Биологические, физико-химические и молекулярно-генетические свойства герпесвируса сибирского осетра

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Эти вирусы вызывают заболевания у мальков и сеголетков белого осетра. Болезни развиваются обычно весной и в начале лета, реже — осенью. Этиологическая роль вирусов в заболеваниях доказана экспериментально. Стресс разной природы является решающим фактором, провоцирующим вспышки эпизоотий. Болезни обычно осложняются миксобактериозами и протозойными инвазиями. Рыбы старшего возраста не болеют… Читать ещё >

Содержание

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
ВВЕДЕНИЕ
- 1. 1. Актуальность темы
- 1. 2. Цель и задачи исследований
- 1. 3. Научная новизна
- 1. 4. Практическая значимость
- 1. 5. Основные положения, выносимые на защиту
- 1. 6. Апробация и публикация результатов работы
- 1. 7. Личный вклад
- 1. 8. Объем и структура работы
2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- 2. 1. Герпесвирусы рыб и вызываемые ими болезни
  - 2. 1. 1. Герпесвирусы рыб, выделенные в культуре клеток
    - 2. 1. 1. 1. Герпесвирус американского канального сома
    - 2. 1. 1. 2. Герпесвирус лососевых 1 типа
    - 2. 1. 1. 3. Герпесвирус лососевых 2 типа
    - 2. 1. 1. 4. Герпесвирус карпа 1 типа
    - 2. 1. 1. 5. Герпесвирус некроза гемопоэтической ткани золотой рыбки
    - 2. 1. 1. 6. Герпесвирус карпа кои
    - 2. 1. 1. 7. Герпесвирус угря
    - 2. 1. 1. 8. Герпесвирусы белого осетра
  - 2. 1. 2. Герпесвирусы рыб, обнаруженные с помощью электронной микроскопии
- 2. 2. Филогенетический анализ герпесвирусов рыб
- 2. 3. Классификация герпесвирусов

Биологические, физико-химические и молекулярно-генетические свойства герпесвируса сибирского осетра (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Промышленному выращиванию осетровых рыб с целью воспроизводства природных запасов и получения товарной продукции уделяется возрастающее внимание во всем мире. В последние годы наблюдается заметный рост активности в этой области, обусловленный, с одной стороны, угрозой исчезновения ряда ценных видов осетровых рыб, а с другой, — значительным увеличением спроса на деликатесную продукцию, получаемую из осетровых.

В связи с наблюдающимся в последнее время в мире катастрофическим снижением природных запасов осетровых, первостепенное значение сейчас придается разведению этих рыб в аквакультуре. Вместе с тем, опыт показывает, что интенсификация аквакультуры сопряжена с появлением ряда негативных, лимитирующих факторов, среди которых одним из главных являются болезни объектов разведения. Как и в аквакультуре в целом, основной ущерб осетроводству наносят вирусные болезни [75].

Первые работы в области вирусологии осетровых рыб были выполнены в США профессором Рональдом Хедриком [13], в лаборатории которого получены первые линии клеток белого осетра и впервые выделены вирусы осетровых рыб. На сегодня у североамериканских осетровых обнаружено 10 разных вирусов, наиболее опасными из которых являются: аденовирус, иридовирус и два герпесвируса белого осетра [13, 14, 144, 188].

Три из четырех вирусов (иридои оба герпесвируса) поражают преимущественно ткани внешних покровов (имеют покровно-тканевой тропизм). То же самое справедливо и в отношении аденовируса, но для него характерен другой тканевой тропизм (эпителий кишечника). Эпизоотологические данные указывают на вероятность вертикальной передачи иридои герпесвирусов от производителей потомству. Оба герпесвируса могут быть достаточно легко изолированы от больных рыб в культуре клеток, но материал для исследования должен быть свежим. Иридовирус выделяется с трудом и не всегда, а выделить аденовирус до сих пор не удалось. Наиболее опасными и широко распространенными агентами из четырех перечисленных считаются иридовирус (WSIV) и герпесвирус второго типа (AciHV-2) [144, 188].

Первое сообщение об обнаружении вирусного заболевания у осетра в Европе было опубликовано в Италии [69]. Авторы описали случай гибели в одном из хозяйств почти половины завезенной из Калифорнии молоди белого осетра с гистопатологическими признаками, типичными для аденовирусной инфекции. Там же в Италии в 2003 г. от завезенного из США белого осетра был изолирован герпесвирус, относящийся к AciHV-2. В 1998 г. появилось сообщение об электронномикроскопическом обнаружении у осетровых нового вируса — иридовируса русского осетра (A. guldenstadti) (RSIV) в Бельгии [14]. Других случаев обнаружения вирусов у осетровых рыб за рубежом не зарегистрировано.

Осетроводство в России в последние годы становится одной из наиболее перспективных отраслей аквакультуры. Формируются государственные программы его поддержки и развития. К сожалению, необходимость изучения вирусных болезней осетровых в условиях аквакультуры явно недооценивается.

Недавно были получены пять отечественных линий клеток сибирского осетра: две из плавников и три из пула печени, почки и селезенки [10]. Полученные линии еще не полностью охарактеризованы, но уже используются при проведении вирусологических исследований рыб. В результате обследований культивируемых в России осетровых рыб вирусных агентов до последнего времени обнаружено не было [9, 10].

Весной 2006 г. на племенном рыбоводном предприятии — Конаковском заводе товарного осетроводства (Тверская обл.) произошла вспышка болезни среди сеголетков осетровых рыб, сопровождавшаяся массовой гибелью молоди. Наиболее восприимчивым к ней был сибирский осетр, Асгретег Ьаеп. Гибель в отдельных партиях сеголетков доходила до 100%. Аналогичные вспышки болезни регистрировали позднее в других осетровых хозяйствах.

Исключение паразитов и бактерий как возможных возбудителей указывало на необходимость проведения исследований по установлению роли вирусов в этиологии этой болезни.

5 ВЫВОДЫ.

1. Впервые выделен вирус от неамериканских видов осетровых рыб и установлена первая вирусная болезнь у осетровых рыб в России.

2. Болезнь высококонтагиозна и клинически проявляется в виде ярко выраженного некрогеморрагического синдрома, осложненного секундарными инфекциями. Из внутренних органов наиболее сильно поражаются печень, задний отдел кишечника, плавательный пузырь и сердце. Вспышки болезни обычно возникают весной. Сибирский осетр, АЫретег Ьаеп, наиболее чувствителен к возбудителю, карп и радужная форель нечувствительны к нему и не передают его восприимчивым видам рыб.

3. Вирус имеет капсид икосаэдрической формы и внешнюю оболочку с заключенным под нею тегументом. Диаметр капсида около 100 нм, вириона с оболочкой 200−250 нм. Строение вириона, особенности морфогенеза и молекулярно-генетические свойства вируса позволяют отнести его к семейству АПокегреяутс^ае порядка Негре81га1е$.

4. Герпесвирус высокопатогенен для молоди сибирского осетра, обладает покровно-тканевым тропизмом и у переболевших рыб индуцирует выработку нейтрализующих антител в высоких титрах (1:600−1:3000).

5. К герпесвирусу чувствительны только линии клеток осетрового происхождения. Оптимизированы технологические параметры культивирования вируса, обеспечивающие накопление его в титре 6,85±0,20 о.

ТЦД50/СМ и включающие заражение 1−2-суточной культуры клеток 880−2 с множественностью 0,1 — 0,01ТЦД5о/кл., поддерживающую среду 199 с 2% СГЖ, рН 6,5, температуру инкубации 15 °C, роллерное культивирование со скоростью вращения сосудов 25−30 об./ч.

6. Культуральный герпесвирус высоколабилен и инактивируется при значениях рН среды 3,0 и 12,8, под воздействием хлороформа, 70° этанола и хлорамина с концентрацией активного хлора не ниже 250 мг/дм. Его инфекционность утрачивается при температуре 45 °C в течение 15 мин и сохраняется на протяжении 7 мес. при 4 °C.

7. Молекулярно-генетический анализ участков генов ДНК-полимеразы и терминазы гериесвируса сибирского осетра показал, что вирус относится к герпесвирусу осетровых рыб 2 типа (типовой штамм AciHV-2) и генетически наиболее близок к канадскому изоляту SSHV герпесвируса тупорылого осетра, Acipenser brevirostrum.

8. Разработан и испытан на экспериментальном и полевом материале высокочувствительный метод выделения герпесвируса с использованием эксплантатов покровных тканей исследуемых рыб. Метод обеспечивает повышение содержания вируса в исследуемом материале в 100 и более раз и частоты выделения его на поздних стадиях эпизоотии по сравнению с традиционным методом вирусовыделения.

9. Болезнь выявлена в трех из восьми обследованных осетровых хозяйств — одном племенном и двух товарных, получивших из первого посадочный материал или оплодотворенную икру. Осенняя вспышка болезни в одном из товарных хозяйств показывает, что носительство вируса может продолжаться не менее полугода.

6 ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Разработаны и предложены «Методические рекомендации по диагностике герпесвирусной болезни сибирского осетра», утвержденные Россельхозакадемией 21.09.2009.

Выделенный и охарактеризованный герпесвирус сибирского осетра и гипериммунная антисыворотка к нему используются для идентификации вирусных изолятов от осетровых рыб и при проведении НИР.

Предложен высокочувствительный метод выделения герпесвируса сибирского осетра, основанный на предварительной инкубации эксплантатов покровных тканей исследуемых рыб в условиях, приближенных к оптимальным для репродукции вируса, который позволяет повысить чувствительность выявления вируса и частоту его выделения от рыб в период эпизоотии и после ее завершения.

Показать весь текст

Список литературы

Горчаков, В.В. К эпизоотологии оспы карпа/ В.В. Горчаков// Тезисы докладов V Всесоюзного симпозиума по инфекционным болезням рыб. М., 1986.-С. 24−25.
Здоровая рыба. Профилактика, диагностика и лечение болезней/ Р. Рахконен и др. Хельсинки: НИИ охотничьего и рыбного хозяйства, 2003. — 163 с.
Лабораторный практикум по болезням рыб/ ред. В. А. Мусселиус. -М.: Легкая и пищевая промышленность, 1983. — 296 с.
Лакин, Г. Ф. Биометрия / Г. Ф. Лакин. М.: Высшая школа, 1990.352 с.
Лярски, 3. Диагностика вирусных болезней животных/ 3. Лярски. -М.: Колос, 1980.-400 с.
Методические указания по идентификации и лабораторной диагностике вирусных болезней рыб. Вирусные болезни. Сб. инструкций по борьбе с болезнями рыб. М.: Отдел маркетинга АМБ-агро, 1998. — 4.1. — С. 60−113.
Практическая вирусология/ пер. с нем.- под ред. В. Н. Сюрина. М.: Колос, 1970.-352 с.
Щелкунов, И.С. Вирусные инфекции у осетровых рыб/ И. С. Щелкунов // Рыбное хозяйство. Аналитическая и реферативная информация. Серия: Болезни гидробионтов в аквакультуре. М.: ВНИЭРХ, 2000. — Вып. 1.-С. 3−16.
Щелкунов, И.С. Эпизоотическая ситуация по вирусным болезням культивируемых рыб/ И. С. Щелкунов // Ветеринария. 2006. — № 4. — С. 2225.
Щелкунова, Т.И. Клеточные линии из тканей сибирского осетра/ Т. И. Щелкунова, O.A. Купинская, H.A. Мащенко//Первый конгресс ихтиологов России. Астрахань, 1997. — С. 302−303.
A case of herpesvirus isolation of freshwater-reared coho salmon Oncorhynchus kisutch in Japan/ M. Horiuchi et al. // Suisanzoushoku. 1989. -Vol. 36.-P. 297−305.
Adeno-like virus associate with a disease of cultured white sturgeon (Acipenser transmontanus)/ R.P. Hedrick et al. //Canad. J. Fish. Aquat. Seien. -1985.-Vol. 42. P. 1321−1325.
Adkison, M.A. Identification of an iridovirus in Russian sturgeon (.Acipenser gueldenstaedti) from northern Europe/ M.A. Adkison, M. Cambre, R.P. Hedrick// Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1998. — Vol. l8. — P. 29−32.
Aggiornamento sue cosidetto vaiolo dei cyprinidi/ P. Ghittino et al.// Ravista Ital. Piscicolt. Ittiopat. 1984. Ann. XIX. -N. 3. — P. 115−120.
A herpesvirus associated with mass mortality of juvenile and adult koi, a strain of a common carp/ R.P. Hedrick et al. // J. Aquat. Anim. Health. 2000. -Vol. 12.-P. 44−57.
A herpesvirus isolated from carp papilloma in Japan/ T. Sano et al.// Ellis (ed.) Fish and Shellfish pathology. London: Academic Press, 1985. — P. 307−311.
Ahne, W. Vergleichende Untersuchungen uber die Stabilitat von vier fischpatogenen Viren (VHSV, PFR, SVCV, IPNV)/ W. Ahne// Zbl. Vet. Med. B. -1982.-Bd. 29.-S. 457−476.
Ahne, W. Virusinfektionen bei Fishen: Atiologie, Diagnose und Bekampfung/ W. Ahne// Zbl. Vet. Med. B. 1985. — Bd. 32. — S. 237−264.
Alborale, L. Isolation of an herpesvirus in breeding catfish (Ictalurus melasy L. Alborali, G. Bovo, A. Lavazza // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. — 1996. — Vol. 16, N4. — P. 134−137.
Amita, K.Oe.M. A survey of koi herpesvirus and carp edema virus in color carp cultured in Nigara Prefecture, Japan/ K.Oe.M. Amita, H. Matoyama, N. Yamaguchi // Fish Pathol. 2002. — Vol. 37. — P. 197−198.
Anders, K. A herpesvirus associated with an epizootic epidermal papillomatosis in European smelt (Osmerus eperlanus)/ K. Anders// Viruses of lower vertebrates/ W. Ahne, E. Kurstak (eds.). Berlin: Springer, 1989. — P. 184 197.
Anders, K. Spawning papillomatosis of smolt, Osmerus eperlanus L., from the Elbe estuary/ K. Anders, H. Moller// J. Fish Dis. 1985. — Vol. 8. — P. 223−235.
Anders, K. Role of viruses in the induction of skin tumours and tumourlike proliferations of fish/ K. Anders, M. Yoshimizu// Dis. Aquat. Org. 1994. -Vol. 19.-P. 215−232.
An iridovirus infection of the integument of the white sturgeon Acipenser transmontanusIK.V. Hedrick et al. // Diseas. Aquat. Org. 1990. — Vol. 6.-P. 39−40.
A novel class of herpesvirus with bivalve hosts/ A J. Davison et al. // J. Gen. Virol. 2005. — Vol. 86. — P. 41−53.
A preliminary report on pathogenicity and oncogenicity of cyprinid herpesvirus / T. Sano et al. // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1990. — Vol. 10. — P. 11−13.
Ariav, R. First report of newly emerging viral disease of Cyprinus carpio species in Israel/ R. Ariav, S. Tinman, I. Bejerano// Diseases of Fish and Shellfish: 9th International Conference EAFP. Rhodes, 1999. — P. 151.
A viral disease occurred in larvae and juveniles of Japanese flounder, Paralichthys olivaceus / Y. Iida et al. // J. Aquat. Anim. Health. 1989. — Vol. 1. -P. 7−12.
A viral epizootic in cultured populations of juvenile goldfish due to a putative herpesvirus etiology/ J.M. Groff et al. // J. Vet. Diagnos. Investigations. 1998. — Vol. 10. — P. 375−378.
Bercovier, H. KHV and possible existence of carrier state Электронный ресурс. режим доступа: http:// www.defra.gov.uk/science/Publications/Default.asp. — загл. с экрана.
Bowser, P.R. Fish cell lines: establishment of a line from ovaries of channel catfish/ P.R. Bowser, J.A. Plumb// In Vitro. 1980. — Vol. 16. — P. 365 368.
Bradley, T. Viral epizootic epitheliotropic disease of lake trout {Salvelinus namaycush)/ T. Bradley, P. Chang, D. Medina // Am. Fish. Soc. Fish Health. Sec. Newsl. 1988. — Vol. 16. — P. 5.
Bradley, T. Epizootic epitheliotropic disease of lake trout (Salvelinus namaycush): history and viral etiology/ T. Bradley, P. Chang, D. Medina // Dis. Aquat. Org. 1989. — Vol. 7. — P. 195−201.
Brady, Y. J. The role of sediment in transmission of channel catfish virus disease/ Y.J. Brady, R.D. Ellender// Mississippi Alabama Sea Grant Consortium, University of State Mississipi. 1982. — P. 67−111.
Burke, C.N. Virus infection of squamous cell carcinoma in rainbow smelt {Osmerus mordax)/ C.N. Burke, R.L. Herman, S. Perry// 14th Annual Eastern Fish Health Workshop. Annapolis USA, 1989. — P. 15
Buchanan, J.S. Studies on Herpesvirus scophthalmi infection of turbot Scophthalmi maximus L. ultrastructural observations/ J.S. Buchanan, C.R. Madeley// J. Fish Dis. 1978. — Vol. 1. — P. 283−295.
Bylund, G. Obrevation on epidermal papilomata in wild and cultured Atlantic salmon, Salmo salar L., in Finland/ G. Bylund, E.T. Valtonen, E. Niemela// J. Fish Dis. 1980. — Vol. 3. — P. 525−528.
Calle, P.P. Herpesvirus associated cutaneous papillomas in koi carp (Cyprinus carpio)! P.P. Calle, T.S. McNamara, Y. Kress// Intern. Ass. Aquat. Animal Med. Proceedings. 1995. — Vol. 26. — P. 81−82.
Characteristics of a herpesvirus isolated from cultured coho salmon {Oncorhynchus kisutch)/ H. Kumagai et al. // Abstracts of Annual Meeting of Japanese Society Fish Pathology. Tokyo, 1991. — P.2.
Characteristics of a new herpesviral isolate from salmonid fish/ Y. Hayashi et al.// Jpn. J. Vet. Sci. 1986. — Vol. — 48. — P. 915−924.
Characterization of a herpes-like virus isolated from cultured Japanese eels in Taiwan/ Y. Ueno et al.// Fish Pathol. 1992. — Vol. 27, N 3. — P. 7−17.
Characterization of three continuous cell lines from marine fish/ R.D. Fernandez et al. // J. Aquat. Animal Health. 1993. — Vol. 5. — P. 127−136.
Chen, S.N. A cell line derived from Japanese eel {Anguilla japonica) ovary/ S.N. Chen, G.H. Kou//Fish Pathol. 1981.-Vol. 16.-P. 129−137.
Chen, S.N. A cell line derived from Japanese eel {Anguilla japonica) kidney/ S.N. Chen, Y. Ueno, G.H. Kou // Proc. Nutl. Sci. Counc. R.O.C. 1982. -Vol. 6.-P. 93−100.
Chen, S.N. A cell line derived from tilapia ovary/ S.N. Chen, Y. Ueno, G.H. Kou//Fish Pathol.-1984.-Vol. 18.-P. 13−18.
Continuous cell line derived from the kidney of yamame, Oncorhynchus masoul T. Watanabe et al. // Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 1978. — Vol. 44. — P. 415 418.
Davidse, A. First isolation of herpesvirus of eel {Herpesvirus anguilla) in diseased European eel {Anguilla anguilla L.) in Europe/ A. Davidse // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol.-1999.-Vol. 19, N 4.-P. 137−141.
Davison, A.J. Channel catfish virus: a new type of herpesvirus/ A.J. Davison// Virology. 1992. — Vol. 186. — P. 9−14.
Davison, A J. The genome of salmonid herpesvirus 1/ A.J. Davison// J. Virol. 1998. — Vol. 72. — P. 1974−1982.
Davison, A.J. Evolution of the herpesviruses/ A.J., Davison// Vet. Microbiol. 2002. — Vol. 86. — P. 69−88.
Davison, A.J. Genome sequences of two frog herpesviruses/ A.J. Davison, C. Cunningham, W. Sauerbier // J. General Virology. 2006. — Vol. — 87.-P. 3509−3514.
Demonstration of herpesvirus-like particles in skin lesions of the European eel (Anguilla anguilla)/ L. Bekesi et al. // J. Appl. Ichthyol. 1986. -Vol. 4.-P. 190−192.
Detection of koi herpesvirus DNA in tissues of infected fish/ W.L. Gray et al. // J. Fish Diseas. — 2002. Vol. 25. — P. 171−178.
Development of a polymerase chain reaction for the detection of Anguillid herpesvirus DNA in eels based on the herpesvirus DNA polymerase gene/ F. Rijsewijk et al. // J. Virol. Methods. 2005. — Vol. 124. — P. 87−94.
Dixon, P.F. Status of koi herpesvirus disease in Europe, and research on the virus in the United Kingdom/ P.F. Dixon, O.L.M. Haenen, N. Beevers// KHV infection: present status and future prospects for prevention. Tokyo Japan, 2004. -P. 5−7.
Eaton, W.D. Prevalence and experimental transmission of the steelhead herpesvirus in salmonid fishes/ W.D. Eaton, W.H. Wingfield, R.P. Hedrick// Dis. Aquat. Org. 1989. — Vol. 7. — P. 23−30.
Epizootic of herpes-like virus infection in goldfish, Carassius auratus, in Taiwan/ P.-H. Chang et al. // Fish Pathology. 1999. — Vol. 34. — P. 209−210.
Felsenstein, J. PHYLIP Phylogeny inference package/ J. Felsenstein // Cladistics. — 1989. — Vol. 5. — P. 164−166.
Fijan, N.N. An acute viral disease of channel catfish/ N.N. Fijan, T.L. Wellborn, J.P. Naftel// U.S. Fish Wild. Serv., Tech. Paper 43. 1970. — 70 p.
First detection and identification of koi herpesvirus (KHV) in Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii) and atlantic sturgeon (Acipenser oxyrinchus)/til
J. Kempter et al. // 7 International Symposium on Viruses of Lower Vertebrates. Oslo Norway, 2007. — OP 15.
Fryer, J.L. The in vitro cultivation of tissue and cells of Pacific salmon and steelhead trout/ J.L. Fryer, A. Yusha, K.S. Pilcher // Ann. N.Y. Acad. Sci. -1965.-Vol. 126.-P. 566−586.
Fujimoto, Y. Pathomorphological observations on epidermal papiloma of flatfish (Liopsetta obscura)/ Y. Fujimoto// Jap. J. Vet. Res. 1986. — Vol. 34. — P. 81−103.
Fung, S.K.L. Quarantine, surveillance and monitoring of koi herpesvirus in Singapore/ S.K.L. Fung, L.K. Huat, P.Y. Kwang// International Symposium KHV disease strategy for KHV disease control. — Pacifico Yokohama Japan, 2004.-P. 15.
Genetic relationships among herpes-like viruses isolated from sturgeon/ G.O. Kelley et al. // J. Aquat. Anim. Health. 2005. — Vol. 17. — P. 297−303.
Genome sequences of three koi herpesvirus isolates representing the expanding distribution of an emerging disease threatening koi and common carp worldwide/ T. Aoki et al. // J. Virology. 2007. — Vol. 81. — P. 5058−5065.
Genomic studies of the Lucke tumor herpesvirus (RaHV-1)/ A.J. Davison et al. //J. Cancer Research Clin. Oncology. 1999. — Vol. 125. — P. 232 238.
Ghittino, P. Probabile adenovirosi nel giovane storione d’allevamento (Acipenser trasmontanus)/ P. Ghittino, C. Ghittino// RIV. IT. PISCIC. ITTIOP. -1985. Vol. XX, N 4. — P. 137−139.
Goldfish hematopoietic necrosis herpesvirus (Cyprinid Herpesvirus 2) in the USA: molecular confirmation of isolates from diseased fish/ A.E. Goodwin et al. // J. Aquat. Animal Health. 2006. — Vol. 18. — P. 11−18.
Gravell, M. A permanent cell line from the fathead minnow (Pimephales promelas)/ M. Gravell, R.C. Malsberger I I Arm. N.Y. Acad. Sci. 1965. — Vol. 126.-P. 555−565.
Heartwell, C.M. Immune response and antibody characterization of the channel catfish (.Ictalurus punctatus) to a naturally pathogenic bacterium and virus/ C.M. Heartwell// U.S. Fish Wildl. Serv., Tech. Paper 85. 56p.
Hedrick, R.P. Herpesviruses of fishes/ R.P. Hedrick, T. Sano // Viruses of lower vertebrates.-Berlin: Springer-Verlag, 1989.-P. 161−170.
Hedrick, R.P. Response of adult channel catfish to waterborne exposures to channel catfish virus/ R.P. Hedrick, J.M. Groff, T. McDovell// Prog. Fish-Cult.- 1987. Vol. 49.-P. 181−187.
Hedrick, R.P. A workshop on sturgeon diseases/ R.P. Hedrick, S. LaPatra, T. McDowell // Conducted at the Forth International Symposium on Sturgeon. Oshkosh, Wisconsin, 2001. — 23 p
Herman, R.L. Epidermal tumors of rainbow smelt in associated virus/ R.L. Herman, C.N. Burke, S. Perry// J. Wildl. Dis. 1997. — Vol. 33. — P. 925−929.
Herpesvirus anguillae (HVA) isolations from disease outbreaks in cultured European eel, Anguilla anguilla in the Netherlands since 1996/ O.L.M. Haenen et al.// Bull. Eur. Ass. Fish Path. 2002. — Vol. 22, N 4. — P. 247−257.
Herpesvirus salmonis: First occurrence in anadromous salmonids / R.P. Hedrick et al.// Bull. Eur. Ass. Fish Path. 1986. — Vol. 6. — P. 66−68.
Hetrick, F.M. New viruses described in finfish from 1988−1992/ F.M. Hetrick, R.P. Hedrick// Ann. Rev. Fish Dis. 1993. — Vol. 3. — P. 187−207.
Hoffmann, R. Koiseuche bedroht Karpfenteichwirtschaft/ R. Hoffmann// Fischer und Teichwirt. 2000. — Bd. 11. — S. 432.
Igari, T. The restriction endonuclease cleavage patterns of the salmonid herpesvirus strain’s DNAs/ T. Igari., H. Fukuda., T. Sano// Fish Pathol. 1991. -Vol. 12.-P. 45−46.
Initial characteristics of koi herpesvirus and development of a polymerase chain reaction assay to detect the virus in koi, Cyprinus carpio koi/ O. Gilad et al. II Diseas. Aquat. Org. 2002. — Vol. 48. — P. 101−108.
Isolation and some properties of an iridovirus-like agent from white sturgeon Acipenser transmontanusl R.P. Hedrick et al.// Diseas. Aquat. Org. -1992.-Vol. 12.-P. 75−81.
Isolation of a cyprinid herpesvirus 2 from goldfish, Carassius auratus (L.), in the UK/ K.R. Jeffery, K. Bateman et al.// J. Fish Dis. 2007. — Vol. 30. -P. 649−656.
Isolation of a herpesvirus during disease outbreaks in adult koi carp, Cyprinus carpio, in the UK/ K. Way et al. // Diseases of Fish and Shellfish: 10th International Conference EAFP. Dublin, 2001. — P. 50.
Isolation of an epitheliotropic herpesvirus from white sturgeon {Acipenser transmontanus)/ R.P. Hedrick et al.// Diseas. Aquat. Org. 1991. -Vol. 11.-P. 49−56.
Isolation of channel catfish virus from channel catfish (Ictalurus punctatus) Rafinesque, broodstock/ P.R. Bowser et al. //J. Fish Dis. 1985. -Vol. 8.-P. 557−561.
Isolation of virus-like particles from koi (Cyprinus carpio) suffering gill necrosis/ A. Body et al. // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 2000. — Vol. 20, N 2. — P. 87−88.
Ito, S. Formaldehyde-glutaraldehyde fixatives containing trinitrocompounds/ S. Ito, M.J. Karnovsky// J. Cell Biol. 1968. — Vol. 39. — P. 168A-169A.
Jung, SJ. Herpesviral haematopoietic necrosis of goldfish, Carassius auratus (L.)/ SJ. Jung, T. Miyazaki// Dis. Aqut. Org. 1995. — Vol.18. — P. 211 220.
Kasai, H. Virucidal effects of ultraviolet, heat treatment and disinfectants against koi herpesvirus (KHV)/ H. Kasai, Y. Muto, M. Yoshimizu// Fish Pathol. -2005. Vol. 40. — P. 137−138.
Kelley, R.K. Characterization of Herpesvirus vitreum isolated from hyperplastic epidermal tissue of walleye, Stizostedion vitreum vitreum (Mitchill)/ R.K. Kelley, O. Nielsen, S. C, Mitchell // J. Fish Dis. 1983. — Vol. 6. — P. 249 260.
Kent, M.L. Hepatic lesions in a redstriped rockfish (Sebastes proriger) suggestive of herpesvirus infection/ M.L. Kent, M.S. Meyers// Dis. Aquat. Org. -2000. Vol. 41. — P. 237−239.
Kimura, T. Salmonid herpesvirus: OMV, Oncorhynchus masou virus/ T. Kimura, M. Yoshimizu// Viruses of lower vertebrates/ Ahne W, Kurstak E (eds). -Berlin: Springer-Verlag, 1989. P. 171−183.
Kimura, T. Viral diseases of fish in Japan/ T. Kimura, M. Yoshimizu// Annual Rev. Fish Diseases. 1991. — P. 67−82.
Kimura, T. Salmonid virus: a syncytium-forming herpesvirus from landlocked Oncorhynchus masouII T. Kimura, M. Yoshimizu, M. Tanaka// Fish Health News. 1980. — Vol. 9. — P. 3.
Kimura, T. Studies on a new virus (OMV) from Oncorhynchus masou — I. Characteristics and pathogenicity/ T. Kimura, M. Yoshimizu, M. Tanaka// Fish Pathol. 1981. — Vol. 15. — P. 143−147.
Kimura, T. Studies on a new virus (OMV) from Oncorhynchus masou -I. Characteristics and oncogenicity/ T. Kimura, M. Yoshimizu, M. Tanaka// Fish Pathol. 1981. — Vol. 15. — P. 149−153.
Kobayashi, T. Characterization and pathogenicity of a herpesvirus isolated from cutaneous lesion in Japanese eel, Anguilla japonical T. Kobayashi, T. Miyazaki// Fish Pathol. 1997. — Vol. 32, N 6. — P. 89−95.
Koi herpesvirus represents a third cyprinid herpesvirus (CyHV-3) in the family Herpesviridae/ T.B. Waltzek et al. // J. General Virolgy. — 2005. Vol. 86.-P. 1659−1667.
Kumagai, A. Optimal conditions for isolation of salmonid herpesvirus type 2 from maricultured coho salmon/ A. Kumagai, H. Fukuda, K. Takahashi// Fish Pathol. 1994. — Vol. 29. — P. 205−209.
Kumar, S. MEGA2: molecular evolutionary genetics analysis software/ S. Kumar, K. Tamura, I. Jakobsen // Bioinformatics. 2001. — Vol. 17. — 1244 -1245.
Kurobe, T. Revised phylogenetic relationships among herpesviruses isolated from sturgeons/ T. Kurode, G.O. Kelly, T.B. Waltzek // J. Aquat. Anim. Health. 2008. — Vol. 20. — P. 96−102.
Lannan, C.N. Fish cell lines: establishment and characterization of nine cell lines from salmonids/ C.N. Lannan, J.R. Winton, J.L. Fryer // In Vitro. 1984. -Vol. 20.-P. 671−676.
Lee, M.H. Some properties of the herpesvirus of channel catfish/ M.H. Lee, K.M. Tenno, P.C. Loh// Abstr. Annu. Meet. Am. Soc. Microbiol. 1978. — P. 262−265.
Lee, N.-S. Virus-associated spawning papillomatosis in smelt, Osmerus eperlanus L., in the River Thames/ N.-S. Lee, P.J. Whitfield// J. Fish Biol. 1992. -Vol. 40.-P. 503−510.
Lee, N.-S. Gill filament necrosis in farmed Japanese eels, Anguilla japonica (Temminck and Schlegel), infected with Herpesvirus anguillae/ N.-S. Lee, T. Kobayashi, T. Miyazaki// J. Fish Dis. 1999. — Vol. — 22. — P. 457−463.
Leibovitz, L. A viral dermatitis of the smooth dogfish, Mustelus cards (Mitchill)/ L. Leibovitz, S.S. Lebouitz// J. Fish Dis. 1985. — Vol. 8. — P. 273−279.
Lewis, D.H. Micricultures of Sarotherodon mossambicus (Peters) cells: their use in detecting fish viruses/ D.H. Lewis, J.E. Marks // J. Fish Dis. 1985. -Vol. 8. — P. 477−478.
Margenau, T.L. Prevalence of blue spot disease (Esocid Herpesvirus-1) on nortern pike and muskellunge in Wisconsin/ T.L. Margenau, S.V. Marcquenski, P.W. Rasmussen // J. Aqut. Animal. Health. 1995. — Vol. 7. — P. 29−33.
Mass mortalities in koi carp, Cyprinus carpio, associated with gill and skin disease/ A. Bretzinger et ah. // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1999. — Vol. 19, N5.-P. 182−185.
McAllister, P.E. Epizootic mortality in hatchery-reared lake trout Salvelinus namaycush caused by a putative virus possibly of the herpesvirus group/ P.E. McAllister, R.L. Herman// Dis. Aquat. Org. 1989. — Vol. 6. — P. 113−119.
McArn, G.E. Skin lesions and associated virus in Pacific cod {Gadus macrocephalus) in the Bering Sea// G.E. McArn, B. McCain, S.R. Welling// Fed. Proc. 1978. — Vol. 37. — P. 937.
Mellergaard, S. Herpesvirus-like particles in angelfish Pterophyllum altumf S. Mellergaard, B. Bloch// Dis. Aquat. Org. 1988. — Vol. 5. — P. 151−155.
Molecular comparison of isolates of an emerging fish pathogen, koi herpesvirus, and the effect of water temperature on mortality of experimentally infected koi/ O. Gilad et al.// J. Gener. Virology. 2003. — Vol. 84. — P. 26 612 667.
Molecular confirmation of a new herpesvirus from catfish (Ameiurus melas) by testing the performance of a novel PCR method, designed to target the
DNA polymerase gene of alloherpesvirus/ A. Doszpoly et al. // Arch. Virol. -2008. Vol. 153. — P. 2123−2127.
Munday, B.L. Viral diseases of fish and shellfish in Australian mariculture/ B.L. Munday, L. Owens// Fish Path. 1998. — Vol. 33. — P. 193−200.
Manual of Diagnostic Tests for Aquatic Animals. 6th ed. Paris: Office International des Epizooties, 2009.
Nagasava, K. KHV infection in Southeast Asia and response of SEAFDEC to this new threat to regional aquaculture/ K. Nagasava// KHV infection: present status and future prospects for prevention. Tokyo Japan, 2004. -P. 21−23.
Neukirch, M. Isolation of a virus from koi with altered gills/ M. Neukirch, K. Bottcher, S. Bunnajirakul// Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1999. -Vol. 19, N5.-P. 221−224.
Neukirch, M. Isolation and preliminary characterization of several viruses from koi (Cyprinus carpio) suffering gill necrosis and mortality/ M. Neukirch, U. Kunz // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 2001. — Vol. 21, N. 4. — P. 125 135.
Neure Beitrage zur Atiologie der Karpfewnpocken/ F. Racz et al.// Fish and Environment. Stuttgart- New York: G. Fish. Verlag, 1980. — Vol. 8, N 4.-P. 49−58.
Nieuwstadt, A.P. Persistense of herpesvirus of eel Herpevirus anguillae in farmed Europe eel Anguilla anguilla /A.P. Nieuwstadt, S.G. Dijkstra, O.L.M. Haenen// Dis. Aquat. Org. 2001. — Vol. 45. — P. 103−107.
Nims, L. Studies of replication of four selected viruses in two cell lines derived from salmonids fish/ L. Nims, J.L. Fryer, K.S. Pilcher // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1970. — Vol. 135. — P. 6−12.
Oh, M.-J. A viral disease occurring in cultured carp Cyprinus carpio in Kore/ M.-J. Oh, S.-J. Jung, T.-J. Choi // Fish Pathol. 2001. — Vol. 36. — P. 147 151.
Pathogenesis of Herpesvirus anguilla (HVA) in juvenile European eel Anguilla anguilla after infection by bath immersion/ B.N. Hangalapura//Dis. Aquat. Org. 2007. — Vol. 78. — P. 13−22.
Perelberg, A. Epidemiological description of a new viral disease afflicting cultured Cyprinus carpio in Israel/ A. Perelberg, M. Smirnov, M. Hutoran// Israeli J. Aquat. 2003. — Vol. 55. — P. 5−12.
Plumb, J.A. Tissue distribution of channel catfish virus/ J.A. Plumb// J. Wild. Dis. 1971. — Vol. 7. -P. 213−216.
Plumb, J.A. Neutralization of channel catfish virus by serum of channel catfish/ J.A. Plumb// J. Wild. Dis. 1973. — Vol. 9. — P. 324−330.
Plumb, J.A. Effects of temperature on mortality of fingerling channel catfish (.Ictalurus punctatus) experimentally infected with channel catfish virus/ J.A. Plumb// J. Fish. Res. Board Can. 1973. — Vol. 30. — P. 568−570.
Plumb, J.A. Epizootology of channel catfish virus/ J.A. Plumb// Mar. Fish. Rev. 1978. — Vol. 40. — P. 26−29.
Plumb, J.A. Susceptibility of blue catfish to channel catfish virus/ J.A. Plumb, J. Chappell// Proc. Annu. Conf. Southeast. Assoc. Fish Wildl. Agencies. -1978.-Vol. 32.-P. 680−685.
Plumb, J.A. Channel catfish virus disease/ J.A. Plumb, J.L. Gaines// The pathology of fishes/ W.E. Ribelin, G. Migaki (eds). Madison: Univ. Wisconsin Press, 1975. — P. 287−302.
Plumb, J.A. Histopathology and electron microscopy of channel catfish virus in infected channel catfish, Ictalurus punctatus (Rafinesque)/ J.A. Plumb, J.L. Gaines, E.C. Mora// J. Fish Biol. 1974. — Vol. 6. — P. 661−664.
Plumb, J.A. Resistence of the Europen catfish {Silurus glanis) to channel catfish virus/ J.A. Plumb, V. Hilge, E.E. Quinlan/ J. Appl. Ichthyol. -1985.-Vol.-P. 87−89.
Plumb, J.A. Survival of channel catfish virus in chilled, frozen and decomposing channel catfish/ J.A. Plumb, L.D. Wright, V.L. Jones// Prog. Fish-Cult. 1973.-Vol. 35.-P. 170−172.
Reed, L.J. A simple method of estimating fifty percent endpoints/ L.J. Reed, H.A. Muench // Amercan J. Hygiene. 1938. — Vol. 27. — P. 493−497.
Reynolds, E.S. The use of lead citrate at high pH as an electronopaque stain in electron microscopy/ E.S. Reynolds// J. Cell Biol. 1963. — Vol. 17. — P. 208−213.
Richards, R.H. Studies on Herpesvirus scophthalmi infection of turbot Scophthalmus maximus (L.): histopathological observations/ R.H. Richards, J.S. Buchanan// J. Fish Dis. 1978. — Vol. 1. — P. 251−258.
Risk factors for outbreaks of disease attributable to white sturgeon iridovirus and white sturgeon herpesvirus-2 at a commercial sturgeon farm/ M.P. Georgiadis et al. //AJVR. 2000. — Vol. 61, N 10. — P. 1232−1240.
River, T. Viruses and Koch^s postulates/ T. River// J. Bact. 1937. -Vol. 33.-P.l-12
Robin, J. Resistance of herpes channel catfish virus (HCCV) to temperature, pH, saline and ultraviolet irradiation/ J. Robin, A. Rodrigue// Rev. Can. Biol. 1980. — Vol. 39. — P. 153−156.
Rukyani, A. Koi herpesvirus infection in Indonesia: Suspicion Электронный ресурс. — режим доступа: at: http://www.promedmail.org. -загл. с экрана.
Sano, Т. Herpesvirus cyprini: biological and oncogenic properties/ T. Sano, H. Fukuda, M. Furukawa //Abstracts International Simposium of Fish Pathology. Tokyo, 1984. — P. 55−56.
Sano, T. Herpesvirus cyprini: biological and oncogenic properties/ T. Sano, H. Fukuda, M. Furukawa // Fish Pathology 1985. — Vol. 20. — P. 381−388.
Sano, T. Yamame tumor virus: lethality and oncogenicity/ T. Sano, H. Fukuda, N. Okamoto // Bull. Jap. Soc. Scient. Fish. 1983. -Vol. 49. — P. 11 591 163.
Sano, M. Isolation and characterization of a new herpesvirus from eel/ M. Sano, H. Fukuda, T. Sano// Pathology in marine science/ Perkins F.O., Cheng T.C. (eds.). N.Y.: Academic Press, 1990. — P. 15−31.
Sano, Т. A preliminary report on pathogenicity and oncogenicity of cyprinid herpesvirus/ T. Sano, N. Morita, N. Shima // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. -1990.-Vol. 10, N l.-P. 11−13.
Sano, M. Characterization of a newly isolated herpesvirus from eel/ M. Sano, T. Sano, H. Fukuda// Abstracts Third International Colloquium Pathology Marine Aquaculture. Virginia, 1988. — P. 11.
Sano, M. Regional update on KHV: Japan Электронный ресурс. -режим доступа: at: http//www.defra.gov.uk/science/ Publications/Default.asp. -загл. с экрана.
Shchelkunov, I.S. Atlantic salmon papillomatosis: visualization of herpesvirus-like particles in skin growths of affected fish/ I.S. Shchelkunov, T.A. Karaseva, Y.P. Kadoshnikov //Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1992. — Vol. 12, N1. -P. 28−31.
Schubert, G.H. Elektronenmikroskopische Untersuchungen zur Pockenkranheit des Karpfens/ G.H. Schubert// Z. Naturforsch. 1964. — Bd. 19. -S. 675−682.
Schubert, G.H. The infective agent in carp pox/ G.H. Schubert// Bull. Off. Int. Epizooties. 1966. — Vol. 65. — P. 1011−1022.
Serological relationships of five herpesviruses isolated from salmonid fishes/ R.P. Hedrick et al. // J. Appl. Ichthyol. 1987. — Vol. 3. — P. 87−92.
Shimizu, T. Survival of koi herpesvirus (KHV) in environmental water/ T. Shimizu, N. Yoshida, H. Kasai // Fish Pathol. 2006. — Vol. 41. — P. 1−5.
Skin infection on the sheatfish (Siluris glanis) caused by a herpesvirus/ L. Bekesi et al. // Fish, pathogens and environment in European Polyculture. -Szarvas, 1981.-P. 59−69.
Skin infection of the sheatfish {Siluris glanis) caused by a herpesvirus/ L. Bekesi et al. // Symposia Biol. Hunggarica. Acad<2m. kiado. Budapest, 1984. -N23.-P. 25−30.
Some properties of the Epithelioma papulosum cyprini (EPC) cell line from carp Cyprinus carpiol N. Fijan et al. // Ann. Virol. (Inst. Pasteur). 1983. — Vol. 134.-P. 207−220.
Steinhagen, D. Virus-associated epidermal hyperplasia in golden ide Leuciscus idus melanotus! D. Steinhagen, P. Kruse, M. Neukirch// Dis. Aquat. Org. 1992. — Vol. 13. — P. 225−229.
Stephens, F.J. Haematopoietic necrosis in a goldfish {Carassius auratus) associated with an agent morphologically similar to herpesvirus/ F.J. Stephens, S.R. Raidal, B. Jones// Australian Vet. J. 2004. — Vol. 82. — P. 167 169.
Systemic herpes-like virus in catfish Ictalurus melas (Italy) differs from Ictalurid herpesvirus 1 (North America)/ R.P. Hedrick et al.//Dis. Aquat. Org.2003.-Vol. 55.-P. 85−92.
Sunarto, A. Indonesian experience on the ourbreak of koi herpesvirus in koi and carp {Cyprinus carpio)/ A. Sunarto, A. Rukyani// International Symposium KHV disease — strategy for KHV disease control. Pacifico Yokohama Japan, 2004.-P.17.
Suzuki, K. Herpesvirus infection of rainbow trout/ K. Suzuki, M. Hatakeyama, M. Yoshimizu// J. Soc. Fish Pathol. 1993. — Vol. 15. — P. 22.
Suzuki, S. Characteristics of DNA polymerase induced by salmon herpesvirus, Oncorhynchus masou virus/ S. Suzuki, T. Kimura, M. Saneyoshi// J. Gen. Virol. 1986. — Vol. 67. — P. 405−408.
Swofford, D.L. PAUL: phylogenetic analysis using parsimony (and other methods), version 4.0./ D.L. Swofford. Sunderland Massachusetts: Sinauer Associates, 1998.
Tanaka, M. Herpesvirus infection of salmonid fish/ M. Tanaka, M. Yoshimizu T. Kimura// Salmonid diseases/ Kimura T. (ed.). Sapporo: Hokkaido University Presss, 1992.-P. 111−117.
The effects of water temperature and fish age on a herpesvirus infection of Japanese flounder larvae, Paralichthys olivaceus// K. Masumura et al. // Fish Pathol. 1989. — Vol. 24. — P. 111−114.
The emergence of koi herpesvirus and its significance to European aquaculture / O.L.M. Haenen et al.// Bull. Eur. Ass. Fish Path. 2004. — Vol. 24, N. 6.-P. 293−307.
The occurrence of virus infections in elvers and eels (Anguilla japonica) in Europe with particular reference to VHSV and IHNV/ P.E.V. J0rgensen et al. // Aquaculture. 1994. — Vol. 123. P. 11−19.
The order Herpesviralesl A.J. Davison et al.// Arch. Virol. 2009. -Vol. 154.-P. 171−177.
Tu, C. Detection of koi herpesvirus in koi Cyprinus carpio in Taiwan/ C. Tu, M.-C. Weng, J.-R. Shiau // Fish Pathol. 2004. — Vol. 39. — P. 109−110.
Two cell lines from white sturgeon/ R.P. Hedrick et al.// Trans. Am. Fish Soc. 1991. — Vol. 120. — P. 528−534.
Two continuous cell lines from carp, Cyprinus carpio «LI I.S.iL
Shchelkunov et al.// Diseases of Fish and Shellfish: 7 International Conference EAFP. Palma de Mallorca, 1995. — P. 49.
Viral diseases offish: first report of carp pox in golden ide (Leuciscus idus) in North America/P.E. McAllister et al. // J. Wild. Dis. 1985. — Vol. 21. -P. 199−204.
Walker, D.P. Studies on the culture, assay of infectivity and some in vitro properties of Lymphocystis virus/ D.P. Walker, B.J. Hill // J. Gen. Virol. — 1980.-Vol. 51.-P. 385−395.
Walster, C.I. Clinical observations of severe mortalities in koi carp, Cyprinus carpio, with gill disease/ C.I. Walster// Fish Vet. J. 1999. — Vol. 3. — P. 54−58.
Walster, C.I. Koi carp mortality syndrome: an update/ C.I. Walster// Fish Vet. J. 2000. — Vol. 5. — P. 72−75.
Walster, C.I. Koi carp mortality syndrome: an update/ C.I. Walster// Fish Vet. J. 2000. — Vol. 5. — P. 72−75.
Waltzek, T.B. Evolutionary relationships of the fish and amphibian herpesviruses/ T.B. Waltzek, G.O. Kelley, A.J. Davison //Aquatic Animal Health: 5th Internanional Symposium. San Francisco, 2006. — P. 266.
Watson, L.R. Characteristics and pathogenicity of a novel herpesvirus isolated from adult and sub adult white sturgeon Acipenser transmontanusl L.R. Watson, S.C. Yun, J.M. GroffV Dis. Aquat. Org. 1995. — Vol. 22. — P. 199−210.
Whittington, R. J: Epizootic mortality in the pilchard (Sardinops sagax neopilchardus) in Australia and New Zealand in 1995- I. Pathology and epizootiology/ R.J. Whittington, B. Jones, P.M. Hime // Dis. Aquat. Org. 1997. -Vol. 28.-P. 1−16.
Wolf, K. Fish viruses and fish viral diseases/ K. Wolf. Ithaca- London: Cornell University Press, 1988.-476 p.
Wolf, K. Channel catfish viruses: a new herpesvirus of ictalurid fish/ K. Wolf, W. Darlington// J. Virol. 1971. — Vol. 8. — P. 525−533.
Wolf, K. Poikiloteraiivertebrate cell- lines and viruses: a current listing for fishes/ K. Wolf, J.A. Mann// In Vitro. 1980. — Vol. 16. — P. 168−179.
Wolf, K. Established eurythermic line of fish cells in vitro/ K. Wolf, M.C. Quimby // Science. 1962. — Vol. 135. — P. 1065−1066.
Wolf, K. Lymphocystis virus: isolation and propagation in centrarchid fish cell lines/ K. Wolf, M.C., Quimby // Science. 1966- — Vol. 151. — P. 10 041 005./ • .
Wolf, K. Fishi ceir and- tissue culture/ K. Wolf- M.C. Quimby // Fish Physiology/ W.S. Hoar, D.J. Randall (eds.)--N-Y.: Acad- Press, 19 691-Vol: 3- -P. 253−305.
Wolf, K. Herpesvirus salmonis: pathological': changes in parenterally infected rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson, fry/ K. Wolf, C.E. Smith// J. Fish Dis. 1981. — Vol. 4- - P. 445−447.
Wolf, K. Salmonid viruses: a syncytium-forming agent from rainbow trout/^^ K. Wolf, W.G. Taylor// Fish Health News.^1975--N. 3v-P: 4.
Can. 1972. — Vol. 29. — P. 149−150.
Yanong, R.P.E. Possible herpesvirus-associated disease in blue-eyed plecostomus, Panaque suttoni/ R.P.E. Yanong// Intern. Ass. Aquat. Animal Med. -1995.-Vol. 26.-P. 83.
Yoshimizu, M. Oncorhynchus masou virus (OMV): incidence of tumor development among experimentally infected representative salmonid species/ M. Yoshimizu, M. Tanaka, M. Kimura// Fish Pathol. 1987. — Vol. 22. — P. 7−10.
Yoshimizu, M. Salmonid herpesvirus 2. Epizootiology and serological relationship/M. Yoshimizu, H. Fukuda, T. Sano // Vet. Res. 1995. — Vol. 26. — P. 486−492.
Yoshimizu, M. Evaluation of koi herpesvirus in environmental water/ M. Yoshimizu, T. Shimizu, N. Yoshida, H. Kasai// Aquatic Animal Health: 5th International Symposium. San Francisco, 2006. — P. 285.
Yamamoto, T. Epidermal hyperplasia of northern pike (Esox lucius) associated with herpesviruses and c-type particles/ T. Yamamoto, R.K. Kelley, O. Nielsen// Arch. Virol. 1983. — Vol. 97. — P. 255−272.
Yamamoto, T. Morphological differentiation of virus-associated skin tumors of walleye (Stizostedion vitreum vitreum)/ T. Yamamoto, R.K. Kelley, O. Nielsen// Fish Pathol. 1985. — Vol. 20. — P. 361−372.

Заполнить форму текущей работой