Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Развитие стекловидного тела глаза человека — молекулярно-биологические аспекты

Диссертация: Развитие стекловидного тела глаза человека — молекулярно-биологические аспекты
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Апробация работы. Результаты работы были представлены и обсуждены на более чем 20 российских и международных форумах, съездах, симпозиумах, конференциях и коллоквиумах, включая следующие: Международная научно-практическая конференция «Пролиферативный синдром в офтальмологии» (Москва, 2004, 2006, 2008, 2010) — Международный симпозиум «Стволовые клетки, регенерация, клеточная терапия… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Общая характеристика стекловидного тела глаза позвоночных
    • 1. 2. Развитие стекловидного тела глаза человека
      • 1. 2. 1. Клетки стекловидного тела
    • 1. 3. Значение стекловидного тела в развитии глаза
    • 1. 4. Биохимическая характеристика стекловидного тела
  • ГЛАВА 2. Материалы и методы
    • 2. 1. Исследование глаз человека
      • 2. 1. 1. Препарирование глаз
      • 2. 1. 2. Исследование стекловидного тела с применением спектрально-флуоресцентного зонда ДЭЦ
      • 2. 1. 3. Измерение концентраций АФП и альбумина в стекловидном теле
      • 2. 1. 4. Гель-электрофорез и Вестерн блот анализ
      • 2. 1. 5. Ферментативная обработка стекловидного тела
      • 2. 1. 6. Высокоэффективная жидкостная хроматография
      • 2. 1. 7. Гистология
      • 2. 1. 8. Иммунохимия
    • 2. 2. Исследование внутренних сред глаза амфибий
  • ГЛАВА 3. Результаты
    • 3. 1. Разработка спектрально-флуоресцентных зондов для исследования внеклеточных сред организма
    • 3. 2. Исследование стекловидного тела и жидкости передней камеры у травяной лягушки Rana temporaria L
    • 3. 3. Исследование глаз плодов человека в развитии
      • 3. 3. 1. Спектроскопический анализ стекловидного тела с применением зонда ДЭЦ
      • 3. 3. 2. Гель-электрофорез и Вестерн блоттинг
      • 3. 3. 3. Концентрация и общее содержание альбумина в стекловидном теле плодов человека
      • 3. 3. 4. АФП в стекловидном теле глаза плодов человека
      • 3. 3. 5. Влияние ферментов на компоненты стекловидного тела
      • 3. 3. 6. Определение каротиноидов в стекловидном теле и хрусталике плодов человека
      • 3. 3. 7. Концентрация и общее содержание каротиноидов в стекловидном теле плодов человека
      • 3. 3. 8. Корреляция между содержанием альбумина и каротиноидов в стекловидном теле глаза человека в пренатальном развитии
    • 3. 4. Гистологическое исследование стекловидного тела, сетчатки и хрусталика
      • 3. 4. 1. Гистогенез стекловидного тела, цилиарных складок и сетчатки
      • 3. 4. 2. Митозы в сетчатке у плодов человека
      • 3. 4. 3. Гистогенез хрусталика
    • 3. 5. Иммунохимическая характеристика сетчатки и хрусталика
      • 3. 5. 1. Локализация p-III тубулина в сетчатке и хрусталике
      • 3. 5. 2. Локализация рековерина в сетчатке
      • 3. 5. 3. Трансформирующий фактор роста бета 2 (TGF-P2)
  • ГЛАВА 4. Обсуждение
    • 4. 1. Стекловидное тело человека
      • 4. 1. 1. Альбумин и АФП
      • 4. 1. 2. Каротиноиды
      • 4. 1. 3. Каротиноиды и развитие макулы
      • 4. 1. 4. Роль каротиноидов в предохранении сетчатки от повреждающих факторов
      • 4. 1. 5. Каротиноиды и развитие хрусталика
      • 4. 1. 6. Р"Ш тубулин как депонирующая и стабилизирующая молекула для каротиноидов в сетчатке и хрусталике
      • 4. 1. 7. Тубулины как шапероны
      • 4. 1. 8. ТвРЬе1а2 в сетчатке и хрусталике как фактор регуляции зародышевого и дефинитивного кровоснабжения
      • 4. 1. 9. Перспективы использования зондов в последующих доклинических исследованиях глаза
    • 4. 2. Сравнительные исследования стекловидного тела
  • ВЫВОДЫ

Развитие стекловидного тела глаза человека — молекулярно-биологические аспекты (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Механизмы, лежащие в основе морфогенеза глаза, до сих пор остаются до конца не выясненными и являются актуальной проблемой биологии развития. Стекловидное тело — это один из важнейших факторов, участвующих в регуляции морфогенеза и роста тканей глаза. Создаваемое им внутриглазное давление осуществляет в раннем развитии корреляцию правильного соотношения структур глаза, характеризующихся разными скоростями роста и временем их созревания, обеспечивает функциональное соответствие всех частей этого органа на протяжении онтогенеза.

Все данные о роли фактора натяжения в развитии глаза, занимающие значительное место в экспериментальной эмбриологии, были получены в опытах, в которых тем или иным путём достигались нарушения условий для формирования и накопления массы стекловидного тела (Сои1ошЬге, 1956, 1969; Строева и др., 1989). При этом изучению молекулярных компонентов стекловидного тела в развитии глаза, за небольшим исключением, практически не уделялось внимания. Всестороннее исследование, в том числе на молекулярном уровне, периодов развития стекловидного тела как важного компонента становления структуры и функции глаза, и особенно глаза человека, лежит в русле актуальных проблем биология развития.

Несмотря на обилие работ, посвященных исследованиям глаза, стекловидное тело все еще остается наименее изученной структурой. Пока нет полного представления о процессах преобразования его матрикса в норме и при патологии. Практически отсутствуют представления о том, какие из белков сложной системы внеклеточного матрикса стекловидного тела играют первостепенную роль на каждом этапе его развития и дифференцировки клеток, окружающих его тканей (сетчатки и хрусталика). И хотя для изучения стекловидного тела применяются разные методы, они, как правило, трудоемки, требуют больших затрат времени и часто связаны с приемами, приводящими к значительным изменениям макромолекул, вплоть до их денатурации. Поэтому необходим поиск новых методов, которые бы обеспечивали быстрый и удобный анализ отдельных компонентов стекловидного тела. К настоящему времени достаточно хорошо изучены такие компоненты стекловидного тела глаза человека как коллагены, гиалуроновая кислота (Bishop, 2000), цитокины (Tripathi et al., 1991) и др. Однако такие важные белки как альбуминтранспортный белок, и альфа-фетопротеин (АФП) — специфический эмбриональный белок, в стекловидном теле в пренатальном развитии глаза человека не исследовали. Каротиноиды, которые характерны для тканей глаза взрослого человека, в глазах плодов человека также практически не изучались.

Перспективным подходом для выявления молекул во внеклеточном матриксе является применение спектрально-флуоресцентных зондовсоединений, изменяющих спектры поглощения и флуоресцентные свойства при нековалентном взаимодействии с макромолекулами. Характерным свойством таких зондов обычно является резкий рост флуоресценции при связывании в комплексе с макромолекулами. В качестве спектрально-флуоресцентных зондов могут быть использованы полиметиновые (цианиновые) и близкие к ним скварилиевые красители, т.к. известно, что фотофизические и фотохимические свойства данных красителей сильно зависят от свойств окружающей их среды. Эти красители обладают уникальной особенностью образовывать агрегаты различного строения (в частности, димеры, Ни J-агрегаты), свойства которых также определяются молекулярным окружением (Herz, 1977). Изучение взаимодействия подобных красителей-зондов с различными компонентами биологических систем может дать ценную информацию о типах присутствующих молекул, а также их содержании в изучаемой системе. Поиск и разработка новых красителей-зондов для прицельного и быстрого исследования компонентов стекловидного тела в состоянии, близком к нативному, является важной и актуальной проблемой.

Цель работы: изучение молекулярных компонентов стекловидного тела глаза человека и функционально связанных с ним тканей — сетчатки и хрусталика в пренатальном развитии.

Достижение цели требовало решения следующих задач:

1) провести комплексное исследование важнейших компонентов стекловидного тела (альбумина и коллагенов) глаза человека и ряда позвоночных животных на основе разработанных спектрально-флуоресцентных зондов;

2) исследовать динамику изменения содержания альбумина в стекловидном теле глаза человека в пренатальном развитии с помощью спектрально-флуоресцентного зонда, специфичного для альбумина человека;

3) исследовать влияние ряда гидролитических ферментов на молекулы альбумина и коллагена в стекловидном теле глаза плодов человека при помощи разработанного зонда;

4) провести анализ состава стекловидного тела на присутствие в нем специфического эмбрионального белка АФП;

5) исследовать, присутствуют ли в стекловидном теле и хрусталике глаза плодов человека каротиноиды;

6) исследовать локализацию рековерина, Р-Ш тубулина и ТСРЬе1а2 в сетчатке, а также Р-Ш тубулина и ТОБЬе1а2 в хрусталике, в пренатальном развитии человека.

Научная новизна и теоретическая значимость работы. — Разработаны спектрально-флуоресцентные зонды на основе полиметиновых красителей, один из которых (пиридиниевая соль 3,3'-ди-(у-сульфопропил)-4,5,4', 5'-дибензо-9-этилтиакарбоцианин-бетаина (ДЭЦ)) является специфичным только для сывороточного альбумина человека.

— Зонд ДЭЦ способен различать коллагены разных типов, но не взаимодействует с АФП и гиалуроновой кислотой, входящими в состав стекловидного тела плодов человека.

— Впервые в стекловидном теле у плодов человека выявлен альбумин и исследована динамика его содержания в пренатальном развитии глаза.

— Выявлено, что наряду с альбумином в стекловидном теле глаза плодов человека присутствует АФП.

— Впервые в стекловидном теле и хрусталике в пренатальном развитии глаза человека обнаружены каротиноиды (в стекловидном теле — лютеин и его окисленные формыв хрусталике — окисленные формы лютеина).

— Исследована динамика изменения локализации белков рековерина, Р-Ш тубулина и ростового фактора ТвРЬе1а2 в сетчатке и Р-Ш тубулина и ТОРЬе1а2 в хрусталике по мере развития глаза.

Научная и практическая значимость работы.

Результаты работы имеют фундаментальное значение и практический выход для биологических и экспериментально-медицинских исследований и могут быть использованы широким кругом исследователей в различных областях биологической и медицинской науки. В частности, они могут быть применены в следующих научных и практических областях:

— для качественной и количественной оценки альбумина и коллагена во внеклеточных средах организма и для оценки молекул внеклеточного матрикса в условиях эксперимента с помощью разработанных красителей-зондов;

— для оценки коллагена и альбумина в стекловидном теле в экспериментах после воздействия гидролитических ферментов, применяемых в хирургической практике и ферментной терапии;

— результаты работы способствуют расширению знаний о функционально значимых молекулах стекловидного тела (альбумине, АФП, каротиноидах), что важно для более глубокого изучения развития глаза человека;

— сопоставление стадий развития стекловидного тела и соответствующая характеристика дифференцировки сетчатки и хрусталика необходимы для понимания основных этапов развития глаза на молекулярном уровне;

— полученные результаты могут быть использованы в лекционных курсах по биологии развития, эмбриологии, клеточной биологии, физиологии развития, биофизике, развитию глаза человека.

Вклад автора. Результаты работы получены автором или при его непосредственном участии в планировании, проведении и обсуждении экспериментов и подготовке публикаций. Автором обоснованы и поставлены цели и задачи исследования, определены подходы к их решению, разработаны методики проведения экспериментов, предложены модели, интерпретированы полученные экспериментальные результаты, сформулированы основные выводы и научные положения. Имена соавторов указаны в соответствующих публикациях.

Положения, выносимые на защиту:

1. Зонд ДЭЦ селективен по отношению к сывороточному альбумину человека и способен взаимодействовать с основными типами коллагенов позвоночных.

2. Содержание альбумина в стекловидном теле глаза плодов человека имеет максимальное значение на 17−22-й неделях и снижается к 28-й неделе. АФП в стекловидном теле глаза плодов человека обнаруживается одновременно с альбумином на тех же стадиях развития.

3. В стекловидном теле присутствуют каротиноиды (лютеин) и его окисленные формы, в то время как в хрусталике — только окисленные формы лютеина. Наблюдается корреляция между содержанием альбумина и каротиноидов в стекловидном теле.

4. Специфический белок фоторецепторных клеток — рековерин выявляется в сетчатке начиная с 10-й недели пренатального развития.

5. Выявленные изменения локализации [3−1П тубулина отражают структурные и функциональные процессы, происходящие в сетчатке и хрусталике в пренатальном развитии.

6. Ростовой фактор TGFbeta2 в сетчатке и хрусталике локализован преимущественно на границе со стекловидным телом на всех исследованных сроках пренатального развития.

Апробация работы. Результаты работы были представлены и обсуждены на более чем 20 российских и международных форумах, съездах, симпозиумах, конференциях и коллоквиумах, включая следующие: Международная научно-практическая конференция «Пролиферативный синдром в офтальмологии» (Москва, 2004, 2006, 2008, 2010) — Международный симпозиум «Стволовые клетки, регенерация, клеточная терапия» (Санкт-Петербург, 2004) — Конференция молодых ученых Института биологии развития им. Н. К. Кольцова РАН (Москва, 2004, 2005, 2006) — Научно-практическая конференция «Регенеративная медицина и трансплантация тканей в офтальмологии» (Москва, 2005) — I и III Съезды физиологов СНГ (Сочи, 2005, Ялта, 2011) — FRIS-2005 (Chester, Great Britain, 2005) — Конференция «Биология стволовых клеток: фундаментальные аспекты» (Москва, 2005) — III Международное совещание и VI Школа по эволюционной физиологии" (Санкт-Петербург, 2006) — International Symposium on Molecular Photonics Devoted to the Memory of Acad. A.N. Terenin (St. Petersburg, Russia, 2006) — 2-я Научная конференция с участием стран СНГ «Современные проблемы физиологии и биохимии водных организмов» (Петрозаводск, 2007) — XXIII International Conference on Photochemistry (Cologne, Germany, 2007) — Симпозиум с международным участием «Клеточные, молекулярные и эволюционные аспекты морфогенеза» (Москва, 2007) — International Conference on Molecular and Nanoscale Systems for Energy Conversion (Moscow, Russia, 2007) — Научно-практическая конференция «Нанотехнологии в диагностике и лечении патологии органа зрения» (Москва, 2008) — V и VI Съезды Российского фотобиологического общества (Пущино, 2008, Шепси, 2011) — VI Сибирский физиологический съезд (Барнаул, 2008) — IV и V Российские симпозиумы «Белки и пептиды» (Казань, 2009, Петрозаводск, 2011) — International Conference «Organic Nanophotonics» (ICON-Russia 2009) — III и.

IV Международные научно-практические конференции «Актуальные проблемы биологии, нанотехнологий и медицины» (Ростов-на-Дону, 2009, 2011) — Российский общенациональный офтальмологический форум с международным участием (Москва, 2009) — Международная научная конференция по биоорганической химии, биотехнологии и бионанотехнологии, посвященная 75-летию со дня рождения академика Ю. А. Овчинникова (Москва-Пущино,.

2009) — SPIE Photonics West. BIOS. Conf.: Ophthalmic Technologies (USA, 2009,.

2010) — XXI Съезд физиологического общества имени И. П. Павлова (Калуга, 2010) — Седьмой международный междисциплинарный конгресс «Нейронаука для медицины и психологии» (Судак, 2011).

Публикации. По теме диссертации публиковано 29 статей, в том числе в списке работ, соответствующих Перечню ВАК, и в рецензируемых иностранных изданиях — 25, в сборниках научных трудов — 4.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из Введения, Обзора литературы, Материалов и методов, Результатов, Обсуждения, Выводов, Списка литературы. Работа изложена на 273 страницах, содержит 87 рисунков, 12 таблиц. Список цитируемой литературы включает 323 наименования, из них 296 иностранных источников.

ВЫВОДЫ.

1. Для изучения молекулярного состава стекловидного тела глаза позвоночных разработаны спектрально-флуоресцентные зонды ДЭЦ (цианиновый краситель) и СКК (скварилиевый краситель). ДЭЦ эффективно и специфически взаимодействует с альбумином человека, а также с коллагенами позвоночных, позволяя выявлять коллагены разных типов. ДЭЦ не взаимодействует с АФП и гиалуроновой кислотой, что позволяет в их присутствии определять альбумин и коллагены. С альбумином человека специфически связываются оба зонда. СКК эффективно взаимодействует с сывороточными альбуминами изученных животных.

2. Содержание альбумина в стекловидном теле глаз плодов человека на 17−22-й неделях значительно превышает его содержание в стекловидном теле глаза взрослого человека, а затем снижается к 28−30 неделям пренатального развития до уровня взрослого. На всех исследованных стадиях одновременно с альбумином в стекловидном теле плодов человека обнаружен альфа-фетопротеин.

3. В стекловидном теле плодов человека обнаружены каротиноиды (лютеин) и окисленные формы лютеина с максимальным содержанием на 16−22-й неделях. Количество каротиноидов снижается к 28-й неделе, и с 30-й недели в стекловидном теле они не обнаруживаются. В хрусталике обнаружены только окисленные формы лютеина.

4. Между содержанием альбумина и каротиноидов в стекловидном теле наблюдается корреляция. Повышенное содержание альбумина и каротиноидов совпадает с периодом интенсивного роста глаза.

5. Разработанный зонд ДЭЦ позволил выявить селективное действие гидролитических ферментов на компоненты стекловидного тела — альбумин и коллаген. Обоснована возможность применения ДЭЦ для оценки состояния стекловидного тела после ферментативного вмешательства при лазерной хирургии и различных фармакологических воздействиях.

6. На стадиях развития, для которых характерно высокое содержание в стекловидном теле альбумина, АФП и каротиноидов, в сетчатке выявляются ?-III тубулин, TGFbeta2 и рековерин, а в хрусталике выявляются ?-III тубулин и TGFbeta2 — белки, необходимые для морфогенеза и дифференцировки этих структур глаза. Изменение локализации этих белков в процессе дифференцировки сетчатки и хрусталика отражает морфогенетические события в этих структурах.

7. Морфогенетические процессы в развитии глаза, в регуляции которых принимают участие альбумин и каротиноиды, завершаются на 28-й неделе. Важность и завершенность этих процессов подтверждается возможностью нормального развития глаза у преждевременно рожденных 7-месячных младенцев.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.И., Шапиро Б.И. J-агрегация тиакарбоцианина в водно-желатиновых растворах. Химия высоких энергий. 2005. Т. 39. № 6. С. 467 471.
  2. П.В., Ткачук В. А. Рецепторы и внутриклеточный кальций. М.: Наука, 1994. С. 168−171.
  3. Г. Г. Замещение стекловидного тела в хирургии глаза. 1973. Москва. Медицина. 160 с.
  4. И.А., Григорьев И. С. Динамика и жизненный цикл микротрубочек в клетке. Цитология и генетика. 2003. Т. 37. № 2. С. 22−38.
  5. Е.А., Шихвердиева А. Ш., Васильев A.B., Терских В. В. Фибробласты стимулируют эпителизацию коллагенового геля. Изв. РАН. Сер. биол. 2002. № 4. С. 421−426.
  6. H.A., Ищенко A.A., Кувшинский Н. Г. Фотоника молекулярных полупроводниковых композитов на основе органических красителей. Киев: Наукова думка. 2005. 296 с.
  7. В.Ф. Патология глаз. Ферменты и ингибиторы. Санкт-Петербург: «Стройпечать». 1996. 240 с.
  8. A.M., Некрасова Э. Н., Филиппов П. П., Новый специфичный для фоторецепторных клеток белок с молекулярной массой 26 кДа, способный связываться с иммобилизованным делипидизированным родопсином. Биохимия. 1991. Т. 56. С. 225−229.
  9. Г. Е. Флуоресцентные зонды в исследовании клеток, мембран и липопротеинов. М.: Наука, 1989. 277 с.
  10. Г. Е. Развитие исследований связывающих центров альбумина. В кн. «Альбумин сыворотки крови в клинической медицине». Под. ред. Ю. А. Грызунова и Г. Е. Добрецова. «ГЭОТАР», Москва, 1998. С. 20−27.
  11. H.A., Рыков В. А., Потехин В. К., Савиных В. И., Чирикова Т. С. Сравнительная характеристика белков стекловидного тела глаза упозвоночных. Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 1985. Т. 21. № 2. С. 130−133.
  12. Г. Р., Островский М. А. Молекулярные механизмы зрительной рецепции. Москва, «Наука», 2002. 280 с.
  13. М.Н., Грызунов Ю. А. Строение молекулы альбумина и ее связывающих центров. В кн.: Альбумин сыворотки крови в клинической медицине. Ред. Ю. А. Грызунов и Г. Е. Добрецов. Книга 2. Москва, «ГЭОТАР», 1998. С. 28−51.
  14. Н.Т., Терентьев A.A. Альфа-фетопротеин и факторы роста. Структурно-функциональные взаимоотношения и аналогии. Успехи биологической химии. 2006. Т. 46. С. 99−148.
  15. С.П. Зоология позвоночных. Москва, «Просвещение», 1973. С. 126−129.
  16. Т.И., Тиктопуло Е. И., Ильясова E.H., Кузнецова С. М. Структурно-термодинамические аспекты упаковки коллагеновых фибрилл. Биофизика. 2007. Т. 52. Вып. 5. С. 899−911.
  17. И.Г., Маркитантова Ю. В., Фирсова Н. В., Подгорный О. В., Смирнова Ю. А., Сухих Г. Т., Зиновьева Р. Д., Миташов В. И. Исследование экспрессии ?-III тубулина в тканях глаза человека в пренатальном развитии. Изв. РАН. Сер. биол. 2008. № 2. С. 146−150.
  18. А., ван Гейнинген Р. Биохимия глаза. Москва, «Медицина», 1968. 400 с.
  19. Л.А., Высоцкий И. Ю. Каротиноиды: структура, метаболизм, биологические функции, http://rudocs.exdat.com/docs/index-251 113.html
  20. .М. Эмбриология человека. Москва, Медгиз, 1959. С. 386−406.
  21. И.И. Воздействие свободных радикалов на сывороточный альбумин. В кн. «Альбумин сыворотки крови в клинической медицине». Под. ред. Ю. А. Грызунова и Г. Е. Добрецова. Москва, «ГЭОТАР», 1998. С. 187−201.
  22. О.Г. Морфогенез и врожденные аномалии глаза млекопитающих. Москва, Наука. 1971. 244 с.
  23. О.Г., Дольникова А. Э., Сологуб А. А., Белкин В. М. Иммуногистохимическое исследование локализации фибронектина при формировании сосудистой оболочки под влиянием пигментного эпителия у куриных зародышей. Онтогенез. 1989. Т.20. № 4. С. 350−356.
  24. А.И., Ильченко А. Я. Скварилиевые красители. Журнал научной и прикладной фотографии. 2000. Т. 45. № 6. С. 5−26.
  25. X. Карманный атлас анатомии человека на основе Международной номенклатуры. Минск, «Высшая школа», 1996. С. 354−368.
  26. В.А., Родионов С. Ю., Черкасов В. А., Малютина Н. Н., Орлов О. А. Альфа-фетопротеин. Екатеринбург, УрО РАН, 2004. 376 с.
  27. Adinolfi A., Adinolfi М., Lessof М.Н. Alpha-feto-protein during development and in disease. J. Med. Genetics. 1975. V. 12. P. 138−151.
  28. Akiya S., Uemura Y., Saga U. Morphological study on glycosaminoglycans in the developing human vitreous. Ophthalmic Res. 1984. V. 16. P. 145−149.
  29. Albe' E., Chang J-H., Azar N.F., Ivanov A.R., Azar D.T. Proteomic analysis of the hyaloid vascular system regression during ocular development. Journal of Proteome Research. 2008. V. 7. P. 4904^1913.
  30. Allen W.S., Otterbein E.C., Wardi A.H. Isolation and characterization of the sulfated glycosaminoglycans of the vitreous body. Biochim. Biophys. Acta. 1977. V. 498. P. 167−175.
  31. Allende M.A. Blood vessel growth in primate retinal development: relationship of retinal maturation with choriocapillaris growth and a role for TGF-B in the retina. A thesis submitted in fulfillment of the requirements for the degree of
  32. Doctor of Philosophy. Department of Clinical Ophthalmology and Save Sight Institute, University of Sydney, 2008. 243 p.
  33. Alves-Rodrigues A., Shao A. The science behind lutein. Toxicology Lett. 2004. V. 150. P. 57−83.
  34. Amaya L., Taylor D., Russell-Eggitt I., Nischal K.K., Lengyel D. The morphology and natural history of childhood cataracts. Surv. Ophthalmol. 2003. V. 48. P. 125−144.
  35. Arai H., Atomi Y. Chaperone activity of aB-crystallin suppresses tubulin aggregation through complex formation. Cell Structure and Function. 1997. V. 22. P. 539−544.
  36. Arciniegas A., Amaya L.E. Bio-structural model of the human eye. Ophthalmologica. 1980. V. 180. P. 207−211.
  37. Aubin M.L., Gionfriddo J.R., Khursheed R.M., Powell C.C. Analysis of aqueous humor obtained from normal eyes of llamas and alpacas. Am. J. Vet. Res. 2001. V. 62. P. 1060−1062.
  38. Aussel C., Uriel J., Mercier-bodard C. Rat alpha-fetoprotein: isolation, characterization and estrogen-binding properties. Biochimie. 1973. V. 55. P. 14 311 437.
  39. Ayad S., Weiss J.B. A new look at vitreous-humor collagen. Biochem J. 1984. V. 218. P. 835−840.
  40. Azuma N., Tajima S., Konomi H., Hida T., Akiya S., Uemura Y. Glycosaminoglycan and collagen distribution in the developing human vitreous. Graefe’s Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 1998. V. 236. P. 679−687.
  41. Balazs E.A. Fine structure of the developing vitreous. Int. Ophthalmol. Clin. 1975. V. 15. P. 53−63.
  42. Balazs E.A. The vitreous. In: The Eye. H. Davson, Ed. Academic Press. London. 1984. P. 533−589.
  43. Balazs E.A., Denlinger J.L. Aging changes in the vitreous. In: Aging and human visual function (eds. N. Dismukes, R. Sekular). Alan R. Liss. New York. 1982. P. 45−47.
  44. Balazs E.A., Laurent T.C., Laurent U.B.G. Studies on the structure of the vitreous body VI. Biochemical changes during development. J. Biol. Chem. 1959. V. 234. No. 2. P. 422−430.
  45. Balazs E.A., Sundblad L. Studies on the structure of the vitreous body. V. Soluble protein content. J. Biol. Chem. 1960. V. 235. № 7. P. 1973−1978.
  46. Balazs E.A., Toth L.Z., Ozanics V. Cytological studies on the developing vitreous as related to the hyaloid vessel system. Graefe’s Arch. Clin. Exp. Opthalmol. 1980. V. 213. No. 2. P. 71−85.
  47. Barber A.N. Embryology of the human eye. London. Kimpton. 1955. 236 p.
  48. Bassnett S., McNulty R. The effect of elevated intraocular oxygen on organelle degradation in the embryonic chicken lens. J. Exp. Biol. 2003. V. 206. P. 43 534 361.
  49. Baudouin C., Fredj-Reygrobellet D., Brignole F., Negre F., Lapalus P., Gastaud P. Growth factors in vitreous and subretinal fluid cells from patients with proliferative vitreoretinopathy. Ophthalmic Res. 1993. V. 25. No. 1. P. 52−59.
  50. Beebe D.C. Maintaining transparency: a review of the developmental physiology and pathophysiology of two avascular tissues. Semin. Cell Dev. Biol. 2008. V. 19. No. 2. P. 125−133.
  51. Beebe D., Garcia C., Wang X., Rajagopa R., Feldmeier M., Kim J.-Y., Chytil A., Moses H., Ashery-Padan R., Rauchman M. Contributions by members of the TGFbeta superfamily to lens development. Int. J. Dev. Biol. 2004. V. 48. P. 845 856.
  52. Bian Z. M, Elner S. G, Elner V.M. Regulation of VEGF mRNA expression and protein secretion by TGF-beta2 in human retinal pigment epithelial cells. Exp. Eye Res. 2007. V. 84. No. 5. P. 812−822.
  53. Birnholz J.C., Farrell E.E. Fetal hyaloid artery: timing of regression with US. Radiology. 1988. V. 166. N3. P. 781−783.
  54. Bishop P.N. Structural macromolecules and supramolecular organization of the vitreous gel. Progress in Retinal and Eye Res. 2000. V. 19. No. 3. P. 323−344.
  55. Bishop P.N., Ayad S., Reardon A.J., McLeod D., Sheehan J.K., Kielty C. Type VI collagen is present in human and bovine vitreous. Graefe’s Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 1996. V. 234. P. 710−713.
  56. Bishop P.N., Crossman M.V., McLeod D., Ayad S. Extraction and characterization of the tissue forms of collagen types II and IX from bovine vitreous. Biochem. J. 1994. V. 299. P. 497−505.
  57. Bishop P.N., Holmes D.F., Kadler K.E., McLeod D., Bos K.J. Age-related changes on the surface of vitreous collagen fibrils. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2004. V. 45. No. 4. P. 1041−1046.
  58. Bishop P.N., Takanosu M., Le Goff M., Mayne R. The role of the posterior ciliary body in the biosynthesis of vitreous humour. Eye. 2002. V. 16. P. 454−460.
  59. Bernstein P. S. New insights into the role of the macular carotenoids in age-related macular degeneration. Resonance Raman studies. 2002. Pure Appl. Chem., Vol. 74. No. 8. P. 1419−1425.
  60. Bernstein P. S., Balashov N.A., Tsong E.D., Rondo R.R. Retinal tubulin binds macular carotenoids. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1997. V. 38. No. 1. P. 167−175.
  61. Bernstein P. S, Khachik F., Carvalho L.S. Muir G.J., Zhao D.Y., Katz N.B. Identification and quantitation of carotenoids and their metabolites in the tissues of the human eye. Exp. Eye Res. 2001. V. 72. P. 215−223.
  62. Bertazolli-Filho R., Laicine E.M., Haddad A., Synthesis and secretion of transferrin by isolated ciliary epithelium of rabbit. Biochem. Biophys. Res. Comm. 2003. V. 305. P. 820−825.
  63. Blobe G.C., Schiemann W.P., Lodish H.F. Role of transforming growth factor b in human disease. N. Engl. J. Med. 2000. V. 342. P. 1350−1358.
  64. Bone R.A., Landrum J.T., Fernandez L., Tarsis S.L. Analysis of the macular pigment by HPLC: retinal distribution and age study. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1988. V. 29. No. 6. P. 843−849.
  65. Bone R.A., Landrum J.T., Friedes L.V., Gomez C.M., Kilburn M.D., Menendez E., Vidal I., Wang W. Distribution of lutein and zeaxanthin stereoisomers in the human retina. Exp. Eye Res. 1997. V. 64. No. 2. P. 211−218.
  66. Boswell B.A., VanSlyke J.K., Musil L.S. Regulation of lens gap junctions by TGFp. Mol. Biol. Cell. 2010. V. 21. No. 10. P. 1686−1697.
  67. Bozanic D., Bocina I., Sagara-Babic M. Involvement of cytoskeletal proteins and growth factor receptors during development of the human eye // Anat. Embryol. 2006. V. 211. P. 367−377.
  68. Bremer F.M., Rasquin F. Histochemical localization of hyaluronic acid in vitreous during embryonic development. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1998. V. 39. P. 2466−2469.
  69. Bringmann A., Pannicke Th., Grosche J, Francke M., Wiedemann P., Skatchkov S.N., Osborne N.N., Reichenbach A. Muller cells in the healthy and diseased retina. Progress in Retinal and Eye Research. 2006. V. 25. P. 397424.
  70. Brown L., Rimm E.B., Seddon J.M., Giovannucci E.L., Chasan-Taber L., Spiegelman D., Willett W.C., Hankinson S.E. A prospective study of carotenoid intake and risk of cataract extraction in US men. Am. J. Clin. Nutr. 1999. V. 70. P. 517−524.
  71. Cagianut B., Wunderly C. Protein studies on the human vitreous body. Brit. J. Ophthalmol. 1953. V. 37. P. 229−233.
  72. Campian J.L., Qian M., Gao X., Eaton J.W. Oxygen tolerance and coupling of mitochondrial electron transport. J. Biol. Chem. 2004. V. 279. P. 46 580−46 587.
  73. Campochiaro P.A. Retinal and choroidal neovascularization. J. Cell. Physiol. 2000. V. 184. P. 301−310.
  74. Carail M., Caris-Veyrat C. Carotenoid oxidation products: From villain to saviour? Pure Appl. Chem. 2006. V. 78. No. 8. P. 1493−1503.
  75. Cardoso D.R., Franco D.W., Olsen K., Andersen M.L., Skibsted L.H. Reactivity of bovine whey proteins, peptides, and amino acids toward triplet riboflavin as studied by laser flash photolysis. J. Agric. Food Chem. 2004. V. 52. P. 66 026 606.
  76. CelentanoJ.C., Burke J.D., Hammond B.R. In vivo assessment of retinal carotenoids: macular pigment detection techniques and their impact on monitoring pigment status. J. Nutr. 2002. V. 132. P. 535S-539S.
  77. Chai Y., Ito Y., Han J. TGF-32 signaling and its functional significance in regulating the fate of cranial neural crest cells. Crit. Rev. Oral Biol. Med. 2003. V. 14. No. 2. P. 78−88.
  78. Chan-Ling T., McLeod S.D., Hughes S., Baxter L., Chu Y., Hasegawa T., Lutty G.A. Astrocyte-endothelial cell relationships during human retinal vascular development. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2004. V. 45. P. 2020−2032.
  79. Chen C., Michelini-Norris B., Stevens S., Rowsey J., Ren X., Goldstein M., Schultzl G. Measurement of mRNAs for TGFb and extracellular matrix proteins in corneas of rats after PRK. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2000. V. 41. P. 41 084 116.
  80. Chen Y.G., Hata A., Lo R.S., Wotton D., Shi Y., Pavletich N., Massague J. Determinants of specificity in TGF-beta signal transduction. Genes Dev. 1998. V. 12. P. 2144−2152.
  81. Clark J.I., Matsushima H., David L.L., Clark J.M. Lens cytoskeleton and transparency: a model. Eye. 1999. V. 13. P. 417−424.
  82. Collett T.S., Udin S.B. Frog use retinal elevation as a cue to distance. J. Comp. Physiol. A. 1988. V. 163. P. 677−683.
  83. Consigli S.A., Lyser K.M., Joseph-Silverstein J. The temporal and spatial expression of basic fibroblast growth factor during ocular development in the chicken. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1993. V. 34. No. 3. P. 559−566.
  84. Coulombre A.J. The role of intraocular pressure in the development of the chick eye. I. Control of eye size. J. Exp. Zool. 1956. V. 133. No. 2. P. 211−226.
  85. Coulombre A.J. Regulation of ocular morphogenesis. Invest. Ophthalmol. 1969. V. 8. No. l.P. 25−30.
  86. Coulombre A.J., Herrmann H. Lens development. III. Relationship between the growth of the lens and the growth of the outer eye coat. Exp. Eye Res. 1965. V. 4. P. 302−311.
  87. Coulombre A.J., Steinberg S.N., Coulombre J.L. The role of intraocular pressure in the development of the chick eye. V. Pigmented epithelium. Invest. Ophthal. 1963. V. 2. P. 83−89.
  88. Cousins S.W., McCabe M.M., Danielpour D., Streilein W. Identification of transforming growth factor-beta as an immunosuppressive factor in aqueous humor. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1991. V. 32. P. 2201−2211.
  89. Davanger M. The suspensory apparatus of the lens. The surface of the ciliary body. Acta Ophthalmologica. 1975. V. 53. P. 19−33.
  90. Davanger M., Ringvold A. The ciliary body and the suspension of the lens in a monkey (Cercopithecus aethiops). A scanning electron microscopic study. Acta Ophthalmologica. 1977. V. 55. No. 6. P. 965−975.
  91. Delaey E., van Laar F., De Vos D., Kamuhabwa A., Jacobs P., de Witte P. A comparative study of the photosensitizing characteristics of some cyanine dyes. J. Photochem. Photobiol. B: Biol. 2000. V. 55. P. 27−36.
  92. Delaey E.M., Vantieghem A.M., Derycke A., Agostinis P.M., de Witte P.A.M. In vitro photobiological evaluation of Rhodac, a new rhodacyanine photosensitizer. Photochem. Photobiol. 2001. V. 74. No. 2. P. 331−338.
  93. Denlinger J.L., Eisner G., Balazs E.A. Age-related changes in the vitreus and lens of rhesus monkeys (Macaca mulatta). Exp. Eye Res. 1980. V. 31. P. 67−79.
  94. De Raad S., Comte M., Nef P., Lenz S.E., Gundelfinger E.D., Cox J.A. Distribution pattern of three neural calcium-binding proteins (NCS-1, VILIP and recoverin) in chicken, bovine and rat retina. Histochem. J. 1995. V. 27. No. 7. P. 524−535.
  95. Diaz-llopis M., Cervera E. Posterior vitreous detachment and pharmacologic vitreolysis: the new age of enzymatic vitrectomy. Arch. Soc. Esp. Ophtalmol. 2007. V. 82. P. 465−466.
  96. Diez-Roux, G., Lang, R. A. Macrophages induce apoptosis innormal cells in vivo. Development. 1997. V. 124. No. 18. P. 3633−3638.
  97. Djano J., Griffin B., van Bruggen I., McMenamin P.G. Environmental scanning electron microscopic study of macrophages associated with the tunica vasculosa lentis in the developing rat eye. Br. J. Ophthalmol. 1999. V. 83. P. 1384−1385.
  98. Durchschlag H., Fochler C., Abraham K., Kulawik B. Radiation effects on eye components. Radiation Physics and Chemistry. 1999. V. 55. P. 691−697.
  99. Dziegielewska K.M., Evans C.A.N., Lai P.C.W., Lorscheider F.L., Malinowska D.H., Mollgard K., Saunders N.R. Proteins in cerebrospinal fluid and plasma of fetal rats during development. Dev. Biol. 1981. V. 83. Issue 1. P. 193−200.
  100. Easterbrook M., Sloan A. Anomalies of the human hyaloid system. Can. J. Ophthalmol. 1978. V. 13. P. 283−286.
  101. Edqvist P-H.D., Hallbook F. Newborn horizontal cells migrate bi-directionally across the neuroepithelium during retinal development. Development. 2004. V. 131. P. 1343−1351.
  102. Eichler W., Yafai Y., Wiedemann P., Reichenbach A. Angiogenesis-related factors derived from retinal glial (Muller) cells in hypoxia. NeuroReport. 2004. V. 15. P. 1633−1637.
  103. Eisenstein R, Grant-Bertacchini D. Growth inhibitory activities in avascular tissues are recognized by anti-transforming growth factor beta antibodies. Curr. Eye Res. 1991. V. 10. P. 157−162.
  104. El-Hifnawi E., El-Hifnawi A., Frankenberg C., Keeler C. Ultrastructure and regression of the tunica vasculosa lentis in newborn wistar rats. Ann. Anat. 1994. V. 176. P. 143−149.
  105. Falbe-Hansen I., Ehlers N., Degn J.K. Development of the human foetal vitreous body. 1. Biochemical changes. Acta Ophthalmol. 1969. V. 47. P. 39−43.
  106. Farnsworth P.H., Mauriello J.A., Burke-Cadomski P., Kulyk T., Cinnotti A.A. Surface ultrastructure of the human lens capsule and Zonula attachment. Invest. Ophthalmol. 1976. V. 13. P. 36−40.
  107. Fatt I. Hydraulic flow conductivity of the vitreous gel. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1977. V. 16. No. 6. P. 565−568.
  108. Fautsch M.P., Johnson D.H. Second ARVO/Pfizer Research Institute Working Group, 2006. Aqueous humor outflow: what do we know? Where will it lead us? Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2006.V. 47. P. 4181187.
  109. Fitch J.M., Mentzer A., Mayne R., Linsenmayer T.F. Acquisition of type IX collagen by the developing avian primary corneal stroma and vitreous. Dev. Biol. 1988. V. 128. P. 396−405.
  110. Flugel-Koch C., Ohlmann A., Piatigorsky J., Tamm E. R. Disruption of anterior segment development by TGF-pi overexpression in the eyes of transgenic mice. 2002. Dev. Dyn.V. 225 .P. 111−125.
  111. Forrester J.V., Edgar W., Prentice C.R., Forbes C.D., Williamson J. The effect of fibrinolytic inhibition in the resolution of experimental vitreous hemorrhage. Am. J. Ophthalmol. 1977. V. 84. No. 6. P. 810−814.
  112. Fraser J.R.E., Laurent T.C., Laurent U.B.G. Hyaluronan: its nature, functions and turnover. J. Intern. Med. 1997. V. 242. P. 27−33.
  113. Freeman M.I., Jacobson B., Toth L.Z., Balazs E.A. Lysosomal enzymes associated with vitreous hyalocyte granules. 1. Intracellular distribution patterns of enzymes. Exp. Eye Res. 1968. V. 7. P. 113−120.
  114. Friedman J.S., Ducharme R., Raymond V., Walter M.A. Isolation of a novel iris-specific and leucine-rich repeat protein (oculoglycan) using differential selection. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2000. V. 41. P. 2059−2066.
  115. Friedman J.S., Faucher M., Hiscott P., Biron V.L., Malenfant M., Turcotte P., Raymond V., Walter M.A. Protein localization in the human eye and genetic screen ofopticin. Human Molecular Genetics. 2002. V. 11. No. 11. P. 1333−1342.
  116. Gallop P.M., Seifter S. Preparation and properties of soluble collagens. Meth. Enzymol. 1963. V. 6. P. 635−641.
  117. Gariano R.F., Iruela-Arispe M.L., Hendrickson A.E. Vascular development in primate retina: comparison of laminar plexus formation in monkey and human. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1994. V. 35. P. 3442−3455.
  118. Gatherer D., Duke P.T., Baird D.T., Akhurst R.J. Expression of TGF-3 isoforms during first trimester human embryogenesis. Development. 1990. V. 110. P. 445 460.
  119. Gordon-Thompson C., de Iongh R.U., Hales A.M. et al. Differential cataractogenic potency of TGFbetal, -beta2, and -beta3 and their expression in the postnatal rat eye. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1998. V. 39. P. 1399−1409.
  120. Gould D. B, Smith R. S, John S.W.M. Anterior segment development relevant to glaucoma. Int. J. Dev. Biol. 2004. V. 48. P. 1015−1029.
  121. Gregora Z. Creatinine and urea in the vitreous body. Soud. Lek. 1984. V. 29. No. 4. P. 55−59.
  122. Grimshaw J, Kane A., Trocha-Grimshaw J, Douglas A, Chakravarthy U, Archer D. Quantitative analysis of hyaluronan in vitreous humor using capillary zone electrophoresis. Electrophoresis. 1994. V. 15. P. 936−940.
  123. Gude C, Rettig W. Radiative and nonradiative excited state relaxation channels in squaric acid derivatives bearing differently sized donor substituents: a comparison of experiment and theory. J. Phys. Chem. A. 2000. V. 104. P. 80 508 057.
  124. Guha S, Manna T. K, Das K. P, Bhattacharyya B. Chaperone-like activity of tubulin. J. Biol. Chem. 1998. V. 273. No. 46. P. 30 077−30 080.
  125. Hagins W. A, Yoshikami S. A role for Ca in excitation of retinal rods and cones. Exp. Eye Res. 1974. V. 18. P. 299−300.
  126. Halfter W, Dong S., Schurer B, Ring C, Cole G. J, Eller A. Embryonic synthesis of the inner limiting membrane and vitreous body. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2005. V. 46. No. 6. P. 2202−2209.
  127. Hardy P, Dumont I, Bhattacharya M, Hou X, Lachapelle P, Varmab D. R, Chemtoba S. Oxidants, nitric oxide and prostanoids in the developing ocular vasculature: a basis for ischemic retinopathy. Cardiovascular Research. 2000. V. 47. P. 489−509.
  128. Hatanaka Y, Jones E.G. Early region-specific gene expression during tract formation in the embryonic rat forebrain. J. Comp. Neurol. 1998. V. 395. P. 296 309.
  129. Hawkins K.N. Contribution of plasma proteins to the vitreous of the rat. Curr. Eye Res. 1986. V. 5. № 9. P. 655−63.
  130. Hayashi K, Nakashima Y, Sueishi K, Tanaka K, Fibrinolytic activity and localization of plasminogen activator in bovine vitreous body and aqueous humor. Jpn. J. Ophthalmol. 1989. V. 33. No. l.P. 66−75.
  131. Herz A.H. Aggregation of sensitizing dyes in solution and their adsorption onto silver halides. Adv. Coll. Interf. Sci. 1977. V. 8. P. 237−298.
  132. Hindson V.J., Gallagher J.T., Halfter W., Bishop P.N. Opticin binds to heparan and chondroitin sulfate proteoglycans. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2005. V. 46.1. P. 4417−4423.
  133. Hogan V.J., Alvarado J.A., Weddel J.E. Histology of the human eye. 1971. W.B. Saunders Company. Philadelphia, USA. 687 p.
  134. Holekamp N.M., Shui Y.B., Beebe D.C. Vitrectomy surgery increases oxygen exposure to the lens: a possible mechanism for nuclear cataract formation. Am. J. Ophthalmol. 2005. V. 139. P. 302−310.
  135. Hollenberg M.J., Spira A.W. Human retinal development: ultrastructure of the outer retina. Am. J. Anat. 1973. V. 137. No. 4. P. 357−385.
  136. Hughes D. A. Effects of dietary antioxidants on the immune function of middle-aged adults. Proceedings of the Nutrition Society. 1999. V. 58. P. 79−84.
  137. Hyatt G.A., Beebe D.C. Regulation of lens cell growth and polarity by an embryo-specific growth factor and by inhibitors of lens cell proliferation and differentiation. Development. 1993. V. 117. P. 701−709.
  138. Iozzo R.V. The biology of the small leucine rich proteins functional network of interactive proteins. J. Biol. Chem. 1999. V. 274. P. 18 843−18 846.
  139. Jack R.L. Ultrastructural aspects of hyaloid vessel development. Arch. Ophthalmol. 1972 a. V. 87. P. 427−437.
  140. Jack R.L. infrastructure of the hyaloid vascular system. Arch. Ophthalmol. 1972 b. V. 87. P. 555−567.
  141. Jacobson B., Dorfman T., Basu P.K., Hasany S.M. Inhibition of vascular endothelial cell growth and trypsin activity by vitreous. Exp. Eye Res. 1985. V. 41. P. 581−595.
  142. Jamieson P.N., Shaw D.G. Levels of albumin, a-fetoprotein, and IgG in human fetal cerebrospinal fluid. Arch. Dis. Child. 1975. V. 50. P. 484−485.
  143. Jampel H.D., Roche N., Stark W. J, Roberts A.B. Transforming growth factor-(3 in human aqueous humor. Curr. Eye Res. 1990. V. 9. P. 963−969.
  144. Jewell V.C., Northrop-Clewes C.A., Tubman R., Thurnham D.I. Nutritional factors and visual function in premature infants. Proc. Nutrition Soc. 2001. V. 60. P. 171−178.
  145. Jotwani G., Wadhwa S., Nag T.C., Singhal S. Localization of glutamate in the human retina during early prenatal development. JBiosci. 1998. V. 23. P. 15−18.
  146. Kaczurowski M.J. Zonular fibers of the human eye. Am. J. Ophthalmol. 1964. V. 58. P. 1030−1047.
  147. Kaila K., Voipio J., Akerman K.E. Free extracellular Ca2+. at photoreceptor level equals that in vitreous in frog and carp eyes. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1984. V. 25. No. 12. P. 1395−1401.
  148. Kaluzny J., Kaluzny J. J., Raukuc D. Uric acid level in aqueous humor of patients with cataract. Klin. Oczna. 1996. V. 98. No. 4. P.271−273.
  149. Kim T.Y., Kim W.I., Smith R.E., Kay E.D. Role of p27(Kipl) in cAMP- and TGF-beta2-mediated antiproliferation in rabbit corneal endothelial cells. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2001. V. 42. No. 13. P. 3142−3149.
  150. Kekomakmi M., Seppalac M., Ehnholma C., Schwartz L., Raivio K. Perfusion of isolated human fetal liver: synthesis and release of a-fetoprotein and albumin. Int. J. Cancer. 1971. V. 8. P. 250−258.
  151. Kessel R.G., Kardon R.H., Tissues and organs: a text-atlas of scanning electron microscopy. W.H. Freeman and Co., USA, UK, 1979.
  152. Khachik F., Bernstein P. S., Garland D.L. Identification of lutein and zeaxanthin oxidation products in human and monkey retinas. Invest. Ophthalmol. Visual Sci. 1997. V. 38. N9. P. 1802−1811.
  153. Ko M.-K., Chi J.G., Chang B.-L. Hyaloid vascular pattern in the human fetus. J. Pediatric Ophthalmol. Strabismus. 1985. V. 22. No. 5. P. 188−193.
  154. Kovalska V.B., Losytskyy M.Yu., Yarmoluk S.M. Luminescence spectroscopic studies of trimethinecyanines substituted in polymethine chain with nucleic acids and proteins. Spectrochim. Acta Part A. 2004. V. 60. P. 129−136.
  155. Krebs I., Brannath W., Glittenberg C., Zeiler F., Sebag J., Binder S. Posterior vitreomacular adhesion: a potential risk factor for exudative age-related macular degeneration? Am. J. Ophthalmol. 2007. V. 144. No. 5. P. 741−746.
  156. Krinsky N.I. Carotenoids protection against oxidation. Pure and Appl. Chem. 1979. V. 51. P. 649−660.
  157. Krinsky N.I. The biological properties of carotenoids. Pure and Appl. Chem. 1994. V. 66. No. 5. P. 1003−1010.
  158. Krinsky N.I., Russett M.D., Handelman G.J., Snodderly D.M. J. Nutr. 1990. V. 120. No. 12. P. 1654−1662.
  159. R.F. Kubin, A.N. Fletcher. Fluorescence quantum yields of some rhodamine dyes. J. Lumin. V. 27, No.4. December 1982-February 1983. P. 455162.
  160. Kubinyiova M., Pospisilova E. Role of apoptosis and proliferation in differentiation of human retina, regio olfactoria and region respiratoria. Biomed. Papers. 2001. V. 145. No. 2. P. 65−68.
  161. Landrum J.T., Bone R.A., Joa H., Kilburn M.D., Moore L.L., Sprague K.E. A one year study of the macular pigment: the effect of 140 days of a lutein supplement. Exp. Eye Res. 1997 a. V. 65. P. 57−62.
  162. Landrum J.T., Bone R.A., Kilburn M.D. The macular pigment: a possible role in protection from age-related macular degeneration. Adv. Pharmacol. 1997 b. V. 38. P. 537−556.
  163. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 1970. V. 227. No. 5259. P. 680−685.
  164. Lang R.A. Which factors stimulate lens fiber cell differentiation in vivo? Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1999. V. 40. P. 3075−3078.
  165. Lang R.A., Bishop J.M. Macrophages are required for cell death and tissue remodeling in the developing mouse eye. Cell. 1993. V. 74. No. 3. P 453−462.
  166. Latker C.H., Kuwabara T. Regression of the tunica vasculosa lentis in the postnatal rat. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1981. V. 21. No. 5. P. 689−699.
  167. Lazarus H.S., Hageman G.S. In situ characterization of the human hyalocyte. Arch. Ophthalmol. 1994. V. 112. No. 10. P. 1356−1362.
  168. Le A.-C. N., Musil L.S. A novel role for FGF and extracellular signal-regulated kinase in gap junction-mediated intercellular communication in the lens. J. Cell Biol. 2001. V. 154. P. 197−216.
  169. Lee P.-F., Fox R., Henrick I., Lam W.K.W. Correlation of aqueous humor ascorbate with intraocular pressure and outflow facility in hereditary buphthalmic rabbits. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1978. V. 17. P. 799−802.
  170. Li B., Vachali P., Bernstein P. S. Human ocular carotenoid-binding proteins. Photochem. Photobiol. Sci. 2010. No. 9. P. 1418−1425.
  171. Li S.-Y., Lo A.C.Y. Lutein protects RGC-5 cells against hypoxia and oxidative stress. Int. J. Mol. Sci. 2010. V. 11. P. 2109−2117.
  172. Liang G.N., Chakrabarti B. Spectroscopic studies on pepsin-solubilized vitreous and cartilage collagens. Current Eye Res. 1981. V. 1. No. 3. P. 175−181.
  173. Liebler D.C., McClure T.D. Antioxidant reactions of (3-carotene: Identification of carotenoid-radical adducts. Chem. Res. Toxicol. 1996. V. 9. No. 1. P. 8−11.
  174. Loeliger M., Rees S. Immunocytochemical development of the guinea pig retina. Exp. Eye Res. 2005. V. 80. P. 9−21.
  175. Lovicu F.J., McAvoy J.W. Growth factor regulation of lens development. Dev. Biol. 2005. V. 280. P. 1−14.
  176. Lutty G.A., Mello R.J., Chandler C., Fait C., Bennett A., Patz A. Regulation of cell growth by vitreous humour. J. Cell Sci. 1985. V. 76. P. 53−65.
  177. Lutty G.A., Merges C., Threlkeld A.B., Crone S., McLeod D.S. Heterogeneity in localization of isoforms ofTGF-P in human retina, vitreous, and choroids. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1993. V. 34. No. 3. P. 477−487.
  178. Lyu J., Joo C.-K. Wnt signaling enhances FGF2-triggered lens fiber cell differentiation. Development. 2004. V. 131. P. 1813−1824.
  179. Mann I. The development of the human eye. London. Brit. Med. Assoc. 1949. 313 p.
  180. Mann I. Developmental abnormalities of the eye. Second Ed., B.M.A. House, Tavistock Square, W.C.I., 1957. 419 p.
  181. Marc R.E. The Structure of Vertebrate Retinas. In: The Retinal Basis of Vision. Toyoda et al., Eds., Elsevier, Amsterdam, 1999. P. 3−19.
  182. Mares-Perlman J.A., Millen A.E., Ficek T.L., Hankinson S.E. The body of evidence to support a protective role for lutein and zeaxanthin in delaying chronic disease. Overview. J. Nutr. 2002. V. 132. P. 518S-524S.
  183. Massague J. TGF-beta signal transduction. Annu. Rev. Biochem. 1998. V. 67. P. 753−791.
  184. Mattson M.P., Kater S.B. Calcium regulation of neurite elongation and growth cone motility. J. Neurosci. 1987. V. 7. P. 4034−4043.
  185. Mayne R., Cook T., Takanosu M. Vit-1 is synthesized by the lens during the development of the mouse eye. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2000. V. 41. P. S868.
  186. Mayne R., Ren Z.-X., Liu J., Cook T., Carson M., Narayana S. VIT-1: the second member of a new branch of the vWFA superfamily. Biochem. Soc. Trans. 1999. V. 27. P. 832−835.
  187. McAvoy J.W. Induction of the eye lens. Differentiation. 1980. V. 17. P. 137 149.
  188. McCabe K.L., Gunther E.C., Reh T.A. The development of the pattern of retinal ganglion cells in the chick retina: mechanisms that control differentiation. Development. 1999. V. 126. P. 5713−5724.
  189. McGinnis J.F., Stepanik P.L., Jariangprasert S., Lerious V. Functional significance of recoverin localization in multiple retina cell types. J. Neurosci. Res. 1997. V. 50. P. 48795.
  190. Mignone J.L., Kukekov V., Chiang A.-S., Steindler D., Enikolopov G. Neural stem and progenitor cells in nestin-GFP transgenic mice. J. Comp. Neurol. 2004. V. 469. V. 311−324.
  191. Milam A.H., Hendrickson A.E., Xiao M., Smith J.E., Possin D.E., John S.K., Nishina P.M. Localization of tubby-like protein 1 in developing and adult human retinas. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2000. V. 41. P. 2352−2356.
  192. Miyazono K., Ichijo H., Heldin C.-H. Transforming growth factor-3: latent forms, binding proteins and receptors. Growth Factors. 1993. V. 8. P. 11−22.
  193. Miyazono K., Kusanagi K., Inoue H. Divergence and convergence of TGF-beta/BMP signaling. J. Cell Physiol. 2001. V. 187. P. 265−276.
  194. Mizejewski G.J. Alpha-fetoprotein structure and function: relevance to isoforms, epitopes, and ocnformational variants. Exp. Biol. Med. 2001. V. 226. P. 37708.
  195. Mizejewski G.J. Biological roles of alpha-fetoprotein during pregnancy and perinatal development. Exp. Biol. Med. 2004. V. 229. P. 439−463.
  196. Muller-Eberhard U., Liem H.H., Cox K.H., Conway T.P. Hemopexin synthesis in vitro by human fetal tissues. Pediat. Res. 1975. V. 9. P. 519−521.
  197. Multu F., Leopold I.H. The structure of fetal hyaloid system and tunica vasculosa lentis. Arch. Ophthalmol. 1964. V. 71. P. 102−110.
  198. Nag T.C., Wadhwa S. Differential expression of syntaxin-1 and synaptophysin in the developing and adult human retina. J. Biosci. 2001. V. 26. No. 2. P. 179 191.
  199. Nag T.C., Wadhwa S. Morphological and neurochemical development of the human neural retina. Neuroembryol. Aging. 2007. V. 4. P. 19−30.
  200. Napier H.R.L., Kidson S.H. Molecular events in early development of the ciliary body: A question of folding. Exp. Eye Res. 2007. V. 84. P. 615−625.
  201. Neath P., Roche S.M., Bee J.A. Intraocular pressure-dependent and -independent phases of growth of the embryonic chick eye and cornea. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1991. V. 32. No. 9. P. 2483−2491.
  202. Newman E.A. Membrane physiology of retinal glial (Muller) cells. J. Neurosci. 1985. V. 5. No. 8. P. 2225−2239.
  203. Newsome D.A., Linsenmayer T.F., Trelstad R.L. Vitreous body collagen: evidence for a dual origin from the neural retina and hyalocytes. J. Cell Biol. 1976. V. 71. P. 59−67.
  204. Nishimura M., Ikeda T., Ushiyama M., Nanbu A., Kinoshita S., Yoshimura M. Increased vitreous concentrations of human hepatocyte growth factor in proliferative diabetic retinopathy. J. Clin. Endocrinol. Met. 1999. V. 84. No. 2. P. 659−662.
  205. Noda Y., Hata Y., Hisatomi T., Nakamura Y., Hirayama K., Miura M., Nakao S., Fujisawa K., Sakamoto T., Ishibashi T. Functional properties of hyalocytes under PDGF-rich conditions. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2004. V. 45. No. 7. P. 2107−2114.
  206. Norose K., Clark J.I., Syed N.A., Basu A., Heber-Katz E., Sage E.H., Howe C.C. SPARC deficiency leads to early-onset cataractogenesis. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1998. V. 39. P. 2674−2680.
  207. Noulas A.V., Skandalis S.S., Feretis E., Theocharis D.A., Karamanos N.K. Variations in content and structure of glycosaminoglycans of the vitreous gel from different mammalian species. Biomed. Chromatogr. 2004. V. 18. P. 457−461.
  208. Palmquist B. M, Philipson B, Barr P.O. Nuclear cataract and myopia during hyperbaric oxygen therapy. Br. J. Ophthalmol. 1984. V. 68. P. 113−117.
  209. Pasquale L. R, Dorman-Pease M. E, Lutty G. A, Quigley H. A, Jampel H.D. Immunolocalization of TGF-?l, TGF-?2, and TGF-?3 in the anterior segment of the human eye. Invest. Ophthalmol. Vis. Sei. 1993. V. 34. P. 23−30.
  210. Pena J.D.O, Taylor A. W, Ricard C. S, Vidal I, Hernandez M.R. Transforming growth factor beta. isoforms in human optic nerve heads. Brit. J. Ophthalmol. 1999. V. 83.No. 2. P. 209−218.
  211. Peress N. S, Perillo E. TGF and TGF-?3 immunoreactivity within the ciliary epithelium. Invest. Ophthalmol. Vis. Sei. 1994. V. 35. No. 2. P. 435−457.
  212. Peters Jr.T. All about albumin: biochemistry, genetics, and medical application. N.Y.: Acad. Press, 1996. 432 p.
  213. Piek E, Heldin C.-H, ten Dijke P. Specificity, diversity, and regulation in TGF-? superfamily signaling. FASEB J. 1999. V. 13. P. 2105−2124.
  214. Ponsioen T. L, van der Worp R. J, van Luyn M.J.A, Hooymans J. M, Los L.I. Packages of vitreous collagen (type II) in the human retina: an indication of postnatal collagen turnover? Exp. Eye Res. 2005. V. 80. No. 5. P. 643−650.
  215. Ponsioen T. L, van Luyn M.J.A, van der Worp R. J, Pas H.H., Hooymans J.M.M, Los L.I. Human retinal Muller cells synthesize collagens of the vitreous and vitreoretinal interface in vitro. Mol. Vision. 2008. V. 14. P. 652−660.
  216. Prasain J. K, Moore R, Hurst J. S, Barnes S, van Kuijk F.J.G.M. Electrospray tandem mass spectrometric analysis of zeaxanthin and its oxidation products. J. Mass Spectrom. 2005. V. 40. P. 916−923.
  217. Preis I, Langer R, Brem H, Folkman J. Inhibition of neovascularization by an extract derived from vitreous. Am. J. Ophthalmol. 1977. V. 84. No. 3. P. 323−328.
  218. Provis J.M., Billson F.A., Russell P. Ganglion cell topography in human fetal retinae. Invest. Ophthalmol. 1983. V. 24. N. 9. P. 1316−1320.
  219. Provis J.M., Hendrickson A.E. The foveal avascular region of developing human retina. Arch. Ophthalmol. 2008. V. 126. №. 4. P. 507−511.
  220. Provis J.M., Leech J., Diaz C.M., Penfold P.L., Stone J., Keshet E. Development of the human retinal vasculature: cellular relations and VEGF expression. Exp. Eye Res. 1997. V. 65. No. 4. P. 555−568.
  221. Provis J.M., Penfold P.L., Cornish E.E., Sandercoe T.M., Madigan M.C. Anatomy and development of the macula: specialization and the vulnerability to macular degeneration. Clin. Exp. Optometry. 2005. V. 88. No. 5. P. 269−281.
  222. Ramesh S., Bonshek R.E., Bishop P.N. Immunolocalisation of opticin in the human eye. Br. J. Ophthalmol. 2004. V. 88. P. 697−702.
  223. Reardon A.J., Heinegard D., McLeod D., Sheehan J.K., Bishop P.N. The large chondroitin sulphate proteoglycan versican in mammalian vitreous. Matrix Biol. 1998. V. 17. P. 325−333.
  224. Ringvold A., Anderssen E., Jellum E., Bjerkas E., Sonerud G.A., Haaland P.J., Devor T.P., Kj0nniksen I. UV-absorbing compounds in the aqueous humor from aquatic mammals and various non-mammalian vertebrates. Ophthalmic Res. 2003. V. 35. P. 208−216.
  225. Roche M., Rondeau P., Singh N.R., Tarnus E., Bourdon E. The antioxidant properties of serum albumin. FEBS Letters. 2008. V. 582. P. 1783−1787.
  226. Rock C.L., Thornquist M.D., Neuhouser M.L., Kristal A.R., Neumark-Sztainer D., Cooper D.A., Patterson R.E., Cheskin L.G. Diet and lifestyle correlates of lutein in the blood and diet. Nutr. 2002. No. 3. P. 525S-530S.
  227. Rodrigues M.L., Filho R.B., Laicine E.M., Haddad A. Transferrin production by the ciliary body of rabbits: a biochemical and immunocytochemicfl study. Curr. Eye Res. 1998. V.17. P. 694−699.
  228. Sabah J., McConkey E., Welti R., Albin K., Takemoto L.J. Role of albumin as a fatty acid carrier for biosynthesis of lens lipids. Exp. Eye Res. 2005. V. 80. P. 3136.
  229. Saika S. TGFb pathobiology in the eye. Lab. Invest. 2006. V. 86. P. 106−115.
  230. Saika S., Liu C.Y., Azhar M., Sanford L.P., Doetschman Т., Gendron R.L., Kao C.W., Kao W.W. TGFbeta2 in corneal morphogenesis during mouse embryonic development. Dev. Biol. 2001. V. 240. No. 2. P. 419−432.
  231. Saint-Geniez M., D’Amore P.A. Development and pathology of the hyaloid, choroidal and retinal vasculature. Int. J. Dev. Biol. 2004. V. 48. P. 1045−1058.
  232. Salerno C., Crifo C., Capuozzo E., Sommerburg O., Langhansc C.-D., Siems W. Effect of carotenoid oxidation products on neutrophil viability and function. BioFactors. 2005. V. 24. P. 185−192.
  233. Salit P.W. Calcium content of the aqueous and vitreous humors and serum. J. Biol. Chem. 1934. V. 104. P. 275−280.
  234. Salu P., Claeskens W., DeWilde A., Hijmans S.W., Wisse E. Light and electron microscopic studies of the rat hyalocyte after perfusion fixation. Ophthalmic Res. 1985. V. 17. No. 3. P. 125−130.
  235. Sanders E.J., Walter M.A., Parker E., Aramburo C., Harwey S. Opticin binds retinal growth hormone in the embryonic vitreous. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci.2003. V. 44. No. 12. P. 5404−5409.
  236. Schulz M.W., Chamberlain C.G., de Iongh R.U., McAvoy J.W. Acidic and basic FGF in ocular media and lens: implications for lens polarity and growth patterns. Development. 1993. V. 118. P. 117−126.
  237. Sebag J. Age-related changes in human vitreous structure. Graefe’s Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 1987. V. 225. P. 89−93.
  238. Sebag J. The vitreous: structure, function and photobiology. Springer-Verlag. New York. 1989.
  239. Sebag J. Classifying posterior vitreous detachment a new way to look at the invisible. Brit. J. Ophthalmol. 1997. V. 81. P. 521−522.
  240. Sebag J. Seeing the invisible: the challenge of imaging vitreous. J. Biomed. Opt.2004. V. 9. P. 38—46.
  241. Sebag J. Molecular biology of pharmacologic vitreolysis. Trans. Am. Ophthalmol. Soc. 2005. V. 103. P. 473−494.
  242. Sebag J., Ansari R.R. Suh K.I. Pharmacologic vitreolysis with microplasmin increases vitreous diffusion coefficients. Graefe’s Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 2007. V. 245. P. 576−580.
  243. Sen A., Roy R., Mukherjee K.L. Ascorbic acid concentration in developing human fetal vitreous humor. Indian J. Ophthalmol. 1983. V. 31. P. 73−74.
  244. Sharma R.K., O’Leary T.E., Fields C.M., Johnson D.A. Development of the outer retina in the mouse. Dev. Brain Res. 2003. V. 45. P. 93−105.
  245. Shui Y-B., Fu J-J., Garcia C., Dattilo L.K., Rajagopal R., McMillan S., Mak C., Holekamp N.M., Lewis A., Beebe D.C. Oxygen distribution in the rabbit eye andoxygen consumption by the lens. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2006. V. 47. P. 1571−1580.
  246. Siddigi N.J., Sharma B., Alhomida A.S. A study on distribution of different hydroxyproline fractions in the bovine ocular tissues. Mol. Cell Biochem. 2001. V. 317. P. 67−71.
  247. Soreg H., Miskin R. Plasminogen activator in the rodent brain. Brain Res. 1981. V. 216. P. 361−374.
  248. Spector A. Oxidative stress induced cataract: Mechanism of action. FASEB
  249. Stromland K., Miller M, Cook C. Ocular teratology. Surv. Ophthalmol. 1991. V. 35. No. 6. P. 429−446.
  250. Swann D.A., Constable I.J. Vitreous structure. I. Distribution of hyaluronate and protein. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1972. V. 11. No. 3. P. 159−163.
  251. Sydorova M., Lee M.S. Vascular endothelial growth factor levels in vitreous and serum of patients with either proliferative diabetic retinopathy or proliferative vitreoretinopathy. Ophthalmic Res. 2005. V. 37. P. 188−190.
  252. Takanosu M., Boyd T.C., Le Goff M., Henry S.P., Zhang Y., Bishop P.N., Mayne R. Structure, chromosomal location and tissue-specific expression of the mouse opticin gene. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2001. V. 42. P. 2202−2210.
  253. Tatikolov A.S., Costa S.M.B. Effects of normal and reverse micellar environment on the spectral properties, isomerization and aggregation of a hydrophilic cyanine dye. Chem. Phys. Lett. 2001. V. 346. P. 233−240.
  254. Tatikolov A.S., Costa S.M.B. Complexation of polymethine dyes with human serum albumin: a spectroscopic study. Biophys. Chem. 2004. V. 107. P. 33−49.
  255. Taylor C.M., Weiss J.B. Partial purification of a 5.7K glycoprotein from bovine vitreous which inhibits both angiogenesis and collagenase activity. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1985. V. 133. No. 3. P. 911−916.
  256. Timtcheva I., Maximova V., Deligeorgiev T., Zaneva D., Ivanov I. New asymmetric monomethine cyanine dyes for nucleic-acid labelling: absorption and fluorescence spectral characteristics. J. Photochem. Photobiol. A: Chem. 2000. V. 130. P. 7−11.
  257. Tinoco J., Babcock R., Hincenbergb I., Medwadowski B., Miljanich P., Williams M.A. Linoleic acid deficiency. Lipids. 1976. V. 14. P. 166−173.
  258. Townes-Anderson E., Raviola G. Morphology and permeability of blood vessels in the prenatal rhesus monkey eye: how plasma components diffuse into the intraocular fluids during development. Exp. Eye Res. 1982. V. 35. No. 3. P. 203 230.
  259. Tripathi R.C., Millard C.B., Tripathi B.G. Protein composition of human aqueous humor: SDS-PAGE analysis of surgical and post-mortem samples. Exp. Eye Res. 1989. V. 48. P. 117−130.
  260. Tripathi B.J., Tripathi R.C., Livingston A.M., Borisuth N.S.C. The role of growth factors in the embryogenesis and differentiation of the eye. Am. J. Anatomy. 1991. V. 192. P. 442−471.
  261. Tripathi R.C., Tripathi B.J., Park J. Localization of urokinase-type plasminogen activator in human eyes: an immunocytochemical study. Exp. Eye Res. 1990. V. 51. No. 5. P. 545−552.
  262. Turrens J.F. Mitochondrial formation of reactive oxygen species. J. Physiol. (Lond.). 2003. V. 552. P. 335−344.
  263. Ugocsai K., Varga A., Molnar P., Antus S., Molnar J. Effects of selected flavonoids and carotenoids on drug accumulation and apoptosis induction inmultidrug-resistant colon cancer cells expressing MDR1/LRP. In Vivo. 2005. V. 19. No. 2. P. 433−438.
  264. Uriel J., de Nechaud B., Dupiers M. Estrogen-binding properties of rat, mouse and man fetospecific serum proteins. Demonstration by immuno-autoradiographic methods. Biophys. Biochim. Res. Commun. 1972. V. 46. P. 1175−1180.
  265. Uriel J., Trojan J., Moro R., Pineirob A. Intracellular uptake of alpha-fetoprotein: a marker of neural differentiation. Annals New York Academy of Sciences. 1983. V. 417. P. 321−329.
  266. Van Bockxmeer F.M., Martin C.E., Constable I.J. Iron-binding proteins in vitreous humour. Biochim. Biophys. Acta. 1983. V. 758. P. 17−23.
  267. Van Houwelingen A.C., Puis J., Hornstra G. Fetal essential fatty acid (EFA) status during early human development: relationchip with maternal EFA status. Am. J. Clin. Nutr. 1993. V. 57 (suppl). P. 814S.
  268. Vidal R. M. Selective localization of alpha-fetoprotein and serum albumin within the sensory ganglia cells of developing chicken. Neuroscience Letters. 1983. V. 41. No. 3. P. 253−257.
  269. Volkova K.D., Kovalska V.B., Losytskyy M.Yu., Bento A., Reis L.V., Santos P.F., Almeida P., Yarmoluk S.M. Studies of benzothiazole and benzoselenazole squaraines as fluorescent probes for albumins detection. J. Fluoresc. 2008. V. 18. P. 877−882.
  270. Wadhwa S., Jotwani G., Bijlani V. Human retinal ganglion cell development in early prenatal period using carbocyanine dye Dil. Neurosci. Lett. 1993. V. 157. P. 175−178.
  271. Walls G.L. The vertebrate eye and its adaptive radiation. Cranbrook Press, Bloomfield Hills (Mich.), 1942.
  272. Wang F., Wang Z., Sun X., Wang F., Xu X., Zhang X. Safety and Efficacy of Dispase and Plasmin in Pharmacologic Vitreolysis. Inv Ophthalmol Vis Sci. 2004. Vol. 45. No. 9. P. 3286−3290.
  273. Weale R.A. Guest editorial: notes on the macular pigment. Ophthalmol. Physiol. Opt. 2007. V. 27. P. 1−10.
  274. Welder F., Paul B., Nakazumi H., Yagi S., Colyer C.L. Symmetric and asymmetric squarylium dyes as noncovalent protein labels: a study by fluorimetry and capillary electrophoresis. J. Chromatogr. B. 2003. V. 793. No. 1. P. 93−105.
  275. Wells J.A. Levels of vascular endothelial growth factor are elevated in the vitreous of patients with subretinal neovascularisation. Br. J. Ophthalmol. 1996. V. 80. No. 4. P. 363−366.
  276. Wiechamann A.F., Hammarback J.A. Molecular cloning and nucleotide sequence of a c DNA encoding recoverin from human retina. Exp. Eye Res. 1993 a. V. 56. P. 463−470.
  277. Wiechamann A.F., Hammarback J.A. Expression of recoverin mRNA in the human retina: localization by in situ hybridization. Exp. Eye Res. 1993 b. V. 57. P. 763−769.
  278. Wilkie J.W., Bellamy L.E.C. Estimation of antemortem serum electrolytes and urea concentrations from vitreous human collected postmortem. Can. J. Comp. Med. 1982. V. 46. P. 146−149.
  279. Williams G. Pharmacologic manipulation of the vitreous during pars plana vitrectomy. In: Alfaro D., Liggett P., eds. Vitreoretinal Surgery of the Injured Eye. Philadelphia: Raven, 1998. P. 141−150.
  280. Wolff E. The anatomy of the eye and orbit. London, 1954.
  281. Wordinger R.J., Clark A.F. Bone morphogenetic proteins and their receptors in the eye. Exp. Biol. Med. 2007. V. 232. P. 979−992.
  282. Wormstone I. M, Tamiya S., Anderson I., Duncan G. TGF-beta2-induced matrix modification and cell transdifferentiation in the human lens capsular bag. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2002. V. 43. No. 7. P. 2301−2308.
  283. Yamamoto Y. Growth of lens and ocular environment: role of neural retina in the growth of mouse lens as revealed by an implantation experiment. Dev. Growth Differ. 1976. V. 18. P. 273−278.
  284. Yamane K., Minamoto A., Yamashita H., Takamura H., Miyamoto-Myoken Y., Yoshizato K., Nabetani T., A. Tsugita A., Mishima H.K. Proteome Analysis of Human Vitreous Proteins. Mol. Cell. Proteom. 2003. V. 2. P. 1177−1187.
  285. Yan Q., Clark J.I., Sage E.H. Expression end characterization of SPARC in human lens and in the aqueous and vitreous humors. Exp. Eye Res. 2000. V. 71. No. l.P. 81−90.
  286. Yan X-X., Wiechmann A.F. Early expression of recoverin in a unique population of neurons in the human retina. Anat. Embryol. 1997. V. 195. P. 51−63.
  287. Yang J., Klassen H., Pries M., Wang W., Nissen M.H. Vitreous humor and albumin augment the proliferation of cultured retinal precursor cells. J. Neurosci. Res. 2009. V. 87. No. 2. P. 495−502.
  288. Yeum K.J., Shang F.M., Schalch W.M., Russell R.M., Taylor A. Fast-soluble nutrient concentrations in different layers of human cataractous lens. Curr. Eye Res. 1999. V. 19. No. 6. P. 502−505.
  289. Yeum K.J., Taylor A., Tang G., Russell R.M. Measurement of carotenoids, retinoids, and tocopherols in human lenses. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1995. V. 36. P. 2756−2761.
  290. Yoneya S., Saito T., Komatsu Y., Koyama I., Takahashi K., Duvoll-Young J. Binding properties of indocyanine green in human blood. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1998. V. 39. No. 7. P. 1286−1290.
  291. Zhao S., Overbeek P.F. Elevated TGFb signaling inhibits ocular vascular development. Dev. Biol. 2001. V. 237. P. 45−53.
  292. Zhu M., Madigan M.C., van Driel D., Maslim J., Billson F.A., Provis J.M., Penfold P.L. The human hyaloid system: cell death and vascular regression. Exp. Eye Res. 2000. V. 70. No. 6. P. 767−776.
  293. Zhu M., Penfold P.L., van Drie D., Provis J.M., Billson F.A. Neuropeptide expression in the human fetal hyaloid vasculature and vitreous. Australian and New Zealand Journal of Ophthalmology. Suppl. 1996. V. 24. No. 2. P. 72−74.
  294. Zhu M., Provis J.M., Penfold P.L. The human hyaloid system: cellular phenotypes and inter-relationships. Exp. Eye Res. 1999. V. 68. No. 5. P. 553−563.
  295. Zimmer J.P., Hammond B.R. Possible influences of lutein and zeaxanthin on the developing retina. Clin. Opthalmol. 2007. V. 1. No. 1. P. 25−35.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!