Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Использование генотипирования по локусу BoLA DRB 3 в селекции крупного рогатого скота на устойчивость к персистентному лимфоцитозу

Диссертация: Использование генотипирования по локусу BoLA DRB 3 в селекции крупного рогатого скота на устойчивость к персистентному лимфоцитозу
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

На защиту выносятся следующие положения: животные, несущие одну или две аллели гена BoLA DRB3, обуславливающие устойчивость к персистентному лимфоцитозу, генетически защищены от перехода лейкоза в стадию персистентного лимфоцитозав различных популяциях крупного рогатого скота Краснодарского края аллели чувствительности к персистентному лимфоцитозу преобладают над аллелями устойчивостипопуляция… Читать ещё >

Содержание

  • Введение 3 Обзор литературы
    • 1. 1. Общая характеристика вируса лейкоза крупного рогатого скота и заболевания, вызываемого этим вирусом
    • 1. 2. Методы диагностики вируса лейкоза крупного рогатого скота
    • 1. 3. Мировой опыт борьбы с лейкозом крупного рогатого скота
    • 1. 4. Эпизоотическая ситуация по лейкозу крупного рогатого скота в Краснодарском крае и регионах Российской федерации
    • 1. 5. Наследственная предрасположенность крупного рогатого скота к лейкозу и методы её выявления
  • 2. Материал и методика проведения исследования
    • 2. 1. Методика проведения исследований
    • 2. 2. Выделение ДНК
    • 2. 3. Проведение полимеразной цепной реакции
    • 2. 4. Анализ полиморфизма длин фрагментов рестрикции
    • 2. 5. Электрофорез
  • 3. Собственные исследования
    • 3. 1. Оптимизация методик взятия крови, выделения ДНК, проведения ПНР и ПДРФ-анализов
    • 3. 2. Характеристика изученных животных
    • 3. 3. Изучение частоты встречаемости генотипов BoLA DRB 3 гена в группах здоровых животных, инфицированных вирусом лейкоза крупного рогатого скота и больных персистентным лимфоцитозом

    3.4 Изучение частоты встречаемости аллелей гена BoLA DRB 3 в различных популяциях крупного рогатого скота Краснодарского края 57 3.5 Отбор селекционной группы коров, предназначенных для воспроизводства быков-производителей, и выявление животных, несущих признаки устойчивости к персистентному лимфоцитозу и улучшенных технологических качеств молока.

    7 3.6 Изучение генотипов быков-производителей.

    3.7 Использование генотипирования по локусу BoLA DRB в установлении происхождения животных.

    3.8 Экономическая оценка эффективности использования генетического маркера устойчивости к персистентному лимфоцитозу в селекции крупного рогатого скота.

    4. Обсуждение результатов исследований

    Выводы.

    Предложения производству.

Использование генотипирования по локусу BoLA DRB 3 в селекции крупного рогатого скота на устойчивость к персистентному лимфоцитозу (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

.

Успехи биологических наук — физиологии, биохимии, гистологии и генетики — обусловили в начале нашего столетия развитие нового направления в селекции — оценки потенциальных возможностей (продуктивных и племенных) животных по их внутренним морфологическим особенностям — интерьеру. Одним из основоположников этого направления в нашей стране был Е. Ф. Лискун (цит. по Е. В. Эйдригевич, В. В. Раевская, 1978), который в начале прошлого века показал связь между гистологическим строением молочных желез и молочной продуктивностью коров. Большой интерес исследователи проявили к составу крови. В настоящее время накоплен довольно большой материал о связи ряда биохимических и иммунологических показателей с хозяйственно-полезными качествами различных животных (Е.В. Эйдригевич, В. В. Раевская, 1978). В настоящее время все большую актуальность приобретают исследования, позволяющие выявлять полиморфизм на уровне ДНК и связывать его с качественными показателями животных.

Зная нуклеотидную последовательность и локализацию конкретного участка ДНК, можно выявлять в нем полиморфные участки, то есть участки, различающиеся у представителей исследуемой группы. Затем устанавливается связь полиморфного варианта с тем или иным хозяйственно-полезным признаком, заболеванием, другими показателями.

Использование отбора по генетическим маркерам выводит селекцию на новый уровень, позволяя непосредственно оценивать генотипы (С. Camaschella, A. Alfarano, Е. Gottadi, 1990; В. И. Глазко и др., 2000).

Инфицированность крупного рогатого скота вирусом лейкоза в большинстве хозяйств Краснодарского края достигла 100% у взрослых животных.

В настоящее время одной из наиболее известных методик ликвидации лейкоза является так называемая «технологическая», предусматривающая выделение из стада больных особей, изолированное выращивание здоровых, выполнение других зооветеринарных мероприятий. В то же время селекционные методы борьбы с этим заболеванием, на наш взгляд, разработаны недостаточно.

Между тем, отечественными и зарубежными исследователями установлено, что отдельные животные одной и той же породы имеют различную устойчивость (наследственную невосприимчивость) к лейкозу (персистентному лим-фоцитозу), которая обуславливается наличием определенных аллелей генов, отвечающих за эффективный иммунный ответ в организме. Сохранение и накопление этих аллелей в потомстве повышает его устойчивость к персистентному лимфоцитозу, а это способствует воспроизводству наследственно устойчивых к заболеванию животных и, в конечном итоге, оздоровлению всего стада.

Цель и задачи исследований.

Цель настоящей работы — разработка направлений использования в селекции нового признака — наследственной устойчивости к персистентному лимфоцитозу.

В связи с этим программа исследований включала решение следующих задач:

— обосновать необходимость селекции крупного рогатого скота на устойчивость к персистентному лимфоцитозу;

— изучить популяции крупного рогатого скота Краснодарского края на предмет встречаемости аллельных вариантов гена BoLA DRB 3, отвечающего за предрасположенность к персистентному лимфоцитозу;

— изучить племенных быков, используемых в системе искусственного осеменения края на предмет структуры гена BoLA DRB 3;

— в одном из хозяйств отобрать по основным зоотехническим характеристикам высокопродуктивных коров, предназначенных для воспроизводства племенных быков, и выявить среди них особей с устойчивостью к персистентному лимфоцитозу;

— представить возможные варианты скрещиваний для получения устойчивого к персистентному лимфоцитозу племенного молодняка.

Научная новизна исследований.

Оптимизированы методики проведения полимеразной цепной реакции и анализа полиморфизма длин фрагментов рестрикции для генотипирования по локусам BoLA DRB3 и каппа-казеина.

Впервые изучена генетическая структура популяций крупного рогатого скота Краснодарского края по генам BoLA DRB 3 и каппа-казеина. Установлено преобладание аллелей чувствительности к персистентному лимфоцитозу над аллелями устойчивости и нейтральными аллелями в популяциях скота с высокой долей крови голштинской породы. Показано, что аллельный полиморфизм по гену BoLA DRB3 более разнообразен в популяции аборигенной красной степной породы. Установлена высокая частота встречаемости генотипа АА по гену каппа-казеина.

Практическая значимость и реализация результатов исследований.

Обоснована необходимость использования при отборе селекционной части стада коров, предназначенных для воспроизводства племенных бычков, признака устойчивости к персистентному лимфоцитозу. В хозяйстве «Бейсуг» Приморско-Ахтарского района Краснодарского края отобраны коровы, несущие гомозиготный по устойчивости генотип и свободные от носительства про-вируса лейкоза крупного рогатого скота. В этом же хозяйстве изучена частота встречаемости генотипов по гену каппа-казеина. Проведены исследования образцов семени быков-производителей голштинской красно-пестрой породы и установлен их генотип по локусам BoLA DRB3 и каппа-казеину. Составлены варианты заказного подбора, позволяющие получить потомство, гомозиготное по устойчивости к персистентному лимфоцитозу.

На защиту выносятся следующие положения: животные, несущие одну или две аллели гена BoLA DRB3, обуславливающие устойчивость к персистентному лимфоцитозу, генетически защищены от перехода лейкоза в стадию персистентного лимфоцитозав различных популяциях крупного рогатого скота Краснодарского края аллели чувствительности к персистентному лимфоцитозу преобладают над аллелями устойчивостипопуляция скота красной степной породы генетически более разнообразна по локусам BoLA DRB 3 и каппа-казеина, чем популяции с высокой долей крови голштинской породыв популяциях крупного рогатого скота, в значительной мере пораженных лейкозом, необходимо использовать быков-производителей, несущих аллели устойчивости к персистентному лимфоцитозупри отборе селекционной группы коров, предназначенных для воспроизводства племенных бычков, необходимо использовать признак устойчивости к персистентному лимфоцитозу.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

ВЫВОДЫ.

1. Аллели гена BoLA DRB 3, обуславливающие чувствительность к персистентному лимфоцитозу (8, 16, 22, 24), встречаются у животных с клиническими проявлениями болезни, напротив — аллели гена BoLA DRB 3, обуславливающие устойчивость к персистентному лимфоцитозу, не встречаются в выборке гематологически больных.

2. В группах животных племзавода «Привольное» и ОПХ «Рассвет» отмечена более высокая частота встречаемости аллелей, обуславливающих чувствительность к персистентному лимфоцитозу (Ч-аллелей), по сравнению с группами животных хозяйств «Бейсуг» и «Дружба» (соответственно 81%, 53% и 32% и 39%).

3. Чем выше степень «голштинизации» скота в хозяйстве, тем меньшее количество вариантов аллелей гена BoLA DRB 3 там удается встретить («Привольное» — 7 вариантов, ОПХ «Рассвет» — 10 вариантов).

4. В условиях значительного распространения лейкоза, учитывая низкую частоту встречаемости устойчивых к персистентному лимфоцитозу и тенденцию к увеличению числа чувствительных генотипов (в связи с повсеместной «голштинизацией» скота), необходимо начать работы по введению признака устойчивости в селекцию крупного рогатого скота.

5. Даже в тех хозяйствах, где в относительно большом проценте случаев встречаются аллели устойчивости к персистентному лимфоцитозу количество коров устойчивой группы, которых можно отобрать в селекционную группу для воспроизводства ремонтных бычков, очень невелико (в хозяйстве «Бейсуг» — 6%). Однако вести подобный отбор необходимо сейчас, так как в крае работают быки, несущие в основном в своем генотипе аллели чувствительности, и в ближайшее время подобный отбор будет невозможен.

6. В группе быков голштинской красно-пестрой породы не удалось выявить животных, несущих обе аллели гена BoLA DRB 3, определяющих устойчивость к персистентному лимфоцитозу. В данном случае для закрепления можно использовать быков с гетерозиготным по устойчивости генотипом, с последующим генотипированием полученного потомства.

7. Возможно использование генотипирования по локусу BoLA DRB 3 для контроля происхождения животных и качества ведения селекционноплеменной работы в хозяйствах.

ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ.

В популяциях с высокой частотой встречаемости инфицированных виру' сом лейкоза крупного рогатого скота животных использовать быков производителей, несущих признак устойчивости к персистентному лимфоцито зу.

С целью получения устойчивых к персистентному лимфоцитозу быковпроизводителей ввести признак устойчивости как критерий отбора коров в се лекционную группу, предназначенную для отбора ремонтных бычков.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.М., Нахмансон В. М. Проблемы оздоровления крупного рогатого скота от лейкоза // Ветеринария. 1995. -№ 11. — С. 3−6
  2. ., Брей Д., Льюис Дж. Молекулярная биология клетки. М.: Мир, 1987.- 1050 с.
  3. А.Д. Подходы к созданию генно-инженерной вакцины против лейкоза на основе вируса осповакцины// Тез. докл. II международной научн. конф.: Биотехнология в животноводстве и ветеринарии. М., 2000. — С. 149 -151
  4. А., Дульнев В. О типах и рационах кормления скота // Молочное и мясное скотоводство. 1997. -№ 1.- С. 12−15
  5. А.Д., Рогожина Г. В. О патогенезе лейкозов крупного рогатого скота // Ветеринария. -1997. № 12. — С. 16- 19
  6. В.А., Лиманская О. Ю., Лиманский А. П. ПЦР-диагностика ВЛКРС // Ветеринарная медицина. 1998. -В. 74. -С. 35−44
  7. Р.А. и др. Молекулярно генетическая диагностика гепатита В // Тез. докл. III Всероссийской научно — практической конференции: Генодиагностика в современной медицине. — М., 2000. — С. 45 — 47
  8. Р.Ф. Вирус лейкоза КРС (культуральные, инфекционные и иммунологические свойства). Уфа: Ветеринарная медицина. — 1999. — 147 с.
  9. Р.Ф. Теоретическое обоснование, экспериментальное подтверждение путей передачи вируса лейкоза крупного рогатого скота, усовершенствование методов диагностики и мер борьбы с ним. Автореф. дисс. докт. вет. наук. Казань. — 2000
  10. Р.Ф., Руденко А. А., Валиев Ф. Р. Диагностика и профилактика лейкоза КРС // Практик. № 5−6. — 2003. — С.44 — 48
  11. В.И. и др. Полиморфизм молекулярно генетических маркеров у домашней лошади и лошади Пржевальского // Тез. докл. II международной на-учн. конф.: Биотехнология в животноводстве и ветеринарии. — М., 2000. — С. 151−152
  12. В.И., Кириленко С. Д., Созинов А. А. Межлокусные ассоциации некоторых генетико биохимических систем у крупного рогатого скота // Генетика. — 1997. — Т. 33. -№ 4. — С. 512 — 517
  13. В.И. ДНК-технологии животных.-Киев: Нора-принт.-1997.-173 с.
  14. В.И., Доманский Н. Н., Созинов А. А. Современные направления использования ДНК-технологий/ЯДитология и генетика. 1998.- Т. 32.- № 5.-С.80−93
  15. В.И., Дунин И. М., Глазко Г. В., Калашникова Л.А.Ведение в ДНК-технологии. -М.: ФГНУ «Росинформагротех», 2001.- 436 с.
  16. В.И., Кириленко С. Д. Идентификация генотипов по каппа-казеину и BLAD-мутации с использованием полимеразной цепной реакции у крупного рогатого скота//Цитология и генетика. 1995.- № 6.-С.60−63
  17. В.М., Момыналиев К. Т. Перспективы применения методов ДНК-диагностики в лабораторной службе // Клиническая лабораторная диагностика. 2000. — № 5. — С. 25−30
  18. М.И., Замараева Н. В. Медико биологические аспекты вируса лейкоза КРС // Сб.: Актуальные вопросы диагностики, профилактики и борьбыс лейкозами сельскохозяйственных животных и птиц. 2000. -Екатеринбург. -С. 12−25
  19. М.И. и др. Дифференциальная диагностика гемабластозов крупного рогатого скота// Бюл. ВИЭВ, М.: 1996. — Вып. 77. — С. 46
  20. М.И. и др. Разработка эффективных мероприятий против лейкоза крупного рогатого скота // Ветеринария. 2002. — № 12. — С. 3 — 8
  21. М. И. Состояние и перспективы борьбы с лейкозом крупного рогатого скота // Ветеринария. 1999. — № 12. — С. 3 — 8
  22. М.И., Замараева Н. В., Седов В. А. и др. Основные тенденции в организации и проведении противолейкозных мероприятий // Труды ВИЭВ. -М.- 1999.-Т. 72.-С. 16−22
  23. Диагностика лейкоза крупного рогатого скота. Методические указания. — М.: Агропромиздат, 1989
  24. JI.C. Селекционно-генетические основы белкового состава молока коров. М.: Колос. — 1973, 248 с.
  25. К.В. Генетическая характеристика иммунореактвности и естественной резистентности сельскохозяйственных животных // Сельскохозяйственная биология. 1992. — № 6. — С. 36 — 46
  26. Н.В., Гулюкин М. И., Снежков М. Н. Экспериментальные исследования по выявлению возможности передачи вируса лейкоза крупного рогатого скота через молоко лабораторным животным / Бюлл. ВИЭВ. 1996. — № 77.-С. 66
  27. JI. А. Опыт применения иммуноферментного анализа для выявления антител к вирусу лейкоза на заключительном этапе оздоровления // Бюл. ВИЭВ. -1999. т. 72. С. 202−209
  28. JI.A., Дунин И. М., Глазко В. И., Рыжова Н. В. ДНК-технологии оценки сельскохозяйственных животных.- М., 1999.- 148 с.
  29. Н., Ковалюк А., Чурилова Е., Масленников М. Изучение полиморфизма некоторых генов у быков производителей// Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. — 2005. — № 1. С.64−65
  30. Г. Ф., Гулюкин М.И.,. Симонян Г. А. Основные итоги и перспективы научных исследований по проблеме лейкозов сельскохозяйственных животных //Тр. ВИЭВ. т. 72. — М.: 1999. — С.3−11
  31. Г. Ф., Шишков В. П. Основы профилактики и ликвидации лейкоза крупного рогатого скота // Ветеринария. 1993. — № 4. — С. 15−18
  32. Т.С. и др. Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии. М.: Агропромиздат. — 1989. — 272 с.
  33. В. А. Лейкоз крупного рогатого скота и иммунологическая толерантность // Ветеринария. 2002. — № 6. -С. 7−9
  34. В.А. Слизистая носа наиболее вероятный путь заражения животных вирусом лейкоза КРС // Лейкозы крупного рогатого скота. — М. — 1985. — С. 5 — 6
  35. П.В., Барабанщиков Н. В. Практикум по молочному делу. М.: Колос. — 1978, 240 с.
  36. Т.П. Лейкоз животных. М.: Россельхозиздат. — 1980. -158 с.
  37. А.И., Закрепина Е. Н. Влияние лейкоза на продуктивность коров и качество молока // Ветеринария. -1997. № 2. — С. 19−21
  38. А.И., Печерская М. В. К вопросу оздоровления хозяйств Вологодской области от лейкоза крупного рогатого скота // Тр. ВАСХНИЛ. 1974. -С. 228
  39. Н.В. и др. Использование полимеразной цепной реакции для выявления инфицированных вирусом лейкоза крупного рогатого скота // Ветеринария. 1997. — С. 12 — 13
  40. Р.А. и др. Вирус лейкоза крупного рогатого скота. Рига: Зинат-не, 1982.-174 с.
  41. Т.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1980. — 293 с.
  42. A.M. Селекционно генетические аспекты лейкозов крупного — рогатого скота // Ветеринария. — 1972. — № 6. — С. 66 — 69
  43. В.М. и др. Лейкоз крупного рогатого скота. Минск: «Ураджай», 1987. — 220 с.
  44. А.П., Лиманская О. Ю. Молекулярно генетические методы — основа программ по искоренению лейкоза крупного рогатого скота // Биотехнология. — 2001. — № 3. — С. 40−50
  45. А.В., Кузнеделов К. Д., Краев А. С. Методы молекулярной генетики и генной инженерии. Новосибирск: Наука, 1990. -248 с.
  46. А.В., Краев А. С., Потапов В. А. Анализ генома. Методы. М.: Мир, 1990.- 176 с.
  47. Методические рекомендации по проведению работ в диагностических лабораториях, использующих метод ПЦР // Государственный комитет санитарно эпидемиологического надзора РФ. -1995
  48. С.А. Носовые истечения больных лейкозом коров, как фактор передачи вируса лейкоза крупного рогатого скота // Тр. ВИЭВ. 1999. — Т. 72. — С. 128−129
  49. Е.К. Биометрия в селекции и генетике сельскохозяйственных животных. М.: Колос, 1979. — 423 с.
  50. М., Козырева С., Томсоне В. Ингибирование репликации вируса лейкоза крупного рогатого скота у трансгенных кроликов под влиянием антисмысловых РНК // Экспериментальная онкология. 2001. — № 1. — С. 15−20
  51. В.М. Лейкоз крупного рогатого скота. М.: Россельхозиздат. — 1986.-221с.
  52. В.М., Дун Е.А. Эпизоотология лейкоза крупного рогатого скота и меры борьбы с ним // Итоги науки и техники. — 1986. С. 146 — 149
  53. Ным Э.М. и др. Распространение лейкоза крупного рогатого скота в Эстонской ССР//Труды АН Латвийской ССР.- Рига: Зинатне, 1970. 145 с.
  54. .Г. Классификация и номенклатура РНК — содержащих вирусов позвоночных // Сельскохозяйственная биология. 1996. — № 2. — С. 3−24
  55. .Г. Дифференциация лейкомоидных реакций у крупного рогатого скота // Ветеринария.- 1980. -№ 12. С. 32−33
  56. Р.В. Иммунология. М.: Медицина, 1982. — 368 с.
  57. Н.А. Биометрия. М.: Изд-во Московского ун-та, 1970. -367 с.
  58. Н.А. Руководство по биометрии для зоотехников. М.: Колос, 1969. — 256 с.
  59. Правила по профилактике и борьбе с лейкозом крупного рогатого скота. Утверждены приказом Минсельхозпрода России от 11 мая 1999, № 359. М.: Зарегистрировано распоряжением Минюста России, регистрационный знак № 1799 от 04 июня 1999
  60. А.А. и др. ПЦР быстрый и высоко чувствительный метод определения возбудителя туберкулеза в биологических материалах // Пульмонология. — 1995. -№. 3. — С. 16 -20
  61. Л.Б. и др. Диагностика лейкоза КРС методом ПЦР//Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 1998. — № 5 .-С. 65 — 68
  62. Л.Б. и др. Применение ПЦР для раннего обнаружения про-вируса лейкоза крупного рогатого скота у экспериментально инфицированных животных // Ветеринария. -2001. -№ 8. С. 17−21
  63. А.В. Опыт работы по ликвидации лейкоза КРС в Каневском районе // Ветеринария Кубани. 2004. — № 4. — С. 4 — 6
  64. Рис Э., Стернберг М. Введение в молекулярную биологию. М.: Мир, 2002. — 142 с.
  65. Н.В., Шатерникова Т. Н. Современные данные по лейкозу крупного рогатого скота//Ветеринария. 1963. -№ 4. — С. 20 — 26
  66. Г. А. Морфологические изменения крови и пунктата костного мозга у коров при лейкозе //Ветеринария. 1963. -№ 6. — С. 33 — 38
  67. Г. А. Степень заболеваемости лейкозом и инфицированности ВЛКРС поголовья скота в неблагополучных хозяйствах // Сб.: Актуальные вопросы диагностики, профилактики и борьбы с лейкозами с. х. животных и птиц / Екатеринбург. — 2000. — С. 36 -44
  68. А.Р. Главный комплекс гистосовместимости сельскохозяйственных животных: иммуногенетические и популяционные аспекты // Успехи современной генетики. 1994. — № 19. — С. 178 — 205
  69. Ю.П. Влияние лейкоза на молочную продуктивность коров //Молочное и мясное скотоводство. 1999. — № 4. — С. 25−28
  70. Ю.П. Развитие лейкозного процесса у инфицированных ВЛКРС коров в зависимости от их возраста // Ветеринария 1999. — № 12.-С. 15−17
  71. В.Н. Ветеринарно санитарная оценка мяса при лейкозе крупного рогатого скота // Сб.: Актуальные вопросы диагностики, профилактики и борьбы с лейкозами сельскохозяйственных животных и птиц. — 2000. — Екатеринбург. — С. 236 — 239
  72. В.Н. К вопросу о токсичности молока коров, больных лейкозом // Сб.: Актуальные вопросы диагностики, профилактики и борьбы с лейкозами сельскохозяйственных животных и птиц. 2000. — Екатеринбург. — С. 240 -242
  73. Г. Е., Шайхаев Г. О., Берберов Э. М. Генотипирование локуса каппа казеина у крупного рогатого скота с помощью полимеразной цепной реакции // Генетика. -1991. -Т. 27. — с. 2053 — 2062
  74. Г. Е., Соколова С. С., Семикозова О. П. Анализ полиморфизма ДНК кластерных генов у крупного рогатого скота: гены казеинов и гены главного комплекса гистосовместимости (ВоЬА)Цитология и генетика. 1992.- Т. 26.-№ 5.- С. 18−25
  75. Г. Е., Удина И. Г., Шайхаев Г.О, Захаров И. А. ДНК-полиморфизм гена BoLA-DRB 3 у крупного рогатого скота в связи с устойчивостью и восприимчивостью к лейкозу // Генетика. -1995. -№. 9. С. 1294−1299
  76. В. Н., Белоусова Р. В., Фомина Н. В. Ветеринарная вирусология -М.: Агропромиздат, 1991.-431с.
  77. И.Г. и др. Использование ДНК-технологий для оценки наследственной устойчивости к заболеванию лейкозом // Тез. докл. II международной научн. конф.: Биотехнология в животноводстве и ветеринарии. М., 2000. — С. 219−220
  78. И.Г. Гены главного комплекса гистосовместимости человека и животных // Успехи современной генетики. 1994. — № 19. — С. 133−177
  79. ., Уилсон К. Методы практической биохимии. М.: Мир, 1978.- 272 с.
  80. С.М. Наследственность в этиологии лейкозов крупного рогатого скота. Рига: Зинатне. — 1989. — 45 с.
  81. С. и др. Молекулярная клиническая диагностика. Методы. -М.: Мир, 1999.-558 с.
  82. Г. Нужно ли нам больше коров? // Молочное и мясное скотоводство. 1997. — № 6. — С. 24−26
  83. А. Г. и др. К вопросу изучения лейкоза крупного рогатого скота в Краснодарском крае. Ставрополь. — 1999. — С. 156 — 158
  84. Е.В., Раевская В. В. Интерьер сельскохозяйственных животных М.: Колос, 1978. 255с.
  85. JI.K., Сулимова Г. Е., Орлова А. Р. Особенности распространения антигенов BoLA -А и аллелей гена BoLA -DRB3 у черно пестрого скота в связи с ассоциацией с лейкозом // Генетика. -1997. -Т.ЗЗ. — № 1. — С. 87−95
  86. Н., Калашникова JI. Влияние каппа казеина на качество молока и его сыропригодность // Молочное и мясное скотоводство. — 2004. — № 8.- С. 24 25
  87. Aida, Y., Miyasaka M., Okada K. Further phenotypic characterization of target cells for bovine leukemia virus experimental infection in sheep // Am. J. Vet. Res. 1989. № - 50. — P. 1946−1951
  88. Aird I., Bentall H.H., Roberts J.A. A relationship between cancer of stomach and the ABO blood groups // British Medical Journal. 1953. — № 1. — P. 799 — 801
  89. Amadori M.I. Archetti L., Verardi R., Berneri C. Role of a distinct population of bovine T cells in the immune response to viral agents.// Viral Immunol. 1995. -№ 8.-P. 81−91
  90. Barroso A., Dunner S. Technical Note: Detection of Bovine Kappa-Casein Variants А, В, C, and E by Means of Polymerase Chain Reaction-Single StrandConformation Polymorphism (PCR-SSCP)// J. Anim. Sci. -1998. 76:15 351 538
  91. Beier D., Blankenstein P., Fechner H. Possibilities and limitations for use of the polymerase chain reaction (PCR) in the diagnosis of bovine leukemia virus (BLV) infection in cattle. / Zentralbl. Veterinarmed. B. -1992. -V. 39 (1). -P. 69−77.
  92. Biozzi G. et al. Genetic regulation of immunoresponsiveness in relation to resistance against infectious diseases / Proc. 2 World Congr. Genet.Appl. Liv. Prod. Madrid. 1982. — P. 150 — 163
  93. Blankenstein P., Fechner H., Looman A., Beier A., Marguardt A., Ebner D. Polymerase chain reaction (PCR) for detection of BLV proviruses a practical complement BLV diagnostics. / Berl. Munch. Tierarztl. Wochenschr. -1998.- V. 111. P. 180−186.
  94. Brown J. H, Jardetzry Т., Saper M. A hypothetical model of the foreign antigen binding site of class II histocompatibility molecules // Nature. 1988. -332 :845
  95. Burny, A., Bruck C., Cleuter Y. Bovine leukemia virus: a new mode of leukemogenesis // Advances in viral oncology. 1985. P. 35 — 55
  96. Camaschella C., Alfarano A., Gottadi E. Prenatal diagnosis of fetal hemoglobin Lefore Boston disease on maternal peripheral blood // Blood. — 1990. -№. 75.-P. 2102
  97. Carli К.Т., Sen A., Batmaz Н., Kennerman Е. Detection of IgG antibody to bovine leukemia virus in urine and serum by two enzyme immunoassays // Lett. Appl. Microbiol.- 1999.- Vol.28, N.6.- P.416−418.
  98. Da, Y., Shanks R.D., Stewart J.A., Lewin H.A. Milk and fat yields decline in bovine leukemia virus-infected dairy cattle with persistent lymphocytosis// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. — № 94. — P. 6538−6541.
  99. Daniel R. C, Gatei M.H., Good M.F., Boyle D.B., Lavin M.F. Recombinant viral vaccines for enzootic bovine leucosis // Immunol Cell Biol. 1993. -Oct-71.-P:399−404
  100. Debacq C., Asquith, В., Reichert M., Burny A., Kettmann R., Willems L. Reduced Cell Turnover in Bovine Leukemia Virus-Infected, Persistently Lymphocytic Cattle // J. Virol. 2003. -№ 77. P. 13 073−13 083
  101. Deren W, Szewczyk-Sadowska A, Rulka J. The eradication of enzootic bovine leucosis in a large farm population // Pol J Vet Sci. 2003. -№ 6. — P. 12−14.
  102. Dietz A.B., Conen N.D. Bovine lymphocyte antigen Class II Alleles as risk factors for high somatic cell counts in milk of lactating dairy cows // J Dairy Sci. -1997.-№ 80.-P. 406−412
  103. Fries R., Beckmann I.S., Georgies M. The bovine gene map // Animal Genetics.-1989.-V.20.-P. 3−29
  104. Groenen M.A.M. et al. The nucleotide sequence of bovine MHC class II DQB and DRB genes // Immunogenetics. 1990. -№ 31. — P. 37
  105. Hoj S. et al. Growth hormone gene polymorphism associated with selection for milk fat production in lines of cattle // Animal. Genetics. 1993. -V.24. -№ 2.-P. 91 -96
  106. Horin P., Matiasovic J. BoLA DYA polymorphism in Czech cattle // Exp. Clin Immunogenet. 1998. -15 (1). — P. 56 — 60
  107. Lagziel A. et al. An Msp I polymorphism at the bovine growth hormone gene is linked to a locus affecting milk protein percentage // Animal. Genetics. -1999. -V. 30. № P. 296 — 299
  108. Lagziel A., Lipkin A., Soller M. Association between SSCP haplotypes as the bovine growth hormone gene and milk protein percentage // Genetics.-1996.-V.142.-P. 945−951
  109. Ledwidge S.A., Mallard B.A. Multi primer target PCR for rapid identification of bovine DRB 3 alleles // Animal Genetics. — 2001. — № 32. — P. 219 — 221
  110. Levin H.A., Wu M.C., Steward J.A. Association between BoLA and subclinical in bovine leukemia virus infection in a herd of Holstein Friesian cows // Immunogenetics. — 1988. -27(5). — P. 338 — 344
  111. Lindberg P. G., Andersson L. Close association between DNA polymorphism of bovine histocompatibility complex class I genes and serological BoLA A specificities // Anim. Genet. — 1988. — № 19. — P. 245 — 255
  112. Maltseva N.A., Kaledin A.S., Oliynik E.I., Zhivotov A.A., Baranov V. I. Use of diagnostic DNA probes for detection of the provirus of bovine leukemia virus in infected cows // Problems of Virology.- 2002. № 6. — P. 25 — 33
  113. McClure H.M., Kuling M.E., Custer P.Ph. Cancer Res. -1974. — V.34 -P.2745−2757.
  114. Meirom R, Brenner J, Trainin Z. BLV-infected lymphocytes exhibit two patterns оf expression as determined by Ig and CD5 markers // Vet Immunol Im-munopathol.- 1993. -№ 36 (2). P.179−86.
  115. Meirom R., Moss S., Brenner J., Heller D. and Trainin Z. Levels and role of cytokines in bovine leukemia virus (BLV) infection.// Leukemia. 1997. — 11 (Suppl. 3).-P. 219−220
  116. Miller J.M., Miller L.D., Olson C., Gillette K.G. Virus like particles in phytohemagglutinin — stimulated lymphocyte cultures with referent to bovine lymphosarcoma // J. Natl. Cancer Inst. — 1969. — № 43. — P. 1297 — 1305
  117. Miretti M.M., Ferro J.A. Restriction fragment length polymorphism (RLFP) in exon 2 of the BoLA DRB 3 gene in South American cattle // Biochem Genet.-2001.-№ 39.-P. 311−324
  118. Mirsky M.L., Lewin H.A. Reduced bovine leukaemia virus proviral load in genetically resistant cattle // Anim. Genet. 1998. — 29. — P. 145 — 252
  119. Mota A.F. et al. Distribution of bovine lymphocyte antigen (BoLA DRB 3) alleles in Brasilian dairy Gir catlle (Bos indicus) // Eur. J. Immunogenet.- 2002. -29 (3).-P. 223 -227
  120. Mullis K., Faloona F. Specific synthesis of DNA in vitro via a polymerase catalyzed chain reaction // Meth. Enzymol. -1987.-V.155.-P. 335−350
  121. Naj S., Franholm M., Larsen N.J. Growth hormone gene polymorphism associated with selection for milk fat production in lines of cattle // Animal Genet-ics.-1993.-V.24.-P. 91−96
  122. Rando A. et al. Identification of bovine k-casein genotypes at the DNA level // Anim. Genet. 1988. — V. 19. — P. 51 — 54
  123. Shanks R.D., Steward J.A., Levin H.A. Milk and fat yields decline in bovine leuemia virus infected Holstein cattle with persistent lymphocytosis // Agricultural Sciences. -1993. -V. 90. -№ 6. — P. 6538 — 6541
  124. Sharif S. et al. Characterization of naturally processed and presented peptides a ssociated with b ovine major h istocompatibility с omplex (BoLA) с lass 11 DR molecules// Eur J Immunogenet. 2002. -29 (3). — P. 223 — 227
  125. Sharif S., Mallard B.A. Presence of glutamine at position 74 of pocket 4 in the BoLA DR antigen binding groove with occurrence of clinical mastitis caused by Staphylococcus species // Immunogenetics.- 2000. — № 51. — P. 733 — 742
  126. Takeshima S., Nakai Y., Ohta M. characterization of DRB3 alleles in the MHC of Japanese shorthorn cattle by polymerase chain reaction-sequence-based typing // Journal of Dairy Science. -2002. Vol 85, Issue 6 1630−1632
  127. Van Eijk M.J.T., Stewart-Haynes J.A., Beever J.E. Development of persistent lymphocytosis in cattle is closely associated with DRB2 // Immunogenetics. -1992.-37:64
  128. Van Eijk M.J.T., Stewart-Haynes J.A., Lewin H.A. Extensive polymorphism of the BoLA DRB3 gene distinguished PCR-RFLP // Anim. Genet. 1992. V.-23. — P.483 — 496
  129. Ward W.H., Dimmock C.K., Eaves F.W. T lymphocyte responses of sheep to bovine leukaemia virus infection // Immunol. Cell Biol. 1992. -№ 70.- P. 329−336
  130. Xu A., Van Eijk V.J. Т., Park Ch. Polymorphism in BoLA -DRB3 Exon 2 correlates with resistance to persistent lymphocytosis caused by bovine leukemia virus // J. of Immunology. -1993. -V. 151. -№ 12. P. 6977 — 6985
  131. Yang D. et al. Milk and fat yields decline in bovine leukemia virus infected Holtein cattle with persistent lymphocytosis // Agricultural Science. — 1993. -V/90.-P. 6538−6541
  132. Zadworny D., Kuhlein U. The identification of the kappa-casein genotype in Holstein dairy cattle using polymerase chain reaction // Theor. and Appl. Genetics.-1990.-V.80.-P. 631
  133. Zanotti M. et al. Association of BoLA class II haplotypes with subclinical progression of bovine leukaemia virus infection in Holstein Friesian cattle // Anim. Genet. — 1996. — 27. — P.337 — 341
Заполнить форму текущей работой

На отлично!