Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Получение и анализ соматических гибридов между опухолевыми (трансформированными) и нормальными клетками высших растений

Диссертация: Получение и анализ соматических гибридов между опухолевыми (трансформированными) и нормальными клетками высших растений
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

При гибридизации опухолевой (трансформированной) и нормальной клеток контролируемые Т-ДНК признаки: способность к синтезу октопина (активность лизопиндегидрогеназы), гормононезависимость, способность к использованию в качестве источника энергии Dлактозы, супрессия ризогенеза наследуется как доминантныепризнак супрессии стеблевого органогенеза в этом же процессе наследуется в ряде случаев как… Читать ещё >

Содержание

  • Обзор литературы
  • — I. Соматическая гибридизация высших растений
  • — I.I. Методы конструирования растительной клетки
    • 1. 2. Мутанты клеток растений
    • 1. 3. Приемы селекции соматических гибридов
    • 1. 4. Трансмиссионная генетика процесса парасексуальной гибридизации близкородственных видов
      • 1. 4. 1. Судьба ядерных генов при гибридизации со
  • «матических клеток растений
    • 1. 4. 2. Двуродительское наследование и митотическая сегрегация плазмагенов при соматической гибридизации ч
    • 1. 5. Трансмиссионная генетика процесса отдаленной гибридизации
  • 2. Т±- -ПЛазМИДЫ Agrobacterium tumefaciens КЭК векторы для генетической инженерии высших растений
    • 2. 1. Гены вирулентности плазмидн Ti A. tumefaciens
    • 2. 2. Структура и функции Т-ДНК
    • 2. 3. Перенос чужеродных генов в растительную клетку
  • Материалы и методы
  • Глава I. Получение и анализ гибридов соматических клеток
  • Nicotiana plumbaginifolia + N. tabacum (трансформированная Agrobacterium tumefaciens КЛеточная линия)
    • 1. 1. Гибридизация и выделение продуктов слияния
    • 1. 2. Анализ клеточных линий
    • 1. 3. Анализ клонов, полученных из единичных гетерокариоцитов
  • Глава 2. Получение и анализ межтрибных гибридов соматических клеток Atropa belladonna + Nicotiana tabacum (опухолевый ШТаММ)
    • 2. 1. Слияние протопластов и отбор гибридов табак + красавка
    • 2. 2. Индукция морфогенеза у клеточных линий
    • 2. 3. Биохимический анализ гибридных линий табак + красавка
      • 2. 3. 1. Судьба ядерных генных детерминант
      • 2. 3. 2. Судьба внеядерннх генных детерминант
    • 2. 4. Цитогенетический анализ гибридных клеток
  • Глава 3. Изучение признаков, связанных с экспрессией генов Т-района у соматических гибридов Nicotiana + Atropa
    • 3. 1. Активность лизопиндегидрогеназы
    • 3. 2. Супрессия стеблевого органогенеза
    • 3. 3. Супрессия ризогенеза
    • 3. 4. Способность к гормононезависимому росту и росту на D -лактозе
    • 3. 5. Устойчивость к 2-аминоэтилцистеину (АЭЦ)
    • 3. 6. Устойчивость к 5-бромдезоксиурцдину (БрДУ)
    • 3. 7. Устойчивость к 5-метилтриптофану (МТ)
  • Глава 4. Отдаленная гибридизация

4.1. Выделение и анализ межсемейственных гибридов клеток в комбинации ВИДОВ Vicia faba + Nicotiana tabacum (опухолевый штамм). ty 4.2. Эксперименты по гибридизации опухолевых клеток табака с мезофильными клетками кукурузы и ячменя

Получение и анализ соматических гибридов между опухолевыми (трансформированными) и нормальными клетками высших растений (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

В настоящее время единственной альтернативой половому скрещиванию как способу гибридизации растений является соматическая гибридизация с использованием слияния изолированных протопластов. Возникнув чуть более десяти лет тому назад, эта область биологии развивается очень стремительно (см, обзоры Глеба, Сытник, 1982, 1984; Gleba, Sytnik, 1984). Эта новейшая технология имеет ряд преимуществ. Во-первых, она позволяет гибридизовать формы растений, которые раньше не удавалось вовлечь в половое скрещивание (либо за счет дефектов генеративных органов, либо за счет различного рода несовместимости), что дает большие возможности для перекомбинации генов как близко-, так и дальнородственных видов. Во-вторых, оказалось, что соматические гибриды отличаются от гибридов, полученных при половом скрещивании, генетической конституцией, обусловленной различиями в трансмиссии ядерных и цито-плазматических генов в этих процессах. Таким образом, парасексу-альная гибридизация путем слияния протопластов является мощным инструментом как для конструирования новых форм растений, так и для изучения генетического материала эукариотической растительной клетки.

За последнее десятилетие достигнуты большие успехи в изучении механизмов перерождения нормальных клеток растений в опухолевые при трансформации почвенными бактериями рода Agrobacterium (см. обзоры Schell, Van Moutagu, 1983; Schell et al., 1984), а также в использовании их та. плазмид для генетической инженерии растений. Опухолевые клетки, обладая характерными свойствами (гормононезависимость, синтез опинов, морфогенетические дефекты) могут быть использованы в опытах по соматической гибридизации по двум причинам. Во-первых, селективные маркеры клеток корончатых галлов позволяют легко и просто вести отбор парасексу-альных гибридов по их способности к росту и позеленению на питательных средах, лишенных экзогенных фитогормонов как это впервые описано в работе Г. Вуллемса с сотр. (Wuiiems et ai., 1980) для внутривидовой гибридизации у табака. Во-вторых, изучение наследования генов Т-ДНК, особенно онкогенов Shi и Roi локусов, возможно только при гибридизации опухолевых и нормальных клеток путем слияния протопластов, так как о половом скрещивании и речи быть не может, ведь наличие интактного Т-района в клетках не позволяет им регенерировать фертильные растения. Слияние опухолевых и нормальных клеток позволяет также переносить Т-район в клетки филогенетически отдаленных видов растений и изучать характер экспрессии генов Т-ДНК на фон©различных ядерных/цитоплазматических, геномов.

Исходя из вышеизложенного, цель нашей работы заключалась в получении соматических гибридов между опухолевыми (трансформированными Agrobacterium tumefaciens) И нормальными клетками ВЫСШИХ растений и изучении генетической конституции и фенотипическо-го поведения полученных форм.

В связи с поставленной целью в задачи экспериментальной работы входило:

1) Подбор эффективной схемы селекции соматических гибридов и получение парасексуальных гибридов между опухолевыми клетками Nicotiana tabacum (трансформированный ОКТОПИНОВЫМ штаммом Agrobacterium tumefaciens, B6S3) и нормальными мезофильными клетками высших растений различных таксономических групп.

2) Анализ генетической конституции и морфогенетических потенций полученных парасексуальных гибридов.

3) Изучение поведения в процессе соматической гибридизации признаков, контролируемых Т-ДНК (активность лизопиндепщрогена-зы, гормононезависимость, супрессия стеблевого органогенеза, подавление ризогенеза).

4) Изучение поведения в процессе гибридизации других признаков, связанных с опухолевым ростом (рост на средах с д-лактозой, устойчивость к 5-бромде зоксиуридину, 2-аминоэтилцистеину и 5-ме-тилтриптофану).

По теме диссертации опубликовано девять печатных работ. Результаты исследований докладывались на:

— Международном объединенном Конгрессе Европейских Обществ по культуре ткани и ретикулоэндотелиальной системе (Будапешт, ВНР, май 1983 г);

— Республиканской конференции «Геном растений» (г.Черновцы, сентябрь 1983 г);

— 1У Всесоюзной конференции «Культура клеток растений и биотехнология» (г. Кишинев, октябрь 1983 г.);

— П Всесоюзном совещании по генетике соматических клеток в культуре (г. Звенигород, декабрь 1983 г);

— 16-ой Международной конференции Федерации i Европейских Биохимических Общества (г. Москва, июнь 1984);

— Международном Симпозиуме по культуре клеток и тканей растений (г. Оломоуц, ЧССР, сентябрь 1984 г.);

— Всесоюзной конференции «Новые направления биотехнологии» (г. Пущино, октябрь 1984).

Диссертационная работа состоит из введения, обзора литературы, раздела «Материалы и методы», четырех глав, обсуждения полученных результатов, выводов и списка использованной литературы. Во введении обоснован выбор темы и дано общее описание работы.

ВЫВОДЫ.

1. Слияние опухолевой (трансформированной Agrobacterium) и нормальной клеток высших растений позволяет простой и эффективный метод отбора парасексуальных гибридов, основанный на способности гибридных клеток к размножению и позеленению/дифференциации стеблей на лишенных фитогормонов питательных средах. Такого рода процедура селекции пригодна для отбора гибридов «в близкородственных комбинациях видов, так и при выделении меж-трибных и межсемейственных гибридов клеток, однако она не позволяет выделять межклассовые гибриды клеток.

2. При гибридизации опухолевой (трансформированной) и нормальной клеток контролируемые Т-ДНК признаки: способность к синтезу октопина (активность лизопиндегидрогеназы), гормононезависимость, способность к использованию в качестве источника энергии Dлактозы, супрессия ризогенеза наследуется как доминантныепризнак супрессии стеблевого органогенеза в этом же процессе наследуется в ряде случаев как рецессивный, а в других случаях — как доминантный. Контролируемые Т-ДНК признаки наследуются во всех случаях вместе, en bloc.

3. Клетки опухолевого штамма табака B6S3 обнаруживают дифференциальную (зависимую от экзогенных фитогормонов) устойчивость к антиметаболитам 2-аминоэтилцистеину, 5-бромдезоксиуридину и 5-метилтриптофану. При гибридизации опухолевой и нормальной клеток указанные признаки наследуются как доминантные (доминантные с промежуточным типом доминирования). Эти сведения легли в основу предложенных нами альтернативных схем селекции парасексуальных гибридов межцу нормальными и опухолевыми клетками.

4. Межтрибные гибриды клеток Nicotiana tabacum + Atropa belladonna являются генетически стабильными, они способны к ограниченному морфогенезу и регенерации морфологически ненормальных стеблей. Как в неорганизованно растущих клетках, так и в регенерантах Nicotiana + Atropa экспрессируется генетический материал обоих родительских видов. Митотическая сегрегация пластид у межтрибных гибридов не связана с выраженным селективным давлением в пользу одного из родительских пластомов. В небольшом количестве клеточных клонов межтрибных гибридов обнаружена видоспецифическая элиминация большинства хромосом одного из родителей.

5. Межсемейственные гибриды клеток Nicotiana tabacum + Vicia faba являются генетически нестабильнымив процессе клеточного воспроизводства у них наблюдается видоспецифическая реконструкция/ элиминация большей части хромосомного материала бобов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Р. Опухоли растений, — М,:Колос, 1981.-303с.
  2. Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений.- М: Наука, 1964. 272 с.
  3. Ю.П. Генетическая инженерия высших растений.-Журнал ВХО им. Д. И. Менделеева, 1984, т.29, № 2, с. 37−40.
  4. Ю.Ю. Культура изолированных протопластов табака как модель для генетической инженерии.: Автореф.дис. канд. биол.наук.- Киев, 1974.- 24 с.
  5. Ю.Ю., Еутенко Р. Г., Сытник К. М. Слияние протопластов и парасексуальная гибридизация у Hicotia^na tabacum I".-Докл. АН СССР, 1975, т.221, № 5, с. II96-II98.
  6. Ю.Ю., Пивень Н. М., Комарницкий И. К., Сытник Ю. Ю. Парасексуальные цитоплазматические гибриды /цибриды/ Nicotia/na tabacum + N. debneyi, полученные слиянием протопластов.- Докл. АН СССР, 1978, т.240, № 5, с. 1223−1226.
  7. Ю.Ю., Сытник К. М. Слияние протопластов и генетическое конструирование высших растений.- Киев: Наук. думка, 1982, 104 с.
  8. Ю.Ю., Сытник К. М. Клеточная инженерия растений. -Киев: Наук. думка, 1984, 160 с.
  9. А.В., Кущ А.А., Прудовский И. А. Реконструированная клетка.- М.: Наука, 1982, 207 с.
  10. И.Ф., Глеба Ю. Ю., Череп Н. Н. Получение и анализ клеточных гибридов между Nicotiana plumbaginigolia и Nicotiana tabacum, трансформированного Agrobacterium tumefaciens Генетика, 1983, т.19, № 12, с. 2060−2066.
  11. Н.Н., Комарницкий И, К., Эванс, Д.А., Глеба Ю. Ю. Клонирование единичных продуктов слияния соматическихклеток и анализ внеядерных генов.- В кн.: II Всесоюзное совещание по генетике соматических клеток в культуре: М.: Наука, 1983, с. 99.
  12. А.Н., Хадеева Н. В., Погосов В. З. Выделение клеточных линий табака, устойчивых к высоким концентрациям аминокислот.- Физиология растений, 1981, т.28, № 3,с.561−564.
  13. В.П., Околот А. Н., Скаржинская М. В., Череп Н. Н., Глеба Ю. Ю. Межтрибные гибридные клеточные линии Atropa belladonna + Nicotiana chinensis, полученные слиянием изолированных протопластов.- Докл. АН СССР, 1982, т. 267, М, с. 959−962.
  14. В.П., Каневский И. Ф., Околот А. Н., Скаржинская М. В., Череп Н. Н., Глеба Д. М., Глеба Ю. Ю. Генетические процессыв гибридных клетках филогенетически отдаленных видов растений.- В кн.: Тез.докл. 16-ой конференции ФЕБО, М., 1984, с. 383.
  15. А.Н., Момот В. П., Череп Н. Н., Глеба Ю. Ю. Получение и изучение межсемейственных гибридов соматических клеток растений.- В кн.: 22 Всесоюзное совещание по генетике соматических клеток в культуре: Тез.докл., М.:Наука, 1983, с. 108. ,
  16. Н.М. Слияние изолированных протопластов и цито-плазматическая наследственность у Nicotiana .- Автореф. дис. канд.биол.наук.- Киев, 1980, 21 с.
  17. Э.С., Андрианов В. М., Стехин И. Н., Абрашитова А. И. Конструирование промежуточного вектора на основе рШ 323 и области Т-ДНК нопалиновой 0? i плазмиды pTi С58 A.tumefaciens .- В кн.: Тез.докл. 16-ой конференции ФЕБО, 1. М., 1984, с. 383.
  18. Р., Михаэлис А. Генетический и цитогенетический словарь.- М.: Колос, 1967, 607 с.
  19. Н., Сэвидж Р. Гибридные клетки.- М.:Мир, 1979,-415с.
  20. М.В., Череп Н. Н., Глеба Ю. Ю. Гибридные клеточные линии и растения картофель + табак, полученные путем клонирования индивидуальных продуктов слияния изолированных протопластов.- Цитология и генетика, 1982, т. 16, т, с. 42−48.
  21. М.В., Череп Н. Н., Глеба Ю. Ю. Получение и изучение гибридных клеточных клонов Nicotiana tabacum + Solanum tuberosum: и Nicotiana tabacum + Solanum suc-rense .- Укр.ботан.журн., 1983, т. 40, Ш, с. 64−68.
  22. Д., Ван Монтагю М., Вильмитцер Л., Шрёдер, Иос X., Инзе Д., Оттен Л., Херналстин, Де Грэв, Спаниер К., Замбриски Р. Онкогены Ti плазмид контролируют морфогенез органов растений.- В кн.: Тез.докл. 16-ой конференции ФЕБО, М., 1984, с. 105.
  23. Anonymous. Isolation and culture of rice protoplasts.-Sciencia Sinica, 1975, vol. 18, p. 779−784.
  24. Arotzen C.J., Pfister К., Steiback К. The mechanism of chloroplast triazine resistance: alterations in the site of herbicide action.- In: Herbicide resistance in plants. New York: Wiley, 1982, p. 185−214.
  25. Behnke M. Selection of dihaploid potato callus for resistance to the culture filtra te of Fusarium oxysporum.
  26. Z.Pflanzenzucht., 1980 b, vol. 85, p. 254−258.
  27. Belliard G., Pelletier G., Perault M. Fusion de protoplas-tes Nicotiana tabacum a cytoplasmes differents: etude des hybrides cytoplasmiques neo-formes.- C.r. Acad. Sci. D., 1977″ vol. 284, p. 749−752.
  28. Berlin J. Para-Fluorophenylalanine resistant cell lines of tobacco.- Z.Pflanzenphysiol., 1980, vol. 97″ S. 317−324.
  29. Bevan M.W., Chilton M.-D. T-DNA of the agrobacterium Tiand Ri plasmids.- Ann. Rev. Genet., 1982, vol. 16, p.357−384.
  30. Binding H. Selektion in Kalluskulturen mit haploiden Zellen.
  31. Z.Pflanzenzuchtg., 1972, vol. 67, S. 33−38.
  32. Binding H., Binding K., Straub J. Lelektion in Gewebekul-tfcuren mit haploiden Zellen.- Naturwissenschaften, 1970, vol. 57, S. 138−139.
  33. Binding H., Nehls R. Somatic cell hybridization of Vicia faba + Petunia hybrida.- Mol. and Gen. Genet., 1978 a, vol. 164, p. 137−143.
  34. Binding H., Nehls R. Regenera tion of isolated protoplasts of Vicia faba L.- Z.pflanzenphysiol., 1978 b, vol.88,1. P. 327−352.
  35. Bomhoff G., KLapwijk P.M., Kester H.C.M., Schilperoort R.A., Hemalsteens J.P., Schell J. Octopine and nopaline synthesis and breakdown genetically controled by a plasmid of Agrobacterium -tumefaciens.- Mol. and Gen. Genet., 1976, vol. 145, p. 177−181.
  36. Bonnett H.T. On the mechanism of the uptake of vaucheria chloroplasts by carrot protoplasts treated with polyethylene glycol.- Planta, 1976, vol. 131, p. 229−233.
  37. Н.Ф., Eriksson T. (Transfer of algal chloroplasts into protoplasts of higher plants .-Planta, 1974, vol. 120, p. 71−79.
  38. Braun A.C. Bacterial and host factors concerned in determining tumor morphology in crown gall.- Bot. Gaz., 1953″ vol. 114, p. 363−371.
  39. Braun A.C., Mandle R.J. Studies on the inactivation of the tumor-inducing principle in crown gall.- Growth, 1948, vol. 12, p. 255−269.
  40. Brewbaker J.L., Upodhya M.D., Makinon Т., Donald T.Mc. Isoenzyme polymorphysm in flowering plants.III. Gell electro-phoretic methods and applications.- Physiol. Plantarum, 1968, vol. 21, p. 930−940.
  41. Bright S.W.J., Northcote D.H. Protoplast regeneration from norma 1 and bromodeoxyuridine-resistant sycamore сalius.-J.Cell Sci., 1974, vol. 16, p. 445−464.
  42. Carlson J.E., Widholm J.M. Separation of two forms of anthra-nilate synthetase from 5-methyltryptophane-susceptible and -resistant cultured Solanum tuberosum cells.- Physiol. Plan-tarum, 1978, vol. 44, p. 251−255*
  43. Cella R., Parisi В., Nielsen E. Characterization of a carrot cell line resistant to azetidine-2-carboxylic acid.-Plant Sci., 1982, vol. 24, p. 125−135.
  44. Chaleff R.S., Keil R.b. Genetic and physiological variability among cultured cells and regenera ted plants of Nicotiana tabacum.- Mol. and Gen. Genet., 1981, vol.181,p.254−258.
  45. Chan P.H., Sakano K., Singh S., Wildman S.G. Crystalline Fraction I protein: preparation in large yield.- Science, 1972, vol. 176, p. 1145−1146.
  46. Chien I.-С., Као K.N., Wetter L.R. Chromosomal and isozyme studies of Nicotiana tabacum-Glycine max hybrid cell lines.-Theor. and Appl. Genet., 1982, vol. 62, p. 301−304.
  47. Chilton M.-D., Drummond M.H., Merlo D.J., Sciaky D., Mon-toya A.L., Gordon M.P., Nester E.W. Stable incorporation of plasmid DNA into higher plant cells: the molecular basis of crown gall tumorigenesis.-Cell, 1977″ vol. 11, p. 263−271.
  48. Chilton M.-D., Drummond M.H., Merlo D.J., Sciaky D., Highly conserved DNA of TI-plasmids overlaps T-DNA maintained in plant tumours.- Nature, 1978, vol. 275, P* 147−149.
  49. Chilton M.-D., Saiki R.K., Yadav T.N., Gordon M.P., Quetier P. T-DNA from Agrobacterium Ti plasmid is in the nuclear fraction of crown gall tumor cells.- Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1980, vol. 77, p. 4060−4064.
  50. Chourey P. S., Zurawski D.B. Callus formation from protoplasts of a maize cell culture.- Theor. and Appl. Genet., 1981, vol. 59, p. 34−1-344.
  51. Chu E.H.Y. Induction and analysis of gene mutations in cultured mammalian somatic cells.- Genetics, 197^, vol.78, p.115−32.
  52. Chupeau Y., Missonier C., Hommel M.C., Goujand J. Somatic hybrids of plants by fusion protoplasts.- Observation on model system Nicotiana gla uca Nicotiana langsdorffii.-Mol. and Gen. Genet., 1978, vol. 165, P- 239−246.
  53. Cocking E.C. Gene transfer by protoplast fusion.- In: Advanced in Gene Technology: mol. genet" og plant and animals, New York, Acad. Press, 1983, p. 121−129.
  54. Cocking E.C., Power J.В., Evans P.K., Safwat P., Prearson E., Hayward C., Berry S.P., George D. Naturally occurring def-ferential drug sensitivities of cultured plant protoplasts.-Plant Sci. bett., 1974, vol. 3, p. 341−350.
  55. Dahl G.A., Tempe J. Studies on the use of toxic precursor analogs of opines to select transformed plant cells.-Theor. and Appl. Genet., 1983, vol. 66, p. 233−239″
  56. Dale P.J. Protoplast culture and plant regeneration of cereals and other recalcitrant crops.- In: 6th International Protoplast Symposium, Basel, 1983, p. 1−11.
  57. Davey M.R., Cocking E.C., Freeman N., Pearce N., Tudor I. Trasformation of Petunia protoplasts by isolated Agrobacterium plasmids.- Plant Sci.Lett., 1980, Vol.18, p.307−313″
  58. Depicker A., Van Montagu M., Schell J. Homologous DNA sequences in different Ti-plasmids are essential for oncogenicity." Nature, 1978, vol. 275, Р" 150−153″
  59. Dix P.J. Inheritance of chloramphenicol resistance, a trait selected in cell cultures of Nicotiana sylvestris Speg. and Comes.- Ann. Bot., 1981, vol. 48, p. 315−320.
  60. Dix P.J., Joo P., Maliga P. Cell line of Nicotiana sylvestris with resistance to kanamycin and streptomycin.- Mol. and Gen. Genet., 1977, vol. 157, p. 285−290.
  61. Einset J.W. Cytokinins in tobacco crown gall tumors.
  62. Biochem. and Biophys. Res. Comm., 1980, vol.93, Р-5Ю-515*79″ Einset J.W., Cheng A. Regeneration of tobacco plants from crown gall tumors.- In Vitro, 1979, vol. 15, p. 703−708.
  63. Eriksson T. Isolation and fusion of plant protoplasts.-Colloq. Int. C.N.R.S., 1971, vol. 193, p. 297−302.
  64. Eriksson Т., Bonnett H., Glimelius K., Wallin A. Technical advances in protoplast isolation, culture and fusion.- In: Tissue Cult. Plant Science 1974, London, Academic Press, 1974, p. 213−232.
  65. Eriksson Т., Jonasson К. Nuclear division in isolated protoplasts from cells of higher plants qrown in vitro.-Planta, 1969, vol. 1, p. 85−89.
  66. Selection in vitro and phenotypic characterization of cell lines and regenerated plants.
  67. Parasexual genetic characterization.
  68. Mol. and Gen. Genet., 1983, vol. 189, p. 447−457.
  69. Firmin J.L., Fenwick E.G. N2/1,3-dicarboxypropyl/-ornithine in crown gall tumors.-Phytochem., 1977, vol. 16, p. 761−762.
  70. Firmin J.L., Fenwick G.E. Agropine: A major new plasmid-determined metabolite in crown gall tumours.- Nature, 1978, vol. 276, p. 842−844.
  71. Fluhr R., Aviv D., Edelman M., Galun E. Cybrids containing mixed and sorted-out chloroplasts following interspecific somatic fusions.- Theor. and Appl.Genet., 1983, vol. 65, p. 289−294.
  72. Fraley R.T., Rogers S.G., Horsch R.B. Use of a chimeric gene to confer antibiotic resistance to plant cells.- In:
  73. Advances in gene technology: Mol. Genet, of Plants and Animals, New York, Acad. Press, 1983, p. 211−220.
  74. Garfinkel D.J., Simpson R.B., Ream L.W., White P.P., Gordon M.P., Nester E.W. Genetic analysis of crown gall: fine structure map of the T-DNA by site-directed mutagenesis.-Cell, 1981, vol. 27, p. 143−153.
  75. Gawer M., Guem N. Thermosensitivity variations of tobacco cells with culture conditions.- C.r. Acad.Sci., 1982, Ser.3, vol. 294, p. 1081−1084.
  76. Gebhardt C., Schnebli V., King P.J. Isolation of biochemical mutants using haploid mesophyll propoplasts of Hyoscyamus muticus. II. Auxotrophic and temperature-sensitive clones.-Planta, 1981, vol. 153, p. 81−89.
  77. Gelvin S.B., Gordon M.P., Nester E.W., Aronson A.A. Transcription of the Agrobacterium Ti plasmid in the bacterium and in crown gall tumors.- Plasmid, 1981, vol. 6, p. 17−29.
  78. Genetello 0., Van Larebeke N., Holsters M., Depicker A., Van Montagu M., Schell J. Ti-plasmids of Agrobacterium as a conjugative plasmids.-Nature, 1977, vol.265, p. 561−563.
  79. Gengenbach B.G., Connelly J.A., Pring D.R., Conde M.F. Mitochondrial DNA variation in Maize plants regenerated during tissue culture selection.- Theor. and Appl. Genet., 1981, vol. 59, p. 161−168.
  80. Gleba Y.Y. Microdroplet culture. Tobacco plants from meso-phyll protoplasts.- Naturwissenschaften, 1978, vol.65, p.158.
  81. Gleba Y.Y. Non-chromosomal inheritance in higher plants as studied by somatic cell hybridization.- In: Plant Cell and Tissue Culture Principles and Applications, Columbus, Ohio State Univ. Press, 1979, p. 775−788.
  82. Gleba Y.Y., Berlin J. Somatic hybridization by protoplast fusion in Nicotiana: fate of nuclear genetic determinants.-In: Abstr. Fifth Int. Protopl. Symp., Szeged, Hungary, 1979, p. 73.
  83. Gleba Yu.Yu., Evans D.A. Hybridization of somatic plant cells and genetic analysis.- In: Advances in Gene Techn.: Mol. Genet, of Plant and Animals, New York, Acad. Press, 1983, vol. 20, p. 131−145.
  84. Gleba Y.Y., Hoffmann F. Hybrid cell lines Arabidopsis tha-liana + Brassica campestris: no evidence for specific chromosome elimination.- Mol. and Gen. Genet., 1978, vol. 165, p. 257−264.
  85. Y.Y., Hoffmann F. «Arabidobrassica»: Plant-genome engineering by Protoplast fusion.- Naturwissenschaften, 1979, vol. 66, p. 547−554.
  86. Y.Y., Hoffmann F. «Arabidobrassi^a»: A novel plant obtained by protoplast fusion.-Planta, 1980, v.149,p.112−117.
  87. Gleba Y.Y., Momot V.P., Cherep N.N., Skarzynskaya M.V. Intertribal hybrid cell lines of Atropa belladonna x Nicotiana chinensis obtained by cloning individual protoplast fusion products.- Theor. and Appl. Genet., 1982, vol. 62, p. 75−79.
  88. Gleba Y.Y., Sytnik K.M. Protoplast Fusion Genetic Engineering in Higher Plants, Berlin, Springer, 1984, -220p.
  89. Glimelius K., Bonnett H.T. Somatic hybridization in Nicotiana: Restoration of photoautotrophy to an albino mutant with defective plastids.- Planta, 1981, vol.153, p. 497−503.
  90. Glimelius K., Chen K., Bonnett H.T. Somatic hybridization in Nicotiana: Segregation of organellar traits among hybrid and cybrid plants.- Planta, 1981, vol.153, P" 504−510.
  91. Glimelius K., Eriksson Т., Grafe R., Muller A. Somatic hybridization of nitrate reductase-deficient mutants of Nicotia na tabacum by protoplast fusion.- Physiol. Plant., 1978, vol. 44, p. 273−277.
  92. Goldmann-Menage A. Recherches sur le metabolisme azote des tissus de crown-gall cultives in vitro.- Ann. Sci. Nat., Bot. Biol. Veg., 1970, vol. 11, p. 233−310.
  93. Goldmann A., Tempe J., Morel G. Quelques particularites de diverses souches d’Agrobacterium tumefaciens.- C.r. Seances
  94. Soc. Biol. Ses Fil., 1968, vol. 162, p. 630−631.
  95. Grafe R., Muller A.J. Complementation analysis of nitrate reductase deficient mutants of Nicotiana tabacum by somatic hybridization.- Theor. and Appl. Genet., 1983, vol.66, p. 127−130.
  96. Grambow H.J., Kao K.N., Miller R.A., Gamborg O.L. Cell division and plant development from protoplasts of carrot cell suspension cultures.- Planta, 1972, vol.103, p.348−355.
  97. Gressel J., Binding H., Cohen N. Plastome segregation in regenerants after protoplast fusion of atrazine resistant Solanum nigrum /Black night-shade/ and sensitive S. tuberosum /Potato/.- In: 50th Miami Winter Symp., Miami, 1983, p. 60.
  98. Gresshoff P.M. Cycloheximide resistance in Daucus carota cell cultures.- Theor. and Appl. Genet., 1979, vol. 54, p. 141−150.
  99. Greve H. De, Decraemer H., Seurinck J., Van Montagu M., Schell J. The functional organization of the octopine Agrobacterium tumefaciens plasmid pTi B6S3.- Plasmid, 1981, vol. 6, p. 235−248.
  100. Griesbach R.J., Malmberg R.L., Carlson P. S. An improved technique for the isolation of higher plant chromosomes.
  101. Plant Sci. Lett., 1982, vol. Й4, p. 55−60.
  102. Grimsley N.H., Ashton N.W., Cove D.J. The production of somatic hybrids by protoplast fusion in the moss, Phys-comitrella patens.- Mol. and Gen. Genet., 1977 a, vol.154, p. 97-ЮО.
  103. Grimsley N.H., Ashton N.W., Cove D.J. Complementation analysis of auxotrophic mutants of the moss, Physcomitrella patens, using protoplast fusion.- Mol. and Gen. Genet., 1977 b, vol. 155, p. 101−107.
  104. Gurley W.B., Kemp J.D., Albert M.J., Sutton D.W., Callis J. Transcription of Ti plasmid-derived sequences in three octopine-type tumor lines.- Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1979, vol. 76, p. 2828−2832.
  105. Guyon P., Chilton M.-D., Petit A., Tempe J. Agropine in «null-type» crown gall tumors: evidence for generality of the opine concept.- Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1980, vol. 77, P. 2693−2697.
  106. Ha, in R., Steinbis H.-H., Schell J. Fusion of Agrobacterium and E. coli spheroplasts with Nicotiana tabacum protoplasts Direct gene transfer from microorganism to higher plant.- Plant Cell Rep., 1984, vol. 3, p. 60−64.
  107. Hamilton R.H., Fall M.Z., The loss of tumor initiating ability in Agrobacterium tumefaciens by incubation at high temperature.- Experientia, 1971, vol. 27, p. 229−230.
  108. Harms C.T., Potrycus J., Widholm J.M. Complementation and dominant expression of amino acid analogue resistance markers in somatic hybrid clones from Daucus carota after protoplast fusion.- Z.Pflanzenphysiol., 1981, vol. 101, p. 377−390.
  109. J.X., Као K.N., Gamborg O.L., Miller R.A. Immunological methods for the agglutination of protoplasts from cell suspension cultures from different genera.-Planta, 1973, vol. 112, p. 45−56.
  110. Hasezawa S., Nagata T., Syono K. Transformation of Vinva Protoplasts mediated by Agrobacterium Spheroplasts.-Mol. and Gen. Genet., 1981, vol. 182, p. 206−210.
  111. Hemalsteens J.P., Greve H. De, Van Montagu M., Schell J. Mutagenesis by insertion of the drug resistance transposon Tn7 applied to the Ti-plasmid of Agrobacterium tumefaciens.-Plasmid, 1978, vol. 1, p. 218−225.
  112. Herrera-Estrella L., Block M. De, Messens E., Hernalsteens J., Van Montagu M., Schell J. Chimeric genes as dominant selectable markers in plant cells.- EMBO J., 1983, vol. 2, p. 987-Ю05.
  113. Hille J., Wullems G., Schilperoort R. Non-oncogenic T-re-gion mutants of Agrobacterium tumefaciens do transfer T-DNA into plant cells.- Plant Mol. Biol., 1983, v.2,p.155−163
  114. Hoekema A., Hirsch P.R., Hooykaas P.JJ., Schilperoort R.A. A binari plant vector strategy based on separation of Vir-and T-region of the Agrobacterium tumefaciens.- Nature, 1983, vol. 303, p. 179−180.
  115. Holsters M. De, Waele D., Depicker A., Messens E., Van Montagu M., Schell J. Transfection and transformation of
  116. Agrobacterium tumefaciens.- Mol. and Gen. Genet.-1978, vol. 163, p. 181−187.
  117. Hooykaas P.J.J., Klapwio’k P.N., Nuti M.P., Schilperoort R.A., Rorsch A. Transfer of the Agrobacterium tumefaciens Ti-plasmid to avirulent Agrobacterium and to Rhizobium ex planta.- J.Gen. Microbiol., 1977, vol. 98, p. 477−484.
  118. Hooykaas P.J.J., Schilperoort R.A. The molecular genetics of crown gall tumorigenesis.- Advances in Genetics, 1983, vol. 22, p. 210−283.
  119. Iyer V.N., Klee H.J., Nester E.W. Units of genetic expression in the virulence region of a plant tumor-inducing plasmid of Agrobacterium tumefaciens.- Mol. and Gen. Genet., 1982, vol. 188, p. 418−424.
  120. Jia J.-P., Shilito R.D., Potrykus I. Crown Gall Transformation of Regenerating Protopla sts of Haploid and Diploid Petunia hybrida var. Mitchell by Agrobacterium tumefaciens.-Z.Pflanzenphysiol., 1983, vol. 112, S. 1−6.
  121. Joos H., Inze D., Caplan A., Sormann M., Van Montagu M., Schell J. Genetic Analysis of T-DNA Transcripts in Nopaline Crown Galls— Cell, 1983, vol. 32, p. 1057−1067.
  122. Kameya T. The effects of gelatin on aggregation of protoplasts from higher plants.- Planta, 1973, vol.115, p. 77−82.
  123. Kameya Т., Horn M.E., Widholm J.M. Hybrid shoot formation from fused Daucus carota and D. capillifolius protoplasts.-Z.Pflanzenphysiol., 1981, vol. 104, S. 459−466.
  124. Као K.N. Chromosomal behaviour in somatic hybrids of soy-bean-Nicotiana glauca.- Mol. and Gen. Genet., 1977, vol. 150, p. 225−230.
  125. Kao K.N., Michayluk M.R. A method for high-frequency inter-generic fusion of plant protoplasts.- Planta, 1974, vol.115, p. 355−367.
  126. Kao K.N., Michayluk M.E. Nutritional requirements for growth of Vicia hajastana cells and protoplasts at a very low population density in liquid media.- Planta, 1975″ v.126,p.105−110.
  127. Kartha K.K., Michayluk M.E., Kao K.N., Gamborg O.L., Cons-tabel P. Callus formation and plant regeneration from meso-phyll protoplasts of rape plants /Brassica napus L. cv. Zephyr/.- Plant Sci. Lett., 1974 a, vol 3″ p. 265−271.
  128. Kartha K.K., Gamborg O.L., Constabel P., Kao K.N. Fusion of rapeseed and soybean protoplasts and subsequent division of heterokaryocytes.- Can. J. Bot., 1974 b, vol.52,p. 2435−2436.
  129. Keller W.A., Melchers G. The effect of high pH and calcium on tobacco leaf protoplasts fusion.- Z.Pflanzenphysiol., 1973″ vol. 28, S. 737−741.
  130. Kemp J.D. A new amino acid derivative present in crown gall tumor tissue.- Biochem. Biophys. Res. Comm., 1977″ vol. 74, p. 862−868.
  131. Kemp J.D. In vivo synthesis of crown gall specific Agrobacterium tumefaciens directed derivatives of basic amino acids.-Plant Physiol., 1978, vol. 62, p. 26−30.
  132. Kemp J.D., Pink C. Transfer of a functional gene via the Ti plasmid.- In: Current Topics in Plant Biochem. and Physiol. /D.Douglas et al. eds/, Columbia, Univ. Missouri, 1983, p. 170−179.
  133. Kerr A. Transfer of virulence between isolates of Agrobacterium.- Nature, 1969, vol. 223, p. 1175−1176.
  134. Kerr A. Acquisition of virulence by nonpathogenic isolates of Agrobacterium radiobacter.- Physiol. Plant Path., 1971, vol. 1, p. 241−246.
  135. Kerr A., Roberts W.P. Agrobacterium: Correlation between and transfer of pathogenicity, octopine and nopaline metabolism and bacteriocin 84 sensitivity.- Physiol. Plant Pathol., 1976, vol. 9, p. 205−211.
  136. King P.J. Plant tissue culture and the cell cycle.- Advances Biochem. Engineer., 1980, vol. 18, p. 1−38.
  137. Klee H.J., Gordon M.P., Nester E.W., Complementation analysis of Agrobacterium tumefaciens Ti-plasmid mutations affecting onconenicity.- J. Bacteriol., 1982, v.150,p.327−331•
  138. Koekman B.ffi., Ooms G., Klapwijk P.M., Schilperoort R.A. Genetic map of an octopine Ti-plasmid.- Plasmid, 1979, vol. 2, p. 347−357.
  139. Kohn H., Schieder 0. Somatic hybridization of two auxotrophic tobacco lines by electrofusion.- In: Plant Tissue and Cell Culture Appl. to Crop Improv., Olomouc, Czechoslovakia, 1984, p. 89.
  140. Kolodner R., Tewari K.K. The molecular size and conformation of the chloroplast DNA from higher plants.- Biochem. et Biophys. Acta, 1975, vol. 402, p. 372−390.
  141. Koncz С, Greve H. De, Andre D., Deboeck F., Van Montagu M., Schell J. The opine synthase genes carried by Ti plasmids contain all signals necessary for expression in plants.-EMBO J., 1983, vol. 2, p. 1597−1603.
  142. Koop H.-U., Weber G., Schweiger H.-G. Individual culture of selected single cells and protoplasts of higher plants in microdroplets of defined media.- Z.Pflanzenphysiol., 1983, vol. 112, p. 21−34.
  143. Krens F.A., Molendijk L., Wullems G.J., Schilperoort R.A. In vitro transformation of plant protoplasts with Ti-plas-mid DNA.- Nature, 1982, vol. 296, p. 72.
  144. Krumbiegel G., Schieder 0. Comparison of somatic and sexual incompatibility between Datura innoxia and Atropa belladonna." Planta, 1981, vol. 153, p. 466−470.
  145. Kung S.D., Sakano K., Gray J.C., Wildman S.G. The evolution of Fraction I protein during the origin of a new speciesof Nicotiana.- J.Mol. Evol., 1975, vol. 7, p. 59−64.
  146. Larebeke N. Van, Engler G., Holsters M., Elsacker S. Van de, Zaenen I., Schilperoort R.A., Schell J. Large plasmid in Agrobacterium tumefaciens essential for crown gall inducing ability.- Nature, 1974, vol. 252, p. 169−170.
  147. Larebeke N. Van, Genetello C., Schell J., Schilperoort R.A.,
  148. Leemans J., Shaw C., Deblaere R., Greve H. De, Hernalsteens J. Maes M., Van Montagu M., Schell J. Site-specific mutagenesis of Agrobacterium Ti plasmids and transfer of genes to plant cells.- J. Mol. and Appl. Genet., 1981, vol. 1, p. 149−164.
  149. Leemans J., Deblaere R., Willmitzer L., Greve H. De, Hernalsteens J.P., Van Montagu M., Schell J. Genetic identification of functional of TL-DNA transcripts in octopine crown galls.- EMBO J., 1982 a, vol. 1, p. 147−152.
  150. Leemans J., Greve H. De, Hernalsteens J.P., Shaw C., Willmitzer L., Otten L., Van Montagu M., Schell J. Ti plasmids and directed genetic engineering.- In: Mol. Biol, of Plant Tumors, Acad. Press, 1982 b, p. 537−545.
  151. Lejeune B. Recherches sur le metabolisme de la lysopine dans les tissus de crown-gall de Scorsonere cultives in vitro.- CNRS N°A08929. Thesis, Univ. d’Orsay, 1973, -146p.
  152. Lescure A.M. Selection of markers of resistance to base-analogoues in somatic oell cultures of Nicotiana tabacum.-Plant Sci. Lett., 1973, vol. 1, p. 375−383.
  153. Liu S.-T., Perry K.L., Schards C.L., Kado C.I. Agrobacterium Ti plasmid indoleacetic acid gene is required for crown gall oncogenesis.- Proc. Nat. Acad. Sci. USA, Biochem., 1982, vol. 79, p. 2812−2816.
  154. Lorz H., Paszkowski J., Dierksventling C., Potrycus I. Isolation and characterization of cytoplasts and mini-protoplasts derived from protoplasts of cultured cells.-Physiol. Plant., 1981, vol. 53, P. 385−391.
  155. Lorz H., Potrykus I. Investigations on the transfer of isolated nuclei into plant protoplasts.- Theor. and Appl. Genet., 1978, vol. 53, p. 251−256.
  156. Lo Schiavo F., Nuti Ronchi V., Terzi M. Genetic effects of griseofulvin on Plant Cell Cultures.- Theor. and Appl. Genet., 1980, vol. 58, p. 43−48.
  157. Lurquin P.F. Entrapment of plasmid DNA by liposomes and their interactios with plant protoplasts.- Nucleic Acids Research, 1979, vol. 6, p. 3773−3784.
  158. Lurquin P.F. Binding of plasmid loaded liposomes to plantprotoplasts: validity of biochemical methods to evaluate the transfer of exogenous DNA.- Plant Sci. Lett., 1981, vol. 21, p. 31−40.
  159. Mackenzie I.A., Bui-Dang-Ha D., Davey M.R. Some aspects of isolation, fine structure and growth of protoplasts from Asparagus officinalis L.- Coloq. Int. CNRS, 1973, vol.212, p. 291−299.
  160. Maliga P. Streptomycin resistance is inherited as a recessive mendelian trait in a Nicotiana sylvestris line.-Theor. and Appl. Genet., 1981, vol. 60, p. 1−4.
  161. Maliga P., Lazar G., Joo P., Nagy A.H., Menczel L. fiestora -tion of morphogenic potential in Nicotiana by somatic hybridization.- Mol. and Gen. Genet., 1977, vol. 157, p.291−296.
  162. Maliga P., Lazar G., Svab Z., Nagy P. Transient cyclohexi-mide resistance in a tobacco cell line.- Mol. and Gen. Genet., 1976, vol. 149, p. 267−271.
  163. Maliga P., Lorz H., Lazar G., Nagy P. Cytoplast-protoplasts fusion for interspecific chloroplast transfer in Nicotiana.-Mol. and Gen. Genet., 1982, vol. 185, p. 211−215.
  164. Maliga P., Xuan L.T., Dix P.J., CSeplo A. Antibiotic resistance in Nicotiana.- In: Plant Cell Cultures, Amsterdam, 1980, p. 161−166.
  165. Malmberg R.L., Griesbach R.J. The isolation of mitotic and meiotic chromosomes from plant protoplasts.- Plant Sci. Lett., 1980, vol. 17, p. 141−148.
  166. Marton L., Wullems G.J., Molendijk L., Schilperoort R.A. In vitro transformation of cultured cells from Nicotiana tabacum by Agrobacterium tumefaciens.- Nature, 1979″ vol. 277″ p. 11.
  167. Marton L., Sidorov V., Biasini G., Maliga P. Complementation in somatic hybrids indicates four types of nitrate reductase deficient lines in Nicotiana plumbaginifolia.-Mol. and Gen. Genet., 1982, vol. 187, Р" 1−3.
  168. Meadows M.G., Potrykus I. Hoechst 33 258 as a vital stain for plant cell protoplasts.- Plant Cell Reports, 1981, vol. 1, p. 77−79.
  169. Medgyesy P., Menczel L., Maliga P. The use of cytoplasmic streptomycin resistance Chloroplast transfer from Nicotiana tabacum into Nicotiana sylvestris and isolation of their somatic hynrids.- Mol. and Gen. Genet., 1980, vol. 179, p. 699−698.
  170. F.J. 5-Bromodeoxyuridine: a specific inhibitor of cytokinin-habituation in tobacco cell culture.- Planta, 1976, vol. 129, p. 239−244.
  171. Melchers G. Kombination somatischer und konventioneller Genetic fur die Pflanzenzuchtun.- Naturwissenschaften, 1977, vol. 64, S. 184−194.
  172. Melchers G. The first decennium of somatic hybridization.-In: Proc.5th Int. Congr, Plant Tissue and Cell Culture, Tokyo, 1982, p. 412−414.
  173. Melchers G., Labib G. Somatic hybridization of plants by fusion of protoplasts. I. Selection of light resistant hybrids of «haploid» light sensitive varieties of tobacco.-Mol. and Gen. Genet., 1974, vol. 135, P- 277−294.
  174. Melchers G., Sacristan M.D., Holder A.A. Somatic hybrid plants of potato and tomato regenerated from fused protoplasts.- Carlberg Re. Comm., 1978, vol. 43, p. 203−218.
  175. Menage A., Morel G. Sur la presence d’octopine dans les tissus de crown-gall.- C.r. Acad.Sci. Paris, 1964, vol. 259, p. 4795−4796.
  176. Menczel L., Nagy F., Kiss Z., Maliga P. Streptomycin resistant and sensitive somatic hybrids of N. tabacum + N. knigh-tiana: correlation and resistance to N. tabacum plastids.-Theor. and Appl. Genet., 1981, vol. 59, p. 191−198.
  177. Menczel L., Galiba G., Nagy P., Maliga P. Dose used to irradiate protoplasts influences the efficiency of chloro-plast transfer by protoplast fusion in Nicotiana.- Genetics, 1982, vol. 100, p. 487−495″
  178. Menczel L., Nagy G., Lazar G., Maliga P. Transfer of cytoplasmic male sterility by selection for streptomycin resistance after protoplast fusion in Nicotiana.- Mol. and Gen. Genet., 1983, vol. 189, p. 365−369.
  179. Mendel R.R., Muller A.J. Comparative characterization of nitrate reductase from wild-type and molybdenum cofactor-defective cell cultures of Nicotiana tabacum.- Plant Sci. Lett., 1980, vol. 18, p. 277−288.
  180. Meredith C.P., Carlson P. S. Herbicide resistance in plant cell cultures.- In: Herbicide resistance in plants: Chichester, J. Wiley, 1982, p. 112−125.
  181. Monocha M.S. Fine structure of sunflmwer crown-gall tissue.-Can. J. Bob., 1970, vol. 148, p. 14 455−1458.
  182. Montoya A., Chilton M.-D., Gordon M.P., Sciaky D., Nes-ter E.W. Octopine and nopaline metabolism in Agrobacterium tumefaciens and crown gall tumor cells: role of plasmid genes.- J.Bacterid., 1977, vol. 129, p. 101−107.
  183. Muller A.J., Grafe R. Isolation and characterization of cell lines of Nicotiana tabacum lacking nitrate reductase.-Mol. and Gen* Genet., 1978, vol. 161, p. 67−76.
  184. Murai N., Kemp J.D. Octopine synthase mRNA isolated from sunflower crown gall callus is homologous to the Ti plasmid og Agrobacterium tumefaciens.- Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1982, vol. 79, p. 86−90.
  185. Murashige Т., Skoog P. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures.- Physiol. Plant., 1962, vol. 15, p. 473−497.
  186. Nagao T. Somatic hybridization by fusion of protoplasts.1. Combinations of Nicotiana tabacum and N. glutinosa and of N. tabacum and N.alata.- Jap. J. Crop. Sci., 1979, vol. 48, p. 385−392.
  187. Nagao T. Somatic hybridization by fusion of protoplasts.
  188. I. Somatic hybrids of sexually incompatible combinations Nicotiana tabacum + N. repanda and N. tabacum + Salpiglossis sinuata.- Ibib, 1982, vol. 51, p. 35−42.
  189. Nagata Т., Takebe I. Plating of isolated tobacco mesofchyll protoplasts on agar medium.-Planta, 1971, vol.99,p. 12−20.
  190. Nagy P., Maliga P. Callus induction and plant regeneration from mesophyll protoplasts of Nicotiana sylvestris.-Z.Pflanzenphysiol., 1976, vol. 78, p. 453−455" — 165
  191. Nagy P., Lazar G., Menczel L., Maliga P. A heteroplasmic state induced by protoplasts fusion is a necessary condition for detecting rearrangements in Nicotiana mitochondrial DNA.- Theor. and Appl. Genet., 1983, vol.66,p.203−207.
  192. Ohyama K., Nitsch J.-P. Flowering haploid plants obtained from protoplasts of tobacco leaves.- Plant Cell Physiol., 1972, tfol.13, p. 229−236.
  193. Ooms G., Klapwijk P.M., Poulis J.A., Schilperoort R.A. Characterization of Tn904 insertions in octopine Ti plasmid mutants of Agrobacterium tumefaciens.- J. Bacteriol., 1980, vol. 144, p. 82−91.
  194. Ooms G., Hooykaas P.J.J., Van Veen R.G.M., Van Beelen P., Regensburg-Tuink T.J.G., Schilperoort R.A., Octopine Ti plasmid deletion mutants of Agrobacterium tumefaciens with emphasis on the right side of the T-region.- Plasmid, 1982, vol. 7, p. 15−29.
  195. Otten L.A.B.M., Schilperoort R.A. A rapid microscale method for the detection of lysopine dehydrogenase activities /LpDH/.- Biochem.Biophys.Acta, 1978, v.527,p.497−500.
  196. Otten L., Greve H. De, Hernalsteens J.P., Van Montagu M., Schieder 0., Straub J., Schell J. Mendelian transmission of genes introduced into plants by the Ti plasmids of Agrobacterium tumefaciens.- Mol. and Gen. Genet., 1981, vol. 183, P. 209−213.
  197. Owens L.D. Characterization of kanamycin-resistant cell lines of Nicotiana tabacum.- Plant Physiol., 1981, vol.67, p. 1166−1168.
  198. Owens L.D. Characteristics of teratomas regenerated in vitro from octopine-type crown gall.-Ibib, 1982, v.69,p.37−40.
  199. Palmer J.E., Widholm J. Characterization of carrot and tobacco cell Cultures resistant to p-fluorophenylalanine.-Ibib, 1975, vol. 56, p. 233−238.
  200. Plant Cell, Tissue and Organ Culture /Eds. J.Reinert., Y.P.S.Badad.- Berlin, Springer, 1977, 803p.
  201. Plant cell and tissue culture. Principles and applications/ Eds. P.O.Larsen., E.P.Paddock, V.Eaghavfn.- Columbus, Ohio state univ. press, 1979" — 340p.
  202. Plant protoplasts /Ed. by K.L.Giles.- Int. Eev. Cytol., 16, suppl., 1983. 304p.
  203. Plant tissue culture 1982 /Ed. by Fua’iwara.- Tokyo, IAPTC, 1982. 849р.
  204. Potrykus I. Transplantation of chloroplasts into protoplasts of Petunia.- Z.Pflanzephysiol., 1973, v.70, 364−366.
  205. Potrykus I., Hoffmann F. Transplantation of nuclei into protoplasts of higher plants.- Ibib, 1973, v.69, 287−289.
  206. Potrykus I., Jia J., bazar G.B., Saul M. Hyosciamus muticus + Nicotiana tabacum fusion hybrids selected via auxotroph complementation.- Plant Cell Rep., 1984, vol.3, p. 68−71.
  207. Potrykus I., Lorz H., Harms C.T. On some selected problems and results concerning culture and genetic modification of higher plant protoplasts.- In: Plant Tissue Culture and Its Biotechnological Application, Berlin, Springer, 1977, 323−333.
  208. Power J.В., Cummins S.E., Cocking E.C. Fusion of isolated plant protoplasts.- Nature, 1970, vol. 255, P" 1016−1018.
  209. Ranch J.P., Rick S., Brotherton J.E., Widholm J.M. Expression of 5-Methyltryptophan resistance in plants regenerated from resistant cell lines of Datura-innoxia.- Plant Physiol., 1983, vol. 71, P. 136−140.
  210. Reisch В., Duke S.H., Bingham E.T. Selection and characterization of ethionine-resistant Alfalfa /Medicago sativa L./ cell lines.- Theor. and Appl. Genet., 1981, vol.59, p. 89−94.
  211. Savage A.D., King J., Gamborg O.L. Recovery of pantothenate auxotroph from a cell suspension culture of Datura innoxia.-Plant Sci. Lett., 1979, vol. 16, p. 367−376.
  212. J., Berlin J. 5-methyltryptophan resistant cells of Catharanthus roseus.- Z.Naturforsch., Sec. C., 1979, 54, S. 541−545.
  213. Schieder 0. Regeneration von haploiden und diploiden Datura innoxia Mill. mesophyll-Protoplasten zu Pflanzen.-Z.Pflanzenphysiol., 1975 b, 76, S. 462−466.
  214. Schieder 0. Isolation of Mutants with altered pigments after irradiating hapoid protoplasts from Datura inoxia Mill, with X-rays.- Mol. and Gen. Genet., 1976, vol. 149, p. 251−254.
  215. Schieder 0. Hybridization experiments with protoplasts from chlorophyll-deficient mutants of some Solanaceae species.- Planta, 1977, vol. 137, p. 253−258.
  216. Scowcroft W.R., Larkin P.J. Ohloroplast DNA assorts randomly in intraspecific somatic hybrids of Nicotiana deb-neye.- Theor. and Appl. Genet., 1981, vol. 60, p. 179−184.
  217. Schell J. The role of plasmids in crown gall formation by A.tumefaciens.- In: Genetic manipulations with plant materials: New York, Plenum Press, 1975, P* 163−181.
  218. Schell J., Van Montagu M. The Ti plasmids as natural and as practical gene vectors for plants.- Biotechnology, 1983, vol. 4, p. 175−180.
  219. Schell J., Montagu M. Van, Holsters M. et al. Ti plasmid as experimental gene vectors for plants.- In: Adv. in Gene Techn.: Mol. Genet, of Plants and Animals, Acad. Press, 1983, p.191−208.
  220. Schell J., Van Montagu M., Willmitzer L. et al. Transfer of foreign genes to plants and its use to study developmental processes.- In: Cell Fusion: Gene Transfer and Transform., New York, Raven Press, 1984, p. 113−128.
  221. Schroder J., Schroder G., Huisman H., Schilperoort R.A., Schell J. The mRNA for lysopine dehydrogenase in plant tumor cells is complementary to a Ti plasmid fragment.-FEBS Lett., 1981, vol. 129, p. 166−168.
  222. Schroder G., Waffenschmidt S., Weiler E.W., Schroder J. The T-region of Ti plasmids codes for an enzyme synthesizing indole-3-acetic acid.- Eur. J. Biochem., 1984, vol.138, p. 387−391.
  223. Scott I.M., Firmin J.L., Butcher D.N. et al. Analysis of a range of crown gall and normal plant tissue for Ti-plasmid-determined compounds.- Mol. and Gen. Genet., 1979, vol. 176, p. 57−65.
  224. Sears B.B. Elimination of plastids during spermatogenesis and fertilization in the plant kingdom.- Plasmid, 1980, vol. 4, p. 233−255.
  225. Shepard J.F., Bidney D., Shahin E. Potato protoplasts incrop improvement.- Science, 1980, vol. 208, p. 17−24.
  226. Sidorov V.A., Maliga P. Fusion-complementation analysisof auxotrophic and chlorophyll-deficient lines isolated in haploid Nicotiana piumbaginifolia protoplast cultures.-Mol. and Gen. Genet., 1982, vol. 186, p. 328−332.
  227. Sidorov V.A., Menczel L., Nagy F., Maliga P. Chloroplast transfer in Nicotiana based on metabolic complementation between irradiated and iodoacetate treated protoplasts.-Planta, 1981 a, vol. 152, p. 341−345.
  228. Spiegel.Roy P., Kochba J., Saad Sh. Selection for tolerab-ce to 2,4-dichlorphenoxyacetic acid in ovular callus of orange /Citrus sinensis/.- Z.Pflanzenphysiol., 1983, vol. 109, p. 41−48.
  229. Steinbiss H.-H., Stable P. Protoplast derived tobacco cells can survive capillary microinjection of the Fluorescent dye lucifer yellow.- Protoplasma, 1983, vol.116, p.223−227.
  230. Strauss A., Bucher F., King P.J. Isolation of biochemical mutants using haploid mesophyll protoplasts of Hyoscyamusmuticus. I. A NO^ non-utilizing clone.- Planta, 1981, vol. 153, p. 75−80.
  231. Sung Z.R., bazar G.B., Dudits D. Cycloheximide resistance in carrot culture a differentiated function.- Plant Physiol., 1981, vol. 68, p. 261−270.
  232. Szabados L., Hadlaczky G., Dudits D. Uptake of isolated plant chromosomes by plant protoplasts.-Planta, 1981, vol. 151, p. 141−145.
  233. Tempe J., Schell J. Is crown gall a natural instance of gene Transfer? In: Transla tion of natural and synthetic polynucleotides.:Poznan, Univ. of Agricult., 1977″ 416−420.
  234. Tempe J., Estrade 0., Petit A. The biological significance of opines. II. The conjugative activity of the Ti-plasmids of Agrobacterium tumefaciens.- In: Proc. 4th Int. Conf. on Plant Pathogenic Bacteria I.N.R.A., Angers, 1978, p.153−160.
  235. Tempe J., Goldman A. Occurence and biosynthesis of opines.-In: Mol. Biol. Plant Tumors. New York, Acad Press, 1982, p. 427−449.
  236. Thanutong P., Purusawa I., Yamamoto M. Resistant tobacco plants from protoplast-derived calluses selected for their resistance to Pseudomonas and Alternaria toxins.- Theor. and Appl. Genet., 1983″ vol. 66, p. 209−215.
  237. Thoma Thomas B.R., Pratt D. Isolation of paraquat-tolerant mutants from tomato cell cultures.- Theor. and Appl. Genet., 1982, vol. 63, p. 169−176.
  238. Thomashov M.F., Nutter R., Montoya A.L., Gordon M.P., Nester E.W. Integration and organization of Ti-plasmid sequences in crown gall tumors.- Cell, 1980a, vol.19, p.729−739.
  239. Thomashow M.F., Nutter R., Postle K., et al. Recombination between higher plant DNA and the Ti plasmid of Agrobacterium tumefaciens.- Proc. Natl. Acad. Sci., 1980 b, vol.77, p. 6448−6452.
  240. Uchimiya H., Harada H. Transfer of liposome-sequestring plasmid DNA into Daucus carota protoplasts.- Plant Physiol., 1981, vol. 68, p. 1027-Ю30.
  241. Umiel N. Streptomycin resistance in tobacco. III. A test on germinating seedling indicates cytoplasmic inheritance in the St-R 701 mutant.- Z.Pflanzenphysiol., 1979, 92,1. S. 295−301.
  242. Umiel N., Goldner R. Effects of streptomycin on diploid tobacco callus cultures and the isolation of resistant mutants.- Protoplasma, 1976, vol. 89, p. 83−89.
  243. Vasil V., Vasil I.E. Isolation and culture of cereal protoplasts. II. Embryogenesis and plantlet formation from protoplasts of Pennisectum americanum.- Theor. and Appl. Genet., 1980, vol. 56, p. 97−99.
  244. Vasil V., Vasil I.K. Somatic embryogenesis and plant regeneration from tissue cultures of Pennisectum americanum and P. americanum x P. purpureum hybrid.- Amer. J. Bot., 1981, vol. 68, p. 864−872.
  245. Vyskot В., Bezdek M., Karpfel Z. Induction and culture of Crown-gall tumors of haploid tobacco in vitro.- Biochem. und Physiol. Pflanz., 1976, vol. 170, S. 417−426.
  246. Vyskot В., Karpfel Z., Bezdek M. Hormonal control of 5-bromodeoxyuridine /BUdR/ tolerance in crown-gall tumors and habituated tissues.- Planta, 1977, vol.137, p.247−252.
  247. Wetter L.R., Kao K.N. Chromosome and isoenzyme studies on cells derived from protoplast fusion of Nicotiana glauca with Glycine max Nicotiana glauca cell hybrids.- Theor. and Appl. Genet., 1980, vol. 57, p. 273−276.
  248. White P.R., Braun A.C. A cancerous neoplasm of plants. Autonomous bacteria-free crown-gall tissue.- Cancer Res., 1942, vol. 2, p. 597−616.
  249. White D.W.R., Vasil I.K. Use of amino acid analogue-resistant cell lines for selection of Nicotiana sylvestris somatic cell hybrids.- Theor. and Appl.Genet., 1979, vol.55, p. 107−112.
  250. Widholm J.M. Tryptophan biosynthesis in Nicotiana tabacum a nd Daucus carota cell cultures: site of action of inhibitory tryptophan analogs.- Biochim. et Biophys. Acta, 1972 a, vol. 261, p. 44−51.
  251. Widholm J.M. Cultured Nicotiana tabacum cells with an altered anthranilate synthetase which is less sensitive to feedback inhibition.- Biochim. et Biophys. Acta, 1972 b, vol. 261, p. 52−58.
  252. Widholm J. Selection and characterization of amino acidanalog resistant plant cell cultures.- Crop Sci., 1977, vol. 17, p. 597−600.
  253. Widholm J.M. Selection and characterization of a Daucus carota L. cell line resistant to 4 amino acid analogous.-J. Exp. Bot., 1978, vol. 29, p. 1111−1116.
  254. Willecke K. Results and prospects of chromosomal gene transfer between cultured mammalian cells.- Theor. and Appl. Genet., 1978, vol. 52, p. 97−104.
  255. Willmitzer L., Beuckeleer M. De, Lemmers M., Van Montagu M., Schell J. DNA from Ti plasmid present in nucleus and absent from plastids of crown gall plant cells.- Nature, 1980, vol. 287, p. 359−361.
  256. Willmitzer L., Sanchez-Serranoi J., Buschfeld E., Schell J. ША from Agrobacterium rhizogenes is transferred to and expressed in axenic hairy root plant tissues.- Mol. and Gen. Genet., 1982, vol. 186, p. 16−22.
  257. Willmitzer L., Dhaese P., Schreider P.H., Schamalenbach W., Van Montagu M., Schell J. Size, location and polarity of T-DNA-encoded transcripts in octopine and nopaline tumors.-Cell, 1983, vol. 32, p. 1045−1056.
  258. Wullems G.J., Molendijk L., Schilperoort R.A. The expression of tumor markers in intraspecific somatic hybridsof normal and crown gall cells from Nicotiana tabacum.-Theor. and Appl. Genet., 1980, vol. 56, p. 203−208.
  259. Xianghui Li, Schieder 0. Utilization in vitro of D-lac-tose by B6S3 tumor cells of tobacco.- Plant Sci. Lett., 1981, vol. 21, p. 209−214.
  260. Yadav N.S., Postle K., Saiki R.K., Thomashow M.F., Chilton M.-D. T-DNA of a crown gall teratoma is covalently joined to host plant DNA.- Nature, 1980, vol.287,p.458−461.
  261. Zaenen I., Van Larebeke N., Teuchy H., Van Montagu M., Schell J. Supercoiled circular DMA in crown gall-inducing Agrobacterium strains.-J.Mol.Biol., 1974, vol.86, p.109−127.
  262. Zambryski P., Holsters M., Kruger K., Depicker A., Schell J. Van Montagu M., Goodman H.M. Tumor DNA structure inplant cells transformed by A.tumefaciens.- Science, 1980, vol. 209, p. 1385−1391.
  263. Zelcer A., Aviv D., Galun E. Interspecific transfer of cytoplasmic male sterility by fusion between protoplasts of normal Nicotiana sylvestris and X-irradiated protoplasts of male-sterile N.tabacum.- Z.Pflanzenphysiol., 1978, vol. 90, p. 397−407.
  264. Zenk M.N. Haploids in physiological and biochemical research.- In: Proc. Int. Symp. on haploids in higher plants.
  265. Guelph Univ., Guelph Press, 1974, p. 339−353. 318. Zimmermann U., Scheurich P. High frequency fusion of plant protoplasts by electric fields.- Planta, 1981, vol. 151, p. 26−32.ч
Заполнить форму текущей работой

На отлично!