факторов: хорошей сохранности вируса в среде обитания насекомого, относительно высокой активности в младших возрастах гусеницы и относительно невысоком сезонном дрейфе очагов массового размножения. По-видимому, совпадением этих факторов объясняется высокая частота проявления спонтанного полиэдроза у шелкопряда-монашенки на территории Западной Сибири, что подтвердилось в лабораторных экспериментах с применением рестрикционного анализа вирусной ДНК (Ильиных, Чуйкова, 1989). Напротив, высокая миграционная активность непарного шелкопряда (в частности, способность бабочек к активному полету) является одним из факторов, приводящих к «ускользанию» популяции от бакуловируса.

Было подтверждено, что применение ВЯП в качестве агента биологического контроля шелкопряда-монашенки проблематично, поскольку шелкопряд-монашенка относительно устойчив к действию вируса. Поэтому представляется перспективным дальнейший поиск и применение активаторов скрытой вирусной инфекции в популяциях насекомого для ограничения его численности. Кроме того, индукция репликации вируса может найти применение в диагностике фаз вспышек массового размножения шелкопряда монашенки, а также при культивировании вирусного материала.

Применение ВЯП наземно-очаговым способом (1−5- Ю10 полиэдров/ га) в качестве агента контроля численности непарного шелкопряда в Западной Сибири показало, что в течение 2-х лет, как правило, удавалось вызвать затухание действующих очагов непарного шелкопряда. Как показали исследования, в сопредельных территориях необработанные очаги насекомого на территории Западной Сибири действовали 3−4 года.

Показать весь текст

Список литературы

  1. .И., Торчик М. В., Флейшер О. Г. Против шелкопряда-монашенки // Защита растений. 1982. № 4. С. 17.
  2. И.П., Воробьев А. А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.: Медгиз. 1962. 350 с.
  3. Л.Г., Зуева Г. В., Луганский Н. А., Марина Н. В. Экологическое состояние лесных насаждений в зоне фторсодержащих промышленных выбросов//Экология. 1993. № 1. С. 26−35.
  4. Ю.Н. Трофическая специализация чешуекрылых. Красноярск, 1987. 171с.
  5. Бахвалов С. А Биологическое подавление популяций шелкопряда-монашенки {Lymantria monacha L.) в Западной Сибири: опыт применения и анализ результатов // Сибирский экологический журнал. 1995. № 5. С. 466 -473.
  6. С.А. Взаимоотношения шелкопряда-монашенки и поражающего его вируса ядерного полиэдроза // Автореф. дисс. канд. биол. наук. Новосибирск, 1987. 22 с.
  7. С.А., Бахвалова В. Н. Экология бакуловируса шелкопряда-монашенки (Ocneria monacha L., Lepidoptera: Lymantriidae). Персистенция вируса в популяциях насекомого // Экология. 1990а. № 6. С. 53−59.
  8. С.А., Бахвалова В. Н. Экология бакуловируса шелкопряда-монашенки (Ocneria monacha L., Lepidoptera, Lymantriidae). Персистенция вируса в лесной экосистеме // Известия СО АН СССР. Серия биол. наук. 1990 б. № 1.С. 51−55.
  9. С.А., Бахвалова В. Н., Морозова О. В. Взаимосвязь популяциоиной динамики непарного шелкопряда {Lymantria dispar L., Lym.: Lep.) и генетического полиморфизма вируса ядерного полиэдроза // Экология. 2002. № 6. С. 455−459.
  10. С.А., Башев А. Н., Кнорр И. Б. Динамика популяций шелкопряда-монашенки Lymantria monacha L. (Lymantriidae: Lepidoptera) и поражающего его бакуловируса в Западной Сибири //Лесоведение. 1998. № 4. С. 26−33.
  11. С.А., Деветьярова С. В. Особенности морфогенеза бакуловирусов при генерализованных полиэдрозах у некоторых чешуекрылых в динамике инфекционного процесса // Изв. СО АН СССР. Сер. биол. наук. 1980. Вып.1. С. 58−65.
  12. С.А., Ларионов Г. В., Жимерикин В. Н., Чернявская О. А. Развитие индуцируемого ядерного полиэдроза у монашенки в экспериментальных условиях // Изв. СО АН СССР. Сер. биол. наук. 1979. Вып.2. С. 65−70.
  13. С.А., Ларионов Г. В., Пешков Г. П. Подавление очагов массового размножения шелкопряда-монашенки биологическими и химическими методами // Лесное хозяйство. 1986. № 3. С. 65−66.
  14. Н.И., Барсуков А. А., Земсков В. М. Клеточные системы защиты организма от вирусной инфекции: внутриклеточные механизмы защиты // Успехи современной биологии. 2003. Т. 123. № 2. С. 161−174.
  15. О.В. Непарный шелкопряд и вирус ядерного полиэдроза: некоторые аспекты взаимодействия и эффективность биологическогоконтроля // Научные труды Моск. гос. унив. леса. 1998. № 294. 4.1. С. 165−175.
  16. Т.А. Гибридизация нуклеиновых кислот как средство быстрой вирусологической диагностики //Вопросы вирусологии. 1988. № 1.С. 110−117.
  17. В.И. К вопросу о прогнозе массовых появлений Ocneria monacha L. (Lepidoptera, Lymantriidae) в Московской области // Энтомол. обозр. 1960. Т. 33. Вып. 4. С. 1321−1328.
  18. В.И. Массовые появления непарного шелкопряда в европейской части СССР. М.: Наука, 1984. 142 с.
  19. А. Защита леса от насекомых вредителей. М.: Агропромиздат, 1990. 288 с.
  20. Н.А. Разработка и применение в народном хозяйстве вирусных энтомопатогенных препаратов // Биотехнология. 1988. № 2. С. 59−60.
  21. Ю.Д., Злотин А. З. Принципы и методы отбора исходного материала для культивирования насекомых // Успехи современной биологии. 1999а. Т. 119. № 6. С. 590−598.
  22. Ю.Д., Злотин А. З. Формирование стартовой колонии непарного шелкопряда при его лабораторном разведении // Лесное хозяйство. 19 996. № 3. С. 49−50.
  23. Л.Н., Смирнов Н. В. Таблицы математической статистики. М.: Наука, 1983.416 с.
  24. К.А. Статистическая теория и методология в науке и технике. М.: Наука, 1977. 408 с.
  25. Т.И. Развитие идей А.И. Ильинского в познании динамики численности непарного шелкопряда//Лесоведение. 1990. № 6. С. 41−48.
  26. В.Л., Яценко В. Г., Трусов В. И. Результаты испытания вирусного препарата в борьбе с непарным шелкопрядом в садах:эффективность, безопасность // Молекулярная биология. Киев, 1983. Вып. 34. С. 41−42.
  27. Я. Микробиологические методы борьбы с вредными насекомыми (болезни насекомых). М.: Колос. 1972. 640 с.
  28. В.В. Роль света в поведении и распределении непарного шелкопряда и дубовой листовертки в условиях полезащитных лесных полос // Зоол. журн. 1952. Т. 31. Вып. 1. С. 25−32.
  29. Г. А. Колебания численности насекомых как регулируемый процесс // Журнал общей биологии. 1965. Т. 26. № 1. С. 43−55.
  30. Г. А. Динамика численности животных и управление ею // Зоол. журн. 1975. Т. 54. Вып. 6. С. 804−821.
  31. Г. А. Проблемы динамики численности насекомых на примере вредной черепашки. М.: Наука. 1967. 270 с.
  32. Г. А. Трофическая и синтетическая теории динамики численности насекомых//Зоол. журн. 1971. Т. 50. Вып. 3. С. 361−372.
  33. Н.Н. Энтомопатогенные вирусы. Новосибирск: Наука, 1976.286 с.
  34. А.И. Биологические основы защиты леса. М.: Высшая школа, 1963. 324 с.
  35. А.И. Биология непарного шелкопряда и меры борьбы с ним //Вестн. сел. хоз-ва, 1958. № 4. С. 101−107.
  36. А.И. Некоторые итоги изучения непарного шелкопряда // Насекомые вредители лесов Башкирии. Уфа, 1977. С. 3−25.
  37. А.И., Голубев А. В., Мозолевская Е. Г. Современные методы учета и прогноза хвое — листогрызущих насекомых // Тр. Всес. Энтомол. Общ ва. 1983. Т. 65. С. 4−19.
  38. Г. Электронная гистохимия. М: Мир, 1974. 488 с.
  39. Гар К. А. Методы испытания токсичности и эффективности инсектицидов. М.: Сельхозиздат. 1963. 288 с.
  40. С.М. Явление латентности у полиэдренных вирусов насекомых //Журнал общей биологии. 1961. Т. 22. Вып. 1. С. 32−41.
  41. . Испытания вируса ядерного полиэдроза в борьбе с монашенкой (Lymantria monacha L.) // Вирусы насекомых и перспективы их практического использования в защите растений от вредителей в странах- членах ВПС / МОББ. М., 1981. С. 114−120.
  42. В.В. Структура и функции перитрофической мембраны и перитрофического геля насекомых // Евразиат.Энтомол. Журн. 2002. Т.1. С. 11−16.
  43. В.В., Бахвалов С. А. Механизмы резистентности насекомых при патогенезе // Успехи совр.биологии. 1998. Т. 118. № 4. С. 466−482.
  44. Ю.И. Вспышки массового размножения лесных насекомых в Сибири и на Дальнем Востоке в последней четверти XX века // Лесохоз. информ. 2003. № 1. С 46−57.
  45. Ю.И. Географические формы непарного шелкопряда в Северной Азии // Защита и карантин растений. 1998. № 6. С 35−36.
  46. Е.Е., Колосов А. В., Борисова О. Д., Зайцев Б. Н., Божко Н. А. Сравнительная характеристика изолятов вируса ядерного полиэдроза непарного шелкопряда Lymantria dispar L. // Вопросы вирусологии. 1997. № 1.С. 41−43.
  47. В.И. Причины устойчивости сосновых насаждений к хвоегрызущим вредителям // Зоол. журн. 1961. Т.40, вып. 11. С. 1656−1664.
  48. В.И. Устойчивость древесных насаждений к хвое- и листогрызущим вредителям в связи с трофической теорией динамики численности насекомых//Зоол. журн. 1974. Т.53. № 2. С. 189−198.
  49. В.И. Устойчивость сосновых насаждений против хвоегрызущих вредителей. М., 1971. 136 с.
  50. Е.В. Вычислительные методы анализа и распознавания патологических процессов. Л.: Медицина, 1978. 294 с.
  51. В.В., Голосова М. А. Вирусы в защите леса от вредных насекомых. М.: Лесная промышленость, 1975. 168 с.
  52. В.В., Рыбина С. Ю. Вирусные болезни насекомых и их диагностика. Кишинев: Штиинца, 1988. 126 с.
  53. В.В., Теплякова Т. В., Иванов Г. М. Микроорганизмы, полезные для биометода. Новосибирск: Наука, 1981. 267 с.
  54. П.П., Федоров И. А. Борьба с непарным шелкопрядом с помощью вирусного препарата Вирин ЭНШ // Лесное хозяйство. 1981. № 1.С. 56−57.
  55. М.В. Реактивация различных по глубине диапаузы яиц монашенки и их хранение // Экология и защита леса. Лесные экосистемы и их защита. Л., 1984. С. 57−66.
  56. М.В. Питательные среды: для шелкопряда-монашенки // Защита растений. 1983. № 10. С. 33.
  57. Р.И. О возможности использования светоловушек для выявления вредных насекомых в горных лесах Западного Саяна // Защита лесов Сибири от насекомых-вредителей. М., 1963. С. 78−85.
  58. Л.А., Захарченко И. С. Полусинтетическая питательная среда для гусениц непарного шелкопряда //Научные труды МЛТИ. М., 1974. С. 164−170.
  59. Л.А., Орловская Е. В., Захарченко И. С., Масюк Ю. А. Авторское свидетельство СССР № 577 001, кл. А 01 К 67/00, 1977.
  60. А.З. Техническая энтомология. Киев: Наукова думка, 1989.183 с.
  61. А.З. Селекция насекомых // Итоги науки и техники. Серия: Энтомология. М.: ВИНИТИ. 1990. Т. 10. С. 96−179.
  62. B.C. Принципы интегрированной борьбы с вредителями леса//Лесное хозяйство. 1973. № 8. С. 68−72.
  63. B.C. Роль энтомофагов в динамике численности непарного шелкопряда // Биологическая и интегрированная борьба с вредителями в лесных биоценозах. М: Наука, 1989. С. 60−65.
  64. B.C., Лямцев Н. И. Влияние плотности популяции на качественные показатели динамики численности непарного шелкопряда // Защита леса от вредителей и болезней. М., 1980. С. 21−39.
  65. B.C., Лямцев Н. И. Индикаторы массового размножения непарного шелкопряда //Лесное хозяйство. 1985. № 2. С. 60−62.
  66. Н.Н. Вспышки вредных насекомых в ленточных борах //Лесное хозяйство. 1959. № 7. С. 47−50.
  67. Н.Н. Шелкопряд-монашенка в ленточных борах Алтайского края// Научные записки воронежского лесотехнического института. Воронеж, 1961. Т.26. С. 13−22.
  68. Г. И., Тарасевич Л. М. Применение метода флюоресцирующих антител для обнаружения полиэдренного агента в яйцах (грене) тутового шелкопряда // Вопросы вирусологии. 1968. № 1. С. 89−93.
  69. Е.Н. Зоогенная дефолиация и лесное сообщество. М.: Товарищество научных изданий КМК, 2004. 263 с.
  70. А.И. Непарный шелкопряд и меры борьбы с ним. М.: Гослесбумиздат, 1959. 63 с.
  71. А.И. Организация надзора за хвое- и листогрызущими вредителями в лесах и прогнозирование их массовых размножений // Защита леса от вредителей и болезней. М.: Сельхозгиз, 1961. С. 57−96.
  72. А.И., Тропин И. В. (ред.) Надзор, учет и прогноз массовых размножений хвое- и листогрызущих насекомых в лесах СССР. М.: Лесная промышленность. 1965. 526 с.
  73. А.В. Анализ причин затухания вспышки массового размножения непарного шелкопряда (Lymantria dispar L.) в Новосибирской области // Сибирский экол. журнал. 2002. № 6. С. 697−702.
  74. А.В. Индуцируемость бакуловирусной инфекции в различные периоды онтогенеза непарного шелкопряда // Вопросы вирусологии. 2000. № 1. С. 42−45.
  75. А.В. Методика культивирования непарного шелкопряда в лабораторных условиях // Биотехнология. 1997. № 9,10. С. 27−29.
  76. А.В. Оптимизированная искусственная питательная среда для культивирования непарного шелкопряда // Биотехнология. 1996. № 7. С. 42−43.
  77. А.В., Бахвалов С. А., Божко Н. А. Индикация фаз вспышки массового размножения шелкопряда-монашенки // Лесное хозяйство. 1990. № 12. С. 40−41.
  78. А.В., Бахвалов С. А., Кузьминов С. В., Ульянова Е. Г., Ильиных Ф. А. Биологическое подавление очагов массового размножения непарного шелкопряда {Lymantria dispar L., Lepidoptera: Lymantriidae) II Биотехнология. 2004. № 4. с. 12−1 в.
  79. А.В., Бахвалов С. А., Моховиков С. М. Естественное вирусоносительство у массовых видов лесных насекомых-фитофагов и его связь с жизнеспособностью хозяев // Вопросы вирусологии. 1995. № 4. С. 186−187.
  80. А.В., Бондаренко К. В., Кондрахин Ю. В., Лопаткин А. В. Оптимизация искусственных питательных сред для культивирования шелкопряда-монашенки //Энтомопатогенные вирусы и их роль в защите растений. Новосибирск: СО ВАСХНИЛ, 1988. С. 58.
  81. А.В., Лопаткин А. В. Последействие вирусов ядерного полиэдроза на вредных насекомых // Микроорганизмы в сельскомхозяйстве и промышленности. Новосибирск: СО ВАСХНИЛ, 1982. С. 9498.
  82. А.В., Мамонтова С. А., Петров B.C., Колосов А. В. Регуляция численности непарного шелкопряда в Западной Сибири // Биотехнология. 1997. № 3. С. 45−47.
  83. А.В., Чуйкова Г. В. Идентификация природных изолятов вируса ядерного полиэдроза шелкопряда-монашенки // Вопросы вирусологии. 1989. № 1. С. 84−89.
  84. А.С., Хлебопрос Р. Г. Принцип стабильности в динамике численности лесных насекомых // Докл. АН СССР. 1973. Т. 208. № 1. С. 225−228.
  85. А.С., Хлебопрос Р. Г. Эффекты запаздывания в регуляции численности лесных насекомых // Докл. АН СССР. 1977. Т. 232. № 6. С. 1448−1451.
  86. А.С., Хлебопрос Р. Г., Недорезов Л. В., Кондаков Ю. П., Киселев В. В. Динамика численности лесных насекомых. Новосибирск: Наука, 1984. 224 с.
  87. А.С., Хлебопрос Р. Г., Недорезов Л. В. Кондаков Ю.П., Киселев В. В., Суховольский В. Г. Популяционная динамика лесных насекомых. М.: Наука, 2001.374 с.
  88. А.Е. Латентность бакуловирусов и ее практическое значение // Молекулярная биология. 1979. Вып. 22. С. 74−83.
  89. О.Г. Географическое распространение и районы массового размножения непарного шелкопряда (Porthetria dispar L.) // Вестн. защиты растений. 1941. № 1. 45−52.
  90. М.Д., Стьюарт А. Статистические выводы и связи. М.: Наука. 1973. 899 с.
  91. И.М. Экология и физиология непарного шелкопряда. Киев: Наукова Думка, 1983. 128 с.
  92. И.В. Биологическая специфика видов насекомых в их массовых размножениях // Успехи современной биологии. 1948. Т. XXV. Вып. 2. С. 251−268.
  93. И.В. Фауна СССР. М.: АН СССР, 1950. Т. 12. 582 с.
  94. Кок И.П., Скуратовская И. Н., Строковская Л. И., Мирюта Н. Ю., Алексеенко Л. П. Обнаружение интеграции бакуловирусного и клеточного геномов (ДНК) при латентной инфекции // Молекулярная биология. 1983. Вып. 34. С. 67−69.
  95. Г. Анализ популяций позвоночных. М.: Мир, 1979. 362с.
  96. Н.Г., Коссинская И. С., Майер Э. И. Враги леса (Самые опасные насекомые и грибные болезни в лесах Приобья). Томск, 1971. 71с.
  97. Н.Г., Терсков И. А. Лесные насекомые Сибири, реагирующие на ультрафиолетовый свет //Известия СО АН СССР. Сер. биол.- мед. наук. 1963. № 12. Вып. 3. С. 82−83.
  98. Е.В. Насекомые-фитофаги лесных биоценозов в условиях антропогенного воздействия. Екатеринбург: УИФ «Наука», 1993. 136с.
  99. Е.В. Проблемы популяционной экологии насекомых-фитофагов, образующих периодические крупномасштабные вспышки в лесах Урала//Екатеринбург, 1997. С. 134−137.
  100. Е.В., Пономарев В. И., Федоренко С. И. О введении карантина против азиатской расы непарного шелкопряда // Лесное хозяйство. 2001. № 4. С. 43−46.
  101. Е.В., Пономарев В. И., Федоренко С. И. Экология непарного шелкопряда в условиях антропогенного воздействия. Екатеринбург: УрО РАН, 1998.212 с.
  102. Ю.П. Непарный шелкопряд (Ocneria dispar L.) в лесах Красноярского края // Защита лесов Сибири от насекомых-вредителей. М., 1963. С. 30−77.
  103. А.С. Регуляторы численности лесных насекомых. Новосибирск: Наука, 1978. 95 с.
  104. Л.И. (ред.) Геном, клонирование, происхождение человека. Фрязино: «Век 2», 2004. 224 с.
  105. А.В. Особенности аэрозольной обработки с использованием пиретроидов и биопрепаратов //Лесопатологическая обстановка в лесном фонде Уральского региона. Екатеринбург: Изд-во «Екатеринбург», 2001. С. 66−71.
  106. Л.Т., Марченко Я. И. Против шелкопряда-монашенки // Защита растений. 1981. № 11. С. 35.
  107. С. М., Добровольская Г. Н., Киреева В. И. Исследование возможности получения линий тутового шелкопряда, устойчивых кактивации латентного вируса ядерного полиэдроза // Молекулярная биология. 1979. Вып. 22. С. 86−89.
  108. А.Н. Математические методы планирования многофакторных медико-биологических экспериментов. М.: Медицина. 1979. 242 с.
  109. В.Е. Опыт применения Вирина ЭНШ в борьбе с непарным шелкопрядом в лесах Юго-западной части СССР // Микроорганизмы в защите растений. Кишинев: Тимпул, 1984. С. 15−20.
  110. Н.И. Плодовитость как показатель динамики численности непарного шелкопряда // Материалы 8-й научной конференции аспирантов и научных сотрудников ВНИИЛМ. М., 1985. С. 126−129.
  111. Н.И., Исаев А. С., Зукерт Н. В. Влияние климата и погоды на динамику численности непарного шелкопряда в Европейской России // Лесоведение. 2000. № 1. С. 62−67.
  112. С.А. О причинах массовых размножений шелкопряда-монашенки {Lymantria monacha L.) // Экология. 1999. № 1. С. 54−59.
  113. Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Молекулярное клонирование. М.: Мир. 1984.480с.
  114. В.А. Длительная эмбриональная диапауза непарного шелкопряда // Непарный шелкопряд: итоги и перспективы исследований. Красноярск: ИЛиД, 1988. С. 13−14.
  115. В.А. Миграции как фактор динамики численности массовых видов листо- и хвоегрызущих насекомых // Зоологический журнал. 1999. Т. 78. № 1.С. 49−56.
  116. В.А. Многолетняя эмбриональная диапауза шелкопряда-монашенки {Lymantria monacha L.) 11 Зоол. журн. 1989. Т. 68. № 1. С. 5259.
  117. В.А. Развитие шелкопряда-монашенки Lymantria monacha L. (Lepidoptera, Lymantriidae) в период нарастания ее численности // Энтомол. Обозр. 1995. Т. 74. № 2. С. 323−341.
  118. Н.Г. Шелкопряд-монашенка // Защита растений. 1978. № 3. С. 38−39.
  119. Я.И., Емельянчик Г. М. Восприимчивость гусениц шелкопряда-монашенки к бактериальной инфекции // Лесоведение. 1981. № 5. С. 85−89.
  120. Л.С., Гниненко Ю. И. Санитарное состояние лесов Росси и некоторые перспективы лесозащиты // Лесное хозяйство. 2000. № 4. С. 5253.
  121. Методика определения результативности применения бактериальных препаратов в очагах вредителей леса. Гомель, 1985. 24с.
  122. В.Л. Результаты исследования непарного шелкопряда на Украине // Непарный шелкопряд: итоги и перспективы исследований. Красноярск: ИЛиД, 1988. С. 24−25.
  123. Н.Ю., Строковская Л. И., Кок И.П., Скуратовская И. Н. Обнаружение ковалентно связанного с ДНК клетки генома бакуловируса у большой вощинной моли пражской линии //Биополимеры и клетка. 1985. Т. 1. № 2. С. 106−108.
  124. А.Л., Горбатовский В. В. Массовое разведение насекомых для биологической защиты растений. М., Агропромиздат, 1991.239 с.
  125. Ф.Б., Тетчер Р. С. Интегрированная защита леса в США // Лесное хозяйство. 1986. № 9. С. 70−74.
  126. А. Монашенка, совка и пилильщик в дачах Кыштымского горного округа// Лесной журнал. 1894. № 5. С. 522−530.
  127. В. Баварские исследования о монашенке // Лесной журнал. 1894. № 6. С. 588−605.
  128. А.Д. Некарантинный вредитель стал карантинным // Защита растений. 1993. № 1. С. 44−45.
  129. Е.В. Географическое распространение и проявление вирозов на территории Советского Союза // Энтомологическое обозрение. 1968. № 4. С. 741−756.
  130. Е.В. Основные итоги и направления в разработке технологии производства и применения вирусных энтомопатогенных препаратов // Итоги и перспективы производства и применения вирусных препаратов в сельском и лесном хозяйстве. М., 1984. С. 3−14.
  131. Е.В. Использование вирусов в борьбе с хвоегрызущими насекомыми в СССР // Информационный бюллетень МОББ. ВПС. 1989. № 27. С. 69−72.
  132. Е.В., Масюк Ю. А., Моисеева Р. В., Андрианова Н. И. Авторское свидетельство СССР № 731 938, кл. А 01 К 67/00, 1980.
  133. В.И. Закономерности взаимоотношений в системе «дерево-насекомое» и морфофизиологические особенности популяций непарного шелкопряда {Lymantria dispar L.): Дисс. док. биол. наук. Екатеринбург, 2004. 308 с.
  134. В.И. Несколько замечаний к экологии зауральской популяции непарного шелкопряда // Лесопатологическая обстановка в лесном фонде Уральского региона. Екатеринбург: изд-во «Екатеринбург», 2001. С. 93−104.
  135. В.И. Популяционно-генетические особенности вспышек массового размножения непарного шелкопряда {Lymantria dispar L.) // Экология. 1994. № 5. С. 81−89.
  136. В.И. Физиологический возраст листвы кормового растения и выживаемость гусениц непарного шелкопряда //Экология. 2003. № 5. С. 387−391.
  137. В.И. Экологические и генетико-популяционные особенности непарного шелкопряда. Екатеринбург, препринт УрО РАН. 1992.60 с.
  138. С.С. Шелкопряд-монашенка в сосновых лесах Западной Сибири // Труды Сибирского лесотехнического института. Красноярск, 1979. Т. 5. Вып. 4. С. 19−42.
  139. Э. Природные средства защиты растений от вредителей. М.: Мир, 1986. 184 с.
  140. П.М., Рафес П. М. Динамика популяций растительноядных членистоногих как причина и следствие изменений среды обитания // Биологические методы оценки природной среды. М.: Наука, 1978. С. 3657.
  141. П.М. Биогеоценологические исследования растительноядных лесных насекомых. М.: Наука, 1980. 168 с.
  142. П.М. Взаимодействие насекомых, повреждающих листья, с кормовыми деревьями // Итоги науки и техники. Энтомология. Т. 5. М.: ВИНИТИ. С. 140−152.
  143. А.С. Дерево и насекомое. Новосибирск: Наука, 1981. 176 с.
  144. А.С., Васильева Т. Г. Непарный шелкопряд в Восточной Сибири // Непарный шелкопряд в Средней и Восточной Сибири. Новосибирск, 1982. С. 5−19.
  145. И. А. Об условиях массового размножения насекомых (влияние паразитов и хищников на колебание численности хозяев) // Зоол. журнал. 1953. Т. 32. Вып. 3. С. 321−328.
  146. Д.Ф. Влияние физиологического состояния растений на массовое размножение вредителей леса // Зоол. журн. 1962. Т. 41. Вып. 3. С. 313−329.
  147. .И. Основные направления и элементы интегрированных систем защиты растений от вредных членистоногих. Часть I. Упорядочение и совершенствование химических методов борьбы // Итоги науки и техники. Энтомология. Т. 4. М., 1979. С. 30−127.
  148. А.В., Бучельникова Т. В. Лесопатологическое состояние голесфонда сельскохозяйственной зоны Тюменской области //Леса и лесное хозяйство Западной Сибири. Тюмень: изд-во ТГУ, 1998. с. 120−127.
  149. В.М., Куценогий К. П., Киров Е. М., Макаров В. И., Чанкина О. В., Махов Г. А., Ларионов Г. В., Жимерикин В. Н., Бахвалов С. А., Литвина Л. А. Эффективность термомеханических аэрозолей // Защита растений, 1980. № 8. С. 36−37.
  150. В.II. Пути повышения надежности и экономичности лесозащиты // Применение биологических препаратов для защиты лесных насаждений. Тезисы докладов научно-производственной конференции. Бердск, 1999. С. 34−35.
  151. Э. Ж., Новикова Л. К., Никитина Н. И. Вирусы для защиты леса // Биологическая и интегрированная борьба с вредителями в лесных биоценозах. М., 1989. С. 105−109.
  152. Г. И. Непарный шелкопряд в Челябинской области и борьба с ним // Непарный шелкопряд: итоги и перспективы исследований. Красноярск, 1988. С. 28−29.
  153. Г. В. Влияние качества пищи на выживаемость и темпы развития рыжего соснового пилильщика//Лесной журнал. 1969. № 5. С. 159 -161.
  154. Г. В., Бортник А. М. О дискретности популяций // Науч. Тр. МЛТИ. 1974. Вып. 65. С. 19−34.
  155. В.А., Менчер В. М. Метод оптимизации рецептов полусинтетических питательных сред для разведения насекомых-фитофагов Amathes C-nigrum L. {Lepidoptera, Lymantriidae) II Зоол. журн. 1980. Т. 59. Вып. 5. С. 771−776.
  156. Н. А. Техническая энтомология — новая отрасль прикладной энтомологии //Итоги науки и техники. Т. 7. Энтомология. М., 1987. С.7−144.
  157. И.В., Кабалин С. И., Бех И.А., Платаис А. Э. Леса и лесное хозяйство Новосибирской области. Новосибирск: Наука, 1979. 270 с.
  158. Л.М. Вирусы насекомых. М.: Наука. 1975. 198 с.
  159. Г. И. Непарный шелкопряд {Lymantria dispar L.) в лесах Дальнего Востока (Распространение, биология, хозяйственное значение, особенности надзора). Автореферат канд. дисс. Красноярск, 1992.
  160. Г. И., Юрченко Г. И. О массовом размножении монашенки в хвойно-широколиственных лесах Дальнего Востока //Труды Дальневосточного НИИ лесного хозяйства. 1986. № 28. С. 130−136.
  161. С.И. Оценка устойчивости березовых древостоев Зауралья к дефолиации насекомыми-филлофагами // Лесопатологическая обстановка в лесном фонде Уральского региона. Екатеринбург: изд-во «Екатеринбург», 2001. С. 133−140.
  162. М.Г., Гирфанова J1.H., Яфаева З. Ш., Степанова Р. К. Массовые размножения непарного шелкопряда в Башкирии // Исследование очагов вредителей леса Башкирии. Уфа, 1958. С. 5−45.
  163. М.Г., Латышев Н. К., Яфаева З. Ш. //Исследование очагов вредителей леса Башкирии. Уфа, 1962. Вып. 2. С. 5−31.
  164. Н.Г., Рассказова Г. В., Лопаткин А. В., Кренделева Л. Я. Изучение некоторых свойств вирусов ядерного полиэдроза капустной и хлопковой совок // Вопросы вирусологии. 1985. № 6. С. 717−721.
  165. И.А. Питательные среды// Защита растений. 1976. № 3. С. 27.
  166. Л.П., Орлов Ю. М. О вспышках массового размножения розового и непарного шелкопрядов в Приморье // Труды Дальневосточного НИИ лес. х-ва. 1986. № 28. С. 125−129.
  167. А.И. Вредные насекомые полезащитных лесных полос. Новосибирск: Наука, 1952. 128 с.
  168. В.Б. Массовое разведение насекомых в СССР // Тезисы докладов второй всесоюзной конференции по промышленному разведению насекомых. М.: Издательство Московского университета, 1989. С. 3−6.
  169. О.А. Выращивание шелкопряда-монашенки // Интегрированная защита растений от вредителей. Новосибирск: СО ВАСХНИЛ, 1987. С. 167−175.
  170. О.А., Деветьярова С. В., Жимерикин В. Н., Бахвалов С. А. Индукция полиэдроза у различных популяций непарного шелкопряда при воздействии субоптимальных факторов // Энтомопатогенные организмы в лесных биоценозах. Красноярск, 1979. С. 91−97.
  171. Я.В. Очаговая цикличность массовых размножений непарного шелкопряда // Зоол. журн. 1949. Т. 28. Вып. 5. С. 431−438.
  172. И.А. Эколого-физиологические основы популяционных отношений у животных. М.: изд-во МГУ, 1977. 263 с.
  173. Jl.П. Об опыте работы аэрозольного отряда и радиологической лаборатории //Лесопатологическая обстановка в лесном фонде Уральского региона. Екатеринбург: Изд-во «Екатеринбург», 2001. С. 72−78.
  174. Р. Физиология насекомых. М.: Мир, 1953. 495 с.
  175. М.В. Повышение эффективности микробиологической борьбы с вредными насекомыми. Новосибирск: изд-во НГАУ, 1995. 194 с.
  176. М.В., Гулий В. В., Северина Н. И. Применение химических стрессоров в вирусологической борьбе с непарным шелкопрядом //Сибир. вестник с.-х. науки. 1977. № 2. С. 46−48.
  177. Е.М., Эдельман Н. М. Современные представления о специфике питания насекомых-фитофагов //Успехи современной биологии. 1979. Т. 88. № 2(5). С. 277−291.
  178. Н.М. Пути использования кормовой специализации непарного шелкопряда в целях обоснования профилактических мероприятий //Зоологический журнал. 1957. № 3. С. 408−420.
  179. Н.М. Возрастные изменения физиологического состояния личинок некоторых древоядных насекомых в связи с условиями их питания // Энтомологическое обозрение. 1963. Т XLII.1. С. 11−21.
  180. Н.М. Выращивание фитофагов с различными типами питания на питательных средах с проростками бобовых //Труды ВИЗР. Вып. 40. Л., 1974. С. 128−134.
  181. В.И., ГТпешанов А.С. Зоны вредоносности насекомых-филлофагов в Азиатской России. Новосибирск: Наука, 1995. 47с.
  182. В.И. Биохимическая характеристика ассимиляционного аппарата сосны и березы в условиях Северного Урала //Второе Уральское совещание по экологии и физиологии древесных растений. Уфа. 1965. С. 43−44.
  183. Abul-Nasr S.E., Ammar E.D., Abul-Ela S.M. Effects of nuclear polyhedrosis virus on various developmental stages of the cotton leafworm Spodoptera littoralis (Boisd) //J. Appl. Entomol. 1979. Vol. 88. P. 181−187.
  184. Aruga H. Induction of virus infections // Insect pathology. N.-Y. and L.: Acad. Press. 1963. Vol. 1. P. 499−530.
  185. Alberts В., Bray D., Lewis J., Raff M., Roberts K., Watson J.D. Molecular biology of the cell. N.Y. and L.: Garland Publishing, Inc., 1994. 19 941. P
  186. Altenkirch W. Die nonne in Nordwestdent-Schaland 1977−1980 // Aus. Schadlingsk. 1986. Vol. 59. № 4. S. 67−74.
  187. Anderson R.M., May R.M. Infections diseases and populations cycles of forest insects//Science. 1980. Vol. 210. P. 658−661.
  188. Antonovics J., Thrall P.H. The cost of resistance and maintenance of genetic polymorphism in host-pathogen systems // Proc. Royal Soc. London B, Biol. Sci. 1994. Vol. 257. P. 105−110.
  189. J. L., Smith R.F. (ed.) Integrated pest management. N.-Y. and L.: Plenum. Press, 1976. 200 p.
  190. Bejer B. Nun moth outbreaks in Denmark and their association with site factors and climate // For. Comm. Res. Dev. Pap. 1985. Vol. 135. P. 21−26.
  191. Bell R.A., Owens C.D., Shapiro M., Tardif J.R. Mass rearing and virus production: development of mass rearing technology // The Gypsy moth-
  192. Research Toward Integrated Pest Management. USDA Forest Service, 1981. Tech. Bull. 1584. P. 599−655.
  193. Bergold G.H. Viruses of insects // Hand-buch der Virusforschung. 1958. № 4. S. 60−142.
  194. Bergold G.H., Wellington E. Isolation and chemical composition of the membranes of an their relation to the virus and polyhedral bodies // J. Bacteriol. 1954. Vol.67. P. 210−216.
  195. A.A. (ed). Dynamics of forest insect populations. N-Y.: PI. Press, 1988. 603 p.
  196. Berryman A.A. What causes population cycles of forest Lepidopteral И Trends Ecol. Evol. 1995. Vol. 11. P. 28−32.
  197. Bilimoria S.L. Genomic divergence among single nucleocapsid nuclear polyhedrosis viruses of Plusiin hosts // Virology. 1983. Vol. 127. № 1. P. 1523.
  198. Bird F.T. Virus diseases of sawflies // Can. Entomol. 1955. Vol. 87. P. 122−124.
  199. Bird F.T. Transmission of some insect viruses with particular reference to ovarial transmission and its importance in the development of epizootics // J. Insect. Pathol. 1961. Vol. 3. P. 352−380.
  200. Bird F.T., Wallen M.M. A virus disease of the European pine sawfly, Neodiprion sertifer (Geoffr.)//Can. Entomol. 1953. Vol. 85. P. 433−437.
  201. Black B.C. Potentiation of epizootic viral infections of insects // Patent USA № 5 879 674. 1999. P. 1−6.
  202. Bogenschutz II. The gypsy moth situation in Germany // Proceeding USDA. NE-188. 1994. P. 8−9.
  203. Bogenschutz H., Kamnerer M. Untersuchungen zum Massenwechsel des Schwammspinners, Lymantria dispar L., Baden-Wurttemberg // Mitt. Dtsch. Ges. Allg. Und Angew. Entomol. 1995. Vol. 10. № 1- 6. P. 113−117.
  204. Boots M. Density-independent resource limitation and the transmission of an insect pathogen // Oecologia. 2000. Vol. 124. P. 172−175.
  205. Boots M., Begon M. Resourse limitation and the letal and subllethal effects of a viral pathogen in the Indian meal moth // Ecol. Entomol. 1994. Vol. 19. P. 319−326.
  206. Boots M., Greenman J., Ross D., Normann R., Hails R., Sait S. The population dynamical implications of covert infections in host-microparasite interactions // J. Animal. Ecol. 2003. Vol. 72. P. 1064−1072.
  207. Boucias D.G., Nordin G.L. Interinstar susceptibility of the fall webworm, Hyphantria cunea, to its nucleopolyhedrosis and granulosis viruses // J. Ivertebr. Pathol. 1977. Vol. 30. № 1. P. 68−75.
  208. Burden J.P., Griffiths C.M., Cory J.S., Smith P., Sait S.M. Vertical transmission of sublethal granulovirus infection in the Indian meal moth, Plodia interpunctella // Molecul. Ecol. 2002. Vol. 11. P. 547−555.
  209. Burden J.P., Nixon C.P., Hodgkinson A.E., Rossee R.D., Sait S.M., King L.A., Hails R.S. Covert infections as a mechanism for long-term persistence of baculoviruses // Ecol. Letters. 2003. Vol. 6. P. 524 531.
  210. Busvine I. A. Critical review of the techniques insecticides. London, 1971.267 p.
  211. Capinera J.L., Barbosa P. Transmission of nuclear polyhedrosis virus to gypsy moth larvae by Calosoma sycophanta II Ann. Entomol. Soc. Amer. 1975. Vol. 68. № 3. P. 593−594.
  212. Carruthers W.R., Cory J.S., Entwistle P.F. Recovery of pine beauty moth (Panolis flammea) nuclear polyhedrosis virus from pine foliage // J. Invert. Pathol. 1988. Vol. 52. № 1. P. 27−32.
  213. Cameron E.A. The gypsy moth: how integrated is pest management // Forest Ecol. and Manag. 1991. Vol. 39. № 1−4. P. 113−118.
  214. Cooper D., Cory J.S., Myers J.H. Hierarchical spatial structure of genetically variable nucleopolyhedrovirus infecting cyclic populations of western tent caterpillars // Mol. Ecol. 2003a. Vol. 12. P. 881−890.
  215. Cooper D., Cory J. S, Theilmann D.A., Myers J.H. Nucleopolyhedroviruses of forest and western tent caterpillars: cross-infectivity and evidence for activation of latent virus in high-density field populations // Ecol. Entomol. 2003b. Vol. 28. P. 41−50.
  216. Cory J. S, Clarke E.E., Brown M.L., Hails R.S., O’Reilly D.R. Microparasite manipulation of an insect: the influence of the egt gene on the interaction between a baculovirus and its lepidopteran host // Function. Ecol. 2004. Vol. 18. P. 443−450.
  217. Crawford A.M., Kalmakoff J. A host-virus interaction in a pasture habitat, Wiseanna spp. {Lepidoptera: Hepialidae) and its baculoviruses // J. Invertebr. Pathol. 1977. Vol. 29. P. 81−87.
  218. Crone E.E., Jones C.G. The dynamics of carbon nutrient balance: effects of cottonwood to short — and long — term shade on beetle feeding preferences // J. Chem. Ecol. 1999. Vol. 25. № 3. P. 635−656.
  219. Davidson J., Andrewartha H.G. The influence of rainfall, evaporation and atmospheric temperature on fluctuations in the size of a natural population of Trips imagines {Thysanoptera) II J. Anim. Ecol. 1948. Vol. 17. P. 200−222.
  220. Dercsen A.C.G., Granados R.R. Alteration of a lepidopteran peritrophic membrane by baculovirus and enhancement of a viral infection // Virology. 1988. Vol. 167. P. 242−250.
  221. Dreistadt S.H., Dahlsten D.l. Gypsy moth Eradication in Pacific Coast States: History and Evaluation // Bull. Entomol. Soc. Amer. 1989. Vol. 35. P. 13 -19.
  222. Doane C.C. Trans-ovum transmission of a nuclear- polyhedrosis virus in the gypsy moth and the inducement of virus susceptibility // J. Invertebr. Pathol. 1969. Vol. 14. P. 199−210.
  223. Doane C.C. Ecology of pathogens of the gypsy moth // Perspectives in Forest Entomology. Anderson J. F., Kaya H. (eds.). New York: Academic Press, 1976. P. 285−293.
  224. Dwyer G., Elkinton J.S. Host dispersal and the spatial spread of insect pathogens // Ecology. 1995. Vol. 76. № 4. P. 1262−1275.
  225. Eastwell K.C., Cossentine J.E., Bernardy M.G. Charakterisation of Cydia pomonella granulovirus from codling moths in a laboratory colony and in orchards of British Columbia //Ann. App. Biol. 1999. Vol. 134. P. 285−291.
  226. Eidmann H.H. Virus mot insecter// Skogs agaren. 1970. № 12. P. 7−9.
  227. Elam P., Vail P.V., Schreiber F. Infectivity of Autographa californica nuclear polyhedrosis virus extracted with digestive fluids of Heliothis zea, Estigmene acrea, and carbonate solutions // J. Invertebr. Pathol. 1990. Vol. 55. P. 278−283.
  228. Elkinton J.S. Population dynamics of gypsy moth in North America // Ann. Rev. Entomol. 1990. Vol. 35. P. 517−596.
  229. Elmore J.C., Howland A.F. Natural versus artificial dissemination of nuclear-polyhedrosis virus by contaminated adult cabbage loopers // J. Insect Pathol. 1964. Vol. 6. P. 430−438.
  230. Else Y., Truts W. Uber die Polyederkrankheit von Dasychira pudipunda und deren ubertrafung // Ans. Schadlihgskunde. 1966. Vol. 39. № 3. S. 39−42.
  231. Engelhard E.K., Volkman L.E. Developmental resistance in fourth instar Trichoplusia ni orally inoculated with Autographa californica M nuclear polyhedrosis virus // Virology. 1995. Vol. 209. P. 384−389.
  232. Etsel L.K., Falkon L.A. Studies of transovum and transstadial transmission of a granulosis virus of the codling moth // J. Invertebr. Pathol. 1976. Vol. 27. № 1.Р. 13−26.
  233. Evans H. F. The influence of larval maturation on responses of Mamestra brassicae L. to nuclear polyhedrosis virus infection // Arch, of Virol. 1983. Vol. 75. № 3. P. 163−170.
  234. Evans H.F. Quantitative assessment of relationships between dosage and response of nuclear polyhedrosis vims of Mamestra brassicae II J. Invertebr. Pathol. 1981. Vol. 37. P. 101−109.
  235. Harrison S. Persistent, localized outbreaks in the western tussock moth Orgyia vetusta: the roles of resourse quality, predation and poor dispersal // Ecol. Entomol. 1997. Vol. 22. № 2. P. 158−166.
  236. Haukioja E. Induction of defense in trees // Ann. Rev. Entomol. 1991. Vol. 36. Palo Alto (Calif.). P. 25−42.
  237. Hochberg M.E. Non-linear transmission rates and dynamics of infectious disease//J. Theor. Biol. 1991. Vol. 153. P. 301−321.
  238. Hurpin В., Falcon L. Evolution de deutilisation en lutte biologigue de preparations base de vims // Bull. Soc. Entomol. Fr. 1984. Vol. 89. № 1−4. P. 794−800.
  239. FilippovN.A. The present state and future outlook of biological control in the USSR//Acta Entomol. Fenn. 1989. Vol. 53. P. 11−18.
  240. Fosberg M.A., Peterson M. Modeling airborne transport of the gypsy moth (Lepidoptera: Lymantriidae) larvae. Agricult. and Forest Meteorol. 1986. Vol.38. P. 1−8.
  241. Fuxa J.R., Weidner E.H., Richter A.R. Polyhedra without virions in a vertically transmitted nuclear polyhedrosis virus // J. Invertebr. Pathol. 1992. Vol. 60. P. 53−58.
  242. Fuxa J.R., Sun J.-S., Weidner E.H., LaMotte L.R. Stressors and rearing diseases of Trichplusia ni: evidence of vertical transmission of NPV and CPV // J. Invertebr. Pathol. 1999. Vol. 74. P. 149−155.
  243. Fuxa J.R., Richter A.R. Selection for an increased rate of vertical transmission of Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae) nuclear polyhedrosis virus // Environ. Entomol. 1991. Vol. 20. P. 603−609.
  244. Fuxa J.R., Richter A.R., Ameen A.O., Hammock B.D. Vertical transmission of TnSNPV, TnCPV, AcMNPV, and possibly recombinant NPV in Trichplusia nilI J. Invertebr. Pathol. 2002. Vol. 79. P. 44−50.
  245. Gaylord E.S., Preszler R.W., Boecklen W.J. Interactions between host plants, endophytic fungi and a phytophagous insect in an oak {Quercus grisea) hybrid zone//Oecologia. 1996. Vol. 105. № 3. P. 336−342.
  246. Giese R.L., Schneider M.L. Cartographic comparisons of eurasian gypsy moth distribution {Lymantria dispar L.- Lepidoptera: Lymantriidae) // Ent. new. 1979. Vol. 90. № 1. P. 1−16.
  247. Goldberg A.V., Romanowski V., Federici B.A., Sciocco de Cap A. Effect of the epap granulo virus on its host, Epinotia aporema (Lepidoptera: Tortricida) //J. Invert. Pathol. 2002. Vol. 80. P. 148−159.
  248. Goulson D., Coiy J.S. Sublethal effects of baculovirus in the cabbage moth, Mamestra brassicae // Biol. Control. 1995. Vol. 5. P. 361−367.
  249. Glowacka B. Choroby epizootyczne brudnicy mniszki (Lymantria monacha L.) I mozliwosci mikrobiologicznego jej zwalczania // Prace Instytutu Badawczego Lesnictwa. Warszaw, 1989. № 691. 71 p.
  250. Glowacka-Pilot В. Zvalczanie gasienic brudnicy mniszki (Lymantria monacha L.) w drzewostanach sosnwych pray uzycin wirusa poliedrosy // Prace Instytutu Badawczego Lesnictwa. Warszaw, 1983. № 618. P. 55−65.
  251. Hajek A.E. Effect of host insects on activation of Entomophaga maimaiga resting spores//J. Invertebr. Pathol. 2001. Vol. 77. P. 290−291.
  252. Hajek A.E., Bauer L., McManus M.L., Wheeler M.M. Distribution of resting spores of the Lymantria dispar pathogen Entomophaga maimaiga in soil and on bark// BioControl. 1998. Vol. 43. P. 189−200.
  253. Hajek A.E., Shimazu M., Knoblauch B. Isolating Entomophaga maimaiga using resting spore-bearing soil // J. Invertebr. Pathol. 2000. Vol. 75. P. 298−300.
  254. Harris В., Lavers A. Poland: management of forest // Span. 1985. Vol. 28. № 1. P. 8−10.
  255. Haukioja E. Induction of defense in trees // Ann. Rev. Entomol. 1991. Vol. 36. Palo Alto (Calif.). P. 25−42.
  256. Herniou E.A., Luque Т., Chen X., Vlak J.M., Winstanley D., Cory J.S., O’Reilly D.R. Use of whole genome sequence data to infer baculovirus phylogeny //J. Virol. 2001. Vol. 75. № 7. P. 8117−8126.
  257. Herniou E.A., Olszewski J.A., O’Reilly D.R., Cory J.S. Ancient coevolution of baculoviruses and their insect hosts // J. Virol. 2004. Vol. 78. № 7. P. 3244−3251.
  258. Himeno M., Matsubara F., Hayashiya K. The occult virus of NPV of the silkworm larvae //J. Invertebr. Pathol. 1973. Vol. 22. № 2. P. 292−295.
  259. Hoover K., Grove M.J., Su S. Systemic component to intrastadial developmental resistance in Lymantria dispar to its baculovirus // Biol. Control. 2002. Vol. 25. P. 92−98.
  260. Howarth F.G. Environmental impacts of classical biological control // Ann. Rev. Entomol. 1991. Vol. 36. P. 485−509.
  261. Hoy M.A. Rapid response to selection for nondiapausing gypsy moth // Science. 1977. Vol. 196. № 4297. P. 1462−1463.
  262. Hoy M.A., Knop N. F. Development hatch dates, overwintering success, and spring emergence of a «non diapausing» gypsy moth strain in field cages // Can. Entomol. 1978. Vol. 110. № 9. P. 1003−1008.
  263. Hughes D.S., Rossee R.D., King L.A. Activation and detection of a latent baculovirus resembling Mamestra brassicae nuclear polyhedrosis virus in M. brassicae insects //Virology. 1993. Vol. 194. P. 608−615.
  264. Hughes D.S., Possee R.D., King L.A. Evidence for the presence of a low-level, persistent baculovirus infection of Mamestra brassicae insects // J.Gen. Virol. 1997. Vol. 78. P. 1801−1805.
  265. Jaques R.P. Application of viruses to soil and foliage for control of the cabbage looper and imported cabbage worm // J. Invertebr. Pathol. 1970. Vol. 15. P. 360−365.
  266. Jurkovicova M. Activation of occult virus infections in larvae of Adoxophyes orana {Lepidoptera: Tortricidae) and Barathra brassicae {Lepidoptera: Noctuidae) by foreign polyhedra I I J. Invertebr. Pathol. 1979. Vol.34. P. 213−223.
  267. Kaupp WJ. Persistence of Neodiprion sertifer {Hymenoptera: Diprionidae) nuclear polyhedrosis virus on Pinus contora foliage // Can. Entomol. 1983. Vol. 115. № 8. P. 869−873.
  268. Kaupp W. J., Ebling P.M. Horseradish peroxidase-labelled probes and enhanced chemiluminescence to detect baculoviruses in gypsy moth and eastern spruce budworm larvae // J. Virol. Methods. 1993. Vol. 44. P. 89−98.
  269. Kawabarata Т., Matsumoto K. Isolation and structure of nuclear polyhedrosis virus from polyhedra of the silkworm, Bombyx mori. II Appl. Entomol. Zool. 1973. Vol. 8. P. 227−233.
  270. Keating S.T., Burand J.P., Elkinton J.S. DNA hybridization assay for detection of gypsy moth nuclear polyhedrosis virus in infected gypsy moth {Lymantria dispar L.) larvae //Appl. Environ. Microbiol. 1989. Vol. 55. P. 2749 -2754.
  271. Keating S.T., Hunter M.D., Schults J.C. Leaf phenolic inhibition of gypsy moth nuclear polyhedrosis virus. Role of polyhedral inclusion body aggregation. //J. Chem. Ecol. 1990. Vol. 16. № 5. P. 1445−1457.
  272. Keena M.A. Survival and development of Lymantria monacha {.Lepidoptera: Lymantriidae) on North American and introduced Eurasian tree species // J. Econ. Entomol. 2003. Vol. 96. № 1. P. 43−52.
  273. M.A., 01 Dell T.M. Effects of laboratory rearing on gypsy moth {Lepidoptera: Lymantriidae) // Gen. Tech. Rep. NE 181. Radnor, PA: US DA. Forest Service, Northeastern Forest Experiment Station. 1994. 23 p.
  274. Knell J. D., Summers M. D. Investigation of genetic heterogeneity in wild isolates of Spodoptera frugiperda nuclear polyhedrosis virus by restrictionendonuclease analysis of plague purified variants // Virology. 1981. Vol. 112. № 1. P. 190−197.
  275. Knell R.J., Begon M., Thompson D.J. Transmission of Plodia interpunctella granulesis virus does not conform to the mass action model // J. Animal. Ecol. 1998. Vol. 67. № 4. P. 592−599.
  276. Krieg A. Arthpopodenviren. Stuttgart: Thime. 1973. 238s. Kudler J. Vysledky pokusu о vyvolani nakasy populace Hrebenuie rysave INeodiprion sertifer (Geoffr.) / rospthylen viru // Lesnictvi. 1981. Vol. 27. № 7. P. 621−627.
  277. Kukan B. Vertical transmission of nucleopolyhedrovirus in insects // J. Invertebr. Pathol. 1999. Vol. 74. P. 103−111.
  278. Kukan В., Myers J.H. DNA hybridization assay for detection of nuclear polyhedrosis virus in tent caterpillars // J. Invertebr. Pathol. 1995. Vol. 66. P. 231−236.
  279. Kunimi Y. Transovum transmission of a nuclear polyhedrosis virus of the fall webvorn, Hyphantria citnea Drury, Lepidoptera: Arctiidae II Appl. Entomol. and Zool. 1982. Vol. 17. № 3. P. 410−417.
  280. Magnoler A. A wheat germ medium for rearing of the gypsy moth, Lymantria dispar L. // Entomol. Exp. App. 1970a. Vol. 15. P. 401−406.
  281. Magnoler A. Susceptibility of gypsy moth larvae to Lymantria sp. nuclear and cytoplasmic viruses // Entomophaga. 19 706. Vol. 15. P.407−412.
  282. Magnoler A. Bioassay of nucleopolyhedrosis virus of the gypsy moth, Porthetria dispar // J. Invertebr. Pathol. 1974. Vol. 25. P. 343−348.
  283. Majunke C., Walter C. Waldschutzsituation 2000/2001 in Brandenburg und Berlin // AFZ/Wald. 2001. Vol. 56. № 7. P. 352−354.
  284. Manji G.A., Hozar R.R., LaCount D.J., Frisen P.D. Baculovirus inhibitor of apoptosis functions at or upstream of the apoptotic suppressor P 35 to prevent programmed cell death //J. Virol. 1997. Vol. 71. P. 4509−4516.
  285. Mardan A.H., Harein P.K. Susceptibility of malathion-resistant Indian meal moth, Plodia Interpunctella (Hubner) (Lepidoptera: Pyralidae), to a nuclear polyhedrosis virus and a granulosis virus // Appl. Entomol. Zool. 1984. Vol. 13. P. 79−80.
  286. Marovic R. Results of the crossing inbred strain of gypsy moth, Lymantria dispar L., with wild moths // Z. angew. Entomol. 1981. Vol. 91. № 1. P. 107 111.
  287. Marshall E. The summer of the gypsy moth // Science. 1981. Vol. 213. № 4511. P. 991−993.
  288. Mason C.J., McManus M.L. Larval dispersal of the Gypsy moth. // The Gypsy Moth: Research Toward Integrated Pest Management. U. S. Department of Agriculture Technical Bulletin. Doane C.C., McManus M.L. (eds.). 1981. № 1584. P. 161−202.
  289. Matthews H.J., Smith I., Edwards J.P. Lethal and sublethal effects of a granulovirus on the tomato moth Lacanobia oleracea И J. Invert. Pathol. 2001. Vol. 80. P. 73−80.
  290. Meade Т., Felton G.W., Young S.Y. Interactions among plants, herbivores and entomopathogens: implications for pest management. //Eur. Jorn. Plant Pathol. 1995. XI11 Int. Plant Prot. Congr. The Haque 2−7 July. № 435.
  291. Mellerik D.M., Fraser N.M. Physical state of the latent herpes simplex virus genome in a mouse model system: evidence supporting an episomal state //Virology. 1987. Vol. 158. P. 265−275.
  292. McVean R.I.K., Sait S.M., Thompson D.J., Begon M. Dietary stress reduces the susceptibility of Plodia interpunctella to infection by a granulovirus // Biol. Control. 2002. Vol. 25. P. 81−84.
  293. Milks M.L. Burnstyn I., Myers J.M. Influence of larval age on the lethal and sublethal effects of nucleopolyhedrovirus of Trichoplusia ni in the cabbage looper//Biol. Control. 1998. Vol. 12. P. 119−126.
  294. Milks M.L., Myers J.M. The development of larval resistance to a nucleopolyhedrovirus is not accompanied by an increased virulence in the virus // Evolution. Ecol. 2001. Vol. 14. P. 645−664.
  295. Milks M.L., Myers J.M., Leptich M.K. Costs and stability of cabbage looper resistance to a nucleopolyhedrovirus // Evolution. Ecol. 2002. Vol. 16. P. 369−385.
  296. Miller L.K., Black B.C., Dierks P.M. Insect viruses, sequences, insecticidal compositions and methods // Patent USA № 5 858 353. 1999. P. 1−5.
  297. Mohamed M.A., Coppel H.C., Podgwaite J.D. Persistence in soil and on foliage of nucleopolyhedrosis virus of the European pine sawfly, Neodiprion sertifer {Heminoptera: Diprionidae) II Environ. Entomol. 1982. Vol. 11. P. 1116 -1118.
  298. Moran P.J. Plant mediated interactions between insects and a fungal plant pathogen and the role of plant chemical responses to infection. // Oecologia. 1998. Vol. 115. № 4. P. 523−530.
  299. Montgomery M.E., Wallner W.E. The gypsy moth. A westward migrant // Dynamics of forest insect populations / Ed. A. Berryman. 1988. P. 354−375.
  300. Morewood P., Gries G., Haussler D., Moller K., Liska J., Kapitola P., Bogenschutz H. Towards pheromone-based detection of Lymantria monacha (Lepidoptera: Lymantriidae) in North America //Can. Entomol. Vol. 131. P. 687−694.
  301. Murray K.D., Elkinton J.S. Environmental contamination of egg masses as a major component of transgenerational transmission of gypsy moth nuclear polyhedrosis virus (LdMNPV) // J. Invertebr. Pathol. 1989. Vol. 53. № 3. P. 324−334.
  302. Murray K.D., Shieds K.S., Burand J.P., Elkinton J.S. The effect of gypsy moth metamorphosis on the development of nuclear polyhedrosis virus infection // J. Invertebr. Pathol. 1991. Vol. 57. P. 352−361.
  303. Myers J.H. Can a general hypothesis explain population of forest Lepidoptera//Adv. Ecol. Res. 1988. Vol. 18. P. 179−284.
  304. Myers J.H., Malakar R., Cory J. S. Syblethal nucleopolyhedrovirus infection effects on female pupal weight, egg mass size, and vertical transmission in gypsy moth (Lepidoptera: Lymantriidae) // Environ. Entomol. 2000. Vol. 29. № 6. P. 1268−1272.
  305. Nair K.P., Vasudevan J.A. Transmission of nuclear polyhedrosis virus of rice swarming caterpillar Spodoptera mauritia (Boisduvae) through egg // Environ. Entomol. 1985. Vol. 10. № 1. P. 1−6.
  306. Neeglund Y.F., Mathad S.B. Transmission of nuclear polyhedrosis virus in laboratory population of the armyworm, Mythimna (Pseudoletia) separata II J. Invertebr. Pathol. 1978. Vol. 31. P. 143−147.
  307. Nicholson A.J. An outline of the dynamics of animal populations // Aust. J. Zool. 1954. Vol. 2. P. 9−65.
  308. Nicholson A.J. The balance of animal populations //J. Anim. Ecol. 1933. Vol.2. P. 132−178.
  309. Novotny J. The use of nucleopolyhedrosis virus (NPV) and microsporidia in the control of the gypsy moth {Lymantria dispar L.) // Folia Parasitol. 1988. Vol. 35. № 3. P. 199−208.
  310. O’Dell T.M., Rollinson W.D. A technique for rearing the gypsy moth, Porthetria dispar (L.) on an artificial diet // J. Econ. Entomol. 1966. Vol. 59. № 3. P. 741−742.
  311. Oakland J.S. Pest management: mead for integrated approach // Pesticides. 1981. Vol. 18. № 9. P. 3−6.
  312. Olofsson F. Environmental persistence of the European pine sawfly in relation to epizootics in Swedish Scots pine forests //J. Invertebr. Pathol. 1988. Vol. 52. № 1. P. 119−129.
  313. Oomens A.G.P., Monsma S.A., Blissard G.W. The baculovirus gp64 envelope fusion protein: synthesis, oligomerization, and processing //Virology. 1995. Vol.209. P. 592−603.
  314. O’Reilly D.R., Miller L.K. A baculovirus blocks insect molting by producing ecydysteroid UDP-glucosyl transferase // Science. 1989. Vol. 245. P. 1110−1112.
  315. Ossowski L.L.J. The biological control of the wattle bagworm, Kotochalia junodi (Heyl) by a virus // Annu. Appl. Biol. 1960. Vol. 48. P. 299−313.
  316. Park E.J., Yin C.-M., Burand J.P. Baculovirus replication alters hormone regulated host development // J. Gen. Virol. 1996. Vol. 77. № 3. P. 547−554.
  317. Pearson M. N., Groten С., Rohrmann G.F. Identification of the Lymantria dispar nucleopolyhedrovirus envelope fusion protein provides evidence for a phylogenetic division of the Baculoviridae // J. Virol. 2000. Vol. 74. P. 61 266 131.
  318. Pearson M. N., Rohrmann G.F. Transfer, Incorporation, and Substitution of Envelope Fusion Proteins among Members of the Baculoviridae, Orthomyxoviridae, and Metaviridae (Insect Retrovirus) Families // J. Virol. 2002. Vol. 76. № 11. P. 5301−5304.
  319. Pimentel D., Glenister C., Fast S., Gallahan D. Environmental risks of biological pest controls // Oikos. 1984. Vol. 42. № 3. P. 283−290.
  320. Podgwaite J.D. Gypchek. Biological insecticide for the gypsy moth // J. Forestry. 1999. Vol. 97. № 3. P. 16−19.
  321. Podgwaite J.D., Mazzone H.M. Development of insect viruses as pesticides: the case of the gypsy moth {Lymantria dispar L.) in North America // Prot. Ecol. 1982. Vol. 3. P. 219−227.
  322. Podgwaite J.D., Mazzone H.M. Latency of insect viruses // Adv. Virus Res. Orlando, 1986. Vol. 31. P. 293−320.
  323. Podgwaite J.D., Reardon R.C., Kolodny-Hirsch D.M., Walton G.S. Efficacy of ground application of the gypsy moth (Lepidoptera: Lymantriidae) nucleopolyhedrosis virus product, Gypchek // J. Econ. Entomol. 1991. Vol. 84. P. 440−444.
  324. Podgwaite J.D., Reardon R.C., Walton G.S., Witcosky J. Efficacy of aerially-applied Gypchek against gypsy moth {Lepidoptera: Lymantriidae) in the Appalachian highlands // J. Entomol. Science. 1992. Vol. 27. P. 337−344.
  325. Podgwaite J.D., Stone S.K., Zerillo R.T., Bruen R.B. Environmental persistence of the nucleopolyhedrosis virus of the gypsy moth, Lymantria dispar II Environ. Entomol. 1979. Vol. 8. № 3. P. 528−536.
  326. Popham H.J.R., Bischoff D.S., Slavicek J.M. Both Lymantria dispar nucleopolyhedrovirus Enhancin genes contribute to viral potency // J. Virol. 2001. Vol. 75. № 18. P. 8639−8648.
  327. Raimo В., Reardon R.C., Podgwaite J.D. Vectoring gypsy moth nuclear polyhedrosis virus by Apanteles melanoscelus (Hym.: Braconidae) II Entomophaga. 1977. Vol. 22. № 2. P. 207−215.
  328. Reardon R.C. Appalachian gypsy moth integrated pest management demonstration project// 18th Int. Congr. Entomol. Vancouver, 1988. P. 416.
  329. Reardon R.C., Podgwaite J.D. Summary of efficacy evaluations using aerially applied Gypchek against gypsy moth in the USA // J. Environ. Science and Health. 1994. Vol. 29. P. 739−756.
  330. Reeson A.F., Wilson K., Gunn A., Hails R.S. Goulson D. Baculovirus resistance in the noctuid Spodoptera exempta is phenotypically plastic and responds to population density // Proc. R. Soc. Lond. B. Vol. 265. P. 17 871 991.
  331. Reineke A., Zebitz C.P.W. Flight ability of gypsy moth females {Lymantria dispar L.) (Lep., Lymantriidae): a behavioural feature characterizing moths from Asia?//J. Appl. Entomol. 1998. Vol. 122. P. 307−310.
  332. Richards A., Cory J., Speight M., Williams T. Foraging in pathogen reservoir can lead to local host population exinction: a case study of Lepidoptera virus interaction // Oecologia. 1999. Vol. 118. № 1. P. 29−38.
  333. Richerson J.V., Cameron E.A., White D.E., Walsh M. Egg parameters as a measure of population qualityof the gypsy moth, Lymantria dispar. II Ann. Entomol. Soc. Amer. 1978. Vol. 71. № 1. P. 60−64.
  334. Ridet J.M. Etude des conditions optimales d’elevage et d’alimentation de Lymantria dispar L. // Ann. Soc. Entomol. de France. 1972. Vol. 8. P. 653−658.
  335. Roelvink P.W., Corsaro B.G., Granados R.R. Characterization of the Helicoverpa armigera and Pseudaletia nnipuncta granulovirus enhancin genes // J. Gen Virol. 1995. Vol. 76. P. 2693−2705.
  336. Rothman L.D., Myers J.H. Debilitating effects of viral disease on host Lepidoptera II J. Invertebr. Pathol. 1996. Vol. 67. P. 1−10.
  337. Sait S.M., Begon M., Thompson D.J. Long-term population dynamics of the Indian meal moth Plodia interpunctella and its granulesis virus // J. Animal. Ecol. 1994a. Vol. 63. P. 861−870.
  338. Sait S.M., Begon M., Thompson D.J. The influence of a sublethal baculovirus infection in the indian meal moth Plodia interpunctella II J. Animal Ecol. 1994b. Vol. 63. P. 541−550.
  339. Sait S.M., Gage M.J.G., Cook P.A. Effect of a fertility-reducing baculovirus on sperm numbers and sizes in the indian meal moth, Plodia interpunctella И Function. Ecol. 1998. Vol. 12. P. 56−62.
  340. Schmidt L., Philips G. Granulosis a new virus disease of the fall webworm // Fac. Agr. Forestry. Inst. Entomol. Zagreb. 1958. № 1. 27 p.
  341. Schowalter T.D., Hargrowe W.W., Crossley D.A. Herbivore in forested ecosystems//Ann. Rev. Entomol. 1986. Vol. 31. P. 177−196.
  342. Schultz J.C., Baldwin J.T. Oak loaf quality delaines in response to defoliation by gypsy moth larvae// Science. 1982. Vol. 271. № 9. P. 149−150.
  343. Schultz J.C., Lechowicz M. J. Hostplant, larval age, and feeding behavior influence midgut pH in the gypsy moth {Lymantria dispar) // Oecologia. 1986. Vol. 71. P. 133−137.
  344. Schwenke W. Die Forstschadlinge Europas. Bd. 3. Schmetterlinge. 1978. S. 349−368.
  345. Shapiro M., Bell R.A. Biological activity of Lymantria dispar nucleopolyhedrosis virus from living and virus-killed larvae // Ann. Entomol Soc. Amer. 1981. Vol. 74. № 1. P. 27−28.
  346. Shapiro M., Robertson J.L. Yield and activity of gypsy moth {Lepidoptera: Lymantriidae) nucleopolyhedrosis virus recovered from survivors of viral challenge//J. Econ. Entomol. 1987. Vol. 80. P. 901−905.
  347. Shapiro M., Bell R.A., Owens C.D. Evalution of various artificial diets for in vivo production of the gypsy moth nucleopolyhedrosis virus // J. Econ. Entomol. 1981 a. Vol. 74. № 3. P. 341−343.
  348. Shapiro M., Owens C.D., Bell R.A., Wood H.A. Simplified efficient system for in vivo mass production of the gypsy moth nucleopolyhedrosis virus// J. Econ. Entomol. 1981 6. Vol. 74. № 1. P. 110−111.
  349. Shapiro M., Robertson J.L., Ynjac M.G. Katagiri K., Bell R.A. Comparative infectivities of gypsy moth {Lepidoptera: Lymantriidae) nucleopolyhedrosis virus isolates from North America, Europe and Asia // J. Econ. Entomol. 1984. Vol. 77. № 1. P. 153−156.
  350. Shapiro M., Robertson J. L., Webb R. E., Effect of nemm seed extract upon the gypsy moth {Lepidoptera, Lymantriidae) and its nuclear polyhedrosis virus. //J. Econ. Entomol. 1994. Vol. 87. № 2. P. 356−360.
  351. Sheppard R. F., Stairs G.R. Dosage-mortality and time- mortality studies of a granulesis virus in a laboratory strain of the codling moth, Laspeuresia pomonella //J. Invertebr. Pathol. 1977. Vol. 29. № 2. P. 216−221.
  352. Shieh T. R., Bohmfalk G.T. Production and efficacy of baculoviruses // Biotechnol. and Bioeng. 1980. Vol. 22. № 7. P. 1357−1375.
  353. Slavicek J.M., Hayes-Plasolles N. Strain of gypsy moth virus with enhanceol polyhedra and budded virus production // Patent USA № 5 582 913.1999. P. 1−7.
  354. Sliva E. Prognozovanie wystepewania brudnicy mniszki v latax 19 781 984 // Las. Pol. 1984. № 6. P. 25−27.
  355. Smirnoff W.A. Trans-ovum transmission of virus of Neodiprion swainei Middleton // J. Insect. Pathol. 1962. Vol. 4. № 2. P. 192−200.
  356. Smith K.M. Insect virology. N.-Y. and L.: Acad. Press. 1967. 256 p. Smits P.H., Vlak J.M. Biological activity of Spodoptera exigua nuclear polyhedrosis virus againts S. exigua larvae // J. Invertebr. Pathol. 1988. Vol. 51. P. 107−114.
  357. Soikkonen K. Nuclear polyhedrosis virus of the European pine sawfly, Neodiprion sertifer (Geoffr.) retains infectivity in soil treated with simulated acid rain // J. Appl. Entomol. 1995. Vol. 119. № 7. P. 495−499.
  358. Stairs G.R. The effect of metamorphosis on nuclear polyhedrosis virus infection on certain Lepidoptera II Can. J. Microbiol. 1965. V. 11. P. 509−512.
  359. Steinhays E.A. Crowding as a possible stress factor in insect disease // Ecology. 1958. Vol. 39. P. 503−514.
  360. Tanada Y. Recent advances in insect virology // Proc. Haw. Entomol. Soc. 1970. Vol. 21. № l.P. 113−227.
  361. Tatchell G.M. The transmission of a granulosis virus folloving contamination of Pieris rapae adults // J. Invertebr. Pathol. 1981. Vol. 37. P. 210−213.
  362. Teakle R.E., Byrne V.S. Nuclear polyhedrosis virus productionin Heliothis armigera infected at different larval ages // J. Invertebr. Pathol. 1989. Vol. 53. № l.P. 21−24.
  363. Thompson C.G., Scott D.W., Wickwan B.E. Long-term persistence of the nuclear polyhedrosis virus of the Douglas-fir tussock moth, Orgyia pseudotsugata {Lepidoptera: Lymantriidae), in forest soil // Environ. Entomol. 1981. Vol. 10. № 2. P. 254−256.
  364. Thompson W.R. The utility of mathematical methods in relation to work on biological control //Ann.Appl. Biol. 1930. Vol. 17. P. 641−648.
  365. Tinsley T.W. The potential of insect pathogenic viruses as pesticidal agents // Ann. Rev. Entomol. 1979. Vol. 24. P. 63−87.
  366. Urguhart F.A. Virus-caused epizootic a factor in population fluctuations of the monarch butterfly // J. Invertebr. Pathol. 1966. Vol. 8. P. 492−495.
  367. Vago C. Phenomenes de «Latentia» dans une maladia a ultravirus des insects // Rev. Can. Biol. 1963. Vol. 10. № 4. P. 299−308.
  368. Vail P.V., Hall I.M. Susceptibility of the pupa of the cabbage looper, Trichplnsia ni, to nucleopolyhedrosis virus. // J. Invertebr. Pathol. 1969. Vol. 14. P. 227−236.
  369. Vlak J. M., Groner A. Identification of two nuclear polyhedrosis viruses from the cabbage moth, Mamestra brassicae II J. Ivertebr. Pathol. 1980. Vol. 35. № 2. P. 269−278.
  370. Wallner W.E. Attractancy to light and flight behavior of asian gypsy moth females // Proceeding of the 1993 annual gypsy moth review, 1993. P. 30 33.
  371. Wang C.-H., Yang H.-N., Liu H.-C. Nested polymerase chain reaction and in situ hybridization for detection of nucleopolyhedrosis // J.Virol. Methods. 2000. Vol. 24. P. 65−75.
  372. Wang P., Granados R.R. An intestinal mucin is the target for a baculovirus enhancin // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1997. Vol. 94. P. 69 776 982.
  373. Wang P., Granados R.R. Observetions on the presence of the peritrophic membrane in larval Tricoplusia ni and its role in limiting baculovirus infection 11 J. Invertebr. Pathol. 1998. Vol. 72. P. 57−62.
  374. Wang P., Hammer P.A., Granados R.R. Interaction of Trichoplusia ni granulesis virus-encoded enhancin with the midgut epithelium and peritrophic membrane of four lepidopteran insects I I J. Gen. Virol. 1994. Vol. 66. P. 541 550.
  375. Ward V.K., Fleming S.B., Kalmakoff J. Comparison of a DNA- DNA dot-blot hybridization assay with light microscopy and radioimmunoassay for detection of a nuclear polyhedrosis virus // J. Virol. Methods. 1987. Vol. 15. P. 65−73.
  376. Washburn J.O., Kirkpatrick B. E! Volkman L.E. Insect protection against viruses//Nature. 1996. Vol. 383. P. 767.
  377. Webb R., Podgwaite J., Shapiro M., Tatman K., Douglass L. Hydraulic spray application of Gypchek as a homeowner control tactic against gypsy moth {Lepidoptera: Lymantriidae) II J. Entomol. Science. 1990. Vol. 25. P. 383−393.
  378. Wellington W.C. Population quality and the maintenance of nuclear polyhedrosis between outbreaks of Malacosoma pluviale (Dyar) // J. Invertebr. Pathol. 1962. № 4. P. 285−305.
  379. Weseloh R.M., Andreadis T.G. Epizootiology of the fungus Entomophaga maimaiga, and its imact on gypsy moth populations // J. Invertebr. Pathol. 1992. Vol. 59. P. 133−141.
  380. Weseloh R.M., Andreadis T.G. Laboratory assessment of forest microhabitat substrates as sources of the gypsy moth nuclear polyhedrosis virus // J. Invertebr. Pathol. 1986. Vol. 48. P. 27−33.
  381. Westwood J. A., Jones I.M., Bishop D.H.L. Analysis of alternative poly (A) signals for use in baculovirus expression vectors // Virology. 1993. Vol. 195. P. 90−99.
  382. Whitford M., Stewart S., Kuzio J., Faulkner P. Identification and sequence analysis of a gene encoding gp67, an abundant envelope glycoprotein of the baculovirus Autographa californica nuclear polyhedrosis virus. J. Virol. 1989.Vol. 63. P. 1393−1399.
  383. Wilson K., Reeson A.F. Density-dependent prophylaxis: evidence from Lepidoptera baculovirus interaction? // Ecol. Entomol. 1998. Vol. 23. № 1. P. 100−101.
  384. Wood H.A., Smith I.R.L., Crook N.E. Do latent baculoviruses exist and what is their importance? Proc. 18th Int. Cong. Entomol. Vancouver. 1988. P. 251.
  385. Woods S.A., Elkinton J.S. Bimodal patterns of mortality from nuclear polyhedrosis virus in gypsy moth {Lymantria dispar L.) populations // J. Ivertebr. Pathol. 1987. Vol. 50. № 2. P. 151−157.
  386. Yamao M., Katayama N., Nakazawa H., Yamakawa M., Hayashi Y., Hara S., Kamei K., Mori H. Gene targeting in the silkworm by use of a baculovirus // Genes $ Dev. 1999. Vol. 13. P. 511 -516.
  387. Yadava R.L. Studdien uber den einflub von temperatur und relativer luftfeuchtigkeit auf die entwicklung der kernpoiyedrose der none // Z. Angew. Entomol. 1970. № 2. P. 167−171.
  388. Young S. Y. Effect of nuclear polyhedrosis virus in Spodoptera ornitogalli larvae on post larval stages and dessimination of adults // J. Ivertebr. Pathol. 1990. Vol. 55. P. 69−75.
  389. Young S. Y., Yearian W.C. Nuclear polyhedrosis vims infection of Pseudoplusia includens {Lep.: Noctuidae) larvae: effect on post larval stages and transmission // Entomophaga. 1982. Vol. 27. P. 61−66.
  390. Zera A.J., Larsen A. The metabolic basic of life history variation: genetic and phenotypic differences in lipid reserves among life history morphs of the wing-polymorphic cricket, Gryllus firmus IIII J. Insect Physiol. 2001. Vol. 47. P. 1147−1160.
  391. Zera A.J., Mole S., Rokke K. Lipid, carbohydrate and nitrogen content of long- and short-winger Gryllus firmus: implications for the physiological cost of flight capability//J. Insect Physiol.1994. Vol. 40. P. 1037−1044.
  392. Zether O. Control experiments on the nun moth {Lymantria monacha L.) nyclear-polyhedrosis virus in Danish coniferous forests //Z. Angew. Entomol. 1976. Vol. 81. № 2. P. 192−207.
  393. Zhang P., Yang K., Dai X., Pang Y., Su D. Infection of wild-type Autographa californica multicapsid nucleopolyhedrovirus induces in vivo apoptosis of Spodoptera litura larvae // J. Gen. Virol. 2002. Vol. 83. P. 30 033 011.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!