Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Лектиновый ответ растений на действие низкой температуры и инфицирование микоплазмами

Диссертация: Лектиновый ответ растений на действие низкой температуры и инфицирование микоплазмами
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

При действии различных стресс-факторов биогенной и абиогенной природы изменяется гормональный статус растений в сторону повышения содержания стрессовых фитогормонов, в частности, абсцизовой кислоты (АБК). Ей отводится ключевая роль в индукции синтеза более десяти стрессовых белков. Показано, что накопление АЗП (агглютинина зародыша пшеницы) — наиболее хорошо исследованного растворимого лектина… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Синтез белка в условиях закаливания
    • 1. 2. Стрессовый гормон АБК и его роль в адаптации растений к низкой положительной температуре
    • 1. 3. Ответные реакции растений на биогенный стресс
    • 1. 4. Влияние микоплазменной инфекции на растения
    • 1. 5. Роль салициловой кислоты в реакциях патогенеза у растений
    • 1. 6. Лектины растений и их участие в процессах формирования устойчивости
  • ГЛАВА 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Объекты исследований
    • 2. 2. Схема опытов
    • 2. 3. Выделение растворимых лектинов
    • 2. 4. Выделение лектинов клеточной стенки
    • 2. 5. Определение гемагглютинирующей активности лектинов
    • 2. 6. Приготовление эритроцитов
    • 2. 7. Определение морозоустойчивости растений
    • 2. 8. Электрофоретическое разделение белков
    • 2. 9. Определение содержания хлорофилла
    • 2. 10. Другие измерения
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Сравнение лектиновой активности в проростках озимой пшеницы, контрастных по холодоустойчивости сортов
    • 3. 2. Изменения активности лектинов у разных сортов озимой

Лектиновый ответ растений на действие низкой температуры и инфицирование микоплазмами (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Повышение устойчивости сельскохозяйственных культур к болезням и другим неблагоприятным факторам является одной из важнейших проблем растениеводства.

В период роста и развития растения испытывают комплексное воздействие нескольких стресс-факторов (абиогенных и биогенных), напряжение которых непрерывно меняется. В последнее время появляются данные, свидетельствующие об участии лектинов в ответных реакциях растений на неблагоприятные условия внешней среды, в том числе на действие низких температур и инфицирование патогенами (Комарова и др., 2000; Хайруллин, 2001).

При действии различных стресс-факторов биогенной и абиогенной природы изменяется гормональный статус растений в сторону повышения содержания стрессовых фитогормонов, в частности, абсцизовой кислоты (АБК). Ей отводится ключевая роль в индукции синтеза более десяти стрессовых белков. Показано, что накопление АЗП (агглютинина зародыша пшеницы) — наиболее хорошо исследованного растворимого лектина пшеницы — также индуцируется этим фитогормоном (Cammue et al, 1989). Наряду с АБК регулятором содержания АЗП может выступать салициловая кислота (СК) (Шакирова, 2001), которая способна оказывать защитный эффект, индуцируя системную приобретенную устойчивость к различным патогенам в растениях.

Подавляющее большинство исследований, посвященных роли лектинов в патогенезе, проведено на организмах, обладающих клеточной стенкой, например, грибах.

Наш интерес к микоплазмам, с одной стороны, обусловлен уникальностью их структурной организации (отсутствием клеточной стенки), а с другой — вызван практической необходимостью (распространенностью фитомикоп лазмозов).

Расшифровка молекулярных ответов растительных клеток на действие абиогенных и биогенных стрессоров и установление роли лектинов в этих процессах могли бы помочь познанию механизмов развития устойчивости растений.

Цель и задачи исследования

Целью настоящей работы являлось выяснение влияния факторов абиогенной и биогенной природы на активность лектинов проростков озимой пшеницы.

Исходя из указанной цели, в задачу исследований входило:

• провести сравнительный анализ степени морозоустойчивости и активности растворимых лектинов и лектинов клеточной стенки у трех сортов озимой пшеницы Безостая 1, Мироновская 808, Альбидум 114, различающихся по морозостойкости;

• изучить влияние гипотермии на динамику лектиновой активности в листьях и корнях проростков озимой пшеницы у контрастных по холодоустойчивости сортов;

• определить влияние АБК на морозоустойчивость и активность растворимых и связанных с клеточной стенкой лектинов растений пшеницы, различающихся по степени морозостойкости;

• выявить особенности влияния микоплазменной инфекции {Acholeplasma laidlawii 118) на активность растворимых лектинов и лектинов клеточной стенки пшеницы Мироновская 808;

• изучить динамику активности лектинов при совместном действии гипотермии и инфицирования микоплазмами (Acholeplasma laidlawii 118)-,.

• выяснить особенности изменения активности лектинов при действии салициловой кислоты у здоровых и инфицированных микоплазмами (Acholeplasma laidlawii 118) растений пшеницы.

Научная новизна работы. Впервые обнаружены фазные изменения активности растворимых лектинов и лектинов клеточной стенки в процессе закаливания в листьях и корнях проростков озимой пшеницы трех сортов, различающихся по степени морозостойкости (Безостая 1, Мироновская 808, Альбидум 114).

Впервые прослежена динамика лектиновой активности корней и листьев проростков озимой пшеницы Мироновская 808 при инфицировании микоплазмами (Acholeplasma laidlawii 118). Обнаружены изменения лектиновой активности в процессе развития микоплазменной инфекции при действии гипотермии.

Впервые выявлено увеличение содержания полипептидов 18, 25, 48, 76 кДа, появление полипептидов 20 и 22 кДа и исчезновение полипептида 14 кДа в инфицированных микоплазмами проростках озимой пшеницы.

Впервые показан нивелирующий эффект салициловой кислоты на активность лектинов при инфицировании микоплазмами проростков озимой пшеницы.

Научно — практическая значимость работы. Выяснение механизма формирования иммунитета растений при действии низких температур представляет научный и практический интерес в связи с тем, что наш регион в зимнее время часто подвержен резким температурным перепадам, снижающим устойчивость растений к стрессорам. Результаты проведенного исследования ответных реакций при действии гипотермии и инфицирования микоплазмами вносят определенный вклад в развитие представлений об адаптации растений к различным стрессорам и могут служить основой для разработки приёмов повышения устойчивости растений озимой пшеницы к действию неблагоприятных факторов окружающей среды. Кроме того, результаты исследований могут быть использованы в учебном процессе при чтении курсов лекций по физиологии, биохимии и фитоиммунитету растений.

Апробация работы. Материалы диссертации доложены на.

Международном симпозиуме «Plant cytoskeleton: molecular keys for biotechnology» (Ялта, 1997), на 2-ой конференции «Progress in plant sciences from plant breeding to growth regulation «(Hungary, 1998), на II (X) съезде Русского ботанического общества «Проблемы ботаники на рубеже XX—XXI вв.еков» (Санкт-Петербург, 1998), на IV съезде физиологов растений России в Москве «Физиология растений — наука III тысячелетия» (Международная конференция) (Москва, 1999), на Н-ой республиканской конференции молодых ученых Татарстана «Молодые ученые — агропромышленному комплексу» (Казань, 2000), на VII молодежной конференции ботаников в Санкт-Петербурге (Санкт-Петербург, 2000), на школе-конференции «Горизонты физико-химической биологии» (Пущино, 2000), на Шестой международной конференции «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях» (Москва, 2001), на международном симпозиуме «Plant under environmental stress» (Москва, 2001), на семинаре лаборатории (2000) и итоговой научной конференции КИББ КНЦ РАН (2001).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 20 работ.

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 133 страницах и состоит из введения, обзора литературы, описания объектов и методов исследования, результатов исследования и их обсуждения, заключения и выводов. В работе представлены 8 таблиц и 27 рисунков.

Список литературы

включает 233 наименований, из них 133 иностранных.

ВЫВОДЫ.

1. Впервые обнаружена зависимость между активностью лектинов и степенью морозоустойчивости исследованных сортов озимой пшеницы.

2. Впервые показано, что изменения активности растворимых и связанных с клеточной стенкой лектинов в проростках озимой пшеницы при низкотемпературном закаливании и микоплазменной инфекции носят фазный характер. Совместное влияние микоплазменной инфекции и низких температур приводит к усилению их действия.

3. Впервые выявлены изменения в полипептидном спектре инфицированных микоплазмами проростков озимой пшеницы Мироновская 808, заключающиеся в образовании новых полипептидов 20 и 22 кД, повышении содержания полипептидов 18, 25, 48, 76 кД и исчезновении полипептида 14 кД.

4. Установлено, что для лектинов клеточной стенки характерна более быстрая реакция на холодовое воздействие по сравнению с растворимыми лектинами.

5. Обнаружено, что обработка абсцизовой кислотой повышает морозоустойчивость растений и активность лектинов, в большей степени у менее устойчивого сорта Безостая 1.

6. Салициловая кислота в листьях увеличивает активность растворимых лектинов в большей степени, чем активность лектинов клеточной стенки, что свидетельствует о различной чувствительности лектинов клетки к этому фитогормону. Впервые показан нивелирующий эффект салициловой кислоты на активность лектинов при инфицировании микоплазмами проростков озимой пшеницы.

7. Изменения активности лектинов при действии биотического (микоплазменная инфекция) и абиотических (низкие температуры, АБК и СК) факторов свидетельствуют об участии лектинов в неспецифических защитных реакциях растений.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Выяснение механизмов реализации устойчивости ценных сельскохозяйственных культур к неблагоприятным факторам окружающей среды является одной из важнейших проблем растениеводства. Реакция растений на неблагоприятные воздействия внешней среды направлена на адаптацию к ним. Как известно, адаптационный синдром представляет собой совокупность неспецифических защитных реакций растений на действие неблагоприятных факторов. Защитные реакции растений в ответ на действие стрессоров являются сложным, развивающимся в пространстве и времени в определенной последовательности, процессом. Одним из признаков, указывающих на вовлеченность соединений в формирование неспецифического адаптационного синдрома, является возрастание их активности и фазность этого изменения в ответ на действие стрессора.

Изучалось влияние абиогенных и биогенных факторов среды на активность лектинов проростков пшеницы. Исследования показали, что лектины в проростках, контрастных по холодоустойчивости сортов озимой пшеницы, обладали разной степенью активности. Обнаруженная нами фазность кривых, отражающих изменения активности лектинов, свидетельствует об их участии в формировании стрессового состояния или неспецифического адаптационного синдрома клеточной системы (Браун, Моженок, 1987).

Процесс адаптации растений условно разделяют на две основные стадии: стресс-реакцию и неспециализированную (долговременную) адаптацию, которые выполняют разные биологические задачи. Этап стресс-реакции — неспецифический ответ клеток — быстро формируется в ответ на действие стрессора и обеспечивает кратковременное выживание организма, а также индуцирует формирование более надежных специализированных механизмов адаптации. К числу таких неспецифических ответов клеток можно отнести изменения активности лектинов клеточных стенок. Физиологическая целесообразность высокой реактивности лектинов клеточных стенок может заключаться в том, что они, активируя гидролитические ферменты, вызывают расщепление полисахаридов, которые, как известно, являются регуляторными молекулами, участниками сигнальных систем, способными стимулировать защитные реакции растений. Растворимые лектины, по-видимому, можно отнести к стрессовым белкам с низкой индукцией синтеза, активность которых возрастает при достаточно длительной гипотермии.

В ответ на действие стрессоров, в том числе гипотермии, в растениях накапливаются стрессовые гормоны, в частности, АБК (Кравец, 1996; Четверикова, 1999), которая, как известно, является индуктором синтеза лектина пшеницы — АЗП (Cammue et al., 1989; Шакирова, 2001). В наших экспериментах под действием экзогенной АБК увеличивалась активность как растворимых лектинов, так и лектинов клеточных стенок.

Известно, что благодаря высокой специфичности к N-ацетилглюкозамину и олигомерам хитина АЗП способен связываться с клеточными структурами хиги н-со дер жат их патогенов, тормозя их рост и развитие (Mirelman et al., 1975). Узнавание и иммобилизация патогена с помощью лектинов, по-видимому, является одним из звеньев в формировании устойчивости к патогенам. Наши исследования показали, что лектины пшеницы (и растворимые, и лектины клеточных стенок) вовлекаются в ответные реакции растений на микоплазменную инфекцию.

По данным литературы в ответ на инфицирование микоплазмами в растениях включается классический механизм подавления патогенов, в частности, НАДФН — оксидазная система, участником которой является салициловая кислота (Чернов и др., 1996; Максютова, 1998). В наших исследованиях салициловая кислота индуцировала повышение активности лектинов. Эффект салициловой кислоты при действии микоплазм.

108 проявляется в поддержании активности лектинов на уровне близком к контрольному.

Есть основания предполагать, что растения не распознают специфику атакующего объекта (в данном случае отсутствие у микоплазм клеточной стенки) и отвечают комплексом неспецифических ответных реакций. Изменение активности лектинов, по-видимому, относится к числу таких неспецифических ответов клетки на действие стрессоров различной природы (низкие температуры, микоплазменные инфекции и др.). Число установленных неспецифических ответных реакций постоянно возрастает, и результаты наших исследований лектинового ответа растений на инфицирование микоплазмами и действие низких температур позволили дополнить этот список. По-видимому, пониженные температуры, как и другие стрессоры, могут существенно ослабить растения и сделать его более уязвимым к атакам патогенов. В ходе эволюции были отобраны формы растений, которые в ответ на действие абиогенных стрессоров могли повышать устойчивость и к патогенам. Неспецифические реакции стрессор-индуцированного образования антипатогенных белков (в том числе лектинов) способны повысить устойчивость ослабленных растений к патогенам.

Показать весь текст

Список литературы

  1. М.Х., Нуритдинова Х. В., Зельцер С. Ш., Адылова А. Н. Некоторые свойства лектинов хлопчатника в связи с вертициллезным вилтом // Докл. УзССР. 1987. № 1. С.56−58.
  2. A.M., Безрукова М. В., Шакирова Ф. М. Множественная гормональная регуляция содержания лектина в корнях проростков пшеницы // Физиология растений. 2001. Т.48. № 5. С.718−722.
  3. Г. П. Гормональная регуляция на ранних этапах роста клеток корня при действии низкой положительной температуры // Рост и устойчивость растений. Новосибирск: Наука, 1988. С.175−182.
  4. Л.П., Игнатов В. В. О роли агглютинина зародышей пшеницы в растительно-бактериальном взаимодействии: гипотеза и экспериментальные данные в её поддержку // Физиология растений. 2001. Т.47. № 3. С.427−433.
  5. А.Х., Гималов Ф. Р., Черемис А. В., Вахитов В. А. Экспрессия гена аланин-богатого белка капусты при различных условиях холодовой акклимации // Физиология растений. 1999. Т.46. № 4. С.605−609.
  6. Т.С., Заботина О. А., Заботин А. И. Влияние циклогексимида на синтез полисахаридов клеточной стенки и активность гликозидаз корней пшеницы при закаливании к морозу // Физиология растений. 1999. Т.46. № 4. С.633−638.1.l
  7. В.И., Гвоздяк Р. И., Скипаль И. Г., Краев В. Г., Элланская И. А., Зирка Т. И., Мудрас В. А. Микроорганизмы возбудители болезней растений. Киев: Наук, думка, 1988. 359с.
  8. Н.Н., Выскребенцева Э. И. Субмитохондриальное распределение лектиновой активности в осевых органах проростков комовых бобов разного возраста // Физиология растений. 1997. Т. 44. № 3. С.331−337.
  9. С.Н., Чернова О. А. Микоплазмы: молекулярная и клеточная биология, патогенность, диагностика. Л.:Наука, 1989. 156с.
  10. М.А., Клячко Н. Л., Трунова Т. Н., Кулаева О. Н. Влияние отрицательных температур на белоксинтезирующий аппарат закаленной к морозу озимой пшеницы // Физиология растений. 1987. Т.34. Вып.З. С.513−517.
  11. А.Н., Моженок Т. П. Неспецифический адаптационный синдром клеточной системы. Л: Наука, 1987. 230с.
  12. Э.А., Федина А. Б., Кулаева О. Н. Сравнительное изучение влияния салициловой кислоты и (2'-5')-олигоаденилатов на синтез белка в листьях табака при тепловом шоке // Физиология растений. 1999. Т.46. № 1. С. 16−22.
  13. Ю.И., Гените Л. П., Самсонова Л. А. Ахолеплазмы -патогены растений. Вильнюс, 1985. 76с.
  14. С.В., Макаренко О. А., Мусич В. Н., Левицкий А. П. Возможные механизмы активации пептигидролаз проростков озимой пшеницы при закаливании // Физиология растений. 1994. Т.41. № 4. С.552−557.
  15. В.К. Температурный стресс и митохондрии растений. Новосибирск: Наука, 1987. 135с.
  16. В.К. Реакция генома на температурный стресс // Рост и устойчивость растений, Новосибирск: Наука, 1988. С.154−163.
  17. В.К., Корытов М. В. Синтез стрессовых белков в проростках озимой пшеницы при закаливании к холоду // Физиология растений. 1991. Т.38. Вып.5. С.960−969.
  18. Э.И., Борисова Н. Н. Распределение лектиновой активности в митохондриях корнеплода сахарной свеклы: лектиновая активность мембран и матрикса митохондрий корнеплода сахарной свеклы// Физиология растений. 1996. Т.43. № 4. С.527−532.
  19. А.К. Температурный стресс: механизмы термоустойчивости, рост, развитие и продуктивность растений // С.-х. Биол. Сер. Биол. раст. 1996. С.3−19.
  20. У.М., Ямалеев A.M., Шакирова Ф. М., Трошина Н.Б, Яруллина Л. Г., Кудоярова Г. Р., Вахитов В. А., Селимов ФА. О механизме действия бисола-2 // Агрохимия. 1990. № 9. С. 121.
  21. Ю.Т. Молекулярно-генетические основы взаимоотношений растений с грибными и бактериальными инфекциями // Успехи совр. генетики. 1994. Т. 19. С.25−48.
  22. A.M. Срессовые белки растений: PR-белки // Физиология растений. 1991. Т.38. Вып.4. С.788−799.
  23. А.И. Лектины в вирусологии // Вопросы вирусологии. 1982. Т.27. № 2. С.132−137.
  24. А. И. Барышева Т.С., Заботина О. А., Ларская И. А., Лозовая В. В. Клеточная стенка растений и формирование гипотермического синдрома // Докл. РАН. 1995. Т.343. № 4. С.567−570.
  25. Илья щук Е.М., Лихолат Д. А. Влияние низкой температуры на содержание абсцизовой и индолилуксусной кислот в растениях озимой ияровой пшеницы на разных фазах развития // Физиол. и биох. культ, раст. 1989. Т.21. С.286−293.
  26. Г. Я. Микоплазмология новая отрасль микробиологии// Микробиол. журнал. 1981. С.393−404.
  27. Г. С., Нарлева Г. И., Боруах К. К., Трунова Т. И. Изменение состава и содержания полипептидов в процессе адаптации озимой пшеницы к низким отрицательным температурам // Физиол. и биох. культ, раст. 1991. Т.23. С.480−485.
  28. В.И., Коф Э.М., Власов П. В., Кислин Е. Н. Природный ингибитор роста абсцизовая кислота. М.:Наука, 1989. 184с.
  29. В.И., Бабишев В. А., Плотников В. К. Неспецифический прирост трансляционной активности in vitro полисом из проростков ячменя и пшеницы под действием стрессов // Физиология растений. 1991. Т.38. Вып.4. С. 730−735.
  30. К.В., Комарова Э. Н., Выскребенцева Э. И. Спорофитно-гаметофитные взаимодействия в системе пыльца пестик. 1. Лектины клеточных стенок// Физиология растений. 1999. Т.46. № 1. С.98−101.
  31. Л.В. Синтез и возможные функции белков растений при сверхчувствительной реакции // Физиология растений. 1991. Т.38. Вып.5. С.1005−1013.
  32. Ю.Е., Трунова Т. И. Особенности метаболизма и защитные функции углеводов растений в условиях стрессоров // Физиол. и биох. культ, раст. 1994. Т.24. С.523−533.
  33. Э.Н. Лектины апексов рудбекии и периллы в процессе перехода к цветению под воздействием фотопериодической индукции // Прикладная биохимия и микробиология. 1998. Т.34. № 1. С. 109−114.
  34. Э.Н., Выскребенцева Э. И., Трунова Т. И. Изменение лектиновой активности клеточных стенок этиолированных проростковозимой пшеницы в процессе закаливания к морозу // Докл. РАН. 1993. Т.329. № 5. С.680−682.
  35. Э.Н., Выскребенцева Э. И., Трунова Т. И. Лектины клеточных стенок различных органов проростков пшеницы при низкотемпертурном закаливании // Физиология растений. 1994. Т. 41. № 4. С. 500−503.
  36. Э.Н., Выскребенцева Э. И., Трунова Т. И. Изменение лектиновой активности меристемы узла кущения озимой пшеницы при закаливании к морозу // Физиология растений. 1995. Т.42. № 4. С.612−615.
  37. Э.Н., Трунова Т. И., Выскребенцева Э. И. Влияние циклогексимида на активность и углеводную специфичность лектинов клеточных стенок проростков озимой пшеницы при низкотемпературном закаливании // Докл. РАН. 1996. Т.351. № 5. С.692−694.
  38. Э.Н., Трунова Т. И., Выскребенцева Э. И. Динамика лектиновой активности клеточных стенок апексов озимой пшеницы на протяжении первых суток закаливания // Физиология растений. 1999. Т.46. № 1. С.159−163.
  39. Э.Н., Трунова Т. И., Выскребенцева Э. И. Изменение лектиновой активности некоторых субклеточных фракций меристемы узла кущения озимой пшеницы в первые сутки холодовой адаптации // Докл. РАН. 2000. Т.373. № 6. С.830−832.
  40. В.В., Семак Н. Н., Щеглов С. Ю. Взаимодействие лектина пшеницы со свободноживущими азотофиксирующими микроорганизмами // Докл. АН СССР. 1984. Т.274. № 3. С.751−754.
  41. B.C. Развитие представлений об адаптации растений к низким температурам // Физиол. и биох. культ, растений. 1996. Т.28. № 3. С.167−181.
  42. М.Е., Бабоша А. В. Физиолого-биохимическая природа вирусного патогенеза устойчивости и регуляции антиинфекционной активности // Физиология растений. 1996. Т.43. № 5. С.729−742.
  43. В.М. Лектины регуляторы метаболизма // Биотехнология. 1986. № 6. С.66−79
  44. В.М. Биотехнология лектинов // Биотехнология. 1989. Т.5. № 6. С.676−691.
  45. М.Д., Панасюк Е. Н., Луцик А. Д. Лектины. Львов: Вища школа, 1981. 156с.
  46. Н.В. Лектины в процессах межклеточного узнавания картофеля. Автореф. .дисс. докт. биол. наук. Москва, 1991. 55с.
  47. Н.В., Салькова Е. Г. Лектин углеводное взаимодействие во взаимоотношениях растение — патоген // Приют, биохимия и микробиология. 1988. T.XXIV. В.5. С.595−606.
  48. Н.Н. Белковый обмен растений при стрессе. Автореф. .дисс. докт. биол. наук. Москва, 1998. 38с.
  49. Е. Ю., Хавкин Э. Е. Лектины растений: предполагаемые функции// Физиология растений. 1983. Т.30. Вып.5. С.852−867.
  50. Л.В., Озерецковская О. Л., Кораблева Н. П. Биохимия иммунитета, покоя, старения растений. М: Наука, 1984. 264с.
  51. Н.У. Влияние метилжасмоновой, (9 Z) 12 гидрокси — 9-додеценовой и салициловой кислот на протеинкиназную активность и фосфорилирование белков растений. Автореф. .дисс. канд. биол. наук. Казань. 2000. 24с.
  52. В.Е., Галкин М. А., Котусов В. В. Влияние лектина пшеницы на азотофиксируютцую активность Azospirillum brasilense // Прикл. биохимия и микробиол. 1987. Т.23. № 4. С.389−391.
  53. В.М. Неспецифический адаптационный синдром биосистем и общие закономерности реактивности клеток. Казань: КГУ, 2000. 180с.
  54. Т.П., Колесниченко А. В., Войников В. К. Стрессовый белок 310 кД при гипотермиии влияет на энергетическую активность растительных митохондрий // Докл. РАН. 1996. Т.351. № 5. С.715−718.
  55. Е.М. Зимостойкость полиплоидных форм озимой пшеницы // Зимостойкость озимых хлебов и многолетних трав. Киев.: Наукова думка, 1976. С.18−24.
  56. Д.Ф., КолошаО.И. Физиология морозостойких сортов озимых культур. Киев: Изд-во Киев, ун-та, 1969. 259с.
  57. Ф.М. Озимая пшеница. М.: Колос, 1976. 350с.
  58. В.Н., Животков Л. А. Селекция мироновских сортов озимой пшеницы и первичное семеноводство // Мироновские пшеницы. М.: Колос, 1976. С. 19−98.
  59. Е.Г., Селиванкина С. Ю., Воскресенская Н. П. Влияние фитогормонов in vitro на активность протеиназы, связанной с тилакойдными мембранами// Докл. РАН. 1990. Т.313. № 4. С.1021−1023.
  60. Е.Г., Селиванкина С. Ю., Дроздова И. С., Воскресенская Н. П. Влияние синего и красного цвета на протеинкиназы, связанные с мембранами тилакойдов хлоропластов // Физиология растений. 1991. Т.38. № 1. С.45−54.
  61. Г. А. Гормоносвязывающие белки растений и проблема рецепции фитогормонов // Физиология растений. 1989. Т.36. Вып.1. С.166−169.
  62. .А., Ладыгина М. Е. Энергообмен и иммунитет растений// Физиологические проблемы иммунитета растений / Под ред. Рубина Б.А.
  63. Итоги науки и техники. Сер. Физиология растений. Т.2. М.: ВИНИТИ, 1976. С.41−84.
  64. В.Д. Программируемая клеточная смерть у растений // Соросовский образовательный журнал. 2001. Т.7. № 10. С. 12−17.
  65. И.Г., Онищенко А. Н., Алексеенко И. П., Малиновская Л. П., Россоха С. М. Ультраструктура растительных микоплазм и их взаимодействие с клетками специфичных хозяев // Микробиологический ж. 1978. Т.40. № 1. С.58−63.
  66. Н.Ф., Карасев Г. С., Трунова Т. И. АБК как фактор закаливания суспензионной культуры пшеницы к морозу // Физиология растений. 1994. Т.41. № 4. С. 546 -551.
  67. И.В., Боровский Г. Б., Войников В. К. Накопление термостабильных белков в проростках озимой пшеницы при гипотермии// Физиология растений. 1998. Т.45. № 6. С.859−864.
  68. В.П., Титов А. Ф., Боева Н. П. Изменение уровня эндогенной абсцизовой кислоты в листьях растений под влиянием холодовой и тепловой закалки // Физиология растений. 1991. Т.38. Вып.5. С.991−997.
  69. И.А. Биогенный стресс у растений // Казан, мед. ж. 1994. Т. 75. № 1. С.3−9.
  70. И.А., Максютова Н. Н., Яковлева В. Г., Чернов В. М. Микоплазма индуцированные и жасмонат — индуцированные белки растений гороха // Докл.РАН. 1996. Т.350. № 4. С.544−545.
  71. И.А., Максютова Н. Н., Яковлева В. Г. Влияние салициловой кислоты на синтез белков в проростках гороха // Физиология растений. 1996. Т.43. № 5. С. 667−670.
  72. И.А., Максютова Н. Н., Яковлева В. Г. Влияние жасмоновой, салициловой и абсцизовой кислот на включение 14С.лейцина в белки листьев гороха // Биохимия. 2001. Т.66. Вып.1. С.87−91.
  73. О.А., Хохлова Л. П., Таненкова Е. А., Токина Е. И., Олиневич О. В., Демахин И. Ф. Активность лектинов в связи с функционированием системы вторичных посредников при адаптации растений к низким температурам // Докл. РАН. 1996. Т.350. № 5. С.716−718.
  74. А.Ф., Критенко С. П. Роль транскрипционно -трансляционной системы в механизмах адаптации растений пшеницы к холоду и теплу // Биол. науки. 1985. Т.8. С.77−81.
  75. А.Ф., Шерудило Е. Г. Степень подавления процессов тепловой и холодовой адаптации растений ингибиторами синтеза РНК и белка при разных закаливающих температурах // Физиол. и биох. культ, раст. 1990. Т.22. С.384−388.
  76. А.Ф., Таланова В. В., Дроздов С. Н. Влияние специфических ингибиторов транскрипции и трансляции на холодовое и тепловое закаливание растений томата // Физиология растений. 1982. Т.29. Вып.4. С.790−793.
  77. Е.В., Соколова О. С., Володарский А. Д. Распределение лектинов по тканям стебля винограда // Физиология растений. 1992. Т.39. Вып.1. С.40−45.
  78. Н.И., Селиванкина С. Ю., Новикова Г. В. Действие фитогормонов на протеинкиназную активность плазматических мембран корневых клеток ячменя // Физиология растений. 1989. Т.36. Вып.5. С. 10 131 011.
  79. Т.И., Зверева Г. Н. Влияние ингибиторов белкового синтеза на морозостойкость пшеницы // Физиология растений. 1977. Т.24. Вып.2. С.395−401.
  80. И.И. Зимостойкость растений. Д.: Сельколхозгиз, 1931. 118с.
  81. И.И. Физиология закаливания и морозостойкость растений. М: Наука, 1979. 352с
  82. Т.Н. Лектиноподобные белки хлорофилл-белковых комплексов Dunaliella salina. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Москва, 1995. 24с.
  83. Фрей-Веслинг А., Мюлеталлер К. Ультраструктура растительной клетки. М.:Мир, 1968. 453с.
  84. P.M. Исследование роли лектина пшеницы в защитных реакциях растений при грибном патогенезе. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Уфа, 1994. 24 с.
  85. P.M. Роль анионных пероксидаз и агглютинина зародыша в реакциях пшеницы на грибную инфекцию. Автореф. дисс. докт. биол. наук. Уфа, 2001. 44 с,
  86. В.М. Морфофизиологические и молекулярные аспекты взаимодействия микоплазм (Acholeplasma laidlawii) и растений. Автореф. дисс. .докт. биол. наук. Москва, 1998. 46с.
  87. В.М., Чернова О. А., Тарчевский И.А.Феноменология микоплазменных инфекций растений // Физиология растений. 1996. Т.43. № 5. С.721−728.
  88. Е.П. Роль абсцизовой кислоты в морозоустойчивости растений и криоконсервации культур in vitro П Физиология растений. 1999. Т.46. № 5. С.823−829.
  89. Ф.М. Участие фитогормонов и лектина пшеницы в ответе растений на стрессовые воздействия. Автореф. дисс. .докт. биол. наук. Санкт-Петербург, 1999. 44с.
  90. Ф.М. Неспецифическая устойчивость растений к стрессовым факторам и её регуляция. Уфа: Гилем, 2001. 160с.
  91. Ф.М., Безрукова М. В. Индукция салициловой кислотой устойчивости пшеницы к засолению // Известия РАН. Сер. биол. 1997. № 2. С. 149−153.
  92. Ф.М., Безрукова М. В. Изменение уровня АБК и лектина в корнях проростков пшеницы под влиянием 24-эпибрассинолида и засоления // Физиология растений. 1998. Т.45. № 3. С.451−455.
  93. Ф.М., Безрукова М. В., Шаяхметов И. Ф. Влияние теплового стресса на динамику накопления АБК и лектина в культуре клеток пшеницы // Физиология растений. 1995. Т.42. № 5. С.700−702.
  94. Ф.М., Безрукова М. В., Хай ру длин P.M. Стимуляция увеличения уровня лектина в проростках пшеницы под влиянием солевого стресса // Известия РАН. Сер. биол. 1993. № 1. С.143−145.
  95. Anderson M.D., Prasad Т.К., Martin В.A., Stewart C.R. Differential gene expression in chilling acclimated maize seedling and evidence for the involvement of ABA in chilling tolerance // Plant Physiol. 1994. V.105. P.331−339.
  96. Antikainen M., Piliakaski S. Early development in R. NA, protein, and sugar levels during cold stress in winter rye (Secale cereale) leavels 11 Annals of Botany. 1994. V.74. P.335−341.
  97. Antoniw J.F., Write R.F. The effects of aspirin and polyacrylic acid on soluble leaf proteins and resistance to virus infection in five cultivars of tobacco//Phytopatol. Zeitschr. 1980. V.98. P.331−341.
  98. Arora R., Rowland L.J., Planta G.R. Chill-responsive dehydrins in blueberry: are they associated with cold hardiness or dormancy transitions?// Physiol. Plant. 1997. V.108. P.795−803.
  99. Askman P., Abromeit M., Sarnighausen E., Dorffling K. Formation of polypeptides related to frost tolerance in response to cold handening and abscisic acid treatment in winter wheat // Physiol. Plantarum. 1990. V.79. P.105.
  100. Bol J.F., Linthorst J.M. Plant pathogenesis related proteins induced by virus infection // Annu. Rev. Phytopathol. 1990. V. 28. P. 113−118.
  101. Bowles D.J. Defense related proteins in higher plants // Annu. Rev. Biochem. 1990. V.59. P.873−907.
  102. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding // Analysis Biochem. 1976. V.72. P.248−254.
  103. Bradley D., Kjellbom P., Lamb C. Elicitor and wound-induces oxidative cross — linking of a proline-rich plant cell wall protein: a novel, rapid defence response // Cell. 1992. V.92. N 1. P.21−30.
  104. Bradshaw-Rouse J .J., What ley M.H., Coplin D.L. Agglutination of Erwinia stewartii strains with a corn agglutinin: correlation with extracellular polysaccharide production and pathogenecity 11 Appl. Environmental Microbiol. 1981. V.42. P344−350.
  105. Brisson L.F., Tenhaken R., Lamb C. Function of oxidative cross-lincing of cell wall structural proteins in plant disease resistance // Plant Cell. 1994. V.6. N12. P.1703−1712.
  106. Cammue B.P.A., Broekaert W.F., Kellens J.T.C., Raikhel N.V., Peumans W.J. Stress-induced accumulation of wheat germ agglutinin and abscisic acid in roots of wheat seedlings // Plant Physiol. 1989. V.91. P.1432−1435.
  107. Cammue B.P.A., Raikhel N.V., Peumans W.J. Occiirense and synthesis of isolectins in different tissues of wheat // Biochem. Physiol. Pflanzen. 1988. V.183. N 5. P.379−387.
  108. Carr J.P., Klessig D.F. The pathogenesis related proteins of plan // Genetic Engineering: Principles and Methods / Eds. Setlow J.K. N.-Y.: Plenum Press, 1989. V.ll. P.65−109.
  109. Carrutu G., Colacino C., Ginmattasio M. Binding of hydrilases from wheat aleurone to concanavalin A and wheat-germ agglutinin-sepharose // Phytochemistry. 1985. Y.24. N4. P.683−688.
  110. Cativelli L., Bartels D. Molecular cloning and characterization of cold regulated genes in barley // Plant Physiol. 1990. V.93. P.1504−1510.
  111. Chadha K., Brown S.A. Biosynthesis of phenolic acid in tomato plants infected with Agrobacterhim tumefaci. es // Can. J. Bot. 1974. V.52. P.2041−2046.
  112. Chandler P.M., RobertsonM. ABA-regulated genes and cold tolerance// Ann. Rev. Plant Physiol. And Plant Mol. Biol. 1994. V.45. P. 113−114.
  113. Chapman K.S.R, Trewavas A., van Loon L.C. Regulation of the phosphorylation of chromatin-assoeiated proteins in Lemna and Hordeum // Plant Physiol. 1975. V. 55. N 2. P. 293−296.
  114. Chen H.H., Gusta V. Abscisic acid induced freezing resistance in cultured plant cells // Plant Physiol. 1983. V.73. P.71−75.
  115. Chen H.H., Li P.H. Biochemical changes in tuber bearing solanium species in relation to frost hardiness during cold acclimation // Plant Physiol. 1980. V.66. N3. P.414.
  116. Chen H.H., Li P.H. Potato cold acclimation // Plant cold hardiness and freezing stress mechanisms and inplications / Eds Li P.H., Sakai A.N.Y. London: Acad Press, 1981. V.2. P.5−22.
  117. Chen H.H., Li P.H., Brenner M.L. Involvement of abscisic acid in potato cold acclimation // Plant Physiol. 1983. V.71. P.362−365.
  118. Chen Z., Malamy J., Henning J., Contrath U., Sanehez-Casas P., Silva H., Rigliano J., Klessing D. Induction, modification and transduction of the salicylic acid signal in plant defense responses // Proc. Natl. Acad. USA. 1995. V.92.N 10. P.4134−4137.
  119. Chen Z., Silva H., Klessing D. Active oxygen species in the induction of plant systemic acquired resistance by salicylic acid // Sci. 1993. V.262. N 10. P.1883−1886.
  120. Chrispeels M.J., Raikhel N.V. Lectins, lectin genes and their role in plant defence // Plant Cell. 1991. V.3. P. 1−9.
  121. Close T.J. Dehydrins: Emergence of a biochemical role of a family of plant dehydration proteins // Physiol. Plant. 1996. V.97. P.795−803.
  122. Creelman R.A., Tierney M.L., Mullet j.E. Jasmonic acid/methyl jasmonate accumulate in wounded soybean hypocotyls and modulate wound gene expression // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1992. V. 89. N 11. P. 4938−4941.
  123. Daie J., Campell W.F. Response of tomato plants to stressful temperatures // Plant Phusiol. 1981. V.67. P.26−29.
  124. Dallaire S., Houde M., Gagne Y., Saini H.S., Boileau S., Chevrier N., Sarhan F. ABA and low temperature induced freezing tolerance via distinct regulatory pathways in wheat // Plant Cell Physiol. 1994. V.36. P. 1−4.
  125. Dangl J. L., Dietrich R.A., Richberg M.H. Death don’t have no mercury: cell death programs in plant-microbe interactions // Plant Cell. 1996. V.8. N 10. P.1793−1807.
  126. Delaney T.P., Uknes S., Vernooij В., Friedrich L., Weymann K., Negrotto D., Gaffney Т., Gut-Rella M., Kessmann H., Ward E., Ryals J. A central role of salicylic acid in plant disease resistance // Science. 1994. V.266. N 5188. P. 1247−1250.
  127. Dixon R.A., Palma N.L. Stress induced phenylpropanoid metabolism//Plant Cell. 1995. V.7. P.1085−1097.
  128. Doke N. NADP-H-dependent (^generation in membrane fraction isolated from wounded potato tubers inoculated with Phytophthora infestansH Phisiol. Plant Pathol. 1985. V.27. N 3. P.311−322.
  129. Du H., Klessing, D.F. Role for salicylic acid in the activaon of defence responses in catalase-deficient transgenic tobacca // Mol. Plant. Micr. Interation. 1997. V.10. P.922−925.
  130. Dybvig K., Voelker L. Molecular biology of mycoplasmas // Ann. Rev. Microbiol. 1996. V.50. P.25−57.
  131. Enyedi A.J., Yalpani N., Silverman P., Raskin I. Localization, conjugation and function of salicylic acid in tobacco during the hypersensitive reaction to tobacco mosaic vims // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1992. V.89. P.2480−2484.
  132. Gaffhey Т., Friedrich L., Vernooij В., Negrotto D. Requirement of salicylic acid for the induction of systemic acquired resistance // Sci. 1993. V.261. N 5122. P.754−756.
  133. Garas N.A., Kuc J. Potato lectin jyses zoospores of Phytophthora infestans and precipitates elicitors of terpenoid accumulation produced by the fungus // Physiol. Plant. Pathol. 1981. V.18. N 2. P.227−237.
  134. Gibson D.M., Stack S., Kell K., House J. A comparison of soybean agglutinin in cultivars resistant and susceptible to Phytophthora megasperma var. sojar (Race 1) // Plant Physiol. 1982. V.70. N 2. P.560−566.
  135. Gilmour S.J., Thomashow M.F. Cold acclimation and cold-regulated gene expression in ABA mutants of Arabidopsis thaliana // Plant Cell Physiol. 1991. V.17. N 1. P.1233−1240.
  136. Graham D., Patterson B.D. Response of plants to low non-freezing temperatures proteins, metabolism and acclimation // Annu. Rev. Physiol. 1982. V.33. P.347−372.
  137. Guy C. Cold acclimation and freezing stress tolerance: role of protein metabolism // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1990. V.41. P. 187−223.
  138. Guy C.Z., Haskell D. Induction of freezing tolerance in Spinach is associated with the synthesis of cold acclimation induced proteins // Plant Physiol. 1987. V.84. P.872−878.
  139. Hasen Т., Masuda J. Effect of lectins on auxinindused elongation and wall loosening in oat coleoptile and azuke bean epicotile segments // Plant Phisiology. 1987. V.71.P.1−8.
  140. Heimovaara-Dijkstra S., Wang M., Snaar-Jagalska E., Knetch M.L.V. Counteractive effects of ABA and GA3 on extracellular and intracellular pH and malate in barley aleurone // Plant Physiol.Biochem. 1996. Special issue. P. 194 195.
  141. Hincha D.K., Heber U., Schmitt J.M. Proteins from frost-hardy leavels protect thylakoids against mechanical freeze-thaw damage in vitro // Planta. 1990. V.180. P.416−419.
  142. Hon W-C., Griffith M., Chong P., Yang D.S.C. Extraction and isolation of antifreeze proteins from winter rye (Secale cereale L.) leaves // Plant Physiol. 1994. V.104. P.971−980.
  143. Hon W-C., Griffith M" Mlynarz A., Kwok Y.C., Yang D.S.C. Antifreeze proteins in winter rye are similar to pathogenesis related proteins // Plant Physiol. 1995. V.109. P.879−889.
  144. Hoyos M.E., Zhang S. Calcium-independent activation of salicylic acid-induced kinase and 40-kilodalton protein kinase by hyperosmotic stress // Plant Physiol. 2000. V.122. P. 1355−1363.
  145. Hsu F., Kleier D. Phloem mobility of xenobiotics. 3. Sensitivity of unified model to plant parameters and application to patented chemical hybridizing agent // Weed Sci. 1990. V.38. P.315−323.
  146. Ilket R., Breidenbach R.M., Lyons J.M. Sequence of ultrastructural changes in tomato cotyledons during short periods of chilling /'/' Low tempe-rature stress in crop plants. New York: Academic Press, 1979. P.94−125.
  147. Ivanov H.I., Haydarova G.A., Baranova K.N., Chernov V.M., Chernova O.A. Mycoplasmas appear to penetrate into plants through roots // 10M Lett. 1992. V.2.P.143.
  148. Janowiak F., Dorrffling K. Water and hormonal balances in maize seedlings under cool soil conditions // Proc. Int. Symp. «Cereal Adaptation to Low Temperature Stress» Martonvasar, Hungary, 1997. P.24−33.
  149. Jung J-L., Fritig В., Hahne G. Sunflower (Helianthus annuus L.) pathogenesis related proteins // Plant Physiol. 1993. V.101. N 3. P.873−880.
  150. Kasperska Palacz A., Dlugokecka E., Breitenwald J., Wcislinska B. Physiological mechanisms of frost tolerance: possible role of protein in plant adaptation to cold//Biol. Plantarum. 1977. V.19. P.10−17.
  151. Kauss H., Jeblick W. Pretreatment of parsley suspension cultures with salicylic acid enchaces spontaneous and elicited production of H202 // Plant Physiol. 1995. V.108.N3.P.1171−1178.
  152. Kazuoka Т., Oeda K. Purification and characterization of COR 85-oligomeric complex from cold-acclimated spinach // Plant Cell Physiol. 1994. V.35. P.601−611.
  153. Knetsch M.L.W., Wang M., Snaar-Jagalska B.E., Heimovaara-Dijkstra S. Abscisic acid induced mitogen-activated protein kinase activation in barley aleurone protoplasts // Plant Cell. 1996. V.8. N 6. P. 1061−1067.
  154. Koontz D.A., Choi J.H. Protein phosphorylation in carrot somatic embryos in response to abscisic acid // Plant Physiol. Biochem. 1993. V. 31. N 1. P. 95−102.
  155. Koike M., Takezawa D., Arakana K., Yoshida S. Accumulation of 19 kD plasma membrane polypeptide during induction of freezing tolerance in wheat suspension-cultured cells by abscisic acid // Plant Cell Physiol. 1997. V.38. P. 132 139.
  156. Laemmli N.K. Cleavage of the structural protein during the assembly of the head of the bacteriophage // Nature. 1970. V.227. N 5259. P.6S0−685.
  157. Lalk I., Dorffling K. Hardening, abscisic acid, proline and freezing resistance in two winter wheat varieties // Physiol. Plant. 1985. V.63. P.894−897.
  158. Lang V., Palva E.T. The expression of a rad-related gene, rab 18, is induced by abscisic acid during the cold acclimation process of Arabidopsis thaliana (L.) heynh // Plant and Mol. Biol. 1992. V.20. N 3. P.951−962.
  159. Leach J.E., Cantrell M.A., Sequerira L. Hydroxyproline-rich bacterial agglutinin from potato. Extraction, purification, and characterization // Plant Physiol. 1982. V.70. P.1353−1358.
  160. Lee S.P., Chen T.H.H. Molecular cloning of abscisic acid-responsive mRNAs expressed during the induction of freezing tolerance in bromegrass (Bromus inermis Leyss) suspension culture // Plant Physiol. 1993. V.101. N 1. P. l 089−1096.
  161. Levine A., Tenhaken R., Dixon R., Lamb С. H2O2 from the oxidative burst orchestrates the plant hypersensitive disease resistance response // Cell. 1994. V.79. N 4. P.583−593.
  162. Lord J.M. The structure and synthesis of plant lectins // New Phytol. 1985. V.101. C.351−366.
  163. Lyons J.M., Raison J.K., Steporkus P.L. The plant membrane in response to low temperature an overview // Low temperature stress in crop plant. New York: Academic Press, 1979. P. 1−24.
  164. Malamy J., Klessig D.F. Salicylic acid a likely endogenous signal in the resistance response of tobacco to viral infection // Science. 1992. V.250. P. 100 l-l 004.
  165. Mansfield M.A., Raikhel N.V. Abscisic acid enhances the transcription of whear-germ agglutinin mRNA without altering its tissue-specific expression//Planta. 1990. V.180. P.548−554.
  166. Marchesi V.T. Wheat germ (Triticum vulgaris) agglutinin // Methods in Enzymology. Ed. Ginsberg V. New York: Academic Press, 1972. V.28. Pt.B. P.354−356.
  167. Matsuoka M., Ohashi Y. Induction of pathogenesis related proteins in tobacco leaves // Plant Physiol. 1986. V. 80. N2. P.505−510.
  168. Melan M.A., Dong X., Endara M.E., Davis K.R., Ausubel F.M., Peterman Т.К. An Arabidopsis thaliana lipoxygenase gene can be induced by pathogens, abscisic acid, and methyl jasmonate // Plant Physiol. 1993. V. 101. N 2. P. 441−450.
  169. Mirelman D., Galun E., Sharon N., Lotan R. Inhibition of fungal growth by wheat germ agglutinin // Nature. 1975. V.256. N 5516. P.414.
  170. Mislikind M., Kieegstra K., Palevitz A. Distribution of wheat gert agglutinin in young wheat plants // Plant Physiol. 1980. V.66. N 5. P.950−955.
  171. Mishkind M., Raikhel N. V., Palevitz B.A., Kieegstra K. Immu-nocytochemical localization of wheat germ agglutinin in wheat // J. Cell Biol. 1982. V.92. N 3. P.753−764.
  172. Modderman P.W., Schoot C.P., Klis F.M., Wieringa-Brants D.H. Acquired resistance in hypersensitive tobacco against tobacco mosaic virus, induced by plant cell wall components // Phytopathol. 1985. V.113. N 2. P.165−170.
  173. Mohapatra S., Poole R.J., Dhindsa R.S. Changes in patterns and translatable messengers RNA population during cold acclimation of alfalfa // Plant Physiol. 1987. V.84. P. l 172−1176.
  174. Mohapatra S., Wofraim L., Poole R.J., Dhindsa R.S. Molecular cloning and relationship to freezing tolerance of cold-acclimation-specific genes of alfalfa//Plant Physiol. 1989. V.89. P.375−380.
  175. Muratova I. The effect of low temperature on hormones content in winter vegetative rye // Physiol. Plantarum. 1990. V.79. P. 106−107.
  176. Heimovaara-Dijkstra S., Wang M., Snaar-Jagalska E., Knetch M.L.V. Counteractive effects of ABA and GA3 on extracellular and intracellular pH and malate in barley aleurone // Plant Physiol.Biochem. 1996. Special issue. P. 194 195.
  177. Neven L.G., Haskell D.W., Qin-Bao Lli A.H., Guy G.L. Characterization of spinach gene responsive to low temperature and water stress // Plant and Mol. Biol. 1993. V.21. P.291−305.
  178. Nordin K., Vahala T., Palva T. Differential expression of two related, low temprature-induced genes in Arabidopsis thaliana (L) Heynh // Plant Cell. 1993. V.21. N2. P.641−653.
  179. Quatrano R.S., Bartels D., Ho T.-H.D., Pages M. New insights into ABA-mediated processes // Plant Cell. 1997. V. 9. N 4. P. 470−475.
  180. Penny P., Penny D. Rapid responses to phytohormones // Phyto-hormones and related compounds: a comprehensive treatise. Amsterdam: Elsevier, 1978. V.2.P.537.
  181. Perras M., Sarhan F. Synthesis of freezing tolerance proteins in leaves, crown and roots during cold acclimation of wheat // Plant Physiol. 1989. V.89. P.577−585.
  182. Peumans W.J. Biochemistry, Cell-Biology, Physiology, Biosynthesis and Function of Gramineae Lectins. Proefschrift.-Leuven: Katholike univ., Lab. Voor Pflatenbiochemie, 1984. 21 lp.
  183. Peumans W.J., Stinissen H.M., Carlier A. Lectin synthesis in developing and germinating wheat and rye embryos // Planta. 1982. V.156. N 1. P.41−44.
  184. Raikhel N.V., Mishkind M.L., Palevitz B. A. Characterization of a wheat germ agglutinin-like lectin from adult wheat plant // Planta. 1984. V.162. N 1. P.55−61.
  185. Raikhel N.V., Palevitz B.A., Haigler C.H. Abscisic acid control of lectin accumulation in wheat seedlings and callus cultures. Effect of exogenous ABA and fluridone // Plant Physiol. 1986. V.80. N 1. P.167−171.
  186. Raskin I. Role of salicylic acid in plant // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1992. V.43. P.439−463.
  187. Raskin J., Ehmann A., Mekander W.R., Meense D.J. Salicylic acid a natural inducer of heat production Arum lilies // Science. 1987. V.237. P.1601−1602.
  188. Robards A.W. Electron microscopy and plant ultrastructure. London: Plen. press., 1970. 298c.
  189. Ruffer M., Steip В., Zenk M.H. Evidence against specific binding of salicylic acid to plant catalase // FEBS Lett. 1995. V.377. P.175−180.
  190. Sakai A., Lareher W. Frost survival of plants // Responses and adaptation to stress. Berlin: Springer-Verlag, 1987. P.321.
  191. Sarhan F., Chevrier N. Regulation of RNA synthesis by DNA-dependent RNA polymerases and RNAses during cold acclimation n winter and spring wheat//Plant Physiol. 1985. V.78. P.250−255.
  192. Sarhan F., D’Aoust M.J. RNA synthesis in spring and winter wheat during cold acclimation // Physiol. Plantarum, 1975. P.62−65.
  193. Seskar M., Shulaev V., Raskin I. Endogenous methyl salicylate in pathogen-inoculated tobacco plant // Plant Physiol. 1998. V.116. P.387−392.
  194. Sequeira L. Mechanisms of induced resistance in plant // Ann. Rev. Microbiol. 1983. N 37. P.51−79.
  195. Sequeira L., Graham T.L. Agglutination of avirulent strains of Pseudomonas solanacearum 11 Physiol. Plant Pathol. 1977. V. l 1. N 1. P.43−54.
  196. Sieg F., Schroder W., Schmitt J., Hincha D.K. Purification and characterization of a cryoprotective protein (cryoprotectin) from the leaves of cold-acclimated cabbage // Plant Physiol. 1996. V. l 11. P.215−221.
  197. Siminovitch D., Clouter Y. Twenty four — hour induction of freezing and dought tolerance in plumules of winter rye seedlings by dessication stress at room temperature in the dark // Plant Physiol. 1982. V.69. N 1. P.250.
  198. Shulaev V., Leon J., Raskin I. Is salicylic acid a translocated signal of systemic acquired resistance in tabacco?// Plant Cell. 1995. V.7. P.1691−1701.
  199. Shulaev V., Silverman P., Raskin I. Airborne signalling by methyl salicylate in plants pathogen resistance // Nature. 1997. V.382. P.718−721.
  200. Sharon N., Lis H. Lectins as cell recognition molecules // Science. 1989. V.246. C.227−234.
  201. SkripaP I.G., Onischenko A.M., Gavrilko L.G. A model of interaction between cell of Mollicutes, the pathogen of plant yellows diseases, and damaged plant cell // Microbiologichny Zhurnal. 1994. V. 56. N 2. P. 17−24.
  202. Smith H. Recognition and defense in plants // Nature. 1978. V.273. N 5660. P.266−268.
  203. Spadoro-Tank J.P., Etzler M.E. Heat shock enhances the synthesis of a lectin-related protein in dolichos biflorus cell supension cultures // Plant Physiol. 1988. V.88. P.1131−1134.
  204. Tabary F., Balandreau J., Bourrillon R. Purification of the rice embryo lectin and its binding to nitrogen-fixing bacteria from the rhizosphere of rice // Biochem. andBiophys. Res. Com. 1984. V.119. N2. P.549−555.
  205. Tenhaken R., Levine A., Brisson L., Dixon R., Lamb C. Function of the oxidative burst in hypersensitive disease resistance // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V.92. N 10. P.4158−4163.
  206. Toyoda K., Miki K., Ychinose Y., Yamada Т., Shiraishi T. Plant lectins induce the production of a phytoalexm in Pusum sativum // Plant Cell Physiol. 1995. V.35. N 5. P.799−807.
  207. Trank Than Van K., Toubart P., Cousson A., Darville A.G., Collin D.Y., Chef P., Cubersheim P. Manipulation of the morphogenetic pathways of tobaco explants by oligosacharines // Nature. 1985. N 134. P.615−617.
  208. Uenuira M., Steponkus P.L. Parallel effects of freezing and osmotic stress on the ATPase activity and protein composition of the plasma membrane of winter rye seedlings // Plant Physiol. 1989. V.91. P.961−969.
  209. Van Loon L.C. Patogen related proteins // Plant. Mol. Biol. 1985. V.4. N 2. P. lll-116.
  210. Van Loon L.C. Induced resistance to pathogens in plants // Physiol. Plant. 1990. V.79. N 2. Pt.2. P. A100.
  211. Van Loon L.C., Antoniw J.F. Comparison of the effects of salicylic acid and ethephon with virus induced hypersensitivity and acquired resistance in tobacco //Neth. J. Plant. Patol. 1982. V.88. P.237−256.
  212. Veisz O., Galiba G., Sutka J. Effect of abscisic acid on the cold hardiness of wheat seedlings // Plant Physiol. 1996. V.149. P.439−443.
  213. Veluthambi K., Poovaiah B.W. In vitro and in vivo phosphorylation of Avena Sativa L. coleoptiles // Plant Physiol. 1986. V. 81. N. 3. P. 836−841.
  214. Vernooij В., Friedrich L., Morse A. Salicylic acid is not the translocated signal responsible for inducing systemic acquire resistance but is required in signal transduction // Plant Cell. 1994. V.6. P.959−965.
  215. Volger H., Haber U. Cryoprotective leaf proteins // Biochim. Biophys. Acta. 1975. V.412. N 2. P.335.
  216. Weber K., Ozborn M. The reliability of the molecular weight determination by dodecyl sulphate del electrophoresis // J. Biol. Chem. 1969. V.16. N 224. P.4406−4412.
  217. Weiser C.J. Cold resistance and injury in woody plants // Science. 1970. V.169. P.1269−1278.
  218. Weiser R., Wallner S.J., Waddell J.W. Cell wall and extensin mRNA changes during cold acclimation of pea seedlings // Plant Physiol. 1990. V.93. P.1021−1026.
  219. White R.F. Acetylsalycilc acid (aspirin) induses resistance to tobacco mosaic vims in tobacco // Virology. 1979. V.99. P.410−412.133
  220. Wismewski M., Close T.J., Art lip Т., Arora R. Seasonal patterns of denydrins and 70-kDa heat-shock proteins in bark tissues of eight species of wood plant//Physiol. Plant. 1996. V.96. P.496−505.
  221. Wu Y., Kuzuia J., Marechal E" Graeff R., Lere H.C., Foster R" Chua N.H. Abscisic acid signalling through cyclic ADP-ribose in plants // Science. 1997. V. 278. P. 2126−2130.
  222. Wolfraim L.A., Langris R., Tyson I.L., Dhindsa R.S. cDNA sequence, expression, and transcript stability of cold-acclimation specific gene, casl8, of Alfalfa (Medicagofalcata) cell // Plant Physiol. 1993. V.101. PI 275−1282.
  223. Yalpani N., Leon J., Lawton M.A., Raskin I. Pathway of salicylic acid biosynthesis in healthy and virus-inoculated tobacco // Plant Physiol. 1993. V.103. P.315−321.
  224. Yoshikawa ML, Yamauchi K., Masago H. De novo messenger RNA and protein synthesis are required for phytoalexin-mediated disease resistance in soybean hypocotyls // Plant Physiol. 1978. V.61. P.314−317.
  225. Yung J.-I., Fritig В., Hahne G. Sunflower (Helianthus annuus L.) patogenesis-relatedproteins //Plant. Physiol. 1993. V.101. P.873−880.
  226. Zhang S., Klessing D.F. The tobacco wounding-activated mitogen-activated protein kinase is encoded by SIPK // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. V.95. P.7225−7230.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!