Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Гистологическое и иммуногистохимическое исследование индивидуальной, половой и возрастной изменчивости сосудистых сплетений боковых желудочков головного мозга человека

Диссертация: Гистологическое и иммуногистохимическое исследование индивидуальной, половой и возрастной изменчивости сосудистых сплетений боковых желудочков головного мозга человека
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Сплетений—с—объемами—мозгаи—мозговыхжелудочков — Всеработы—по иннервации сосудистых сплетений выполнены с применением методов серебрения. Данные по экспрессии различных нейромаркеров отсутствуют. Недостаточно исследован состав стромы сосудистых сплетений — всеми авторами указывается, что строма состоит из коллагеновых волокон, но нет сведений относительно их типа. Довольно противоречивые… Читать ещё >

Содержание

  • I. ВВЕДЕНИЕ
    • 1. 1. Актуальность темы
    • 1. 2. Цели и задачи исследования
    • 1. 3. Положения, выносимые на защиту
    • 1. 4. Научная новизна
    • 1. 5. Научно-практическая значимость
  • II. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Сосудистые сплетения головного мозга человека. Строение и функции
    • 2. 2. Изменчивость мозга, мозговых желудочков и сосудистых сплетений
    • 2. 3. Возрастные изменения сосудистых сплетений
    • 2. 4. Соединительнотканная строма сосудистых сплетений. Коллагены
    • 2. 5. Конкременты сосудистых сплетений
    • 2. 6. Регуляция сосудистых сплетений

Гистологическое и иммуногистохимическое исследование индивидуальной, половой и возрастной изменчивости сосудистых сплетений боковых желудочков головного мозга человека (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

1.1.

АКТУАЛЬНОСТЬ ТЕМЫ

.

Изучение изменчивости сосудистых сплетений головного мозга является актуальной проблемой современной морфологии. Основной задачей в изучении морфофункциональных изменений сосудистых сплетений головного мозга человека является сопоставление событий, наблюдаемых с помощью прижизненной диагностической томографии, с морфологическими изменениями организации сосудистых сплетений на клеточном и молекулярном уровнях. Отсутствие адекватных представлений о структурных эквивалентах, выявляемых при помощи томографии изменений, не позволяет оценить масштабы и причины патологических процессов. Сосудистые сплетения секретируют 70−80% спинномозговой жидкости (ІоЬапБои, 2008). Динамика образования ликвора обладает значительно выраженной ИЗхМЄНЧИВОСТЬЮ, но при этом до сих пор неизвестно, существует ли пропорциональное изменение размеров сосудистых сплетений * с размерами головного мозга и желудочков (Цветанова, 1986; Акс^ап еґ аі., 2010). В случае если площадь поверхности, линейные размеры сосудистых сплетений изменяются непропорционально с объемами головного мозга? и желудочков, по всей вероятности, можно говорить о половозрастных отличиях в нарушении механизмов регуляции водно-солевого баланса головного мозга. Таким образом, представляется необходимым изучение половозрастных особенностей организации сосудистых сплетений и объемных соотношений головного мозга, желудочков и сосудистых сплетений.

Недостаточно изучен нервный аппарат сосудистых сплетений. У исследователей нет единого мнения об источниках иннервации, а также о функциях собственных нервов сосудистых сплетений. Необходимо отметить, что большинство работ по иннервации сосудистых сплетений выполнены с применением различных методов серебрения (Stohr, 1922; Clark, 1928; Schapiro, 1931; Bakay, 1941; Дарий, 2010) или гистохимических методов (Edvinsson et. al, 1973; Edvinson et al, 1974; Edvinsson et. all, 1975; Edvinsson et. al, 1978; Lindval, Owman, 1978; Lindval et al., 1978; Page et al. 1980; Lindval, Owman, 1981), т. е. практически отсутствуют сведения об экспрессии нейральных маркеров в ткани сосудистых сплетений. Кроме того, учитывая важную роль ферментов тучных клеток, как одного из факторов регуляции продукции ликвора, необходимо оценить степень половозрастной изменчивости распределения тучных клеток в ткани сосудистых сплетений.

Еще одним мало изученным вопросом морфологии сосудистых сплетений являются процессы конкрементогенеза. Несмотря на применение авторами различных методов исследования, на данный момент нет единого мнения о составе, источниках и причинах появления конкрементов в сосудистых сплетениях головного мозга человека. Также, несмотря на продолжительную историю изучения сосудистых сплетений, до сих пор нет сведений относительно распределения различных видов коллагена в &bdquo->их строме.

VI. выводы.

1. Установлено существование широкой индивидуальной изменчивости в организации желудочков и сосудистых сплетений головного мозга человека. В то время как по объемам мозга существуют четкие половые различия, по объемам желудочков и сосудистых сплетений половые различия выражены гораздо слабее. Возрастные различия по объемам желудочков и сосудистых сплетений являются недостоверными для мужской и женской групп.

2. Показано отсутствие четких половых и возрастных изменений в морфологической организации сосудистых сплетений боковых желудочков головного мозга человека. Обнаружена пролиферация клеток эпителия сосудистого сплетения, что дает основания предполагать существование процесса формирования ворсин в течение всей жизни.

3. Установлено, что строма сосудистых сплетений состоит из коллагена III типа. Коллаген I типа обнаруживается в клетках эпителия в виде гранул. Коллагены II и V типов выявлены на поверхности клеток эпителия в виде тяжей и гранул и не обнаруживаются в других структурах сплетения (в строме, базальных мембранах, в зоне плотных контактов). Эластин локализован в стенках артериол, а также в центре стромы тонких ворсин.

4. Установлено, что псаммомные тельца сосудистых сплетений состоят из виментина и фибрина, также в их состав входит цинк. Количество конкрементов в сосудистых сплетениях не демонстрирует четких признаков половой и возрастной изменчивости. Показано, что асферические конкременты состоят из коллагенов III и IV типов.

5. Показано отсутствие нервных волокон и окончаний в стенке сосудов и строме сосудистых сплетений головного мозга. В эпителиальных клетках сосудистого сплетения выявлена экспрессия ряда нейрональных маркеров, что подтверждает их нейроэктодермальное происхождение.

6. Показано, что тучные клетки распределены в сосудистых сплетениях неравномерно: большое количество тучных клеток наблюдается в области сосудистого клубка, причем в основном у женщин. Установлено отсутствие корреляции количества и степени дегрануляции тучных клеток с возрастом и с полом.

7. Показано, что сосудистое сплетение III желудочка и эпифиз образуют единую структуру. В строме обеих структур обнаружен коллаген III типапреальбумин, являющийся маркером эпителиальных клеток сосудистого сплетения, также выявляется в пинеалоцитах.

2.7.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Из обзора литературы видно, что морфофункциональная организация сосудистых сплетений изучена достаточно полно. Исследована организация желудочков головного мозга человека. Показано, что она обладает широкой индивидуальной изменчивостью. Изучены возрастные аспекты морфологического строения сосудистых сплетений головного мозга утолщение-соединительнотканного слоя-ворсин,-стенок-сосудов, возрастание — количества конкрементов, дегенерация эпителиального слоя ворсин.

Многими авторами исследована иннервация сосудистых сплетений, обнаружены холини адренергические нервные волокна, иннервирующие сосуды, собственные нервы сосудистых сплетений. Кроме того, в литературе описаны возможные способы гуморальной регуляции продукции цереброспинальной жидкости — посредством ферментов тучных клеток, вазоактивных веществ, секретируемых клетками эпителия сосудистого сплетения (вазоактивный интестинальный пептид, эндотелии-1, адреномедуллин и т. д.), аквапрориновых каналов и т. д.

При помощи гистохимического, иммуногистохимического, электронно-микроскопического методов, метода низкотемпературного сжигания исследован состав конкрементов сосудистых сплетений.

При помощи гистологических, гистохимических и иммуногистохимических методов изучены функции и распределение в сосудистых сплетениях тучных клеток.

В то же время многие вопросы организации сосудистых сплетений остались без внимания. Практически не изучено соотношение сосудистых.

———сплетений—с—объемами—мозгаи—мозговыхжелудочков — Всеработы—по иннервации сосудистых сплетений выполнены с применением методов серебрения. Данные по экспрессии различных нейромаркеров отсутствуют. Недостаточно исследован состав стромы сосудистых сплетений — всеми авторами указывается, что строма состоит из коллагеновых волокон, но нет сведений относительно их типа. Довольно противоречивые результаты получены по составу конкрементов сосудистых сплетений — часть авторов полагает, что конкременты представляют собой кальцификаты, другие утверждают, что они состоят преимущественно из коллагенов, пропитанных различными солями. Недостаточно изучены половые и возрастные особенности распределения тучных клеток в сосудистых сплетениях.

Приведенныеданныедемонстрируютнеобходимостьпроведения комплексных исследований половой и возрастной изменчивости морфологической организации сосудистых сплетений головного мозга человека.

III. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.

3.1. ХАРАКТЕРИСТИКА МАТЕРИАЛА.

Работа выполнена на аутопсийном материале сосудистых сплетений латеральных желудочков головного мозга 78 человек. Из них 65 человек составили основную группу (35 мужчин в возрасте от 30 до 94 лет и 30 женщин в возрасте от 44 до 96 лет), 8 человек в возрасте от 27 до 47 лет, погибшие от случайных причин, — контрольную группу. Материал был получен из коллекции лаборатории развития нервной системы ФГБУ «Научно-исследовательский институт морфологии человека» Российской Академии медицинских наук, ГКБ № 31 г. Москвы, судебно-медицинского морга № 1 г. Москвы, Рязанского областного бюро судебно-медицинской экспертизы и ФГБВОУ высшего профессионального образования Военно———-медицинская— Академия —имени — С. М.—Кирова— Министерства обороны.

Российской Федерации. При сборе материала учитывали пол, возраст, клинический диагноз и причину смерти. Также были использованы срезы сосудистых сплетений мозга трех плодов человека в возрасте 11 и 16 недель. Кроме того, в работе использованы сосудистые сплетения латеральных желудочков монгольской песчанки (фиксация в жидкости Буэна), кошки, собаки и осла.

Материал фиксировали в 10% кислом или нейтральном забуференном формалине, жидкости Буэна, жидкости Карнуа или спирт-формалином по методу Леннера (1 часть 40% формалина и 2 части 80% спирта). Сосудистые сплетения латеральных желудочков мозга человека вырезали целиком со стенкойжелудочка. Мозг песчанки фиксировали целиком, сосудистые сплетения кошки, собаки и осла забирали с кусочком мозга.

В работе также использованы материалы компьютерной и магнитно-резонансной томографии мозга 116 человек (61 мужчин в возрасте от 8 до 72 лет и 55 женщин в возрасте от 7 до 86 лет), предоставленные отделом МРТ Военно-медицинской академии им. С. М. Кирова г. Санкт-Петербурга.

3.2. МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

3.2.1. Методы гистологического исследования.

Были исследованы сосудистые сплетения боковых желудочков 78 человек. Гистологические препараты приготовлены для всех образцов сосудистых сплетений. Кусочки ткани обезвоживали в спиртах восходящей концентрации, диоксане или хлороформе и заливали в парафин. Готовили серийные срезы вдоль продольной оси органа и наклеивали на предметные стекла. Впоследствии срезы депарафинировали, гидратировали, проводили гистологическую окраску и заключали в бальзам. Для обзорных препаратов использовали метод окраски Маллори. Для выявления соединительной ткани срезы окраШивалй гематоксйлино" м, пикрофуксйнбм по методу Ван Гизона. Для выявления эластина использовалась окраска орсеином по методу Тенцера-Унна. Для выявления гиалина срезы окрашивали метиленовым зеленым, фуксином, оранжем G по методу Бионди и ядерным прочным красным, метиленовым синим, хромотропом по методу Ромейса. Для выявления фибрина применяли окраску молибденовым гематоксилином Маллори по методу Шуенинова. Для выявления кальция был применен гистохимический метод Грандиса и Маинини (Ромейс, 1948).

Для выявления элементов нервной ткани был применен метод импрегнации парафиновых срезов протеинатом серебра по методу Бодиана в модификации Баксиха с последующей импрегнацией хлорным золотом.

3.2.2. ИММУННОГИСТОХИМИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ.

Для проведения иммуногистохимических реакций срезы, наклеенные на адгезивные стекла Super Frost Plus фирмы Menzel, депарафинировали, гидратировали и обрабатывали 3% раствором перекиси водорода для блокировки эндогенной пероксидазы. В работе использовали антитела к элементам соединительной ткани (к коллагенам I-V типов, эластину), нейромаркеры (к нейрон-специфическому бета 3-тубулину, нейрон-специфической энолазе, нейрофиламентам, основному белку миелина, глиальному фибриллярному кислому белку, синапсину I, S-100 и тирозингидроксилазе), цитокератину 8+18 типа, циртокератину широкого спектра и виментину (для выявления промежуточных филаментов), а также к преальбумину (транстирретину), амилину, триптазе тучных клеток. Характеристика примененных в работе антител и условия проведения реакций указаны в таблице 2. В качестве вторых антител использовался набор Ultra Vision Detection System фирмы Thermo Scientific.

Негативным контролем служили реакции с заметой первых антител на раствор фосфатного буфера. Наилучшие результаты при проведении иммуногистохимических—реакций—были—-получены—-на—материале, — фиксированном кислым формалином. В эпителиальных клетках сосудистых сплетений, фиксированных нейтральным формалином, спирт-формалином по методу Леннера, жидкостью Буэна и особенно жидкостью Карнуа, проявлялась неспецифическая реакция со вторыми антителами. При этом на ткани мозга удовлетворительные результаты получались вне зависимости от способа фиксации (наилучшие результаты давала фиксация в жидкости Буэна и в жидкости Карнуа). Для предотвращения неспецифического окрашивания эпителия сосудистого сплетения при фиксации нейтральным формалином, спирт-формалином по методу Леннера, жидкостью Буэна и жидкостью Карнуа применяли длительную выдержку срезов в 3% перекиси &bdquo-водорода споследующим &bdquo-уменыиениемвремени инкубации с первыми антителами до 15−20 мин.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , Г. Г. Сосудистые сплетения головного мозга. (Морфология, функция, патология) // Нальчик. — 1962 — 144 с.
  2. Ф.Е. Возрастные изменения эпифиза. Анатомофизиологические особенности детского возраста // Сб. науч. тр. Москва. 1975-С. 45−47
  3. Т.М. Морфометрические параметры капилляров сосудистых сплетений головного мозга человека при старении // Морфологические ведомости. 2006 — № 1−2- С. 5−7
  4. Т.М. Морфофункциональная организация соединительной ткани ворсинок сосудистых сплетений головного мозга человека при старении // Морфологические ведомости. 2008 -№ 1−2- С. 11−13
  5. B.C. Статистика в вопросах и ответах: учебное пособие // М.: Изд-во Проспект. 2004 — 334 с.
  6. С.Е., Алексеева Н. Т. Морфометрические критерии индивидуальной изменчивости головного мозга // Сборник статей Всероссийской науч. конф. М. 2005 — С. 38−41
  7. И. Л. Сосудистые сплетения мозга при инфекционных заболеваниях // Горький, Издание Горьковского краевого изд-ва. 1936
  8. С. М. Глезер И.И. Мозг человека в цифрах и таблицах // Л. -1964- 472 с.
  9. Л.М. Дисгормональные гиперплазии молочных желез -особенности развития, дифференциальная диагностика // Радиология-практика. 2007 — № 3- С. 44−61
  10. В.Л. Секреторные механизмы и секреторные продукты тучных клеток // Морфология. 1999 — Т. 115- № 2- С. 72−79.
  11. H.H. Скорость мозгового кровотока и движение цереброспинальной жидкости. Экспериментальное исследованиеметодом меченых атомов // JI. 1959
  12. И.В., Кондратюк Р. Б., Кудряшов А. Г., Гулъков Ю. К., Малашкевич A.C., Сургай H.H. Особенности эпителиально-мезенхимальной трансформации в раках различной локализации и гистологического строения // Клиническая онкология. 2011 — № 4 (4) — С. 1−5
  13. A.A. Взаимоотношения тканевых структур в сосудистых сплетениях третьего и четвертого желудочка головного мозга. // Клінічна та экспериментальна патологія. 2010 — Т. IX- № 4 (34) — С. 27−31
  14. A.C., Карпиков A.B. Доброкачественная внутричерепная гипертензия // Рязань. 1976 — 106 с.
  15. В.Е. Курс лекций по элементарной биометрии для антропологов // Москва. 2007 — 253 с.
  16. Л.К., Карнейро Ж. Гистология. Учебное пособие. Атлас / Пер. с англ. под ред. B.JI. Быкова. М. 2009 — 571 с.
  17. М.Г. Иннервация сосудистых сплетений 3-го и 4-го желудочков головного мозга человека // Автореф. дис. на соиск. учен, спеп. канд. мед. наук. Владивосток. 1988 — 22 с.
  18. Е.В. Развитие сосудистых сплетений в боковых желудочках мозга // Архив анатомии. 1957 — Т. 34- № 2- С. 31−36.
  19. . Основы эмбриологии по Пэттену / Пер. с англ. М. 1983 -Т. 2- 389 с.
  20. ДЮ. Состояние мозговой гемодинамики при компенсированной сообщающейся гидроцефалии. Автореф. на соиск. уч. ст. к.м.н. Новосибирск. 2006
  21. А.И. Экстраклеточные включения в ткани сосудистого сплетения головного мозга человека (сканирующая электронная микроскопия псаммомных телец) // Журнал невропатологии ипсихиатрии им. Римского-Корсакова. 1988 — Т. 88- № 7- С. 21−25
  22. М.В. Тучные клетки и гепарин ключевые звенья в адаптивных и патологических процессах // Вестник РАМН. — 2010 — № 6- С. 49−54
  23. , Д.Э. Образование псаммомных телец в сосудистом сплетении головного мозга человека // Морфология. 1997 — Т. 111- № 2- С. 46−49
  24. Ю.А. Иммунокомпетентные клетки спинномозговой жидкости человека в норме и при заболеваниях нервной системы // Тбилиси. 1990- 190 с.
  25. Г. А. Курс патологогистологической техники // Л.: Медгиз. -1956−262 с.
  26. Н.Е., Василенко И. В. Роль эпителиально-мезенхимальной трансформации (ЭМТ) в патогенезе идиопатического фиброзирующего альвеолита (обычной интерстициальной пневмонии) // Патолопя. -2010. Т.7., № 1. — С. 80−83
  27. Никитенко JI. J1., Колесников С. И. Роль адреномедуллина в биологии эндотелиальной клетки // М.: ГЭОТAP-Медиа. 2007 — 156 с.
  28. Ноздрачев А.Д.,.Баранникова И. А, Батуев A.C. Общий курс физиологии человека и животных: В 2 кн. Кн. 1. Физиология нервной, мышечной и сенсорной систем: Учеб. для биол. и мед. спец. вузов // М.: Высш. шк., 1991−512 с.
  29. . М. Эмбриология человека. Пер. с англ. // М.: Медгиз. 1959 — 183 с.
  30. C.B. Атлас мозга человека // М. 2005 — 398 с.
  31. C.B., Негашева М. А. Практикум по анатомии мозга // М. -2005- 198 с.
  32. М.Р. Анатомия человека. Изд. 5 // М.: «Медицина». 2001 — Т. 2- 635 с.
  33. Л.Г., Зуммеров P.A., Яглов В. В. Тканевые базофилы сосудистых сплетений боковых желудочков головного мозга у человека и некоторых млекопитающих // Архив гистологии и эмбриологии. -1990-Т. 99- № 8- С. 44−47
  34. Л.Г. Гистофизиология сосудистых сплетений головного мозга у позвоночных в фило- и онтогенезе // Астрахань. 2001 — 159 с.
  35. Р.Д. Атлас анатомии человека, т З, М., «Медицина», 1974.
  36. Т.Ю., Савельев C.B., Титченко Л. И., Яковлева Н. И., Гришин В. Л. Пролапс гениталий следствие травматичных родов или генерализованной дисплазии соединительной ткани? // Акушерство и гинекология. — 2001 — № 4- С. 50−53
  37. Т.Ю., Савельев C.B., Буянова С.Н, Титченко Л. И. Гришин В.Л., Яковлева Н. И. Фенотипический симптомокомплекс дисплазии соединительной ткани у женщин// Клиническая медицина. 2003 — № 8- С. 42−28
  38. Турыгин В В., Бабик Т. М., Бояков A.A. Характеристика тучных клеток сосудистых сплетений желудочков головного мозга человека при старении // Морфология. 2004 — Т. 126- № 6- С. 61−62
  39. . Электронная микроскопия для начинающих пер. с англ. // М. 1975- 324 с.
  40. А.П. Спинномозговая жидкость // JI. 1932 — 339 с.
  41. А.П. Основы ликворологии // Л. — 1971 — 646 с.
  42. A.M. Эпифиз // М.: «Медицина». 1969 — 182 с.
  43. Е.М. Ликворология // Киев. 1986 — 370 с.
  44. М.Б. Некоторые экспериментальные данные об иннервации сосудистых сплетений боковых желудочков мозга // Журнал неврологии и психиатрии им. Корсакова. 1944 — Т. 13- № 6- С. 68−70
  45. Эйнштейн Э. Р Белки мозга и спинномозговой жидкости в норме и патологии: Пер. с англ. // М.: Мир. 1988 — 278 с.
  46. Akdogan I., Kiroglu К, Onur S., Karabulut N. The volume fraction of brain ventricles to total brain volume: a computed tomography stereological study //Folia Morphol. 2010 — Vol. 69- No. 4- PP: 193−200
  47. Albrecht U., Seulberger H., Schwarz H., Risau W. Correlation of blood-brain barrier function and HT7 protein distribution in chick brain circumventricular organs // Brain research. 1990 — Vol. 535- Is. 1- PP: 49−61
  48. Aleshire S.L., Bradley CH.A., Richardson L.D., Pari F.F. Localization of human prealbumin in choroid plexus epithelium // The Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 1983 -Vol. 31- No.5- PP: 608−612
  49. Altar C.A., Burton L.E., Bennet G. L., Dugich-Djordjevich M. Recombinant human nerve growth factor is biologicaly active and labels novel high-affinity binding sites in rat brain // Neurobiology. -1991 Vol. 88- PP: 281 285
  50. Antic S., Jovanovic I., Stefanovic N., Pavlovic S., Rancic G., Ugrenovic S. Morphology and histochemical characteristics human pineal gland acrevuli during the aging // Facta universitates, Series: Medicine and Biology. 2004 -Vol. 11- Is. 2- PP: 63−68
  51. Bargmann W. Uber die sog. Filamente der Epithelzellen des Plexus chorioideus // Zeitschrift fur Zellforschung. 1955 — Bd. 41- PP: 372—384
  52. Bargmann W., Katritsis E. Uber die sog. Filamente und das Pigment im Plexus chorioideus des Menschen // Zeitschrift fur Zellforschung. 1966 -Bd. 75- PP: 366—370,.
  53. Barron S.A., Jacobs L., Kinkel W.R. Changes in size of normal lateral ventricles during aging determined by computerized tomography // Neurology. 1976 — Vol. 26- № 11- PP: 1011
  54. Benedict M. Ueber die Innervation des Plexus chorioideus inferior // Virchows Archiv. 1873 — Vol. 59- num. 3−4- PP: 395−400
  55. Bergendorff A., Uvnas B. Storage properties of rat mast cell granules in vitro //Acta physiol. scand. 1973 — Vol. 87- PP: 213−222
  56. Biondi G. Ein neuer histologischer Befund am Epithel des Plexus ehorioideus // Zeitschrift fur die gesamte Neurologie und Psychiatrie. 1932 -Vol. 144- PP: 161−165
  57. Biondi G. Zur Histopathologic des menschlichen Plexus chorioideus und des Ependyms // European Archives of Psychiatry and Clinical Neuroscience. -1934-Vol. 101- Num. 1-PP: 666−728
  58. Bohl J., Steinmetz H., Storkel S. Age-related accumulation of congophilic fibrillar inclusions in endocrine cells // Virchows Archiv A Pathol Anat. -1991 Vol. 419- PP: 51−58
  59. Bon S., Massoulie J. Collagen-tailed and hydrophobic components of acetylcholinesterase in Torpedo marmorata electric organ // PNAS. 1980 -Vol. 77- No. 8- PP: 4464−4468
  60. Brandan E., Maldonado M., Garrido J., Inestrosa N.C. Anchorage of Collagen-tailed Acetylcholinesterase to the Extracellular Matrix Is Mediated by Heparan Sulfate Proteoglycans // The Journal of Cell Biology. 1985 — Vol. 101- PP: 985−992
  61. Breemen V. L van, Clemente C.D., Silver deposition in the central nervous system and the hematoencephalic barrier studied with the electron microscope // J. Biophysic. And biochem. Cytology. 1955 — Vol 1- No. 2- PP: 161−166
  62. Bulens C, Meerwaldt J.D., Koudstaal P.J., Van der Wildt G.J. Spatial contrast sensitivity in begin intracranial hypertension. Journal of Neurology, Neurosurgery and Psychiatry. 1988 — Vol. 51- Is. 10- PP: 1323−1329
  63. Chodobski A., Szmydynger-Chodobska J. Choroid plexus: target for polypeptides and site of their synthesis I I Microsc. Res. Tech. 2001 — Vol. 52- PP: 65−82.
  64. Clark S.L. Nerve endings in the chorioid plexus of the fourth ventricle // The Journal of comparative neurology. 1928 — Vol. 47- No. 1- PP: 1−21
  65. Crook R.B., Farber M.B., Prusiner S.B. H2 Histamine Receptors on the Epithelial Cells of Choroid Plexus // Journal of Neurochemistry. 1986 -Vol.46- Is. 2- PP: 489−493.
  66. Crook R.B., Prusiner S.B. Vasoactive intestinal peptide stimulates cyclic AMP metabolism in choroid plexus epithelial cells // Brain Research. 1986 -Vol.384- Is. 1- PP: 138−144
  67. Dantzer R. Cytokine-induced sickness behavior: mechanisms and ilmplications // Annals of the New York Academy of Sciences. 2001 — Vol. 933- PP: 222−224
  68. Davson H., Segal M. B., the effects of some inhibitors and accelerators of sodium transport on the turnover of 22NA in the cerebrospinal fluid and the brain//J. Physiol. 1970 — Vol. 209- PP: 131−153
  69. Dedhar Sh., Ruoslahti E., Pierschbacher M. D., A Cell Surface Receptor Complex for Collagen Type I Recognizes the Arg-Gly-Asp Sequence // The Journal of Cell Biology. 1987 — Vol. 104- PP: 585−593
  70. Del Bigio M.R. Ependymal cells: biology and pathology // Acta Neuropathologica. 2009 — Vol. 119- Num. 1- PP: 55−73
  71. Dickson Ph.W., AldredA.R., Marley Ph.D., Bannister D., Schreiber G. Rat Choroid Plexus Specializes in the Synthesis and the Secretion of Transthyretin (Prealbumin) // The Journal of biological chemistry. 1986 -Vol. 261- No. 8- Is. 15- PP: 3475−3478
  72. Dohrmann G.J. The choroid plexus: a historical review // Brain Research. -1970 Vol. 18- Is. 2- PP: 197−218
  73. Dohrmann G.J. Bucy PC. Human choroid plexus: a light and electron microscopic study // Journal of Neurology. 1970 — Vol. 33- PP: 506−516
  74. Duval N., Krejci E., Grassi J., Coussen F., Massoulie J., Bon S. Molecular architecture of acetylcholinesterase collagen-tailed forms- construction of a glycolipid-tailed tetramer // The EMBO Journal. 1992 — Vol. 11- № 9- PP: 3255−3261
  75. Edvinsson L., Nielsen K.C., Owman C., Cholinergic innervation of choroid plexus in rabbits and cats // Brain Research. 1973 — Vol. 63- PP: 500−503
  76. Edvinsson L., Nielsen K. C., Owman Ch, West K. A., Adrenergic innervation of the mammalian choroid plexus // American Journal of Anatomy. 1974 -Vol. 139- Is. 3-PP: 299−307
  77. Edvinsson L., Aubineau P., Owman C., Sercombe R., Seylaz J. Sympathetic innervation of cerebral arteries: prejunctional supersensitivity to norepinephrine after sympathectomy or cocaine treatment // Stroke. 1975 -Vol. 6- PP: 525−530
  78. Edvinsson L., Lindval M., Autonomic vascular innervation and vasomotor reactivity in the choroid plexus // Experimental Neurology. 1978 — Vol. 62- Is. 2- PP: 394−404
  79. Edvinsson L., Rosendal-Helgesen S., Uddman R., Substance P: Localization, concentration and release in cerebral arteries, choroid plexus and dura mater // Cell and Tissue Research. 1983 — Vol. 234- No. 1- PP: 1−7
  80. Engelhardt B., Sorokin L. The blood-brain and the blood-cerebrospinal fluid barriers: function and dysfunction // Semin Immunopathology. 2009 — Vol. 31- PP: 497−511
  81. Eriksson L., Westermark P. Intracellular neurofibrillary tangle-like aggregations. A 1986 constantly present amyloid alteration in the aging choroid plexus // Am J Pathol. 1986 — Vol. 125- Num. 1- PP: 124−129
  82. Faraci F.M., Mayhan W.G., Farrell W.J., HeistadD. D., Humoral Regulation of Blood Flow to Choroid Plexus: Role of Arginine Vasopressin // Circulation Research. 1988 — Vol. 63- No 2- PP: 373−379
  83. Faraci F.M., Mayhan W.G., Heistad D. D., Effect of serotonin on blood flow to the choroid plexus // Brain research. 1989 — Vol. 478- PP: 121−126
  84. Filiano A.J., Tucholski J., Dolan P.J., Colak G., Johnson G. V. Transglutaminase 2 protects against ischemic stroke // Neurobiol Dis. 2010 -Vol. 39, Is. 3- PP: 334−343
  85. Fisone G., Snyder G.L., Fryckstedt J., Caplan M.J., Aperia A., Greengard P. Na+, K±ATPase in the choroid plexus. Regulation by serotonin/protein kinase c pathway // The Journal of Biological Chemistry. 1995 — Vol. 270- PP: 2427−2430
  86. Fleischmann O. Die Beziehungen zwischen dem Liquor cerebrospinalis und den Plexus chorioidei II Zeitschrift fur die gesamte Neurologie und Psychiatrie. 1920 — Vol. 59- Num. 1- PP: 305−321
  87. Fuchs E" Weber K. INTERMEDIATE FILAMENTS: Structure, Dynamics, Function, and Disease II Annu. Rev. Biochem. 1994. — Vol. 63- P. 345−382
  88. Gelse K., Poschl E., Aigner T. Collagens—structure, function, and biosynthesis II Advanced Drug Delivery Reviews. 2003 — Vol. 55- PP: 1531−1546
  89. Ghersi-Egea J. F., Leninger-Muller B., Suleman G., Siest G., Minn A. Localization of Drug-Metabolizing Enzyme Activities to Blood-Brain Interfaces and Circumventricular Organs // Journal of histochemistry. 1994 — Vol. 62- Is. 3-PP: 1089−1096
  90. Giese A., Laube B., Zapf S., Mangold U., Westphal M. Glioma cell adhesion and migration on human brain sections // Anticancer Research. 1998 -Vol. 18- Is. 4A- PP: 2435−2447
  91. Gomori J. M., Steiner I., Melamed E., Cooper G. The assessment of changes in brain volume using combined linear measurements. A CT-scan study // Neuroradiology. 1984 — Vol. 26- PP: 21−24
  92. Gyldensted C., Kosteljanetz M. Measurements of the Normal Ventricular System with Computer Tomography of the Brain. A Preliminary Study on 44 Adults //Neuroradiology. 1976 — Vol. 10- PP: 205−213
  93. Harbut R.E., Johanson C.E., Third ventricle choroid plexus function and its response to acute perturbation in plasma chemistry // Brain Research. -1985 Vol. 374- PP: 137−146.
  94. Hassler O. Intracranial calcifications. A microradiological and biophysical study // Acta Neuropathologica. 1965 — Vol. 4- PP: 355−369
  95. Haug G. Age and sex dependence of the size of normal ventricles on computed tomography // Neuroradiology. 1977 — Vol. 14- PP: 201−204
  96. Hendry E.B., The Osmotic Pressure and Chemical Composition of Human Body Fluids // Clinical Chemistry. 1962 — Vol. 8- No. 3- PP: 246 265
  97. Ho/man P., Hoyng Ph., vanderWerf F., Vrensen G.F. J.M., Schlingemann R.O., Lack of Blood-Brain Barrier Properties in Microvessels of the Prelaminar Optic Nerve Head // IOVS. 2001 — Vol. 42- No. 5- PP: 895 905
  98. Hofman P., Blaauwgeers H.G.T., Vrensen G.F.J.M., Schlingemann R.O., Role of VEGF-A in endothelial phenotipic shift in human diabetic retinopathy and VEGF-A-induced retinopathy in monkeys // Ophtalmic research. 2001. — Vol. 33- num. 3- PP: 156−162
  99. Iwaki T., Kume-Iwaki A., Goldman J.E. Cellular distribution of aB-Crystallin in non-lenticular tissues // The Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 1990 — Vol. 38- No. l- PP: 31−39
  100. Jiang M.H., Eriksson L., Olsson Y. Immunohistochemical evidence of endothelin-1 in human choroid plexus // Acta Neuropathol. 1992 — Vol. 84- PP: 457−460
  101. Johanson C.E. Choroid plexus-cerebrospinal fluid circulatory dynamics: impact on brain growth, metabolism, and repair // Neuroscience in Medicine. 2008 — PP: 173−200
  102. Johanson C.E., Duncan J.A., Klinge P.M., Brinker Th., Stopa E.G., Silverberg G.D., Multiplicity of cerebrospinal fluid functions: New chalenges in health and disease // Cerebrospinal Fluid Research. 2008 — Vol. 5- № 10- PP: 1−32
  103. Kadel K.A., Heistad D.D., Faraci F.M. Effects of endothelin on blood vessels of the brain and choroid plexus // Brain Res. 1990 — Vol. 518- PP: 78−82
  104. Kasper M., Perry G., Stosiek P. Cytokeratin expression in human spinal meninges and ependymal cells // J Hirnforsch. 1991 — Vol. 32. Is. 1- PP: 19−25
  105. Katsumoto T., Mitsushima A., Kurimura T. The role of the vimentin intermediate filaments in rat 3Y1 cells elucidated by immunoelectronmicroscopy and computer-graphic reconstruction // Biol Cell. 1990 — Vol. 68- P. 139−146
  106. Kiernan J.A. A comparative survey of the mast cells of the mammalian brain // Journal of Anatomy. 1975 — Vol. 121- Is. 2- PP: 303−311
  107. Kiernan J.A. Vascular permeability in the peripheral autonomic and somatic nervous systems: controversial aspects and comparisons with the blood-brain barrier // Microscopy Research and Technique. 1996 — Vol. 35- Is. 2- PP: 122−136
  108. Kiktenko A.L., Biondi bodies in the choroid plexus epithelium of the human brain. A scanning electron-microscopic study // Cell Tissue Res. -1986 Vol. 244- PP: 239−240
  109. Kitada M., Chakrabortty Sk, Matsumoto N., Taketomi M, Ide Ch. Differentiation of choroid plexus ependymal cells into astrocytes after grafting into the pre-lesioned spinal cord in mice // Glia. 2001 — Vol. 36- Is. 3- PP: 364−374
  110. Kodaka T., Mori R., Debari K, Yamada M. Scanning electron microscopy and electron probe microanalysis studies of human pineal concretions // Journal Electron Mlcrosc. 1994 — Vol. 43- PP: 307−317
  111. Krejci E., Thomine S., Boschetti N., Legay C., Sketelj J., Massoulie J. The Mammalian Gene of Acetylcholinesterase-associated Collagen // The Journal of Biological Chemistry. 1997 — Vol. 272- No. 36- Is. 5- PP: 22 840−22 847
  112. Krstic R. A combined scanning and transmission electron microscopic study and electron probe microanalysis of human pineal acervuli // Cell Tiss. Res. 1976 — Vol. 174- PP: 129−137
  113. Last R.L., Tompsett, D. H. Casts of the cerebral ventricles. British Journal of Surgery. 1953 — Vol. 40- PP: 525−543
  114. Leader M., Collins M., Patel J., Henry K. Vimentin: an evaluation of its role as a tumour marker // Histopathology. 1987 — Vol. 11- P. 63−72
  115. Lindwal M., Edvinsson L., Chvman C. Sympathetic Nervous Control of Cerebrospinal Fluid Production from the Choroid Plexus // Science. -1978 Vol. 201- №. 4351- PP: 176−178
  116. Lindval M., Owman Ch., Early development of noradrenaline-containing sympathetic nerves in the choroid plexus system of the rabbit // Cell and Tissue Research. 1978 — Vol. 192- PP: 195−203
  117. Lindval M., Chvman Ch., Autonomic nerves in the mammalian choroid plexus and their influence on the formation of cerebrospinal fluid // Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 1981 — Vol. 1- PP: 245−266
  118. Linsenmayer T.F., Hendrix M.J. Monoclonal antibodies to connective tissue macromolecules: type II collagen // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1980 — Vol. 92, PP: 440−446
  119. Liu X., Wu H., Byrne M., Krane S., Jaenisch R., Type III collagen is crucial for collagen I fibrillogenesis and for normal cardiovascular development//PNAS. 1997 — Vol. 94- no. 5- PP: 1852−1856
  120. Lopez-Munoz F., Calvo J.L., Boya J., Carbonell A.L. Coexpression of vimentin and glial fibrillary acidic protein in glial cells of the adult rat pineal gland // J. Pineal Res. 1992 — Vol. 12- PP: 145−148.
  121. Lopez-Munoz F., Boya J., Calvo J.L., Marin F. Immunohistochemical localization of glial fibrillary acidic protein (GFAP) in rat pineal stal k astrocytes // Histology and Histopathology. 1992 — Vol. 7- PP: 643−646
  122. Ma W. Ch, Schaltenbrand G., Cheng L. Zur Pathophysiologie des Plexus chorioideus // Journal of Neurology. 1931 — Vol. 117- Num. 1- PP: 570−584
  123. Mabie C.P., Wallace B.M. Optical, physical and chemical properties of pineal gland calcifications // Calc. Tiss. Res. 1974 — Vol. 16- PP: 59−71
  124. Macpherson P., Matheson M.S. Comparison of calcification of pineal, habenular commissure and choroid plexus on plain films and computed tomography // Neuroradiology. 1979 — Vol. 18- Num 2- PP: 67−72
  125. Maier H.J. Wirth T. Beug H. Epithelial-Mesenchymal Transition in
  126. Pancreatic Carcinoma // Cancers. 2010 — Vol. 2- P. 2058−2083
  127. Markaryan A., Nelson E.G., Tretiakova M., Hinojosa R. Technical report: immunofluorescence and TUNEL staining of celloidin embedded human temporal bone tissues // Hear Res. 2008 — Vol. 241, Is. 1−2, PP: 1−6
  128. Maslinska D., Laure-Kamionowska M., Derqgowski K, Maslinski S. Association of mast cells with calcification in the human pineal gland // Folia Neuropathol. 2010 — Vol. 48- № 4- PP: 276−282
  129. Mayne R., Burgeson R.E. Structure and function of collagen types // Academic Press Inc., Orlando, FL. 1987 — 311 p.
  130. McCance R.A., The effect of salt deficiency in man on the volume of the extracellular fluids, and on the composition of sweat, saliva, gastric juice and cerebrospinal fluid // J. Physiol. -1938 Vol. 92- PP: 208−218
  131. McGranahan T.M., Plazlaff N.E., Grady S.R., Heinemann S.F., Booker T.K. a4?2 nicotinic acetylcholine receptors on dopaminergic neurons mediate nicotine reward and anxiety relief // J Neurosci. 2011 Vol. 31, Is. 30, PP: 10 891−10 902
  132. McKinley M.J., Clarke I.J., Oldfield B.J. Circumventricular Organs, The Human Nervous System // Elsevier. 2004 — PP: 562−591
  133. Melnick M., Mocarski E.S., Abichaker G., Huang J., Jaskoll T. Cytomegalovirus-inducsd embryopathology: mouse submandibular salivary gland epithelial-mesenchymal ontogeny as a model // BMC Dev Biol. 2006 -Vol. 7, PP: 42−65
  134. Michotte Y., Lowenthal A., Knaepen L., Collard M., Massart D. L. A morphological and chemical study of calcification of the pineal gland // J. Neurol. 1977 — Vol. 215- PP: 209−219
  135. Michotte Y, Massart D. L., Lowenthal A., Knaepen L., Pelsmaekers J., Collard M. 4A morphological and chemical study of calcification of the choroid plexus // Journal of Neurology. 1977 — Vol. 216- PP: 127−133
  136. Miettinen M., Clark R., Virtanen I. Intermediate filament proteins inchoroid plexus and ependyma and their tumors // Am J Pathol. 1986 — Vol. 123- Is. 2- PP: 231−240
  137. Milhorat T.H. Choroid plexus and cerebrospinal fluid production // Science. 1969-VoL 166- № 3912- PP: 1514−1516
  138. Milhorat T.H., Hammock M.K., Fenstermacher J.D., Rail D.P., Levin V.A. Cerebrospinal fluid production by the choroid plexus and brain // Science. -1971 Vol. 173- № 3994- PP: 330−332
  139. Modic M.T., Weinstein M.A., Rother A.D. Erenberg G., Duchesneau P.M., Kaufman B. Calcification of the choroid plexus visualized by computed tomography // Radiology. 1980 — Vol. 135- PP: 369−372
  140. Nakamura S., Milhorat T.H., Nerve endings in the choroid plexus of the fourth ventricle of the rat: Electron microscopic study // Brain Research. -1978 Vol. 153- Is. 2- PP:. 285−293.
  141. Nechushtan H., Soreq H., Kuperstein V., Tshori S., Razin E. Murine and human mast cell express acetylcholinesterase // FEBS Letters. 1996 -Vol. 379- PP: 1−6
  142. Nishiyama A., Stalcup W.B., Expression of NG2 Proteoglycan Causes Retention of Type VI Collagen on the Cell Surface // Molecular Biology of the Cell. 1993 — Vol. 4- PP: 1097−1108
  143. Niyibizi C., Fietzek P.P., van der Rest M. Human placenta type V collagens. Evidence for the existence of an alpha 1(V) alpha 2(V) alpha 3(V) collagen molecule // J. Biol. Chem. 1984 — Vol. 259, PP: 14 170−14 174
  144. Ohama E., Takeda S., Ikuta F. A new type of cytoplasmic inclusion in human choroid plexus. A histochemical, ultrastructural and frequency study // Acta Neuropathologica. 1988 — Vol. 76- PP: 11 — 16
  145. Oksche A., Vaupel-von Harnack M., Elektronenmikroskopische Studien fiber Ahersveranderungen (Filamente) der Plexus chorioidei des Menschen (Biopsiematerial) // Z. Zellforsch. 1969 — Vol. 93- PP: 1−29
  146. Oksche A., Kirschstein H., Entstehung und Ultrastruktur der Biondi-Korper in den Plexus chorioidei des Menschen (Biopsiematerial) // Z. Zellforsch. 1972-Vol. 124- P: 320—341,
  147. Ostrowski K, Dziedzic-Goclawska A., Michalik J., Stachowicz W., Mazur S. Crystallinity of human pineal calcospherulites // Calcif. Tissue Int. 1980 -Vol. 30- PP: 179−182,
  148. Owens D. W., Ralph C.L. The pineal-paraphyseal complex of sea turtles. I. Light microscopic description // Journal of Morphology. 197. — Vol. 158- Is.2- PP: 169−179
  149. Page R.B., Funsch D. J, Brennan R.W. Hernandez M.J. Choroid plexus blood flow in the sheep I I Brain Research. 1980 — Vol. 197- PP: 532−537
  150. Pan J.-J., Yang M.-H The role of epithelial-mesenchymal transition in pancreatic cancer // Journal of Gastrointestinal Oncology. 2011 — Vol. 2, No 3- P. 151−156
  151. Partridge J.G., Janssen M.J., Chou D.Y., Abe K, Zukowska Z., Vicini S. Excitatory and inhibitory synapses in neuropeptide Y-expressing striatal interneurons // J Neurophysiol. 2009 — Vol. 102, Is. 5, PP: 3038−3045
  152. Pedersen H., Gyldensted M., Gyldensted C. Measurement of the Normal Ventricular System and Supratentorial Subarachnoid Space in Children with Computed Tomography // Neuroradiology. 1979 — Vol. 17- PP: 231−237
  153. Penneys N.S., Mogollon R., Kowalczyk A., Nadji M., Adachi K. A Survey of Cutaneous Neural Lesions for the Presence of Myelin Basic ProteinAn Immunohistochemical Study // Arch Dermatol. 1984 — Vol. 120, Is. 2−1. PP:210−213
  154. Plets C. The arterial blood supply and angioarchiteeture of the oosterior wall of the third ventricle//Acta Neurochirurgica. 1969 — Vol. 21- PP: 309−317
  155. Przybylska-Gornowicz B., Lewczuk B., Prusik M., Nowicki M. Post-hatching development of the turkey pineal organ: histological and immunohistochemical studies // Neuroendocrinology Letters. 2005 -Vol. 26- No. 4- PP: 383−392
  156. Raghavan D., Starcher B. C., Vyavahare N.R. Neomycin binding preserves extracellular matrix in bioprosthetic heart valves during in vitro cyclic fatigue and storage // Acta Biomater. 2009 — Vol. 5, Is. 4, PP: 983−992
  157. Redzic Z B., Preston J.E., Duncan J.A., Chodobski A., Szmydynger-Chodobska J. The choroid plexus-cerebrospinal fluid system: from development to aging // Current Topics in Developmental Biology. 2005 -Vol. 71- PP: 1−52
  158. Rest M. van der, Garrone R., Collagen family of proteins // The FASEB Journal. 1991 — Vol. 5- no. 13- PP: 2814−2823.
  159. Roeder F., Rehm O. Cerebrospinalflussigkeit. Untersuchungsmethoden und Klinik. Fur Artze und Tierartze // Berlin. 1942 — 185 p.
  160. Rogers K. T. Studies on chick brain of biochemical differentiation related to morphological differentiation and onset of function. I. Morphological development // Journal of Experimental Zoology. 1960 — Vol. 144- Is. 1- PP: 77−87
  161. Roheim P. S., Carey M., Forte T., Vega G. L., Apolipoproteins in human cerebrospinal fluid // PNAS. 1979 — Vol. 76- No. 9- PP: 4646−4649,
  162. Ross A.H. Identification of tyrosine kinase Trk as a nerve growth factor receptor // Cell regulation. 1991 — Vol. 2- PP: 685−690
  163. Sailer M.H.M., Hazel T.G., Panchision D.M., Hoeppner D.J., Schwab M.E., McKay R.D.G. BMP2 and FGF2 cooperate to induce neural-crest-likefates from fetal and adult CNS stem cells // Journal of Cell Science. 2005 -Vol. 118- PP: 5849−5860
  164. Sajanti J., Heikkinen E., Majamaa K., Rapid Induction of Meningeal Collagen Synthesis in the Cerebral Cisternal and Ventricular Compartments after Subarachnoid Hemorrhage // Acta Neurochir. 2001 — Vol. 143- PP: 821−826
  165. Schapiro B. Uber die Innervation des Plexus chorioideus // Zeitschrift fur die gesamte Neurologie und Psychiatrie. 1931 — Vol. 136- Num. 1- PP: 539−546
  166. Schroder H., Malhotra S.K. Characterization of rodent pineal astrocytes by immunofluorescence microscopy using a monoclonal antibody (J 1−31) // Cell Tissue Res. 1987 — Vol. 248- PP: 607−610
  167. Segal M.B. The Choroid plexuses and the barriers between the blood and the cerebrospinal fluid // Cellular and Molecular Neurobiology. 2000
  168. Vol. 20- No. 2- PP: 183−196
  169. Serot J.-M., Bene M.-Ch., Foliguet B., Faure G. C. Morphological alterations of the choroid plexus in late-onset Alzheimer’s disease // Acta Neuropathologica. 2000 — Vol. 99- PP: 105−108
  170. Serot J.-M., Bene M.-Ch., Faure G. C. Choroid plexus, ageing of the brain, and Alzheimer’s disease // Frontiers in Bioscience. 2003. — Vol. 8- Is. 1- PP: 515−521
  171. Sgouros S., Goldin J.H., Hockley A.D., Wake M.C., Natarajan K. Intracranial volume change in childhood // Journal of Neurosurgery. 1999 -Vol. 91- № 4- PP: 610−616
  172. Shuangshoti S., Netsky M. Human choroid plexus: morphologic and histochemical alteration with age // American Journal of Anatomy. 1970 -Vol. 128- Is. 1- PP: 73−96
  173. Silverman A.-J., Sutherland A. K., Wilhelm M., Silver R. Mast cells migrate from blood to brain // The Journal of Neuroscience. 2000 — Vol. 20- № 1- PP: 401−408.
  174. Spring F.A., Gardner B., Anstee D.J. Evidence that the antigens of the Yt blood group system are located on human erythrocyte acetylcholinesterase // Blood. 1992 — Vol. 80- No 8- PP: 2136−2141
  175. Spuch C., Carro E. The p75 neurotrophin receptor localization in blood-CSF barrier: expression in choroid plexus epithelium // BMC Neuroscience. -2011-Vol. 12- Is. 39- PP: 1−9
  176. Staatz WD, Walsh J.J., Pexton T., Santoro S. A., The cx& Integrin Cell Surface Collagen Receptor Binds to the al (I)-CB3 Peptide of Collagen // The journal of biological chemistry. 1990 — Vol. 265- No. 9- Is. 25, PP: 47 784 781,
  177. Stamatoglou S.C., Keller J.M., Correlation between Cell Substrate Attachment Surface Heparan Sulfate Affinity for Fibronectin In Vitro and Cell and Collagen // The journal of cell biology. 1983 — Vol. 9- PP: 18 201 823
  178. Stohr P. J. Uber die Innervation der Pia mater und des Plexus chorioideus des Menschen // Zeitschr. f. Anat. und Entwickl. 1922 — Bd. 63- PP: 562 607
  179. Strazielle N., Preston J.E. Transport Across the Choroid Plexuses. In Vivo and In Vitro // Methods in Molecular Medicine. 2003 — Vol. 89, № III- PP: 291−304
  180. Tanito M., Kaidzu S., Katsube T., Novoyama S., Takai Y., Ohira A. Diagnostic Western blot for lens-specific proteins in aqueous fluid after traumatic lens-induced uveitis // Jpn J Ophthalmol. 2009 — Vol. 53, Is. 4, PP: 436−439
  181. Towns end J.B., Ziedonis D.M., Bryan R.M., Brennan R.W., Page R.B. Choroid plexus blood flow: evidence for dopaminergic influence // Brain Research. 1984 — Vol. 290- PP: 165−169
  182. Viale G., Gambacorta M., Coggi G., Dell’Orto P., Milani M. Glial fibrillary acidic protein immunoreactivity in normal and diseased human breast // Virchows Archiv. 1991 — Vol. 418, Num. 4- PP: 339−348
  183. Washimine H., Asada Y, Kitamura K., Ichiki Y., Hara S., Yamamoto Y., Kangawa K., Sumiyoshi A., Eto T. Immunohistochemical identification of adrenomedullin in human, rat, and porcine tissue // Histochemistry. 19 951. Vol. 103- PP: 251−254
  184. Weisberg L.A. The syndrome of increased intracranial pressure without lokalizing sings. Neurology. 1975 — Vol. 25- Is. 1- PP: 85−88
  185. Weindl A., Joynt R., Ultrastructural analysis of the human cerebral ventricular system // Cell and Tissue Research. 1974 — Num. 4- PP: 435 448
  186. Weyhoven A. Gesamteiweissheit des «normalen» Liquors in Abhangigkeit von Alter, Geschlecht und Punktionsart // Dissertation zur Erlangung des Grades eines Doctor der Medizin der Medizinischen Fakultat der Universitat Hamburg. Hamburg. 1961 -17 p.
  187. Wolburg H., Paulus W Choroid plexus: biology and pathology // Acta neuropathologica. 2009 — Vol. 119- Num. 1- PP: 75−88
  188. Wotherspoon A.C., Norton A.J. Isaacson P.G. Immunoreactive cytokeratins in plasmacytomas // Histopathology. 1989 — Vol. 14, Is. 2, PP: 141−150
  189. Xenos C., Sgouros S., Natarajan K. Ventricular volume change in childhood //Journal of Neurosurgery. 2002 — Vol. 97- № 3- PP: 584−590
  190. Yamashima T., Kida S., Kubota T., Yamamoto S. The origin of psammoma bodies in the human arachnoid villi // Acta Neuropathol. 1986 — Vol. 71- PP: 19−25
  191. Zand N. Les plexus choioides // Paris, 1930 (цит. По Г. Г. Автандилову)
  192. Zoog S.J., Itano A., Trueblood E., Pacheco E., Zhou L., ZhangX., Ferbas J., Ng G.Y., Juan G. Antagonists of CD117 (cKit) signaling inhibit mast cell accumulation in healing skin wounds // Cetometry. 2009 — Vol. 75, Is. 3, PP: 189−198
  193. Zhuang X., Silverman A.-J., Silver R. Brain mast cell degranulation regulates blood-brain barrier // Journal of Neurobiology. 1996 — Vol. 31- № 4- PP: 393−403
Заполнить форму текущей работой

На отлично!