Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Этиленпродуцент 2-хлорэтилфосфоновая кислота как фактор повышения устойчивости растений гиацинта к полеганию

Диссертация: Этиленпродуцент 2-хлорэтилфосфоновая кислота как фактор повышения устойчивости растений гиацинта к полеганию
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Научная новизна. Впервые выполнено комплексное изучение действия этиленпродуцента 2-ХЭФК на растения гиацинта (при культивировании в защищенном грунте на выгонку) с оценкой его отзывчивости по биометрическим параметрам, анатомическим и физиолого-биохимическим свойствам. Выявлена сортовая специфика вызванного этиленпродуцентом морфогенетического эффекта, воплощенного в компактном, неполегающем… Читать ещё >

Содержание

  • Глава I. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР
    • 1. 1. ЯВЛЕНИЕ ПОЛЕГАНИЯ РАСТЕНИЙ: ФИЗИОЛОГО-БИОХИМИЧЕСКАЯ ТРАКТОВКА И СПОСОБЫ ПРЕОДОЛЕНИЯ
    • 1. 2. ЭТИЛЕНПРОДУЦЕНТ 2-ХЛОРЭТИЛФОСФОНОВАЯ КИСЛОТА КАК ФИЗИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНОЕ СОЕДИНЕНИЕ И ЕГО ПРИМЕНЕНИЕ ДЛЯ РЕГУЛЯЦИИ РОСТА РАСТЕНИЙ
      • 1. 2. 1. Физиологическая роль этилена в жизни растений
      • 1. 2. 2. Действие этиленпродуцентов на процессы роста и развития растений
    • 1. 3. ГИАЦИНТ: БОТАНИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА И БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
      • 1. 3. 1. Ботаническая характеристика объекта
      • 1. 3. 2. Особенности годичного цикла развития растений
      • 1. 3. 3. Физиолого-биохимические особенности гиацинта
        • 1. 3. 3. 1. Углеводный статус растений гиацинта
        • 1. 3. 3. 2. Роль фитогормонов в регуляции роста органов гиацинта
    • 1. 4. Полегание цветоносов при культивировании гиацинта в закрытом грунте
  • Глава II. УСЛОВИЯ ПРОВЕДЕНИЯ ОПЫТОВ, ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • II. 1. Объекты исследований
    • 11. 2. Условия проведения экспериментов^
    • 11. 3. Методы исследования
  • Глава III. ЭТИЛЕНПРОДУЦЕНТ КАК ФАКТОР ПОВЫШЕНИЯ УСТОЙЧИВОСТИ К ПОЛЕГАНИЮ РАСТЕНИЙ ГИАЦИНТА (Результаты и обсуждение)
    • III. 1. Действие 2-ХЭФК на степень полегания цветоносов
    • 111. 2. Особенности роста и формирования растений гиацинта под действием 2-ХЭФК
    • 111. 3. Действие 2-ХЭФК на анатомическое строение цветоносов
    • III. 4. Изменение содержания фотосинтетических пигментов при действии 2-ХЭФК
      • 111. 5. Изменения динамики содержания углеводов под действием 2-ХЭФК
      • 111. 6. Динамика содержания эндогенных фитогормонов под действием обработки 2-ХЭФК
      • 111. 7. Динамика содержания хлорогеновой кислоты под действием 2-ХЭФК

Этиленпродуцент 2-хлорэтилфосфоновая кислота как фактор повышения устойчивости растений гиацинта к полеганию (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Проблема полегания растений привлекает внимание физиологов растений в течение многих десятилетий. Работами отечественных и зарубежных исследователей показано, что биомеханические свойства надземной части растения и, в первую очередь, стебля определяются многими внутренними и внешними факторами. К настоящему времени изучены основные компоненты, входящие в состав оболочек клеток и механических тканей, их ультраструктура и архитектоника. Выяснена принципиальная роль фитогормонов в регуляции синтеза целлюлозы и других компонентов цитоскелета. Изучены главные абиотические и эдафические факторы, управляющие ростом, органогенезом и детерминирующие пространственную структуру и прочность надземной части растения. Особое значение придано использованию регуляторов роста при формировании растения с высокой вертикальной устойчивостью.

Решение задачи повышения устойчивости к полеганию в каждом случае зависит от видовых и сортовых особенностей растения. Указанные факторы и условия в полной мере проявили свою определяющую значимость по отношению к выбранному нами объекту исследования — гиацинту.

Гиацинт отличается высокими декоративными качествами и является ценным луковичным растением для выгонки, и, в то же время это мало изученный в физиологическом плане объект. Культура гиацинтов в защищенном грунте (выгонка) в зимне-весенний период осложнена явлением, получившим название полегание цветоноса. Аномальный морфогенез побегов приводит к потере декоративного вида растений и экономическому ущербу. Большинство сортов, обладающих высокими декоративными качествами и используемых для промышленной выгонки, подвержены полеганию. Для предотвращения полегания цветоноса рекомендовано использование 2-ХЭФК. В то же время, физиологические особенности действия 2-ХЭФК на растения гиацинта изучены крайне недостаточно.

Цели и задачи исследования. Цель работы — изучение физиологических факторов, обусловливающих повышение устойчивости растений гиацинта к полеганию при действии этиленпродуцента 2-ХЭФК. Для её достижения были поставлены следующие задачи:

1. Оценить возможности повышения устойчивости к полеганию цветоносов с помощью 2-ХЭФК;

2. Изучить особенности роста, биометрических характеристик и декоративных качеств растений под действием 2-ХЭФК в различных концентрациях;

3. Исследовать изменения анатомического строения цветоносов при действии 2-ХЭФК;

4. Изучить изменения под действием 2-ХЭФК характеристик некоторых физиологических звеньев метаболизма, способных предопределять свойства устойчивости к полеганию: а) содержание и соотношение фотосинтетических пигментов в листьяхб) содержание растворимых углеводов в органахв) содержание эндогенных фитогормонов (цитокининов и абсцизовой кислоты) в цветоносахд) содержание хлорогеновой кислоты в органах растения.

Научная новизна. Впервые выполнено комплексное изучение действия этиленпродуцента 2-ХЭФК на растения гиацинта (при культивировании в защищенном грунте на выгонку) с оценкой его отзывчивости по биометрическим параметрам, анатомическим и физиолого-биохимическим свойствам. Выявлена сортовая специфика вызванного этиленпродуцентом морфогенетического эффекта, воплощенного в компактном, неполегающем цветоносе с высокими декоративными качествами. Видовая специфика реакции этого ботанического объекта на экзогенный этилен, обусловленная исключительно высокой интенсивностью органогенеза после перевода растений в условия оранжереи, выражается в тесной зависимости морфогенетического эффекта от динамики абиотических факторов и, как следствие, от условий культивирования. Повышение устойчивости цветоносов к полеганию предопределено изменениями в протекании физиолого-биохимических процессов, прямо или косвенно детерминирующих анатомическую и пространственную структуру цветоносов.

Практическая значимость. Показана возможность использования препарата этиленпродуцента 2-ХЭФК в качестве эффективного средства повышения устойчивости растений гиацинта к полеганию при культивировании в защищенном грунте (на выгонку). Установленное уменьшение полегания при действии 2-ХЭФК в низких концентрациях может служить основой для экономного применения препарата и предупреждения возможных отрицательных последствий использования 2-ХЭФК в больших концентрациях.

Апробация работы.

Результаты исследований были доложены на VI Международной конференции «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях» (Москва, 2001) — Международной научной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых «Ломоносов» (Москва, МГУ им. М. В. Ломоносова, 2002) — Международной научной конференции «Ботанические сады: состояние и перспективы сохранения, изучения, использования биологического разнообразия растительного мира» (Минск, 2002), расширенных научных семинарах Лаборатории физиологии и биохимии растений ГБС РАН (2000 г., 2001 г. и 2002 г.).

Личный вклад соискателя.

Все результаты экспериментальных работ и выполненных опытов по культивированию и регуляции роста растений получены автором самостоятельно.

Публикации.

По материалам диссертации опубликовано 5 работ, в т. ч. 2 статьи в отечественных рецензируемых научных журналах.

Структура и объем диссертации

.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания объектов и методов исследований, изложения полученных результатов и их обсуждения, заключения, выводов, списка литературы и приложений. Работа изложена на 147 страницах машинописного текста, включая 10 таблиц, 8 рисунков и 15 фотографийбиблиография содержит 189 названий, в т. ч. 137 на иностранных языках.

ВЫВОДЫ.

1. Морфогенетический эффект этиленпродуцента 2-ХЭФК выражается в формировании компактного, неполегающего цветоноса гиацинта с высокими декоративными качествами.

2. Эффективность этиленпродуцента 2-ХЭФК зависит от генотипических особенностей сорта, фазы развития растения и активности процессов роста цветоноса в момент применения.

3. Этиленпродуцент 2-ХЭФК вызывает изменения анатомической организации цветоноса. Вследствие ограничения деградации клеток происходит увеличение их количества в тканях коры и сердцевины и уменьшение емкости центральной полости цветоноса.

4. Этиленпродуцент 2-ХЭФК в начальный период может вызывать временное снижение содержания хлорофиллов, а и b в листьях с последующим восстановлением его содержания до уровня контрольных растений. Реакция пигментного аппарата на действие 2-ХЭФК зависит от особенностей сорта.

5. Этиленпродуцент 2-ХЭФК вызывает увеличение содержания растворимых углеводов в листьях, околоцветниках и цветоносах сорта Carnegie. Возможно, повышенное содержание растворимых углеводов в тканях цветоноса способствует уменьшению степени полегания растений гиацинта.

6. Этиленпродуцент 2-ХЭФК вызывает повышение содержания связанных форм цитокининов и АБК, что, вероятно, свидетельствует о реакции растений на стресс, вызванный действием этилена. Увеличение цитокининовой активности в тканях цветоносов, возможно, является одним из составляющих процесса торможения деградации клеток и развития центральной полости в цветоносах гиацинта под действием 2-ХЭФК.

7. Этиленпродуцент 2-ХЭФК вызывает снижение содержания хлорогеновой кислоты в тканях цветоноса, что, возможно, определяет уменьшение активности ИУК и, в результате, ослабление интенсивности роста цветоноса под действием 2-ХЭФК и уменьшение степени полегания.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Выполненные исследования позволили выявить значительное торможение роста и связанное с этим изменение биометрических характеристик растений двух сортов гиацинта под действием этефона и подтвердили эффективность использования препарата 2-ХЭФК для предотвращения полегания цветоносов в период поздней выгонки. Выявлена сортовая специфика действия этиленпродуцента. Сорт Carnegie проявил большую чувствительность к 2-ХЭФК, чем сорт Jan Bos. Изучение анатомической структуры цветоноса показало, что 2-ХЭФК может вызывать изменения в анатомическом строении цветоноса, замедляя разрушение клеток и развитие центральной полости цветоноса. Выявлено временное снижение содержания хлорофилла в листьях сорта Carnegie под действием экзогенного этилена. Соотношение хлорофиллов и отношение суммы хлорофиллов к сумме каротиноидов не изменились. Показано, что при действии 2-ХЭФК увеличивается содержание углеводов в органах. Более высокое содержание растворимых углеводов в цветоносе, возможно, является одним из составляющих процесса, связанного с уменьшением полегания растений гиацинта под действием 2-хлорэтилфосфоновой кислоты. Установлено снижение содержания хлорогеновой кислоты в тканях цветоноса при действии 2-ХЭФК. Экзогенный этилен вызывает увеличение связанных форм цитокининов и АБК в тканях. Таким образом, повышение устойчивости цветоносов к полеганию обусловлено изменениями в протекании физиолого-биохимических процессов (фотосинтеза, углеводного и фенольного обмена, метаболизма фитогормонов) прямо или косвенно.

110 детерминирующих анатомическую и пространственную структуру цветоносов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Е.С. Новый метод окрашивания растительных тканей для приготовления постоянных анатомических препаратов // Биологические науки. — 1967,-№ 11.-С. 125−126.
  2. М.В. Гиацинт (систематика, сорта, морфогенез, культура). Л.: Наука, 1965.- 127с.
  3. М.В. Морфогенез луковицы гиацинта // Морфогенез растений. Т. II. / Под ред. Пронина В. А. -М.: Изд. МГУ, 1961. С. 188−191.
  4. М.С. Растительные клеточные стенки и их образование. М., 1964.
  5. Е.В., Кондратьева В. В., Кириченко Е. Б. Цитокинины и абсцизовая кислота в годичном цикле морфогенеза корневищ мяты. // Известия РАН. Серия биологическая. -1997-№ 3. С. 274−279.
  6. И.В. Влияние 2-хлорэтилфосфоновой и (3-индолилуксусной кислот на биосинтез ДНК топинамбура (.Helianthus tuberosus L.). -Автореф. дисс.. канд. биол. наук. Минск, 1984. -24 с.
  7. В.Н., Зайцева Е. Н. Выгонка цветочных луковичных растений в зимнее время. / Отв. ред. Цицин Н. В. М.: Изд-ие ГБС АН СССР, 1973. -с. 86−106.
  8. В.Н., Зайцева Е. Н. Выгонка цветочных луковичных растений: (Биологические основы). М: Наука, 1990. — 240 с.
  9. В.Н., Зайцева Е. Н. Новая технология выгонки цветочных луковичных растений. М.: Наука, 1974. — 136 с.
  10. П.В. Трансформация и транспорт абсцизовой кислоты в связи с ростом и покоем растений. Автореф. дисс.. докт. биол. наук. — М., 1996.-32 с.
  11. В.А. Некоторые итоги и перспективы использования методов культуры изолированных органов и тканей в садоводстве. // История, современное состояние и перспективы развития садоводства в России. М.: Изд. ВСТИСПРАСХН. 2002.-С. 163−191.
  12. В.А. Возможности создания коллекций ценных форм плодовых и ягодных растений in vitro. // Плодоводство и ягодниководство России. Сб. научн. работ ВСТИСП РАСХН. Т. 7. М.: Изд. ВСТИСП РАСХН. 2000.-С. 56−61.
  13. А.В. Метаболизм ауксинов в растениях и его регуляция // Итоги науки и техники. Физиология растений / Под ред. Запрометова М. Н. -1991.-Т. 8.-156 с.
  14. В.П. Ретарданты регуляторы роста растений. — Минск: Наука и техника, 1980. — 174 с.
  15. Декоративные многолетники. Краткие итоги интродукции в Главном ботаническом саду Академии наук СССР / Под ред. Н. В. Цицина. М.: Изд-во АН СССР, 1960. — С. 78−81.
  16. К. Гормоны растений. Системный подход. М.: Мир, 1985. -304 с.
  17. .А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). 5-е изд., доп. и перераб. М.: Агропромиздат, 1985.- 351 с.
  18. Г. Н. Математическая статистика в экспериментальной ботанике. -М.: Наука, 1984.-424 с.
  19. М.Н. О функциональной роли фенольных соединений в растениях // Физиология растений. 1992. — Т. 39, вып. 6. — С. 1197−1207.
  20. М.Н. Основы биохимии фенольных соединений. М.: Высшая школа, 1974. — 214 с.
  21. М.Н. Фенольные соединения: Распространение, метаболизм и функции в растениях. М.: Наука, 1993. — 272 с.
  22. Кабачник М. И, Российская П. А. Исследования в области фосфорорганических соединений. I. О реакции окиси этилена с треххлористым фосфором // Изв. АН СССР. Отд-ние хим. наук. 1946а. -№ 3. — С.295−304.
  23. Кабачник М. И, Российская П. А. Исследования в области фосфорорганических соединений. II. О превращении Р|3'|3"-трихлорэтилового эфира фосфорной кислоты в соединения пятивалентного фосфора // Изв. АН СССР. Отд-ние хим. наук. 19 466. -№ 4. — С.403−410.
  24. В., Агафонов Н., Карсункина Н., Варконда Ш., Грунерт X., Еберт X. Методика испытаний регуляторов роста и развития в открытом и защищенном грунте. М.: Изд-во МСХА, 1990. — 56 с.
  25. Ф.Л., Курчий Б. А. Влияние этефона на содержание эндогенных фитогормонов в растениях озимой ржи // Физиология и биохимия культ, растений. 1986. — Т. 18,№ 2. — С.182−186.
  26. Ф.Л., Курчий Б. А. Влияние этефона на формирование структуры оболочек клеток стебля озимой ржи. // Физиология и биохимия культ, растений.-1987.-Т.19, № 1.-С. 72−76.
  27. В.И., Коф Э.М., Власов П. В., Кислин Е. Н. Природный ингибитор роста абсцизовая кислота. — М.: Наука. 1989. — 184 с.
  28. Е.Б., Демидов А. С. Физиологические исследования цветочно-декоративных растений в Главном ботаническом саду. //Информационный бюллетень Совета бот. садов России и Отделения межд. Совета бот. садов по охране растений. 1998.-Вып.8.-с.20−22.
  29. Н.К. Организация клетки. Сборник экспериментальных исследований, статей и речей. 1903−1935 гг. М.-Л.: Биомедгиз, 1936. -652 с.
  30. О.Э., Романовская О. И., Павулиня Д. А. Динамика поступления и разложения 2-хлорэтилфофоновой кислоты в воде и растениях озимой ржи // Изв. АН ЛатвССР.-1984.-№ 8.-С. 118−121.
  31. О.Н. Цитокинины, их структура и функция.-М.: Наука, 1973. -264 с.
  32. .А. Влияние тура и дигидрела на содержание пигментов в листьях озимой пшеницы и озимой ржи. // Регуляторные механизмы физиологических процессов у растений: Материалы III Республик. Конф. молодых ученых. Киев: Наукова Думка, 1985. — С.34−36.
  33. .А. Изменение структуры стенки стебля озимой ржи под влиянием ретардантов // Вопросы агротехники, семеноводства и селекции полевых культур. Жодино, 1982. — Вып. 3. — С. 135−138.
  34. .А., Калинин Ф. Л. Влияние этефона на анатомо-морфологическое строение стебля озимой ржи // Физиология и биохимия культурных растений. 1989. — Т. 21, № 5. — С. 459−463.
  35. X., Халдре Ы., Паду Э., Яакма Ю. О влиянии фенолкарбоновых кислот на вызываемый ауксином рост растений // Физиология растений. -1982. Т. 29, вып. 4. — С. 649−653.
  36. Г. С., Павлова З. Н., Краснопольская Л. М., Нагубнова Л. А. Взаимодействие ретардантов с физиологически активными терпеноидами. //Известия АН СССР. Сер. биол.-1989. № 1. — С. 116−123.
  37. В.В. Фитогормоны. Л.: Изд-во ЛГУ, 1982. — 248 с.
  38. Практикум по агрохимии / Под ред. Минеева В. Г. М.: Изд-во МГУ, 2001.-с. 419−422.
  39. Практикум по физиологии растений / Под ред. Третьякова Н. Н. М.: Колос, 1982.-С.85−93.
  40. Л.Д. Особенности ауксиново-ингибиторного обмена пшеницы при полегании // Водный режим растений и их продуктивность.-М.: Наука, 1968.-С. 124−133.
  41. Л.Д., Бокарев К. С., Капелюшникова Л. М., Чижова С. И. Опыт применения бромхолинбромида для предупреждения полегания пшеницы. //Агрохимия, 1966. -№ 8.-С. 117−122.
  42. Л.Д., Чижова С. И., Хрипач В. А. Устойчивость к полеганию и продуктивность ярового ячменя и многолетней пшеницы под влиянием брассиностероидов. // Сельскохозяйственная биология. 1995. — № 1. — С. 93−98.
  43. Ю.В., Ракитин В. Ю. Природа действия 2-хлорэтилфосфоновой кислоты и других этиленвыделяющих регуляторов роста и развития растений // Агрохимия. 1979. — № 5. — С. 126−149.
  44. О.И., Селга М. П., Крейцберг О. Э. Курушина Н.В., Мосеев В. В., Витола А. К., Аренте Г. В., Ильин В. В. Этиленпродуценты в растениеводстве: физиологическое действие и применение. Рига: Зинатне, 1989. — 155 с.
  45. Л.В. Действие регуляторов роста на декоративные растения. -М.: Наука, 1985.- 150 с.
  46. Л.В. Регуляция ростовых процессов и уровня эндогенных физиологически активных веществ у растений с помощью кампозана //
  47. Фитогормоны регуляторы роста растений. — М.: Наука, 1980.-С. 119−133.118
  48. JI.B., Сафина Е. Р. Испытание новых регуляторов роста на декоративных растениях. // Стимуляторы и ингибиторы ростовых процессов у растений.-М.: Наука, 1988.-С. 73−89.
  49. Л.П., Кефели В. И. Фенольные соединения и рост растений // Фенольные соединения и их биологические функции. Материалы 1-го Всесоюзного симпозиума по фенольным соединениям, 14−17 декабря 1966 г., Москва. М.: Наука, 1968. — С. 129−138.
  50. М.В. Действие 2-ХЭФК на морфогенез и синтез физиологически активных соединений в растениях гиацинта. // Материалы Международной научной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых «Ломоносов». М.: Изд. МГУ, 2002. С. 52−53.
  51. М.В., Кириченко Е. Б., Постников А. Н. Изменение содержания растворимых углеводов в органах растений гиацинта под действием 2-хлорэтилфосфоновой кислоты. // Гавриш. 2002. № 6. — С. 34−37.
  52. М.В., Кириченко Е. Б., Постников А. Н. Изменение характеристик роста и степени полегания цветоносов растений гиацинта под дйствием 2-хлорэтилфосфоновой кислоты. // Бюллетень ГБС РАН. М., 2002.-Вып. 185.
  53. И.А. Метаболизм растений при стрессе. Избранные труды. -Казань: Изд-во «Фэн», 2001. 448 с.
  54. В.М., Стасенко Н. Н., Калл ер С. А. Изучение различий физико-химических свойств целлюлозы стеблей ячменя Винер на минеральной и торфяной почвах // Исследования по физиологии и биохимии растений. -Минск, 1966.
  55. В.М., Стасенко Н. Н., Коновалова Л. Н., Каллер С. А. О природе устойчивости растений к полеганию // Фотосинтез и питание растений. / Отв. ред. Гончарик М. Н. Минск: Изд-во «Наука и техника», 1969. — С. 120−129.
  56. Н.С. Физиология полегания злаков и особенности устойчивых сортов. Материалы совещания по устойчивости растений к полеганию. -Минск, 1962.
  57. Фрей-Висслинг А. Интерпретация ультратекстуры растущих растительных стенок // Ультраструктура и функции клетки. М., 1965.
  58. Д.И., Макеев A.M., Манитюк О. Д., Петелина Г. Г. Факторы коррелятивного ингибирования // Рост растений: Первичные механизмы. -М.: Наука, 1978. С. 75−80.
  59. Д.И., Микитюк О. Д., Маковейчук А. Ю., Умнов A.M., Макеев A.M. Изменение содержания ауксина в проростках гороха, обработанных этиленом или донором этилена. // Физиология растений.-1984.-Т. 31, вып. 4. -С. 613−616.
  60. F. В. Manipulation of plant growth by ethylene // Acta Hort. 1987. -N201 — P. 11−20.
  61. Abeles F.B. Ethylene in plant biology. New York: Acad. Press, 1973. — 302 P
  62. Addicott F.T. Abscisic acid. New York: Praeger, 1983. ISBN 0−03−0558−31.
  63. Aharoni N. Relationship between leaf water status and endogenous ethylene in detached leaves // Plant Physiology. 1978. — Vol. 61. — P. 658−662.
  64. Aloni В., Bar-Yosef В., Sagiv B. and Pressman E. The effect of nutrient solution composition and transient nutrient starvation on the yield and petiole pithiness of celery plant // J. Hortic. Sci. 1983. — Vol. 58. — P. 91−96.
  65. Aloni В., Pressman E. Interaction with salinity of GA3-induced leaf elongation, petiole pithiness and bolting in celery // Sci. Hortic. 1980. — Vol. 13.-P. 135−142.
  66. Aloni В., Pressman E. Petiole pithiness in celery leaves: Induction by environmental stresses and the involvement of abscisic acid // Physiol. Plant. -1979.-Vol. 47. P.61−65.
  67. Aloni В., Pressman E. Stem pithiness in tomato plants: The effect of water stress and the role of abscisic acid // Physiol. Plant. 1981. — Vol. 51. — P. 39−44.
  68. Aloni В., Rosenshtein G. Effect of flooding on tomato cultivars: The relationship between proline accumulation and other morphological change // Physiol. Plant. 1982. — Vol. 56. — P. 513−517.
  69. Apelbaum A., Burg S.P. Effects of ethylene on cell division and deoxyribonucleic acid synthesis in Pisum sativum И Plant Physiol. 1972. -Vol. 50, N 1. — P. 117−124.
  70. Barciszewski J., Siboska G., Rattan S.I.S. and Clark B.F.C. Occurrence, biosynthesis and properties of kinetin (N6-furfuryladenine) // Plant Growth Regulation. 2000. — Vol. 32. — P.257−265.
  71. Barlow P.W. The effect of ethylene on root meristems of Pisum sativum and Zea mays II Planta. 1976. — Vol. 131, N 3. — P. 235−243.
  72. Beyer E.M., Morgan P.W. Effect of ethylene on the uptake, distribution and metabolism of indoleacetic acid 1-C14 and 2-C14 // Plant Physiol. — 1970. -Vol. 46, N 1.-P.157−162.
  73. Beyer E.M., Morgan P.W. Time sequence of the effect of ethylene on transport, uptake and dearboxylation of auxin // Plant Cell Physiol. 1969. -Vol. 10, N4.-P. 789−799.
  74. Beyer E.M.J. Abscission: The initial effect of ethylene is in the leaf blade // Plant Physiol. 1975. — Vol. 55. — P. 322−327.
  75. Biddle E., Dauglas G.S., Kerfoot J.H.K., Russel K.E. Kinetic studies of the thermal decomposition of 2-chlorethylphosphonic acid in aqueous solution. // Plant Physiol. 1976. — Vol. 58, N 5.-P. 700−702.
  76. Biro R.L. and Jaffe M.J. Thigmomorphogenesis: Ethylene evolution and its role in the changes observed in mechanically perturbed bean plants // Physiol. Plant. 1984. — Vol. 62. — P. 289−296.
  77. Biro R.L., Hunt E.R., Erner Y. and Jaffe M.J. Thigmomorphogenesis: Changes in cell division and elongation in the internodes of mechanically-perturbed or ethrel-treated bean plants // Ann. Bot. 1980. — Vol. 45, N 6. — P. 655−664.
  78. Bradley M., Dahmen W.J. Cytohystological effects of ethylene, 2,4-D, kinetin and carbon dioxide on peach mesocarp callus cultured in vitro // Phytomorphology. 1971. — Vol. 21, N 2. — P. 154−163.
  79. Burg S.P. Ethylene in plant growth // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1973.- Vol. 70, N2. — P. 591−597.
  80. Burg S.P., Burg E.A. Ethylene production in pea seedling: its relation to the inhibition of bud growth caused by indole-3-acetic acid // Plant Physiol. 1968. -Vol. 43, N7. — P. 1069−1074.
  81. Burg S.P., Burg E.A. Inhibition of polar auxin transport by ethylene // Plant Physiol. 1967. — Vol. 42, N 9. — P.1224−1228.
  82. Burg S.P., Burg E.A. The interaction between auxin and ethylene and its role in plant growth // Proc. Nat. Ac. Sci. USA. 1996. — Vol. 55, N 1. — P. 262−266.
  83. Choe H.T., Whang M. Effects of ethephon on aging and photosynthetic activity in isolated chloroplasts. // Plant Physiol.-1986.-Vol. 80.-P. 305−309.
  84. Constabel F., Kurz W.G.W., Chatson K.B., Kirkpatrick J.W. Partial synchrony in soybean cell suspension cultured induced by ethylene // Experimental Cell Res. 1977. — Vol. 105, N 2. — P. 263−268.
  85. Coombe B.G., Hale C.R. The hormone content of ripening grape berries and the effects of growth substance treatments // Plant Physiol. 1973.- Vol. 51, N 4. — P.629−634.
  86. Cosgrove D.J. Expansive growth of plant cell walls // Plant Physiol. Biochem. -2000.-38 (½).-P. 109−124.
  87. W.J., Jones H.G. (eds). Abscisic acid physiology and biochemistry. -Oxford: Bios Scientific Publishers, 1991. ISBN 1−872 748−65−1.
  88. De Hertogh A.A. Holland Bulb Forcer’s Guide and Dutch Bulb Exporters Association. 5th edition. Hillegom: International Flower Bulb Center, 1996. -E-32 p.
  89. Dilley D.R., Carpenter W. J. The role of chemical adjuvants and ethylene synthesis on cut flower longevity // Acta Hort. 1975. — N 41. — P. 117−132.
  90. Domir S.C., Foy C.L. Movement and metabolic fate of /14С/ ethephon in flue-cured tobacco. // Pesticide Biochem. a. Physiol.-1978. Vol. 9, N l.-P. 9−22.
  91. Edgerton L.J., Hath A.H. Absorption and metabolism of 14C (2-clorethyl)-phosphonic acid in apples and cherries. // J. Amer. Soc. Hortic. Sci.-1972.-Vol. 97, N l.-P. 112−115.
  92. El-Beltagy A.S., Hewett E.W., Hall M.A. Effect ofethephon (2-chloroethyl-phosphonic acid on endogenous levels of auxin, inhibitors and cytokinins in relation to senescence and abscission inVicia faba L. // J. Hort. Sci.-1976.-Vol. 51, N 4. P.451−465.
  93. Ernest L.C., Valdovinus J.C. Regulation of auxin levels in Coleus blumei by ethylene // Plant Physiol. 1971. — Vol. 48. — P.402−406.
  94. Fagard M., Hofte H., Vernhettes S. Cell wall mutants. // Plant Physiol. Biochem. 2000. — 38 (½). — P. 15−25.
  95. Fox J., Sood C., Buckwater В., McChesney J. The metabolism and biological activity of a 9-substituted cytokinin // Plant Physiol. 1971. — Vol. 47, N 2. — P. 275−281.
  96. Garcia-Martinez J.L., Ben-Shalom N., Rappaport L. Gibberellin-induced ethylene production and its effect on cowpea epicotyl elongation. // Plant Growth Regul. 1984.-Vol. 2.-P.209−216.
  97. Gershon D. Effect of age on enzymic activity and protein turnover // Age. -1985. Vol. 8, N 3. — P. 79.
  98. Goszczyska D., Saniewski M., Rudnicki R.M. The effects of growth regulators on the development of excised florets of hyacinths // Acta Hort. -1979. -N91. -P.195−200.
  99. Guinn G., Brummett N. Changes in free and conjugated indol-3-acetic and abscisic acid in young cotton fruites and their abscission zones in relation to fruit retention during and after moisture stress // Ibid. 1988. — Vol. 86, N 1. — P. 28−31.
  100. Hall S.J., Horton R.F. Methyl jasmonate and bean leaf abscission. // Plant Growth Regulation. 1994.- Vol. 14.-P. 187−192.
  101. Hartsema А.Н. Influence of temperatures on flower formation and flowering of bulbous and tuberous plants // Handbuch der Pflanzenphysiologie 1961. -Bd. 16.-P. 123−167.
  102. Heller R., Esnault R., Lance C. Physiologie vegetale. 2. D6veloppement. -Paris: Masson. 1995. 313 p.
  103. Hillman W.S., Galston A.W. The effect of external factors on auxin content // Encyclopedia of plant physiology. Vol. 14. / Ed. by Ruhland W. Berlin: Springer Verl., 1961. — P. 694.
  104. Hitchcock A.E., Crocker W., Zimmermann P. Effects of illuminating gas on the lily, narcissus, tulip and hyacinth // Contributions of Boyce Thompson Institute. 1932. — N 4. — P. 155−176.
  105. Ichimura К and Hisamatsu T. Effects of continuous treatment with sucrose on the vase life, soluble carbohydrate concentrations and ethylene production of cut snapdragon flowers // J. Japan. Soc. Hort. Sci. 1999. — Vol. 68, N. 1. — P. 61−66.
  106. Ichimura K., Mukasa M., Fujiwara Т., Kohata K., Suto K. Improvement of postharvest life and changes in sugar content rations by sucrose treatment in bud cut sweet pea. // Bull. Natl. Res. Inst. Veg. Ornam. Plants and Tea. 1998. -N 13. — P. 41−49.
  107. Jaffe M.J. Ethylene and other plant hormones in thigmomorphogenesis and tendril thigmonasty // Hormonal Regulation of Plant Growth and Development / Ed. Purohit S.S. India: Agro Botanical Publishers, 1984. — P. 353−367.
  108. Jaffe M.J., Lineberry L.A. Pithiness in plants. II. The nature of pithiness in bean stems and its control by environmental perturbation and ethylene // Israel J. Bot.-1988.-Vol. 37.-P. 93−106.
  109. Jarvis M.C., McCann M.C. Macromolecular biophysics of the plant cell wall: Concepts and methodology // Plant Physiol. Biochem. 2000. — 38 (½). — P. 1−13.
  110. Kamp M., De Hertogh A.A. Anatomical and growth effects of ethephon on hyacinths and Narcissus during greenhouse forcing. II Scientia Hort. 1986. -Vol. 29, N3. — P. 263−272.
  111. Kasele I.N., Shanahan J.F. and Nielsen D.C. Impact of growth Retardants on corn leaf morphology and gas exchange traits. // Crop Science.-1995.-Vol. 35, N 1.-P. 190−194.
  112. Kawa L., De Hertogh A.A., Root physiology of ornamental flowering bulbs // Horticultural Reviews. 1992. — Vol. 14. — P. 57−88.
  113. Knapp J. S., Harms C. L., Volenec J. J. Growth regulator effects on wheat culm nonstructural and structural carbohydrates and lignin // Crop Sci. 1987. -Vol. 27, N6.-P. 1201−1205.
  114. Kwong F.Y., Lagerstedt H.B. Translocation of ethephon in beans and peas. // J. Amer. Soc. Hortic. Sci.-1977.-Vol. 102, N 4.-P. 437−440.
  115. Lavee S., Martin G.C. In vitro studies on ethephon-induced abscission in olive. I. The effect of application period and concentration uptake, ethylene evolution, and leaf abscission. // J. Amer. Soc. Hortic. Sci.-1981a.-Vol. 106, N l.-P. 14−18.
  116. Lavee S., Martin G.C. In vitro studies on ethephon-induced abscission in olive. II. The relation between ethylene evolution and abscission of various organs. // J. Amer. Soc. Hortic. Sci.-19 816.-Vol. 106, N l.-P. 19−26.
  117. Lehmann H., Vlasov P. Plant growth and stress the enzymic hydrolysis of abscisic acid conjugate //J. Plant Physiol. — 1988. — Vol. 132. — P. 98−101.
  118. Leshem Y.Y., Halevy A. H., Frenkel C. Processes and control of plant senescence / Developments in crop science 1986. Vol. 8. — 215 p.
  119. Lichtenthaler H.K., Wellburn A.R. Determination of total carotenoids and chlorophylls a and b of leaf extracts in different solvents // Biochem. Soc. transactions. 1983.-V. 603.-P. 591−592.
  120. Lieberman M., Knegt E. Influence of ethylene on indole-3-acetic concentration in ethiolated pea epicotyl tissue // Plant Physiol. 1977. — Vol. 60, N 4. — P. 475−477.
  121. Liebhardt W.C., Stangel P.J., Murdock T.J. A mechanism for premature parenchyma breakdown in corn (Zea Mays L.) // Agron. J. 1968. — Vol. 60, N 5. — P. 496−499.
  122. Longheed E.C., Franklin E.W. Effects of temperature on evolution of ethylene from ethephone // Canad. J. Plant Sci. 1972. — Vol. 52, N 5. — P. 769 773.
  123. Lukaszewska A. A., Gorin N. Effect of ethylene treatment on changes in the weight and carbohydrate contents of corollas from cut «Sonia» roses // Bull. Polish Acad. Sc. 1988. — Vol. 36, N 4−6. — P. 113−119.
  124. Maynard J.A., Swan J.M. Organophosphorus compounds, 1. 2-Chloroalkylphosphonic acid as phosphorylating agents // Austral. J. Chem. -1963. Vol. 16, N 6. — P. 596−608.
  125. Megha B.M., Laloraya M.M. Effect of ethrel on dark growth oxidase, peroxidase and ascorbate oxidising system in Trigonella foenum-graecum L. // Biochem. a. Physiol. Pflanzen. 1978. — Bd. 173, N 3. — S. 229−237.
  126. Meyer A., Vorlcefeld S., Sembdner G. Abscisic acid metabolism in water-stressed barley seedlings // Conjugated plant hormones: Proc. Intern. Symp., Gera (GDR). 1986. / Ed. K. Schreiber, H.-R.Shtitte, G.Sembdner. В.: Wissenschaften, 1987. — P.273−278.
  127. Mikesell J.E. and Schroeder. Development of chambered pith in stems of Phytolacca Americana L. (Phytolaccaceae). // Am. J. Bot. 1980. — Vol. 67, N 1 -P. 111−118.
  128. Mikos-Bielak M. The skeletal substances content in the material of the cell wall of the triticale stalks // Ann. Univ. Mariae Curie-Sklodowska. 1993. -Sekt. E, Vol. 48, N 28. — S. 217−224.
  129. Miller C.O., Skoog F., Okomura F.S., Von Saltza M.H. and Strong F.M. Kinetin, a cell division factor from deoxyribonucleic acid. // J. Amer. Chem. Soc.-1955. 77. — P. 1392−1393.
  130. Minato Т., Kikuta Y., Okazawa Y. On changes in auxin levels of potato tuber plugs in response to СЕРА (2-chloroethyl)-phosphonic acid. and kinetin // Japan J. Crop Sci. 1980. — Vol. 49, N 3. — P. 461−466.
  131. Мог Y., Spiegelstein H., Halevy A.H. Inhibition of ethylene biosynthesis in carnation by cytokinin // Plant Physiol. 1983. — Vol. 71, N 3. — P. 541−546.
  132. Mudge K.W., Swanson B.T. Effect of ethephon, indole butyric acid, and treatment solution pH on rooting and on ethylene levels within mung bean. // Plant Physiol.-1978. Vol. 61, N 2. — P. 271−273.
  133. Nakagawa H., Iri K., Hirata M., Ishigami S., Ogura N. Inactive (3-fructofuranosidase molecules in senescent tomato fruit // Phytochemistry. -1980. Vol. 19. — P. 195−198.
  134. Nichols R. Cell enlargement and sugar accumulation in the gynaecium of the glasshouse carnation (Dianthus caryophyllus L.) induced by ethylene // Planta. -1976.-Vol. 130, N 1. P. 47−52.
  135. Novikova G.V., Moshkov I.E., Smith A.R., Kulaeva O.N., Hall M.A. The effect of ethylene and cytokinin on guanosine 5-triphosphate and protein phosphorylation in leaves of Arabidopsis thaliana // Planta. 1999. — 208. — P. 239−246.
  136. Nowak J., Rudnicki R.M. Hyacinthus // The physiology of flower bulbs / Ed. by A.A. De Hertogh, M. Le Nard. Wageningen: Elsevier, 1993. — P. 335−347.
  137. Nowak J., Rudnicki R.M. Studies on the physiology of hyacinth bulbs (Hyacinthus orientali L.). V. The effect of growth regulators on the metabolic activities in nonchilled hyacinth bulbs // Biologia Plantarum. 1976. — Vol. 18, N 3. -P.161−168.
  138. Nowak J., Saniewski M., Rudnicki R.M. Studies on the physiology of hyacinth bulbs {Hyacinthus orientalis L.). I. Sugar content and metabolic activities in bulbs exposed to low temperatures //J. Hort. Sci. 1974. — Vol. 49, N4. — P. 383−390.
  139. Olien W.C., Bukovac MJ. The effect of temperature on rate of ethylene evolution from ethephon and from ethephon-treated leaves of sour cherry. // J. Amer. Soc. Hort. Sci.-1978.-Vol. 103, N 2.-P. 199−202.
  140. Op den Kelder P. Benschop M., De Hertogh A.A., Factors affecting floral stalk elongation of flowering tulips // J. Amer. Soc. Hort. Sci. 1971. — Vol. 96, N 5- P.603−605.
  141. Pearce D.W., Reid D.M., Pharis R.P. Ethylene-mediated regulation of gibberellin content and growth in Helianthus annuus L. // Plant Physiol. 1991. -Vol. 95, N4.-P.l 197−1202.
  142. Pettigrew W.T., Heitholt J.J., Meredith W.R. Early season ethephon application effects on cotton photosynthesis // Agronomy Journal. 1993. — Vol. 85, N4. — P. 821−825.
  143. Poovaiah B.W. Promotion of radial growth by 2-chlorethylphosphonic acid in bean // Bot. Gaz. 1974. — Vol. 135, N 4. — P. 289−292.
  144. Pressman E., Huberman M., Aloni В and Jaffe M.J. Pithiness in plants: I. The effect of mechanical perturbation and the involvement of ethylene in petiole pithiness in celery //Plant Cell Physiol. 1984. — Vol. 25. — P.891−897.
  145. Pressman E., Huberman M., Aloni B. and Jaffe M.J. Thigmomorphogenesis: The effect of mechanical perturbation and ethrel on stem pithiness in tomato1. copersicum esculentum Mill.) plants // Ann. Bot. 1983. — Vol. 52. — P. 93 100.
  146. Rees A.R. The physiology of ornamental bulbous plants // Bot. Rev. 1966. -Vol. 32, N l.-P. 1−23.
  147. Retig M., Rudich J. Peroxidase and IAA oxidase activity and isoenzyme patterns in cucumber plants as affected by sex expression and ethephon // Physiol. Plantarum. 1972. — Vol. 27, N 2. — P. 156−160.
  148. Ridge J., Osborne D.J. Regulation of peroxidase activity by ethylene in Pisum sativum: requirement for protein and RNA synthesis // J. Experimental Bot. 1970. — Vol. 21, N 68. — P. 720−734.
  149. Rost T.L., Sammut M. Regulation of cell division in pea root tips after wounding: A possible role for ethylene // Protoplasma. 1982. — Vol. Ill, N 1. -P. 1−9.
  150. Sagee O., Riov J. and Goren R. Ethylene-Enhanced Catabolism of 14C. Indole-3-Acetic Acid to Indole-3-Carboxylic Acid in Citrus Leaf Tissues // Plant Physiol.-1990. Vol. 91. -P.54−60.
  151. Saniewski M. Niektore, zagadnienia hormonalnej regulacji rozmnaania i wzrostu hiacintow {Hyacinthus orientalis L.) // Prace Instytutu Sadownictwa i
  152. Kwiaciarstwa. Seria D. Monografie i Rozprawy. Skierniewice, 1975. — 99 p.132
  153. Saniewski M. Studies on the physiology of hyacinth bulbs (Hyacinthus orientalis L.). XVII. Hormonal control of inflorescence stalk elongation in hyacinth // Prace Instytutu Sadownictwa i Kwiaciarstwa 1981. — Seria В, T.6 -P. 95−100
  154. Saniewski M., Rudnicki R.M. Growth, flowering, and propagation of hyacinth as related to temperature treatment and hormonal balance // Gartenbauwissenschaft. 1984. — Bd.49, H 5/6. — S. 245−250.
  155. Saniewski M., Nowak J., Rudnicki R.M. Studies on the physiology of hyacinth bulbs. XI. The effect of gibberellic acid on the growth and flowering of variously chilled bulbs//Scientia Hort. 1977.-Vol. 7, N2.-P. 179−184.
  156. Setterfuld G., Bayley S.T. Arrangement of Cellulose Microfibrils in Walls of Elongating Parenchyma Cells // Citology. 1958. — 1 4. — P. 377−383.
  157. Shoub J., De Hertogh A.A. Floral stalk topple: a disorder of Hyacinthus orientalis L. and its control // HortSci. 1975. — Vol.10, N 1. — P. 26−28.
  158. Singh P., Srivastava N.K., Mishra A., Sharma S. Influence of etherel andgibberellic acid on carbon metabolism, growth, and essential oil accumulation133in spearmint (.Mentha spicata) // Photosyntetica. 1999. — Vol. 36, iss. 4. — P. 509−517
  159. Skoog F., Miller C.O. Chemial regulation of growth and organ formation in plant tissues cultured in vitro. // Sympos. Soc. Exp. Biol.-1957. N 11. — P. 118 131.
  160. Suttle J.C., Hultstrand J.F. Ethylene-Induced Leaf Abscission in Cotton Seedlings. The Physiological Bases for Age-Dependent Differences in Sensitivity// Plant Physiol.-1991. Vol. 95.-P.29−33.
  161. Tomaszewski M. The mechanism of synergistic effects between auxin and some natural phenolic substances // Collog. Intern. CNRS. 1964. — Vol. 123.-P.335−351.
  162. Tymoszuk J., Saniewski M., Rudnicki R.M. The physiology of hyacinth bulbs. XV. The effect of gibberellic acid and silver nitrate on dormancy release and growth. // Scientia Hort. 1979. — Vol. 11, N 1. — P. 95−99.
  163. Van Andel O.M., Verkerke D.R. Stimulation and inhibition by ethephon of stem and leaf growth of some graminae at different stages of development // J. Experimental Bot. 1978. — Vol. 29, N 110.-P. 639−651.
  164. Van Cheepen J. International checklist for hyacinths and miscellaneous bulbs. Hillegom: Royal General Bulb Growers' Association, 1991. — 409 p.
  165. Varga M., Rusznak A., Nikl K. Effect of ethrel on free IAA content and its distribution in cucumber seedlings. // Biochem. u. Physiol. Pflanzen. 1982. -Bd 177, N 8. — S. 659−669.
  166. Vitagliano, C., and Hoad, G.V. Leaf stomatal resistance, ethylene evolution, and ABA levels as influenced by 2-chloroethylphosphonic acid // Scientia Hort.- 1978-Vol. 8, N2. P. 101−106.
  167. Warner H. L., Leopold A. C. Ethylene evolution from 2-chloroethylphosphonic acid // Plant Physiol. 1969. — Vol. 44, N 1. — P.156−158
  168. Warner H. L., Leopold A. C. Plant growth regulation by stimulation of ethylene // Bioscience. 1967. — Vol. 17, N 10. -P.722.
  169. Werner Т., Motyka V., Strnad M. and Schmulling T. Regulation of plant growth by cytokinin //PNAS.-2001.-Vol. 98, N 18. P. 10 487−10 492.
  170. Whetten R., Sederoff R. Lignin biosynthesis // The Plant Cell. 1995. -Vol. 7, N7. -P. 1001−1013.
  171. Willats W.G.T., Steele-King C.G., McCartney L. et al. Making and using antibody probes to study plant cell walls // Plant Physiol. Biochem. 2000. -38 (½).-P. 27−36.
  172. Wood B.W. Effect of ethephon on IAA transport, IAA conjugation and antidotal action of NAA in relation to leaf abscission of pecan // J. Amer. Soc. Hortic. Sci. 1985. — Vol. 110, N 3. — P. 340−343.
  173. Woodrow L., Grodzinski В., Liptay A. The effects of CO2 enrichment and ethephon application on the production of tomato transplants // Acta Hort. -1987. -N201. P. 133−140.
  174. Wright S.T.C. The relationship between leaf water potential (leaf) and the levels of abscisic acid and ethylene in ethylene in excised wheat leaves // Planta.- 1977.-Vol. 134.-P. 183−189.
  175. Zeevaart J.A.D. Abscisic acid metabolism and its regulation // Biochemistry and Molecular Biology of Plant Hormones / Ed. Hooykaas P.J.J., Hall M.A.K. and Libbenga R. Elsevier, 1999. — P. 189−207.
  176. Zeevaart J.A.D. Changes in the levels of abscisic acid and its metabolites in excised leaf blades of Xanthium strumarium during and after water stress 11 Plant Physiol. 1980. — Vol. 66, N 4. — P.672−678.
  177. Zeevaart J.A.D., Boyer G.L. Metabolism of abscisic acid in Xanthium strumarum and Ricinus communis // Plant growth substances. / Ed. P.F.Wareing. L.: Acad, press, 1982. — P. 335−342.
  178. Zeevaart J.A.D., Creelman R.A. Metabolism and physiology of abscisic acid // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1988. — Vol. 39. — P.439−473.
  179. Zober R.W., Roberts L.W. Effects of low concentrations of ethylene on cell division and cytodifferentiation in lettuce pith explants // Canad. J. Bot. 1978. -Vol. 56, N6.-P. 987−990.
  180. Zucker M., Ahrens J.F. Quantitative assay of chlorogenic acid. // Plant Physiol. 1958. — Vol. 33, N 4. — P. 246−249.
  181. Сокращения, используемые в тексте1. АБК абсцизовая кислота1. ГА гиббереллины
  182. ИУК индолилуксусная кислота1. ЦК цитокинины
  183. АТФ аденозинтрифосфорная кислота
  184. НАДФН никотинамиддинуклеотидфосфат восстановленный1. ХК хлорогеновая кислота
  185. ХЭФК хлорэтилфосфоновая кислота
  186. График хода температур в теплице, 1999−2000 гг.
  187. Зависимость высоты цветоносов растений сорта Carnegie от концентрации 2-ХЭФК (опыт 1).1. Цата Высота цветоноса, см
  188. Зависимость высоты цветоносов растений сорта Jan Bos от концентрации 21. Дата Высота цветоноса, см
  189. Контроль 0,3 мл/л 0,5 мл/л 0,7 мл/л НСР51 402.2000 8,6 9,2 8,9 9,1 0,92 102.2000 19,0 20,6 20,6 20,4 2,80 503.2000 33,7 34,0 28,6 27,9 2,8
  190. Заведующему Лабораторией физиологии и биохимии растений д.б.н. Кириченко Е. Б. выражаю глубокую благодарность за научное руководство моей аспирантурой.
  191. Заведующему кафедрой растениеводства МСХА профессору д.с.-х.н. Постникову А. Н. выражаю большую сердечную благодарность за внимание к моей работе и ценные рекомендации.
  192. Программа опытов, связанных с культивированием растений гиацинта и регуляцией их роста с помощью этиленпродуцента 2-ХЭФК была мной выполнена на экспериментальной базе Отдела декоративных растений ГБС РАН. Заведующий Отделом, д.б.н.
  193. А.С. и н.с. Данилина Н. Н. обеспечили благоприятные условия для проведения опытов и проявляли неизменное содействие. Выражаю им мою большую благодарность.
  194. Дирекции Главного ботанического сада в лице директора, д.б.н. Демидова А. С. и заведующей аспирантуры с.н.с., к.б.н. Александровой М. С. выражаю особую признательность за чуткое, заботливое отношение.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!