Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Радиозащитные свойства ряда пуриновых соединений

Диссертация: Радиозащитные свойства ряда пуриновых соединений
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Воздействие ионизирующего излучения на живые организмы может происходить как за счет непосредственного возбуждения и ионизации макромолекул (прямое действие), так и за счет высокореакционных свободных радикалов, которые образуются в результате радиолиза воды — косвенное действие радиации (Кудряшов, 2004). Около 80% радиационно-индуцированных повреждений в клетке являются результатом косвенного… Читать ещё >

Содержание

  • ЧАСТЬ I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • Глава 1. Характеристика основных видов активных форм кислорода (АФК)
    • 1. 1. Супероксид — анион радикал (Ог*")
    • 1. 2. Перекись водорода (Н2О2)
    • 1. 3. Гидроксильный радикал (ОН*)
    • 1. 4. Синглетный кислород ('Ог)
  • Глава 2. Повреждающая роль активных форм кислорода
    • 2. 1. Окислительное повреждение ДНК и нуклеотидов
    • 2. 2. Окислительное повреждение белков
    • 2. 3. Окислительное повреждение липидов
  • Глава 3. Характеристика основных радиозащитных средств
    • 3. 1. Серосодержащие противолучевые препараты
    • 3. 2. Ферментные антиоксиданты и миметики
    • 3. 3. Витамины
    • 3. 4. Селен
    • 3. 5. Металлосодержащие соединения, металлотеонин
    • 3. 6. Соединения растительного происхождения
    • 3. 7. Индолилалкинамины
    • 3. 8. Эйкозаноиды
    • 3. 9. Иммуномодуляторы и цитокины
    • 3. 10. Гормоны
    • 3. 11. Кислоты и их производные
    • 3. 12. ДНК, связывающие агенты
    • 3. 13. Нуклеозиды, нуклеотиды и нуклеиновые кислоты
  • ЗАКЛЮЧЕНИЕ 44 ЧАСТЬ II. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ
  • Глава 4. Материалы и методы исследования
    • 4. 1. Материалы
    • 4. 2. Воздействие ионизирующего излучения и объекты исследования 45 4.3 .Методы
      • 4. 3. 1. Определение радиационно-химического выхода перекиси водорода
      • 4. 3. 2. Определение радиационно-химического выхода ОН — радикалов
      • 4. 3. 3. Определение концентрации ДНК
      • 4. 3. 4. Иммуноферментный анализ по определению 8-оксогуанина в ДНК
      • 4. 3. 5. Измерение индуцированной облучением хемилюминесценции белковых растворов
      • 4. 3. 6. Микроядерный тест
      • 4. 3. 7. Тест на выживаемость мышей
      • 4. 3. 8. Подсчет форменных элементов крови
      • 4. 3. 9. Определение степени окислительной модификации белков сыворотки крови
      • 4. 3. 10. Проточная цитофлуорометрии
      • 4. 3. 11. Культивирование клеток карциномы гортани человека
      • 4. 3. 12. Оценка выживаемости клеточной культуры
      • 4. 3. 13. Статистический анализ 51 ЧАСТЬ III. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
  • Глава 5. Влияние ксантозина, кофеина, IMP и GMP на образование АФК в водных растворах in vitro и повреждений ДНК in vitro и in vivo при воздействии рентгеновского излучения
    • 5. 1. Влияние ксантозина, кофеина, IMP и GMP на образование АФК в водных растворах и 8-оксогуанина в ДНК при воздействии рентгеновского излучения in vitro
    • 5. 2. Влияние ксантозина, кофеина, IMP и GMP на образование повреждений ДНК in vivo при введении их до воздействия рентгеновского излучения
  • Глава 6. Влияние ксантозина, кофеина, IMP и GMP на выживаемость животных, подверженных воздействию рентгеновского излучения
  • Глава 7. Возможные механизмы радиозащитного действия ксантозина, кофеина, IMP и GMP при введении их после воздействия рентгеновского излучения
    • 7. 1. Влияние ксантозина, кофеина, IMP и GMP на количество форменных элементов периферической крови облученных животных
    • 7. 2. Влияние ксантозина, кофеина, IMP и GMP на образование повреждений ДНК индуцированных рентгеновским излучением in vivo
    • 7. 3. Влияние ксантозина, кофеина, IMP и GMP на образование долгоживущих радикалов белка, индуцированное рентгеновским излучением in vitro
    • 7. 4. Влияние ксантозина, кофеина, IMP и GMP на степень радиационно-индуцированной окислительной модификации белка in vivo
  • Глава 8. Влияние пуриновых соединений на выживаемость клеток карциномы гортани человека подверженных воздействию рентгеновского излучения in vitro

Радиозащитные свойства ряда пуриновых соединений (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Поиск и изучение новых природных радиозащитных соединений, способных модифицировать повреждающие эффекты ионизирующего излучения, обусловленные повреждением биологических макромолекул — ДНК, белков, липидов, которые приводят к патологическим последствиям, являются актуальной проблемой. Известно, что повреждения молекул ДНК являются одной из основных причин пострадиационной гибели животных (Ярмоненко, Вайнсон, 2004).

Воздействие ионизирующего излучения на живые организмы может происходить как за счет непосредственного возбуждения и ионизации макромолекул (прямое действие), так и за счет высокореакционных свободных радикалов, которые образуются в результате радиолиза воды — косвенное действие радиации (Кудряшов, 2004). Около 80% радиационно-индуцированных повреждений в клетке являются результатом косвенного действия радиации (Газиев, 1999). Индуцированные радиацией повреждения ДНК приводят к генетически запрограммированному сигнально-регуляторному запуску сложной системы реакций ответа клетки на повреждения. Она сопряжена с изменением экспрессии многих генов: активацией систем антиоксидантной защиты клетки, систем контроля клеточного цикла пролиферации, репарации ДНК, инициации апоптоза и других процессов (Газиев, 2011). Так как свободные радикалы, образующиеся в результате радиолиза воды и других молекул? из-за их высокой реакционной способности, являются коротко живущими продуктами основное направление в области радиационной защиты, было связано с поиском и использованием радиопротекторов — веществ, которые нейтрализуют свободные радикалы при введении их в организм непосредственно перед облучением. В настоящее время известен и хорошо изучен ряд эффективных радиопротекторов, которые проявляют защитные свойства при введении их незадолго до воздействия радиации. Это существенно ограничивает возможности их практического использования и создаёт необходимость разработки радиозащитных средств, защищающих организм от повреждающего воздействия ионизирующей радиации при введении их в организм после облучения.

В середине прошлого столетия было обнаружено, что препараты РНК (Detre, Finch, 1958; Лучник, 1958) защищали растения и животных от радиационно-индуцированных повреждений и увеличивали выживаемость облученных животных при введении их как до, так и после облучения. Гидролизаты РНК до уровня мононуклеотидов проявляли аналогичные защитные свойства (Maisin et al., 1959). Позднее было показано, что из всех основных природных рибонуклеозидов, входящих в состав РНК, только инозин и гуанозин обладают ярко выраженными антиоксидантными и радиозащитными свойствами. Причем наиболее эффективные радиозащитные свойства они проявляли при введении их в организм вскоре после облучения (Gudkov et al., 2006; Gudkov et al., 2009). В связи с этим изучение радиозащитных свойств ряда природных пуриновых соединений, а также механизмов их действия, представленные в данной работе, актуально и связано с потенциальной возможностью использования полученных результатов в практических медицинских целях.

Цель диссертационной работы заключалась в изучении антиоксидантых и радиозащитных свойств природных пуриновых соединений: ксантозина, кофеина, инозин-5'-монофосфата и гуанозин-5'-монофосфата. В соответствии с целью были поставлены основные задачи:

1. Исследовать антиоксидантные свойства данных пуриновых соединений.

2. Изучить их влияние на радиационно-индуцированное образование повреждений ДНК in vitro и in vivo.

3. Определить радиозащитные свойства этих пуриновых соединений и исследовать возможные механизмы их защитного действия.

Научная новизна исследования.

Впервые установлено, что пуриновые соединения: ксантозин (Хао), кофеин (1,3,7-триметилксантин, Cai), инозин-5'-монофосфат (IMP) и гуанозин-5'-монофосфат (GMP) проявляют существенные антиоксидантные свойства, значительно уменьшая радиационно-индуцированный выход перекиси водорода и гидроксильных радикалов в водных растворах и образование 8-оксогуанина (7,8-дигидро-8-оксогуанина, 8-ОГ) в ДНК при воздействии рентгеновского излучения in vitro. В работе впервые показано, что исследуемые пуриновые соединения проявляют выраженные радиозащитные свойства, увеличивая выживаемость мышей при внутрибрюшинном введении их после радиационного воздействия в летальной дозе 7 Гр. Показано, что фактор изменения дозы (ФИД) для этих пуриновых соединений равен примерно 1,2. В работе установлено, что введение этих пуриновых соединений стимулирует процессы кроветворения, увеличивая количество лейкоцитов и тромбоцитов в периферической крови облученных животных и нормализуя гемопоэз в пострадиационный период. Впервые показано, что исследуемые соединения стимулируют ускоренное пострадиационное восстановление повреждений ДНК при введении их как до, так и в существенно большей степени после облучения, уменьшая процентное содержание полихроматофильных эритроцитов (ПХЭ), содержащих микроядра (МЯ) в костном мозге, и уровень деградации ДНК в клетках тимуса мышей подвергнутых воздействию рентгеновского излучения. Впервые установлено, что данные пуриновые соединения в системе in vitro нейтрализуют долгоживущие активные формы бычьего сывороточного альбумина и яичного альбумина, a in vivo уменьшают степень окислительной модификации белков сыворотки крови.

Научно-практическая ценность работы.

Впервые установлено, что исследуемые пуриновые соединения проявляют антиоксидантные свойства in vitro и in vivo и могут быть использованы как биологически активные добавки, препятствующие патологическим последствиям окислительного стресса. Впервые показано, что исследуемые пуриновые соединения проявляют радиозащитные свойства при введении их животным вскоре после воздействия рентгеновского излучения. Таким образом, данные пуриновые соединения могут рассматриваться как потенциально перспективные профилактические и терапевтические средства для уменьшения патологических последствий индуцированных воздействием ионизирующего излучения на организм млекопитающих и человека.

Апробация работы.

Материалы диссертации были представлены на 10 международных и 9 российских конференциях: XI и XII Международные научно-практические конференции «Человек и космос» (Днепропетровск 2009, 2010), 14 и 15-я Международные школы-конференции молодых ученых «Биология-наука XXI века» (Пущино 2010, 2011), IX Международный симпозиум «Биологические механизмы старения» (Харьков 2010), VIII Международная конференция «Биоантиоксидант» (Москва 2010), 38th Annual Meeting of the European Research Society (Stockholm 2010), III Всероссийский с международным участием конгресс «Симбиоз-Россия 2010» (Нижний Новгород 2010), XVIII Международная научная конференция «Ломоносов-2011» (Москва 2011), конференция с международным участием «Актуальные проблемы токсикологии и радиобиологии» (Санкт-Петербург 2011), 38-я научной конференция студентов (Самара 2007), 34 Самарская областная студенческая научная конференция (Самара 2008), конференция «90-летие создания Института биофизики в России (Пущино 2009), конференция «Фундаментальная наука и клиническая медицина» (Москва 2009), «VIII и IX Конференция молодых ученых, специалистов и студентов» посвященная Дню космонавтики (Москва 2009, 2010), конференция «Экспериментальная и теоретическая биофизика» (Пущино 2010), III Евразийский конгресс по медицинской физике «Медицинская физика 2010» (Москва 2010), VI Съезд по радиационным исследованиям (Москва 2010).

Публикации.

По теме диссертации опубликовано 25 печатных работ, в том числе 5 статей в рецензируемых журналах, из которых 4 в изданиях рекомендованных ВАК, и 20 статей в сборниках научных конференций и в тезисах докладов научных конференций.

Структура и объем диссертации

.

Диссертация изложена на 111 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, заключения, экспериментального исследования (материалы и методы исследования), результатов исследования и их обсуждения, общего заключения, выводов, списка используемых сокращений и обозначений, списка цитируемой литературы {316 источников). Работа иллюстрирована 16 рисунками и содержит 10 таблиц.

выводы.

1. Пуриновые соединения: ксантозин, кофеин, IMP и GMP в диапазоне концентраций 0,02−1 мМ проявляют антиоксидантные свойства in vitro. Они существенно уменьшают образование перекиси водорода и гидроксильных радикалов, индуцированное рентгеновским излучением в водных растворах, и предотвращают образование 8-оксогуанина — основного биомаркера окислительных повреждений в ДНК. Ксантозин, кофеин, IMP и GMP в системе in vitro нейтрализуют долгоживущие активные формы бычьего сывороточного альбумина и яичного альбумина, a in vivo уменьшают степень окислительной модификации белков.

2. Исследуемые пуриновые соединения проявляют выраженные радиозащитные свойства, увеличивая выживаемость мышей при внутрибрюшинном введении после радиационного воздействия в летальной дозе 7 Гр. Фактор изменения дозы при таком введении составляет величину 1,2.

Введение

этих пуриновых соединений стимулирует процессы кроветворения, увеличивая количество лейкоцитов и тромбоцитов в периферической крови облученных животных в пострадиационный период.

3. Исследуемые соединения стимулируют пострадиационное восстановление повреждений ДНК при введении их как до, так и, что более существенно, после облучения, уменьшая процентное содержание ПХЭ с МЯ в костном мозге и деградацию ДНК в клетках тимуса мышей, подвергнутых радиационному воздействию в дозах 1,5 и 7 Гр, соответственно.

4. Данные пуриновые соединения можно рассматривать как потенциально перспективные профилактические и терапевтические средства для уменьшения рисков патологического воздействия ионизирующего излучения на организм млекопитающих и человека.

СПИСОК ОСНОВНЫХ СОКРАЩЕНИЙ И ОБОЗНАЧЕНИЙ.

АФК — активные формы кислородамкАт — моноклональные антитела;

ПОЛ — перекисное окисление липидов;

СОД — супероксиддисмутаза;

ФБ — фосфатный буфер;

ОН" - гидроксильный ион;

ОН" - гидроксильный радикал;

Н2О2- перекись водородаещ — гидратированный электрон;

О2*" - супероксид-анион радикал- 'Ог — синглетный кислород;

ABTS — 2,2'-Azino-bis (3-ethylbenz-thiazoline-6-sulfonic acid);

G — радиационно-химический выход;

ИФА — иммуноферментный анализ;

Guo — гуанозин;

Ino — инозин;

Хао — ксантозина;

Caf — кофеин;

IMP — инозин -5'- монофосфатGMP — гуанозин -5'- монофосфатККК — кумарин-3-карбоновая кислота;

7-ОН-ККК — 7-гидроксикумарин-З-карбоновая кислота;

8-ОГ — 8-оксогуанин (7,8-дигидро-8-оксогуанин) — ПХЭ — полихроматофильные эритроциты;

МЯ — микроядра;

ФИД — фактор изменения дозы;

ДАФБ — долгоживущие активные формы белка;

ЛД50 — токсическая доза вещества или ионизирующего излучения, вызывающая 50% летальный исход;

ЛД50/30 — доза ионизирующего излучения, вызывающая 50% летальный эффект в течение 30-ти дневного теста на выживаемостьДНК — дезоксирибонуклеиновая кислотаРНК — рибонуклеиновая кислота.

ОБЩЕЕ ЗАКЛЮЧЕНИЕ.

В настоящей работе представлены результаты исследования антиоксидантных и радиозащитных свойств природных пуриновых соединений: ксантозина, кофеина, инозин-5'-монофосфата и гуанозин-5'-монофосфата.

В Главе 5 с помощью метода усиленной хемилюминесценции, в системе люминол-р-йодофенол-пероксидаза хрена показано, что ксантозин, кофеин, IMP и GMP в диапазоне концентраций 0,02−1 мМ существенно уменьшают количество перекиси водорода образующейся в фосфатном буфере при воздействии рентгеновского излучения in vitro. С помощью кумарин-3-карбоновой кислоты установлено, что в присутствии пуриновых соединений в диапазоне концентраций 0,02−1 мМ происходит уменьшение генерации гидроксильных радикалов при воздействии ионизирующего излучения. Методом иммуноферментного анализа, с использованием моноклональных антител специфичных к 8-оксогуанину, показано, что пуриновые соединения эффективно предотвращают in vitro образование 8-оксогуанина — ключевого биомаркера окислительного повреждения ДНК под воздействием рентгеновского излучения. Используя микроядерный тест, установлено, что Хао, Caf, IMP и GMP при введении животным за 15 мин до воздействия радиации уменьшают процентное содержание ПХЭ с МЯ в красном костном мозге мышей, проявляя тем самым антиоксидантные свойства in vivo.

В Главе 6 работы, исследовалось влияние пуриновых соединений при внутрибрюшинном введении на выживаемость мышей до или после воздействия рентгеновского излучения в летальной дозе 7 Гр. При введении до облучения, исследуемые пуриновые соединения не проявляют существенного защитного эффекта. При введении после облучения все исследуемые пуриновые соединения увеличивают выживаемость облученных животных. Установлен фактор изменения дозы для пуриновых соединений (—1,2) при введении через 15 мин после облучения.

В Главе 7 работы, показано, что ксантозин, кофеин, IMP и GMP при введении мышам после воздействия рентгеновского излучения в дозе 7 Гр увеличивают количество форменных элементов крови облученных мышей, уменьшают тяжесть радиационной лейкопении и тромбопении. Показано, что пуриновые соединения при введении их после облучения уменьшают частоту образования микроядер в полихроматофильных эритроцитах красного костного мозга облученных мышей. С помощью метода проточной цитофлуориметрии, установлено, что пуриновые соединения уменьшают деградацию молекул ДНК в клетках тимуса облученных мышей in vivo. Методом индуцированной хемилюминесценции показано, что пуриновые соединения (ОД мМ) нейтрализуют долгоживущие активные формы БСА и яичного альбумина образованные воздействием рентгеновского излучения in vitro. Установлено, что пуриновые соединения при введении после облучения уменьшают степень окислительной модификации белков сыворотки крови облученных животных in vivo.

В Главе 8 работы показано, что пуриновые соединения при введении их до облучения в культуральную среду проявляют радиосенсибилизирующие свойства, увеличивая процент гибели клеток карциномы гортани человека in vitro.

Одним из механизмов радиозащитного действия исследованных пуриновых соединений при введении их в организм млекопитающих вскоре после воздействия рентгеновского облучения может быть нейтрализация долгоживущих активных форм белков индуцируемых ионизирующим излучением. Эти активные формы белков, как было показано недавно (Гудков и др., 2010), способны продлять окислительный стресс в организме млекопитающих путем генерации активных форм кислорода в течение длительного времени. Нейтрализация этого процесса за счет антиоксидантных свойств данных пуриновых соединений, служащих перехватчиками АФК, генерируемых ДАФБ может быть эффективным способом устранения патологических последствий продленного окислительного стресса обусловленного воздействием ионизирующего излучения. При этом не исключается и другие возможные механизмы, и комплексное системное воздействие этих соединений на процессы связанные с сигнально-регуляторной ролью АФК в клетках, их воздействие на некоторые пуриновые рецепторы и включение клеточных механизмов антиоксидантной защиты и репарационных процессов. Важно подчеркнуть, что радиозащитный эффект достигается даже при однократном введении этих соединений. Не исключено, что еще более выраженные радиозащитные результаты могут быть достигнуты путем неоднократного дополнительного введения этих соединений в организм после воздействия облучения. Таким образом, данные пуриновые соединения могут рассматриваться как потенциально перспективные профилактические и терапевтические средства для устранения рисков патологического воздействия ионизирующего излучения на организм млекопитающих и человека. В настоящее время разработка и использование таких средств весьма актуальны в связи с необходимостью защиты населения в случае угрозы и осуществления радиационного терроризма и возможностью радиационных аварий (Moulder, 2004).

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.Х., Заичкина С. И., Рузиева Р. Х., Ганасси Е. Э. 1993. Исследования защитного действия природного препарата антоциана (пеларгонидин-3,5-диглюкозид). Радиобиология. 33(3):433−435.
  2. A.A., Юнева М. О., Сорокина Е. В., Крамаренко Г. Г., Федорова Т. Н., Коновалова Г. Г., Ланкин В. З. 2001. Антиоксидантные системы в тканях мышей с ускоренным темпом старения (SAM, Senescence Accelerated Mice) Биохимия. 66:1157−1163.
  3. A.A. 2003. Роль активных форм кислорода в жизнедеятельности нейрона. Успехи физиологических наук. 34(3):21−34.
  4. В.И., Масалимов Ж. К., Усачева A.M. 1999. Определение 8-оксогуанина в ДНК методом хемилюминесцентного иммуноферментного анализа. Биохимия. 64(7): 958−964.
  5. М.В. 2006. Средства профилактики и лечения лучевых поражений. М.: ВЦМК <Защита", 340.
  6. JT.С., Соболева Л. С., Шевченко В. А. 2000. Изменение цитотоксического и цитогенетического эффектов радиации при введении в организм препаратов РНК, выделенных из различных тканей. Известия АН. Серия биол. 3: 290−293.
  7. Ю.А., Азизова O.A., Деев А. И. и др. 1991. Свободные радикалы в живых системах. Итоги науки и техники. Сер. Биофизика. М. 249.
  8. А. И., Шайхаев Г. О. 2010. Ядерно- митохондриальные псевдогены. Молекулярная биология. 44(3): 405−417.
  9. А.И. 1999. Повреждение ДНК в клетках под действием ионизирующей радиации. Радиац. Биология. Радиоэкология. 39: 630−638.
  10. А.И. 2011. Низкая эффективность репарации критических повреждений ДНК, вызываемых малыми дозами радиации. Радиац. Биология. Радиоэкология. 51(5): 512−529.
  11. А.Н., К.Г. Саркисян, A.A. Тимошевский 2005. Противолучевые свойства интерлейкина-1. Вестн. Рос. воен.-мед. акад. 13(1): 44−53.
  12. А.Н., Легеза В. И., Назаров В. Б., Тимошевский A.A. 2011. Медицинские средства профилактики и терапии радиационных поражений: Учебное пособие. Спб, 92.
  13. C.B., Гудкова О. Ю., Штаркман И. Н., Гапеев А. Б. и др. 2006. Гуанозин и инозин как природные генопротекторы для клеток крови мышей при воздействии рентгеноского излучения. Радиац. биология. Радиоэкология. 46(6): 713−718.
  14. .И., Солдатов С. К., Зуев В. Г., Ушаков И. Б. 1995. Защитная активность мексамина и индралина при интенсивном электромагнитном облучении крыс Радиац. биол. Радиоэкол. 35(1): 74−77.
  15. Е.Е., Бурмистров С. О., Ходов Д. А., Поротов И. Е. 1995. Окислительная модификация белков сыворотки крови человека. Методы ее определения//Вопр. мед. химии. 41(1): 24−26.
  16. Л.Н., Хафазьянова Р. Х., Бакирова Н. Э. 2005. Изучение влияния нового аминокислотного комплекса лития на пострадиационное восстановление кроветворений в эксперименте. Фундам. исслед. 8: 34−35.
  17. Г. Д. 2006. Нерешенные вопросы систем защиты клеток человека от радиации. Радиационная биология. Радиоэкология. 46(4): 389−392.
  18. Н.К., Ланкин В. З., Меныцикова Е. Б. 2001. Окислительный стресс: биохимический и патофизиологический аспекты. М/.МАИК «Наука/Интерпериодика». 343.
  19. А. А., Иванова А. С., Уланова А. М., Ставракова H. М., Дешевой Ю. Б. Рогожин Д. В., Андрианова И. Е., Мальцев В. Н. 2010. Противолучевое действие вакцины «Гриппол». Радиационная биология. Радиоэкология. 50(1): 52−57.
  20. A.A., Уланова A.M., Ставракова Н. М. 2009. Противолучевая эффективность лактоферрина. Радиац. биология. Радиоэкология. 49(4): 456−461.
  21. О.Э., Гудков C.B., Гармаш С. А., Штаркман И. Н., Черников A.B., Бруков В. И. 2010. Генотоксическое действие in vivo долгоживущих радикалов белка, индуцируемых рентгеновского облучением. Доклады академии наук. 434(3): 412 415.
  22. С. А. Симбирцев A.C. 2008. Цитокины. СПб.: Фолиант. 550.
  23. И.И. 2001. Некоторые перспективы совершенствования фармакологических средств противолучевой защиты. Военно-медицинский журнал. (7): 56−61.
  24. Ю.Б. 2004. Радиационная биофизика (ионизирующие излучения). Учебник под ред. В. К. Мазурика и М. Ф. Ломанова. М.: Физматлит. 443.
  25. В.И., Колесниченко Л. С. 1990. Биологическая роль глутатиона. Успехи соврем, биол. 110(1): 20−33.
  26. Легеза В. И, Абдуль Ю. А., Антушевич А. Е. и др. 1993. Влияние рибоксина на резистентность мышей к пролонгированному гамма-облучению в нелетальной дозе. Радиобиология. 33(5): 658−664.
  27. В.И., Попов A.B., Салухов В. В., Турлаков Ю. С. 2010. Гранулоцитарный колониестимулирующий фактор лейкостим средство патогенетической терапии постлучевого костномозгового синдрома. Вестн. Рос. воен.-мед. акад. 2(3): 135 139.
  28. Н.В. 1958. Влияние дрожжевых экстрактов на облученные организмы. Биохимия. 23: 146−153.
  29. A.B., Кузноделов К. Д., Краев A.C. 1990. Методы молекулярной генетики и генной инженерии. Новосибирск: Наука СО. 248.
  30. М.Н., Макаров В. Г., Зенкевич И. Г. 2004. Антирадикальная активность флавоноидов и их комбинации с другими антиоксид антами. Фармация. 2: 30.
  31. Е.Б., Зенков Н. К. 1991. Метаболическая активность гранулоцитов при хронических неспецифических заболеваниях легких. Терапевт, арх. 11: 85−87.
  32. А.И., Гудков C.B., Брусков В. И. 2008. Механизмы образования и биологическая роль перекиси водорода в электрохимически активированных растворах. Вода. Химия и Экология. 2008. 3: 31−35.
  33. В.В. 2005. Иммуномодулирующие и радиозащитные свойства биологически активных веществ из морских гидробионтов: автореф. дис. канд. мед. Наук. Владивосток. 27.
  34. В.В. Потапова, Л.А. Иванушко, H.H. Беседнова и др. 2004. Влияние БАД из тканей и органов морских гидробионтов на кроветворение при острой лучевой болезни. Изв. ТИНРО. 139: 418−425.
  35. Рогачева С.А., A.C. Симбирцев, К. Н. Муксинова. 1994. Изучение противолучевого действия интерлейкина-1 бета в эксперименте. Радиационная биология. Радиоэкология. 34(3): 419−423.
  36. Л.М., Дешевой Ю. Б., Лебедев В. Г., Нестерова Т. А. 2002. Зависимость лечебной эффективности интерлейкина-lb от срока введения препарата после облучения мышей. Радиац. биология. Радиоэкология. 42(1): 65−69.
  37. Л.М., Коровкина Э. П., Дешевой Ю. Б. 2008. Применение рекомбинантного человеческого интерлейкина-lß- (Беталейкина) для экстренной терапии острой лучевой болезни тяжелой степени у собак. Радиац. биология. Радиоэкология. 48(2): 185−194.
  38. Е.Ф. 1984. Молекулярные механизмы лучевой болезни. 208.
  39. П.П., Шашков B.C., Сергеев П. В. 1976. Радиационная фармакология, М. 234.
  40. О.Ф., Ревина A.A., Тарасенко П. Д., Ковалев И. Ф., Сенюк К. В., Корж С. Н. 2000. Иммунологические механизмы радиопротекторного действия церулоплазмина. Радиац. биология. Радиоэкология. 40(2): 197−203.
  41. Л.И., Абрамова Л. П., Белогурова JI.B. и др. 2010. Позитивный радиомодифицирующий эффект новой биологически активной пищевой добавки из черноморских моллюсков. VI Съезд по радиационным исследованиям: Тез. докл. М. 2:463.
  42. B.C., Гудков C.B., Штаркман И. Н., Черников A.B., Брусков В. И. 2005. Генотоксическое действие ионов уранила на ДНК in vitro, обусловленное генерацией активных форм кислорода. Биофизика. 50(3): 456−463.
  43. М.Е., Соловьев В. В., Фасхутдинова A.A., Кудрявцев A.A., Акатов B.C. 2007. Прооксидантное и цитотоксическое действие N- ацетилцистеина и глутатиона в сочетании с витамином Bi2b. Цитология. 49(1): 70−78.
  44. H.H., Шашков В.С 1975. Химия и фармакология средств профилактики радиационных поражении, М. 342.
  45. JI.M. 2000. Влияние реаферона на количество и активность лимфоцитов у животных, подвергнутых у-облучению. Вопросы общей биологии в ветеринарии: Сб. науч. тр. М. 117−120.
  46. О. В. 2010. Гемопоэзстимулирующее и радиомодифицирующее действие препарата из растения Chamaenerion angustifolium. Радиационная биология. Радиоэкология. 50(5): 536−541.
  47. JI.H. Потапова В. В., Иванушко Л. А. 2004. Влияние низкомолекулярной ДНК из молок лососевых на кроветворение в эксперименте. Антибиотики и химиотерапия. 49(4): 7−10.
  48. Е.Е., Рябова Э. З., Индик В. М. 1974. Защитное и лечебное действие экзогенной ДНК при облучении быстрыми нейтронами. Наука думка. Киев. 142.
  49. A.B., Брусков В. И. 2002. Генерация гидроксильных радикалов и других редокс-активных соединений в морской воде под действием тепла. Биофизика. 47(5): 773−781.
  50. Г. А., Шлякова Т. Г., Шарыгин В. Л. и др. 1994. Молекулярные аспекты действия радиопротектора индралина. Изв. РАН, сер. биол. (1): 20−37.
  51. К.С., Петров В. М. 1993. Фармако-химическая защита и заместительное лечение как составные части системы радиационной безопасности космонавтов при экспедиции к Марсу. Авиокосм. эколог. Медицина. 27: 27−32.
  52. Н.Г., Мясоедов А. Ф., Петкевич Н. В. и др. 2000. Интерлейкин-lb в качестве средства ранней терапии острой учевой болезни. Фундаментальные и прикладные проблемы биотехнологии и медицины: Тез. докл. науч.-техн. конф. -СПб. 31.
  53. Т.Г., Михайлов П. П. 2009. Индометафен как средство лечения острой лучевой болезни. Радиац. биология. Радиоэкология. 49(4): 438−443.
  54. И.Н., Гудков C.B., Черников A.B., Брусков В. И. 2008. Образование перекиси водорода и гидроксильных радикалов в водных растворах L-аминокислот при воздействии рентгеновского излучения и тепла. Биофизика. 53(1): 5−13.
  55. Штаркман И.Н., C.B.Гудков, Черников A.B., Брусков В. И. 2008. Влияние аминокислот на образование перекиси водорода и гидроксильных радикалов в воде и 8-оксогуанина в ДНК при действии рентгеновского излучения Биохимия, 73(4): 576−586.
  56. Т.М., Новоселов В. И., Фесенко Е. Е., Липкин В. М. 2009. Пероксиредоксины новое семейство белков-антиоксидантов. Биоорганическая химия. 35(5): 523−537.
  57. С.П., Вайнсон A.A. 2004. Радиобиология человека и животных. М.: «Высшая школа», 549.
  58. Abraham SK, Sarma L, Kesavan PC. 1993. Protective effects of chlorogenic acid, curcumin and beta-carotene against gamma radiation- induced in vivo chromosomal damage. Mutation Research. 303: 109−112.
  59. Adaramoye OA, Sarkar J, Singh N, Meena S, Changkija B, Yadav PP, Kanojiya S, Sinha S. 2011. Antiproliferative Action of Xylopia aethiopica Fruit Extract on Human Cervical Cancer Cells. Phytother Res. 25(10): 1558−1563.
  60. Agarwal S., and Sohal R. S. 1995. Differential oxidative damage to mitochondrial proteins during aging. Mech. Ageing Dev. 85: 55−63.
  61. E. J. 1988. From endotoxins to newer immunomodulators: survival promoting effects of microbial polysaccharide complex in irradiated animals. Pharmacol. Ther. 39: 223−241.
  62. Ambrus JL, Ambrus CM, Gahwyler ME, Akhter S, Jankowski A, Lane W. 2004. Studies on the radioprotective effect of etiocholanolone. Journal of Medicine. 35: 75−86.
  63. Ames B.N., Shigenaga M.K. and Hagen T.M. 1993. Oxidants, antioxidants and degenerative diseases of aging. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 90: 7915−7922.
  64. Araujo MM, Marchioni E, Bergaentzle M, Zhao M, Kuntz F, Hahn E, Villavicencio AL. 2011. Irradiation stability of folic Acid in powder and aqueous solution J Agric Food Chem. 23−59(4): 1244−1248.
  65. Arora R, Gupta D, Chawla R, Sagar R, Sharma A, Kumar R, Prasad J, Singh S, Samanta N, Sharma RK. 2005. Radioprotection by plant products: Present status and future prospects. Phytotherapy Research. 19: 1−22.
  66. O. I. 1998. Free radicals, oxidants and antioxidants: trend towards the year 2000 and beyond.// In: Molecular Biology of Free Radicals in Human Disease. Aruoma O. and Halliwell B. (Eds.). — Oica International, Saint Lucia, London. 1−28.
  67. Azab KS, Mostafa AH, Ali EM, Abdel-Aziz MA. 2011. Cinnamon extract ameliorates ionizing radiation-induced cellular injury in rats. Ecotoxicol Environ Saf. 74(8): 23 242 349.
  68. Bagchi D, Bagchi M, Stohs SJ, Das DK, Ray SD, Kuszynski CA, Joshi SS, Pruess HG. 2000. Free radicals and grape seed proanthocyanidin extract: importance in human health and disease prevention.Toxicology. 148(2−3): 187−97.
  69. Bakir M.A., G. Alya, A. Mohammad, R. Azroony, F. Kasies 2005. Radioprotective effects of selenium in rats. J. Radioanal. Nucl. Chem. 266(2): 165−170.
  70. Batra V, Kesavan V, Mishra KP. 2004. Modulation of enzymes involved in folate dependent one-carbon metabolism by gamma-radiation stress in mice. Journal of Radiation Research. 45: 527−533.
  71. Beckman K.B. and Ames B.N. 1998. The free radical theory of aging matures. Physiol. Rev. 78: 547−581.
  72. Ben-Amotz A, Yatziv S, Sela M, Greenberg S, Rachmilevich B, Shwarzman, M, Weshler Z. 1998. Effect of natural betacarotene supplementation in children exposed to radiation from the Chernobyl accident. Radiation and Environmental Biophysics. 37: 187−193.
  73. Berbee M, Fu Q, Garg S, Kulkarni S, Kumar KS, Hauer-Jensen M. 2011. Pentoxifylline enhances the radioprotective properties of y-tocotrienol: differential effects on the hematopoietic, gastrointestinal and vascular systems. Radiat Res. 175(3): 297−306.
  74. J.E., Held K.D., Manevich Y., Tuttle S., Kachur A.V., Uckun A. 1996. Role of guanosine triphosphate in ferric ion-linked Fenton chemistry.Radiat. Res. 145: 554−562.
  75. Bixon M., Giese B., Wessely S., Langenbacher T., Michel-Beyerle M., Jortner J 1999. Long-range charge hopping in DNA. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 96: 11 713−11 716.
  76. Blumenthal RD, Lew W, Reising A, Soyne D, Osorio L, Ying Z, Goldenberg DM. 2000. Anti-oxidant vitamins reduce normal tissue toxicity induced by radio-immunotherapy. International Journal of Cancer. 86: 276−280.
  77. Boerma M, Roberto KA, Hauer-Jensen M. 2008. Prevention and treatment of functional and structural radiation injury in the rat heart by pentoxifylline and alpha-tocopherol. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 72: 170−177.
  78. Borek C, Ong A, Mason H, Donahue L, Biaglow JE. 1986. Selenium and vitamin E inhibit radiogenic and chemically induced transformation in vitro via different mechanisms. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 83: 1490— 1494.
  79. Brown DQ, Graham WJ 3rd, MacKenzie LJ, Pittock JW 3rd, Shaw LM. 1988. Can WR-2721 be improved upon? Pharmacology and Therapeutics. 39: 157−168.
  80. Bruskov V.I., Malakhova L.V., Masalimov Zh.K. and Chernikov A.V. 2002. Heat-induced formation of reactive oxygen species and 8-oxoguanine, a biomarker of damage to DNA. Nucl. Acids Res. 30: 1354−1363.
  81. S., Barsky L., Weinberg K., Warburton D. 2005. In vivo inosine protects alveolar epitelial type 2 cells against hyperoxia-induced DNA damage through MAP kinase signaling. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 288: L569-L575.
  82. Burns FJ, Tang MS, Frenkel K, Na’das A, Wu F, Uddin A, Zhang R. 2007. Induction and prevention of carcinogenesis in rat skin exposed to space radiation. Radiation and Environmental Biophysics. 46: 195−199.
  83. Buettner GR, Jurkiewicz BA. 1993. Ascorbate free radical as a marker of oxidative stress: an EPR study. Free Radic Biol Med. 14(1): 49−55.
  84. E., Davies K. J. 2000. Mitochondrial free radical generation, oxidative stress, and aging. Free Rad. Biol. Med. 29: 222−230.
  85. Carsten RE, Bachand AM, Bailey SM, Ullrich RL. 2008. Oral resveratrol treatment reduced chromosome aberrations in mouse bone marrow. Radiation Research. 169: 633— 638.
  86. Chen L.G., Brizel D.N., Rabbani T.V., Samulsky C.L. et al. 2004. The protective effect of recombinant human keratinocyte growth factor on irradiation-induced pulmonary toxicity in rats. Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 60: 1520−1529.
  87. Chlebovsky O, Praslicka M. 1984. Modification of radiation response by K and Mg aspartates in continuously irradiated rats and mice. Advances in Space Research. 4: 257 262.
  88. Choi EK, Ji IM, Lee SR, Kook YH, Griffin RJ, Lim BU, Kim JS, Lee DS, Song CW, Park HJ. 2006. Radiosensitization of tumor cells by modulation of ATM kinase. International Journal of Radiation Biology. 82: 277−283.
  89. CK. 1988. Interrelationships of cellular antioxidant defense systems. In: Chow CK, editor. Cellular antioxidant defense mechanisms. Boca Raton, FL: CRC Press. II: 217— 237.
  90. Chui S. and Oleinick N.L. 1998. Radioprotection of cellular chromatin by the polyamines spermine and putrescine: preferential action against formation of DNA-protein crosslinks. Radiat. Res. 149: 543−549.
  91. Chung HJ, Yoon SI, Shin SH, Koh YA, Lee SJ, Lee YS, Bae S. 2006. p53-mediated enhancement of radiosensitivity by selenophosphate synthetase 1 overexpression. Journal of Cellular Physiology. 209: 131−141.
  92. Davidson DE, Grenan MM, Sweeney TR. 1980. Biological characteristics of some improved radioprotectors. In: Brady LW, editor. Radiation sensitizers. Their use in the clinical management of cancer. New York: Masson Publishing. 309−320.
  93. Davis TA, Clarke TK, Mog SR, Landauer MR. 2007. Subcutaneous administration of genistein prior to lethal irradiation supports multilineage, hematopoietic progenitor cell recovery and survival. International Journal of Radiation Biology. 83: 141−151.
  94. Davis TA, Mungunsukh O, Zins S, Day RM, Landauer MR. 2008. Genistein induces radioprotection by hematopoietic stem cell quiescence. International Journal of Radiation Biology. 84: 713−726.
  95. Day RM, Kupper-Barshishat M, Mog SR, McCart EA, Prasanna PGS, Davis TA, Landauer MR. 2008. Genistein protects against biomarkers of delayed lung sequelae in mice surviving high-dose total body irradiation. Journal of Radiation Research. 49: 361 372.
  96. Denison L., Haigh A., D’Cunha G. and Martin F. 1992. DNA ligands as radioprotectors: molecular studies with Hoechst 33 342 and Hoechst 33 258. Int. J. Radiat. Biol. 61: 69−81.
  97. Detre K.D. and Finch S.C. 1958. Radiation-protective effects of yeast extract and yeast ribonucleic acid. Science. 128: 656−657.
  98. Devasagayam T.P., Kamat J.P., Mohan H, Kesavan PC. 1996. Biochim Biophys Acta. 1282(1): 63−70.
  99. Doddridge Z.A., Cullis P.M., Jones G.D.D. and Malone M.E. 1998. 7,8-Dihydro-8-oxo-2'-deoxyguanosine residues in DNA are radiation damage «hot» spots in the direct g-radiation damage pathway. J. Am. Chem. Soc. 120: 10 998−10 999.
  100. Doherty DG, Burnett WT Jr. 1955. Protective effect of S, betaaminoethylisothiuronium Br-HBr and related compounds against x-radiation death in mice. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine. 89: 312−314.
  101. Dorr W., Noack R., Spekl K. and Farelli C.L. 2001. Modification of oral mucositis by keratinocyte growth factor: Single radiation exposure. Int. J. Radiat. Biol. 77: 341−347.
  102. Dziegielewski J, Goetz W, Murley JS, Grdina DJ, Morgan WF, Baulch JE. 2010. Amifostine metabolite WR-1065 disrupts homologous recombination in mammalian cells. Radiat Res. 173(2): 175−83.
  103. Emami S, Hosseinimehr SJ, Taghdisi SM, Akhlaghpoor S. 2007. Kojic acid and its manganese and zinc complexes as potential radioprotective agents. Bioorganic and Medicinal Chemistry Letters. 17: 45−48.
  104. Epperly M, Jin S, Nie S, Cao S, Zhang X, Franicola D, Wang H, Fink MP, Greenberger JS. 2007. Ethyl pyruvate, a potentially effective mitigator of damage after total-body irradiation. Radiation Research. 168: 552−559.
  105. Erbayraktar S, de Lanerolle N, de Lotbinie’re A, Knisely JP, Erbayraktar Z, Yilmaz O, Cerami A, Coleman TR, Brines M. 2006. Carbamylated erythropoietin reduces radiosurgicallyinduced brain injury. Molecular Medicine. 12: 74−80.
  106. Farooqi Z, Kesavan PC. 1992. Radioprotection by caffeine preand post-treatment in the bone marrow chromosomes of mice given whole-body gamma-irradiation. Mutation Research. 269: 225−230.
  107. M., Broitman F., Trent J.B., Klapper M.H. 1996. One-Electron Oxidation Reactions of Some Purine and Pyrimidine Bases in Aqueous Solutions. Electrochemical and Pulse Radiolysis Studies. J. Phys. Chem. 100: 14 751−14 761.
  108. Fedorocko P., Brezani P. and Mackova N. O. 1992. Radioprotection of mice by the bacterial extract Broncho-Vaxom: haemopoietic stem cells and survival enhancement. Int. J. Radiat. Biol. 61: 511−518.
  109. Feher I, Gidali J, Sztanyik L. 1968. Study of the radioprotective effect of 5-methoxytryptamine on haemopoietic stem cells. International Journal of Radiation Biology and Related Studies in Physics, Chemistry, and Medicine. 14: 257−262.
  110. Feuer L, Benko' G. 1981. Effect of glutaurine and its derivatives and their combinations with radiation protective substances upon irradiated mice. Acta Radiologica, Oncology. 20:319−324.
  111. Finkel T., and Holbrook N. 2000. Oxidants, oxidative stress and the biology of ageing. Nature. 408: 239−247
  112. Fischer JL, Lancia JK, Mathur A, Smith ML. 2006. Selenium protection from DNA damage involves a Refl/p53/Brcal protein complex. Anticancer Research 26: 899−904.
  113. Floersheim GL, Chiodetti N, Bieri A. 1988. Differential radioprotection of bone marrow and tumour cells by zinc aspartate. British Journal of Radiology. 61: 501−508.
  114. C.G., Shigenaga M.K., Park J.W., Degan P., Ames B. 1990. Oxidative damage to DNA during aging: 8-hydroxy-2'-deoxyguanosine in rat organ DNA and urine. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 87: 4533−4537.
  115. Frasca D., Guidi, M. Arbitrio 2000. Hematopoietic reconstitution after lethal irradiation and bone marrow transplantation: effects of different hematopoietic cytokines on the recovery of thymus, spleen and blood cells. Immune Rec. 25(4): 427433.
  116. Furuse M., Tsuneoka K., Uchida K. and Nomoto K. 1997. Acceleration of granulocytic cell recovery in irradiated mice by a single subcutaneous injection of a heat killed Lactobacillus casei preparation. J. Radiat. Res. 38: 111−120.
  117. S., Gebicki J.M. 1993. Formation of peroxides in amino acids and proteins exposed to oxygen free radicals. Biochem. J. 289: 743−749.
  118. George KC, Hebbar SA, Kale SP, Kesavan PC. 1999. Caffeine protects mice against whole-body lethal dose of gammairradiation. Journal of Radiological Protection. 19: 171−176.
  119. Geraets L., Moonen H.J., Wouter E.F. et al. 2006. Biochem. Pharmacol. 72: 902−910.
  120. B. 2002. Long-distance electron transfer through DNA. Annu. Rev. Biochem. 71: 51−70.
  121. Glowe P. J., Glick J. H. and Weiler C. 1984. Phase I trials of WR 2721 and cisplatinum. Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 10: 1781−1787.
  122. Gomez G. and Sitkovsky M.V. 2003. Differential requirement for A2a andA3 adenosine receptors for the protective effect of inosine in vivo. Blood. 102: 4472−4478.
  123. Gosule L.S. and Schellman J.A. 1978. DNA condensation with polyamines: I. Spectroscopic studies. J. Mol. Biol. 121: 311−326.
  124. Greenrod W, Fenech M., 2003. The principal phenolic and alcoholic components of wine protect human lymphocytes against hydrogen peroxide- and ionizing radiation-induced DNA damage in vitro. MutagenesisMar. 18(2): 119−122.
  125. Grune T., Reinheckel T., and Davies K. J. 1997. Degradation of oxidized proteins in mammalian cells. The FASEB J. 11: 526- 534.
  126. S.V., Gudkova O.Y., Chernikov A.V., Bruskov V.I. 2009. Protection of mice against X-ray injuries by the post-irradiation administration of guanosine and inosine. Int. J. Radiat. Biol. 85: 116−125.
  127. B., Clementb M.B., Longa L.H. 2000. Hydrogen peroxide in the human body. FEBS Letters. 486:10−13.
  128. Halliwell B., Gutteridge J.M.C. 1982. Caeruloplasmin and the superoxide radical. Lancet 2: 556−559.
  129. Harapanhalli RS, Yaghmai V, Giuliani D, Howell RW, Rao DV. 1996. Antioxidant effects of vitamin C in mice following x-irradiation. Research Communications in Molecular Pathology and Pharmacology. 94: 271−287.
  130. Hasko G, Cronstein B. 2011. Methylxanthines and inflammatory cells. Handb Exp Pharmacol. 200: 457−68.
  131. Hillman GG, Forman JD, Kucuk O, Yudelev M, Maughan RL, Rubio J, Layer A, Tekyi-Mensah S, Abrams J, Sarkar FH. 2001. Genistein potentiates the radiation effect on prostate carcinoma cells. Clin Cancer Res. 7(2): 382−90.
  132. Hirayama H., Tamaoka J. and Horikoshi K. 1996. Improved immobilization of DNA to microwell plates for DNA-DNA hybridization. Nucl. Acids Res. 24: 4098−4099.
  133. Hofer M, Pospi’svil M. 2006. Role of adenosine signaling in hematopoiesis a short review. Medical Hypotheses Research. 3: 629−635.
  134. J. A. 1975. The principles of hyperbaric and anoxic radiotherapy. Br. J. Radiol. 48: 819−826.
  135. Hosseinimehr SJ, Emami S, Taghdisi SM, Akhlaghpoor S. 2008. 5,7-Dihydroxychromone-2-carboxylic acid and its transition-met al (Mn and Zn) chelates as non-thiol radioprotective agents. European Journal of Medicinal Chemistry. 43: 557−561.
  136. Hosseinimehr SJ, Zakaryaee V, Froughizadeh M. 2006. Oral oxymetholone reduces mortality induced by gamma irradiation in mice through stimulation of hematopoietic cells. Molecular and cellular biochemistry. 287: 193−199.
  137. SJ. 2007. Trends in the development of radioprotective agents. Drug Discovery Today. 12: 794−805.
  138. Hou B, Xu ZW, Yang CW, Gao Y, Zhao SF, Zhang CG 2007. Protective effects of inosine on mice subjected to lethal total-body ionizing irradiation. J Radiat Res (Tokyo). 48(1): 57−62.
  139. Jagetia GC, Rajanikant GK. 2012. Acceleration of wound repair by curcumin in the excision wound of mice exposed to different doses of fractionated yradiation. Int Wound J. 9(1): 76−92.
  140. Jagetia GC, Reddy TK. 2002. The grapefruit flavanone naringin protects against the radiation-induced genomic instability in the mice bone marrow: a micronucleus study. MutatRes. 519(1−2): 37−48.
  141. Jagetia GC, Reddy TK. 2005. Modulation of radiation-induced alteration in the antioxidant status of mice by naringin. Life Sci. 77(7): 780−94.
  142. Jagetia GC, Shirwaikar A, Rao SK, Bhilegaonkar PM. 2003. Evaluation of the radioprotective effect of Ageraturn conyzoides Linn, extract in mice exposed to different doses of gamma radiation. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 55: 1151−1158.
  143. GC. 2007a. Radioprotection and radiosensitization by curcumin. Advances in Experimental Medicine and Biology. 595: 301−320.
  144. GC. 2007b. Radioprotective potential of plants and herbs against the effects of ionizing radiation. Journal of Clinical Biochemistry and Nutrition. 40: 74−81.
  145. Jha MN, Bamburg JR, Bernstein BW, Bedford JS. 2002. Caffeine eliminates gamma-ray-induced G2-phase delay in human tumor cells but not in normal cells. Radiation Research. 157: 26−31.
  146. Jovanovic S.V. and Simic M.G. 1986. One-electron redox potentials of purines and pyrimidines. J. Phys. Chem. 90: 974−978.
  147. Kagi J. H. R. and Schaffer A. 1988. Biochemistry of met allothionine. Biochemistry. 27: 8509−8515.
  148. Kalechman Y., Shani A., Albeck M. and Sredni B. 1995. Induction od acute phase proteins in mice and humans by treatment with AS 101, an immunomodulator with radioprotective properties. Immunopharmacology. 29: 149−158.
  149. Kasai H and Nishimura S. 1983. Hydroxylation of the C-8 position of deoxyguanosine by reducing agents in the presence of oxygen. Nucleic Acids Symp Ser. 23: 165−167.
  150. Kesavan PC, Trasi S, Ahmad A. 1973. Modification of barley seed radio sensitivity by posttreatment with caffeine. I. Effect of post-irradiation heat shock and nature of hydration. Int J Radiat Biol Relat Stud Phys Chem Med. 24(6): 581−587.
  151. Kim JK, Kim JH, Yoon YD. 2003. Evaluation of caffeine as a radioprotector in whole-body irradiated male mice. In Vivo. 17: 197−200.
  152. Kirk-Othmer encyclopedia, 1982. N.Y., 3 ed. 19: 80−88.
  153. Knasmuller S, de Martin R, Domjan G, Szakmary A. 1989. Studies on the antimutagenic activities of garlic extract. Environmental and Molecular Mutagenesis. 13:357−365.
  154. Koide K, Osman S, Garner AL, Song F, Dixon T, Greenberger JS, Epperly MW. 2011. The Use of 3,5,4'-Tri-0-acetylresveratrol as a Potential Pro-drug for Resveratrol Protects Mice from y-Irradiation-Induced Death. ACS Med Chem Lett. 2(4): 270−274.
  155. WH. 1993. The centennial of the Fenton reaction. Free Radie Biol Med. 15(6): 645−51.
  156. Konopacka M, Widel M, Rzeszowska-Wolny J. 1998. Modifying effect of vitamin C, E and beta-carotene against gamma-rayinduced DNA damage in mouse cells. Mutation Research. 417: 85−94.
  157. Koyama S., Kodama S., Suzuki K., Matsumoto T., Miyazaki T. and Watanabe M. 1998. Radiation-induced long-lived radicals which cause mutation and transformation. Mutat. Res. 421:45−54.
  158. Krishna A, Kumar A. 2005. Evaluation of radioprotective effects of Rajgira (Amaranthus paniculatus) extract in Swiss albino mice. Journal of Radiation Research 46: 233−239.
  159. Kumagai J., Masui K., Itagaki Y., Shiotani M., Kodama S., Watanabe M. and Miyazaki T. 2003. Long-lived mutagenic radicals induced in mammalian cells by ionizing radiation are mainly localized to proteins. Radiat. Res. 161: 95−102.
  160. Kumar KS, Srinivasan V, Toles R, Jobe L, Seed TM. 2002. Nutritional approaches to radioprotection: Vitamin E. Military Medicine. 167(1): 57−59.
  161. Kumar SS, Devasagayam TP, Jayashree B, Kesavan PC. 2001. Mechanism of protection against radiation-induced DNA damage in plasmid pBR322 by caffeine. International Journal of Radiation Biology. 77: 617−623.
  162. P. 1983. Duration and degree of radioprotection of WR- 2721 in mice following its intraperitoneal, intramuscular and subcutaneous administration. Radiobiologia Radiotherapia. 24: 357−364.
  163. DJ. 2008. New drugs for familiar therapeutic targets: Thrombopoietin receptor agonists and immune thrombocytopenic purpura. European Journal of Haematology Supplementum. 69: 9−18.
  164. Landauer MR, Davis HD, Dominitz JA, Weiss JF. 1988. Comparative behavioral toxicity of four sulfhydryl radioprotective compounds in mice: WR-2721, cysteamine, diethyldithiocarbamate, and N-acetylcysteine. Pharmacology and Therapeutics. 39: 97 100.
  165. Landauer MR, Srinivasan V, Seed TM. 2003. Genistein treatment protects mice from ionizing radiation injury. Journal of Applied Toxicology. 23: 379−385.
  166. Lecka J, Molski S, Komoszynski M. 2010. Extracellular-purine metabolism in blood vessels (part I). Extracellular-purine level in blood of patients with abdominal aortic aneurysm. 29(9): 647−657.
  167. Lee JH, Park JW. 2004. A manganese porphyrin complex is a novel radiation protector. Free Radicals in Biology and Medicine. 37: 272−283.
  168. S. 1979. Radioprotection of mouse intestine by inhibitors of cyclic AMP phosphodiesterase. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 5: 825−833.
  169. Lewis R J. 1989. Food Additives Handbook. 864.
  170. Limoli CL, Giedzinski E, Baure J, Doctrow SR, Rola R, Fike JR. 2006. Using superoxide dismutase/catalase mimetics to manipulate the redox environment of neural precursor cells. Radiation Protection Dosimetry. 122: 228−236.
  171. Liu WC, Wang SC, Tsai ML, Chen MC, Wang YC, Hong JH, McBride WH, Chiang CS. 2006. Protection against radiationinduced bone marrow and intestinal injuries by Cordyceps sinensis, a Chinese herbal medicine. Radiation Research. 166: 900−907.
  172. Luxford C., Morin B., Dean R.T. and Davies M.J. 1999. Histone HI- and amino acid-hydroperoxides can give rise to free radicals which oxidize DNA. Biochem. J. 344: 125 134.
  173. Maisin J., Dumont P. and Dunjio A. 1960. Yeast ribonucleic acid and its nucleotides as recovery factors in rats receiving an acute whole-body dose of X-rays. Nature. 186: 9192.
  174. Maisin J., Dunjic A., Maldague P. and Deckers-Passau L. 1959. Protective action of ribonucleic acid and ribonucleinate on white rats irradiated in toto. Compt. Rend. Seances Soc. Biol. Fil. 153:379−381.
  175. Malick MA, Roy RM, Sternberg J. 1978. Effect of vitamin E on post-irradiation death in mice. Experientia. 34: 1216−1217.
  176. Manda K, Ueno M, Anzai K. 2008. Melatonin mitigates oxidative damage and apoptosis in mouse cerebellum induced by high- LET 56Fe particle irradiation. Journal of Pineal Research. 44: 189−196.
  177. Mantena SK, Unnikrishnan MK, Joshi R, Radha V, Devi PU, Mukherjee T. 2008. In vivo radioprotection by 5-aminosalicylic acid. Mutation Research. 650: 63−79.
  178. Martin R. F. and Anderson R. F. 1999. Pulse radiolysis studies indicate that electron transfer is involved in radioprotection by Hoechst 33 342 and methylproamine. Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 42: 827−831.
  179. Martin R. F., Broadhurst S., D’Abrew S., Budd R., Sephton R., Reum M. and Kelly D. P. 1996. Radioprotection by DNA ligands. Br. J. Cancer Suppl. 2: S99−101.
  180. Martin R.F. and Holmes N. 1981. Use of 1251 labeled ligand to probe DNA structure. Nature. 302: 452−454.
  181. J. 1988. Met allothionein induction: A measure of radioprotective action. Health Physics. 55: 433−436.
  182. Matsubara J., Tajima Y. and Karasawa M. 1987. Met allothionine induction as a potent means of radiation protection in mice. Radiat. Res. Ill: 267−275.
  183. Maurya DK, Salvi VP, Krishnan Nair CK. 2004. Radioprotection of normal tissues in tumor-bearing mice by troxerutin. J Radiat Res (Tokyo). 45(2): 221−228.
  184. McClain DE, Kalinich JF, Ramakrishnan N. 1995. Trolox inhibits apoptosis in irradiated MOLT-4 lymphocytes. FASEB Journal. 9: 1345−1354.
  185. McCord JM, Fridovich I. 1969. Superoxide dismutase anenzymic function for erythrocuprein (hemocuprein). Journal of Biological Chemistry. 244: 6049−6055.
  186. Michaels M L, Pham L, Cruz C, and Miller JH. 1991. MutM, a protein that prevents G. C-T.A transversions, is formamidopyrimidine-DNA glycosylase. Nucleic Acids Res. 19: 3629−3632.
  187. Miko S., Yanai T., Hasegawa H., Akata N., Kanaiwa-Kudo S., Matsumoto T., Noda Y., Otsu H. and Sato F. 1998. Concentration of met allothionin in mice livers after small dose of irradiation. J. Radiat.Res. 39: 239−242.
  188. M., Scorza G., Pietraforte D. 1999. Peroxynitrite induces long-lived tyrosyl radical (s) in oxyhemoglobin of red blood cells through a reaction involving C02 and a ferryl species. Biochemistry. 38: 2078−2087.
  189. Moore AE, Sabachewsky L, Toolah HW. 1954. Culture characteristics of four permanent lines of human cancer cells. Cancer Res. 15: 598−602.
  190. J.E. 2004. Post-irradiation approaches to treatment of radiation injuries in the context of radiological terrorism and radiation accidents: a review. Int. J. Radiat. Biol. 80: 3−10.
  191. Moulder JE, Cohen EP. 2007. Future strategies for mitigation and treatment of chronic radiation-induced normal tissue injury. Seminars in Radiation Oncology. 17: 141−148.
  192. Murata R., Nishimura Y., Hiraoka M., Abe M. and Satoh M. 1995. Maganese chloride treatment does not protect against acute radiation injury of skin or crypt cells. Radiat. Res. 143: 316−319.
  193. Nagata H, Sugahara T, Tanaka T. 1972. Radiation protection by 2-mercaptopropionylglycine in mice. Journal of Radiation Research. 13: 163−166.
  194. Nair C. K. K., Rajagopalan R, Wani K., Huilgol N. G., Kagiya V. T. and Kapoor S. 1999. Mechanism of radioprotection by TMG — a water soluble vitamin E. J. Radiat. Res. 40:451.
  195. Nayak V, Uma Devi P. 2005. Protection of mouse bone marrow against radiation-induced chromosome damage and stem cell death by the Ocimum flavonoids. Radiation Research. 163: 165−171.
  196. Neal R, Matthews RH, Lutz P, Ercal N. 2003. Antioxidant role of N-acetyl cysteine isomers following high dose irradiation. Free Radical Biology and Medicine. 34: 689 695.
  197. R. 1988a. Role of cytokines in radiation protection. Pharmacol. Ther. 39:261−266.
  198. R. 19 886. Cytokines in radioprotection and therapy of radiation injury. Biotherapy. l: 41−45.
  199. Neta R., Douches S. D. and Oppenheim J. J. 1986. Interlukin I is a radioprotector. J. Immunol. 136: 2483−2485.
  200. Newcomb T. G. and Loeb L. A. 1998. Mechanisms of mutagenicity of oxidatively-modified bases. In: Molecular Biology of Free Radicals in Human Disease. Aruoma O. and Halliwell B. (Eds.). — Oica International, Saint Lucia, London. 13: 139−166.
  201. North S, El-Ghissassi F, Pluquet O, Verhaegh G, Hainaut P. 2000. The cytoprotective aminothiol WR1065 activates p21waf-l and down regulates cell cycle progression through a p53-dependent pathway. Oncogene. 19: 1206−1214.
  202. Ohta A, Sitkovsky M. 2011. Methylxanthines, inflammation, and cancer: fundamental mechanisms. Handb Exp Pharmacol. 200: 469−481.
  203. MG. 2000. Flow Cytometry. A practical Approach, Oxford University Press, New York. 276.
  204. Packer JE, Slater TF, Willson RL. 1979. Direct observation of a free radical interaction between vitamin E and vitamin C. Nature. 278: 737−738.
  205. Pan J., Lin W" Wang W., Han Z. Lu C., Yao S., Lin., N" Zhu D. 2001. A kinetic study on the interaction of deprotonated purine radical cations wits amino acids and model peptides. Biophys. Chem. 89: 193−199.
  206. Parshad R, Sanford KK, Price FM, Steele VE, Tarone RE, Keloff GJ, Boone CW. 1998. Protective action of plant polyphenols on radiation-induced chromatid breaks in cultured human cells. Anticancer Research. 18: 3263−3266.
  207. Patt HM, Straube RL, Tyree EB, Swift MN, Smith DE. 1949. Influence of estrogens on the acute x-irradiation syndrome. American Journal of Physiology. 159: 269−280.
  208. Pawlik TM, Keyomarsi K. 2004. Role of cell cycle in mediating sensitivity to radiotherapy. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 59: 928 942.
  209. Peeters K, Stassen JM, Collen D, Van Geet C, Freson K. 2008. Emerging treatments for thrombocytopenia: Increasing platelet production. Drug Discovery Today. 13:798−806.
  210. A. 1986. Scientific basis for the clinical use of superoxide dismutase. Cancer Treatment Reviews. 13: 7-A4.
  211. D., Minetti M. 1997. Direct ESR detection or peroxynitrite-induced tyrosine-centred protein radicals in human blood plasma. Biochem. J. 325: 675−684.
  212. Pospisil M, Hofer M, Netikova J, Pipalova I, Vacek A, Bartomckova A, Volenec K. 1993. Elevation of extracellular adenosine induces radioprotective effects in mice. Radiation Research. 134: 323−330.
  213. Pospisil M, Hofer M, Znojil V, Vacha J, Netikova J, Hola J. 1995. Radioprotection of mouse hemopoiesis by dipyridamole and adenosine monophosphate in fractionated treatment. Radiation Research. 142: 16−22.
  214. Raffoul JJ, Wang Y, Kucuk O, Forman JD, Sarkar FH, Hillman GG. 2006. Genistein inhibits radiation-induced activation of NF-kappaB in prostate cancer cells promoting apoptosis and G2/M cell cycle arrest. BMC Cancer. 6: 107−116.
  215. Raha S., and Robinson B. H. 2000. Mitochondria, oxygen free radicals, disease and aging. Trends Biochem. Sci. 25: 502−508.
  216. Rai P. 2010. Oxidation in the nucleotide pool, the DNA damage response and cellular senescence: Defective bricks build a defective house. Mutation Research. 703: 71−81.
  217. Ramakrishnan N, Wolfe WW, Catravas GN. 1992. Radioprotection of hematopoietic tissues in mice by lipoic acid. Radiation Research. 130: 360−365.
  218. Reagan-Shaw S, Mukhtar H, Ahmad N. 2008. Resveratrol imparts photoprotection of normal cells and enhances the efficacy of radiation therapy in cancer cells. Photochemistry and Photobiology. 84: 415−421.
  219. M. 2008. Amelioration of the pathological changes induced by radiotherapy in normal tissues. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 60: 1037−1048.
  220. C. 1987. Biophysical consequence of lipid peroxidation in membranes.// Chem. Phys. Lipids. 44: 175−189.
  221. Riehl T., Cohen S., Tessner T., Scholemann S. and Stenson W. S. 2000. Lipopolysaccharide is radioprotective in mouse intestine through a prostaglandin mediated mechanism. Gastroenterology. 18: 1106−1116.
  222. Rithidech KN, Tungjai M, Whorton EB. 2005. Protective effect of apigenin on radiation-induced chromosomal damage in human lymphocytes. Mutat Res. 585(1−2): 96−104.
  223. Rodemann HP, Hehr T, Bamberg M. 1999. Radioprotektiven relevanz der wirkung von natriumselenit: praklinische ergebnis. Medizinische Klinik. 94(3): 3911.
  224. Roy RM, Petrella M, Shateri H. 1988. Effects of administering tocopherol after irradiation on survival and proliferation of murine lymphocytes. Pharmacology and Therapeutics. 39: 393−395.
  225. Sangsuwan T, Haghdoost S. 2008. The Nucleotide Pool, a Target for Low-Dose -Ray-Induced Oxidative Stress. Radiat Res. 170: 776−783
  226. Sarma L, Kesavan PC. 1993. Protective effects of vitamins C and E against gamma-ray-induced chromosomal damage in mouse. International Journal of Radiation Biology. 63: 759−764.
  227. Sato K, Ichimasa M., Miyahara K., Shiomi M., Nishimura Y. and Ichimasa Y. 1999. Radioprotective effects of sodium tungstate on hematopoietic injury by exposure to 60Co y-rays in Wistar rats. J. Radiat. Res. 40: 101−113.
  228. Satyamitra M, Uma Devi P, Murase H, Kagiya VT. 2003. In vivo postirradiation protection by a vitamin E analog, alpha-TMG. Radiation Research. 160: 655−661.
  229. Satyamitra MM, Kulkarni S, Ghosh SP, Mullaney CP, Condliffe D, Srinivasan V. 2011 Hematopoietic Recovery and Amelioration of Radiation-Induced Lethality by the Vitamin E Isoform 5-Tocotrienol Radiat Res. 175(6): 736−45.
  230. Schueller P, Puettmann S, Micke O, Senner V, Schaefer U, Willich N. 2004. Selenium influences the radiation sensitivity of C6 rat glioma cells. Anticancer Research. 24: 2913−2917.
  231. Seifter E, Mendecki J, Holtzman S, Kanofsky JD, Friedenthal E, Davis L, Weinzweig J. 1988. Role of vitamin A and B carotene in radiation protection: Relation to antioxidant properties. Pharmacology and Therapeutics. 39: 357−365.
  232. Sen P, Chakraborty PK, Raha S. 2006. Tea polyphenol epigallocatechin 3-gallate impedes the anti-apoptotic effects of low-grade repetitive stress through inhibition of Akt and NFkappaB survival pathways. FEBS Lett. 580(1): 278−84.
  233. Shen H, Chen ZJ, Zilfou JT, Hopper E, Murphy M, Tew KD. 2001. Binding of the aminothiol WR-1065 to transcription factors influences cellular response to anticancer drugs. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 297: 1067−1073.
  234. Sieber F, Muir SA, Cohen EP, Fish BL, Mader M, Schock AM, Althouse BJ, Moulder JE. 2011. Dietary selenium for the mitigation of radiation injury: effects of selenium dose escalation and timing of supplementation. Radiat Res. 176(3): 366−74.
  235. Sigma-Aldrich (2011) Material Safety Data Sheet http://www.sigmaaldrich.com/msds Cited 22 Oct 2011.
  236. Simpson J.A., Naruta S., Gieseg S., Gebicki S" Gebicki J.M., Dean R.T. 1992. Long-lived reactive species on free-radical-damaged proteins. Biochem. J. 282: 621−624.
  237. Singh SP, Abraham SK, Kesavan PC. 1995. In vivo radioprotection with garlic extract. Mutation Research. 345: 147−153.
  238. Singh VK, Shafran RL, Jackson WE 3rd, Seed TM, Kumar KS. 2006. Induction of cytokines by radioprotective tocopherol analogs. Experimental and Molecular Pathology. 8: 55−61.
  239. Sisodia R, Kumari S, Verma RK, Bhatia AL. 2006. Prophylactic role of melatonin against radiation induced damage in mouse cerebellum with special reference to Purkinje cells. Journal of Radiological Protection. 26: 227−234.
  240. Sisodia R, Singh S, Mundotiya C, Meghnani E, Srivastava P. 2011. Radioprotection of Swiss albino mice by Prunus avium with special reference to hematopoietic system. J Environ Pathol Toxicol Oncol. 30(1): 55−70.
  241. Smoluk GD, Fahey RC, Ward JF. 1986. Equilibrium dialysis studies of the binding of radioprotector compounds to DNA. Radiat Res. 107: 194−204.
  242. Song JY, Yang HO, Shim JY, Ji-Yeon-Ahn, Han YS, Jung IS, Yun YS. 2003. Radiation protective effect of an extract from Chelidonium majus. Int J Hematol. 78(3): 226−232.
  243. JR. 2002. Cu, Fe, Mn, and Zn chelates offer a medicinal chemistry approach to overcoming radiation injury. Current Medicinal Chemistry. 9: 639−662.
  244. Souba WW, Klimberg VS, Hautamaki RD, Mendenhall EH, Bova FC, Howard RJ, Bland KI, Copeland EM. 1990. Oral glutamine reduces bacterial translocation following abdominal radiation. Journal of Surgical Research. 48: 1−5.
  245. Srinivasan V, Doctrow S, Singh VK, Whitnall MH. 2008. Evaluation of EUK-189, a synthetic superoxide dismutase/catalase mimetic as a radiation countermeasure. Immunopharmacology and Immunotoxicology. 30: 271−290.
  246. Srinivasan V, Weiss JF. 1992. Radioprotection by vitamin E: Injectable vitamin E administered alone or with WR 3689 enhances survival of irradiated mice. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics 23: 841−845.
  247. Srivastava M, Chandra D, Kale RK. 2002. Modulation of radiation-induced changes in the xanthine oxidoreductase system in the livers of mice by its inhibitors. Radiat Res. 157:290−297.
  248. Starke-Reed PE, Oliver CN. 1989. Protein oxidation and proteolysis during aging and oxidative stress. Arch Biochem Biophys. 275(2): 559−67.
  249. Steenken S. and Jovanovic S.V. 1997. How easily oxidizable is DNA? One-electron reduction potentials of adenosine and guanosine radicals in aqueous solution. J. Amer. Chem. Soc. 119: 617−618.
  250. Stiff P., Bensinger W., Emmanouilides T., Gentile T. et al. 2003. Treatment of mucositis with palifermin improves patient function and results in a clinically meaningful reduction in mouth and throat soreness (MTS): Phase 3 results. Blood. 102: 676.
  251. HB. 2004. Models for evaluating agents intended for the prophylaxis, mitigation and treatment of radiation injuries: Report of an NCI Workshop, 3−4 December 2003. RadiatRes. 162: 711−728.
  252. Tannehill S. P. and Mehta M. P. 1996. Amifostine and radiation therapy: past, present, and future. Semin. Oncol. 23(8): 69−77.
  253. Thakur I, Devi PU, Bigoniya P. 2011. Protection against radiation clastogenecity in mouse bone marrow by Phyllanthus niruri. Indian J Exp Biol. 49(9): 704−10.
  254. CA. 2008. FDA approves thrombopoiesis-stimulating agent. American Journal of Health-System Pharmacy. 65: 1788.
  255. Thompson JS, Simmons EL, Crawford MK, Severson CD. 1969. Studies on the mechanisms of estradiol-induced radioprotection. Radiat Res. 40: 70−84.
  256. Tian Q, Zhang Sh.-Zh, Pu Q., Zhang F.-K., Hannah X. 2002. Effect of BMPs on hematopoietic injury of acute radiation sickness in mice. Med Coll. PLA. 17(1): 29−33.
  257. TW. 1994. Physiological concentrations of purines and pyrimidines. Model.Cell.Biochem. 140: 1−22.
  258. Uma Devi P, Ganasoundari A, Vrinda B, Srinivasan KK, Unnikrishnan MK. 2000. Radiation protection by the ocimum flavonoids orientin and vicenin: Mechanisms of action. Radiation Research. 154: 455160.
  259. Uma Devi P, Satyamitra M. 2004. Protection against prenatal irradiation-induced genomic instability and its consequences in adult mice by Ocimum flavonoids, orientin and vicenin. International Journal of Radiation Biology. 80: 653−662.
  260. SR. 1982. The genetic program of cell death. Hypothesis and some applications: transformation, carcinogenesis, ageing. J Theor Biol. 97(4): 591−602.
  261. Valenzuela MT, Mateos S, Ruiz de Almodo' var JM, McMillan TJ. 2000. Variation in sensitizing effect of caffeine in human tumour cell lines after gamma-irradiation. Radiotherapy and Oncology. 54: 261−271.
  262. Vazquez-Prieto MA, Rodriguez Lanzi C, Lembo C, Galmarini CR, Miatello RM. 2011. Garlic and onion attenuates vascular inflammation and oxidative stress in fructose-fed rats. J Nutr Metab. 2011: 475 216.
  263. Vijayalaxmi, Reiter RJ, Tan DX, Herman TS, Thomas CR Jr. 2004. Melatonin as a radioprotective agent: A review. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 59: 639−653.
  264. L., Szabo C. 2001. Purines inhibit poly (ADP-ribose)polymerase activation and modulate oxidant-induced cell death. FASEB J. 15: 99−107.
  265. Y. A. 1996. Studies of antioxidants with chemiluminescence. In: Proceedings of the International Symposium on Natural Antioxidants. Molecular Mechanisms and Health Effects. 125−144.
  266. Wagenknecht H.-A., Stemp E.D.A., Barton J.K. 2000. DNA-Bound Peptide Radicals Generated through DNA-Mediated Electron Transport. Biochemistry. 39:5483−5491.
  267. R., Silverman E.C. 1967. Chemical protection against X-radiation in the guinea-pig. Int. J. Rad. Biol. 12: 101−112.
  268. Wang H., Liu R., Tu T., Xie L., Sheng K., Chen Y. And Tang X. 2004. Properties of radicals formed by the irradiation of wool fibers. J. Radiat. Res. 45: 77−81.
  269. J.F. 1988. DNA damage produced by ionizing radiation in mammalian cells: identities, mechanisms of formation, and reparability. Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 35: 95−125.
  270. Weiss JF, Kumar KS. 1988. Antioxidant mechanisms in radiation injury and radioprotection. In: Chow CK, editor. Cellular antioxidant defense mechanisms. Boca Raton, FL: CRC Press. II: 163−189.
  271. Weiss JF, Landauer MR 2009. History and development of radiation-protective agents Int. J. Radiat. Biol. 85 (7): 539−573.
  272. Weiss JF, Landauer MR. 2003. Protection against ionizing radiation by antioxidant nutrients and phytochemicals. Toxicology. 189: 1−20.
  273. Weiss JF, Srinivasan V, Kumar KS, Landauer MR. 1992. Radioproteetion by met als: Selenium. Advances in Space Research. 12: 223−231.
  274. Weissberg JB, Fischer JJ. 1981. Effect of purine nucleosides and nucleotides on the in vivo radiation response of normal tissue in the rat. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 7(3): 365−369.
  275. PD. 2002. Selenocompounds in plants and animals and their biological significance. Journal of the American College of Nutrition. 21: 223−232.
  276. Wilson B. and Matsuzawa T. 1963. Germfree studies of protection induced by bacterial endotoxin against X-irradiation. Radiat. Res. 19: 231−235.
  277. Yashar CM, Spanos WJ, Taylor DD, Gercel-Taylor C. 2005. Potentiation of the radiation effect with genistein in cervical cancer cells. Gynecologic Oncology. 99: 199−205.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!