Структурно-молекулярная организация и эволюция В-хромосом восточноазиатской лесной мыши Apodemus Peninsulae
Полученные нами результаты показывают перспективность подхода микродиссекции метафазных хромосом и использования метода FISH для исследования молекулярной организации В-хромосом. Благодаря этому методу мы выяснили, что В-хромосомы восточноазиатских лесных мышей Apodemus peninsulaр, как и В-хромосомы большинства исследованных видов животных и растений, сформированы кластерами повторенных… Читать ещё >
Содержание
- Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- Распространение В-хромосом в природе
- Полиморфизм числа В-хромосом
- Морфология В-хромосом
- Молекулярная организация В-хромосом
- Особенности стркуктурно-функциональной организации хроматина В-хромосом
- Состав ДНК В-хромосом
- Ш Мобильные элементыВ-хромосом
- Рибосомальная ДНК В-хромосом
- Происхождение и дальнейшая молекулярная эволюция В-хромосом разных видов
- Внутривидовое происхождение из аутосом
- Внутривидовое происхождение из половых хромосом
- Гибридное происхождение
- Гипотеза экстрахромосомного происхождения В-хромосом
- Эволюция В-хромосом
- Роль амплификации последовательностей ДНК в эволюции В-хромосом
- Эффекты В-хромосом на носителя
- Поведение В-хромосом в мейозе
- Механизмы накопления В-хромосом
- Премейотический механизм
- Мейотическое накопление
- Постмейотическое накопление
- Амейотическое накопление
- Организация В-хромосом у представителей разных таксономических групп
- В-хромосомы растений
- В-хромосомы беспозвоночных. j) В-хромосомы позвоночных
- Вид Apodemus peninsulae как объект исследования В-хромосом
- Таксономическое положение вида Apodemus peninsulae
- Кариотип Apodemus peninsulae
- Дифференциальное окрашивание В-хромосом
- Варьирование числа В-хромосом
- В-хромосомы в клеточных культурах
- Лабораторные популяции
- Исследование мейоза Apodemus peninsulae
- Глава 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
- 2. 1. Материал
- 2. 1. 1. Животные
- 2. 1. 2. Номенклатура В-хромосом, использованная в работе
- 2. 2. Метод ы
- 2. 2. 1. Приготовление препаратов метафазных хромосом для цитогенетического анализа
- 2. 2. 2. Методы окрашивания хромосом
- 2. 1. Материал
- 2. 2. 2. 2. Ag-окраска ядрышкообразующих районов хромосом
- 2. 2. 2. 3. GTG-дифференциальное окрашивание метафазных хромосом
- 2. 2. 2. 4. DAPI-окрашивание
- 2. 2. 3. Создание ДНК-проб
- 2. 2. 3. 1. Приготовление препаратов метафазных хромосом для микродиссекции
- 2. 2. 3. 2. Подготовка микропипеток и игл для микродиссекции
- 2. 2. 3. 3. Микродиссекция метафазных хромосом
- 2. 2. 3. 4. ПЦР с частично вырожденным праймером
- 2. 2. 3. 5. Введение метки в ДНК микродиссекционных ДНК-библиотек
- 2. 2. 3. 6. ДНК-проба для детекции рибосомальной ДНК
- 2. 2. 3. 7. Проба теломерных повторов
- 2. 2. 4. Флуоресцентная in situ гибридизация
- 2. 2. 4. 1. Приготовление препаратов метафазных хромосом для FISH
- 2. 2. 4. 2. Получение препаратов из ткани семенников для FISH
- 2. 2. 4. 3. Флуоресцентная in situ гибридизация
- 2. 2. 5. Детекция на цитологических препаратах меченого ДНК-зонда
- 2. 2. 5. 1. Детекция на цитологических препаратах ДНК-зонда меченого биотином
- 2. 2. 5. 2. Детекция на цитологических препаратах ДНК-зонда меченого дигоксигенином
- 2. 2. 5. 3. Совместное выявление двух гаптен-меченых ДНК-проб на одном препарате
- 2. 2. 6. Микроскопический анализ препаратов метафазных хромосом
- 3. 1. Морфология и дифференциальная окраска В хромосом Apodemus peninsulae
- 3. 2. Получение микродиссекционных ДНК-проб
- 3. 3. Паттерны сигнала FISH полученных ДНК-проб в хромосомах
- 3. 4. Классификация выявленных повторов В-хромосом лесных мышей по локализации гомологичных последовательностей в геноме
- 3. 5. Характер распределения последовательностей ДНК в В-хромосомах восточноазиатской лесной мыши
- 3. 5. 1. Анализ индивидуального полиморфизма В-хромосом животных № 11 и №
- 3. 5. 2. Организация прицентромерных районов В-хромосом
- 3. 5. 3. Молекулярная организация плеч В-хромосом
- 3. 5. 4. Выявление активных ЯО-районов и последовательностей рибосомальной ДНК в В-хромосомах
- 3. 5. 5. МикроВ-хромосомы
- 3. 6. Характер распределения повторенных последовательностей ДНК В-хромосом в А-хромосомах восточноазиатской лесной мыши
- 3. 7. Сравнение В-хромосом лесных мышей из географически удаленных районов
- 3. 7. 1. Особенности организации В-хромосом Дальневосточных популяций
- 3. 7. 2,Особенности организации В-хромосом животных из Восточной Сибири
- 3. 8. Пространственная организация мейотических ядер Apodemus peninsulae
- 3. 9. Анализ видоспецифичности выявленных повторов В-хромосом лесных мышей
- 4. 1. Эволюция В-хромосом восточноазиатских лесных мышей
- 4. 2. Гипотеза распространения повторов в геномах двух видов Apodemus и гипотетический механизм формирования В-хромосом лесных мышей. т
- 4. 3. Связь морфологии и молекулярного состава В-хромосом
- 4. 4. Роль ЯОР в эволюции В-хромосом Apodemus peninsulae
Структурно-молекулярная организация и эволюция В-хромосом восточноазиатской лесной мыши Apodemus Peninsulae (реферат, курсовая, диплом, контрольная)
Актуальность работы.
В большинстве крупных таксономических групп встречаются виды, в геноме которых наряду с А-хромосомами, составляющими основной набор, присутствуют дополнительные или В-хромосомы. В-хромосомы до сих пор считаются одними из наиболее загадочных элементов генома. Исследования В-хромосом разных видов показывают, что в природе существует большое разнообразие этих элементов. Для В-хромосом многих видов были предложены гипотезы, объясняющие их происхождение, например в результате случайных ошибок мейоза, приводящих к трисомии, из центрических фрагментов, образовавшихся в результате слияния А-хромосом и так далее. Большую роль в их формировании могут играть мобильные элементы. В любом случае появление В-хромосом в геноме связано с реорганизацией хромосом и характерно для тех групп видов, у которых происходит быстрая кариотипическая эволюция. У большинства видов В-хромосомы, вероятно, представляют собой генетически неактивные элементы генома, не подверженные прессингу отбора и поэтому очень лабильны в эволюционном плане. Благодаря перечисленным особенностям В-хромосомы могут служить моделью для анализа ряда механизмов, определяющих кариотипическую эволюцию, таких как происхождение новых элементов генома, амплификация последовательностей ДНК (Blunden et al., 1993; Reed et al., 1994; Gutknecht et al., 1995; Jamilena et al., 1995), гетерохроматизация и генетическая инактивация элементов генома (Camacho et al., 2000), механизмы аккумуляции хромосом, стабилизация дополнительных хромосом в геноме (Hackstein et al., 1996, Araujo et al., 2001).
До недавнего времени исследования В-хромосом были ограничены методами изучения их морфологии и структурной организации, распределения в популяциях и поведения в мейозе. Изучение молекулярного состава В-хромосом оставалось за рамками исследований. В результате вопросы происхождения и роли В-хромосом и сейчас остаются предметом многочисленных дискуссий.
Широкое внедрение в цитогенетические исследования различные ДНК-проб и разработка метода микродиссекции метафазных хромосом открыли принципиально новые возможности анализа организации В-хромосом, которые могут позволить расшифровать ряд механизмов молекулярной реорганизации хромосом, определить особенности состава ДНК эволюционно лабильных районов, а также расширить современные представления о механизмах и закономерностях формирования малых сверхчисленных хромосом человека.
В-хромосомы восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae обладают уникальным набором характеристик, которые делают их весьма удобным и перспективным модельным объектом при изучении происхождения и молекулярной организации В-хромосом млекопитающих. Они присутствуют в большом числе у подавляющего большинства представителей этого вида (Hayata et al., 1970; Krai, 1971, Волобуев, 1979) и варьируют как по размерам, так и по морфологии (Картавцева 2002).
Цели и задачи исследования.
Цель данной работы — выяснение основных принципов структурной, молекулярной организации и эволюции В-хромосом восточноазиатской лесной мыши Apodemus peninsulae. Для достижения этой цели были поставлены следующие конкретные задачи.
1) Провести отлов животных из разных, в том числе географически удаленных популяций Apodemus peninsulae.
2) Провести кариотипический анализ всех отловленных животных.
3) Создать набор хромосомои районоспецифичных ДНК-библиотек В-хромосом и районов хромосом основного набора Apodemus peninsulae.
4) Провести сравнительный анализ ДНК разных районов В-хромосом.
5) Провести сравнительный молекулярно-цитогенетический анализ В-хромосом животных из разных популяций и из удаленных географических районов.
6) Оценить распределение последовательностей ДНК, гомологичных ДНК В-хромосом, в хромосомах основного набора.
7) Провести оценку видоспецифичности ДНК районов В-хромосом лесной мыши.
Научная новизна и практическая ценность.
Представленные в работе данные расширяют наши представления об организации и закономерностях эволюции хромосом млекопитающих.
Продемонстрировано, что наличие активных ядрышкообразующих районов в В-хромосомах лесных мышей — достаточно распространенное явление, характерное для разных значительно удаленных популяций этого вида, что может свидетельствовать о возможном адаптивном значении В-хромосом. Выявлена связь формирования ЯО-районов с определенными типами повторенных последовательностей.
Описан феномен избегания полноценной конденсации некоторых районов В-хромосом в митозе.
Показано, что прицентромерные районы В-хромосом из разных географических районов имеют различный состав ДНК.
Выявлены особенности распределения последовательностей ДНК, гомологичной ДНК В-хромосом в А-хромосомах A. peninsulae и у A.agrarius.
Установлена связь морфологии и состава ДНК В-хромосом.
Полученные данные указывают на независимое и различное происхождение В-хромосом восточноазиатских лесных мышей в различных географических районах. Предложены гипотетические механизмы формирования и эволюции В-хромосом у этого вида.
Апробация работы.
Результаты исследования были доложены на Второй международной конференции по В-хромосомам (Бубион, Испания, 27−29 июня 2004) и на III международной научной конференции молодых ученых и студентов (Казахский национальный университет имени аль-Фараби, г. Алматы), на 3-ем съезде ВОГиС (Москва, 2−12 июня 2004), на Сибирской Зоологической Конференции (Новосибирск, 15−22 сентября 2004). Кроме того, результаты были представлены на отчетной сессии Института Цитологии и Генетики СО РАН в феврале 2002 года. По материалам диссертации опубликовано 7 работ.
Вклад автора.
Автор участвовала в отлове мышей на территории Западной Сибири. Ею были получены суспензии хромосом восточноазиатских лесных мышей, отловленных в Бурятии и Западной Сибирипроведен анализ метафазных хромосом с использованием различных методов дифференциального окрашивания. Автором выполнено фиксирование канальцев семенников и приготовление их препаратов для FISH. Автор принимала участие в создании ДНК-проб методом микродиссекции и DOP-PCR, в экспериментах по флуоресцентной in situ гибридизации, в планировании и обсуждении результатов экспериментов.
Структура и объем диссертации
.
выводы.
1. В-хромосомы восточноазиатской лесной мыши состоят из нескольких типов повторенных последовательностей, одни из которых являются общими й хромосомами основного набора, тогда как другие специфичны для В-хромосом.
2. Часть районов В-хромосом, содержащих определенный тип повторенных последовательностей, остаются слабоконденсированными в митозе.
3. Два типа повторов В-хромосом восточноазиатской лесной мыши выявлены в хромосомах близкого вида Apodemus agrarius (мышь полевая).
4. Показано, что двуплечие В-хромосомы восточноазиатской лесной мыши могут являться как изохромосомами, так и иметь различные плечи.
5. Показано, что системы В-хромосом удаленных популяций Apodemus peninsulae существенно различаются по встречаемости разных морфологических вариантов и молекулярному составу морфологически сходных В-хромосом. Один из выявленных типов повторенных последовательностей В-хромосом является общим для всех проанализированных популяций.
6. Показано, что В-хромосомы могут иметь различное происхождение. В-хромосомы популяций Западной и Центральной Сибири, наиболее вероятно, происходят из аутосом, в то время как В-хромосомы популяций Дальнего Востока, вероятно, поисходят из половых хромосом.
5. Высказано предположение, что два района — Дальний Восток и Западная Сибирь — могли бытьт центрами происхождения В-хромосом, так как в этих районах обитают мыши с различающимися системами В-хромосом, в то время как в районах расположенных между ними встречаются оба варианта В-хромосом.
7. В В-хромосомах лесных мышей из разных популяций выявлены активные ядрышкообразующие районы. В этих районах обнаружены кластеры повторенных последовательностей, гомологичных рибосомальной ДНК.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
.
Проведенные за последние годы исследования В-хромосом многих видов животных и растений позволили выяснить некоторые общие принципы организации этих элементов генома. Показано, что В-хромосомы, как правило, состоят из повторенных последовательностей разных типов, как общих с последовательностями хромосом основного набора, так и специфичных для В-хромосом. Выявлены последовательности, которые участвуют в формировании дополнительных хромосом разных организмов. К таким последовательностям относятся прицентромерные, теломерные повторы, кластеры рибосомальных генов, последовательности мобильных элементов различных классов. С точки зрения молекулярной организации В-хромосомы млекопитающих остаются пока слабо изученными по сравнению с Э-хромосомами растений и некоторых беспозвоночных.
В-хромосомам восточноазиатской лесной мыши, послужившей объектом данного исследования, посвящено множество исследований. Системы В-хромосом разных популяций этого вида достаточно хорошо изучены цитогенетическими методами. Наши исследования позволили дополнить эти данные некоторыми молекулярными характеристиками В-хромосом лесных мышей, отловленных в нескольких достаточно удаленных географических районах. В результате проведенных исследований была выявлена связь между молекулярным составом и морфологией В-хромосом.
Полученные нами результаты показывают перспективность подхода микродиссекции метафазных хромосом и использования метода FISH для исследования молекулярной организации В-хромосом. Благодаря этому методу мы выяснили, что В-хромосомы восточноазиатских лесных мышей Apodemus peninsulaр, как и В-хромосомы большинства исследованных видов животных и растений, сформированы кластерами повторенных последовательностей ДНК. Мы выявили несколько типов повторенных последовательностей, формирующих дополнительные хромосомы лесных мышей и проанализировали распределение гомологичных последовательностей ДНК в хромосомах основного набора этого вида, а также в хромосомах близкого вида полевая мышь. Анализ показал, что в составе В-хромосом лесных мышей присутствуют последовательности ДНК, гомологичные некоторым последовательностям основного набора, а также специфичные для В-хромосом. Из-за обогащенности В-хромосом высоко повторенными последовательностями использованный метод, к сожалению, не применим к анализу содержащихся в В-хромосомах низкокопийных и уникальных последовательностей. Кроме того, за рамками наших исследований осталась детальная характеристика выявленных последовательностей. Это поднимает вопрос об актуальности исследований данного объекта другими молекулярными методами, клонирования и сиквенирования выявленных повторенных последовательностей. Так, полученные нами данные позволяют предположить значительную роль мобильных элементов в формировании В-хромосом лесных мышей. Чтобы проверить это предположение, в будущем будет весьма интересно проанализировать распространение различных мобильных элементов в геноме этого, а также близких видов.
Проведенные нами исследования позволили выявить в В-хромосомах большого числа лесных мышей активные ядрышкообразующие районы. Поэтому нельзя исключить возможной адаптивной роли В-хромосом этого вида. Хотя тот факт, что у лесных мышей ранее была показана аккумуляция В-хромосом в сперматоцитах, а также тот факт, что эти В-хромосомы состоят в основном из некодирующих высокоповторенных последовательностей ДНК, свидетельствуют в пользу паразитической природы этих элементов. Возможно, последовательности рибосомальной ДНК играют роль в формировании морфологического полиморфизма по В-хромосомам как наиболее мобильные последовательности в геноме.
В целом, представленные в настоящей работе результаты в сравнении с имеющимися литературными данными демонстрируют на примере восточноазиатских лесных мышей, что молекулярная организация В-хромосом млекопитающих имеет много общих черт с молекулярной организацией В-хромосом растений и различных классов животных.
Список литературы
- Ананьев Е.В., Чернышев А. И. Молекулярная организация генома растений. // Организация генома. Ред.: Богданов Ю. Ф., Прозоров А. А. Москва. Наука. 1989. С. 218−236.
- Бекасова Т.С., Воронцов Н. Н. Популяционный хромосомный полиморфизм у азиатских лесных мышей Apodemus peninsulae, // Генетика. 1975, Т. 11. С, 8994.
- Беляев Д.К., Волобуев В. Т., Раджабли С. И., Трут JI.H. Полиморфизм и мозаицизм по добавочным хромосомам у серебристо-черных лисиц. // Генетика. 1974. Т. 10. С. 58−67.
- Белянина С.И. О добавочных микрохромосомах у хирономид из Волги. // Цитология. 1975. Т. 17. С. 208−209.
- Бирштейн В.Я. Цитогенетические и молекулярные аспекты эволюции позвоночных. Москва. Наука. 1987.288 с.
- Богданов Ю.Ф., Коломиец O.JI. Кариотипирование на основе синаптонемных комплексов и применение этого метода в цитогенетике. // Генетика. 1985. Т. 21. № 5. с. 793−802.
- Боескоров Г. Г., Картавцева И. В., Загороднюк И. В., Белянин А. Н., Ляпунова Е. А. Ядрышкообразующие районы и В-хромосомы лесных мышей (Mammalia, Rodentia, Apodemus). //Генетика. 1995. Т. 31. С. 185−192.
- Борбиев Т.Э., Коломиец O.JL, Борисов Ю. М., Сафронова А. Д., Богданов Ю.ф. Синаптонемные комплексы А- и В-хромосом сперматоцитов восточноазиатской мыши Apodemus peninsulae. // Цитология. 1990. Т. 32. С. 193−197.
- Борбиев Т.Э. В-хромосомы восточноазиатской мыши (Apodemus peninsulae). Изменчивость и поведение в мейозе. Автореф. Канд. Дис. Москва. 1991. 21с.
- Борисов Ю.М. Цитогенетическая структура популяции Apodemus peninsulae (Rodentia, Muridae) на побережье Телецкого озера (Алтай). // Генетика. 1990а. Т. 26. № 7. С. 1212−1220.
- Борисов Ю.М. Изменчивость цитогенетической структуры популяций Apodemus peninsulae (Rodentia, Muridae) в Западных Саянах. // Генетика. 19 906. Т. 26. № 8. С. 1484−1491.
- И.Борисов Ю. М. Цитогенетическая дифференцировка популяций Apodemus peninsulae (Rodentia, Muridae) в Восточной Сибири. // Генетика. 1990 В. Т. 26. № 10. С. 1828−1839.
- Борисов Ю.М. Система В-хромосом — маркер популяции Apodemus peninsulae (Rodentia, Muridae) в Прибайкалье. // Генетика. 1990 г. Т. 26. № 12. С. 22 152 225.
- Борисов Ю.М., Малыгин В. В. Юганальная изменчивость системы В-хромосом восточноазиатской мыши Apodemus peninsulae из Бурятии и Монголии. // Цитология. 1991. Т. 33. № 33. С. 106−111.
- Буторина А.К., Богданова Е. В. Адаптивное значение и возможное происхождение В-хромосом у ели колючей. // Цитология. 2001. Т. 43. С. 809 814.
- Волобуев В.Т., Тимина Н. Ю. Необычно высокое число В-хромосом и мозаицизм по ним у азиатской лесной мыши A. peninsulae (Rodentia, Muridae). // Цитология и генетика. 1980. Т. 14. № 3. С. 43−45.
- Волобуев В.Т. В-хромосомы млекопитающих. // Усп. Совр. Биол. 1978. Т. 86. С. 387−398.
- Волобуев В.Т. Кариологический анализ трех сибирских популяций азиатской лесной мыши Apodemus peninsulae (Rodentia, Muridae). // Докл. АН СССР. 1979. Т. 248. С. 1452−1454.
- Волобуев В.Т. Система В-хромосом азиатской лесной мыши Apodemus peninsulae (Rodentia, Muridae). Сообщение 1. Структура кариотипа, G- и С-полосы и характер вариации числа В-хромосом, Генетика, 1980. Т. 16. С. 12 771 284.
- Воронцов Н.Н., Бекасова Т. С., Крал Б., Коробицына К. В., Иваницкая Е. Ю. О видовой принадлежности азиатских мышей рода Apodemus (Rodentia, Muridae) Сибири и Дальнего Востока. // Зоол. журн. 1977. Т. 56. № 3. С. 437−450.
- Гилева Э.А. В-хромосомы, необычное наследование половых хромосом и соотношение полов у копытного лемминга Dicrostonyx torquatus torquatus (Pallas, 1779). //Докл. АН СССР. 1973. Т. 213. С. 952−955.
- Графодатский А.С., Раджабли С. И. Хромосомы сельскохозяйственных и лабораторных животных. Атлас. Новосибирск. Наука. 1988. 128 с.
- Жиров С.В. Дополнительные хромосомы (В-хромосомы) в кариотипах некоторых видов хирономид из Псковской области. // Цитология. 1999. Т. 41. С. 91−95.
- Ильинская Н.Б., Петрова Н. А. В-хромосомы Chironomus plumosus (Diptera, Chironomidae). //Генетика. 1985. Т. 21. С. 1671−1679.
- Картавцева И.В., Борисов Ю. М., Воронцов Н. Н., Ляпунова Е. А., Кораблев В. П. Добавочные хромосомы крысовидного хомячка и его систематическое положение. // Зоол. Журн. 1979. Т. 59. С. 899−904.
- Картавцева И.В. Описание В-хромосом в кариотипе полевой мыши Apodemus agrarius. // Цитология и генетика. 1994. Т. 28. С. 96−97.
- Картавцева И.В. Добавочные хромосомы, мозаицизм и динамика численности в двух популяциях восточноазиатской мыши (Apodemus peninsulae, Rodentia) Приморского края в различные сезоны года. // Генетика. 1999. Т. 35. С. 949 955.
- Картавцева И.В., Павленко М. В. Хромосомная изменчивость полевой мыщи Apodemus agrarius. // Генетика. 2000. Т. 36. С. 223−236.
- Картавцева И.В. Кариосистематика лесных и полевых мышей (Rodentia, Muridae). Владивосток. Дальнаука. 2002. 142 с.
- Кикнадзе И.И., Истомина А. Г., Салова Т. А. Функциональная морфология политенных хромосом хирономиды Chironomuso pilicomis F. из водоемов криолитозоны. // Цитология. 2002. Т. 44. С. 89−96.
- Малыгин А.А., Грайфер Д. М., Зенкова М. А., Мамаев С. В., Карпова Г. Г. Аффинная модификация 80S рибосом из плаценты человека производными три- и гексауридилатов в качестве аналогов мРНК. // Молекулярная биология. 1992. Т. 26. С. 369−377.
- Мисейко Г. Н., Кикнадзе И. И., Минсаринова Б. Х. Добавочные микрохромосомы у хирономид. // Генетика. 1971. Т. 200. С. 709−711.
- Раджабли С.И., Исаенко А. А., Волобуев В. Т. Исследование природы и роли добавочных хромосом серебристо-черных лисиц. Сообщение IV. Поведение добавочных хромосом в мейозе. // Генетика. 1978. Т. 14. С. 438−443.
- Раджабли С.И., Борисов Ю. М. Варианты системы добавочных хромосом у континентальных форм Apodemus peninsulae. // Докл. Акад. Наук СССР. 1979. Т. 248. С. 979−981.
- Сиирин М.Т., Рубцов Н. Б., Карамышева Т. В., Катохин А. В., Карагодин ДА., Кикнадзе И. И. Молекулярно-цитогенетическая характеристика В-хромосом хирономид (Diptera, Chironomidae). // Цитология. 2003. Т. 45. С. 582−589.
- Чубарева JI.A. К вопросу о добавочных хромосомах и параллелизме наследственной изменчивости у некоторых двукрылых насекомых. // Докл. Акад. Наук СССР. 1971. Т. 196. С. 695−699.
- Abe S., Han S.H., Kojima Н., Ishibashi Y., Yoshida M.C. Differential staining profiles of B-chromosomes in the East-Asiatic wood mouse Apodemus peninsulae. Chrom. Sci. 1997. V. 1. P. 7−12.
- Adam R.D. Chromosome-size variation in Giardia lamblia: the role of rDNA repeats. //Nucl. Acids Res. 1992. V. 20. P. 3057−3061.
- Alfenito M.R., Birchler H. W. Molecular characterization of a maize В chromosome centric sequence. // Genetics. 1993. V. 135. P. 589−597
- Amos A., Dover G. The distribution of repetitive DNAs between regular and supernumerary chromosomes in species of Glossina (tsetse): a two-step process in the origin of supernumeraries. // Chromosoma. 1981. V. 81. P. 673−690.
- Araujo S.M.S.R., Pompolo S.G., Perfectti F., Camacho J.P.M. Integration of, а В chromosome into the A genome of a wasp. // Proc. R. Soc. Lond. B. 2001. V. 268. P. 1127−1131.
- Arnheim N., Krystal M., Sdhmickel R., Wilson G., et al. Molecular evidence for genetic exchanges among ribosomal genes on nonhomologous chromosomes in man and ape // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1980. V. 77. P. 7323−7327.
- Bakkali M., Cabrero J., Camacho J.P.M. B-A interchanges are an unlikely pathway for В chromosome integration into the standard genome. // Chromosome research. 2003. V. 11. P. 115−123.
- Batistoni R., Pesole G., Marracci S., Nardi I. A tandemely repeated DNA family originated from SINE-related elements in the Europian plethodontid salamanders (Amphibia, Urodela). // J. Mol. Evol. 1995. V. 40. P. 608−615.
- Battaglia E. Cytogenetics of В chromosomes. // Caryologia. 1964. V. 17. P. 245−299.
- Bedbrook J.R., O’Dell M., Flavell R.B. Amplification of rearranged repeated DNA sequences in cereal plants. //Nature. 1980. V. 288. P. 133−137.
- Bekasova T.S., Vorontsov N.N., Korobitsyna K.V., Korablev V.P. B-chromosomes and comparative caryology of the mice of the genus Apodemus. // Genetica (Ned). 1980. V. 52−53. P. 33−43.
- Benazzi Lentati G. Gametogenesis and egg fertilization in planarians. // Int. Rev. CytoL 1970. V.27.P. 101−179.
- Beukeboom L.W. Bewildering Bs: an impression of the 1st В-chromosome conference. //Heredity. 1994. V. 73. P. 328−336.
- Beukeboom L.W., Seif M., Mettenmeyer Т., Plowman A.B., Michiels N.K. Paternal inheritance of В chromosomes in a parthenogenetic hermaphrodite. // Heredity. 1996. V. 77. P. 646−654.
- Beukeboom L.W. and Vrijenhoek R.C. Evolutionary genetics and ecology of sperm-dependent parthenogenesis. // J. Evol. Biol. 1998. V. 11. P. 755−782.
- Bigot Y., Hamelin M.-H., Periquet G. Heterochromatin condensation and evolution of unique satellite-DNA families in two parasitic wasp species: Diadromus pulchellus and Eupelmus vuilleti (Hymenoptera). // Mol. Biol. Evol. 1990. V. 7. P. 351−364.
- Blackman R.L. Cytogenetics of two species Euceraphis (Homoptera, Aphididae). II Chromosoma. 1976. V. 56. P. 393−408.
- Blunden R., Wilkes T.J., Forster J.W., Jimenez M.M., Sandery M.J., Jarp A., Jones R.N. Identification of the E3900 family, second family of rye В chromosome specific repeated sequences. // Genome. 1993. V. 36. P. 706−711.
- Bonn L.A., Martins-Santos I.C. Karyotype characterization of three species of the genus Trichomycterus (Teleostei, Siluriformes) from Igua9u river basin. // Genetica. 1999. V. 106. P. 215−221.
- Brinkman J.N., Sessions S.K., Houben A., Green D.M. Structure and evolution of supernumerary chromosomes in the Pacific giant salamander, Dicamptodon tenebrosus. II Chromosome Res. 2000. V. 8. P. 477−485.
- Brockhouse C., Bass J.A.B., Fereday R.M., Strauss N.A. Supernumerary chromosomes evolution in the Simulium vernum group (Diptera: Simulidae). // Genome. 1989. V. 32. P. 516−521.
- Butler D.K., Metzenberg R.L. Premeiotic change of nucleolus organizer size in Neurospora. // Genetics. 1989. V. 122. P. 783−791.
- Cabrero J., Alche J.D., Camacho J.P.M. Effects of В chromosomes of the grasshopper Eyprepocnemis plorans on nucleolar organizer regions activity.
- Activation of a latent NOR on, а В chromosome fused to an autosome. // Genome. 1987. V. 29. P. 116−121.
- Cabrero J., Bakkali M., Bugrov A., Warchalowska-SIiwa E., Lopez-Leon M.D.,
- Perfectti F., Camacho J.P. Multiregional origin of В chromosomes in the grasshopper Eyprepocnemis plorans. // Chromosoma. 2003. V. 112. № 4. P. 207−211.
- Camacho J.P.M., Sharbel T.F., Beukeboom L.W. В chromosome evolution. // Phil. Trans. R. Soc. Lond. 2000. V. 355. P. 163−178.
- Cano M.I. and Santos J.L. Cytological basis of the В chromosome accumulation mechanism in the grasshopper Heteracris littoralis (Ramb). // Heredity. 1989. V. 62.• P. 91−95
- Carr G.D. and Carr R.L. Micro- and nucleolar-organising B-chromosomes in Calycadenia (Asteraceae). // Cytologica. 1982. V. 47. P. 79−87.
- Carter C.R. and Smith-White S. The cytology of Brachycome lineariloba. 3. Accessory chromosomes. // Chromosoma. 1972. V. 39. P. 361−379.
- Cavallaro Z.I., Bertollo L.A.C., Perfectti F., Camacho J.P.M. Frequency increase and mitotic stabilization of, а В chromosome in the fish Prochilodus lineatus. // Chromosome Res. 2000. V. 8. P. 627−634.
- Chandley A. A model for effective pairing and recombination at meiosis based on early replicating sites (R-bands) along chromosomes. // Hum. Genet. 1986. V. 72. P. 50−57.
- Ф 74. Charlesworth B. Model for evolution of Y chromosomes and dosage compensation. //
- Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1978. V. 75. P. 5618−5622.
- Charlesworth В., Sniegowski. P., Stephan W. The evolutionary dynamics of repetitive DNA in eukaryotes. // Nature. 1994. V. 371. P. 215−220.
- Costanzi C. and Pehrson J.R. Histone macroH2Al is concentrated in the inactive X chromosome of female mammals. // Nature. 1998. V. 393. P. 599−601.m
- Counce S.J., Meyer G.F. Differentiation of the synaptonemal complex and the kinetochore in Locusta spermatocytes studied by whole mount electron microscopy. // Chromosoma. 1973. V. 44. P. 231−253.
- Darlington C.D. «Chromosome Botany». Allen and Unwin, London. 1956.
- Dhar M.K., Friebe В., Koul A.K., Gill B.S. origin of an apperent В chromosome by mutation, chromosome fragmentation and specific DNA sequences amplification. // Chromosoma. 2002. V. 111. P. 332−340.
- Dherawattana A., Sadanaga K. Cytogenetics of a crown rust-resistant hexaploid oat with 42 + 2 fragment chromosomes. // Crop. Sci. 1973. V. 13. P. 591−594.
- Donald T.M., Houben A., Leach C.R., Timmis J.N. Ribosomal RNA genes specific to the В chromosomes in Brachycome dichromosomatica are not transcribed in leaf tissue. // Genome. 1997. V. 40. P. 674−681.
- Donn G., Tischer E., Smith J.A., Goodman H.M. Herbicide resistant alfalfa cells: an example of gene amplification in plants. // J. Mol. Appl. Genet. 1984. V. 2. P. 621 635.
- Eickbush D.G., Eickbush Т.Н., Werren J.H. Molecular characterization of repetitive DNA sequences from, а В chromosome. // Chromosoma. 1992. V. 101. P. 575−583.
- Evans H.J., Buckland R.A., Pardue M.L. Location of the genes coding for 18S and 28S ribosomal RNA in the human genome. // Chromosoma. 1974. V. 48. P. 405−42)6.
- Fontana P.G. and Vickery V.R. The B-chromosome system of Tettigidea lateralis (Say). П. New karyomorphs, patterns of pycnosity and giemsa-banding. // Chromosoma. 1975. V. 50. P. 371−391.
- Fox D.P., Hewitt G.M., Hall D.J. DNA replication and RNA transcription of euchromatic and heterochromatic chromosome regions during grasshopper meiosis. // Chromosoma. 1974. V. 45. P. 43−62.
- Franks Т.К., Houben A., Leach C.R., Timmis J.N. The molecular organization of, а В chromosome tandem repeat sequence from Brachycome dichromosomatica. // Chromosoma. 1996. V. 105. P. 223−230.
- Garrido M.A., Jamilena M., Lozano R., Ruis Rejon C., Ruts Rej6n M., Parker J.S. RDNA site number polymorphism and NOR inactivation in natural populations of Allium shoenoprasum. // Genetica. 1994. V. 94. P. 67−71.
- Geiser D.M., Arnold M.L., Timberlake W.E. Wild chromosomal variants in Aspergillus nidulans. // Curr. Genet. 1996. V. 29. P. 293−300.
- Giardino D, Finelli P, Russo S, Gottardi G, Rodeschini O, Atza MG, Natacci F, Larizza L. Small familial supernumeraiy ring chromosome 2: FISH characterization and genotype-phenotype correlation // Am. J. Med. Genet. 2002. V. 111. № 3. P. 319−323.
- Gonz&lez-Fernandez A., Navarrete M.H., De La Torre G. Role of early replicating DNA in preventing nucleologenesis in proliferating plant cells. // Protoplasma. 1993. V. 175. P. 138−143.
- Graf MD, Schwartz S. Molecular approaches for delineating marker chromosomes // Methods Mol. Biol. 2002. V. 204. P.211−218.
- Green D.M. Cytogenetics of the endemic New Zealand frog, Leiopelma hochstetteri: extraordinary supernumerary chromosome variation and a unique sex-chromosome system. // Chromosoma. 1988. V. 97. P. 55−70.
- Green D.M. Muller’s ratchet and the evolution of supernumerary chromosomes. // Genome. 1990. V. 33. P. 818−824.
- Green D.M. Supernumerary chromosomes in amphibians. In: Amphibian Cytogenetics and Evolution (ed. Green D.M., Sessions S.K.). San Diego. Academic Press. California. Inc. P. 333−358. 1991.
- Green D.M., Zeyl C.V., Sharbel T.F. The evolution of hypervariable sex and supernumerary (B) chromosomes in the relict New Zealand frog, Leiopelma hochstetteri. // J. Evol. Biol. 1993. V. 6., P. 417−441.
- Griego M.L., Bidau C.J. The dicentric nature of the metacentric В chromosome of Metaleptea brevicornis adspersa (Acridinae, acrididae). // Heredity. 2000. V. 84. P. 639−646.
- Gutknecht J., Sperlich D., Bachmann L. A species specific satellite DNA family of Drosophila subsilvestris appearing predominantly in В chromosomes. // Chromosoma. 1995. V. 103. P. 539−544.
- Hackstein J.H.P., Hochstenbach R., Hauschteck-Jungen E., Beukeboom L.W. Is the Y chromosome of Drosophila an evolved supernumerary chromosome? // BioEssays. 1996. V. 18. P. 317−323.
- Hayata I., Shimba H., Kobayashi Т., Makino S. Preliminary accounts on the chromosomal polymorphism in the field mouse, Apodemus giliacus, a new form from Hokkaido. // Proc. Jpn. Acad. 1970. V. 46. P. 567−571.
- Hayata I. Chromosomal polymorphism caused by supernumerary chromosomes in the field mouse, Apodemus giliacus. // Chromosoma. 1973. V. 42. P. 403−414.
- Henderson A.S., Eicher E.M., Yu M.T., Atwood K.C. Variation in ribosomal RNA gene number in mouse chromosomes. // Cytogenet. Cell Genet. 1976. V. 17. P. 307−316.
- Hewitt G.M. The integration of supernumerary chromosomes into the orthopteran genome. // Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. 1973. V. 38. P. 183 194.
- Hewitt G.M. Meiotic drive for B-chromosomes in the primary oocytes of Myrmeleotettix maculatus (Orthoptera: Acrididae). // Chromosoma. 1986. V. 56. P. 381−391.
- Hewitt G.M., East T.M., Shaw M.W. Sperm dysfunction produced by В chromosomes in the grasshoppers Myrmeleotettix maculatus. // Heredity. 1987. V. 58. P. 59−68.
- Hillis D.M., Dixon M.T. Ribosomal DNA: molecular evolution and phylogenetic interference // Quart. Rev. Biol. 1991. V. 66. P. 411−453.
- Hliscs R, Muhlig P., Claussen U. The spreading of metaphases is a slow process which leads to a stretching of chromosomes. // Cytogenet. Cell Genet. 1997. V. 76. P. 167−171.
- Houben A., Leach C.R., Verlin D., Rofe R., Timmis J.N. A repetitive DNA sequence common to the different В chromosomes of the genus Brachycome. // Chromosoma. 1997a. V. 106. P. 513−519.
- Houben A., Belyaev N.D., Leach C.R., Timmis J.N. Differences in histone H4 acetylation and replication timing between A and В chromosomes of Brachycome dichromosomatica. // Chromosome Res. 1997b. V. 5. P. 233−237.
- Howard-Peebles P.N. A familial bisatellited extra metacentric microchromosome in man. // J. Hered. 1979. V. 70. P. 347−348.
- Howell W.M., Black D.A. Controlled silver staining of nucleolus organizer region with a protective colloidal developer: a 1 step method. // Experientia. 1980. V. 36. P. 1014−1015.
- Ijdo J.W., Wells R.A., Baldini A., Reeders S.T. Improved telomere detection using a telomere repeat probe (TTAGGG)n, generated by PCR. // Nucleic Acids Research. 1991. V. 19. № 17. P. 4780.
- Ishak В., Jaafar H., Maetz J.L., Rumpler Y. Absence of transcriptional activity of the В chromosomes of Apodemus peninsulae during pachytene. // Chromosoma. 1991. V. 100. P. 278−281.
- Jackson R.C. and Newmark K.P. Effects of supernumerary chromosomes on production of pigment in Haplopappus gracilis. // Science. 1960. V. 132. P. 13 161 317.
- Jamilena M., Ruis Rejon C., Ruis Rejon M. A molecular analysis of the origin of the Crepis capillaris В chromosome. // J. Cell. Sci. 1994. V. 107. P. 703−708.
- Jamilena М., Garrido-Ramos M., Ruis Rej6n M., Ruis Rejon C., Parker J.S. Characterisation of repeated sequences from microdissected В chromosomes of Crepis capillaris. // Chromosoma. 1995. V. 104. P. 113−120.
- John U.P., Leach C.R., Timmis J.N. A sequence specific to В chromosomes of Brachycome dichromosomatica. // Genome. 1991. V. 34. P. 739−744.
- Jones R.N., Puertas MJ. The В chromosomes of rye (Secale cereale L). In Frontiers in plant science research (ed. K.K. Dhir & T.S. Sareen). P. 81−112. Dellji: Bhagwati Enterprises. 1993.
- Jones R.N. and Rees H. В chromosomes. New York: Academic Press. 1982.
- Jones R.N. Are В chromosomes selfish? In The evolution of genome size (ed. T. Cavalier-Smith). P. 397−425. London: Wiley. 1985.
- Jones R.N. Tansley review no. 85: В chromosomes in plants. // New Phytol. 1995. V. 131. P. 411−434.
- Kartavtseva I.V., Roslik G.V., Pavlenko M.V., Amachaeva E.Yu., Sawaguchi S., Obara Y. The B-chromosome system of the Korean field mouse Apodemus peninsulae in the Russian Far East. // Chrom. Sci. 2000. V. 4. P. 21−29.
- Kayano H. Cytogenetic studies in Lilium callosum. III. Preferential segregation of a supernumerary chromosome in EMCs. // Proc. Jap. Acad. 1957. У. 33. P. 553−558.
- Keyl H.G. and H&gele К. В chromosomen bei Chironomus. // Chromosoma. 1971.V. 35 P. 403−417.
- Krai B. Chromosome characteristics of certain Murinae Rodents (Muridae) of the Asiatic Part of the USSR. // Zool. Listy. 1971. V. 20. P. 331−347.
- Kupriyanova L.A. B-chromosomes in the karyotype of Lacerta parva. // Boul. Genetica. 1980. V. 52/53. P. 223−226.
- Langdon Т., Seago C., Jones R.N., Ougham H., Thomas H., Forster J. W^, Jenkins G. De Novo evolution of satellite DNA on the rye В chromosome. // Genetics. 2000. V. 154. P. 869−884.
- Leach C.R., Donald T.M., Franks Т.К., Spiniello S.S., Hanrahan C.F., Timmjs J.N. Organization and origin of, а В chromosome centromeric sequence from Brachycome dichromosomatica. // Chromosoma. 1995. V. 103. P. 708−714.
- Leclair S., Ansan-Melayah D., Rouxel Т., Balesdent M. Meiotic behavior of the minichromosome in the phytopathogenic ascomycete Leptosphaeria maculans. // Curr. Genet. 1996. V. 30. P. 541−548.
- Lopez-Leon M.D., Cabrero J., Camacho J.P.M., Cano M.I., Santos J.L. A widespread В chromosome polymorphism maintained without apparent drive. // Evolution. 1992. V. 46 P. 529−539.
- L6pez-Leon M.D., Neves N., Schwarzacher Т., Heslop-Harrison T.S., Hewitt G.M., Camacho J.P.M. Possible origin of, а В chromosome deduced from its DNA composition using double FISH technique. // Chromosome Res. 1994. V. 2. P. 87−92.
- Lopez-Leon M.D., Cabrero J., Camacho J.P.M. Changes in DNA methylation during development in the В chromosome NOR of the grasshopper Eyprepocnemis plorans. // Heredity. 1995. V. 74. P. 296−302.
- Maistro E.L., Oliveira C., Foresti F. Cytogenetic characterization of a supernumerary chromosome segment and of В chromosomes in Astyanax scabripinnis (Teleostei, Charasidae). // Genetica. 2001. V. 110. P. 177−183.
- Maluszynska J. and Schweizer D. Ribosomal RNA genes in В chromosomes of Crepis capillaris detected by non-radioactive in situ hybridization. // Heredity. 1989. V. 62. P. 59−65.
- Matsuda T. On the accessory chromosomes of Aster I. The accessory chromosomes of Aster ageratoides group, // J. Sci. Hiroshima Univ., Ser. B. Div. 2 (Bot). 1970a. V. 13. P. 1−63.
- Matsuda T. On the accessory chromosomes of Aster II. The origin and homology of accessory chromosomes in Aster ageratoides group. // J. Sci. Hiroshima Univ., Ser. B. Div. 2 (Bot.). 1970b. V. 13. P. 65−79.
- Matsuda T. On the accessory chromosomes of Aster III. The accessory chromosomes of Aster scaba. // J. Sci. Hiroshima Univ., Ser. B. Div. 2 (Bot.). 1970c. V. 13. P. 81−90.
- McAllister B.F. Isolation and characterization of a retroelement from В chromosome (PSR) in the parasitic wasp Nasonia vitripennis. // Insect. Mol. Biol. 1995. V. 4. P. 253−262.
- McAllister B.F. and Werren J.H. Hybrid origin of, а В chromosome (PSR) in the parasitic wasp Nasonia vitripennis. // Chromosoma. 1997. V. 106. P. 243−253.
- Melander Y. Accessory chromosomes in animals, especially in Polycelis tenuis. //Hereditas. 1950. V. 50. P. 19−38.
- Miao V.P., Covert S.F., VanEtten H.D. A fungal gene for antibiotic resistance on a dispensable («B») chromosome. // Science. 1991a. V. 254. P. 1773−1776.
- Miao V.P., Matthews D.E., VanEtten H.D. Identification and chromosomal locations of a family of cytochrome P-450 genes for pisatin detoxification in the fungus Nectriahaematococca. //Mol. Gen. Genet. 1991b. V. 226. P. 214- 223.
- Mitas M., Yu., A., Dill J., Kamp T.J., Chambers E.J., Haworth I.S. Hairpin properties of single-stranded DNA containing a GC-reach triplet repeat: (GTG)15. // Nucl. Acids Res. 1995. V. 23. P. 1050−1059.
- Moses M.J. Synaptonemal complex karyotyping inspermatocytes of the Chinese hamster (Cricetulus griseus). II Morphology of the XY pair in spread preparations. //Chromosoma. 1977. V. 70. P. 127−137.
- Moss J.P. The adaptive significance of В chromosomes in rye. // Chromosomes Today. 1966. V. 1. P. 15−23.
- Murphy W.J., Staynon R., O’Brien S.J. Evolution of mammalian genome organization inferred from comparative gene mapping. // Genome Biology. 2001. y. 2. № 6. P. 1−8.
- Nemirov K., Henttonen H., Vaheri A., Plyusnin A. Phylogenetic evidence for host switching in the evolution of hantaviruses carried by Apodemus mice. // Virus Res. 2002. V. 90. P. 207−215.
- Neo D.M., Moreira-Filho О., Camacho J.P.M. Altitudinal variation for В chromosomes frequency in the characid fish Astyanax scabripinnis. // Heredity. 2000. V. 85. P. 136−141.
- Neves N., Barao A., Castilho A., Silva M., Morais L., Carvalho V., Viegas W., Jones R.N. Influence of DNA methylation on rye B-chromosome nondisjunction. // Genome. 1992. V. 35.650−652.
- Nur U. A supernumerary chromosome with an accumulation mechanism in the lecanoid genetic system. // Chromosoma. 1962. V. 13. P. 249−271.
- Nur U. Mitotic instability leading to an accumulation of B-chromosomes in grasshoppers. Chromosoma. 1969. V. 27. P. 1−19.
- Obara Y., Sasaki S. Fluorescent approaches on the origin of B-chromosomes of Apodemus argenteus hokkaidi. // Chrom. Sci. 1997. V. 1. P. 1−5.
- Oliver J.L., Posse F., Martfnez-Zapater J.M., Enriquez A.M., Ruis Rejon M. В chromosomes and El isoenzyme activity in mosaic bulbs of Scilla autumnallis. // Chromosoma. 1982. V. 85. P. 399−403.
- Olmo E., Odierna G., Cobror O. C-band variability and phylogeny of Lacertidae. // Genetica. 1986. V. 71. P. 63−74.
- Page B.T., Wanous M.K., Birchler J.A. Characterization of a Maize Chromosome 4 Centromeric Sequence: evidence for an evolutionary relationship with the В chromosome centromere. // Genetics. 2001. V. 159. P. 291−302.
- Paliwal R.L. and Hyde B.B. The association of a single В chromosome with male sterility in Plantago coronopus. // Am. J. Bot. 1959. V. 46. P. 460−466.
- Pardo M.G., Lopez-Le6n M.D., Cabrero J., Camacho J.P.M. Transmission analysis of mitotically unstable В chromosomes in Locusta migratoria. // Genome. 1994. V. 37. P. 1027−1034.
- Patton J.L. В chromosome systems in the pocket mouse, Perognathus baileyi: meiosis and C-band studies. // Chromosoma. 1977. V. 60. P. 1−14.
- Peppers J.A., Wiggins L.E., Baker R.J. Nature of В chromosomes in the harvest mouse Reithrodontomys megalotis by fluorescence in situ hybridization (FISH). // Chromosome Res. 1997. V. 5. P. 475−479.
- Perfectti F., Werren J.H. The interspecific origin of В chromosomes: experimental evidence. // Evolution Int. J. Org. Evolution. 2001. V. 55. P. 10 691 073.
- Phillips R.L., Kaeppler S.M., Olhoft P. Genetic instability of plant tissues culture: breakdown of normal controls. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. V. 91. P. 5222−5226
- Pigozzi M.I., Solari A.J. Germ cell restriction and regular transmission of an accessory chromosome that mimics a sex body in the zebra finch Taeniopygia guttata. // Chromosome Res. 1998. V. 6. P. 105−113.
- Pinkel D., Straume Т., Gray J.W. Cytogenetic analysis using quantitative high sensitivity fluorescence hybridization. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986. V. 83. P. 2934−2938.
- Plowman A.B. and Bougourd S.M. Selectively advantageous effects of В chromosomes on germination behavior in Allium schoenoprasum L. // Heredity. 1994. V. 72. P. 587−593.
- Procunier W.S. В chromosomes of Cnephia dacotensis and C. ornithophilia (Diptera, Simuliidae). // Can. J. Zool. 1975. V. 53. P. 1638−1647.
- Pukkila PJ. and Skrzynia C. Frequent changes in the number of reiterated ribosomal RNA genes throughout the life cycle of the basidiomycete Coprinus cinereus. // Genetics. 1993. V. 133. P. 203−211.
- Qi Z.X., Zeng H., Li X.L., Chen C.B., Song W.Q., Chen R.Y. The molecule-characterization of maize В chromosome specific ALFPs. // Cell Res. 2002. V. 12. P. 63−68.
- Raman R. and Sharma T. DNA replication, G- and С-bands and meiotic behavior of supernumerary chromosomes of Rattus rattus. // Chromosoma. 1974. V. 45. P. 111−119.
- Reed K.M., Beukeboom L.W., Eickbush D.G. Werren J.H. Junctions between repetitive DNAs on the PSR chromosome of Nasonia vitripennis: association of palindromes with recombination. II J. Mol. Evol. 1994. V. 38. P. 352−362.
- Rhoades M.M. and Dempsey E. On the mechanism of chromatin loss induced by the В chromosome of maize. // Genetics. 1972. V. 71. P. 73−96.
- Rhoades M.M. and Dempsey E. Chromatin elimination induced by the В chromosome of maize. // J. Heredity. 1973. V. 64. P. 13−18.
- Robertson S.M., Ling V., Stanners C.P. Co-amplification of double minute chromosomes, multiple drug resistance, and cell surface P-glycoprotein in DNA-mediated transformants of mouse cells. // Mol. Cell Biol. 1984. V. 4. P. 500−506.
- Rodland K.D. and Russell P.J. Regulation of ribosomal RNA cistron number in a strain of Neurospora with a duplication of the nucleolus organizer region. // Biochim. Biophys. Acta. 1982. V. 697. P. 162−169.
- Russell P.J. and Rodland K.D. Magnification of rRNA gene number in Neurospora crassa strain with a partial deletion of the nucleolus organizer. // Chromosoma. 1986. V. 93. P. 337−340.
- Russell P.J. and Wilkerson W.M. The structure and biosynthesis of fungal cytoplasmic ribosomes. // Exp. Mycol. 1980. V. 4. P. 281−337.
- Salvador L.B., Moreira-Filho O. B-chromosomes in Astyanax scabripinnis (Pishes, Characidae). // Heredity. 1992. V. 69. P. 50−56.
- Sandery M.J., Forster J.W., Blunden R., Jones R.N. Identification of a family of repeated sequences on the rye В chromosome. // Genome. 1990. V. 33. P. 90j8−913.
- Sapre A.B., Deshpande D.S. Origin of В chromosomes in Coix L. through spontaneous interspecific hybridization. // J. Heredity. 1987. V. 78. P. 191−196.
- Sawaguchi S., Obara Y., Kartavtseva I.V., Roslik G.V., Shin H.E., Han S.H. Novel maintenance mode of the В chromosomes in Apodemus peninsulae from 4 areas bordering on the Sea of Japan. // Intern. Symp. MAPEEG. Abstr. Vladivostok-1998a. P. 16−17.
- Sawaguchi S., Obara Y., Kartavtseva I.V., Roslik G.V., Shin H.E., Han S.H. Maintenance mode of the В chromosomes in Apodemus peninsulae from four areas bordering on Sea of Japan. // Chrom. Sci. 1998b. V. 2. Abstr. of 49th Meet. Hiroshima P. 161.
- Schartl M., Nanda I., Schlupp I., Wilde В., Epplen J.T., Schmidt M., Parzefall J. Incorporation of subgenomic amounts of DNA as compensation for mutational load in a gynogenetic fish. //Nature. 1995. V. 373. P. 68−71.
- Serizawa K., Suzuki H., Tsuchiya K. A phylogenetic view on species radiation in Apodemus inferred from variation of nuclear and mitochondrial genes. // Biochem. Genet. 2000. V. 38. P. 27−40.
- Sessions S.K. Cytogenetics and Evolution in Salamanders. // PhD dissertation. University of California. Berkeley. 1984.
- Sharbel T.F., Pijnacker L.P., Beukeboom L.W. Multiple supernumerary chromosomes in the pseudogamous parthenogenetic flatworm, Polycelis nigra: lineage markers or remnants of genetic leakage? // Genome. 1997. V. 40. P. 850−856.
- Sharbel T.F., Green D.M., Houben А. В chromosome origin in the endemic New Zealand frog Leiopelma hochstetteri through sex chromosome devolution. // Genome. 1998. V. 41. P. 14−22.
- Shaw M.W. and Hewitt G.M. В chromosomes, selfish DNA and theoretical models: where next? In Oxford surveys in evolutionary biology. V. 7. (ed. D. Futuyma & J. Antonovics). P. 197−223. Oxford University Press. 1990.
- Staub R.W. Leaf striping correlated with the presence of В chromosomes in maize. // J. Hered. 1987. V. 78. P. 71−74.
- Steinemann M., Steinemann S., Lottspeich F. How Y chromosomes become genetically inert. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. V. 90. P. 5737−5741.
- Stephens R.T. and Bregman A.A. The B-chromosome system, of the grasshopper Melanoplus femur-rubrum. // Chromosoma. 1972. V. 38. P. 297−311.
- Stitou S., Diaz de la Guardia R" Jimenez R., Burgos M. Inactive ribosomal cistrons are spread throughout the В chromosomes of Rattus rattus (Rodentia, Muridae). Implications for their origin and evolution. // Chromosome Res. 2000. V. 8. P. 305−311.
- Sumner A.T. A simple technique for demonstrating centromeric heterochromatin. //Exp. Cell. Res. 1972. V. 75. P. 304−306.
- Switonski M., Gustavsson I., HOjer К., Pl6en L. Synaptonemal complex analysis of the B-chromosomes in spermatocytes of the silver fox (Vulpes fulvus Desm). // Cytogenet. Cell Genet. 1987. V. 45. P. 84−92.
- Telenius H., Pelmear A.H., TunnaclifFe A., et al. Cytogenetic analysis by chromosome painting using DOP-PCR amplified flow-sorted chromosomes. // Genes Chromosomes Cancer. 1992. V. 4. P. 257−266.
- Tiersch T.R., Wachtel S.S. on the evolution of genome size in birds. // J. Heredity. 1991. V. 82. P. 363−368.
- Tres L.L. Extensive pairing of the XY bivalent in mouse spermatocytes as visualized by whole-mount electron microscopy. // J. Cell Sci. 1977. V. 25. P. 1−15.
- Van Etten W.J., Steen R.G., Nguyen H., et al. Radiation hybrid map of the mouse genome. // Nat. Genet. 1999. V. 22. № 4. P. 384−7.
- Volleth M. Differences in the location of nucleolus organizing regions щ Europian vespertilionid bats. // Cytogenet. Cell Genet. 1987. V. 44. P. 186−197.
- Vujosevic M., Zivkovic S. Numerical chromosome polymorphism in Apodemus flavicollis and A. sylvaticus (Mammalia, Rodentia) caused by supernumerary chromosomes. // Acta Veterinaria (Beograd). 1987. V. 37. P. 115 121.
- Vujosevic M. В chromosome polymorphism in Apodemus flavicollis (Rodentia, Mammalia) during five years. // Caryologia. 1992. V. 3−4. P. 347−352.
- Vujosevic M., Blagoevic J. Seasonal changes of В chromosome frequencies within the population of Apodemus flavicollis (Rodentia) on Cer Mountain in Yugoslavia. //Acta. Theriol. 1995. V. 2. P. 131−137.
- Wandstrat A.E., Schwartz S. Isolation and molecular analysis of inv dup (15) and construction of a physical map of a common breakpoint in order to elucidate their mechanism of formation // Chromosoma. 2000. V. 109. № 7. P. 498−505.
- Warburton D., Atwood K.C., Henderson A.S. Variation in the number of genes for rRNA among human acrocentric chromosomes: correlation with frequency of satellite association. // Cytogenet. Cell Genet. 1976. V. 17. P. 221−230.
- Watanabe K., Carter C.R., Smith-White S. The cytology of Brachycome lineariloba. 5. Chromosome relationships and phylogeny of the race A cytodemes (n = 2). // Chromosoma. 1975. V. 52. P. 383−397.
- Waugh O’Neill R.J., O’Neill M.J., Graves J.A. Undermethylation associates with retroelement activation and chromosome remodeling in an interspecific mammalian hybrid. // Nature. 1998. V. 393. P. 68−72.
- Werren J.H. The paternal-sex-ratio chromosome of Nasonia. // Am. Nat. 1991. V. 137. P. 392−402.
- Werren J.H., StouthammerR. PSR (paternal sex ratio) chromosomes: the ultimate selfish genetic elements. // Genetica. 2003. V. 117. P. 85−101.
- White MJ.D. Animal cytology and evolution. 3rd edn. London: Cambridge University Press. 1973.
- Wojcik J.M., Wojcik A.M. В chromosome polymorphism in yellow-necked mouse. Abstr. 3-rd European Congr. Of Mam. P. 234. Finland. 1999.
- Wurster-Hill D.H., Ward O.G., Kada H., Whittemore S. Banded chromosome studies and В chromosomes in wild-caught raccoon dogs, Nyctereutes procynoides viverrinus. // Cytogenet. Cell Genet. 1986. V. 42. P. 85−93.
- Yonenaga-Yassudal Y. and Rodrigues M.T. Supernumerary chromosome variation, heteromorphic sex chromosomes and banding patterns in microteiid lizards of the genus Micrablepharus (Squamata, Gymnophthalmidae). // Chromosome Res. 1999. V. 7. P. 21−29.
- Yosida Т.Н. A comparative study on nucleolus organizing region (NORs) in rattus special emphasis on the organizer differenciation and species evolution. // Proc. Japan Acad. 1979. V. 55. P. 10−15
- Ziegler C.G., Lamatsch D.K., Steinlein C., Engel W., Schartl M., Schmid M. The giant В chromosome of the cyprinid fish Alburnus alburnus harbours the retrotransposon-derived repetitive DNA sequence. // Chromosome Res. 2003. V. 11. P. 23−35.
- Zima J., Macholan M. B-chromosomes in the wood mice (genus Apodemus). // Acta. Theriologica. 1995. V. 3. P. 75−86.