Оптимизация технологии клонального микроразмножения антуриума Андре (Anthurium andreanum Lind.) для промышленного цветоводства

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Содержание

ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- 1. 1. Биологические особенности антуриума Андре
- 1. 2. Болезни антуриума Андре
- 1. 3. Способы размножения антуриума Андре
- 1. 4. Антуриум Андре как горшечная культура в промышленном цветоводстве
- 1. 5. Клональное микроразмножение, как способ ускоренного размножения и оздоровления декоративных культур
- 1. 6. Технология микроразмножения антуриума Андре
  - 1. 6. 1. Выбор экспланта и подготовка маточного растения
  - 1. 6. 2. Приготовление и стерилизация эксплантов антуриума Андре
  - 1. 6. 3. Введение в культуру семян антуриума Андре
  - 1. 6. 4. Введение в культуру эксплантов листа, черешка, покрывала антуриума Андре
  - 1. 6. 5. Введение в культуру апикальных и боковых почек антуриума Андре
  - 1. 6. 6. Соматический эмбриогенез антуриума Андре
  - 1. 6. 7. Ризогенез
  - 1. 6. 8. Физиологические и экологические основы адаптации регенерантов к нестерильным условиям
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
ГЛАВА II. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
- 2. 1. Место проведения и объекты исследований
- 2. 2. Методы исследований
  - 2. 2. 1. Стерилизация эксплантов
  - 2. 2. 2. Введение эксплантов в культуру in vitro
  - 2. 2. 3. Состав питательных сред на этапе размножения
  - 2. 2. 4. Влияние минерального состава питательных сред разных авторов на побегообразование антуриума в условиях in vitro
  - 2. 2. 5. Влияние гормонального состава среды на этапе размножения антуриума
  - 2. 2. 6. Ризогенез и адаптация к нестерильным условиям
ГЛАВА III. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
- 3. 1. Влияние способов стерилизации на приживаемость эксплантов
  - 3. 1. 1. Влияние экспозиции стерилизации на приживаемость эксплантов
  - 3. 1. 2. Влияние способов стерилизации с участием антибиотиков на приживаемость эксплантов
  - 3. 1. 3. Влияние концентрации стерилизующего агента на приживаемость эксплантов
  - 3. 1. 4. Влияние концентрации стерилизующего агента с участием хлорамина-б на приживаемость эксплантов
  - 3. 1. 5. Влияние солей серебра certisif сс 250 на приживаемость эксплантов
- 3. 2. Введение эксплантов в культуру in vitro
- 3. 3. Состав питательных сред на этапе размножения
  - 3. 3. 1. Влияние минерального состава среды на побегообразование антуриума в условиях in vitro
  - 3. 3. 2. Влияние концентрации нитрата аммония на побегообразование антуриума в условиях in vitro
  - 3. 3. 3. Влияние минерального состава питательных сред разных авторов на побегообразование антуриума в условиях in vitro
- 3. 4. Влияние гормонального состава среды на этапе размножения антуриума
  - 3. 4. 1. Влияние концентрации 6-БАП на побегообразование антуриума в условиях in vitro
  - 3. 4. 2. Изучение синергического действия 6-БАП и ИУК на побегообразование антуриума в условиях in vitro
- 3. 5. Ризогенез и адаптация к нестерильным условиям
  - 3. 5. 1. Влияние состава питательной среды на ризогенез сорта Orange love в условиях in vitro и последующую адаптацию к нестерильным условиям
  - 3. 5. 2. Влияние генотипа сорта антуриума на ризогенез в условиях in vitro и последующую адаптацию к нестерильным условиям
ВЫВОДЫ
РЕКОМЕНДАЦИИ ПРОИЗВОДСТВУ

Оптимизация технологии клонального микроразмножения антуриума Андре (Anthurium andreanum Lind.) для промышленного цветоводства (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Цветоводство является в настоящее время одной из самых доходных отраслей сельского хозяйства во всем мире. Цветоводство в нашей стране имеет такое же большое значение, как и развитие других отраслей народного хозяйства. И главной задачей, цветоводства сегодня является — бесперебойное обеспечение населения цветочной продукцией широкого ассортимента, высокого качества, с учетом покупательского спроса. Одной из самых перспективной культурой в мире и у нас в стране является антуриум Андре, который в будущем, вероятно, займет одну из лидирующих позиции по объему производства.

Основными способами размножения антуриума Андре в мире является микроклональное размножение. До настоящего времени в РФ не проводили размножение антуриума in vitro в промышленных масштабах.

В настоящий момент в промышленном цветоводстве существуют только импортные источники поставок антуриума, как на срезку, так и в качестве горшечной культуры. Такое положение дел имеет ряд существенных недостатков, среди которых особенно следует выделить следующие:

• транспортировка и хранение (необходимость транспортировки не только требует значительных денежных затрат, но и существенно снижает качество поставляемой продукции);

• карантинный аспект;

• экономический аспект;

При покупке за рубежом стоимость черенков складывается из:

• достаточно высокой стоимости самого посадочного материала;

• длительной процедуры таможенной очистки;

• стоимости включения сорта в Госреестр;

• оплаты услуг брокера;

• оплаты складов временного хранения.

Все эти расходы составляют до 40% стоимости посадочного материала. Можно существенно уменьшить затраты при производстве антуриума, если выращивать высококачественный посадочный материал у нас в стране.

Себестоимость промышленного производства черенков антуриума in vitro в Нидерландах составляет: 1 черенок — 20−50 евроцентов, а цена продажи 80 евроцентов — 1 евро, а после адаптации стоимость возрастает до 1,5 евро и к этому еще необходимо прибавить затраты на доставку и цена адаптированного черенка в России будет составлять 2,1 евро. А цена адаптированного материала выращенного в России будет составлять 25−30 руб. за черенок.

Существует несколько методов размножения антуриума: стеблевыми черенками, семенами, in vitro.

Однако только размножение in vitro совмещает высокий коэффициент размножения, хорошее качество и выравненность посадочного материала. Для сравнения при размножении отрезками побегов одно растение дает за год до 5 растений, а методом in vitro за год получают до 5000 клонов с одного растения. Кроме того, при размножении стеблевыми черенками от маточных растений передается вирусная, грибная и бактериальная инфекции и такой метод требует наличия больших площадей для размножения.

Следовательно, метод микроклонального размножения антуриума экономически более эффективен по сравнению с другими способами размножения на сегодняшний день. Поэтому существует необходимость более глубокого изучения стерильной культуры антуриума Андре и близких к нему видов.

Кроме всех перечисленных аспектов, метод культуры тканей позволяет решить ряд следующих трудностей при микроклональном размножении антуриума, наиболее значимыми из которых являются:

1. Наличие постоянной эндогенной инфекции. При наличии активного роста и регенерации культура должна проходить индексацию на наличие бактериальных инфекций. Следует уточнить, что в промышленном цветоводстве в качестве экспланта при микроразмножении антуриума используют части листовых пластинок, сегменты базальной части черешков, сегменты редуцированных листьев, сегменты покрывала с последующим ростом недифференцированной ткани на экспланте. И далее индуцируют регенерацию почек, побегов, эмбриоидов. Что приводит к возникновению следующей трудности. 2. При регенерации из каллусной ткани существует серьезная проблема, связанная с сомаклональной вариабельностью, которая на некоторых сортах может достигать 40%. Следует напомнить, что сомаклональная вариабельность — это размах колебаний в различии признаков у растений, регенерируемых из культивируемых соматических клеток. Следовательно, возникает необходимость разработки экономическиэффективного метода размножения in vitro антуриума Андре, позволяющего минимизировать сомаклональную вариабельность и обеспечить высокое качество посадочного материла.

Научная новизна работы. Доказана возможность использования в качестве эксплантов сегментов побега с апикальной или боковыми почками антуриума Андре в связи с отсутствием сомаклональной вариабельности. Изучено влияние новых стерилизующих агентов на этапе введения эксплантов в культуру in vitro. Подобран оптимальный состав питательных сред для культивирования антуриума Андре, позволяющий получить более высокий коэффициент размножения. Доказана необходимость предварительного этапа ризогенеза для ускорения адаптации и получения более качественного посадочного материала.

Практическая значимость работы. Использование в качестве первичного экспланта сегментов побега с апикальной или боковыми почками исключает наличие сомаклональной вариации. Для данного типа экспланта полностью разработана технология клонального микроразмножения, включая этап адаптации. Определены оптимальные концентрации, экспозиция и состав стерилизующих агентов для обработки эксплантов антуриума Андре. Оптимизирован минеральный и гормональный состав питательных сред для этапов микроразмножения и ризогенеза. Определены оптимальные условия адаптации растений антуриума Андре к нестерильным условиям, полученных в культуре in vitro.

Цель и задачи работы. Цель работы — оптимизировать технологию клонального микроразмножения антуриума Андре (Anthurium andreanum Lind.) для промышленного цветоводства в РФ.

Задачи исследований:

1. Изучить возможность использования в качестве эксплантов сегментов побегов с апикальной или боковыми почками для промышленного цветоводства.

2. Разработать оптимальный режим стерилизации для данных эксплантов.

3. Изучить влияние генотипических особенностей сортов антуриума Андре на побегообразовательную способность в условиях in vitro.

4. Изучить влияние минерального состава питательной среды и концентрации макроэлементов на развитие растений в условиях in vitro.

5. Изучить влияние 6-БАП в различных концентрациях и синергического взаимодействия 6-БАП с ИУК на побегообразовательную способность антуриума Андре в условиях in vitro.

6. Определить оптимальную методику адаптации растений антуриума Андре, полученных in vitro к нестерильным условиям.

ВЫВОДЫ.

1. При использовании в качестве эксплантов сегментов побегов с почкой необходима двухступенчатая стерилизация с применением серебросодержащих препаратов. Наибольшая приживаемость эксплантов (30%) отмечена при использовании certiaif сс 250 в концентрации 1,5 мл/л с последующей основной стерилизации в 0,5% гипохл орите натрия в экспозиции 15 мин до изолирования эксплантов и 25 мин после изолирования эксплантов.

2. Установлено достоверное влияние генотипа сорта на длину побегов и площадь листовой пластинки, максимальные показатели обнаружены у сортов со светлой окраской покрывала. Достоверных различий между сортами по количеству адвентивных побегов обнаружено не было.

3. Установлено влияние минерального состава питательной среды на побегообразовательную способность антуриума Андре в условиях in vitro. На этапе введения в культуру оптимально использовать ХЛ MS по макроэлементам и на этапе микроразмножения — питательную среду Фоссарда.

4. Установлено влияние гормонального состава питательной среды на побегообразовательную способность антуриума Андре. На этапе введения в культуру оптимально использовать 6-БАП в концентрации 1,5 мг/л, на этапе микроразмножения использовать сочетание ИУК-6-БАП в концентрации 0,10,2 мг/л.

5. Для сортов со светлой окраской покрывала, возможно исключение этапа ризогенеза, вследствие образования корней на этапе микроразмножения. Для сортов с красной окраской покрывала оптимально применение адсорбентов на этапе ризогенеза.

6. Использование на этапе укоренения адсорбентов положительно влияет на последующую адаптацию растений к нестерильным условиям, оптимальным является применение полифепана 1г/л.

РЕКОМЕНДАЦИИ ПРОИЗВОДСТВУ.

1. На этапе введения в культуру антуриума Андре рекомендуется в качестве эксплантов использовать апикальные и боковые почки.

2. Необходимо использовать модифицированную среду Мурасиге и Скуга, содержащую четвертную концентрацию макросолей с добавлением 1,5 мг/л 6-БАП.

3. При изолировании эксплантов рекомендуется проводить замачивание в растворе certisif сс 250 0,5 мл/л в течении 2 часов, затем двухступенчатую стерилизацию гипохлоритом натрия.

4. На этапе микроразмножения антуриума необходимо использовать питательную среду Фоссарда с добавлением 0,2 мг/л 6-БАП и среду Мурасиге и Скуга, модифицированную по макроэлементам, с добавлением 0,2 мг/л 6-БАП и 0,1 мг/л ИУК.

5. Укоренение микрочеренков следует производить на питательной среде с добавлением адсорбентов: 1 г/л полифепана или 1 г/л активированного угля.

6. Пересадку укорененных растений в нестерильные условия необходимо проводить через 4 недели.

Показать весь текст

Список литературы

Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе: уч. пособие. М.: ФБК-ПРЕСС, 1999. — 160 е.: ил.
Высоцкий В.А. Клональное микроразмножение растений // Культура клеток растений и биотехнология. М.: Наука, 1986. — С. 91−102.
Гасымов Ш. Н. Оптимальный режим клонального микроразмножения антуриума Андре // 22 секция совета ботанических садов Закавказья по вопросам интродукции растений. 1987. С. 55−56.
Деменко В.И. Микроклональное размножение садовых растений: уч. издание. -М.: изд. МСХА, 2007. 53 с.
Деменко В.И. Основные проблемы микроклонального размножения садовых растений на современном этапе. // Доклады ТСХА: Сборник статей, Вып. 282, Часть 1. М.: Изд-во РГАУ-МСХА имени К. А. Тимирязева, 2010, с. 565−568.
Деменко В.И., Михальчик Л. Е. Размножение яблони и вишни методом in vitro. // Доклады ТСХА: Сборник статей, Вып. 277, М.: Изд-во РГАУ-МСХА имени К. А. Тимирязева, 2005, с. 528−533.
Денисьевская H.A. Биологические особенности плодоношения антуриумов в защищенном грунте // Интродукция и акклиматизация растений. Киев: Наук. Думка. 1989. — С. 57−60.
Денисьевская H.A., Майко Т. К., Кушнир Г. П. Значение эндогенных факторов при микроразмножении антуриума Андре // Интродукция и акклиматизация растений. Киев: Наук. Думка. — 1988. — Вып. 9. — С. 6669.
Калинин Ф.Л., Сарнацкая В. В., Полищук В. Е. Методы культуры тканей в физиологии и биохимии растений. Киев: Наукова думка, 1980. — 488 с.
Калинин Ф.Л., Сарнацкая В. В., Полищук В. Е., Желтоножская JI.B. Исследование процесса опухолевой трансформации у растений с использованием метода культуры ткани. В кн.: Проблемы онкологии и тератологии растений. JL: Наука, 1975, с. 343−347
Капранова H.H. Комнатные растения в интерьере. М.: изд. МГУ. -1989.- 190 с.
Кефели В.И. Природные ингибиторы роста и фитогормоны. М.: Наука, 1974.-252 с.
Кефели В.И., Комизерко Е. И., Жлоба Н. М., Мазин В. В., Шашкова JI.C., Филонова В. П., Яковлева JI.B. Образование фенольных соединений в некоторых растительных объектах, чувстваительных к цитокининам. -Докл. АН СССР, 1976, 229, № 4, с. 1018−1021
Крючкова В. А. Биотехнологические приемы оптимизации микроклонального размножания и адаптации генотипов сирени / автореферат. М.: изд. МСХА, 2005. — 20 с.
Лаврентьева А.Н. Особенности микроразмножения интродуцируемых растений закрытого грунта // Тезисы докладов. Кишинев: 1989. — С. 99−101.
Лаврентьева А.Н. Особенности микроразмножения интродуцируемых растений закрытого грунта. // Тезисы докладов. Кишинев, 1989, с. 99 100.
Митрофанова О.В., Мустафин А. М. Технология выращивания безвирусного антуриума Андре // Интродукционное изучение цветочных растений. Сборник научных трудов. Ялта. — 1985. Т. 97, — С. 1−11.
Негрук В.И. Пер. с англ- С предисл. Бутенко Р. Г. Биотехнология растений: культура клеток. М.: Агропромиздат, 1989. — 280 е.: ил.
Негрук В.И. Пер. с англ- С предисл. Бутенко Р. Г. Биотехнология сельскохозяйственных растений. М.: Агропромиздат, 1987. — 304 с.
Новак Ф.И., Непустил Й. Клоновое размножение Anthurium andreanum посредством каллусной культуры in vitro // Третья конференция по культуре клеток: Тез. докл. Абовян: Изд-во АН СССР, 1979. — С. 140.
Ругите Я. Ароидные: Великолепен в срезке // Цветоводство № 1. М.: Агропромиздат. — 1990. — С. 20.
Скрипчинский В.А. Естественное изменение длины дня в тропиках как фактор, регулирующий ритмы роста и развития местных растений // Ботан. журн. 1958. — 43. — С. 490−503.
Слепушенко Е.П. Антуриумы для массового выращивания // Цветоводство № 6. М.: изд. Колос. 1979. — С. 12.
Тахтаджан A.JI. Жизнь растений. Цветковые растения. М.: Прсвещение, 1982, Т.6. — 543 с.
Турецкая Р.Х., Леонова Н. Т., Коф . Э. М. Содержание фенольных ингибиторов и ауксинов в этиолированных и зеленых растениях и их рост // Фенольные соединения и их биологические функции. — М.: Наука, 1968.-С. 261−268.
Уоллес А.Р. Тропическая природа. М.: Мысль, 1975. — 222 с.
Уоринг Ф., Филипс И. Рост растений и дифференцировка. М.: Мир, 1984.-512 с.
Цоглин Л., Гавель H., 1994. Автоселекционные процессы при микроклональном размножении растений. Фототрофное размножение картофеля in vitro. Физиол. Раст., т. 41, вып. 3. С. 436−439
Червеченко Т.М., Кушнир Г. П. Биология и размножение антуриума Андре в закрытом грунте. Докл. АН УССР, 1981, серия «Б», с. 83−86.
Шевелуха B.C., Калашникова Е. А., Воронин Е. С. и др. Сельскохозяйственная биотехнология: Учеб- Под ред. Шевелухи B.C. -2-е изд., перераб. и доп. М.: Высш. шк., 2003. — 469 е.: ил.
Atak С. and Celik О. Micropropagation of anthurium andreanum from leaf expiants. Pak. J. Bot., 41(3): 1155−1161, 2009.
Atta-Alla H., Mcalister B., Van Staden J. (1998). In vitro culture and establishment of Anthurium parvispathum. South African Journal of Botany, 64: 296−298
Bejoy, M., V.R. Sumitha and N.P. Anish. 2008. Foliar regeneration in Anthurium andreanum Hort. cv. Agnihotthri. Biotechnology, 7(1): 134−138
Borchsenius, F. (1997). Patterns of plant species endemism in Ecuador. Biodiversity and Conservation, 6, 379−399.
Bown, D. 2000. Aroids: plants of the arum family, second edition. Timber, Portland, Oregon, USA. 468 p.
Boxus P and Terzi J-M (1987). Big losses due to bacterial contaminations can be avoided in mass propagation scheme. Acta Hort. 212: 91−93.
Bradbury, F.G., 1988. Identification of cultivable bacteria from plants and plant tissue cultures by use of simple classical methods. Acta Hortic., 225: 27−37
Brown, D.C.W., Leung, D.W.M., Thorpe, T.A.: Osmotic requirement for shoot formation in tobacco callus. Physiol. Plantar. 46 (1979), 36−41.
Brown, D.C.W., Thorpe, T.A.: Changes in water potential and its components during shoot formation in tobacco callus. Physiol, plantar. 49 (1980), 83−87.
Brown, W.D. And Thorpe, D.A., 1984. Organization of plant tissue culture laboratory. In: K.I. Vasil (Editor), Cell Culture and Somatic Genetics of Plants. Vol. 1. Academic Press, London, pp. 1−12.
Capellades, Q.M., Beruto, M., Vandershaeghe, A. and Debergh, P.C., 1991. Ornamentals. In: P.C. Debergh and R.H. Zimmerman (Editors), Micropropagation. Kluwer Academic, Dordrecht, pp. 215−229
Carpenter, G., Gillison, A.N. and Winter, J. (1993) DOMAIN: a flexible. modeling procedure for mapping potential distributions of plants andanimals. Biodiversity and Conservation, 2, 667−680.
Castillo B., Smith M.A.L. Direct somatic embryogenesis from Begonia gracilis explants. Plant Cell Rep 1997- 16(6): 385−8
Chen, J., D.B. McConnell, R.J. Henny and K.C. Everitt. 2003. Cultural guidelines for commercial propagation of interiorspace anthurium. University of Florida, IFAS extension, EHN956
Cheng, T.-Y., H. Saka und T.H. Voqui-dinh 1980: Plant regeneration from soybean cotyledonary node segments in culture. PL Sci. Lett. 19, 91−99.
Cooksey, D.A. 1985. Xanthmonas blight of Anthurium andreanum in California. Plant Dis. 69: 727
Croat T (1986) The distribution of Anthurium (Araceae) in Mexico, Middle America and Panama. Selbyana 9: 94−99
Croat, T.B. (1995). Floristic comparisons of Araceae in six Ecuadorian florulas. Biodiversity and conservation of Neotropical Montane Forests (eds S.P. Churchill, H. Balslev, E. Forero and J.L. Luteyn), pp. 489−499. The New
York Botanical Garden, New York.
Croat, T.B. 1979. The distribution of the Araceae. Tropical botany (eds. K. Larsen and L.B. Holm-Nielsen), pp. 291−308. Academic Press, London.
Croat, T.B. 1980. Flowering behavior of the Neotropical genus Anthurium (Araceae). Amer. J. Bot. 67: 888−904
Croat, T.B. 1983. A revision of the genus Anthurium (Araceae) of Mexico and Central America. Part I: Mexico and Middle America. Annals of the Missouri Botanical Garden, 79: 17−28
Croat, T.B. 1988. Ecology and life forms of Araceae. Aroideana, 11. p. 4.
Croat, T.B. 1992. Species diversity of Araceae in Colombia: a preliminary survey. Annals of the Missouri Botanical, 79: 17−28.
Croat, T.B. 1999. Araceae. Catalogue of the vasvular plants of Ecuador. Monograph systematic botany from Missouri Botanical Garden (eds. P.M. Jorgensen and S. Leon-Yanez), pp. 227−246
De Wald S.G., Litz R.E. and Moore G.A. (1989). Optimizing somatic embryo production in Mango. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 114: 712−716.
Debergh, C.P. And Maene, L.J., 1981. A Scheme for commercial propagation of ornamental plants by tissue culture. Scientia Hortic., 14: 335−345
Dressier, R.L. 1968. Observations on orchids and euglossine bees in Panama and Costa Rica. Rev. Biol. Trop. 15: 143−183
Dufour, L. and V. Guerin. 2003. Growth, developmental features and flower production of Anthurium andreanum Lind. In tropical condition. Scientia Horticulture, 98: 25−35
Dufour, L. and V. Guerin. 2005. Nutrient solution effects of the development and yield of Anthurium andreanum Lind., in tropical soilless conditions.
Scientia Horticulture 105: 269−282.
Duncan, D.B. 1955. Multiple range and multiple F tests. Biometrics, 11:142.
Dye D.W. (1962). The inadequacy of the usual determinative tests for identification ofXanthomonas ssp. N.Z.J. Sci. 4: 393−416.
Dye D.W. (1964). The taxonomic position of Xanthomonas trifolii. (Huss 1907) James 1955. N.Z.L. Sci. 7: 261−269.
Eapen S., Rao P. S. (1985). Regeneration of plant from Anthurium patulum. Current Science, 54: 284−286
Esau, K. 1977: Anatomy of seed plants. John Wiley und Song Verlag, New York, Santa Barbara, London, Sydney, Toronto, 550 S.
Feng, Y.L.D., Z. Sun and C. Niu. 2006. Micropropagation of Parthenocissus quinquefolia L., from seedling explants. Journal of Applied Horticulture, 8(2): 151−154
Finnie JF, van Staden J (1986) In vitro culture of Anthurium andreanum. S Afr J Bot 52: 343−346
Franz, Nico M. 2007. Pollination of Anthurium (Araceae) by derelomine flower weevils (Coleoptera: Curculionidae). Rev. Biol. Trop. Vol. 55(1): 269−277.
Gamborg O.L., Eveleigh D.E. Culture methods and detection of glucanases in cultures of wheat and barley. Can. J. Biochem., 1968, 46, № 5, p. 417 421
Geier T. (1988). Ploidy variation in callus and regenerated plants of Anthurium scherzerianum Schoot. Acta Hort. 226: 293−298.
Geier T. Morphogenesis and plant regeneration from spadix fragments ofthanthurium scherzerianum cultivated in vitro. Proc. 5 Intl. Cong. Plant Tissue and Cell Culture. Plant Tissue Culture, 1982. 137−138.
Geier, T., 1990. In: P.V. Ammirato, N.R. Sharp, D.A. Evans and B.J. Bajaj (Editors), Anthurium. Handbook of Plant Cell Culture. Vol. 5. McGraw-Hill, 1. New York, pp. 228−252
Gentry, A.H. (1986). Endemism in tropical versus temperate communities. Conservation biology: the science of scarcity and diversity (ed. M.E. Soule), pp. 153−181. Sinauer Assoc., Sunderland, MA.
Gentry, A.H. (1995). Patterns of diversity and floristic composition in Neotropical. Montane Forests (eds S.P. Churchill, H. Balslev, E. Forero and J.L. Luteyn), pp. 103−126. The New York Botanical Garden, New York.
George, E.F., M.A. Hall and J.D. Klerk. 2008. Plant propagation by tissue culture, Volume 1. The Background, Springer, pp. 65−75
George, J., et al.: The use of a novel stabilizing substrate for the in vitro cultivation of cauliflower (Brassica oleacea L. var botrytis). Plant cell rep. 2 (1983), 189−191.
Gerlach, D. 1977: Botanische Microtechnik. Georg Thieme Verlag, Stuttgart, 311 S.
Grayum, M.H. 1990. Evolution and phylogeny of the Araceae. Ann. Missouri Bot. Gard. 77: 628−697
Guevara, Y.M. and Debrot. 1987. Bacterial blight of anthurium in Venezuela, p. 764. In: E.L. Civerolo, A. Collmer, R.E. Davis, and A.G. Gillespie (eds.). Plant pathogenic bacteria. Martinus Nijhoff, Dordrecht, The Netherlands.
Guilan W., Chao C., Wei L., Yanmei L. Cytological study on callus of leaf and reprodaction block mass of aerial root in anthurium andreanum. Acta hortic. Sinica. 2006, 33(3): 587−591.
Guisan, A. and Zimmermann, N.E. (2000). Predictive habitat distribution models in ecology. Ecological Modelling, 135,147−186.
Hamidah, M., A.G.A. Karim and P. Debergh. 1997. Somatic embryogenesis and plant regeneration in Anthurium scherzerianum. Plant Cell, Tissue, Organ Culture, 48: 189−193
Hawaii Agricultural Statistics Service (1994) Hawaii flowers and nursery products, annual summary. Hawaii Dep Agric, US Dep Agric, Honolulu, 1. Hawaii
Hayward, A.C. 1972. A bacterial disease of Anthurium in Hawaii. Plant Dis. Rptr. 56: 904−908
Herman, B.E., 1987. Special tissue. Contamination of plant tissue cultures: Toward control of micropropagation contamination. Agricell Rep., 9(5): 3334
Higaki T., Lichty J.S., Moniz D. (1994). Anthurium culture in Hawaii. HITAHR Research Extension Series 152, University of Hawaii, Honolulu
Higaki T., Rasmussen H.P. (1979). Chemical induction of adventitious shoots in anthurium. HortScience 14: 64−65
Hohe A., Winkelmann T., Schwenkel H.G. Development of somatic eembryos of Cyclamen persicum Mill. in liquid culture. Gartenbauwissenschaft 2001- 66: 219−2492. http://www.anthura.nl.
Hutchinson J.F., Kaul V., Maheswaran G., Moran J.R., Graham M.W., Richards D.(1992). Genetic improvement of floricultural crops using biotechnology. Australian Journal of Botany, 40: 765−787
Hvoslef-Eide A.K., Preil W. (2005). Liquid culture systems for in vitro plant production. Springer, Dordrecht, The Netherlands.
Imamura J., Higaki T. (1988). Effect of GA3 and BA on lateral shoot prodaction on Anthurium. HortScience 23: 353−354
International Floriculture Quarterly Report (1992). Cut flower 1991 rankings, vol 3. Pathfast Publishing, Essex, pp 56−62
Izsak, E. und S. Izhar 1983: Rapid micropropagation of strawberry plantletsfrom seeds for breeding purposes. Acta Hort. 131, 101−103.
Jaime A. Teixeira da Silva, S. Nagae and Michio Tanaka. Effect of physical on micropropagation of anthurium andreanum. Plant Tissue Cult. 15(1): 1−6, 2005 (June).
Jain S.M. Feeding the world with induced mutations and biotechnology.
Proc. Int. Nuclear Conference 2002 Global trends and Perspectives. Seminar 1: agriculture and bioscience. Bangi, Malaysia: MINT- 2002. p. 114
Jain S.M., Jenks M.A., Rout G.R., Radojevic L. Micropropagation of ornamental potted plants. Propagation of Ornamental Plants Vol. 6, № 2, 2006: 67−82.
Jingming W., Yonghua L., Shengqin H., Lina L., Qingsheng Y. Effect of elevanted C02 concentration on Photosynthetic rate, growth and development in anthurium andreanum Lind. Leaves. Acta hortic. sinica. 2005, 32 (2): 335−338.
Jiu C.M., Xu Z.H. (1992). An efficient procedure for micropropagation of Anthurium scherzerianum schott (flamingo flower). Chinese Journal of Botany, 4: 49−55
Jones, D. and Sacking, M.S.J., 1980. Numerical methods in the classification and identification of bacteria with special reference to the Enterobacteriaceae. Soc. Appl. Bacteriol. Symp. Ser., 8: 73−106
Joseph D., Martin K.P., Madassery J., Philip V.J. (2003). In vitro propagation of three commercial cut flower cultivars of Anthurium andreanum Hort. Indian Journal of Experimental Biology, 41: 154−159
Keller E.R.J., Brehmer M., Hofer E. Micropropagation of anthurium andreanum Lind. And the use of a Novel Stabilizing Substrate. Arch. Gartenbau, Berlin 34 (1986) 3, 149−156.
Kessler, M. (2002). The elevational gradient of Andean plant endemism: varying influences of taxon-specific traits and topography at different taxonomic levels. Journal of Biogeography, 29, 1159−1165.
Kim S.W., Oh S.C., In D.S., Liu J.R. Plant regeneration of rose (Rosa hybrida) from embryogenic cell derived protoplasts. Plant Cell Tissue Organ Cult 2003a- 73(1): 15−9
Knapp, S. (2002). Assessing patterns of plant endemism in Neotropical
Uplands. Botanical Review, 68, 22−37.
Knauss J.F. and Miller J.W. (1978).
Kraft. U., Graser, H. Gajek, W.: Erfolgreiche Zusammenarbeit von Wissenschaft und Praxis bei der Gewebevermehrung von Anthurium-Andreanum-Hybriden, Gartenbau 30 (1983), 281−283.
Krieg, R.N. and Holt, J.G. (Editors), 1984. Bergey’s Manual of Sistematic Bacteriology. Vol. 1. Williams and Wilkins, Baltimore, London, pp. 140−598
Kuehnle A.R., Nan G.L. (1991). Isolation and culture of protoplasts from two tropical monocots, Anthurium and Dendrobium orchid. Physiol Plant 82: A7
Kuehnle A.R., Sugii N. (1991). Callus induction and plantlet regeneration of, > Hawaii anthurium. HortScience 26: 919−921
Kunisaki J.T.(1980) In vitro propagation of Anthurium andreanum. Lind. Hort. Science 15: 508−509.
Leffring, L., Hoogstrate, J., Braster, M.: Weefselkweek Anthurium resultaten nog lang geen 100%. Vakblad v. d. bloemisterij 31 (1976), 14−15.
Leggatt, V.l., Waites, W.M., Leifert, C. and Nicholas, J., 1988. Characterisation of micro-organisms isolated from plants during micropropagation. Acta Hortic., 225: 93−102
Leifert C. and Waites W.M. (1992). Bacterial growth in plant tissue culture media. J. Applied. Bacterial. 72: 460−466.
Leifert C., Waites W. M and Nicholas J.R. (1989). Bacterial contamination of micropropagated plant cultures. J. Applied. Bacterial. 67: 353−361.
Leifert, C. and Waites, W.M., 1990. Contaminants of plant tissue cultures.
Newsletter (IAPTC), 60: 2−13
Leike, H. u.a.: «Stabilisator fur ein Nahrmedium» DDR -WPC 12 N 5/00 1595 07.
Leshem, B.: Growth of carnation meristems in vitro. Anatomical structure of abnormal plantlets and the effect of agar concentration in the medium on their formation. Ann. Bot. 52 (1983), 413−417.
Levi A. and Sink K.C. (1990). Differential effects of sucrose, glucose and fructose during somatic embryogenesis in asparagus. J. Plant Physiol. 137: 184−189. '
Lightbourn G.J., Devi Prasad P.V. (1990). In vitro techniques for rapid multiplication of four varieties of Anthurium andreanum in Jamaica. Proc Interam Soc Trop Hort 34: 3−5
Lipp, R.L., A.M. Alvarez, A.A. Benedict, and J. Berestecky. 1992. Use of monoclonal antibodies and pathogenicity tests to characterize strains of Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae from aroids. Phytopathology 82: 677−682
Loiselle, B.A., Howell, C.A., Graham, C.H., Goerck, J.M., Brooks, T., Smith, K.G. and Williams, P.H. (2003). Avoiding pitfalls of using species distribution models in conservation planning. Conservation Biology, 17, 1591−1600.
Lorz, H. 1984: Variability in tissue culture derived plantlets. In: Peacock, W.J. und P. Starlinger (eds.), Genetic manipulation: impact on man and society, ICSU Press, Cambridge, 103−114.
Mac Faddin, F.J., 1980. Biochemical Tests for Identification of Medical Bacteria. Williams and Wilkins, Baltimore, London, pp. 1−13
Madison M. (1980). Aroid profile no. 6: Anthurium andreanum. Aroideana 3: 58−60
Madison, M. 1979. Protection of developing seeds in Neotropical Araceae. Aroideana 2: 52−61
Martin, K.P., D. Joseph, J. Madassery and V.J. Philip. 2003. Direct shoot regeneration from lamina explants of two commercial cut flower cultivars of Anthurium andreanum Hort. In Vitro Cell. Dev. Biol-Plant, 39:500−504.
Matsumoto T.K. and Kuehnle A. R (1997) Micropropagation of Anthurium. Biotechnology in Agriculture and Forestry, Vol. 40, pp 14−29.
May R.A., Trigiano R.N. Somatic embryogenesis and plant regeneration from leaves of Dendrathema grandiflora. J. Am Soc Hortic Sci 1991- 116: 366−371
Mayo, S.J., J. Bogner and P.C. Boyce. 1997. The genera of Araceae, with contribution from J.C. French and R. Hegnauer, illustrations by E. Catherine. Royal Botanical Gardens, Kew. 370 p.
Miller T.E. and Schroth M.N. (1972). Monitoring the epiphytic populations of Erwinia amylovora on pear with a selective medium. Phytopathology 62: 1175−1182.
Mize, C.W. And Y.W. Chun. 1988. Analysing treatment means in plant tissue culture research. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 13: 201−217.
Mu, L. 1990. Anthurium culture and bligth in Tahiti, p. 37−38. In: A.M. Alvarez (ed.). Proc. Third Anthurium Blight Conf. HITAHRJ. Ser. 05.07.90.
Murashige T., Skoog F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiol Plant 15: 473−497
Murch S.J., Victor J.M.R., Saxena RK. Auxin, calcium and sodium in somatic embryogenesis of African violet (Saintpaulia ionantha Wendl.) cv. Benjamin. Acta Hortic 2003- 625: 201−9
Natural, M.P. 1990. Anthurium blight in the Philippines, p. 38. In: A.M. Alvarez (ed.). Proc. Third Anthurium Blight Conf. HITAHRJ. Ser. 05.07.90.
Neill, D. (1999). Catalogue of the vascular plants of Ecuador. Monograph systematic botany from Missouri Botanical Garden (eds. P.M., J0rgensen and S. Leon-Yanez), pp. 385−386. Missouri Botanical Garden, St. Louis, MO.
Nhut, D.T., N. Duy, N.N.H. Vy, C.D. Khue, D.V. Khiem and D.N. Vinh. 2006. Impact of Anthurium spp. Genotype on callus iduction derived from leaf explants, shoot and root regeneration capacity from callus. Journal of Applied Horticulture, 8(2): 135−137
Nitsch J.P. (1969). Experimental androgenesis in Nicotinia. Phytomorphology 19: 389−404
Norman D, Alvarez A (1994) Latent infections of in vitro anthurium caused by Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae. Plant Cell Tissue Organ Cult 39: 55−61
Norman, D.J. 1997. Minimizing losses to anthurium blight. Florida Grower’s Ornamental Outlook 6(1): 22−23
Orlikowska T., Sabala I., Nowak E. (1995). Adventitious shoot regeneration on explants of Anthurium, Codiaeum, Diffenbachia, Gerbera, Rosa and Spathiphyllum for breeding purposes. Acta Horticulture, 420: 115−117
Osternack N., Saare-Surminski K., Preil W., Lieberei R. Induction of somatic embryos, adventitious shoots and roots in hypocotyls tissue of
Euphorbia pulcherrima Willd. Ex Klotzsch: comparative studies on embryogenic and organogenic competence. J. Appl Bot 1999- 73: 197−201
Peterson, A.T. (2001). Predicting species geographic distributions based on ecological niche modeling. Condor, 103, 559−605.
Pierik R.L., Van Leenwen A., Rigter G. Regeneration of leaf expiants of a anthurium andreanum Lindl, in vitro // Netherl. J. Agricult. Sei. 1979. — 7, № 3.- P. 221−226.
Pierik R.L.M. (1991). Commercial micropropagation in Western Europe and Israel. In: Debergh P.C., Zimmerman R.H. (eds) Micropropagation. Kluwer, Dordrecht, pp 155−165
Pierik R.L.M., (1976). Anthurium andreanum plantlets produced from callus tissues cultivated in vitro. Physiologia Plantarum, 37: 80−82
Pierik, R.L.M., H.H.M. Steegmans and J.A.J. Van der Meys. 1974. Plantlet formation in callus tissue of Anthurium andreanum Lind. Scientia Horticulture, 2:193−198
Poddar, K., R.K. Vishnoi and S.L. Kothari. 1997. Plant regeneration from embriyogenic callus of finger millet Eleusine coracana (L.) Gaerth., on higher concentrations of NH4N03 as a replacement of NAA in the medium. Plant Science, 129: 101−106
Poupet A., Beck D., Bettachini B., Onesto J.-P. et Rolande Poupet. Multiplication in vitro de deux especes d’anthurium: a. andreanum et a. scherzerianum. C.R. Acad. Agri. De France, 1985, 71, № 2, pp. 151−156.
Preil W. (2003). Micropropagation of ornamental plants. In: Laimer M., Rucker W. (Eds.). Plant tissue culture 100 years since Gottlied Haberlandt. Springer-Verlag, New York: 115−133.
Prior, P., B. Hostachy, P. Sunder, and P. Rott. 1986. Bacterial blight (Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae) and bacterial leaf spot (Pseudomonas sp.) of Anthurium in the French West Indies. Inst. Natl. Rech. Agron., Sta. Pathologie Veg., Paris.
Puchooa, D. and D. Sookun. 2003. Induced mutation and In vitro cultured of Anthurium andreanum AMAS, Food and Agricultural Research Council, Reduit, Mauritius, 17−27
Pueschel A.K., Schwenkel H.G., Winkelmann. Inheritance of the ability for regeneration via somatic embryogenesis in Cyclamen persicum. Plant Cell Tissue Organ Cult 2003- 72: 43−51
Qinying L., Qiren L., Huiying H., Yanjun Z., Xingyun X. The callus induction of anthurium andreanum Linden and bud differentiation. Acta hortic. Sinica. 2003, 30(1): 107−110.
Reuther, G. 1977: Embryoide Differenzierungsmuster im Kallus der Gattungen Iris und Asparagus. Ber. Deutsch. Bot. Ges. 90, 417−437.
Rodriguez, R. 1982: Multiple shoot but formation and plantlet regeneration on Castanea sativa Mill. Seeds in culture. Plant Cell Rep. 1, 161−164.
Romeis, B. 1968: Mikroskopische Technik. R. Oldenburg Verlag, Munchen und Wien, 552 S.
Rosario T.L., Lapitan L.A. (1981). Callus and plantlet formation in Anthurium andreanum Lind. Phillipp Agric 64: 197−202
Rout G. R., Jain S.M. (2004). Micropropagation of ornamental plants-cut flowers. Propagation of Ornamental Plants, 4: 3−28.
Rout G. R., Jain S.M. (2005). Micropropagation of floricultural crops. In: Murch S.J., Saxena P.K. (Eds.). Journey of a single cell to plant. Oxford & IBH Publishing Company, New Delhi, India: 309−365.
Rout G.R., Debata B.K., Das P. Somatic embryogenesis in callus cultures of Rosa hybrida L. cv. Landora. Plant Cell Tissue Organ Cult 1991- 27: 65−9
Rout G.R., Mohapatra A., Jain S.M. Tissue culture of ornamental pot plant: A critical review on present scenario and future prospects. Biotechnology Advances 24 (2006) 531−560.
Sanchez R.T., Gradaille M.D., Borrero L.N., Laffitte O.C., Avila M.B. Micropropagacion de variedades de anthurium andreanum de Interes comercial. Agricola vergel/ diciembre 1999. 793−797.
Schuld B.A., Crane J. and Harrison M.D. (1992). Symptomless infection with Clavibacter michiganensis subspecies sepedonicius during tissue culture propagationof potato. Can. J. Plant Sci. 72: 943−953.
Silva, J.A.T., S. Nagae and M. Tanaka. 2005. Effect of Physical Factors on Micropropagation of Anthurium andreanum. Plant Tissue Culture, 15(1): 1−6
Singh F., Sangama (1991). Micropropagation and plant conformity in Anthurium andreanum. In: Prakash J., Pierik R.L.M. (eds) Horticulture -new technologies and applications. Kluwer, Dordrecht, pp 201−204
Skov, F. (2000). Potential plant distribution mapping based on climatic similarity. Taxon, 49, 503−515.
Skov, F. and Borchsenius, F. (1997). Predicting plant species distribution patterns using simple climatic parameters: a case study of Ecuadorian palms. Ecography, 20, 347−355.
Sneath, P.H.A., 1986. Some thoughts on bacterial classification. J. Gen. Microbiol., 17: 185−200
Starr M.P. (1946). The nutrition of phytopathogenic bacteria I. Minimal nutritive requirements of genus Xanthomonas. J. Bacterial. 51: 131−143.
Tanaka K., Kanno Y., Kudo S., Suzuki M. Somatic embryogenesis and plant regeneration in Chrysanthemum (Dendrathema grandiflorum Ramat.) Kitamura. Plant Cell Rep 2000- 19: 946−53
Te-chato, S., T. Susanon and Y. Sontikun. 20 medium influencing embryogenesis and organogenesis in Anthurium spp. 06. Cultivar, explant type and culture. Songklanakarin J. Sci. Technol., 28(4): 717−722
Teng, W.L. 1997. Regeneration of Anthurium adventitious shoots using liquid or raft culture. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 49: 153−156
Trolinder N.L. and Goodin J.R. (1988). Somatic embryogenesis in cotton (Gossypium) I. Effects of source of explants and hormone regime. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 12: 31−42.
Vallencia, R, Pitman, N., Leon-Yanez, S. and J0rgensen, P.M. (2000). Libro rojo de las plantas endemicas del Ecuador. Herbario QCA, Pontificia Universidad Catolica del Ecuador, Quito.
Vargas, J.H., T. Consiglio, P.M. Jordensen and T.B. Croat. 2004. Modelling distribution patterns in a species-rich plant genus, Anthurium (Araceae), in Ecuador. Diversity Distrib., 10, 211−216.
Vargas, T.E., A. Mejias, M. Oropeza and E. Garcia. 2004. Plant regeneration of Anthurium andreanum cv. Rubrun. Electronic Journal of Biotechnology, 7(3): 282−286
Weijie X., Bin X., Guangdong W., Weiming G., Fangde W., Jianping J. Somatic embryogenesis and plant regeneration of anthurium andreanum. Actahortic. Sinica. 2006, 33(6): 1281−1286.
White Ph. R. Handbook of plant tissue culture. Jaques Cattell press, 1943a, 4, p. 791−794
Wicart G., Mouras A., Lutz A. Histological study of organogenesis andembryogenesis in Cyclamen persicum Mill. Tissue culture: evidence for a single organogenetic pattern. Protoplasma 1984- 119: 159−67
Winkelmann T., Hohe A., Schwenkel H.G. Establishing embryogenic suspension cultures in Cyclamen persicum 'Purple Flamed'. Adv Hortic Sei 1998- 12: 25−30
Young, F. 1990. Anthurium blight in Jamaica, p. 37. In: A.M. Alvarez (ed.). Proc. Third Anthurium Blight Conf. HITAHRJ. Ser. 05.07.90.
Young, K.R., Ulloa Ulloa, C., Luteyn, J.L. and Knapp, S. (2002). Plant evolution and endemism. Andean South America: an introduction. Botanical Review, 68, 4−27.
Yunpeng Z., Weiming G., Guangdong W. Observation on anatomic structure of eight kinds of calli in anthurium andreanum. Acta hortic. Sinica. 2005, 32(1): 60−64.
Zens A. und Zimmer K. Entwicklung von Klonsorten bei Anthurium scherzerianum Scott mit Hilfe von in-vitro-Kulturtechniken II. Histologische Analyse der Sprobproliferation in vitro gekeimter Samen. Gartenbauwissenschaft, 53 (3). S. 110−113, 1988.
Магаво! селикционер АпШига- присвоено название — АпШезёи- покрывало крупное, цвет — желтый — окраска незрелого початка — оранжевая- окраска зрелого початка -кремовая.

Заполнить форму текущей работой