Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Применение аутологичных стромальных клеток из жировой ткани для восстановления объёма кости альвеолярных отростков/частей верхней и нижней челюстей

Диссертация: Применение аутологичных стромальных клеток из жировой ткани для восстановления объёма кости альвеолярных отростков/частей верхней и нижней челюстей
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

При восстановлении костной ткани большое значение имеет вторая стадия репаративной регенерации, заключающаяся в пролиферации и остеогенной дифференцировке собственных стромальных клеток, формировании клеток остеобластического ряда, образующих костную ткань (А.А.Кулаков, А. С. Григорян, 2007). Поэтому одной из актуальных задач в стоматологии и челюстно-лицевой хирургии является создание… Читать ещё >

Содержание

  • Список сокращений
  • Введение
  • Глава 1
    • Глава 2. 2. аутологичных альвеолярного части нижней
    • Обзор литературы
    • Современный взгляд на механизм регенерации костной ткани
    • Использование трансплантатов при восстановлении костных дефектов альвеолярных отростков верхней и нижней челюстей
    • Тканевая инженерия с использованием стромальных клеток из жировой Материал и методы исследования
    • Методы восстановления объема кости отростка верхней челюсти и альвеолярной челюсти

    Материалы, используемые в качестве носителей аутологичных стромальных клеток из жировой ткани Метод выделение и культивирование СКЖТ Получения первичной культуры СКЖТ человека Подготовки аутологичной сыворотки крови пациента Сравнительная оценка пролиферации клеток СКЖТ при культивировании с использованием сред АёуапсеБТЕМ™ и БМЕМ, фетальной бычьей сыворотки и аутологичной сыворотки крови пациента Метод цитофлуориметрического исследовани Оценка уровня апоптоза методом цитофлуориметрии.

    Характеристика экспрессии поверхностных маркеров СКЖТ методом цитофлуориметри Метод оценки мультипотентности и пролиферативного потенциала выделяемой и культивируемой популяции аутологичных СКЖТ Доказательство мультипотентных свойств выделяемой и культивируемой популяции аутологичных СКЖТ Оценка способности СКЖТ, дифференцированных в остеогенном направлении культивированных с использованием сред разного состава, к остеогенной дифференцировке, и их пролиферативной активности.

    Подготовка тканеинженерных конструкций к трансплантации

    Метод гистологического анализа биопсий

    Метод иммуногистохимического анализа биопсий

    Метод морфометрии костной ткани

    Метод дентальной объемной томографии (ДОТ) проточной клеточных

    Глава 3.

    3.6 Глава 4.

    Результаты и обсуждение лабораторных исследований. 55 Фенотипические и функциональные характеристики СКЖТ. Создание тканеинженерных конструкций.

    Сравнение пролиферативной активности СКЖТ при 57 культивировании в средах AdvanceSTEM или DMEM в присутствии аутологичной сыворотки или 10% фетальной бычьей сыворотки.

    Оценка уровня апоптоза и распределения клеток СКЖТ по 58 фазам клеточного цикла.

    Характеристика экспрессии поверхностных клеточных 59 маркеров СКЖТ методом проточной цитофлуориметрии. Оценка мультипотентных свойств СКЖТ при 63 культивировании с использованием AdvanceSTEM™ с аутологичной сывороткой.

    Оценка пролиферативной активности стромальных клеток 66 жировой ткани в условиях индукции остеогенной дифференцировки при культивировании в среде AdvanceSTEM™ с аутологичной сывороткой Анализ способности СКЖТ адгезировать на «КоллапАн-Г» 70 и ГАП. Создание тканеинженерных конструкций Результаты пилотного клинического исследования.

    Обзор клинического материала по результатам лечения 73 пациентов с дефектами и атрофией альвеолярных отростков/частей верхней и нижней челюстей с использованием тканеинженерных конструкций на основании СКЖТ и остеогенных носителей.

    Результаты клинического исследования введения 77 тканеинженерных конструкций при лечении пациентов с дефектами и атрофией альвеолярных отростков верхних челюстей.

    Результаты клинического исследования введения 100 тканеинженерных конструкций при лечении пациентов с дефектами и атрофией альвеолярных частей нижних челюстей.

    Гистологический анализ биопсий.

    • Применение аутологичных стромальных клеток из жировой ткани для восстановления объёма кости альвеолярных отростков/частей верхней и нижней челюстей (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

    Актуальность исследования.

    Актуальной проблемой стоматологии и челюстно-лицевой хирургии является поиск наиболее эффективных средств и методов костной пластики, создающих оптимальные условия для репаративного остеогенеза.

    При восстановлении костной ткани большое значение имеет вторая стадия репаративной регенерации, заключающаяся в пролиферации и остеогенной дифференцировке собственных стромальных клеток, формировании клеток остеобластического ряда, образующих костную ткань (А.А.Кулаков, А. С. Григорян, 2007). Поэтому одной из актуальных задач в стоматологии и челюстно-лицевой хирургии является создание необходимого количества стромальных клеток, условий для их остеогенной дифференцировки и доставки в зону регенерации. Тканевая инженерия решает данную задачу путем создания тканеинженерных конструкций на основе стромальных клеток из разных источников и остеогенного носителя для дальнейшей трансплантации их в зону дефекта.

    ТТрпрттртгхт/тнт-тлд г/ггхпиигл тттта ппттщрн1ла ртпгшятп. нму ь-пртт/.

    — А. X, А XX X Л А. АХ V/ 111 / у ¦ ' ¦ 111. ^ XXX 1/1 V X V/ 111 М11"111/1/ V IV./ X V X V IV является жировая ткань. Известно, что в жировой ткани человека сконцентрирована популяция мультипотентных фибробластоподобных клеток мезенхимального происхождения (СКЖТ), экспрессирующих маркеры стволовых клеток СБ 105, СБ73, СЭ90 и способных дифференцироваться в нескольких направлениях, в том числе в остеогенном и эндотелиальном (АкИаш! О. е1 а1., 1992; 81а81юуег М. е1 а1., 1999; Бо1штс1 е1 а1., 2006). Наиболее важным преимуществом стромальных клеток из жировой ткани является то, что они могут быть выделены в большем количестве, с минимальными болезненными ощущениями для пациента. Стромальные клетки из жировой ткани хорошо адгезируют к пластику и пролиферируют, что позволяет при относительно небольшом сроке культивирования получить достаточное для трансплантации количество клеток (гик Р.А. е1 а1., 2002; ЯеИтап I. & а1., 2004; Р1апа1-Вепагс1 V. & а1., 2004). Перечисленные свойства этих клеток позволяют предполагать, что использование аутологичных стромальных клеток жировой ткани в сочетании с остеогенным носителем способно ускорить образование полноценного костного регенерата, что особенно важно для пациентов со значительными по размеру дефектами. Цель исследования.

    Обосновать и разработать технологию создания и применения тканеинженерных конструкций на основе аутологичных стромальных клеток из подкожной жировой клетчатки и остеогенного носителя для регенерации костной ткани у пациентов с атрофией и дефектами альвеолярных отростков/частей верхней и нижней челюстей. Задачи исследования.

    1. Разработать методику выделения, культивирования и подготовки к трансплантации аутологичных стромальных клеток из жировой ткани пациентов.

    2. Охарактеризовать экспрессию поверхностных маркеров аутологичных стромальных клеток из жировой ткани.

    3. Изучить жизнеспособность и способность аутологичных стромальных клеток из жировой ткани к адгезии на носителях (ГАП и «КоллапАн-Г»).

    4. Оценить влияние аутологичных стромальных клеток из жировой ткани на носителях (ГАП и «КоллапАн-Г») на динамику заживления костного дефекта челюстей у людей.

    5. Разработать методику индукции дифференцировки стромальных клеток из жировой ткани в остеогенном направлении.

    6. Исследовать влияние тканеинженерных конструкций на основе аутологичных стромальных клеток из жировой ткани и стромальных клеток из жировой ткани, индуцированных в остеогеогенном направлении, в сочетании с остеогенным носителем на морфологию формирующейся костной ткани в динамике при замещении костных дефектов челюстей людей.

    7. Разработать алгоритм применения данной методики в клинической практике.

    Научная новизна.

    Впервые разработана методика выделения, культивирования и подготовки к трансплантации стромальных клеток жировой ткани человека с использованием среды AdvanceSTEM™ (среда для поддержания роста недифференцированных мезенхимальных стромальных клеток) с добавлением аутологичной сыворотки крови пациента. Для создания тканеинженерных конструкций использовали: 1. стромальные клетки жировой ткани, культивированные в среде AdvanceSTEM™ с аутологичной сывороткой (АС), для получения культуры, обладающей регенеративным потенциалом и способностью стимулировать рост сосудов- 2. впервые использовали смесь стромальных клеток жировой ткани, культивированные в среде AdvanceSTEM™ с аутологичной сывороткой (АС), со стромальными клетками жировой ткани, культивированными в остеоиндуктивных условиях в течение 3-х недель. Смесь культивированных стромальных клеток жировой ткани в дальнейшем инкубировали в присутствии остеогенных носителей «КоллапАн-Г» или ГАП для создания тканеинженерных конструкций, пригодных для использования в клинике.

    Впервые проводилась оценка эффективности применения тканеинженерных конструкций, полученных на основе аутологичных стромальных клеток жировой ткани, выращенных с использованием аутологичной сыворотки крови пациента и остеогенного носителя при восстановлении объема костной ткани у пациентов с дефектами и атрофией альвеолярных отростков/частей верхней и нижней челюстей. Практическое значение.

    1. Проведенные исследования позволили разработать методику создания и применения тканеинжинерных конструкций на основе стромальных клеток жировой ткани в клинической практике.

    2. Доказана, эффективность использования тканеинженерных конструкций на основе аутологичных стромальных клеток из жировой ткани и стромальных клеток из жировой ткани, индуцированных в остеогеогенном направлении, в сочетании с «КоллапАн-Г» в качестве носителя при замещении костных дефектов челюстей пациентов.

    Основные положения, выносимые на защиту.

    1. Разработана методика культивирования стромальных клеток жировой ткани с использованием среды для поддержания роста недифференцированных мезенхимальных стромальных клеток с добавлением аутологичной сыворотки крови пациента.

    2. Создана и оптимизирована тканеинженерная конструкция на основе стромальных клеток жировой ткани, культивированные в среде Ас1уапсе8ТЕМ™ с аутологичной сывороткой (АС) и на основе комбинации стромальных клеток жировой ткани, культивированные в среде АсЬ/апсеБТЕМ™ с аутологичной сывороткой (АС), с стромальными клетками жировой ткани, культивированными в остеоиндуктивных условиях.

    3. Результаты использования созданных тканеинженерных конструкций в клинике для восстановления объема кости альвеолярных отростков/частей верхней и нижней челюстей.

    Апробация работы.

    Работа апробирована 1 июля 2011 г на совместном заседании кафедр госпитальной хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии, хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии ФПДО, кафедра ортодонтии и детского протезирования (протокол № 19).

    Структура и объем диссертации

    .

    Диссертация изложена на 146 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, 2 глав собственных исследований, заключения, выводов и практических рекомендаций. Работа проиллюстрирована 48 рисунками и 2таблицами. Библиография включает работ 171 работ, из которых 68отечественных и 103 зарубежных авторов.

    ВЫВОДЫ.

    1. Разработана методика выделения, культивирования и подготовки к трансплантации СКЖТ человека с использованием среды AdvanceSTEM™ (HyClone)/ Antibiotic/Antimycotic Solution ЮОх (HyClone) с добавлением 10% сыворотки крови донора жировой ткани (аутологичной сыворотки).

    2. Полученная культура СКЖТ обладает высокой способностью адгезировать к пластику и экспессировать характерные для стромальных клеток СКЖТ поверхностные маркеры PDGFbR, CD 105, CD90, CD49a. Культура СКЖТ обладает мультипотентными свойствами, то есть способностью дифференцироваться в адипоцитарном, остеогенном, хондрогенном и эндотелиальном направлениях.

    3. Полученная культура СКЖТ обладает высокой пролиферативной активностью, низким уровнем апоптоза и способна к адгезии на носителях ГАП и «КоллапАн-Г». Культивирование СКЖТ в присутствие остеогенных носителей «КоллапАн-Г» или ГАП позволило создать тканеинженерные конструкции, пригодные для использования в клинике.

    4. Использование тканеинженерных конструкций на основе СКЖТ и ГАП, СКЖТ и «КоллапАн-Г» для восстановления объема кости у пациентов стимулирует регенерацию костной ткани, которая характеризуется недостаточной однородностью и минерализацией.

    5. Разработана методика индукции дифференцировки стромальных клеток из жировой ткани в остеогенном направлении. Получаемая описанным способом культура СКЖТ обладает более высоким потенциалом дифференцировки в остеогенном направлении, чем культуры, получаемые стандартным способом.

    6. Использование комбинированной тканеинженерной конструкции, полученной на основе «КоллапАн-Г» и сочетания СКЖТ, культивированных в среде AdvanceSTEM™ с АС, с СКЖТ, культивированных в остеоиндуктивных условиях, достоверно увеличивает содержание формирующейся костной ткани в регенерате и стимулирует образование кровеносных сосудов по сравнению с тканеинженерными конструкциями на основе СКЖТ, культивированных в среде АёуапсеБТЕМ™ с АС, в сочетании с ГАП или «КоллапАн-Г». Использование комбинированной тканеинженерной конструкции приводит к органотипическому восстановлению утраченной костной ткани, что делает возможным установку дентальных имплантатов через 3 месяца и позволяет сократить сроки реабилитации пациентов.

    7. Разработан алгоритм создания тканеиженерных конструкций и их клинического применения.

    ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

    1. Для сокращения сроков органотипического восстановления утраченной костной ткани у пациентов рекомендована трансплантация в зону костного дефекта комбинированной тканеинженерной конструкции на основе сочетания СКЖТ, культивированных в стандартных услвоиях, и СКЖТ, преддифференцированных в остеогенном направлении (в соотношении 1:1), на носителе «КоллапАн-Г».

    2. Для получения жировой ткани рекомендовано использовать методику липосакции подкожной жировой клетчатки из передней брюшной стенки справа и слева от белой линии живота без ее повреждения.

    3. Учитывая особенности выделения, хранения и транспортировки жировой ткани, а так же особенности трансплантации тканеинженерных конструкций рекомендовано проведение данных манипуляций в специализированных клиниках хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии.

    Показать весь текст

    Список литературы

    1. Актуальные проблемы теоретической и клинической остеоартрологии / Ю.И. Денисов-Никольский, С. П. Смирнов, Н. П. Омельяненко, И. В. Матвейчук.- М.: ОАО «Типография «Новости», 2005. С.25
    2. Л.Г. Лечение воспалительных осложнений и профилактика атрофии альвеолярных отростков после удаления зубов с применением брефотрансплантационной костной ткани : Автореф. дис. .канд. мед. наук. -Ереван, 1989.- 19 с.
    3. В.А. Хирургическое лечение периапикальных деструктивных изменений с использованием остеопластических материалов на основе гидроксиапатита: Автореф. дис.. канд. мед. наук. М., 2000. — 22 с.
    4. Бел озеров М. Н. Оценка остеопластических свойств различных биокомпозиционных материалов для заполнения дефектов челюстей (экспериментально-клиническое исследование): дис. .канд. мед. наук. М., 2004. — 147 с.
    5. Биоактивные гидроксиапатит содержащие биоимпланты в травматологии и ортопедии. / Г. Н. Берченко, З. И. Уразгильдеев, Г. А. Кесян и др. // Симпозиум по проблемам тканевых банков с международным участием.- М., 2001. — С.- 59.
    6. А.И., Максимовский Ю. М., Князев С. Н. Клиника, патогенез и лечение болезней зубов и тканей пародонта у больных с классической гемофилией // Зубоврачебный вестник.- 1993.- № 3.- С.13−18.
    7. А.И., Попов В. К., Краснов А. П. и др. Физико- механические и морфологические характеристики новых композитов на основе сверхвысокомолекулярного полиэтилена и гидроксиапатита // Новое в стоматологии. 1999.- № 8.- С.35−43.
    8. А.И., Топольницкий О. З., Попов В. К. и др. Модификация акриловой пластмассы введением в нее гидроксиапатита с последующей очисткой сверхкритической двуокисью углерода // Новое в стоматологии.-1999.-№ 3.- С.32−40.
    9. И.Ю., Базикян Э. А., Бычков А. И. Применение гидроксиапола при восполнении костных дефектов челюстей и стимуляции остеогенеза // Стоматология. 1996. — № 5. — С. 54−56.
    10. А. М. Применение биоактивного стеклокристаллического материала «Биоситалл-11» для замещения костных дефектов лицевого скелета (экспериментально-клиническое исследование): дис.. канд. мед. наук.- М., 2009.- 92 с.
    11. А.М. Экспериментальное обоснование применения биоактивного стеклокристаллического материала «Биоситалл-11» для замещения костных дефектов челюстных костей. / А. М. Гречуха, С.Д.
    12. Беззубик // Стоматология.- 2009.- № 3, т. № 88.- С.26−30.
    13. А.Ю. Экспериментальное обоснование и практическое применение отечественных биокомпозиционных материалов при костно-восстановительных операциях на челюстях.: Дис.. д-ра. мед. наук.- М., 2001.- 237 с.
    14. И.И., Спекторов В. А. Костная брефопластика при лечении одонтогенных кист челюстей. // Стоматология. 1968. — № 1. — С. 42−45.
    15. Замещение дефектов лицевого скелета деминерализованными костными аллотрансплантатами / П. Г. Сысолятин и др. // Стоматология.- 1988.- № 1.-С.38−41.
    16. В.П., Панкратов A.C. Остеорепарация посттравматических дефектов нижней челюсти под воздействием гидроксиапатита ультравысокой дисперсности // Стоматология. -1999. № 1. — С.37−41.
    17. С.Ю., Панин A.M. Использование препарата КоллапАн при лечении поздних осложнений дентальной имплантации: Сб. Новые технологии в стоматологии. М., 1998.- С. 149−150.
    18. С.Ю., Панин A.M., Кузнецов Г. В. Изучение свойств остеопластических материалов «Биоматрикс» и «Алломатрикс Имплант» в эксперименте.// V Международная конференция челюстно — лицевых хирургов и стоматологов: Матер, конф.- СПб., 2002.- С. 66.
    19. В.А. Пластическое замещение дефектов нижней челюсти костной23. щебенкой: Дис. .канд. мед. наук. Архангельск. — 1953. — 160 с.
    20. Кац А. Г. Регенерация костной ткани после удаления кисты челюсти // Стоматология. -1965. № 5. — С. 52−57.
    21. Клиническая апробация препаратов на основе гидроксиапатита в стоматологии / А. И. Воложин, C.B. Дьякова, 0.3. Топольницкий и др. // Новое в стоматологии. -1993. № 3. — С. 29−31.
    22. Корневая паста на основе гидроксиаола фирмы «Полистом» / А. И. Воложин, Г. М. Барер, A.C. Григорян и др. // Вестник стоматологии.- 1996.- № 5(41).- С.З.
    23. Костная брефопластика как метод стимуляции репаративного остеогенеза челюстей. / Г. П. Рузин, Ю. С. Захаров, Д. Д. Ботов и др. // Вопросы аллотрансплантации в стоматологии: Тр. МОНИКИ.- М., 1979. т. 24. — С. 53−56.
    24. Котова-Лапоминская Н. В. Применение стеклокристаллического остеоапластического материала «Биосит СР Элкор» в хирургической и ортопедической стоматологии: дис.. канд. мед. наук.- СПб., 2006. 143 с.
    25. Н.В., Лысенок Л. Н. Отдаленные результаты клинического применения биоситалла М31 в хирургической стоматологии. // V Международная конференция челюстно-лицевых хирургов и стоматологов. -СПб., 2000. — С. 74.
    26. С.Г. Гидроксиапол и колапол: применение в стоматологической хирургической практике. // Военно-медицинский журнал. -1997.-№ 6.- С. 48−49.
    27. С.Д. Опыт применения гидроксиапатита в хирургической стоматологической практике. // Стоматология. 1999. — № 2. — С.59−61.
    28. В.К. Биологически активные синтетические кальцийфосфатсодержащие материалы для стоматологии // Стоматология. -1996.-№ 5.- С. 4−12.
    29. Ю.М., Чиркова Т. Д., Воложин А. И. Новый отечественный препарат гидроксиапол при хирургическом лечении пародонтита // Зубоврачебный вестник.- 1993.- № 3.- С.19−22.
    30. Ф. М. Сравнительная эффективность применения отечественных остеопластических материалов «Биоматрикс» и «Остеоматрикс» в комплесном лечении пародонтита : дис.. канд. мед. наук.-М., 2008.- 135 с.
    31. Механизм стимуляции ангиогенеза в ишемизированном миокарде с помощью стромальных клеток жировой ткани. / К. А. Рубина и др. // Кардиология.- 2010.- № 2.- С.58−66.
    32. A.A., Басченко Ю. В. Коллапан для челюстно лицевой хирургии и стоматологии.// Медицинская газета.- 1996.- № 34- С. 35.
    33. Новое поколение биокомпозиционных материалов для замещения дефектов костной ткани / С. Ю. Иванов, Л. И. Риллер, А. Ф. Бизяев и др. // Новое в стоматологии. -1999. № 5. — С. 47−50.
    34. О влиянии гидроксиапатита на пролиферативную активность клеток костной ткани / В. П. Зуев, П. В. Сергеев, И. В. Мелихов и др. // Хим.-фарм. журнал. -1994. -№ 2. С. 10−14.
    35. А.Ф., Ларионов Е. В., Саващук Д. А., Кравец В. М. Биоматериалы для тканевой инженерии и хирургической стоматологии.- М.: «ООО Конектбиофарм», 2004.- 16 с.
    36. А.Ф., Ларионов Е. В. Хондроитинсульфаты и их роль в обменехондроцитов и межклеточного матрнкса хрящевой ткани. // Научно-практическая ревматология. 2000.- № 2.- С. 46−55.
    37. В.В., Григорьян A.C., Фиалко H.H. Динамика заживления костных дефектов челюсти при введении в них аллогенного состава. // Стоматология. 1983. — № 3. — С. 7−9.
    38. A.M. Новое поколение биокомпозиционных остеопластических материалов (разработка, лабораторно клиническое обоснование, клиническое внедрение): автореф. дис. д-р. мед. наук.- 2004.- М., 48 с.
    39. Первый опыт применения в клинике костной патологии биокомпозиционного материала «Остеоматрикс». / М. В. Лекишвили, A.B. Балберкин, М. Г. Васильев и др. // Вестник травматологии и ортопедии им. H.H. Приорова.- 2002.- № 4. С.80−83.
    40. Применение новых препаратов гидроксиапола и колапола в клинике / В. К. Леонтьев, А. И. Воложин, Ю. Н. Андреев и др. // Стоматология. — 1995. -№ 5.-С. 69−71.
    41. Применение препаратов калапол и гидроксиапол для заполнения полостей после удаления радикулярных кист. / B.C. Агапов, С. А Аснина А. И. Воложин и др. // Медицинская консультация. 1996. -№ 3.- С. 44−45.
    42. Применение ОСТИМ-ЮО в комплексном лечении болезней парадонта / В. П. Зуев, Л. А. Дмитриева, H.A. Филатова и др. // Новое в стоматологии.-1996,-№ 2. С. 15−18.
    43. Применение синтетического гидроксиапатита в стоматологии, травматологии и хирургии / А. И. Воложин, В. Б. Лиханов, С. Н. Гаража и др. // Биомедицинские технологии. 1996. — Выпуск 5. — С. 27−35.
    44. П.А. Патология кости.- М.: Медицина, 1993.- 354с.
    45. Р.З. Использование костной щебенки. // Сов. стоматология. -1935.-№ 5.- С. 40.
    46. В.И., Войтович A.B., Калинин A.B. Внедрение стандартов в деятельность тканевых банков для травматологии и ортопедии.// Симпозиум по проблемам тканевых банков с международным участием.- СПб., 2001. С. 26.
    47. М.М., Ивасенко И. Н., Алехова Т. М. Влияние гидроксиапатита на заживление лунки зуба в эксперименте. // Стоматология. 1992. — № 6. — С. 8−10.
    48. Сравнительное изучение 2-х способов введения гранул гидроксиапатита / A.C. Григорьян, В. В. Паникаровский, Т. К. Хамраев и др. // Новое в техническом обеспечении стоматологии: Матер, конф. стоматологов.-Екатеринбург, 1992. С. 18−21.
    49. Сравнительное морфологическое изучение использование материалов «Остеоматрик» и «Биоматрикс» при пародонтологических вмешательствах в эксперименте / Д. А. Кострюков и др. // Пародонтология.- 2007.- № 2 (43).-С. 22−27.
    50. Стеклокристаллические материалы для медицины. / О. П. Чудаков, А. З. Бармуцкая, С. Д. Беззубик и др. // V Международная конференция челюстно-лицевых хирургов и стоматологов. СПб., 2000. — С. 150.
    51. Стромальные клетки жировой ткани пластический тип клеток, обладающих высоким терапевтическим потенциалом. / Д. О. Трактуев и др. // Цитология.- 2006- т. 4, № 2.- С.83−94.
    52. О.З. Обоснование выбора вида и размера аллотрансплататов при костной пластики нижней челюсти у детей: Автореф. дис. .канд. мед. наук.- М., 1994.- 26 с.
    53. Ю., Рунге Г. Остеопороз.- М.: Медицина, 1995.- 304с.
    54. А.Я., Лалыкина К. С. Индукция костной ткани и остеогенные клетки-предшественники.- М.: Медицина, 1973.-157с.
    55. Т.К. Применение гранулята керамики гидроксиапатита для замещения дефектов костной ткани челюсти : Автореф. дис. канд. мед. наук. -М., 1995.-23 с.
    56. Хем А., Кормак Д. Гистология. Т. 1. М.: Мир, 1983.- С.241−262.
    57. Хем А., Кормак Д. Гистология. Т. 2. М.: Мир, 1983.- С.106−126.
    58. Хем А., Кормак Д. Гистология. Т. 3. Ч. III.- М.: Мир, 1983.- С.19−160.
    59. Хирургическое лечение хронических очагов воспаления в тканях периодонта. / С. А. Аснина, B.C. Агапов, А. И Воложин и др. // V Международная конференция челюстно-лицевых хирургов.- СПб. 2000. -С. 22−23.
    60. Г. И. Результаты применения пористых углеродных имплантатов при лечении околокорневых кист. // V Международная конференция челюстно-лицевых хирургов и стоматологов.- СПб., 2000. С. 157.
    61. Albrektsson Т. Repair of bone grafts // Scand. J.Plast. Reconstr. Surg.- 1980.-Vol.14.-P. 1−12.
    62. Albrektsson T. The Healing of autologous bone grafts after varying degrees of surgical trauma // J. Bone Joint Surg.- 1980.- Vol.62-B.- P. 403−410.
    63. Bays R.A. Current advances in oral and maxillofacial surgery. In. W. Irby, D. Shelton: Current concepts in bone grafting.- Vol.4.- Chaps.4.- Toronto, St. Louis: C.V. Morsby Co., 1983.- P. 109−124.
    64. Block M.S., Kent J.V. Correction of vertical orbital dystopia with a hydroxylapatite orbital floor graft // J. Oral. Maxillofac. Surg.- 1988.- V.46.- N 5.-P. 420−425.
    65. Bourgeois В., Laboux O., Obabia L. et al. Calcium-deficient apatite: a first in vivo study concerning bone ingrowth. // J Biomed Mater Res 2003.- Vol.65.-P. 402−408.
    66. Branemark P.-I. et al. Repair of defects in mandible// Scand. J. Plast. Reconstr. Surg.- 1970.-Vol.4.-P. 100−108.
    67. Branemark P.-I., Zarb G.A., Albrektsson T. Tissue Integrated Prostheses. Osseointegration in clinical dentistry.- Chicago.- Quintessence Publ. Co., 1985.- P. 129−140
    68. Brinks J., Brinks G. et al. Two year evaluation of a Kneadable hydroxylapatite preparation for the preservation of human maxillomandibular bone //J. Oral. Implantol.- 1987.- V.13.- № 2.- P. 186−195.
    69. Bukwalter J., Glimcher M., Cooper R., Recker R. Bone Biology. Part I // J. Bone Joint Surg.- 1995.- Vol.77-A.- P. 1256−1272.
    70. Bukwalter J., Glimcher M., Cooper R., Recker R. Bone Biology. Part II // J. Bone Joint Surg.- 1995.- Vol.77-A.- P. 1276−1283.
    71. Caplan A. Bone development and repain // Bioessays.- 1987.- Vol. 6.- P. 171 175.
    72. Chiapasco M., R. Drusati R., Ronchi P. // Clin Oral Implants Reg. -2007.-Vol.18, № 1.- P. 74−85.
    73. Conejero J. A., Lee J.R., Parrett B.M. et al. Repair of palatal bone defects using osteogenically differentiated fat derived stem cells // Plast Reconstr Surg.2006.- Vol. 117.- № 3.- P. 857−863.
    74. Courpron P. Bone tissue mechanism underlying osteoporoses // Ortop. Clin. North. Amer.- 1981.- Vol. 12.- P.513−545.
    75. Cowan C.M., Aalami O.O., Shi Y. Y, et al. Bone morphogenetic protein 2 and retinoic fcid accelerate in vivo bone formation, osteoclast recruitment, and bone turnover. // Tissue Eng.- 2005, — Vol. 11.- P. 645−658.
    76. Cowan C.M., Shi Y.Y., Aalami O.O. et al. Adipose-derived adult stromal cells heal critical-size mouse calvarial defects. // Nat Biotechnol.- 2004.- Vol. 22.-P. 560−567.
    77. Davies J. et al. Early extracellular matrix synthesis. In.: Davies J.(ed.). The bone-Biomaterials Interface.- Toronto: University of Toronto Press, 1991.- P .214 228.
    78. Davies J., Chernecky R., Lowenberg B., Shiga A. Deposition and resorption of calcified matrix in vitro by rat bone marrow cell // Cell Materials.- 1991.- Vol. 1.- P. 3−15.
    79. Degano I.R., Vilalta M., Bago J. R. et al. Bioluminescence imaging of calvarial bone repair using bone marrow and adipose tissue-derived mesenchymal stem cells. // Biomaterials.- 2008.- Vol. 29.- № 4.- P. 427−437.
    80. Dicker A., Blanc K., Astrom G. et al. Functional studies of mesenchymal stem cells derived from adult human adipose tissue. // Exp Cell Res.- 2005.- Vol. 308.- P. 283−290.
    81. Diefenderfer D.L., Osyczka A.V., Reilly G.C., Leboy P. S., BMP responsiveness in human mesenchymal stem cells. // Connect Tissue Res.- 2003.-Vol. 44,-P. 305−311.
    82. De Kok I.J., Peter S.J., Archambauli M. et al. Investigation of allogeneic mesenchymal stem cell- based alveolar bone formation: preliminary findings.// Clin Oral Implants Res.- 2003.- Vol. 14, — P. 481−489.
    83. Donath K., Rother M.D., Herman B. Mobile and immobile hydroxyapatite integration and resorption and its influence on bone // J. Oral Implant. 1987. -Vol.13. -№ l.-P. 120−127.
    84. Dudas J.R., Marra K.G., Cooper G.M. et al. The osteogenic potential of adipose-derived stem cells for the repair of rabbit calvarial defects.// Ann Plast Surg.- 2006.- Vol. 56.- P. 543−548.
    85. Einchorn T. Enhancement of fracture healing // J. Bone Joint Surg.- 1995.-Vol. 77-A.- P. 940−948.
    86. Einchorn T.A. Clinical application of recombinant human BMPs: early experience and future development. // J. Bone Joint Surg Am.- 2003.- Vol. 85.- P. 82−88.
    87. Eriksson R.A., Albrektsson T., Magnusson B. Assesment of bone viability after heat trauma: A histological, histochemical and vtal microscopic stady in the rabbit // Scand. J. Plast. Reconstr. Surg.- 1984.- Vol. 18.- P. 261−268.
    88. Fang B., Song Y., Lin Q. et ai. Human adipose tissue-derived mesenchymal stromal cells as salvage therapy for treatment of severe refractory acute graft-vs.-host disease in two children // Pediatr Transplant.- 2007.- Vol. 11, — № 7.- P. 814−817.
    89. Fang B., Song Y., Liao L. et al. Favorable Response to Human Adipose Tissue-Derived Mesenchymal Stem Cells in Steroid-Refractory Acute Graft-Versus-Host Disease. // Transplantation Proceedings.- 2007.- Vol. 39.- P. 33 583 362.
    90. Fang B., Song Y., Zhao R.C. et al. Using Human Adipose Tissue-Derived M esenchymal Stem Cell as Salvage Therapy for Hepatic Graft-Versus-Host Disease Resembling Acute Hepatitis.// Transplantation Proceedings. .- 2007.-Vol. 39, — P. 1710−1713.
    91. Fukada E., Yasuda I. On the piezo-electric effect of bone //J. Phys. Soc. Jpn.-1957.- Vol.10.-P. 1158−1169.
    92. Gronthos S., Franklin S., Leddy H.A. et al. Surface protein characterization of human adipose tissue-derived stromal cells.// J. Cell Physiol.- 2001.- Vol. 189.- P. 54−63.
    93. Hattori H., Masuoka K., Sato M. et al. Bone formation using human adipose tissue-derived stromal cells and a biodegradable scaffold // J. Biomed Mater Res B Appl Biomater.- 2006.- Vol. 76.- P. 230−239.
    94. Hattori H., Sato M., Masuoka K. et al. Osteogenic potential of human adipose tissue-derived stromal cells as alternative stem cell source. // Cells Tissues Organs.- 2004.- Vol. 178.- P. 2−12.
    95. Hibi H., Yamada Y., Ueda M., Endo Y. Alveolar cleft osteoplasty using tissue-engineered osteogenic materiallnt.// J. Oral Maxilofac Surg. 2006.- Vol. 35.- P. 551−555.
    96. Hicok K.C., Du Laney T.V., zhou Y.S. et al. Human adipose-derived adult stem cells produce osteoid in vivo.// Tissue Eng. 2004.- Vol. 10.- № 3−4.- P. 371 380.
    97. Hong L., Tabata Y., Miyamoto S. et al. Bone regeneration at rabbit skuil defe cts treated with transforming growth factor-beta I incorporated hyd rogels with different levels of biodegradability.// J.Neurosurg.- 2006.- Vol. 92, — P. 315−325.
    98. Hoogduijn M., Gojup E., Genever P.G. Comparative characterization of hair follicle dermal stem cells and bone marrow mesenchymal stem cells. // Stem. Cell. Dev.- 2006, — Vol. 15.- № 1.- P. 49−60.
    99. Huang J.I., Beanes S.R., Zhu M., Lorens H.P., Hedrick M.H., Benhaim P.//Rat extramedullar adipose tissue as a source of osteochondrogenic progenitor cells. // Plast. Reconstr. Surg.- 2002, — Vol. 109, — P. 1033.
    100. Iatrou J.A., Legakis N. et. al. Anaerobic bacteria in jaw cysts // Brin. J. Oral. Maxillofac. Surg.- 1988.- V. 26, — № 1.- P. 62−69.
    101. Jaworski Z. Physiology and pathology of bone remodeling // Orthop. Clin. North. Amer.- 1981.- Vol. 12.- P. 485−512.
    102. Jiang Y., Vaessen B., Lenvik T., Blackstad M., Reyes M., Verfaillie C.M. Multipotent progenitor cells can be isolated from postnatal murine bone marrow, muscle, and brain // Exp. Hematol.- Vol. 30.- P. 896.
    103. Jensen O.T. Combined hydroxylapatite augmentabion and lip-switch uestibuloplasty in the mandible // Oral. Surg.- 1985.- V. 60.- № 4. p. 349−355.
    104. Kale S., Biermann S., Edwards C. et al. Three-dimensional cellular development is essential for ex vivo formation of human bone.// Nat Biotechnol.-2000.- Vol. 18.-P. 954−958.
    105. Lanyon L., Rub C. Static vs dynamic loads as an influence on bone remodeling // J.Biomech.- 1984, — Vol. 17.- P. 897−905.
    106. Lee R.H., Kim B.C., Choi I.S. et al. Characterization and Expression Analysis of Mesenchymal Stem Cells from Human Bone Marrow and Adipose Tissue.// Cell Physiol Biochem.- 2004.- Vol. 14.- P. 311−324.
    107. Leong D.T., Abraham M.C., S.N.Rath S.N.et al. Investigating the effects of preinduction on human adipose-derived precursor cells in an athymic rat model. // Differentiation.- 2006.- Vol. 74.- P.519−529.
    108. Leong D.T., Khor W.M., Chew F.T.et al. Characterization of osteogenically induced adipose tissue-derived precursor cells in 2-dimensional and 3-dimensional environments.// Cells Tissues Organs.- 2006.- Vol. 182.- P. 1−11.
    109. Lendeskel S., Jodicke A., Christophis P. et al.// J. Craniomaxillofac Surg.-2004, — Vol. 32.- № 6, — P. 370−373.
    110. Li X., Jin L., Balian G. et al // Biomaterials.- 2006.- Vol. 27.- № 11.- p. 2426−2433.
    111. Lynch S., Genco R., Marx R. Tissue Engineering. Application in Maxillofacial Surgery and Periodontics.- Chicago: Quintessence Publ. Co. Inc., 1999.- 285 p.
    112. Liu H., Mao J., Yao K., Yang G., Cui L., Cao Y. A study on a chitosan-gelatin-hyaluronic acid scaffold as artificial skin in vitor and its tissue engineering applications.// J.Biomater. Sci. Polym.- 2004.- Vol. 15.- P. 25−40.
    113. Lin G., Garcia M., Ning H., Banie L., Guo Y.L., Lue T.F., Lin C.S. Defining stem and progenitor cells within adipose tissue.// Stem Cells Dev. 2008- Vol.1 7.-P. 1053−1063.
    114. Llames S.G., Del Rio M., Larcher F., Garcia M., Escamez M.J. et al. Human plasma as a dermal sccaffold for the generation of a completely autologous bioengineere skin.// Transplantaion.- 2004.- Vol. 77.- P. 350−355.
    115. Mankani M.H., Kuznetsov S.A., Wolfe R.M. et al. In vivo bone formation by human bone marrow stromal cells: reconstruction of the mouse calvarium and mandible.// Stem Cells.- 2006.- Vol. 24, — P. 2140−2149.
    116. Marx R.E. Clinical applications of bone biology to mandibular and maxillary reconstruction // Clin. Plast. Surg.- 1994.- Vol. 21.- P. 377−392.
    117. Martin-Rendon E., Hale S.J., Ryan D. et al. Transcriptional profiling of human cord blood CD 133+ and cultured bone marrow mesenchymal stem cells in response to hypoxia. // Stem Cells.- 2007, — Vol. 25.- P. 1003−1012.
    118. Mazlyzam A.L., Aminuddin B.S., Lokman B.S., Isa M.R., Fuzina H., Fauziah O., et al. Quantity evaluation analysis of bioengineered human skin.// Med. J.Malaysia.- 2004.- Vol. 59-B.- P. 39−40.
    119. Mazlyzam A.L., Aminuddin B.S., Lokman B.S., Ruszymah B.H.I. Human serum is an advantageous supplement for human dermal fibroblast expansion: clinical implications for tissue engineering of skin. // Arch. Med. Res.- 2008.- Vol. 39, — P. 743−752.
    120. Mcintosh K., Zvonik S., Garrett S. et al. The immunogenicity of human adipose derived cells? temporal changes in vitro.// Stem Cells.- 2006.- Vol. 24.- P. 1245−1253/
    121. Meijers W.G., Jansen H. W. P. Porous Hydroxylapatite as bone substitute in the subchondral layer // Acta Orthopaed. Scand.- 1984.- V. 8.- № 6.- P. 662−665.
    122. Mercier P. Ridge reconstruction with hydroxylapatite. Part 1. Anatomy of the residual ridge // J. Oral. Surg.- 1988.- V.65- № 5.- P. 505−510.
    123. Nombela-Arrieta C., Ritz, J., Silberstein, L.E. The elusive nature and function of mesenchymal stem cells. //Nat Rev Mol Cell Biol.- 2011.- V. l 2.- P. 126−31.
    124. Ohnishi S., Yasuda T., Kitamura S. et al. Effect of hypoxia on gene expression of bone marrow-derived mesenchymal stem cells and mononuclear cells. // Stem cells.- 2007.- Vol. 25.- P. 1166−1177.
    125. Okumura A., Goto M., Goto T. et al. Substrate affects the initial attachment and subsequent behavior of human osteoblastic cell (Saos-2).// Biomaterials.-2001, — V. 22.-P. 2263−2271.
    126. Ozerdem U., Grako K.A., Dahlin-Huppe K., Monosov E., Stallcup W.B. NG2 proteoglycan is expressed exclusively by mural cells during vascular morphogenesis // Dev. Dyn.- 2001, — V. 222.- P. 218−227.
    127. Rah D.K. Art of replacing Craniofacial bone defects. // J. Yonsi Med. 2000-Vol. 41.-P. 756−765.
    128. Rehman J., Traktuev D., Li J. et al. Secretion of angiogenic and antiapoptotic factors by human adipose stromal cells. // Circulation.- 2004.- Vol. 109.- P. 12 921 298.
    129. Rey C., Hina A., Tofighi A. et al. Maturation of poorly crystalline apatites: Chemical and structurae aspects in vivo and in’vitro // Cells Mater.- 1995. Vol. 5. — № 4.- P. 345−356.
    130. Rodan G. Introduction to bone biology // Bone.- 1992.- Vol. 13 (suppl.l).- P. 3−6.
    131. Rhinelander F. The normal circulation of bone and its response to surgical intervention // J. Biomed. Mater. Res.- 1974.- Vol. 8.- P. 87−95.
    132. Rudelt H.G. Das Keimspektrum der infezierten Zyste // Dtsch. Zahn.- 1985.-Bd. 40.-6.- S. 590−591.
    133. Rosa A.L., Belot M.M., Van Noort R. et al. R. Surface topography of hydroxyl apatite affects ROS 17/2.8 cells response. // Pesqui Odontol Bras 2002.-Vol. 16- P. 209−215.
    134. Sadat S., Gehmert S., Song Y.-H. et al. The cardioprotective effect of mesenchymal stem cells is mediated by IGF-I and VEGF.// Biochem Biophys Res Com.- 2007.- P. 363−674.
    135. Stenderup K., Justesen J., Clausen C., Kassem M. Aging is associated with decreased maximal life span and accelerated senescence of bone marrow stromal cells.// Bone.- 2003.- Vol.33−6.- P. 919−926.
    136. Stosich M.S., Mao J.J. Adipose tissue engineering from human adult stem cells: clinical implications in plastic and reconstructive surgery // Plast Reconstr Surg.- 2007.- Jan.- Vol. 26.- № 7, — P. 8−421.
    137. Tuan R.S., Boland G., Tuli R. Adalt mesenchymal stem cells and cell-based tissue engineering. // Arthritis Res Ther.- 2003.- Vol. 5.- P. 32.
    138. Urist M.R. et al. Inductive substrates for bone formation // Clin. Orthop.-1968, — Vol. 59.- P. 59−96.
    139. Urist M.R. Bone morphogenic protein: The molecularization of the skeletal system // J. Bone Mineral. Res.- 1997.- Vol. 12.- P. 343−352.
    140. Urist M.R., Strates B.S. Bone morphogenic protein // J. Dent. Res.- 1971.-Vol. 50.- P. 1392−1394.
    141. Van Harmelen V., Rohrig K., Hauner H. Comparison of proliferation and differentiation capacity of human adipocyte precursor cells from the omental and subcutaneous adipose tissue depot of obese subjects. // Metabolism.- 2004.- Vol. 53−5.- P. 632−637.
    142. Weinzierl K., Hemprich A., Frerich B. Bone engineering with adipose tissue derived stromal cells. // J. Craniomaxillofac Surg.- 2006.- Vol. 34.- № 8.- P. 466 471.
    143. Wijelath ES, Rahman S, Murray J, Patel Y, Savidge G, Sobel M Fibronectin promotes VEGF-induced CD34 cell differentiation into endothelial cells. // J Vase Surg.- 2004.- Vol. 39.- P. 655.
    144. Yamashita J., Itoh H., Hiroshima M., Nishikawa S., Yurugi T., Naito M., Nakao K. Flkl-positive cells derived from embryonic stem cells serve as vascular progenitors. // Nature.- 2000.- Vol. 92.- P. 408.
    145. Yuan H., Van Den Doel M., Li S. et al.A comparison of the osteoinductive potential of two calcium phosphate ceramics implanted intramuscularly in goats. // J. Mater Sci Mater Med.- 2002.- Vol.13.- P. 1271−1275.
    146. Zhao Y, Glesne D, Huberman E A human peripheral blood monocyte-derived subset acts as pluripotent stem cells. // Proc Natl Acad Sci U S A.- 2003.- Vol. 100, — P. 2426.
    147. Zhou S., Greenberger J.S., Epperly M.W.et al. Age-retated intrinsic changes in humfn bone-marrow-derived mesenchymal stem cells and their differentiation to osteoblasts. //Aging Cell.- 2008.- Vol. 7−3.- P. 335−343.
    148. Zuk P.A., Zhu M., Ashjian P., De Ugarte D.A., Huang J.I., Mizuno H., Alfonso Z.C., Fraser J.K., Benhaim P., Hedrick M.H. Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells. // Mol Biol Cell.- 2002.- Vol. 13- P. 4279.
    Заполнить форму текущей работой

    На отлично!