Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Структурная организация астроцитов неокортекса крысы и человека, содержащих глиальный фибриллярный кислый белок

Диссертация: Структурная организация астроцитов неокортекса крысы и человека, содержащих глиальный фибриллярный кислый белок
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Одной из ключевых и наиболее исследуемых функций астроцитов является их участие в организации и регуляции проницаемости барьерной системы мозга (гематоэнцефалического и ликвороэнцефалического барьеров). Известно, что именно накопление GFAP связано с обеспечением астроцитами барьерных функций. До недавнего времени наибольшее внимание физиологи и морфологи уделяли структурной организации… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ СОКРАЩЕНИЙ Актуальность проблемы
  • Цель и задачи исследования
  • Основные положения, выносимые на защиту
  • Научная новизна работы
  • Теоретическое и практическое значение работы
  • Апробация работы
  • Объем и структура диссертации
  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Глиальный фибриллярный кислый белок
    • 1. 2. Происхождение и структурная организация астроцитов
    • 1. 3. Взаимодействие астроцитов между собой и с другими клетками
    • 1. 4. Астроциты и гематоэнцефалический барьер
    • 1. 5. Астроциты и внеклеточное пространство
  • Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Характеристика исследованного материала
    • 2. 2. Подготовка материала для гистологического исследования
    • 2. 3. Обзорные окраски
    • 2. 4. Иммуноцитохимические исследования
    • 2. 5. Методы флюоресцентной и конфокальной лазерной микроскопии
    • 2. 6. Фотографирование препаратов
    • 2. 7. Количественные методы исследования
  • Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. Структурная организация астроцитов неокортекса конечного мозга крысы
    • 3. 2. Структурная организация астроцитов неокортекса интактного конечного мозга человека
    • 3. 3. Морфологическая характеристика астроцитов головного мозга человека после механической травмы

Структурная организация астроцитов неокортекса крысы и человека, содержащих глиальный фибриллярный кислый белок (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

.

Глиальный фибриллярный кислый белок (GFAP) является одним из главных иммуноцитохимических маркеров астроцитов — важнейшего представителя макроглии в центральной нервной системе млекопитающих. В качестве маркера астроцитов он широко применяется в диагностических целях и в экспериментальных работах при исследовании функций нервной системы в норме и при патологии [Калиниченко и др., 2004; Zhu, Dahlstrom, 2007; Paulus, 2009]. Постоянно возрастающее число работ, посвященных астроцитам, связано с многообразием функций, которые, как установлено за последние два десятилетия, выполняют в центральной нервной системе эти клетки.

Одной из ключевых и наиболее исследуемых функций астроцитов является их участие в организации и регуляции проницаемости барьерной системы мозга (гематоэнцефалического и ликвороэнцефалического барьеров) [Abbott, 2002; Engelhardt, Sorokin, 2009; Li et al., 2010]. Известно, что именно накопление GFAP связано с обеспечением астроцитами барьерных функций [Pekny, 2001; Ribotta et al., 2004]. До недавнего времени наибольшее внимание физиологи и морфологи уделяли структурной организации и функциональным характеристикам гематоэнцефалического барьера [Bradbury, 1984; Abbott, 1991; Pardridge, 1999], в то время как организации поверхностных структур головного мозга (одной из областей локализации ликвороэнцефалического барьера) уделялось меньше внимания. Тем не менее, недооценка значения этой барьерной зоны приводит к существенному пробелу в наших знаниях о функционировании барьерной системы мозга в целом и об особенностях организации путей циркуляции цереброспинальной жидкости у человека и других млекопитающих.

Среди анатомических зон локализации барьеров головного мозга наружная поверхность занимает особое место [Отеллин, Саульская, 2000]. Во всех областях большого мозга она образована первым слоем коры, который формируется раньше других кортикальных слоев [Федосихина, 1984; Хожай, Отеллин, 1999; Bystron et al., 2008] и играет определяющую роль в становлении характерной цитоархитектоники всего неокортекса [Marin-Padilla, 1992]. Кроме того, этот слой служит коллектором афферентных волокон кортикального и экстракортикального происхождения [Marin-Padilla, 1990; Коржевский, Отеллин, 2002]. Важнейшим элементом первого слоя коры, обеспечивающим поддержание целостности ликвороэнцефалического барьера, является поверхностная глиальная пограничная мембрана (ПГПМ), которая в эмбриогенезе начинает формироваться клетками радиальной глии [Отеллин, Коржевский, 2002], а в постнатальный период онтогенеза образована астроцитами первого слоя коры. Несмотря на существование традиционных представлений о строении ПГПМ, базирующихся на реконструкциях, выполненных по данным электронной микроскопии [Крстич, 2001], отсутствует ясность в вопросе о том, насколько широко распространена подобная организация поверхностных мозговых структур у различных животных и человека.

Другой немаловажной проблемой, которая имеет отношение к оценке морфологических изменений астроцитов при реакции на повреждающие воздействия, является проблема правильной классификации их особых форм, обнаруживаемых в головном мозге различных животных и человека [Colombo, Reisin, 2004; Коржевский, Отеллин, Григорьев, 2004; Oberheim et al., 2006]. Эти клетки не всегда могут быть однозначно определены как протоплазматические или фиброзные (волокнистые), выделяемые современной гистологической номенклатурой [Банин, Быков, 2009]. Без четкой классификации форм астроцитов, наблюдаемых в норме, и отсутствии знаний о том, в какой мере они сопоставимы у животных и человека, существенно снижается диагностическая ценность показателей, связанных с учетом морфологии астроцитов в клинико-патологических и экспериментальных исследованиях.

До недавнего времени предполагалось, что морфологические характеристики астроцитов у человека и лабораторных животных не имеют существенных различий. Однако отдельные исследования [Colombo et al., 2000; Oberheim et al., 2009] свидетельствуют о наличии видовых особенностей структурной организации астроцитов коры у грызунов и приматов. Кроме того, остаются неизученными и региональные особенности астроцитов. Принимая во внимание противоречивые данные о строении астроцитов неокортекса млекопитающих, представляется актуальным проведение сравнительного исследования структурной и цитохимической организации астроцитов человека и крыс, наиболее часто используемых в экспериментальных исследованиях, связанных с моделированием заболеваний и повреждений головного мозга, характерных для человека [Чумасов и др., 2010; Srivareerat et al., 2009; Boyko et al., 2011 и др.].

Астроциты участвуют в реактивных изменениях, происходящих в головном мозге при различных повреждениях [Коржевский и др., 2007; Takano et al., 2009; Yu, 2010], заболеваниях [Новожилова, Гайкова, 2001; De Keyser et al., 2010; Li et al., 2011], в том числе и врожденных [Mignot et al., 2004].

В последние годы в научных исследованиях, выполненных как за рубежом, так и в нашей стране, все чаще используются иммуноцитохимические методы для выявления астроцитов в органах ЦНС [Liu et al., 2006; Дробленков, Карелина, 2009; Хожай, Отеллин и др., 2010; Bernal, Peterson, 2011 и др.]. В связи с этим, исследование, посвященное оптимизации одного из наиболее распространенных иммуноцитохимических методов определения астроцитов, оценки возможности его использования на аутопсийном материале, а также сравнительное исследование астроцитов коры головного мозга у лабораторных животных и человека, актуально как для фундаментальной нейробиологии, так и для клинической диагностики заболеваний и травм головного мозга. Полученные данные будут способствовать унификации оценки гистопатологических процессов при различных вариантах глиальной реакции в ЦНС.

Таким образом, сравнительное изучение структурной организации астроцитов, экспрессирующих глиальный фибриллярный кислый белок, актуально и имеет не только фундаментальное, но и практическое значение.

Цель и задачи исследования

.

Целью настоящего исследования явилось сравнительное изучение структурной и цитохимической организации ОБАР-иммунопозитивных астроцитов коры головного мозга крысы и человека.

В соответствии с целью исследования были поставлены следующие задачи:

1. Разработать унифицированный протокол выявления астроцитов, позволяющий получать сопоставимые результаты при постановке реакции на срезах головного мозга крысы и человека, а также проводить трехмерную реконструкцию.

2. Исследовать распределение и структурную организацию ОБАР-иммунопозитивных астроцитов в коре головного мозга крысы.

3. Исследовать распределение и структурную организацию ОРАР-иммунопозитивных астроцитов в коре головного мозга человека.

4. Провести сравнительный анализ особенностей структурной и цитохимической организации астроцитов коры головного мозга у крысы и у человека.

5. Изучить изменения структурной организации астроцитов неокортекса при механической травме головного мозга у человека.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. У крысы СБ АР определяется в астроцитах различных слоев коры, наиболее интенсивная реакция на этот белок промежуточных филаментов проявляется в астроцитах поверхностной части I слоя и субкортикального белого вещества. Для неокортекса крысы характерны следующие морфологические типы астроцитов: уплощенные астроциты, расположенные на поверхности коры, формирующие поверхностную глиальную пограничную мембрану, вариантом которых являются полигональные астроциты поверхностной части первого слоя базальной области корытипичные звездчатые астроцитыверетеновидные астроциты субкортикального белого вещества.

2. У человека ОБ АР определяется в астроцитах различных слоев коры, наиболее интенсивная реакция на этот белок промежуточных филаментов проявляется в астроцитах I и VI слоев и субкортикального белого вещества. Для неокортекса человека характерны следующие морфологические типы астроцитов: два морфологических типа астроцитов I слоя (астроциты, формирующие своими отростками ПГПМ и трансламинарные астроциты), типичные протоплазматические астроциты, инвертированные трансламинарные астроциты VI слоя с длинными неветвящимися отростками, типичные фиброзные астроциты субкортикального белого вещества. С возрастом у человека наблюдается повышение иммунореактивности астроцитов Ш-У слоев коры.

3. Во всех исследованных областях неокортекса у крысы ПГПМ сформирована телами астроцитов, лежащих в один или несколько слоев, в части которых в области основания мозга имеется ассоциация ОБ АР с виментином. У человека ПГПМ образована сплетением тонких отростков астроцитов, тела которых лежат в глубоких отделах I слоя.

4. Структурная организация астроцитов при травме головного мозга существенно изменяется, в составе белков промежуточных филаментов астроцитов появляется нестин. Количество ОРАР-иммунореактивных астроцитов увеличивается, изменяется их распределение в слоях коры, наблюдается скопление измененных астроцитов на границе повреждения и отграничение ими травматического очага.

Научная новизна.

Впервые проведено систематическое иммуноцитохимическое исследование астроцитов, содержащих ОБ АР, у крысы и человека. Показано, что не все клетки с морфологическими и цитохимическими признаками астроцитов содержат ОБАР в концентрациях, обеспечивающих его иммуноцитохимическое определение. В работе выделены и охарактеризованы неизвестные ранее формы ОРАР-иммунопозитивных астроцитов коры головного мозга крысы и человека, установлены сходство и различия в их структурной и цитохимической организации. Установлена возрастная зависимость накопления ОБ АР в астроцитах средних слоев неокортекса человека. Благодаря применению конфокальной лазерной микроскопии и возможности создания трехмерных реконструкций, установлен факт локализации амилоидных телец внутри отростков астроцитов. Показано, что у человека в условиях повреждения головного мозга наблюдается активация астроцитов, содержащих ОБ АР, как в области барьеров мозга, так и локально, в поврежденных участках неокортекса. Детально описаны преобразования астроцитов при механической травме головного мозга человека.

Теоретическое и практическое значение исследования.

Настоящая работа относится к числу фундаментальных исследований в области гистологии и нейроморфологии. Полученные данные о сходстве и различиях структурной организации гематои ликвороэнцефалического барьеров коры большого мозга человека и крысы позволят оценить адекватность экспериментального моделирования патологических состояний, связанных с повреждением барьерной системы головного мозга. Данные о возрастных изменениях астроцитов коры головного мозга человека могут быть использованы при создании новых экспериментальных моделей хронических нейродегенеративных заболеваний. Кроме того, результаты исследования могут служить основой для разработки новых подходов, применяемых в судебномедицинской диагностике повреждений головного мозга. Разработанный в рамках настоящего исследования протокол выявления GFAP-иммунопозитивных астроцитов рекомендован для использования в диагностических целях (методическое пособие: «Особенности судебно-гистологического исследования головного мозга при смерти от тупой травмы головы», СПбМАПО, 2011).

Апробация работы.

Основные положения работы доложены и обсуждены на научно-практической конференции молодых ученых и специалистов «Актуальные вопросы клинической и экспериментальной медицины» (14 мая 2009 г., Санкт-Петербург), III Международном молодежном медицинском конгрессе «Санкт-Петербургские научные чтения-2009» (2−4 декабря 2009 г., Санкт-Петербург), VI Международном междисциплинарном конгрессе «Нейронаука для медицины и психологии» (5−15 июня 2010 г., Судак, Украина), Петербургском научном обществе судебных медиков (636-е пленарное заседание, 20 октября 2010 г., Санкт-Петербург), VIII Всероссийской конференции по патологии клетки (11−12 ноября 2010 г., Москва).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 4 статьи в рецензируемых журналах, рекомендованных ВАК и 5 работ в сборниках трудов научно-практических конференций.

Объем и структура диссертации.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материала и методов исследования, изложения результатов исследования, обсуждения полученных результатов, выводов и списка литературы. Работа изложена на 139 стр. машинописного текста, иллюстрирована 38 рисунками и 5 таблицами.

Выводы.

1. У крысы астроциты, содержащие ОБ АР, обнаружены во всех слоях неокортекса, однако наиболее интенсивную реакцию на этот белок промежуточных филаментов проявляют клетки, расположенные в первом слое, вблизи поверхности коры, а также астроциты субкортикального белого вещества. В головном мозге крысы выявлены ранее не описанные морфологические формы астроцитов — уплощенные поверхностные («эпителиоморфные») астроциты, которые принимают участие в формировании поверхностной глиальной пограничной мембраны и веретеновидные астроциты субкортикального белого вещества.

2. У человека ОГАР-иммунопозитивные астроциты обнаружены во всех слоях неокортекса. Наиболее интенсивную реакцию на этот белок, как и у крысы, проявляют клетки, расположенные в первом слое коры и субкортикальном белом веществе, однако структурная организация этих клеток у крысы и человека различается. Так, у человека отсутствуют «эпителиоморфные» поверхностные астроциты, а в белом веществе определяются преимущественно типичные фиброзные астроциты. Для коры головного мозга человека установлено присутствие особых морфологических форм астроцитов, которые отсутствуют у крысы. Это — трансламинарные астроциты первого слоя и инвертированные трансламинарные астроциты шестого слоя.

3. Одной из характерных особенностей неокортекса человека является зависимое от возраста накопление в зоне поверхностной и периваскулярной глиальных пограничных мембран сферических образований полисахаридной природы, часть из которых инкорпорирована в отростки астроцитов, что свидетельствует о возможном участии астроцитов в формировании этих структур.

4. Структурная организация астроцитов при травме головного мозга существенно изменяется. Они увеличиваются в размерах, отростки их укорачиваются и утолщаются, теряется звездчатая форма, ядро смещается на периферию клетки, появляются двухядерные формы, в их цитоплазме происходит накопление липофусцина. В составе промежуточных филаментов астроцитов появляются виментин и нестин. Количество GFAP-иммунореактивных астроцитов увеличивается, наблюдается скопление измененных астроцитов на границе повреждения и отграничение ими травматического очага, что свидетельствует об их активном участии в ответной реакции на травму и ведущей роли в формировании глиального рубца.

5. Разработанный в ходе настоящего исследования протокол иммуноцитохимического исследования пригоден для изучения структурной организации GFAP-иммунопозитивных астроцитов как у крысы, так и у человека.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.В., Быков B.JI. Terminologia Histologica. Международные термины по цитологии и гистологии человека с официальным списком русских эквивалентов. // Москва: Гоэтар-Медиа. — 2009. — 272 с.
  2. .В. Практическая нейрохирургия. // СПб: Гиппократ. — 2002. -648 с.
  3. Л.И., Березин В. А., Василов Р. Г. Экспрессия глиального фибриллярного кислого белка в развивающемся мозге человека. // Биохимия. 1991. — Т. 56, вып. 7. — С. 1322−1329.
  4. А.В. Нестин в клетках центральной нервной системы // Морфология. -2007. Т. 131, № 1. — С. 85−90.
  5. А.В., Коржевский Д. Э., Отеллин В. А. Изменение состава промежуточных филаментов в клетках конечного мозга крыс в ранний постнатальный период онтогенеза. // Журн. эвол. биохим. и физиол. -2009.-Т. 45, № 1.-С. 130−137.
  6. Э.И., Лазриев И. Л. Ультраструктура нейроглии // Общая физиология нервной системы / Руководство по физиологии под ред. П. Г. Костюка, А. И. Ройтбака. Л., 1979. С. 547−554.
  7. А.В., Карелина Н. Р. Структурные особенности нейронов и макроглиоцитов взаимосвязанных отделов мезоаккумбоцингулярной дофаминергической системы крыс. // Морфология. — 2009. Т. 136, № 5.-С. 11−17.
  8. H.H., Гилерович Е. Г., Соколова И. Б., Шведова Е. В. Влияние трансплантации мезенхимных стволовых клеток на динамику морфологических изменений в головном мозге крыс после ишемического инсульта. // Цитология. 2007. — № 11. — С. 923−932.
  9. С.Г., Дудина Ю. В., Дюйзен И. В., Мотавкин П. А. Индукция NO-синтетазы и глиального кислого фибриллярного белка в астроцитах височной коры крыс с аудиогенной эпилептиформной реакцией. // Морфология. 2004. — Т. 125, № 3. — С. 68−73.
  10. Д.Э. Нейрогенез и нейральные стволовые клетки. // Мед.академ.журнал. 2010. — Т. 10, № 4. — С. 175−182.
  11. Д.Э., Гилерович Е. Г., Зинькова H.H., Григорьев И. П., Отеллин В. А. Иммуноцитохимическое выявление нейронов головного мозга с помощью селективного маркера NeuN. // Морфология. 2005. -Т. 128,№ 5.-С. 76−78.
  12. Д.Э., Гиляров A.B. Оптимизация метода иммуногмтохимического выявления нестина для парафиновых срезов л головного мозга крысы. // Морфология. 2006. — Т. 130, № 6. — С. 7880.
  13. Д.Э., Гиляров A.B. Ядерный белок NeuN в амилоидных тельцах головного мозга человека. // Морфология. 2007. — Т. 131, № 2.-С. 75−76.
  14. Д.Э., Гиляров A.B. Иммуноцитохимическое выявление тканевых антигенов после длительного хранения объектов в метилсалицилате. // Морфология. 2008. — Т. 134, № 6. — С. 76−78.
  15. Д.Э., Григорьев И. П., Отеллин В. А. Применение обезвоживающих фиксаторов, содержащих соли цинка, в нейрогистологических исследованиях. // Морфология. — 2006. — Т. 129, № 1. С. 85−86.
  16. Д.Э., Кирик O.B. Белки промежуточных филаментов нестин и виментин в клетках почки крысы. // Морфология. 2008. — Т. 134, № 6. — С. 50−54.
  17. Д.Э., Кирик О. В., Сухорукова Е. Г., Гиляров A.B. Применение полупроводниковых нанокристаллов (квантовых точек) в иммуноцитохимических исследованиях. // Морфология. — 2010. — Т. 137, № 3.-С. 71−75.
  18. Д.Э., Ленцман М. В., Кирик О. В., Отеллин В. А. Виментин-иммунопозитивные клетки конечного мозга крысы после экспериментального ишемического инсульта. // Морфология. 2007. -Т. 132, № 5.-С. 23−27.
  19. Д.Э., Отеллин В. А. Структурные основы становления гематоликворного барьера у человека. // Усп. физиол. наук. — 2002. — Т. 122, № 6.-С. 14−18.
  20. Д.Э., Отеллин В. А., Григорьев И. П. Глиальный фибриллярный кислый белок в астроцитах неокортекса человека. // Морфология. 2004. — Т. 126, № 5. — С. 7−10.
  21. Д.Э., Отеллин В. А., Григорьев И. П., Косткин В. Б., Поленов С. А., Ленцман М. В., Балестрино М. Структурная организация астроцитов гиппокампа в постишемический период. // Морфология. -2004.-Т. 125, № 2.-С. 19−21.
  22. Р.В. Иллюстрированная энциклопедия по гистологии человека // СПб: Сотис. 2001. — 536 е., 1576 ил.
  23. A.A., Молдавер M.B. Виментиновые промежуточные филаменты и их роль во внутриклеточном распределении органелл. // Успехи биологической химии. 2008. — Т. 48.-С. 221−252.
  24. А.П., Гайкова О. Н. Клеточный глиоз белого вещества большого мозга человека и его значение в патогенезе очаговой эпилепсии. // Морфология. 2001. — Т. 119, № 2. — С. 20−24.
  25. В.А., Коржевский Д. Э. Формирование и структурная организация барьера на наружной поверхности головного мозга. // Морфология. 2002. — Т. 122, № 6. — С. 14−18.
  26. В.А., Рыбаков B.JL, Байковская М. Н. Ультраструктурная характеристика внутримозговых компонентов гематоэнцефалического барьера. // Журнал невропатологии и психиатрии. 1979. — Т. 79, вып. 7. — С. 843−848.
  27. В.А., Саульская Н. Б. Межклеточная интеграция в центральной нервной системе. // Рос. физиол. журнал им. И. М. Сеченова. 2000. — Т. 86, № 7. — С. 801−809.
  28. Е.С. Изучение гистогенетических и нейродегенеративных процессов в нервной системе с помощью гетеротопической нейротрансплантации. // Морфология. 2009. — Т. 136, № 6. — С. 8−19.
  29. Е.С., Отеллин В. А. Дистрофические изменения и гибель клеток в длительно живущих гомо- и гетеротопических трансплантатах эмбриональных закладок неокортекса крыс. // Бюллетень эксперим. биологии и медицины. 2003. — Т. 136, № 9. — С. 343−347.
  30. A.B., Годухин О. В. Клеточно-молекулярные механизмы фокального эпилептогенеза. // Усп. физиол. наук — 2001. — Т. 32, № 1. — С. 60−78.
  31. Е.Г., Кирик О. В., Коржевский Д. Э. Применение иммуногистохимического метода для выявления микроглии головногомозга в парафиновых срезах. // Бюллетень эксперим. биол. имед. 2010. — Т. 149, № 6. — С. 709−712.
  32. JI.A. Ультраструктурная характеристика первого слоя коры поясной области большого мозга крысы. // Арх. анат. 1984. -Т. 86, вып. 2. — С. 22−28.
  33. Е.П. Иммунная привилегия мозга: новые факты и проблемы. // Иммунология. 2006. — Т. 27, № 1. — С.51−56.
  34. Л.И., Отеллин В. А. Морфогенез слоя I коры мозга мышей в пренатальный период развития. // Онтогенез. 1999. — Т. 30, № 1. — С. 40−46.
  35. Л.И., Отеллин В. А., Шишко Т. Т., Косткин В. Б. Нарушения становления разных полей гиппокампа у крыс как отдаленные последствия острой перинатальной гипоксии. // Морфология. 2010. -Т. 138, № 5.-С. 10−15.
  36. B.C., Ильина Е. В. Патоморфологические изменения при черепно-мозговой травме // Суд.-мед. эксперт. —2001. — № 1. — С. 7−9.
  37. Е.И., Коржевский Д. Э., Петрова Е. С., Кузнецова Н. Н., Сапронов Н. С. Реакция глии субвентрикулярной зоны конечного мозга крысы при моделировании болезни Альцгеймера. // Морфология. -2010. Т. 138, № 6. — С. 24−28.
  38. Abbott N.J. Permeability and transport of glial blood-brain barriers. // Ann. N. Y. Acad. Sci. 1991. — Vol. 633. — P. 378−394.
  39. Abbott NJ. Astrocyte-endothelial interactions and blood-brain barrier permeability. // J. Anat. 2002. — Vol. 200. — P. 629−638.
  40. Amara S.G., Fontana A.C. Excitatory amino acid transporters: keeping up with glutamate. // Neurochem. Int. 2002. — Vol.41. — P. 313−318.
  41. Andersen J., Shafi N.I., Bryan R.M. Endothelial influences in cerebrovascular tone // J. API. Physiol. 2006. — Vol.100. — P. 318−327.
  42. Anderson C.M., Nedergaard M. Astrocyte-mediated control of cerebral microcirculation. // Trends. Neurosci. 2003. — Vol. 26, № 7. — P. 340−344.
  43. Apte M.V., Haber P. S., APlegate T.L., Norton I.D., McCaughan G.W., Korsten M.A., Pirola R.C., Wilson J.S. Periacinar stellate shaped cells in rat pancreas: identification, isolation, and culture. // Gut. —1998. Vol. 43, № 1. -P. 128−33.
  44. Araque A. Astrocytes process synaptic information. // Neuron Glia Biol. — 2008.-Vol.4, № 1-p. 3−10.
  45. Bacci A., Verderio C., Pravettoni E., Matteoli M. The role of glial cells in synaptic function. // Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 1999. — Vol. 354.-P. 403−409.
  46. Badaut J., Lasbennes F., Magistretti P.J., Regli L. Aquaporins in brain: distribution, physiology, and pathophysiology. // J. Cereb. Blood Flow Metab. 2002. — Vol. 22, № 4 — P.367−378.
  47. Bak L.K., Schousboe A., Waagepetersen H.S. The glutamate/GABA-glutamine cycle: aspects of transport, neurotransmitter homeostasis and ammonia transfer. // J. Neurochem. 2006. — Vol. 98, № 3. — P. 641−653.
  48. Basarsky T.A., Feighan D., Mac Vicar B.A. Glutamate release through volume-activated channels during spreading depression. // J. Neurosci. —1999. Vol. 19. — P. 6439−6445.
  49. Basco E., Woodhams P.L., Hajos F., Balazs R. Immunocytochemical demonstration of glial fibrillary acidic protein in mouse tanycytes. // Anat. Embryol. (Berl). 1981. — Vol. 162, № 2. -P. 217−222.
  50. Belmadani A., Tran P.B., Ren D., Miller R.J. Chemokines regulate the migration of neural progenitors to sites of neuroinflammation. // J. Neurosci. 2006. — Vol. 26. — P. 3182−3191.
  51. Bernal G.M., Peterson D.A. Phenotypic and gene expression modification with normal brain aging in GFAP-positive astrocytes and neural stem cells.
  52. Aging Cell. 2011 Mar 8. doi: 10.111 l/j.14 749 726.2011.694.x. Epub ahead of print.
  53. Bloch O., Manley G.T. The role of aquaporin-4 in cerebral water transport and edema. // Neurosurg. Focus. 2007. — Vol. 22, № 5. — E3.
  54. Bouzier-Sore A.K., Serres S., Canioni P., Merle M. Lactate involvement in neuron-glia metabolic interaction: (13)C-NMR spectroscopy contribution. // Biochimie. 2003. — Vol. 85, № 9. — P. 841−848.
  55. Bradbury M.W. The structure and function of the blood-brain barrier. // Fed. Proc.- 1984. Vol. 43, № 2. — P. 186−190.
  56. Bramlett H.M., Dietrich W.D. Pathophysiology of cerebral ischemia and brain trauma: similarities and differences. // J. Cereb. Blood Flow Metab. -2004.-Vol. 24, № 2.-P. 133−150.
  57. Brenner M., Lampel K., Nakatani Y., Mill J., Banner C., Mearow K., Dohadwala M., Lipsky R., Freese E. Characterization of human cDNA and genomic clones for glial fibrillary acidic protein. // Brain Res. Mol. Brain Res. 1990. — Vol. 7. — P. 177−286.
  58. Brown A.M., Ransom B.R. Astrocyte glycogen and brain energy metabolism. // Glia. 2007. — Vol. 55, № 12 — P. 1263−1271.
  59. Bruzzone R., White T.W., Paul D.L. Connections with connexins: the molecular basis of direct intercellular signaling. // Eur. J. Biochem. — 1996. -Vol. 238,№ l.-P. 1−27.
  60. Buffo A., Rolando C., Ceruti S. Astrocytes in the damaged brain: Molecular and cellular insights into their reactive response and healing potential. // Biochem. Pharmacol. 2010. — Vol. 79, № 2. — P. 77−89.
  61. Bystron I., Blakemore C., Rakic P. Development of the human cerebral cortex: Boulder Committee revisited. // Nat. Rev. Neurosci. — 2008. Vol. 9, № 2.-P. 110−122.
  62. Carmen J., Magnus T., Cassiani-Ingoni R., Sherman L., Rao M.S., Mattson M.P. Revisiting the astrocyte-oligodendrocyte relationship in the adult CNS. // Prog. Neurobiol. 2007. — Vol. 82, № 3. — P. 151−162.
  63. Casha S., Yu W.R., Fehlings M.G. FAS deficiency reduces apoptosis, spares axons and improves function after spinal cord injury. // Exp. Neurol. 2005. — Vol. 196, № 2. — P. 390−400.
  64. Castejon O.J. Electron microscopic study of capillary wall in human cerebral edema. // J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1980. — Vol. 39, № 3 — P. 296−328.
  65. Cavanagh J.B. Corpora-amylacea and the family of polyglucosan diseases. // Brain Res. Brain Res. Rev. 1999. — Vol. 29, № 2−3. — P. 265−295.
  66. Cho W., Messing A. Properties of astrocytes cultured from GFAP over-expressing and GFAP mutant mice. // Exp. Cell Res. 2009. — Vol. 315, № 7.-P. 1260−1272.
  67. J.A., Fuchs E., Hartig W., Marotte L.R., Puissant V. «Rodentlike» and «primate-like» types of astroglial architecture in the adult cerebral cortex of mammals: a comparative study. // Anat. Embryol. (Berl). 2000. -Vol. 201,№ 2.-P. 111−120.
  68. Colombo J.A., Reisin H.D. Interlaminar astroglia of the cerebral cortex: a marker of the primate brain. // Brain Res. 2004. — Vol. 1006, № l.-P. 126−131.
  69. Colombo J.A., Yanez A., Puissant V., Lipina S. Long, interlaminar astroglial cell processes in the cortex of adult monkeys. // J. Neurosci. Res. -1995. Vol. 40, № 4. — P. 551−556.
  70. Condorelli D. F., Nicoletti V. G., Barresi V., Caruso A., Conticello S., de Vellis J., Giuffrida Stella A. M. Tissue-specific DNA methylation patterns of the rat glial fibrillary acidic protein gene. // J. Neurosci. Res. 1994. — Vol. 39. — P. 694−707.
  71. Cotrina M.L., Lin J.H.C., Lopez-Garcia J.C., Naus C.C.G., Nedergaard M. ATP-mediated glia signaling. // J. Neurosci 2000. — Vol. 20. — P. 28 352 844.
  72. Dahl D., Chi N.H., Miles L.E., Nguyen B.T., Bignami A. Glial fibrillary acidic (GFA) protein in Schwann cells: fact or artifact? // J. Histochem. Cytochem. 1982.-Vol. 30, № 9. — P. 912−918.
  73. Dani J.W., Chernjavsky A., Smith SJ. Neuronal activity triggers calcium waves in hiPocampal astrocyte networks. // Neuron. — 1992. Vol. 8. — P. 429−440.
  74. Davidoff M.S., Middendorff R., Kofuncii E., Muller D., Jezek D., Holstein A.F. Leydig cells of the human testis possess astrocyte and oligodendrocyte marker molecules. // Acta Histochem. 2002. — Vol. 104, № 1. — P. 39−49.
  75. Davis S., Thomas A., Perry R., Oakley A., Kalaria R.N., O’Brien J.T. Glial fibrillary acidic protein in late life major depressive disorder: an immunocytochemical study. // J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry. 2002. -Vol. 73, № 5.-P. 556−560.
  76. De Keyser J., Laureys G., Demol F., Wilczak N., Mostert J., Clinckers R. Astrocytes as potential targets to suPress inflammatory demyelinating lesions in multiple sclerosis. // Neurochem Int. 2010. — Vol. 57, № 4. — P. 446−450.
  77. Del ZoPo G.J., Milner R., Mabuchi T., Hung S., Wang X., Koziol J.A. Vascular matrix adhesion and the blood-brain barrier. // Biochem. Soc. Trans. 2006. — Vol. 34, № 6. — P. 1261−1266.
  78. Dermietzel R., Hertzberg E.L., Kessler J.A., Spray D.C. Gap junctions between cultured astrocytes: immunocytochemical, molecular, and electrophysiological analisis. // J. Neurosci. — 1991. Vol. 11, № 5. — P. 1421−1432.
  79. Ding M., Eliasson C., Betsholtz C., Hamberger A., Pekny M. Altered taurine release following hypotonic stress in astrocytes from mice deficient for GFAP and vimentin. // Brain Res. Mol. Brain Res. 1998. — Vol. 62, № l.-P. 77−81.
  80. Doetsch F., Caille I., Lim D.A., Garcia-Verdugo J.M., Alvarez-Buylla A. Subventricular zone astrocytes are neural stem cells in the adult mammalian brain. // Cell. 1999. — Vol. 97, № 6. — P. 703−716.
  81. Doetsch F., Garcia-Verdugo J.M., Alvarez-Buylla A. Cellular composition and three-dimensional organization of the subventricular germinal zone in the adult mammalian brain. // J. Neurosci. 1997. — Vol. 17, № 13. — P. 5046−5061.
  82. Doherty P., Walsh F.S. The contrasting roles of N-CAM and N-cadherin as neurite outgrowth-promoting molecules. // J. Cell Sci. SuPl. 1991. — Vol. 15.-P. 13−21.
  83. Dong Y., Benveniste E.N. Immune function of astrocytes. // Glia. 2001. -Vol. 30, № 2.-P. 180−190.
  84. Dringen R., Gutterer J.M., Hirrlinger J. Glutathione metabolism in brain. Metabolic interaction between asrtrocytes and neurons in the defense against reactive oxygen species. // Eur. J. Biochem. 2000. — Vol. 267. — P. 49 124 916.
  85. Duan S., Anderson C.M., Keung E.C., Chen Y., Chen Y., Swanson R.A. P2X7 receptor-mediated release of excitatory amino acids from astrocytes. // J. Neurosci. -2003. Vol. 23. — P. 1320−1328.
  86. Eliasson C., Sahlgren C., Berthold C.H., Stakeberg J., Celis J.E., Betsholtz C., Eriksson J.E., Pekny M. Intermediate filament protein partnership in astrocytes. // J. Biol. Chem. 1999. — Vol. 274, № 34. -P. 23 996−24 006.
  87. Eng L.F. Glial fibrillary acidic protein (GFAP): the major protein of glial intermediate filaments in differentiated astrocytes. // J. Neuroimmunol. -1985. Vol. 8, № 4−6. — P. 203−214.
  88. Eng L.F., Vanderhaeghen J.J., Bignami A., Gerstl B. An acidic protein isolated from fibrous astrocytes. // Brain Res. 1971. — Vol. 28, № 2. — P. 351−354.
  89. Engelhardt B., Sorokin L. The blood-brain and the blood-cerebrospinal fluid barriers: function and dysfunction. // Semin. Immunopathol. 2009. — Vol. 31, № 4. — P. 497−511.
  90. Esposito P., Gheorghe D., Kandere K., Pang X., Connolly R., Jacobson S., Theoharides T.C. Acute stress increases permeability of the blood-brain-barrier through activation of brain mast cells. // Brain Res. -2001.-Vol. 888, № l.-P. 117−127.
  91. Faraci F.M., Heistad D.D. Regulation of the cerebral circulation: role of endothelium and potassium channels. // Physiol. Rev. — 1998. — Vol. 78. — P. 53−97.
  92. Faulkner J.R., Herrmann J.E., Woo M.J., Tansey K.E., Doan N.B., Sofroniew M.V. Reactive astrocytes protect tissue and preserve function after spinal cord injury. // J. Neurosci. 2004. — Vol. 24, № 9. — P. 21 432 155.
  93. Feletou M., Vanhoutte P. M. Endothelium-Derived Hyperpolarizing Factor: Where Are We Now? // Arterioscler. Thromb. Vase. Biol. 2006. -Vol. 26.-P. 1215−1225.
  94. Fellin T., Carmignoto G. Neurone-to-astrocyte signalling in the brain represents a distinct multifunctional unit. // J. Physiol. 2004. — Vol. 559. -P. 3−15.
  95. Fellin T., Sul J.Y., D’Ascenzo M., Takano H., Pascual O., Haydon P.G. Bidirectional astrocyte-neuron communication: the many roles of glutamate and ATP. // Novartis. Found. Symp. 2006. — Vol. 276.-P. 208−217.
  96. Ferguson A.V., Bains J.S. Electrophysiology of the circumventricular organs. // Front. Neuroendocrinol. 1996. — Vol. 17, № 4. — P. 440−475.
  97. Fields R.D., Stevens-Graham B. New insights into neuron-glia communication. // Science. 2002. — Vol. 298. — P. 556−562.
  98. Filosa J.A., Bonev A.D., Straub S.V., Meredith A.L., Wilkerson M.K., Aldrich R.W. Local potassium signaling couples neuronal activity to vasodilation in the brain. // Nat. Neurosci. 2006. — Vol. 9. — P. 1397−1403.
  99. Filosa J. A., Blanco V. M. Neurovascular coupling in the mammalian brain. // Exp. Physiol. 2007. — Vol. 92, № 4 — P. 641−646.
  100. Finkbeiner S. Calcium waves in astrocytes-filling in the gaps. // Neuron. 1992. -Vol. 8. — P. 1101−1108.
  101. Frisen J., Johansson C.B., Torok C., Risling M., Lendahl U. Rapid, widespread, and longlasting induction of nestin contributes to the generation of glial scar tissue after CNS injury. // J. Cell Biol. 1995. — Vol. 131, № 2. -P. 453−464.
  102. Fry M., Hoyda T.D., Ferguson A.V. Making sense of it: roles of the sensory circumventricular organs in feeding and regulation of energy homeostasis. // Exp. Biol. Med. (Maywood). 2007. — Vol. 232, № 1. — p. 14−26.
  103. Fukuda S., Kato F., Tozuka Y., Yamaguchi M., Miyamoto Y., Hisatsune T. Two distinct subpopulations of nestin-positive cells in adultmouse dentate gyrus. // J. Neurosci. 2003. — Vol. 23, № 28.-P. 9357−9366.
  104. Ganong W.F. Circumventricular organs: definition and role in the regulation of endocrine and autonomic function. // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 2000. — Vol. 27, № 5−6. — P. 422−427.
  105. Goldman J.E. Lineage, migration, and fate determination of postnatal subventricular zone cells in the mammalian CNS. // J Neurooncol. 1995. -Vol. 24, № 1. -P. 61−64.
  106. Gourine A.V., Kasymov V., Marina N., Tang F., Figueiredo M.F., Lane S., Teschemacher A.G., Spyer K.M., Deisseroth K., Kasparov S. Astrocytes control breathing through pH-dependent release of ATP. // Science. 2010. — Vol. 329, № 5991. — P. 571−575.
  107. Gross P.M. Circumventricular organ capillaries. // Prog. Brain Res. -1992. Vol. 91. — P. 219−233.
  108. Guerri C., Renau-Piqueras J. Alcohol, astroglia, and brain development. // Mol. Neurobiol. 1997. — Vol. 15, № 1. — P. 65−81.
  109. Guthrie P.B., KnaPenberger J., Segal M., Bennett M.V., Charles A.C., Kater S.B. ATP released from astrocytes mediates glial calcium waves. // J. Neurosci 1999. — Vol. 19. — P. 520−528.
  110. Hagemann T.L., Connor J.X., Messing A. Alexander disease-associated glial fibrillary acidic protein mutations in mice induce Rosenthal fiber formation and a white matter stress response. // J. Neurosci. — 2006. — Vol. 26, № 43. P. 11 162−11 173.
  111. Hainfellner J.A., Voigtlander T., Strobel T., Mazal P.R., Maddalena A.S., Aguzzi A., Budka H. Fibroblasts can express glial fibrillary acidicprotein (GFAP) in vivo. // J. Neuropathol. Exp. Neurol. —2001. Vol. 60, № 5. — P. 449−461.
  112. Halassa M.M., Florian C., Fellin T., Munoz J.R., Lee S.Y., Abel T., Haydon P.G., Frank M.G. Astrocytic modulation of sleep homeostasis and cognitive consequences of sleep loss. // Neuron. 2009. — Vol. 61, № 2. — P. 213−219.
  113. Hamby M.E., Sofroniew M.V. Reactive astrocytes as therapeutic targets for CNS disorders. // Neurotherapeutics. 2010. — Vol. 7, № 4. — P. 494−506.
  114. Harder D.R., Alkayed N.J., Lange A.R. et al. Functional hyperemia in the brain. Hypothesis for astrocyte-derived vasodilator metabolites. // Stroke. 1998. — Vol. 28. — P. 229−234.
  115. Hatfield J.S., Skoff R.P., Maisel H., Eng L. Glial fibrillary acidic protein is localized in the lens epithelium. // J. Cell Biol. 1984. — Vol. 98, № 5.-P. 1895−1898.
  116. Hausmann R., Betz P. Course of glial immunoreactivity for vimentin, tenascin and alphal-antichymotrypsin after traumatic injury to human brain. // Int. J. Legal Med. 2001. — Vol. 114, № 6. — P. 338−342.
  117. Hawkins B.T., Davis T.P. The blood-brain barrier/Neurovascular unit in health and disease. // Pharmacol. Rev. 2005. — Vol. 57, № 2. — P. 173 185.
  118. Hertz L., Zeilke H.R. Astrocytic control of glutamatergic activity: astrocytes as stars of the show // Trends. Neurosci. 2004. — Vol. 27. — P. 735−743.
  119. Hewett J.A. Determinants of regional and local diversity within the astroglial lineage of the normal central nervous system. // J. Neurochem. -2009.-Vol. 110, № 6.-P. 1717−1736.
  120. Higashi K., Fujita A., Inanobe A., Tanemoto M., Doi K., Kubo T., Kurachi Y. An inwardly rectifying K (+) channel, Kir4.1, expressed inastrocytes surrounds synapses and blood vessels in brain. // Am.
  121. J. Physiol. Cell Physiol. 2001. — Vol. 281, № 3. — P. 922−931.
  122. Holthoff K., Witte O.W. Directed spatial potassium redistribution in rat neocortex. // Glia. 2000. — Vol. 29, № 3. — P. 288−292.
  123. Hsiao V.C., Tian R., Long H., Der Perng M., Brenner M., Quinlan R.A., Goldman J.E. Alexander-disease mutation of GFAP causes filament disorganization and decreased solubility of GFAP. // J. Cell Sci. — 2005. -Vol. 118, № 9. — P. 2057−2065.
  124. Huang A. M., Lee E. H. Identification of a novel glial fibrillary acidic protein mRNA isotype related to memory retention in rate. // Neuroreport. -1997. Vol. 68, № 7. — P. 1619−1624.
  125. Huber J.D., Egleton R.D., Davis T.P. Molecular physiology and pathophysiology of tight junctions in the blood-brain barrier. // Trends. Neurosci. -2001. Vol. 24, № 12. — P. 719−725.
  126. Ito U., Nagasao J., Kawakami E., Oyanagi K. Fate of disseminated dead neurons in the cortical ischemic penumbra: ultrastructure indicating a novel scavenger mechanism of microglia and astrocytes. // Stroke. 2007. -Vol. 38, № 9. — P. 2577−2583.
  127. Jagadha V., Halliday W.C., Becker L.E. Glial fibrillary acidic protein (GFAP) in oligodendrogliomas: a reflection of transient GFAP expressionby immature oligodendroglia. // J. Neurol. Sci. 1986. — Vol. 13,4.-P. 307−311.
  128. Jakovcevic D., Harder D.R. Role of astrocytes in matching blood flow to neuronal activity. // Curr. Top. Dev. Biol. 2007. — Vol. 79. — P. 75−97.
  129. Johansson C.B., Lothian C., Molin M., Okano H., Lendahl U. Nestin enhancer requirements for expression in normal and injured adult CNS. // J. Neurosci. Res. 2002. — Vol. 69, № 6. — P. 784−794.
  130. Kang W., Hebert J.M. Signaling Pathways in Reactive Astrocytes, a Genetic Perspective. // Mol. Neurobiol. 2011. — Vol. 43, № 3. — P. 147 154.
  131. Kasantikul V., Shuangshoti S. Positivity to glial fibrillary acidic protein in bone, cartilage, and chordoma. // J. Surg. Oncol. — 1989. Vol. 41,№ l.-P. 22−26.
  132. Kepes J.J., Perentes E. Glial fibrillary acidic protein in chondrocytes of elastic cartilage in the human epiglottis: an immunohistochemical study with polyvalent and monoclonal antibodies. // Anat. Rec. 1988. — Vol. 220, № 3. — P. 296−299.
  133. Kielian T. Toll-like receptors in central nervous system glial inflammation and homeostasis. // J. Neurosci. Res. 2006. — Vol. 83, № 5. -P. 711−730.
  134. Kimelberg H.K. The problem of astrocyte identity. // Neurochem. Int. -2004.-Vol. 45, № 2−3.-P. 191−202.
  135. Kobayashi H., Yanagita T., Yokoo H., Wada A. Molecular mechanisms and drug development in aquaporin water channel diseases: aquaporins in the brain. //J. Pharmacol. Sci. 2004. — Vol. 96, № 3 — P. 264 270.
  136. Koehler R.C., Gebremedhin D., Harder D.R. Role of astrocytes in cerebrovascular regulation. // J. API. Physiol. — 2006. — Vol. 100, № 1. — P. 307−317.
  137. Kofuji P., Newman E.A. Potassium buffering in the central nervous system. // Neuroscience. 2004. — Vol. 129, № 4. — P. 1045−1056.
  138. Kriegstein A., Alvarez-Buylla A. The glia nature of embyionic and adult neural stem cells. // Ann.Rev.Neurosci. 2009. — Vol. 32. — P. 149 184.
  139. Kurosinski P., Gotz J. Glial cells under physiologic and pathologic conditions. // Arch. Neurol. 2002. — Vol. 59, № 10. — P. 1524−1528.
  140. Laird M.D., Vender J.R., Dhandapani K.M. OPosing roles for reactive astrocytes following traumatic brain injury. // Neurosignals. 2008. — Vol. 16, № 2−3.-P. 154−164.
  141. Laming P.R., Kimelberg H., Robinson S., Salm A., Hawrylak N., Miiller C., Roots B., Ng K. Neuronal-glial interactions and behaviour. // Neurosci. Biobehav. Rev. 2000. — Vol. 24, № 3. — P. 295−340.
  142. Lee S.J., Zhou T., Choi C., Wang Z., Benveniste E.N. Differential regulation and function of Fas expression on glial cells. // J. Immunol. -2000.-Vol. 164, № 3.-P. 1277−1285.
  143. Lendahl U., Zimmerman L.B., McKay R.D. CNS stem cells express a new class of intermediate filament protein. // Cell. 1990. — Vol. 60, № 4. -P. 585−595.
  144. Lepekhin E.A., Eliasson C., Berthold C.H., Berezin V., Bock E., Pekny M. Intermediate filaments regulate astrocyte motility. // J. Neurochem. 2001. — Vol. 79, № 3. — P. 617−625.
  145. Li R., Messing A., Goldman J.E., Brenner M. GFAP mutations in Alexander disease. // Int. J. Dev. Neurosci. 2002. — Vol. 20, № 3−5. — P. 259−268.
  146. Li C., Zhao R., Gao K., Wei Z., Yin M.Y., Lau L.T., Chui D., Hoi Yu A.C. Astrocytes: implications for neuroinflammatory pathogenesis of Alzheimer’s disease. // Curr. Alzheimer Res. 2011. — Vol. 8, № 1. — P. 6780.
  147. Liesi P. Laminin and fibronectin in normal and malignant neuroectodermal cells. // Med. Biol. 1984. — Vol. 62, № 3. — P. 163−180.
  148. Liu X., Bolteus A.J., Balkin D.M., Henschel O., Bordey A. GFAP-expressing cells in the postnatal subventricular zone display a unique glial phenotype intermediate between radial glia and astrocytes. // Glia. 2006. -Vol. 54, № 5.-P. 394−410.
  149. Ludwin S.K., Kosek J.C., Eng L.F. The topographical distribution of S-100 and GFA proteins in the adult rat brain: an immunohistochemical study using horseradish peroxidase-labelled antibodies. // J. Comp. Neurol. -1976. Vol. 165, № 2. — P. 197−207.
  150. Magistretti P.J., Pellerin L. Cellular mechanisms of brain energy metabolism and their relevance to functional brain imaging. // Phil. Trans. R. Soc. Lond. B. 1999. — Vol. 354. — P. 1155−1163.
  151. Marin-Padilla M. Ontogenesis of the pyramidal cell of the mammalian neocortex and developmental cytoarchitectonics. A unifying theory. // J.Comp.Neurol. 1992. — Vol. 321, № 2. — P. 223−240.
  152. Marin-Padilla M. Three-dimensional structural organization of layer I of the human cerebral cortex. A Golgi study. // J.Comp.Neurol. 1990. -Vol. 229.-P. 89−105.
  153. Mauch D.H., Nagler K., Schumacher S., Goritz C., Muller E.C., Otto A., Pfrieger F.W. CNS synaptogenesis promoted by glia-derived cholesterol. // Science. -2001. Vol. 294, № 5545. — P. 1354−1357.
  154. Mignot C., Boespflug-Tanguy O., Gelot A., Dautigny A., Pham-Dinh D., Rodriguez D. Alexander disease: putative mechanisms of an astrocytic encephalopathy. // Cell Mol. Life Sei. 2004. — Vol. 61, № 3. — P. 369−385.
  155. Nadkarni S., Jung P., Levine H. Astrocytes optimize the synaptic transmission of information. // PLoS. Comput. Biol. 2008. — Vol. 4, № 5 -P.1−11.
  156. Nakamura T., Xi G., Hua Y., Hoff J.T., Keep R.F. Nestin expression after experimental intracerebral hemorrhage. // Brain Res. 2003. — Vol. 981, № 1−2-P. 108−117.
  157. Newman E.A. High potassium conductance in astrocyte endfeet. // Science. 1986 — Vol. 233, № 4762. — P. 453−454.
  158. Newman E.A. New roles for astrocytes: regulation of synaptic transmission. // Trends. Neurosci. — 2003. Vol. 26. — P. 536−542.
  159. Norenberg M.D., Martinez-Hernandez A. Fine structural localization of glutamine synthetase in astrocytes of rat brain. // Brain Res. 1979. -Vol. 161, № 2. -P. 303−310.
  160. Nortje J., Menon D.K. Traumatic brain injury: physiology, mechanisms, and outcome. // Curr. Opin. Neurol. 2004. — Vol. 17, № 6. -P. 711−718.
  161. Oberheim N.A., Wang X., Goldman S., Nedergaard M. Astrocytic complexity distinguishes the human brain. // Trends. Neurosci. — 2006. — Vol. 29, № 10.-P. 547−553.
  162. Ong W.Y., Garey L.J., Reynolds R. Distribution of glial fibrillary acidic protein and glutamine synthetase in human cerebral cortical astrocytes~a light and electron microscopic study. // J. Neurocytol. 1993. — Vol. 22, № 10. — P. 893−902.
  163. Papadopoulos M.C., Verkman A.S. Aquaporin-4 and brain edema. // Pediatr. Nephrol. 2007. — Vol. 22, № 6. — P. 778−784.
  164. Pardridge W.M. Blood-brain barrier biology and methodology. // J. Neurovirol. 1999. — Vol. 5, № 6. — P. 556−569.
  165. Park E., Bell J.D., Baker A J. Traumatic brain injury: can the consequences be stoped? // Canadian Med. Association J. — 2008. — Vol. 178, № 9.-P. 1163−1170.
  166. Parpura V., Basarsky T.A., Liu F., Jeftinija K., Jeftinija S., Haydon P.G. Glutamate-mediated astrocyte-neuron signaling. // Nature. 1994. -Vol. 369, № 6483. — P. 744−747.
  167. Paulson O.B., Newman E.A. Does the release of potassium from astrocyte endfeet regulate cerebral blood flow? // Science. 1987. — Vol. 237.-P. 896−897.
  168. Paulus W. GFAP, Ki67 and IDH1: perhaps the golden triad of glioma immunohistochemistry. // Acta Neuropathol. 2009. — Vol. 118, № 5. — P. 603−604.
  169. Pekny M. Astrocytic intermediate filaments: lessons from GFAP and vimentin knock-out mice. // Prog. Brain Res. 2001. — Vol. 132. — P. 23−30.
  170. Pekny M., Nilsson M. Astrocyte activation and reactive gliosis. // Glia. 2005. — Vol. 50, № 4. — P. 427−434.
  171. Pfrieger F.W., Barres B.A. Synaptic efficacy enhanced by glial cells in vitro. // Science. 1997. — Vol. 277, № 5332. — P. 1684−1687.
  172. Quinlan R.A., Brenner M., Goldman J.E., Messing A. GFAP and its role in Alexander disease. // Exp. Cell Res. 2007. — Vol. 313. — P. 20 772 087.
  173. Rash J.E., Yasumura T., Dudek F.E., Nagy J.I. Cell-specific expression of connexins and evidence of restricted gap junctional coupling between glial cells and between neurons. // J. Neurosci. — 2001. Vol. 21, № 6.-P. 1983−2000.
  174. S. A., Helman L. J., Allison A., Israel M. A. (1989). Molecular cloning and primary structure of human glial fibrillary acidic protein. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1989. — Vol. 86. — P. 5178−5182.
  175. Ribotta M.G., Menet V., Privat A. Glial scar and axonal regeneration in the CNS: lessons from GFAP and vimentin transgenic mice. // Acta Neurochir. SuPl. 2004. — Vol. 89. — P. 87−92.
  176. Ronnevi L.-O. Origin of the glial processes responsible for the spontaneous postnatal phagocytosis of boutons on cat spinal motoneurons. // Cell Tissue Res. 1978. — Vol. 189. — P. 203−217.
  177. Rubin L.L., Hall D.E., Porter S., Barbu K., Cannon C., Horner H.C., Janatpour M., Liaw C.W., Manning K., Morales J., Tanner L., Tomaselli K.
  178. J., Bard F. A cell culture model of the blood-brain barrier. // J.
  179. Cell Biol.-1991.-Vol. 115, № 6.-P. 1725−1735.
  180. Sabbatini M., Barili P., Bronzetti E., Zaccheo D., Amenta F. Age-related changes of glial fibrillary acidic protein immunoreactive astrocytes in the rat cerebellar cortex. // Mech. Ageing Dev. 1999. — Vol. 108, № 2. -P. 165−172.
  181. Sanderson M.J., Charles A.C., Boitano S., Dirksen E.R. Mechanisms and function of intercellular calcium signaling. // Mol. Cell. Endocrinol. -1994.-Vol. 98.-P. 173−187.
  182. Sarnat HB. Regional differentiation of the human fetal ependyma: immunocytochemical markers. // J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1992. -Vol. 51, № 1.-P. 58−75.
  183. Shapiro S.D. Matrix metalloproteinase degradation of extracellular matrix: biological consequences. // Curr. Opin. Cell Biol. 1998. — Vol. 10, № 5.-P. 602−608.
  184. Schmechel S.E., Rakic P. A Golgi study of. radial glial cells in developing monkey telencephalon: morphogenesis and transformation into astrocytes. // Anat. Embryol. 1979. — Vol. 156. — P. 115−152.
  185. Shin T.K., Lee Y.D., Sim K.B. Embryonic intermediate filaments, nestin and vimentin, expression in the spinal cords of rats with experimental autoimmune encephalomyelitis. // J. Vet. Sci. 2003. — Vol. 4, № 1. — P. 913.
  186. Silver J., Miller J.H. Regeneration beyond the glial scar. // Nat. Rev. Neurosci. 2004. — Vol. 5, № 2. — P. 146−156.
  187. Simard M., Arcuino G., Takano T. Signalling at the gliovascular interface. // J. Neurosci. 2003. — Vol. 23, № 27. — P. 9254−9262.
  188. Simpson I.A., Carruthers A., Vannucci SJ. SuPly and demand in cerebral energy metabolism: the role of nutrient transporters. // J. Cereb. Blood Flow Metab. -2007. Vol. 27, № 11. — P. 1766−1791.
  189. Sofroniew M.V. Reactive astrocytes in neural repair and protection. // Neuroscientist. 2005. — Vol. 11, № 5. — P. 400−407.
  190. Somjen G.G. Nervenkitt: notes on the history of the concept of neuroglia. // Glia. 1988. — Vol. 1, № 1. — P. 2−9.
  191. Sonnewald U., Qu H., Aschner M. Pharmacology and toxicology of astrocyte-neuron glutamate transport and cycling. // J. Pharmacol. Exp. Ther. -2002.-Vol. 301.-P. 1−6.
  192. Sontheimer H. Voltage-dependent ion channels in glial cells. // Glia. -1994.-Vol. 11, № 2.-P. 156−172.
  193. Sontheimer H., Fernandez-Marques E., Ullrich N., PaPas C.A., Waxman S.G. Astrocyte Na+ channels are required for maintenance of Na+/K (+)-ATPase activity. // J. Neurosci. 1994. — Vol. 14. — P. 24 642 475.
  194. Stamatovic S. M., Keep R. F., Andjelkovic A. V. Brain Endothelial Cell-Cell Junctions: How to «Open» the Blood Brain Barrier. // Curr. Neuropharm. 2008. — Vol. 6. — P. 179−192.
  195. Stitt J.T. Passage of immunomodulators across the blood-brain barrier. // Yale J. Biol. Med. 1990. — Vol. 63, № 2. — P. 121−131.
  196. Strnad P., Stumptner C., Zatloukal K., Denk H. Intermediate filament cytoskeleton of the liver in health and disease. // Histochem. Cell Biol. -2008. Vol. 129, № 6. — P. 735−749.
  197. Suarez I., Bodega G., Fernandez B. Glutamine synthetase in brain: effect of ammonia. // Neurochem. Int. 2002. — Vol. 41. — P. 123−142.
  198. Swanson R.A., Ying W., KauPinen T.M. Astrocyte influences on ischemic neuronal death. // Curr. Mol. Med. 2004. — Vol. 4, № 2. — P. 193 205.
  199. Takano T., Oberheim N., Cotrina M.L., Nedergaard M. Astrocytes and ischemic injury. // Stroke. 2009. — Vol. 40, № 3. — P. 8−12.
  200. Tsang K.K., Whitfield P.C. Traumatic brain injury: review of current management strategies. // Br. J. Oral Maxillofac. Surg. — 2011 Apr 27. Epub ahead of print.
  201. Unterberg A.W., Stover J., Kress B., Kiening K.L. Edema and brain trauma. // Neuroscience. 2004. — Vol. 129, № 4. — P. 1021−1029.
  202. Vaca K., Wendt E. Divergent effects of astroglial and microglial secretions on neuron growth and survival. // Exp Neurol. 1992. — Vol. 118, № l.-P. 62−72.
  203. Verkhratsky A., Kirchhoff F. Glutamate-mediated neuronal-glial transmission. // J. Anat. 2007. — Vol.210, № 6 — P. 651−660.
  204. Verkhratsky A., Orkand R. K., Kettenmann H. Glial Calcium: Homeostasis and Signaling Function. // Physiol. Rew. — 1998. -Vol. 78, № 1.-P. 99−141.
  205. Vitellaro-Zuccarello L., Mazzetti S., Bosisio P., Monti C., De Biasi S. Distribution of Aquaporin 4 in rodent spinal cord: relationship with astrocyte markers and chondroitin sulfate proteoglycans. // Glia. — 2005. — Vol. 51, № 2.-P. 148−159.
  206. Waagepetersen H.S., Sonnewald U., Schousboe A. The GABA paradox: multiple roles as metabolite, neurotransmitter, and neurodifferentiative agent. // J. Neurochem. 1999. — Vol. 73, № 4. — P. 1335−1342.
  207. Warr O., Takahashi M., Attwell D. Modulation of extracellular glutamate concentration in rat brain slices by cystine-glutamate exchange. // J. Physiol. 1999. — Vol. 514. — P. 783−793.
  208. Wiencken A.E., Casagrande V.A. Endothelial nitric oxide synthetase (eNOS) in astrocytes: another source of nitric oxide in neocortex. // Glia. — 1999. Vol. 26, № 4. — P. 280−290.
  209. Xu H.L., Pelligrino D.A. ATP release and hydrolysis contribute to rat pial arteriolar dilatation elicited by neuronal activation. // Exp. Physiol. -2007. Vol. 92, № 4. — P. 647−651.
  210. Yang P.L., He X.J., Li H.P., Lan B.S., Wang D., Wang G.Y., Xu S.Y., Liu Y.H. Reactive astrocytes and nestin expression in adult rats following spinal cord compression injury. // Nan. Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao. -2008. Vol. 28, № 10. — P. 1752−1755.
  211. Ye Z.C., Wyeth M.S., Baltan-Tekkok S., Ransom B.R. Functional hemichannels in astrocytes: a novel mechanism of glutamate release. // J. Neurosci. 2003. — Vol. 23. — P. 3588−3596.
  212. Zhu H., Dahlstrom A. Glial fibrillary acidic protein-expressing cells in the neurogenic regions in normal and injured adult brains. // J. Neurosci. Res. 2007. — Vol. 85, № 12. — P. 2783−2792.
  213. Zonta M., Angulo M.C., Gobbo S., Rosengarten B., Hossmann K.A., Pozzan T., Carmignoto G. Neuron-to-astrocyte signaling is central to the dynamic control of brain microcirculation. // Nat. Neurosci. — 2003. Vol. 6.-P. 43−50.
  214. Zonta M., Carmignoto G. Calcium oscillations encoding neuron-to-astrocyte communication. // J. Physiol. 2002. — Vol. 96. — P. 193−198.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!