Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Выявление вируса простого герпеса и цитомегаловируса в мужских половых клетках при экспериментальной инфекции in vitro и в эякуляте мужчин с нарушениями фертильности

Диссертация: Выявление вируса простого герпеса и цитомегаловируса в мужских половых клетках при экспериментальной инфекции in vitro и в эякуляте мужчин с нарушениями фертильности
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Вирус простого герпеса (ВПГ) и цитомегаловирус (ЦМВ) чрезвычайно широко распространены в популяции и вызывают широкий спектр патологии человека. Предположение о присутствии ВПГ и ЦМВ в эякуляте было впервые высказано в начале 70-х годов прошлого века. Проблема выявления вирусов в половых клетках на протяжении многих лет привлекает внимание исследователей по нескольким причинам. ВПГ чаще… Читать ещё >

Содержание

  • ИСПОЛЬЗОВАННЫЕ СОКРАЩЕНИЯ
  • ОБЗОР ДАННЫХ ЛИТЕРАТУРЫ
  • Глава 1. Современные представления о морфогенезе вируса простого герпеса и цитомегаловируса
    • 1. 1. Общая характеристика герпесвирусов
    • 1. 2. Структура вириона
    • 1. 3. Морфогенез
    • 1. 4. Роль сверхраннего белка 1Е-рр72 в морфогенезе цитомегаловируса
  • Глава 2. Герпесвирусная инфекция: эпидемиологические и патогенетические аспекты
    • 2. 1. Эпидемиология
    • 2. 2. Клиническая патология
  • Глава 3. Общие понятия о сперматогенезе
    • 3. 1. Строение мужских гонад
    • 3. 2. Митоз и мейоз в сперматогенезе
    • 3. 3. Спермиогенез
    • 3. 4. Созревание сперматозоидов в семявыводящих путях
    • 3. 5. Морфология зрелых сперматозоидов
  • Глава 4. Влияние вируса простого герпеса и цитомегаловируса на сперматогенез
    • 4. 1. Бессимптомное выделение герпесвирусов с эякулятом
    • 4. 2. Роль вируса простого герпеса и цитомегаловируса в развитии бесплодия у мужчин
    • 4. 3. Внутригаметная локализация герпесвирусов
    • 4. 4. Влияние внутригаметной герпесвирусной инфекции на течение беременности
    • 4. 5. Изучение герпесвирусной инфекции мужских гонад

Выявление вируса простого герпеса и цитомегаловируса в мужских половых клетках при экспериментальной инфекции in vitro и в эякуляте мужчин с нарушениями фертильности (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы.

Вирус простого герпеса (ВПГ) и цитомегаловирус (ЦМВ) чрезвычайно широко распространены в популяции и вызывают широкий спектр патологии человека [237, 273]. Предположение о присутствии ВПГ и ЦМВ в эякуляте было впервые высказано в начале 70-х годов прошлого века [90, 180, 202]. Проблема выявления вирусов в половых клетках на протяжении многих лет привлекает внимание исследователей по нескольким причинам.

Во-первых, выделение вируса с эякулятом вносит существенный вклад в его горизонтальное распространение в популяции [21, 133].

Во-вторых, в последние годы возрастает число исследований, свидетельствующих о том, что инфекции органов мочеполовой системы, в том числе вирусные, занимают важное место в структуре причин мужского бесплодия [41, 72, 119, 177]. Мнения исследователей относительно роли ВПГ и ЦМВ в этиологии нарушений фертильности у мужчин расходятся от полного отрицания влияния герпесвирусов на процесс созревания мужских половых клеток [73, 128, 248] до установления прямой корреляции между вирусным инфицированием эякулята и мужским бесплодием [72, 183, 188, 250].

В-третьих, инфицирование половых клеток предполагает возможность вертикальной передачи вируса при оплодотворении яйцеклетки пораженной гаметой, что может стать причиной самопроизвольного аборта или внутриутробной инфекции плода [7, 10]. Особую актуальность проблема вирусного инфицирования сперматозоидов приобрела в связи с развитием вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ), поскольку искусственная селекция мужских гамет может нарушить естественные механизмы отбраковки инфицированных гамет и стать причиной заражения яйцеклетки.

Кроме того показано, что у лиц, выделяющих герпесвирусы с эякулятом, возрастает риск заражения другими инфекционными агентами, в частности ВИЧ [50, 120].

Цель и задачи исследования

.

Цель настоящего исследования заключалась в оценке влияния ВПГ и ЦМВ на сперматогенез.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

1. Оценить частоту выявления ВПГ и ЦМВ в эякуляте пациентов с нарушением фертильности по сравнению со здоровыми мужчинами.

2. Изучить влияние ВПГ и ЦМВ на основные показатели качества спермы (концентрацию сперматозоидов, количество подвижных и морфологически нормальных форм сперматозоидов) и на созревание половых клеток.

3. Оценить возможность внутригаметной локализации герпесвирусов.

4. Разработать модель герпесвирусной инфекции (ГВИ) мужских гонад in vitro.

5. Оценить влияние острой ВПГ-инфекции (ВПГИ) на сперматогенный эпителий мыши.

6. Выявить половые и соматические клетки мужских гонад, чувствительные к герпесвирусам.

7. Изучить изменения структуры диплоидных фибробластов человека под действием ЦМВ при низкой множественности инфицирования (МИ).

Научная новизна и практическая значимость.

1. Впервые показаны сезонные различия частоты выделения ВПГ и ЦМВ с эякулятом.

2. Установлена связь между наличием ВПГ в эякуляте и первичным бесплодием у мужчин.

3. Выявление ВПГ и ЦМВ во фракции подвижных сперматозоидов указывает на необходимость исследования эякулята на маркеры герпесвирусов перед осуществлением ВРТ, в ходе обследования кандидатов на донорство спермы, а также при планировани семьи.

4. Для изучения влияния герпесвирусов на сперматогенез разработана модель ГВИ мужских гонад in vitro.

5. Впервые вирусные капсиды типа С выявлены в ядрах сперматогоний и сперматоцитов.

6. Впервые на ультраструктурном уровне описана локализация сверхраннего белка 1Е-рр72 ЦМВ в околоядерном включении — предполагаемом сайте окончательной сборки вируса.

7. Выявление 1Е-рр72 ЦМВ в плотных тельцах, обладающих способностью проникать в клетки, указывает на то, что выявление указанного белка в клетке без других маркеров инфекции может быть следствием пассивного переноса вирусных антигенов.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Показано, что у мужчин без клинических признаков инфекции мочеполового тракта частота выявления ВПГ с эякулятом составляет в среднем 27,3%, ЦМВ — 8,8%, с максимумом выделения герпесвирусов в зимние месяцы (ВПГ — 34%, ЦМВ — 15,7%).

2. Установлена прямая корреляция между инфицированностью эякулята ВПГ и первичным бесплодием.

3. Инфекционно-активный ВПГ и ЦМВ и ДНК герпесвирусов выявлены не только в цельном эякуляте, но и во фракции подвижных сперматозоидов.

4. На ультраструктурном уровне выявлена способность ВПГ проникать в ядра клеток-предшественников сперматозоидов мьппи, а также высокая чувствительность клеток интерстиция к ВПГ.

5. При заражении фибробластов ЦМВ с низкой МИ на поздних стадиях инфекции выявлено накопление сверхраннего белка 1Е-рр72 в околоядерном включении в составе плотных телец.

ОБЗОР ДАННЫХ ЛИТЕРАТУРЫ.

Выводы.

1. У мужчин без клинических проявлений инфекции урогенитального тракта частота выявления маркеров ВПГ в эякуляте составляет 27,3%, ЦМВ -8,8%. Выделение герпесвирусов с эякулятом возрастает в зимние месяцы.

2. ВПГ чаще встречается у мужчин с первичным бесплодием, при этом выявлена корреляция между присутствием ВПГ и ухудшением показателей качества спермы, а также нарушением процесса созревания мужских половых клеток. Этиологическая роль ЦМВ в развитии бесплодия не доказана.

3. ВПГ и ЦМВ выявлены как в цельном эякуляте, так и во фракции подвижных сперматозоидов.

4. ВПГ оказывает гаметотоксическое воздействие на герминативный эпителий.

5. Показана возможность заражения как соматических клеток семенника, так и половых клеток, находящихся на ранних этапах цитодифференцировки.

6. В фибробластах человека, зараженных ЦМВ с низкой множественностью, в околоядерном включении впервые обнаружен сверхранний белок IE-1 рр72, находящийся в составе ПТ.

7. Разработка и внедрение в практику алгоритмов исследования эякулята на присутствие герпесвирусов позволяет оцепить значение герпесвирусов в этиологии бесплодия и использовать этиотропное лечение, что уменьшает вероятность вертикальной передачи ВПГ и ЦМВ.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.Г., Курило Л. Ф., Шилейко Л. В. и др. Бессимптомная форма генитального герпеса и бесплодие у мужчин // Урология. 2007. — № 3. — С.56−59.
  2. А.Г., Торганова И. Г., Витязева И. И. и др. Влияние бессимптомной формы герпесвирусной инфекции на результаты лечения бесплодия методами вспомогательных репродуктивных технологий // Акушерство и гинекология. 2009. — № 1. — С.45−48.
  3. Е.И., Жаворонок С. В., Супрун Л. Я. и др. Особенности течения беременности и родов у больных с герпесвирусными инфекциями // Акушерство и гинекология. 2004. — № 5. — С. 49−50.
  4. И.Ф., Каспаров А. А., Лазаренко А. А. и др. Терапевтическое действие вакцины как средство иммунокоррекции при хронических вирусных инфекциях // Иммунология. 2003. — № 6. — С. 356−359.
  5. И.Ф., Шубладзе А. К., Каспаров А. А. и др. Герпес (этиология, диагностика, лечение). М.: Медицина, 1986. — 289 с.
  6. Г. Б., Долгих Т. И., Кривчик Г. В. Внутриутробные инфекции (вопросы диагностики и врачебной тактики) // М.: Мед. книга- Н. Новгород: Изд-во НГМА- 2006. С. 41−52.
  7. Е.Н., Брагина Е. Н., Гусак Ю. К. и др. Спонтанное прерывание беременности, неудачи при использовании репродуктивных технологий и герпетическое инфицирование сперматозоидов // Андрол и генит хирургия. 2006. — № 1. — С. 5965.
  8. Е. Н. Климова P.P., Завалишина Л. Э. и др. Выявление ДНК вируса простого герпеса в сперматозоидах человека методом гибридизации in situ II Материалы Всерос «науч-практ конф «Медицинская микробиология XXI век" — Саратов, 2004. — С. 4445.
  9. Е.Н., Шилейко Л. В., Брагина Е. Е. и др. Нарушение сперматогенеза человека: количественное исследование состава незрелых половых клеток при инфицировании сперматозоидов вирусом простого герпеса // Проблемы репродукции. 2006. — № 6. -С. 75−80.
  10. Ю.Бочарова Е. Н., Абдумаликов Р. А., Брагина Е. Е. и др. Обнаружение белков и капсидов ВПГ в сперматозоидах человека // Докл Акад Наук (клеточная биология). 2003. — № 6. — С. 836−841.
  11. П.Бочарова Е. Н., Курило Л. Ф., Шилейко Л. В. и др. Анализ популяции половых клеток в эякуляте мужчин, инфицированных вирусом простого герпеса // Онтогенез. 2008. — № 1. — С. 47−57.
  12. Е.Е. Закономерности нарушений сперматогенеза человека при некоторых генетических и инфекционных заболеваниях. Автореф. дис. докт. биол.н.- М, 2001. 53 с.
  13. Е.Е., Абдумаликов Р. А. Руководство по сперматологии. -М.: Сорек-ролиграфия, 2002. 108 с.
  14. Е.Е., Абдумаликов Р. А., Курило Л. Ф. и др. Выявление сперматозоидов, инфицированных вирусом простого герпеса // Вестн дерм венер. 2000. — № 5. — С. 18−22.
  15. Быстрый культуральный метод диагностики герпесвирусных инфекций // Методические рекомендации № 02.030−08, Роспотребнадзор- М, 2008. С. 20.
  16. М.А., Островская О. В., Львов Н. Д. и др. Влияние бессимптомного генитального герпеса на течение и исход беременности //Вопр. вирусол. 1991. — № 6. — С.501−503.
  17. Врожденные, перинатальные и неонатальные инфекции: Пер. с англ. / Под общ. ред. А. Гриноу, Д. Осборн, Ш. Сазерленд. М.: Медицина, 2000. — 288 с.
  18. Ф.И., Касьянова Н. В. Цитомегаловирусная инфекция (современные данные об эпидемиологии, клинике, диагностике и терапии) // Инфекции и антимикробная терапия. 2002. — № 4. — С. 116−119.
  19. Инфекционные болезни: национальное руководство / Под ред. Н. Д. Ющука, Ю. А. Венгерова. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. — 1056 с.
  20. В.А. Герпесвирусные инфекции человека: Руководство для врачей / Под редакцией В. А. Исаковского, Е. И. Архиповой, Д. В. Исакова. СПб.: СпецЛит, 2006. — 303 с.
  21. В.А., Борисов В. В., Исаков Д. В. Герпес. Патогенез и лабораторная диагностика. СПб.: Лань, 1999. — 192 с.
  22. P.P., Масалова О. В., Атанадзе С. Н. и др. Получение и свойства моноклональных антител к вирусу простого герпеса 1 и 2 типа // Микробиология, эпидемиология и иммунология. 1999 -№. 5. — С. 99−103.
  23. Н.А., Заплатников А. Л., Чебуркин А. В. и др. Цитомегаловирусная инфекция у детей раннего возраста: Руководство для врачей. 2-е изд., перераб. и доп. — М.: Медпрактика-М, 2001. — 64 с.
  24. Ю.Н., Курило Л. Ф. и др. Радиозащитное действие лазерного излучения на сперматогенез крыс и их потомства // Пробл репрод. 2007. — № 1. — С. 34−37.
  25. Н.И. Клинико-диагностические аспекты внутриутробной герпесвирусной инфекции у новорожденных // Вестн. акуш. и гин. — 1993.-№ 1−2.-С. 5−12.
  26. Л.Ф., Дубинская В. П., Остроумова Т. В. и др. Оценка сперматогенеза по незрелым половым клеткам эякулята // Проблемы репродукции. 1995. — № 3. — С. 33−38.
  27. Л.Ф., Любашевская И. А., Дубинская В. П. и др. Кариологический анализ состава незрелых половых клеток эякулата // Урол. и нефрол. 1993. — № 2. — С. 45−47.
  28. Ю.В. Руководство по инфекционным болезням. СПб.: «Изд-во Фолиант», 2003. — 1040 с.
  29. Н.Е., Кущ А.А., Иванова Л. А. и др. Получение моноклональных антител к сверхранним белкам цитомегаловируса человека и их применение для выявления инфицированных клеток // Вопр. вирусологии. 1996. — № 1 — С. 28−32.
  30. С.Г., Кирпичникова Г. И., Неверов В. А. Герпетическая инфекция (простой герпес). Этиология, эпидемиология, патогенез, клиника, лабораторная диагностика, лечение. Электрогорск: Изд-во «Эколаб», 2005. — 48 с.
  31. С.Г., Кирпичникова Г.И., Неверов
  32. B.А.Цитомегаловирусная инфекция. Этиология, эпидемиология, патогенез, клиника, лабораторная диагностика, лечение. -Электрогорск: Изд-во «Эколаб», 2005. 32 с.
  33. Л.А., Лушкова И. П. Генитальный герпес и его влияние на репродуктивное здоровье женщины. / М.: Медицина, 2004.1. C.39−43.
  34. Л.А., Лушкова И. П. Генитальный герпес: новые грани проблемы // Пробл репрод. 2006. — № 1. — С. 15−18.
  35. Медицинская вирусология: руководство / под ред. Д. К. Львова. -М.: ООО «Медицинское информационное агентство», 2008. 656 с
  36. Протоколы диагностики, лечения и профилактики внутриутробных инфекций у новорожденных детей. — 2-е изд., перераб. и доп. М.: ГОУ ВУНМЦ МЗ РФ, 2002. — 104 с.
  37. С.С. Сперматогенез и структурные основы его регуляции. М.: Медицина, 1985. — 254с.
  38. Н.Н., Теплова С. Н., Коченгина С. А. Цитомегаловирусная инфекция у детей. СПб.: Лань, 2001. — 136 с.
  39. С., Бояркин А., Быстревская В. Экспрессия вирусных антигенов в клетках, инфицированных эндотелиотропным или фибробластотропным штаммами цитомегаловируса человека // Вопросы вирусологии. 2006.- № 1.- С. 15−19.
  40. Тер-Аванесов Г. В. Андрологические аспекты бесплодного брака //. Болезни репродуктивной системы. 2004. — № 3. — С. 60−65.
  41. К. Инфекционные заболевания беременных и новорожденных: Пер. с нем. / К. Фризе, В. Кахель. М.: Медицина, 2003.-424 с.
  42. Т.Р. Инфекционные болезни / Перевод с англ. Алиповой Н. Н., Тимофеевой Е. Р. М.: «Изд-во Практика», 2005. — 1508 с.
  43. П1увалова Е. П. Инфекционные болезни. М, 1990. — 560 с.
  44. Adler S.T., Nigro G., Pereira P. Recent advances in the prevention and treatment of congenital cytomegalovirus infections // Semin. Perinatol. -2007.-V. 31.-P. 10−18.
  45. Ahn J.-H., Chiou C.-J., Hayward G. S. Evaluation and mapping of the DNA binding and oligomerization domains of the IE2 regulatory protein of human cytomegalovirus using yeast one and twohybrid interactionassays // Gene. 1998. — V. 210. — P. 25−36.
  46. Ahn J.-H., Hayward G. S. The major immediate-early proteins IE1 and IE2 of human cytomegalovirus colocalize with and disrupt PML-associated nuclear bodies at very early times in infected permissive cells // J. Virol. 1997. — V. 71. — P. 4599−4613.
  47. Aiman J., Brenner P.F., MacDonald P.C. Androgen and estrogen production in elderly men with gynecomastia and testicular atrophy after mumps orchitis// J. Clin. Endocrinol. Metab. 1980. — V. 50. — P. 380 654.
  48. Alexander H. Herpes simplex virus: a cause for concern // Am J Med Technol. — 1982.-V. 48.-P. 241−245.
  49. Alexander NJ. Sexual transmission of human immunodeficiency virus: virus entry into the male and female genital tract // Fertil Steril. — 1990. -P. 54.-P. 1−18.
  50. AH B.A., Huang Т.Н., Salem H.H. et al. Expression of hepatitis В virus genes in early embryonic cells originated from hamster ova and human spermatozoa transfected with the complete viral genome // Asian J Androl. 2006. — V. 8. — P. 273−279.
  51. AH B.A., Huang Т.Н., Xie Q.D. Detection and expression of hepatitis В Virus X gene in one and two-cell embryos from golden hamster oocytes in vitro fertilized with human spermatozoa carrying HBV DNA // Mol Reprod Dev. 2005. — V. 70. — P. 30−36.
  52. A1-Shawi R., Burke J., Wallace H. et al. The herpes simplex virus type 1 thymidine kinase is expressed in the testes of transgenic mice under the control of a cryptic promoter // Mol Cell Biol. 1991. — V. 11. — P. 4207−4216.
  53. Anders D.G., Kacica M.A., Pari G. et al. Boundaries and structure of human cytomegalovirus orc’Lyt, a complex origin for lytic-phase DNA replication. // J. Virol. 1992. — V. 66. — P. 3373−3384.
  54. Aynaud O., Bijaoui G., Ionesco M. et al. Genital herpes simplex vims infection among men screened for genital papillomavirus // Ann Dermatol Venereol. 1994. — V. 121. — P.376−381.
  55. Aynaud O., Poveda J.D., Huynh B. et al. Frequency of herpes simplex virus, cytomegalovirus and human papillomavirus DNA in semen // Int J STD AIDS. 2002. — V. 13. — P. 547−550.
  56. Bader C., Crumpacker C. S., Schnipper L. E. et al. The natural history of recurrent facial-oral infection with herpes simplex virus // J. Infect. Dis.- 1978.-V. 138.-P. 897−905.
  57. BaIdick C. J., Shenk T. Proteins Associated with Purified Human Cytomegalovirus Particles // J.Virol. 1996. — V. 70. — P. 6097−6105.
  58. Bantel-Schaal U., Neumann-Haefelin D., Schleferstein G. Cytomegalovirus is absent from semen of a population of men seeking fertility evaluation // J. Infect. Dis. 1993. — V. 168. — P. 518−519.
  59. Barton S. E., Davis J. M., Moss V.W. et al. Asymptomatic shedding and subsequent transmission of genital herpes simplex virus // Genitourin.Med. 1987. — V. 63. — P. 102−105.
  60. Barton S., Munday P., Patel R. Asymptomatic shedding of herpes simplex virus from the genital tract: uncertainty and its consequences for patient management. The herpes simplex virus advisory panel // Int. J. STD AIDS. 1996. — V.7. — P. 229−232.
  61. Bascar J.F., Stanat S.C., Huang E-S. Cytomegalovirus infection of murine testicular interstitial Leydig Cells // Infection and Immunity. -1983. V. 40. — № 2. — P. 726−732.
  62. Baskar J.F., Furnari В., Huang E.S. Demonstration of developmental anomalies in mouse fetuses by transfer of murine cytomegalovirus DNA-injected eggs to surrogate mothers // J. Infect. Dis. 1993. — V. 167. — P. 1288−1295.
  63. Baskar J.F., Stanat S.C., Huang E.S. Murine cytomegalovirus infection of mouse testis // J. Virol. 1986. — V. 57. — P. 1149−1154.
  64. Baskar J.F., Stanat S.C., Sulik K.K. et al. Murine cytomegalovirus-induced congenital defects and fetal maldevelopment // J Infect Dis. -1983.-V. 148.-P. 836−843.
  65. Baskin G. B. Disseminated cytomegalovirus infection in immunodeficient rhesus monkeys // Am. J. Pathol. 1987. — V. 129. — P. 345−352.
  66. Bedford J., Hoskins D. The mammalian spermatozoan: morphology, biochemistry and physiology // In book: Lamming G. (ed.), Marshall’s Physiology of Reproduction, 4th edn. Churchill Livingstone, London, 1990.-V.2.- P. 379−358.
  67. Benco D.M., Gibson W. Primate cytomegalovirus glycoproteins lectin-binding properties and sensitivities to glycosidases // J. Virol. -1986.-V. 59.-P. 703−713.
  68. Benson P.J., Smith C.S. Cytomegalovirus prostatitis // Urology 1992. -V. 40.-P. 165−167.
  69. Bezold G., Politch J.A., Kiviat N.B. et al. Prevalence of sexually transmissible pathogens in semen from asymptomatic male infertility patients with and without leukocytospermia // Fertil Steril. 2007. — V. 87.-P. 1087−1097.
  70. Bezold G., Schuster-Grusser A., Lange M. et al. Prevalence of human herpesvirus types 1−8 in the semen of infertility patients and correlation with semen parameters // Fertil. Steril. 2001. — Vol. 76. — P. 416−418.
  71. Biggar R.J., Adersen H.K., Ebbesen P. et al. Seminal fluid excretion of cytomegalovirus related to immunosupression in homosexual men // Br. Med. J. 1983. — V. 286. — P. 2010−2012.
  72. Boldogh I., Baskar J.F., Mar E.C. et al. Human cytomegalovirus and herpes simplex type 2 in normal and adenocanceromatous prostate glands // J. Natl. Cancer Inst. 1983. — V. 70. — P. 819−826.
  73. Borst E.M., Messerle M. Analysis of human cytomegalovirus oriLyt sequence requirements in the context of the viral genome // J Virol. — 2005.-V. 79.-P. 3615−26.
  74. Boue A., Loffredo V. Abortion caused by type II Herpesvirus. Isolation of virus from cultures of zygotic tissues // Presse Med. 1970. — V. 78. — P. 103−106.
  75. Bowen R. On the acrosome of the animal sperm // Anat Rec. 1924. -V. 28. — P. 1−13.
  76. Braun RE, Lo D, Pinkert CA, Widera G. et al. Infertility in male transgenic mice: disruption of sperm development by HSV-tk expression in postmeiotic germ cells // Biol Reprod. 1990. — V. 43. — P. 684−693.
  77. Bresnahan W.A., Shenk T. UL82 virion protein activates expression of immediate early viral genes in human cytomegalovirusinfected cells. // Proc Natl Acad Sci USA. 2000.-V. 91.- P. 14 506- 14 511.
  78. Bresson J.L., Clavequin M.C., Mazeron M.C. et al. Risk of cytomegalovirus transmission by cryopreserved semen: a study of 635 semen samples from 231 donors // Hum. Reprod. 2003. — V.18. — P. 1881−1886.
  79. British Andrology Society guidelines for the screening of semen donors for donor insemination // Hum. Reprod. 1999. — V. 14. — P. 18 231 826.
  80. Britt W., Boppana S. Human cytomegalovirus virion proteins // Hum Immunol. 2004. — V. 65. — P. 395−402.
  81. Brooks A. Within- and between-subject variation in semen parameters in infertile men and normal semen donors // Fertil. Steril. — 2006. — V. 85.-P. 128−134.
  82. Browne E.P., Shenk T. Human cytomegalovirus UL83-coded pp65 virion protein inhibits antiviral gene expression in infected cells // Proc Natl Acad Sci. 2003. — V. 100.- P. 11 439−11 444.
  83. Caia L-Y., Katob Т., Nakayamaa M. et al. HSV type 1 thymidine kinase protein accumulation in round spermatids induces male infertility by spermatogenesis disruption and apoptotic loss of germ cells // Reprod. Tox.- 2009.-V. 27.-P. 14−21.
  84. Castillio J. P., Kowalika T. F. Human cytomegalovirus immediate early proteins and cell growth control. // Gene. 2002. — V. 290. — P. 19−34.
  85. Centifanto Y.M., Drylie D.M., Deardourff S.L. et al. Herpesvirus type 2 in the male genitourinary tract // Science. 178. — P. 318−319.
  86. Charny C. W., Meranze D. R. Pathology of mumps orchitis // J. Urol. -1948.-V. 60.- P. 140.
  87. Chee M. S., Bankier A.T., Beck S. et al. Analysis of the protein-coding content of the sequence of human cytomegalovirus strain AD 169. // Curr. Top. Microbiol. Immunol. 1990.- V. 154.- P. 125−170.
  88. Chen D.H., Jiang H. et al. Threedimensional visualization of tegument/capsid interactions in the intact human cytomegalovirus // Virology 1999. — V. 260. — P. 10−17.
  89. Chen Z., Toth Т., Godfrey-Bailey L. et al. Seasonal variation and age-related changes in human semen parameters // Journal of Andrology. — 2003.- V. 24.-P. 226−231.
  90. Cherrington J. M., Mocarski E. S. Human cytomegalovirus iel transactivates the promoter-enhancer via an 18-base pair repeat element // J. Virol. 1989. — V. 63. — P. 1435−1440.
  91. Cherrington J.M., Khoury E.L., Mocarski E.S. Human cytomegalovirus ie2 negatively regulates alpha gene expression via a short target sequence near the transcription start site. // J.Virol. 1991. — V.65. -P.887−896.
  92. Chin K.C., Cresswell P. Virepin (cig5), an IFN-inducible antiviral protein protein directly induced by human cytomegalovirus // Proc. Natl. Acad. Sci.- 2001, — V. 98, — P.15 125−15 130.
  93. Clermont Y. Kinetics of spermatogenesis in mammals: semineferous epithelium cycle and spermatogonia! renewal // Physiol Rev. 1972. -V. 52.-P. 198−236.
  94. Clermont Y. The cycle of seminiferous epithelium in man // Am J Anat. 1963. -V. 112.-P. 35−42.
  95. Clermont Y., Tang X. Glycoprotein synthesis in the Golgi apparatus of spermatids during spermiogenesis of the rat. Anat Rec. -1985.-V. 213.-P. 33−43.
  96. Compton Т. An Immortalized human fibroblasts cell line is permissive for human cytomegalovirus infection // J.Virol. 1993. -V. 67. — P. 3644−3648.
  97. Compton T. Receptors and immune sensors: the complex entry path of human cytomegalovirus // Trends Cell Biol. — 2004. — V. 14. — P. 5−8.
  98. Cone R.W., Hobson A.C., Brown Z. et al. Frequent detection of genital herpes simplex virus DNA by polymerase chain reaction among pregnant women // JAMA. 1994. — V. 272. — P. 792−796.
  99. L., Wald A. // In book: Sexually Transmitted Diseases, ed. Holmes, K., Sparling, P., PA, M., Lemon, S., Stamm, W., Piot, P., Wasserheit, J. New York: McGraw-Hill, 1999.
  100. Corey L., Wald A., Celum C. L. et al. The effects of herpes simplex virus-2 on HIV-1 acquisition and transmission: a review of two overlapping epidemics // J. Acquir. Immune Defic. Syndr. 2004. — V. 35.-P. 435−445.
  101. Courtot A.M., Pallier C., Testart J. Viral transmission and medically assisted procreation: the Herpesviridae case // Gynecol Obstet Fertil. 2004. — V. 32. — P. 233−240.
  102. Csata S., Kulcsar G. Virus-host studies in human seminal and mouse testicular cells // Acta Chir Hung. 1991. — V. 321. — P. 83−90.
  103. Dalton A.D., Harcourt-Webster J.N. The hystopathology of the testis and epididymis in AIDS. A post-mortem study // J. Pathol. 1991. -V. 163.-P. 47−52.
  104. Davidson A.J. Evolution of herpesviruses // Vet Microbiol. -2002.-V.86.-P. 69−88.
  105. De Kretser D. Ultrastructural features of human spermiogenesis // Z Zelforsch. 1969. — V. 98. — P. 477−505.
  106. De Kretser D., Kerr J. The cytology of the testis. // In book: The physiology of reproduction. Knobil E., Neill J. et al. (eds). Raven press, Ltd New York, 1988. P. 837−932.
  107. De Paepe M. E., Waxman M. Testicular atrophy in AIDS: a study of 57 autopsy cases // Hum. Pathol. 1989. -V. 20. — P. 210−214.
  108. De Paepe M.E., Guerrieri C., Waxman M. Opportunistic infections of the testis in the acquired immunodeficiency syndrome // Mt. Sinai J. Med. 1990. — V. 57. — P. 25−29.
  109. Dejucq N., Jegou B. Viruses in the mammalian male genital tract and their effects on the reproductive system // Microbiol. Mol. Biol., 2001.-V. 65.-P. 208−231.
  110. R., Leach С. Т., Hennessey K. et al. Persistent cytomegalovirus infection of semen increases risk of AIDS // J. Infect. Dis. 1994. — V. 169.-P. 766−768.
  111. Deture F.A., Drylie D.M., Kaufman H.E. et al. Herpesvirus type 2: isolation of seminal vesicle and testes // Urol. 1976. — V.7. — P. 541 544.
  112. Deture F.A., Drylie D.M., Kaufman H.E. Herpesvirus type 2: study of semen in male subjects with recurrent infections // J Urol. — 1978.-V. 120.-P. 449−451.
  113. Dohle G. R., Colpi G. M., Hargreave Т. B. et al. Eau guidelines on male infertility // Eur Urol. 2005. — V.48. — P. 703−711.
  114. Drew W. L., Bates M. P. Cytomegalovirus infection. In: Holmes KK, Mardh P-A, Sparling PF, Lemon SM, Stamm WE, Piot P, et al., eds. Sexually transmitted diseases, 3rd ed. New York: McGraw-Hill, 1999. -P. 313−326.
  115. Dussaix E., Guetard D., Dauguet C. Spermatozoa as potentional carriers of HIV // Res. Virol. 1993. — V. 6. — P. 12−14.
  116. Dutko F. J., Oldstone M. B. Murine cytomegalovirus infects spermatogenic cells // Proc. Natl. Acad. Sci. 1979. — V. 76. — P. 29 882 991.
  117. Ellison A. R, Bishop J.O. Herpesvirus thymidine kinase transgenes that do not cause male sterility are aberrantly transcribed and translated in the testis // Biochim Biophys Acta. 1998. — V. 1442. — P. 28−38.
  118. Ellison A. R, Bishop J.O. Initiation of herpes simplex virus thymidine kinase polypeptides // Nucleic Acids Res. 1996. — V.24.1. Р.2073−2079.
  119. Ellison AR, Wallace H, Al-Shawi R. et al. Different transmission rates of herpesvirus thymidine kinase reporter transgenes from founder male parents and male parents of subsequent generations // Mol Reprod Dev.- 1995.-V. 41. -P. 425−434.
  120. Emery V.C. Cytomegalovirus Infection. Lond.: Current Medicine Group Ltd, 2006. — 63 p.
  121. Enders G., Risse В., Zauke M. et al. Seroprevalence study of herpes simplex virus type 2 among pregnant women in Germany using a type-specific enzyme immunoassay // Eur. J. Clin. Microbiol.Infect. Dis. 1998. — V. 17. — P. 870−872.
  122. Erles K., Rohde V., Thaele M. DNA of adeno-associated virus (AAV) in testicular tissue and in abnormal semen samples // Hum Reprod. 2001. — V.16. -P.2333−2337.
  123. Fawcett D.W., Phillips D. The fine structure and development of the neck region of the mammalian spermatozoon // Anat Rec. 1969. -V.165. — P. 153−184.
  124. Fawcett W. The mamallian spermatozoon. 1975. — V. 44. — P. 394−436.
  125. Fortunato E. A., Spector D. H. Regulation of human cytomegalovirus gene expression // Adv Virus Res. 1999. — V. 54. -P. 61−128.
  126. Freeman R., Hambling M. H. Serological studies on 40 cases of mumps virus infection // J. Clin. Pathol. 1980. — V. 33. — P. 28−32.
  127. Gall A.E. The histopathology of acute mumps orchitis // Am. J. Pathol. 1940. — V. 23. — P. 637−642.
  128. Garcia A.G. Maternal herpes-simplex infection causing abortion. Histopathologic study of the placenta // Hospital (Rio J). 1970. — V. 78. -P. 1267−1274.
  129. Gawn J. M., Greaves R. F. Absence of IE1 p72 protein function during low-multiplicity infection by human cytomegalovirus results in a broad block to viral delayed-early gene expression // J. Virol. 2002. — V. 76.-P. 4441−4455.
  130. Gerna G, Percivalle E., Baldanti F. et al. Human cytomegalovirus replicates abortively in polymorphonuclear leukocytes after transfer from infected endothelial cells via transient microfusion events // J.Virol. -2000. V.74. — P.5629−5638.
  131. Gershon A. A., Sherman D. L. et al. Intracellular transport of newly synthesized varicella-zoster virus: final envelopment in the trans-Golgi network // J. Virol. 1994. — V. 68. — P. 6372−6390.
  132. Gibbons I. Cilia and flagella of eukariotes // J Cell Biol. 1981. -V. 91.-P. 107−113.
  133. Gibson W. Assembly and maturation of the capsid. In book: Cytomegaloviruses: Pathogenesis, Molecular Biology, and Infection Control. Ed. By Reddehase M.J. Norfolk, United Kingdom: Caister Scientific Press- 2006. — P. 231−244.
  134. Gibson W. Structure and assembly of the virion // Intervirology. -1996. V. 39.-P. 389−400.
  135. Golan R., Cooper T. et al. Changes in chromatin condensation of human spermatozoa during epipidymal transit as determined by flow cytometry//Hum Reprod. 1996.-V. 11.-P. 1457−1462.
  136. Gold E., Nankervis G.A. Cytomegalovirus // In book: Viral Infections of Humans: Epidemiology and Control. A. S. Evans, ed., pp.143.161. New York: Plenum Press, 1976.
  137. Grangeot-Keros L., Simon В., Audibert F., Vial M. Should we routinely screen for cytomegalovirus antibody during pregnancy? // Intervirology.- 1998.- V. 41.-P. 158−162.
  138. Granzow H., Weiland F. et al. Ultrastructural analysis of the replication cycle of pseudorabies virus in cell culture: a reassessment // J. Virol. 1997. — V. 71. — P. 2072−2082.
  139. Greaves R. F., Mocarski E. S. Defective growth correlates with reduced accumulation of a viral DNA replication protein after low-multiplicity infection by a human cytomegalovirus iel mutant // J. Virol. 1998. — Vol. 72. — P.366−379.
  140. Gretch D.R., Gehrz R.C., Stinski M.F. Characterization of a human cytomegalovirus glycoprotein complex (gcll) // J. Virol. 1988. -V. 69.- P. 1205−1215.
  141. Gribencha S.V., Bragina E.E., Abdumalikov R. A et al. Detection of type 2 herpes simplex virus in cells of spermatogenic epithelium in infected testis of guinea pigs // Bull. Exp. Biol. Med. 2007. — V. 144. -P. 73−76.
  142. Hadchouel M., Scotto J., Huret J. L., Molinie C., Villa E., Degos F., Brechot C. Presence of HBV DNA in spermatozoa: a possible vertical transmission of HBV via the germ line // J. Med. Virol. 1985. — V. 16. -P. 61−66.
  143. Hagemeier C., Walker S.M., Sissons P.J. et al. The 72K IE1 and 80K IE2 proteins of human cytomegalovirus independently trans-activate the c-fos, c-myc and hsp70 promoters via basal promoter elements // J. Gen. Virol. 1992. — V. 73. — P. 2385−2393.
  144. Halioua В., Malkin J. Epidemiology of genital herpes — recent advances // Eur. J. Dermatol. 1999. — V. 9. — P. 177−184.
  145. Hammitt D.G., Aschenbrenner D. W., Williamson R. A. Cultureof cytomegalovirus from frozen-thawed semen // Fertil. Steril. — 1988. — V. 49. -P. 557.
  146. Hamzeh F.M., Lietman P. S., Gibson W. et al. Identification of the lytic origin of DNA replication in human cytomegalovirus by a novel approach utilizing ganciclovir-induced chain termination. // J Virol. — 1990.- V. 64, — P. 6184−6195.
  147. Handsfield H.H., Chandler S.H., Caine V.A. et al. Cytomegalovirus infection in sex partners: evidence for sexual transmission// J. Infect. Dis. 1985.-V. 151.-P. 344−348.
  148. Hayhurst G. P., Bryant L. A., Caswell R. C. et al. CCAAT box-dependent activation of the TATA-less human DNA polymerase alpha promoter by the humancytomegalovirus 72-kilodaltonmajorimmediate-early protein // J. Virol. 1995. — V. 69. — P. 182−188.
  149. Heggie A.D., Gaddis L. Effects of viral exposure of the two-cell mouse embryo on cleavage and blastocyst formation in vitro // Pediatr. Res. 1979.-V. 13.-P. 937−941.
  150. Heider J. A., Bresnahan W. A., Shenk Т. E. Construction of a rationally designed human cytomegalovirus variant encoding a temperature-sensitive immediate-early 2 protein // Proc. Natl Acad. Sci. USA 2002. — V. 99. — P. 3141−3146.
  151. Heller C., Heller G. Human spermatogenesis: an estimate of duration of each cell association and each cell type // In: Gual C. (ed) Progress in endocrinology. Experta Medica Foundation, Amsterdam, Int. Congress Series, 1969.-V. 184.-P. 1012−1018.
  152. Hirose T. Alpha-herpes vims infection male genital herpes // Nippon Rinsho. — 2000. — V. 58. — P.877−882.
  153. Homman-Loudiyi M., Hultenby K. Envelopment of Human Cytomegalovirus Occurs by Budding into Golgi-Derived Vacuole Compartments Positive for gB, Rab 3, Trans-Golgi Network 46, and Mannosidase // J. Virol 2003. — V. 77. — P. 3191−3203.
  154. Honess R.W., Roizman В. Regulation of herpesvirus macromolecular synthesis. I. Cascade regulation of the synthesis of three groups of virus proteins. // J. Virol. 1974. — V. 14. — P. 8−19.
  155. Huang E. S., Davis M. G., Baskar J. F. et al. Molecular epidemiology and oncogenicity of human cytomegalovirus / In Harris C. C Biochemical and molecular epidemiology of cancer- New York- 1986.-P. 323−344.
  156. Hunninghake G. W., Monks B. G., Geist L. J. et al. The functional importance of a cap site-proximal region of the human prointerleukin l|3gene is defined by viral protein trans-activation // J. Mol. Cell. Biol. 1992. -V. 12. — P. 3439−3448.
  157. Huttner К. M., Pudney J., Milstone D. S. et al. Flagellar and acrosomal abnormalities associated with testicular HSV-tk expression in the mouse // Biol Reprod. 1993. — V. 49. — P. 251−261.
  158. Ida K., Tokuda H., Kanaoka T. et al. Epstein-Barr virus activating principle in husbands’semen of cervical cancer patient // Am. J. Reprod. Immunol. 1991. -V. 26. — P. 89−92.
  159. Ishov A. M., Stenberg R. M., Maul G. G. Human cytomegalovirus immediate early interaction with host nuclear structures: definition of animmediate transcript environment // J. Cell Biol. 1997,-V. 138.-P. 5−16.
  160. Ito Y., Tokuda H., Morigaki T. et al. Epstein-Barr virus-activating principle in human semen // Cancer Lett. 1984. -V. 23. — P. 129−134.
  161. Jakob M., Muhle C., Park J. et al. No evidence for germ-line transmission following prenatal and early postnatal AAV-mediated gene delivery // J Gene Med. 2005. — V. 7. — P. 630−637.
  162. Jault M. F., Jault J.-M., Ruchti F. et al. Cytomegalovirus infection induces high levels of cyclins, phosphorylated Rb and p53, leading to cell cycle arrest. // J. Virol. 1995. — V. 69 — P. 6697−6704.
  163. Johnson L, Blanchard T. L., Varner D. D. et al. Factors affecting spermatogenesis in the stallion // Theriogenology. 1997. — V. 48. — P. 1199−216.
  164. Johnson L., Varner D. Effect of daily spermatozoan production but not age on transit time of spermatozoa through the human epididymis //Biol Reprod. 1988.-V. 39.-P. 812−817.
  165. Jones F., Grose C. Role of cytoplasmic vacuoles in varicellazoster virus glycoprotein trafficking and virion envelopment // J. Virol. 1988. -V. 62.-P. 2701−2711
  166. Jordan M. C., Rousseau W. E., Noble G. R. et al. Association of cervical cytomegaloviruses with venereal disease // N. Engl. J. Med. -1973.-V. 288.-P. 932−934.
  167. Kalejta R. F., Bechtel J.T., Shenk Т., Mutations that abolish the ability of HCMV pp71 protein to induce DNA synthesis in quiescent cell do not affect its ability to accelerate G1 phase cell cycle progression. //JVirol. 2003.-V.77.- P.3451−3459.
  168. Kanich R.E., Craighead J.E. Human cytomegalovirus infection of cultured fibroblasts. II. Viral replicative sequence of a wild and an adapted strain. // Lab. Invest. 1972. — V.27. — P.237−282.
  169. Kapranos N., Petrakou E., Anastasiadou C. et al. Detection of herpes simplex virus, cytomegalovirus, and Epstein-Barr virus in the semen of men attending an infertility clinic // Fertil Steril. 2003. — V. 79: Suppl 3.-P. 1566−1570.
  170. Kari В., Gertz R. Characterization of cytomegalovirus glycoproteins in a family of complexes designated gC-II with murine monoclonal antibodies // Arch. Virol. 1990. — V. 112. — P. 55−65.
  171. Kimura M., Maekura S., Satou T. et al. Cytomegaloviral inclusions detected in the seminal vesicle, ductus deferens and lungs in an autopsy case of lung cancer // Rinsho Byori. 1993. — V. 41. — P. 1059−1062.
  172. Kolettis P.N. Evaluation of subfertile man I I Am Fam Physician.- 2003.-V. 67-P. 2165−2172.
  173. Koment R.W., Poor P.M. Infection by human cytomegalovirus associated with chronic hematospermia // Urology. 1983. — V. 22. — P. 617−621.
  174. Kotronias, D., Kapranos N. Detection of herpes simplex virus DNA in human spermatozoa by in situ hybridization technique // In Vivo. 1998. — V. 12. — P. 391−394.
  175. Koutsky L.A., Stevens C.E., Holmes K.K. et al. Underdiagnosis of genital herpes by current clinical and viral-isolation procedures // N. Engl. J. Med. 1992. -V. 326. — P. 1533−1539.
  176. Krause W., Herbstreit F., Slenzka W. Are viral infections the cause of leukocytospermia // Andrologia. 2002. — Vol. 34. — P. 87−90.
  177. Krieger, J. N., Coombs R. W., Collier A. C. et al. Fertility parameters in men infected with human immunodeficiency virus // J. Infect. Dis. 1991. — V. 164 — P. 464−469.
  178. Kulcsar G., Csata S., Nasz I. Investigations into virus carriership in human semen and mouse testicular cells // Acta Microbiol Hung. -1991.-V. 38. P. 127−132.
  179. R. В., Falk L., Hertig A.T. et al. Acyclovir treatment of twelve unexplained infertile couples // Int. J. Fertil. 1987. — V. 32. — P. 200−204.
  180. Kyo S., Inoue M., Koyama M. et al. Detection of high-risk human papillomavirus in the cervix and semen of sex partners // J. Infect. Dis. -1994.-V. 170.-P. 682−685.
  181. LaDuca J. R., Love J. L., Abbott L. Z. et al. Detection of human herpesvirus 8 DNA sequences in tissues and bedily fluids // J Infect Dis.- 1998.-V. 178.-P. 1610−1615.
  182. Laech C.T., Cherry J.D., English P.A. et al. The relationship between T cells level and CMV infection in asymptomatic HIV-1 antibody positive homosexual men // J. AIDS. 1993. — V. 6. — P. 407 413.
  183. Lafferty W. E., Downey L., Celum C. et al. Herpessimplex virus type 1 as a cause of genital herpes: impact on surveillance and prevention // J. Infect. Dis. 2000. — V. 181. — P. 1454−1457.
  184. Lai Y. M., Yang F. P., Pao С. C. Human papillomavirus deoxyribonucleic acid and ribonucleic acid in seminal plasma and sperm cells // Fertil. Steril. 1996. — V. 65. — P. 1026−1030.
  185. Lai Y.M., Lee J.F., Huang H.Y. et al. The effect of human papillomavirus infection on sperm cell motility // Fertil. Steril. 1997. -V. 67.-P. 1152−1155.
  186. Landini M. P., Severi В., Badiali L. et al. Structural components of human cytomegalovirus: in situ localization of the major glycoprotein // Intervirology. — 1987. V. 27. — P. 154−160.
  187. Landolfo S, Gariglio M., Gribaudo G. et al. The human cytomegalovirus // Pharmacology and therapeutics. 2003. — V. 98. -P. 269−297.
  188. Lang D.J., Kummer J.F. Demonstration of cytomegalovirus in semen // N. Engl. J. Med. 1972. — V. 287. — P. 756−758.
  189. Lang D.J., Kummer J.F., Hartley D.P. Cytomegalovirus in semen //N. Engl. J. Med. 1974.-V. 291.-P. 121−123.
  190. Lang D.J., Kummer, J.F. Cytomegalovirus in semen: observations in selected populations // J. Infect. Dis. 1975. — V. 132. — P. 472−743.
  191. , D. J. 1975. The epidemiology of cytomegalovirus infections: interpretation of recent observations, In G. A. Krugman S (ed.), Infections of the fetus and the newborn infant., V. 3. Alan R. Liss, Inc., New York, N.Y. P. 35−45.
  192. Lee J.Y., Irmiere A., Gibson W. Primate cytomegalovirus assembly: evidence that DNA packaging occures subsequent to B-capsid assembly // Virology. 1988. — V. 167. — P. 87−96.
  193. Levy R., Najioullah F., Keppi B. et al. Detection of cytomegalovirus in semen from a population of men seeking infertility evaluation // Fertil. Steril. 1997. — V.68. — P. 820−825.
  194. Liesnard C., Strebelle E., Englert Y. Is the British Andrology Society recommendation to recruit cytomegalovirus negative donors only, a reasonable one? // Hum. Reprod. 2001. — V. 16. — P. 17 891 791.
  195. Ling P.D., Lednicky J.A., Keitel W.A. et al. The dynamics of herpesvirus and polyomavirus reactivation and shedding in healthy adults: a 14-month longitudinal study //J Infect Dis. 2003. — V. 187. -P. 1571−1580
  196. Liu Z.G., Hsu H., Goeddel D.V. et al. Dissection of TNF receptor 1 effector functions: JNK activation is not linked to apoptosis while NF-kappaB activation prevents cell death // Cell. 1996. — V. 87. — P. 565 576.
  197. Loskutoff N.M., Huyser C., Singh R. et al. Use of a novel washing method combining multiple density gradients and trypsin for removing human immunodeficiency virus-1 and hepatitis С virus from semen// Fertil Steril. -2005. V. 84.-P. 1001−1010.
  198. G. В., Bonde E., Eriksson B. et al. Self-reported herpes labialis in a Swedish population // Scand. J. Infect. Dis. 2002. -V. 34.-P. 664—667.
  199. Lukac D. M., Harel N. Y., Tanese N. et al. TAFlike functions of human cytomegalovirus immediate-early proteins // J. Virol. 1997. -V.71.-P. 7227−7239.
  200. Macasaet F.F., Holler K.E., Smith T.F. et al. Cytomegalovirus studies of autopsy tissue. Incidence of inclusion bodies and related pathologic data // Am. J. Clin. Pathol. 1975. — V. 63. — P. 859.
  201. MacCarthy J.M., McLoughlin M.G., Shackleton C.R. et al: Cytomegalovirus epididymitis following renal transplantation // J. Urol. 1991.-V. 146.-P. 417−419.
  202. MacGowan M.P., Haye K., Kovacs G.T. et al. Prevalence of cytomegalovirus and herpes simplex virus in human sperm // Int. J. Androl. 1983. — V. 6. — P. 331−336.
  203. Mach M., Kropff В., Dal Monte P. et al. Complex formation by human cytomegalovirus glycoproteins M (gpULlOO) and N (gpUL73) // J Virol. 2000. — V. 74. — P. 11 881 -11 892.
  204. Maeda-Takekoshi F., Takekoshi M., Tanaka S. Expression of the immediate early antigens of human cytomegalovirus is responsible for virus proliferation- an intracellular immunization approach. // Tokai. J. Exp. Clin. Med. 1992. — V. 17. — P. 75−83.
  205. Malkin J. E., Morand P., Malvy D. et al. Seroprevalence of HSV-1 and HSV-2 infection in the general French population // Sex. Transm. Infect. 2002. — V. 78. — P. 201−203.
  206. Mansat A., Mengelle C., Chalet M. et al. Cytomegalovirus detection in cryopreserved semen samples collected for therapeutic donor insemination // Hum. Reprod. 1997. — V. 12. — P.1663−1666.
  207. Marchini A., Liu H., Ahu H. Human cytomegalovirus with IE-2 (UL122) deleted fails to express early lytic genes // J.Virol. 2001. — V. 75.-P. 1870−1878.
  208. Margolis M.J., Pajovic S., Wong E.L. et al. Interaction of the 72-kilodalton human cytomegalovirus IE1 gene product with E2F1 coincides with E2F-dependent activation of dihydrofolate reductase transcription// J Virol. 1995. — V. 69. — P. 7759−7767.
  209. Marina S., Marina F., Alcolea R. et al. Human immunodeficiency virus type 1—serodiscordant couples can bear healthy children after undergoing intrauterine insemination // Fertil. Steril. 1998. — V. 70. -P. 35−39.
  210. Marina S., Marina F., Alcolea R. et al. Pregnancy following intracytoplasmic sperm injection from an HIV-1 seropositive man // Hum. Reprod. 1998. — V. 13. — P. 3247−3249.
  211. Mascola L., Guinan, M. E. Screening to reduce transmission of sexually transmitted diseases in semen used for artificial insemination // N. Engl. J. Med. 1986. — V. 314. — P. 354−359.
  212. Masse M.J., Messerle M., Mocarski E.S. The location and sequence composition of the murine cytomegalovirus replicator (orz'Lyt). // Virology. 1997. — V. 230. — P. 350−360.
  213. Mastroianni A., Coronado O., Manfredi R. et al. Acute cytomegalovirus prostatitis in AIDS // Genitourin. Med. 1996. — V. 72. p. 447−448.
  214. McLaughlin, E.A. Recruitment of only cytomegalovirus (CMV) negative semen donors // Hum. Reprod. 2000. — V. 15. — P. 2247−2249.
  215. Mercan К., Urman В., Alatas С. et al. Outcome of testicular sperm retrieval procedures in non-obstructive azoospermia: percutaneous aspiration versus open biopsy // Hum. Reprod. 2000. — V. 15. — P. 1548−1551.
  216. Mertz G. J., Rosenthal S. L., Stanberry L. R. Is herpes simplex virus type 1 (HSV-1) now more common than HSV-2 in first episodes of genital herpes? // Sex. Transm. Dis. 2003. — V. 30. — P. 801−802.
  217. Mertz G., Benedetti J., Asbley R. et al. Risk factors for the sexual transmission of genital herpes // Ann. Intern. Med. 1992. — V. 116. — P. 197−202.
  218. Meyer J.D., Ljungman P., Fisher L.D. Cytomegalovirus excretion as a predictor of cytomegalovirus disease after marrow transplantation: importance of cytomegalovirus viremia //J. Infect. Dis. — 1990.— V. 162, — P. 373−380.
  219. Mizuta K., Abiko C., Aoki Y. et al. Analysis of monthly isolation of respiratory viruses from children by cell culture using a microplate method: a two-year study from 2004 to 2005 in Yamagata, Japan // Jpn. J. Infect. Dis.-2008.-V. 61.-P. 196−201.
  220. Mocarski E. S. Jr., Shenk Т., Pass R.F. Cytomegaloviruses. In book: Fields Virology, 5th Ed. by D. Knipe, P. Howley. Philadelphia: Lippincott, Williams & Wilkins, 2007. — P. 2702−2772.
  221. Molloy S.S., Anderson E.D. et al. Bi-cycling the furin pathway: from TGN localization to pathogen activation and embryogenesis // Trends Cell Biol. 1999. -V. 9. — P. 28−35.
  222. Moore D., Campero C., Odeon A. et al. Humoral immune rasponse to infectious agents in aborted bovine fetuses in Argentina // Rev. Argent. Microbiol. 2003. — V. 35. P. 143−148.
  223. Moore D.E., Ashley R.L., Zarutskie P.W. et al. Transmission of genital herpes by donor insemination // JAMA. 1989. — V. 261. — P.3441−3443.
  224. Moore H. The epididymis // In book: Chisholm G., Fair W. (eds.). Scientific foundation in Urology, 1990. Heinemann Medical, Oxford.-P. 399−410.
  225. Mostad S.B., Kreiss J.K., Ryncarz A. et al. Cervical shedding of herpes simplex virus and cytomegalovirus throughout the menstrual cycle in women infected with human immunodeficiency virus type 1 // Am J Obstet Gynecol. 2000. — V. 183. — P. 948−955.
  226. Muciaccia В., Uccini S., Filippini A. et al. Presence and cellular distribution of HIV in the testes of seropositive subjects: an evaluation by in situ PCR hybridization//FASEB J.- 1998.-V. 12.-P. 151−163.
  227. Muller S., Dejean, A. Viral immediate-early proteins abrogate themodification by SUMO-1 of PML and SplOO proteins, correlating with nuclear body disruption // J. Virol. 1999. — V. 73. — P. 5137−5143.
  228. Nagano T. The crystalloid of Lubarsch in the human spermatogonium//Z Zellforsch.- 1969.-V. 97.-P. 491−504.
  229. Neighbour P.A., Fraser L.R. Murine cytomegalovirus and fertility: potentional sexual transmission and effect of this virus on fertilization in vitro // Fertil. Steril. 1978. — V. 20. — P. 216−222.
  230. Neofytou E., Sourvinos G., Asmarianaki M. et al. Prevalence of human herpes virus types 1−7 in the semen of men attending an infertility clinic and correlation with semen parameters // Fertil. Steril. -2009. — V. 91.-P. 2487−2494.
  231. Nuovo G. J., Becker J., Simsir A. et al. HTV-1 nucleic acids localize to the spermatogonia and their progeny. A study by polymerase chain reaction in situ hybridization //Am. J. Pathol. 1994. — V. 144. -P. 1142−1148.
  232. Ochsendorf F.R. Sexually transmitted infections: impact on male fertility // Andrologia. 2008. — V. 40. — P. 72−75.
  233. Oliver R. T. Atrophy, hormones, genes and viruses in aetiology germ cell tumours // Cancer Surv. 1990. — V. 9. — P. 263−286.
  234. Pagano J.S. Diseases and mechanisms of persistent DNA virus infection: latency and cellular transformation // J. lnfec. Dis. 1975. — V. 132.-P. 209.
  235. Pajovic S., Wong E.L., Black A.R. et al. Identification of a viral kinase that phosphorylates specific E2Fs and pocket proteins. Mol // Cell. Biol. 1997. — V. 17. — P. 6459−6464.
  236. Pallier C. Tebourbi L., Chopineau-Proust S. et al. Herpesvirus, cytomegalovirus, human sperm and assisted fertilization // Hum Reprod.- 2002,-V. 17.-P. 1281−1287.
  237. Pampou S. Yu., Gnedoy S. N., Bystrevskaya V. B. et al. Cytomegalovirus genome and the immediate-early antigen in cells of different layers of human aorta // J. Virchows Arch 2000. — V. 436. -P. 539−552.
  238. Patel R., Snydman D.R., Rubin R.N. et al. Cytomegalovirus prophylaxis in solid organ transplant recipients // Transplantation. -1996.- V.61.- № 9. P. 1279−1289.
  239. Paulus C., Krauss S., Nevels M. A human cytomegalovirus antagonist of type I IFN-dependent signal transducer and activator of transcription signaling // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2006. — V. 103.- P. 3840−3845.
  240. Penta M., Lukic A., Conte M. et al. Infectious agents in tissues from spontaneous abortions in the first trimester of pregnancy // New Microbiol. 2003. — V. 26. — P. 329−337.
  241. Perdue, M. L., Cohen, J. C., Randall et al. Biochemical studies of the maturation of herpesvirus nucleocapsid species // Virology. 1976. -V. 74.-P. 34−38.
  242. Perozzo R, Jelesarov I, Bosshard HR et al. Compulsory order of substrate binding to herpes simplex virus type 1 thymidine kinase. A calorimetric study // J Biol Chem. 2000. — V. 275. — P. 16 139−16 145.
  243. Pignatelli S., Monte D., Zini N. et. al. Immunoelectron microscopy analysis of HCMV gp UL73 (gN) localization // Arch. Virol. 2002.- V. 147.- P.1247−1256.
  244. Piomboni P., Baccetti B. Spermatozoon as a vehicle for HIV-1 and other viruses: a review // Mol Reprod Develop. 2000. — V. 56. — P. 238−242.
  245. Politch J.A., Xu C., Tucker L. et al. Separation of human immunodeficiency virus type 1 from motile sperm by the double tube gradient method versus other methods // Fertil Steril. 2004. — V. 81. -P. 440−447.
  246. Prichard M.N., Duke G.M., Mocarski E.S. Human cytomegalovirus uracil DNA glycosylase is required for the normal temporal regulation of both DNA synthesis and viral replication // J Virol.- 1996.- V.70. P. 3018−3025.
  247. Prichard M.N., Jairath S., Penfold M.E. et al. Identification of persistent RNA-DNA hybrid structures within the origin of replication of human cytomegalovirus // J Virol. 1998. — V. 72. — P. 6997−7004.
  248. Prior J.R., Moroll D.R., Birks A.G. et al. The screening for cytomegalovirus antibody in semen of donors and recipients within a donor insemination programme // Hum. Reprod. 1994. — V. 9. — P. 2076−2078.
  249. Rappersberger K. Infection with herpes simplex virus and varicella zoster virus in pregnancy: clinical manifettations in mother, fetus and new-born-therapeutic options // Hautarzt. 1999. — V.50. — P. 706−714.
  250. Rasmussen L., Morris S., Hamed K. et al. Human cytomegalovirus DNA is present in CD45+ cells in semen from human immunodeficiency virus-infected patients // J. Infect. Dis. 1995. — V. 171.-P. 432−436.
  251. Rinaldo C.R. Jr,. Kingsley L.A., Lyter D.W. et al. Excretion of cytomegalovirus in semen associated with HTLV-III seropositivity in asymptomatic homosexual men // J. Med.Virol. 1986. — V. 20. — P. 1722.
  252. Roby C., Gibson W. Characterization of phosphoptoreins and protein kinase activity of virions, noninfectious enveloped particles and dense bodies of human cytomegalovirus // J. Virol. 1986. — V. 59. — P. 714−727.
  253. Roizman В., Knipe D.M., Whitley R.J. Herpes Simplex Viruses. // In book: Fields Virology, 5th Ed. by D. Knipe, P. Howley.
  254. Philadelphia: Lippincott, Williams & Wilkins. 2007. — P. 2502−2601.
  255. Roizman В., Sear A.E. Herpes simplex viruses and their replication. In book: Virology, Ed. by Fielda B.N., Knipe D.M., Chanock R.M., Hirsch M.S., Melnick J.L., Monath T.P., New York. 1990.- P.1795−1841.
  256. Ross J.D.C., Smith I.W., Elton R. A. The epidemiology of herpes simplex types 1 and 2 infection of the genital tract in Edinburgh 19 781 991 //Genitourin. Med. 1993.-V. 69. — P. 381−383.
  257. Roulet V., Denis H., Staub C. et al. Human testis in organotypic culture: application for basic or clinical research // Hum. Reprod. -2006.- V.21. P. 1564−75.
  258. Roulet V., Satie A.-P., Ruffault A. et al. Susceptibility of Human Testis to Human Immunodeficiency Virus-1 Infection in Situ and in Vitro // Am. J. Path. 2006. — V. 169. — P. 2094−2103.
  259. Rowley M.,. Berlin J. et al. The ultrastructure of four types of human spermatogonia // Z Zellforsch. Mikrosk. Anat. 1971. — V. 112. -P. 139−146.
  260. Salomon B, Maury S, Loubiere L. et al. A truncated herpes simplex virus thymidine kinase phosphorylates thymidine and nucleoside analogs and does not cause sterility in transgenic mice // Mol Cell Biol. — 1995.-V. 15.-P. 5322−5328
  261. Salvant B.S., Fortunato E.A., Spector D.H. Cell cycle dysregulation by human cytomegalovirus: influence of the cell cycle phase at the time of infection and effects on cyclin transcription // J. Virol. 1998. — V. 70. — P. 7867−7877.
  262. , L. С., Cherrington J. M., Wilkinson G. W. G. et al. NF-кВ activation of the cytomegalovirus enhancer is mediated by a viral transactivator and by T cell stimulation // J. EMBO. 1989. — V. 8. — P. 4251−4258.
  263. Sauer M.V. Sperm washing techniques address the fertility needs of HIV-seropositive men: a clinical review // Reprod Biomed Online. -2005.-V. 10.-P. 135−140.
  264. Schultz-Larsen J. The morphology of human sperm // Acta Pathol. Microbiol. Scand. 1958. -V. 128. — P. 1−121.
  265. Scott D. A., Coulter W. A., Lamey P. J. Oral shedding of herpes simplex virus type 1: a review // J. Oral Pathol. Med. 1997. — V. 26. -p. 441−447.
  266. Severi В., Landini M. P. et al. Human cytomegalovirus nuclear and cytoplasmic dense bodies // J. Arch. Virol. 1992. — V. 123. -P. 193−207.
  267. Severi В., Landini M. P., Govoni E. Human cytomegalovirus morphogenesis: an ultrastructural study of the late cytoplasmic phases // Arch.Virol. 1988. — V. 98.-P. 51−64.
  268. Sharpe R. M. Regulation of spermatogenesis // In book: Knobil E., Neil J., eds. The Physiology of reproduction, 2nd edn. Raven Press, New York, 1994.-P. 1363−1434.
  269. Shen С., Chang S., Yang S. et al. Cytomegalovirus is present from semen of a population of men seeking fertility evaluation // J. Infect. Dis. 1994. — V. 169. — P. 222−223.
  270. Sherman J.K., Morgan P.N. Effect of human semen on herpes-simplex virus-2 // Fertil Steril. 1989. -V. 51. — P. 186−189.
  271. Shevchuk M. M., Nuovo G. J., Khalife G. HIV in testis: quantitative histology and HIV localization in germ cells // J. Reprod. Immunol. 1998.-V. 41.-P. 69−79.
  272. Sifakis S., Koumantakis E., Koffa M. et al. Detection of herpes simplex virus in aborted material using the polymerase chain reaction technique // Gynecol. Obstet. Invest. 1998. — V.45. — P. 109−115.
  273. Simmen K., Singh J., Mattias B. et. al. Global modulation of cellular transcription by human cytomegalovirus is initiated by viral glycoprotein В // PNAS.-2001. V. 98. — P. 7140−7145.
  274. Singh J., Compton, T. The IE1 protein of human cytomegalovirus is a key component of host innate immune repression. 29th International Herpesvirus Workshop, Reno, Nevada, 2004.
  275. Skakkaebaek N.E., Giwereman A., de Kretser D. Pathogenesis and management of male infertility // Lancet. 1994. — V. 343. — P. 1473−1479.
  276. Smith J. S., Herrero R., Munoz N. et al. Prevalence and risk factors for herpes simplex virus type 2 infection among middle-age women in Brazil and the Philippines // Sex. Transm. Dis. 2001. — V. 28.-P. 187−194.
  277. Spano L., Vargas P., Ribeiro F. et al. Cytomegalovirus in human abortion in Espirito Santo, Brazil // J. Clin. Virol. 2002. — V.25. — P. 173−178.
  278. Spector S.A., Hirata K.K., Newman, T. Identification of multiple cytomegalovirus strains in homosexual men with acquired immunodeficiency syndrome // J. Infect. Dis. 1984. — V. 150. — P. 953 175
  279. Spengler M. L., Kurapatwinski К., Black A. R. et al. SUMO-1 modification of human cytomegalovirus IE1/IE72 // J. Virol. — 2002. — V. 76. P. 2990−2996.
  280. Stagno S. Cytomegalovirus // In book: Infectious Diseases of the Fetus and Newborn Infant, 5th edn. J. S. Remington and J. O. Klein, eds., Philadelphia: W.B. Saunders, 2001. P. 389124.
  281. Stagno S., Ireland K.R. Congenital cytomegalovirus infection // Clinical management of Herpes Viruses / S.L. Sacks, S.E. Straus. IOS Press, 1995.-P. 329−340.
  282. Stanberry L.R. Asymptomatic herpes simplex virus shedding and Russian roulet // Clin. Infect.Dis. 2000. — V. 30. — P. 268−269.
  283. Stephanopoulus D.E., Myers M.G., Berstein D.I. Genital infections due to herpes simplex virus type 2 in the male guinea pigs // J. Infect. Dis. 1989. — V. 159. — P. 89−95.
  284. Steven A. C., Spear P. G. Herpesvirus capsid assembly and envelopment. In Structural Biology of Viruses, ed.W. Chiu, R.M. Burnett, R. L. Garcea, NewYork: Oxford University Press. 1997. — P. 312−351.
  285. Tabrizi S.N., Skov S., Chandeying V. et al. Prevalence of sexually transmitted infections among clients of female commercial sex workers in Thailand // Sex. Trans. Dis. 2000. — V. 21. — P. 358−362.
  286. Tachet A., Dulioust E., Salmon D. et al. Detection and quantification of HIV-1 in semen: identification of a subpopulation of men at high potential risk of viral sexual transmission // AIDS. 1999. -V. 13.-P. 823−831.
  287. Tang Q., Maul, G. G. Mouse cytomegalovirus immediate-early protein 1 binds with host cell repressors to relieve suppressive effects on viral transcription and replication during lytic infection // J. Virol.2003.-V. 77.-P. 1357−1367.
  288. Tebourbi L., Courtot A.M., Duchateau R. et al. Experimental inoculation of male mice with murine cytomegalovirus and effect on offspring // Hum. Reprod. 2001. — V. 16. — P. 2041 -2049.
  289. Tebourbi L., Testart J., Cerutti I. et al. Failure to infect embryos after virus injection in mouse zygotes // Hum. Reprod. — 2002. V. 17. -P. 760−764.
  290. Theiler R. N., Compton T. Characterization of the signal peptide processing and membrane association of human cytomegalovirus glycoprotein O. // J Biol Chem. 2001. — V. 276. — P. 39 226- 39 231.
  291. Tjiam K.H., van Heijst B.Y., Polak-Vogelzang A.A. et al. Sexually communicable micro-organisms in human semen samples to be used for artificial insemination by donor // Genitourin Med. — 1987. — V. 63.-P. 116−118.
  292. Tooze J., Hollinshead M., Reis B. et al. Progeny vaccinia and human cytomegalovirus particles utilize early endosomal cisternae for their envelopes // Eur. J. Cell Biol. 1993. — V. 60. — P. 163−178.
  293. Torino G., Bizzarro A., Castello G. et al. Cytomegalovirus and male infertility // Ann. Biol. Clin. V. 45. — P. 440−443.
  294. Trus B. L., Booy F. P., Newcomb W. W. et al. The herpes simplex virus procapsid: structure, conformational changes uponmaturation, and roles of the triplex proteins VP 19c and VP23 in assembly // J.Mol. Biol. 1996. — V. 263. — P. 447−462.
  295. Trus B.L. Gibson W. et al. Capsid structure of simian cytomegalovirus from cryoelectron microscopy: evidence for tegument attachment sites // J Virol. 1999. — V. 73. — P. 2181−2186.
  296. Turkington R., Majumder G. Gene activation during spermatogenesis // J Cell Physiol. 1975. — V.85. — P. 495−508.
  297. Urry R. Laboratory diagnosis of male infertility // Clin Lab Med.1985. — V. 5.-P. 355−365.
  298. Uzal F.A., Woods L., Stillian M. et al. Abortion and ulcerative posthitis associated with caprine herpesvirus-1 infection in goats in California // J Vet Diagn Invest. 2004. — V. 16. — P. 478−484.
  299. Vanroose G., Nauwynck A., Van Soom E. Susceptibility of zona-intact and zona-free in vitro-produced bovine embryos at different stages of development to infection with bovine herpesvirus-1 // Theriogenology. 1997. — V. 47. — P. 1389−1402.
  300. Varela J. A., Garcia-Corbeira P., Aguanell M. V. et al. Herpes simplex vims type 2 seroepidemiology in Spain: prevalence and seroconversion rate among sexually transmitted disease clinic attendees // Sex. Transm. Dis. 2001. — V. 28. — P. 47−50.
  301. Vamum S.M., Streblow D.N. et al. Identification of Proteins in Human Cytomegalovims (HCMV) Particles: the HCMV Proteome // J. Virol.- 1994.-V. 78.-P. 10 960−10 966
  302. Vey M., Schafer W. Proteolytic processing of human cytomegalovims glycoprotein В (gpUL55) is mediated by the human endoprotease furin // Virology. 1995. — V. 206. — P. 746−749.
  303. Vyse A. J., Gay N. J., Slomka M. J. The burden of infection withHSV-landHSV-2in Englandand Wales: implications for the changing epidemiology of genital herpes // Sex. Transm. Infect. 2000. -V. 76.-P. 183−187.
  304. Wade M., Kowalik T. F., Mudryj M. et al. E2 °F mediates dihydrofolate reductase promoter activation and multiprotein complex formation in human cytomegalovims infection // Mol. Cell. Biol. — 1992.- V. 12.-P. 4364−4374.
  305. Wald A., Corey L., Cone R. et al. Frequent genital herpes simplex vims 2 shedding in immunocompetent women: effect of acyclovir treatment // J. Clin. Investig. 1997. — V. 99. — P. 1092−1097.
  306. Wald A., Langenberg A., Link K. et al. Effect of condoms on reducing the transmission of herpes simplex virus type 2 from men to women// J. Am. Med. Assoc. -2001. -V. 285. P. 3100−3106.
  307. Wald A., Matson P., Ryncarz A. et al. Detection of herpes simplex virus DNA in semen of men with genital HSV-2 infection // Sex Transm Dis. 1999. — V. 26. — P. 1 -3.
  308. Wald A., Zeh J. E., Selke S. A. et al. Genital shedding of herpes simplex virus among men // J. Infect. Dis. 2002. — V. 186. (Suppl. 1) -P.34−39.
  309. Wan L., Molloy S.S. PACS-1 defines a novel gene family of cytosolic sorting proteins required for trans-Golgi network localization // Cell. 1998.-V. 94.-P. 205−216.
  310. Weiss H., Buve A., Robinson N. et al. The epidemiology of HSV-2 infection and its association with HIV infection in four urban African populations. AIDS. 2001. — V. 15 (suppl. 4). — P. 97−108.
  311. Whealy M.E., Card J.P. Effect of brefeldin A on alphaherpesvirus membrane protein glycosylation and virus egress // J. Virol. — 1991. V. 65.-P. 1066−1081.
  312. Whitley R. J., Roizman B. Herpes simplex viruses // Lancet. -2001.-V. 357.-P. 1513−1518.
  313. Whitley R., Corey L., Arvin A. et al. Changing presentation of herpes simplex virus infection in neonates // J. Infect. Dis. — 1998. V. 158.-P. 109−116.
  314. WHO laboratory manual for the examination of human semen• tViand sperm-cervical mucus interaction // 4 ed., Cambridge University Press. 1999.-P. 128.
  315. Wiebusch L., Asmar J., Uecker R. et al. Human cytomegalovirus immediate-early protein 2 (IE2)-mediated activation of cyclin E is cell-cycle-independent and forces S-phase entry in IE2-arrested cells // J Gen Virol. 2003.-V. 84.-P. 51−60.
  316. Wiebusch L., Hagemeier C. The human cytomegalovirus immediate early 2 protein dissociates cellular DNA synthesis from cyclin-dependent kinase activation // EMBO J. 2001. — V. 20. — P. 1086−1098.
  317. Wilkinson G. W., Kelly C., Sinclair J. H. et al. Disruption of PML-associated nuclear bodies mediated by the human cytomegalovirus major immediate early gene product // J. Gen. Virol. — 1998. V. 79. — P. 1233−1245.
  318. Willison K., Ashworth A. Mammalian spermatogenesic gene expression // Trends Genet. 1987. — V. 3. — P. 351−355.
  319. Winkler M., Siepen D., Stamminger T. Functional interaction between pleiotropic transcativator pUL69 of human cytomegalovirus and the human homology of yeast chromatin regulatory protein SPT6. // J. Virol. 2000. — V. 74. — P. 8053−8064.
  320. Witz C.A., Duan Y., Burns W.N. et al. Is a risk of cytomegalovirus transmission during in vitro fertilization with donated oocytes?//Fertil. Steril. 1999.-V. 71.-P. 302−307.
  321. Wrathall A.E., Simmons H.A., Van Soom A. Evaluation of risks of viral transmission to recipients of bovine embryos arising from fertilisation with virus-infected semen // Theriogenology. 2006. — V. 65. — P. 247−274.
  322. Wright E., Bain M., Teague L. et al. Ets-2 repressor factor recruits hi stone deacetylase to silence human cytomegalovirus immediate-early gene expression in non-permissive cells // J Gen Virol. 2005. — V. 86. — P. 535−544.
  323. Wu K.H., Zhou Q.K., Huang J.H. et al. Infection of cytomegalovirus and herpes simplex vims and morphology of the infected spermatogenic cells in infertile men // Zhonghua Nan Ke Xue. -2007.-Vol. 13.-P. 1075−1079.
  324. Xu F., Schillinger J. A., Sternberg M.R. et al. Seroprevalence and coinfection with herpes simplex virus type 1 and type 2 in the United States, 1988−1994//J. Infect. Dis.-2002.- V. 185.-P. 1019−1024.
  325. Xu Y., Cei S.A. Human cytomegalovirus DNA replication requires transcriptional activation via an IE2- and UL84-responsive bidirectional promoter element within oriLyt // J Virol. 2004. — V. 78. -P. 11 664−77.
  326. Yanagimachi R. Mammalian fertilization // In book: Knobil E., Neil J., eds. The Physiology of reproduction, 2nd edn. Raven Press, New York, 1994.-P. 189−317.
  327. Yang Y.S., Ho H.N., Chen H.F. et al. Cytomegalovirus infection and viral shedding in the genital tract of infertile couples // J. Med. Virol. 1995.-V. 45.-P. 179−182.
  328. Yasazumi G. Spermatogenesis in animals as revealed by electron microscopy // J Biophys Biochem Cytol. 1956. — V. 2. — P. 445−449.
  329. Yogev L., Kleiman S., Shabtai E. et al. Seasonal variations in pre-and post-thaw donor sperm quality // Human Reproduction 2004. -V.19. — P. 880−885.
  330. Yoshikawa, Y., Truong L. D., Fraire A. E. et al. The spectrum of histopathology of the testis in acquired immunodeficiency syndrome // Mod. Pathol. 1989. — V. 2. — P. 233−238.
  331. Yu X., Trang P., Shah S. et al. Dissecting human cytomegalovirus gene function and capsid maturation by ribozyme targeting and electron cryomicroscopy // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2005. — V.102. — P. 7103−7108.
  332. Yueh Y., Yaworsky P., Kappen C. Herpes simplex virus transcriptional activator VP 16 is detrimental to preimplantation development in mice // Molec. Repr. Developm. 1999. — V. 55. — P. 37−46.
  333. Zhu Z., Gershon M.D. et al. Envelopment of varicella-zoster virus: targeting of viral glycoproteins to the trans-Golgi network // J. Virol. 1995.-V. 69.-P. 7951−7959.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!