Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Регуляция стресс-устойчивости фотосинтетического аппарата индукторами различной природы

Диссертация: Регуляция стресс-устойчивости фотосинтетического аппарата индукторами различной природы
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Важнейшей, задачей фитофизиологии является, изучение реакций растений на неблагоприятные факторы, внешней среды. Эта функция у живых организмов эволюционно сформирована в процессе длительной^ адаптации растений к внешней среде (Веселовский и др., 1993): Универсальность биологического ответа заключается в том, что под влиянием различных физических или химических факторов наблюдается сходная… Читать ещё >

Содержание

  • Список сокращений
  • Часть I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ Глава
    • 1. 1. Стресс, стрессоры и индукторы
      • 1. 1. 1. Определение стресса и предистория
      • 1. 1. 2. Стресс и растения
      • 1. 1. 3. Индукторы защитных механизмов
      • 1. 1. 4. Окислительный стресс. Оксиданты и антиоксиданты
  • Глава.
    • 1. 2. Влияние окислительного стресса на фотосинтетический аппарат
      • 1. 2. 1. Мишени окислительного стресса
      • 1. 2. 2. Механизмы защиты фотосинтетического аппарата от окислительного стресса
      • 1. 2. 3. Роль баланса оксидантов и антиоксидантов в стресс-защитной системе
      • 1. 2. 4. Стресс-защитные соединения и их возможная роль
        • 1. 2. 4. 1. Холинсодержащие ретарданты
        • 1. 2. 4. 2. Осмопротекторы
        • 1. 2. 4. 3. Фитогормоны и соединения с гормональной активностью
  • Глава.
    • 1. 3. Влияние УФ радиации на фотосинтетический аппарат. Защитное действие оранжево-красного света
      • 1. 3. 1. Действие ультрафиолетовой радиации на фотосинтетический аппарат
      • 1. 3. 2. Защитное действие красного света в животных и растительных организмах. Участие фоторецепторов
      • 1. 3. 3. Обсуждение механизмов защитного действия красного света
  • Глава.
    • 1. 4. Механизмы теплоустойчивости и фотоингибирования
      • 1. 4. 1. Тепловой стресс
      • 1. 4. 2. Фотоингибирование
      • 1. 4. 3. Тепловой стресс и фотоингибирование
      • 1. 4. 4. Перекрестная теплоустойчивость
      • 1. 4. 5. Особенности фотоингибирования в цианобактериях. Роль катал азы-пероксидазы

Регуляция стресс-устойчивости фотосинтетического аппарата индукторами различной природы (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. На всем протяжении процесса вегетации растения подвержены действию высоких и низких температур, засухи, засоления, света высокой интенсивности и других стрессовых факторов внешней среды, что приводит к потере продуктивности за счет ингибирования роста и фотосинтеза растений. Из-за ухудшения экологии и изменений климата эта проблема является особенно актуальной и важно разработать эффективные способы усиления защитных механизмов растений при действии стрессоров различного происхождения, прежде всего абиотических. Часто они обусловлены резкими изменениями температуры, дефицитом влаги, а также светом высокой интенсивности (Boyer, 1982). В частности, заметно возросший уровень УФ-радиации (Caldwell et al., 1995) и потепление климата (Jones et al., 1999) привели к большему изучению влияния на растения УФ-радиации, повышенных температур и света высокой интенсивности, а также их сочетания.

Современная наука расширила и углубила учение Селье о стрессе и фазах его развития в животном организме (Селье, 1972, 1982). В последние десятилетия были получены многочисленные факты, раскрывающие механизмы действия стресса, как на уровне животного, так и растительного организма. Так, показано, что практически неизбежным следствием стресса являются активация свободно-радикального и перекисного окисления липидов и белков (окислительный стресс) за счет образования активных форм кислорода (АФК), а также повреждение или структурно-функциональная модификация различных клеточных мембран и органелл, таких как митохондрии и хлоропласты. С другой стороны индуцируются стресс-защитные адаптивные механизмы, которые связаны с синтезом белков теплового шока, накоплением стрессовых гормонов, антиоксидантов, осмолитов и других защитных соединений.

АФК, такие как супероксид-анион радикал, синглетный кислород, перекись водорода, гидроксил радикал (НО) и т. д. генерируются во всех клеточных компартментах, и их образование является неотъемлемой характеристикой метаболизма живого организма (Asada, 2006; Suzuki, Mittler, 2006). Действие любого стрессового фактора сопровождается дополнительным образованием АФК, которые при избыточном количестве повреждают белки, нуклеиновые кислоты, липиды мембран и, в конечном итоге, могут вызвать в клетках апоптоз (Mckersie, Leshem, 1994; Mittler, 2002). Для защиты клетки существуют различные пути, включающие как низкомолекулярные, так и ферментативные системы (каталаза, аскорбатпероксидаза, глутатионредуктаза, СОД и т. д.) и низкомолекулярные вещества — антиоксиданты и осмопротекторы: пролин, полиамины, токоферол, фенолы и т. д. Комплекс последовательно включающихся биохимических реакций, катализируемых вышеуказанными ферментами, и аккумуляция низкомолекулярных соединений составляет одну из ключевых защитных систем растения.

Изучение молекулярных механизмов устойчивости растений к неблагоприятным факторам внешней среды относится к числу приоритетных направлений исследований в современной физиологии растений, к числу важнейших задач фитофизиологии. Оно связано с именами многих известных исследователей, в частности Александрова В. Я. (1975, 1985), Титова А.Ф.

2006), Кузнецова Вл.В. (1990, 2006), Berry J. A, Bjorkman О. (1980), Murata N.

2007) и других. Очевидно, что ответные биологические реакции живых организмов при действии различных стресс-индуцирующих факторов эволюционно сформированы в процессе длительной адаптации растений к внешней среде (Веселовский и др., 1993) и имеют универсальный характер. Универсальность биологического ответа заключается в том, что под влиянием различных физических или химических факторов наблюдается сходная последовательность ответных реакций и индуцируется сходный спектр защитных реакций и систем (Levitt, 1980). В рамках этих представлений рассматриваются неспецифические (общие) реакции растений на действие самых различных стрессоров. Одним из таких примеров является неспецифическое повышение устойчивости растений, которое называется перекрестной устойчивостью или адаптацией, когда предобработка растений одним типом стрессора вызывает последующее повышение их устойчивости ко многим другим (Александров. 1975; Александров, Кислюк, 1994; Sabehat et al., 1998; Allan et al., 2006; Yang et al., 2007). Так, в листьях, адаптированных как к холоду, так и к теплу, может снижаться чувствительность к фотоингибированию (Krause, 1994). Отчасти это может быть связано с повышенной активностью антиоксидантных соединений — как высокомолекулярных (ферментов), так и низкомолекулярных (Schoner, Krause, 1990; Sairam et al., 2000), важных для нейтрализации радикалов, повреждающих ФА и другие клеточные структуры. Облучение умеренными дозами УФ-В (УФА) также может приводить к большей устойчивости фотосинтетического аппарата (ФА) растений к действию других стресс-индуцирующих факторов. По-видимому, это связано со стимуляцией синтеза фенольных соединений и каротиноидов (Strid et al., 1994).

Заметим, что наблюдения перекрестной резистентности стимулировали попытки создания с помощью методов генной инженерии трансгенных растений, которые обладают повышенной устойчивостью к ключевым абиогенным факторам внешней среды (Allen, 1995; Grover et al., 2000; Demmig-Adams, Adams, 2002; Chinnusamy et al., 2005; Singh, Grover, 2008; Los' et al., 2008). Для этого важно изучать общие неспецифические физиолого-биохимические защитные реакции, к которым можно отнести снижение активности процессов метаболизма, например, в результате применения ингибиторов роста — ретардантов (Деева, 1980; Rademacher, 1990; Grossman, 1990, 1992; Fletcher et al., 2000), сдвиг гормонально-ингибиторного баланса в сторону синтеза АБК, этилена, цитокининов и фенольных соединений (Ракитина и др., 1994; Чернядьев., 1997, 2005; Шакирова, 2001; Борисова и др., 2001; Чиркова, 2002; Таланова, 2009), повышение скорости процессов диссипации поглощенной в ФА энергии в тепло (Бухов и др., 2001; Schreiber et al., 1996), синтез стрессовых белков (Косаковская, 2008), повышение уровня антиоксидантной активности (Allen, 1995) и т. д. Развитие этих механизмов индуцирует переход растения в так называемое стрессовое состояние. В этом состоянии ингибируется синтез многих соединений, необходимых для роста растения и поддержания фотосинтеза. С другой стороны, синтезируется и/или активируется много защитных, противодействующих развитию окислительного стресса, низкомолекулярных соединений, стрессовых белков, антиоксидантных ферментов и других защитных соединений (Креславский и др., 2007а). В результате такой активации и/или синтеза может индуцироваться повышенная устойчивость растений ко многим абиотическим стрессорам.

При этом не только факторы внешней среды, вызывающие умеренный окислительный стресс, но и некоторые экзогенные биологически активные соединения, могут индуцировать защитные механизмы, повышая устойчивость растений и их ФА к действию абиотических факторов среды, индуцирующих в растении окислительный стресс (Та1апоуа, Ткоу, 1994; Уогс1апоу, 1993, 1995; Шакирова, 2000, 2001; БЬе^ е1 а1., 2006; Креславский и др., 2007а- 0§-уепо 2007; Воронина, 2008). В ряде случаев также обнаружено стресс-защитное действие низкоинтенсивного оранжево-красного света (1обЫ е! а1., 1991; Ьн^акитаг, Ки1апёа1 у.е.1и, 1993; СН е! а1., 2000, 2001; Креславский и др., 2001, 2004а), который, как мы считаем, при определенных условиях можно рассматривать в качестве индуктора стресс-устойчивости ФА.

ФА — одна из наиболее чувствительных к абиотическому стрессу клеточных систем. Хотя физиологические, биофизические и биохимические аспекты фотосинтеза и функционирования фотосистем во многом изучены благодаря исследованиям известных российских и зарубежных ученых: Красновский А. А., Шувалов В. А., Рубин А. Б., Карапетян Н. В., Климов В. В., Карпилов Ю. С., Говинджи, Дж. Барбер и др., способы повышения устойчивости ФА и механизм действия общих физиолого-биохимических защитных реакций исследованы недостаточно. Между тем, использование факторов различной природы, индуцирующих устойчивость ФА к абиотическим стрессам, и понимание механизмов их действия на ФА позволит эффективно контролировать пути повышения устойчивости растений к стрессовым факторам, и, следовательно, регулировать их продуктивность. Одним из таких направлений повышения устойчивости может быть использование индукторов устойчивости ФА химической и физической природы. К индукторам устойчивости химической природы могут быть отнесены ретарданты, в частности холинхлорид (СС) и хлорхолинхлорид (ССС). Они подавляют синтез гиббереллинов, и нашли применение не только как средство борьбы с полеганием зерновых культур, но и как фактор, помогающий адаптировать растения к неблагоприятным факторам внешней среды, по-видимому, за счет торможения роста и изменения гормонально-ингибиторного баланса (Grossman, 1990, 1992; Fletcher et al., 2000; Sheng et al., 2006). К индукторам физической природы может быть отнесен и низкоинтенсивный свет в области 600−750 нм. Имеется ряд работ, в которых изучены защитные эффекты света этого диапазона на активность ФС2 растений в ответ на ингибирующее действие УФ облучения (Lingakumar, Kulandaivelu, 1993) и на уровень Хл (а+в) (Joshi et al., 1991; Biswal et al., 2003). Однако еще мало изучены физиолого-биохимические механизмы защитного действия индукторов стресс-устойчивости растений на ФА, в частности роль активной формы фитохрома и Но02 как сигнального интермедиата в формировании повышенной стресс-устойчивости ФА. Такие исследования могут быть полезны для целенаправленного отбора эффективных индукторов защитных систем с целью увеличения стресс-устойчивости и продуктивности растений.

Генная и гормональная регуляции, будучи важнейшими эндогенными составляющими саморегуляции в живом организме, являются центральной частью регуляторных механизмов клетки как целостной системы (Шевелуха, 1992), в том числе и для регуляции защитных реакций ФА. По-видимому, запуск стрессовой реакции различными факторами связан с их воздействием на активность генов, ответственных за общую неспецифическую устойчивость растительного организма. В частности были получены аргументы в пользу существования неспецифических элементов в первичной реакции генома растений на воздействие как пониженных, так и повышенных температур (Кузнецов и др., 1987). В работах Шакировой (2000, 2001) рассмотрены в сравнительном плане неспецифические защитные механизмы природных и синтетических регуляторов роста. В работах Титова с соавторами (2006), Талановой (2009) и Веселова (2001) отражена роль фитогормонов в первичной реакции растений на стресс. К числу таких реакций мы относим сдвиги в гормонально-ингибиторном балансе в сторону образования стрессовых гормонов, изменения в соотношении антиоксиданты/оксиданты, ингибирование процессов роста и фотосинтеза. К числу общих или основных звеньев относятся генерация АФК, накопление абсцизовой кислоты и различных низкомолекулярных соединений, изменение спектра индуцируемых защитных белков и ряд других. В работах Колупаева и Карпеца (2007, 2009, 2010) анализируются общие сигнальные интермедиаты, участвующие в формировании адаптивных реакций растений при действии ряда стрессоров. К таким интермедиатам относятся Н2О2, Са2+ и ряд других.

Проведено много исследований, которые показали, что стрессоры не однозначны по механизму ингибирующего и повреждающего действия, и при выборе достаточно эффективных протекторов, необходимо учитывать тип стрессора. Существующие универсальные стресс-протекторы способны повышать неспецифическую устойчивость растений. Однако максимально защитить растительный организм от определенного типа стрессового фактора, можно только зная механизм действия стрессора. Например, при действии УФ радиации важно образование защитных УФ-поглощающих пигментов и наличие толстого кутикулярного слоя листовой пластинки (Данильченко и др., 2002), а при действии повышенных температур — повышение теплостойкости тилакоидных мембран и ключевых белков кислород-выделяющего комплекса ФС2 (АНакЪуегсНеу й а1., 2008).

Механизм действия общих (неспецифических) физиолого-биохимических защитных реакций растений исследован явно недостаточно, особенно на уровне ФА и фотосистем, и нуждается в некотором обобщении. Например, в развитии нуждается такой аспект как соотношение механизмов повреждения и восстановления активности ФА, механизм пост-стрессового восстановления активности ФА, роль света и энергетическое обеспечение восстановления.

Мы считаем, что изучение молекулярных и физиолого-биохимических механизмов устойчивости растений к неблагоприятным факторам различной природы относится к числу приоритетных направлений исследований в современной физиологии растений. Ключевым элементом в стресс-физиологии растений является стресс-устойчивость ФА. Поэтому использование различных закаливающих факторов, обладающих четко выраженным антистрессовым эффектом, и понимание механизмов их действия на ФА, позволит эффективно контролировать пути повышения стресс-устойчивости растений, и, следовательно, сохранения их продуктивности, что является актуальной фундаментальной и одновременно прикладной проблемой. Одним из путей повышения стресс-устойчивости ФА может быть применение ретардантов, в частности холинсодержащих соединений (ХСС) — СС и ССС, которые увеличивают не только стресс-устойчивость растений в целом, но и ФА, в частности (Kreslavski et al., 2001; Sheng et al., 2006; Креславский и др., 2009a, 20 106). Известно также защитное действие низкоинтенсивного узкополосного красного света (КС), снижающего повреждающее и ингибирующее действие УФ облучения на ФА растений (Joshi et al., 1991; Lingakumar, Kulandaivelu, 1993; Biswal et al., 1997, 2003). Однако физиолого-биохимические механизмы стресс-защитного действия ретардантов и КС на ФА мало изучены. Эти исследования необходимы для целенаправленного отбора эффективных индукторов увеличения стресс-устойчивости и продуктивности растений.

Рассмотренная нами проблема имеет также общебиологическую ценность. Известно, что малые дозы стрессовых нагрузок могут приводить к малым повреждениям в организме или не создавать их вовсе, и одновременно играть важную сигнальную роль. Так, в экспериментах с червями С. elegans непродолжительное нагревание в начале жизни увеличивает среднюю продолжительность их жизни на 10%, без вреда для организма (Michalski et al.,.

2001; Яшин и др., 2007). Такие малые дозы могут играть сигнальную роль, активируя защитные механизмы организма, и увеличивая его устойчивость к последующим стрессам. В результате организм, с улучшенными механизмами защиты, будет менее чувствителен к более сильному стрессу, чем организм без предактивации. Это приводит к эффекту «гормезиса», который характеризуется увеличением устойчивости к сильному стрессу в результате действия слабого стимула. Частые, но слабые стрессовые воздействия могут стимулировать развитие резервных сил организма человека обеспечивающих надежную защиту путем формирования более мощного преодоления развивающегося стресса. Подобные примеры хорошо рассмотрены в радиобиологии и называются радиационным гормезисом (Кузин, 1991).

Механизмы защиты ФА при облучении растений низкоинтенсивным КС могут иметь значение и для понимания механизмов действия лазера на животный организм и человека. И у растений, и у животных, могут быть общие фоторецепторы, например, хромопротеиды содержащие порфириновый хромофор. В клетках тех и других также содержится митохондриальная дыхательная цепь, через которую могут реализоваться защитные эффекты низкоинтенсивного КС (Ruyters, 1988; Kam, 2008).

Цель и задачи исследования

Целью данной работы являлось исследование регуляции стресс-устойчивости ФА высших растений с помощью индукторов защитных систем растений. На основании своих (Креславский и др., 1988, 1989; Kuznetsov et al., 1992) и литературных данных (Bode, Wild, 1984; Biswal et al., 2003; Mackey et al., 1987) мы предположили, что эффективными индукторами защитных систем могут быть низкоинтенсивный узкополосный КС и ретарданты ХСС. Это совершенно разные по природе факторы и было бы интересно сравнить их друг с другом и с традиционным фактором, который может повышать стресс-устойчивость растений — кратковременным тепловым стрессом. Мы исследовали, при каких условиях они индуцируют стресс-устойчивость ФА и ряд возможных механизмов их действия.

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

1. Исследовать роль антиоксидантных ферментов и низкомолекулярных антиоксидантов, а также некоторых фитогормонов при действии индукторов устойчивости химической природы холинхлорида и хлорхолинхлорида в формировании повышенной устойчивости ФА растений фасоли и пшеницы к ультрафиолетовому облучению и высокой температуре;

2. Изучить роль активной формы фитохрома в механизме действия низкоинтенсивного КС в защите ФА высших растений при облучении УФ-А и УФ-В. Выяснить роль антиоксидантной системы и фитогормонов в защитном действии КС, опосредованном активной формой фитохрома;

3. На примере цианобактерий исследовать роль каталазы-пероксидазы в защите ФА от света высокой интенсивности;

4. Изучить влияние кратковременного прогревания растений пшеницы на устойчивость ФА к повторному тепловому стрессу и свету высокой интенсивности, выяснить связь изменений устойчивости ФА с уровнем антиоксидантной активности, циклическим фотофосфорилированием и дыханием;

5. Обобщить данные по общим механизмам при действии указанных индукторов защитных систем растений различной природы: химической (ХСС) и физической природы — низкоинтенсивный КС и кратковременный тепловой стресс. Предложить схемы повышения стресс-устойчивости ФА при предобработке растений индукторами различной природы.

Научная новизна. Проведенные исследования позволили выявить ряд общих и специфических закономерностей по регуляции устойчивости ФА к стрессам абиотической природы при действии различных доз разных по природе индукторов защитных систем растений.

1. Впервые обнаружено защитное действие индукторов защитных систем растений: КС низкой интенсивности и ретардантов ССС и СС на ФА высших растений при действии УФ-радиации и повышенной температуры.

2. Установлено участие активной формы фитохрома в формировании УФ-защитных систем ФА при предоблучении растений КС. Обнаружена связь между защитным действием КС против УФ-радиации и КС-индуцированным повышением пероксидазной активности, а также увеличением содержания в листьях каротиноидов и флавоноидов.

3. Впервые установлено, что повышение пула Н202 в листьях растений, обработанных ретардантными дозами ССС, а также облученных КС с А, м=660 нм предшествует снижению активности ФС 2 и последующему увеличению стресс-устойчивости ФА, что предполагает участие АФК в формировании повышенной стресс-устойчивости.

4. Впервые выявлена связь между кратковременной генерацией Н202 при тепловом закаливании, повышением уровня антиоксидантной активности и скоростей темнового дыхания в листьях, а таюке циклического фотофосфорилирования в изолированных хлоропластах с одной стороны и повышением стресс-устойчивости ФА в закаленных растениях с другой стороны.

5. Установлено, что разные по природе индукторы защитных систем: КС низкой интенсивности, ретарданты ССС и СС, а также закаливающие повышенные температуры, — участвуют в формировании повышенной стресс-устойчивости ФА аналогичным образом — через транзитное повышение пула Н202, которое наблюдается при достаточно высоких дозах индуктора и предшествует повышению активности антиоксидантных ферментов и увеличению содержания низкомолекулярных антиоксидантов.

Выдвинута гипотеза о том, что индукторы устойчивости могут действовать путем изменения уровня Н202, АБК и/или прямым путем через сигнальные интермедиаты, такие как Са2+ и факторы транскрипции, что, в конечном итоге, приводит к повышению антиоксидантной активности и уровня защитных гормонов, что является физиолого-биохимической основой регуляции устойчивости ФА.

Научно-практическая значимость. Наши теоретические разработки и концептуальные представления в отношении механизма стресс-устойчивости ФА при использовании индукторов защитных систем, таких как ретарданты, закаливающие температуры и низкоинтенсивный КС, расширяют современные представления о механизмах регуляции стресс-устойчивости ФА, в частности, защите ФА и растений от ингибирующего действия УФ-радиации. Результаты наших исследования о путях повышения антиоксидантной активности, прежде всего уровня низкомолекулярных антиоксидантов, включая каротиноиды, витамины, хлорофилл, с помощью индукторов стресс-устойчивости могут быть использованы для получения продуктов питания, обогащенных антиоксидантами (Креславский и др., 2004в), что может быть важно для повышения устойчивости к заболеваниям и для геронтологии (Хавинсон и др., 2003). Были изучены закономерности влияния дополнительного КС, получаемого как от свето-трансформирующих пленок Полисветан или РэдЛайт с разными типами фотолюминофоров на основе неорганических комплексов редкоземельных элементов, так и от светодиодов (А, м=615−625 нм) на фотосинтез и рост растений, а также на содержание низкомолекулярных антиоксидантов. Использование таких пленок позволило заметно повысить продуктивность растений и фотосинтез на сильном свету, а также увеличить пул некоторых антиоксидантов. Эти исследования послужили основой для создания патента на изобретение, в котором предлагается для таких пленок новый тип фотолюминофора из наноразмерных частиц (Воробьев и др., 2008).

Результаты исследований также были представлены на ряде международных выставок по инновациям и новым технологиям. Так, в 2009 г. (Кузнецов, Креславский, 2009) получена золотая медаль за разработку фотобиологических технологий регуляции устойчивости растений на V-ом международном салоне инноваций и новых технологий в г. Севастополе, Украина.

Наши гипотезы о трансдукции светового и теплового сигналов в растениях и молекулярных механизмах стресс-устойчивости ФА, представлены в обзорах журналов (Креславский и др., 2006 и 2007, Биологические мембраны), (Allakhverdiev, Kreslavski et al., 2008, Photosynth. Res.), (Kreslavski et al., 2009, Photochem. Photobiol. С.) и могут быть использованы при чтении базового курса и спецкурсов по физиологии растений в вузах.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. ССС и СС повышают устойчивость ФА к УФ-радиации и тепловому стрессу. Защитное действие ССС связано с увеличением активности антиоксидантных ферментов и содержания низкомолекулярных антиоксидантов в листьях и хлоропластах. Увеличение уровня АБК в листьях также может дать вклад в повышение стресс-устойчивости ФА. Повышение содержания Н2О2 в листьях растений, обработанных ССС, предшествует росту стресс-устойчивости ФА, что предполагает участие АФК в ее увеличении.

2. Предоблучение растений КС низкой интенсивности повышает устойчивость их ФА к УФ-радиации. Защитное действие КС связано с повышением пероксидазной активности и увеличением содержания УФ-поглощающих соединений в листьях растений. Ключевыми сигнальными интермедиатами в трансдукции сигнала КС являются активная форма фитохрома, а при л относительно высоких дозах красного света (-0.3−2 Дж см") — АФК.

3. Кратковременное тепловое закаливание растений повышает устойчивость ФА к вторичному тепловому стрессу и к фотоингибированию. Закаливание приводит к кратковременному повышению пула АФК, с последующим повышением активности антиоксидантных ферментов и скорости темнового дыхания в листьях, а также скорости циклического фотофосфорилирования, что обуславливает повышение стресс-устойчивости ФА.

4. Один из ключевых путей повышения стресс-устойчивости5 ФА. является. увеличение1 уровня антиоксидантной активности и содержания низкомолекулярных антиоксидантоврегулируемых пулом. АФК и. других сигнальных интермедиатов,. образующихся при обработке растений-индукторамизащитных систем'.

Личныйвклад соискателя. Диссертационная работа' выполнена самостоятельно, на основе концепций предложенных соискателем-. Автор лично < участвовал в постановке и решении экспериментальных задач, обработке результатов и написании научных трудов. В обсуждении полученных данных также участвовали, сотрудники ИФПБ РАН Климов В. В., Аллахвердиев С. И., Любимов В. Ю., Ладыгин B. F, Музафаров Е. Н, Биль К. Я., Ерохин КХЕ,. Христин М. С. и др. (ИФПБ РАН, г. Пущино), Кузнецов1 Е. Д: (ИОФАН, г. Москва), Лось Д. А. и Бухов Н: Г. (ИФР, Москва), Мурата Н. (Национальный* Институт общей биологии, Япония), Карпентье Р. (Квебекский университет, Канада), Херберт G. (Университет в Вайоминге, США) — Моханти П. (Университет Джавахарлала Неру, Индия) и др. Автор выражает им всем глубокую благодарность.

Апробацияработы. Результаты работы докладывались на всесоюз. Конф. «Преобразование энергии^ в фотосинтетических системах и их моделях (Пущино, 1989) — Межд. Конф. «Фотосинтез и фотобиология (Пущино, 1991) — 3 межд. Конф. «Регуляторы роста и развития растений» (Москва, 1995) — I Всесоюз. Конффотобиологов (Пущино, 1996) — 10-м конгрессе федерации Европейских обществ физиологов растений (Флоренция, 1996) — V межд. Конф. «Регуляторы роста и развития растений» (Москва, 1999) — 13-й Межд. Конгрессе по фотобиологии (Сан-Франциско, Калифорния, 2000) — XV Межд. Симп. по Environmental Biogeochemistry (ISEB 15) (Wroclaw, 2001) — V съезде общества физиологов растений России (Пенза, 2003) — V Межд. симп.: Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования (Москва, 2003) — 13th WesternPhotosynthesis Conference (Asilomar, Pacific Grove, California, USA, 2004) — Межд. Конф, «Физиологические и молекулярно-генетическиеаспекты» сохранения биоразнообразия» (Вологда, 2005) — VI Межд. Симп.: Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования (Москва, 2005, 2009) — Межд. Конф. «Photosynthesis in the post-genomic era: Structure and function of the photosystems», (Pushchino, 2006) — VII Межд. Симп. и научной конф. «Нетрадиционные и редкие растения, природные соединения и перспективы их использования» (Белгород, 2006) — совместном Российско-Индийском рабочем совещании «Stress-photosynthesis» (Пущино, 2006) — II Межд. Симп. «Plant growth substances: Intracellular hormonal signaling and applying in agriculture (Киев, Украина, 2007) — VII Межд. Симп. «Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования (Пущино, 2007) — VI съезде общества физиологов растений России и межд. Конф. «Современная физиология растений: от молекул до экосистем» (Сыктывкар, 2007) — III Межд. Научно-практической конф. «Культура, экология, здоровье: новая научная концепция» — (Волгоград, 2007) — WG1 and WG3 Workshop (Израиль, 2007) — III (Воронеж, 2001) и V съездах (Пущино, 2008) фотобиологов РоссииVIII Межд. .симп. «Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования (Москва, 2009) — Межд. научно-практической Конф. РГАУ-МСХА имени К. А. Тимирязева (Москва, 2009) — XIX Пущинских чтениях по фотосинтезу (Пущино, 2009).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 75 научных работ, из них 20 статей в отечественных научных журналах, рекомендованных в списке ВАК и 11 в ведущих рецензируемых международных журналах, а также монография по регуляции фотосинтеза и роста растений и глава в книге по фотосинтезуполучено авторское свидетельство на изобретение.

Структура диссертации. Диссертация состоит из введения, литературного обзора, описания объектов и методов исследования и 4 экспериментальных глав, заключения, выводов и списка литературы, включающего 460 источников, в том числе 151 на русском и 309 на английском языке. Работа изложена на 330 страницах, включает 78 рисунков и 15 таблиц.

ОБЩИЕ ВЫВОДЫ.

1 Обработка растений ретардантными дозами хлорхолинхлорида и холинхлорида приводит к повышению устойчивости фотосинтетического аппарата к УФ-радиации и высоким температурам. Обнаружена связь защитного действия этих ретардантов с увеличением активности антиоксидантных ферментов и содержания низкомолекулярных антиоксидантов в листьях и хлоропластах.

2. Увеличение пула Н202 в листьях растений, обработанных хлорхолинхлоридом, предшествует росту тепловой устойчивости ФА, что предполагает участие АФК в формировании повышенной устойчивости ФА к высокой температуре.

3. Одним из ключевых факторов в защитном действии предоблучения узкополосным КС с А, м -625 и 660 нм от УФ-индуцированного ингибирования фотохимической активности ФС2 и фиксации С02, а также потери Хл и каротиноидов при экспозиции листьев растений в темноте является увеличение пероксидазной активности и повышение пула низкомолекулярных антиоксидантов в предоблученных листьях. Активная форма фитохрома участвует в формировании КС-индуцированного повышения устойчивости ФА растений к УФ-радиации.

4. При длительном (> 1ч) облучении и умеренных дозах КС (-0.3−2 Дж см" 2) перекись водорода является сигнальным интермедиатом, что предполагает участие АФК в формировании повышенной устойчивости ФА к УФ-радиации.

5. Приобретенная в результате кратковременного теплового стресса повышенная стресс-устойчивость ФА обеспечивается более высокой скоростью синтеза белков, темнового дыхания и циклического фотофосфорилирования, а также более высокой антиоксидантной активностью в листьях закаленных растений, что является следствием транзитного увеличения уровня ЩОг в листьях.

6: Соотношение про-/антиоксиданты является? одним из ключевых факторов, регулирующих скорость восстановления фотосинтетической активности после кратковременного теплового или светового стресса. Сдвиг соотношения в сторону антиоксидантов приводит к ускорению восстановления и, наоборот, в сторону прооксидантов ведет к его замедлению.

7. Из совокупности полученных данных следует, что одним из ключевых путей повышения стресс-устойчивости фотосинтетического аппарата при действии индукторов защитных систем" растений является увеличение активности антиоксидантных ферментов и/или содержания низкомолекулярных антиоксидантов. Общими сигнальными интермедиатами в, индукции защитных систем при действии всех рассмотренных индукторов являются АФК. В результате действия индукторов, фотосинтетический аппарат и растение в целом переключаются с обычной программы развития на адаптивную, что обеспечивает повышение стресс-устойчивости фотосинтетического аппарата.

БЛАГОДАРНОСТИ.

Автор выражает глубокую благодарность консультанту д.б.н. С.И.

Аллахвердиеву, д.б.н. В. Ю. Любимову, д.б.н. А. А Кособрюхову, проф. В.В.

Климову, профессору Ю. Е. Ерохину и проф. Г. Р. Кудояровой за обсуждение структуры диссертации и автореферата.

ОБЩЕЕ ЗАКЛЮЧЕНИЕ.

Важнейшей, задачей фитофизиологии является, изучение реакций растений на неблагоприятные факторы, внешней среды. Эта функция у живых организмов эволюционно сформирована в процессе длительной^ адаптации растений к внешней среде (Веселовский и др., 1993): Универсальность биологического ответа заключается в том, что под влиянием различных физических или химических факторов наблюдается сходная по характеру реакция растений и других организмов (Levitt, 1980) г Общие (неспецифические) ответные реакции на развитие стресса широко распространены среди различных организмов. Одним из типичных примеров является кросс-устойчивость, когда, например, в результате тепловой обработки растений, формируется повышенная устойчивость не только к вторичному тепловому стрессу, но и к другим стрессовым факторам (Александров, Кислюк, 1994; Sabehat et al., 1998). Самые разнообразные повреждающие воздействия приводят к торможению роста осевых органов и снижению митотической активности тканей Неспецифические реакции проявляются и на биохимическом уровне. При самых разнообразных воздействиях активируется антиоксидантная система, часто возрастает дыхание, изменяется гормонально-ингибиторный баланс (Пахомова, Чернов, 1996; Шакирова, 2001; Титов и др., 2006; Таланова, 2009). В меньшей степени, однако, изучены защитные реакции на уровне ФА растений, в частности, роль изменений гормонально-ингибиторного баланса в сторону накопления стрессовых гормонов и соотношения антиоксидант-оксидант в сторону повышения уровня антиоксидантов. Еще одним мало разработанным вопросом является участие фитогормонов и антиоксидантов в формировании повышенной устойчивости растений в начальный период действия неблагоприятных факторов, хотя результаты ряда исследований указывают на то, что именно в этот период в клетках и тканях растительного организма могут происходить ключевые события, во многом предопределяющие весь последующий ход формирования устойчивости (Титов и др., 2006; Pastori, Foyer, 2002).

Мы предположили, что такие общие ответные реакции ФА могут происходить не только при действии традиционных стрессоров-химической или физической природы, но и при обработке растений факторами, которые приводят к транзитной генерации небольшого дополнительного количества АФК, и вызывают небольшие изменения в ФА. Происходит своеобразная закалка ФА, так что последний приобретает повышенную устойчивость к действию достаточно сильных стрессоров, например, к высокой температуре или УФ облучению (рис. 77).

В данной работе представлены и обобщены результаты исследований выполненных автором в течение примерно 20 лет, с 1987 по 2009 г. Ранее было обнаружено, что два разных фактора — ретарданты — ХСС и низкоинтенсивный кратковременный КС с А, м=660 нм, действующий через Фх, модифицируют влияние друг друга в процессах зеленения растений и некоторых фотоморф огенетических процессах, проявляя в ряде случаев эффект синергизма и сходное действие (Kuznetsov et al., 1992; Kobzar' et al., 1999). Развивая эти представления, мы предположили, что оба этих фактора — один химической, другой физической природы могут индуцировать формирование повышенной устойчивости ФА, проявляя общие механизмы повышения, и улучшать адаптивную способность растений. Мы также сравнили механизмы действия этих индукторов устойчивости ФА растений с закалкой растений кратковременным тепловым стрессом.

Впервые детально изучены механизмы защитного действия, важных для практического растениеводства холинсодержащие соединения (СС и ССС), на ФА растений при разных способах обработки. Показано, что экзогенные ХСС защищают ФС2 и тилакоидные мембраны от окислительного стресса, вызванного облучением листьев ультрафиолетовым светом или прогреванием проростков. Из наших данных следует, что основой повышения устойчивости.

ФА может быть повышенная активность антиоксидантных ферментов и более высокое содержание низкомолекулярных антиоксидантов, а также некоторых фитогормонов, обнаруженные в листьях обработанных растений.

Значительное повышение пула АФК.

Рецепторы.

Стрессор

Повышенный синтез низко-мол. антиокс.

Повышение активности ферментов: СОД, АсП.

Повышение пула защитных белков vу.

Рис. 77. Предполагаемые пути трансдукции сигнала от различных по природе индукторов защитных систем и его преобразования в биохимические и физиологические изменения клетки, что приводит к развитию повышенной устойчивости ФА к окислительному стрессу, возникающему при воздействии абиотических стрессоров. АФК — активные формы кислорода. Вторичные мессенджеры и сигнально-регуляторные белки — молекулы-посредники, включая ФДк, активные формы кислорода (АФК) и факторы, взаимодействующие с Фдк (PIFs), Са2+, протеинкиназы, фосфатазы, факторы транскрипции. СК — салициловая кислота. Цветом отмечены изученные нами элементы. Повышение и активация отмечены стрелками вверх, снижениестрелкой вниз. Предложено на основе обзоров: (Hung et al., 2005; Karu, 2008; Singh, Grover, 2008; Kreslavski et al., 2009aРоманов, 2009) и наших экспериментальных данных.

Обнаружено, что КС в области 620−660 нм уменьшает УФ-индуцированное повреждение ФС2 (Креславский и др., 2001, 2004а, 20 096). Показана обратимость защитного действия КС при последующем облучении кратковременным ДКС с А, м=730 нм, что свидетельствует в пользу того, что защитный ответ следует классической КС/ДКС обратимой реакции низкоэнергетического типа (ТЛ^И.), свойственной обычно фотостабильному Фх В (Креславский, Аллахвердиев, 2006).

Из наших данных следует, что защитное действие узкополосного КС в условиях УФ стресса носит достаточно универсальный характер и проявляется не только у дрожжей, и бактерий (Фрайкин и др., 1995; КоЬН е1 а1., 2000), но и у высших растений как на уровне первичных реакций фотосинтеза, так и вторичных — фиксации С02. Важную роль в этой защите, играет индуцированное низкоинтенсивный КС, который действует, через фитохромную систему, повышение антиоксидантной активности листа, которая определяется активностью антиоксидантных ферментов и низкомолекулярных антиоксидантов (каротиноиды, флавоноиды и т. д.). По-видимому, в условиях достаточно высоких доз низкоинтенсивнового КС порядка 1 Дж см", которые вызывают слабый стресс, происходит транзитная генерация АФК, что ведет к активации антиоксидантной системы. Действительно, при интенсивности (I) КС 1−3 Вт м" и времени облучения порядка 2 ч мы наблюдали уменьшение активности ФС2, характеризуемой отношением Ру/Рт с 0.75±0.01 до 0.73 при 1=1 Вт м" 2 и — 0.69 при 1=2 Вт м" 2.

Кратковременная тепловая предобработка растений, сопровождаемая развитием слабого теплового стресса, приводит в основном не к повышению первичной теплоустойчивости ФА, а к проявлению более высокой скорости восстановления ФА растений при вторичной термообработке и при фотоингибировании. В предобработанных растениях наблюдали более высокую скорость фиксации С02, темнового дыхания, повышенный уровень циклического фотофосфорилирования, более высокую активность антиоксидантных ферментов (Креславский и др, 20 076- Kreslavski et al, 2008). Все это может быть причиной улучшенного восстановления ФА.

Согласно нашим данным, полученным на мутанте katG' цианобактерии Synechocystis sp РСС 6803, при умеренном стрессе, проявляющемся в процессе восстановления ФА при NaCl-стимулированном фотоингибировании, важную роль играет активность фермента каталазы-пероксидазы (Креславский и др, 2010а). На основе наших данных о повышенной антиоксидантной активности и/или более высоком содержании пигментов (Хл и др.) в листьях и препаратах тилакоидных мембран растений, обработанных КС, ХСС или термообработанных, сделан вывод о том, что одним их важных механизмов повышения стресс-устойчивости является повышение активности антиоксидантных ферментов и уровня низкомолекулярных антиоксидантов.

Обнаруженное нами накопление стрессовых гормонов при действии ХСС и КС (Kreslavski et al, 1997; Креславский и др, 2010в) вместе с литературными данными позволяет предположить, что накопление стрессовых гормонов также вовлечено в механизм формирования повышенной стресс-устойчивости ФА при действии индукторов различной природы (Креславский, 2009).

В последнее время появляется все больше работ, в которых представлены доказательства участия Н202 в регуляции процессов роста, развития, а также при адаптации растений к стрессам окружающей среды (Hung et al, 2005; Pastory, Foyer, 2002). Так, H202 работает как сигнальная молекула в процессах регуляции размера устьиц и свето-индуцированного движения хлоропластов в листе. Н2О2 может синтезироваться также в ответ на внесение фитогормонов, например, АБК и салициловой кислоты (Pei et al, 2000). Сигнал Н202 преобразуется в физиологический ответ с помощью различных медиаторов и сигнальных молекул типа протеинкиназ и факторов транскрипции, а также фосфатаз и ионов кальция (Miller, Mittler, 2006; Vandenbrocke et al, 2008).

Мы предположили, что во многих случаях при действии индукторов защитных систем (ИЗС) происходит повышенное образование АФК, и, прежде всего,.

Н202. Это повышение может реализоваться через механизм, предложенный для приобретенной устойчивости в результате предобработки растений салициловой кислотой (Оа1 еХ а1., 1998). В этом случае было обнаружено, что предобработка ведет к снижению активности каталазы и аскорбатпероксидазы, утилизирующих Н202. В итоге происходит транзитное увеличение образования Н202, что, по-видимому, активирует антиоксидантную систему. В результате, индуцируется повышенная стресс-устойчивость ФА.

Повышение содержания АФК индуцирует синтез многих белков, в частности, антиоксидантных ферментов и стрессовых белков (ЗсапёаНоэ, 2005), а также гу, появление продуктов ПОЛ и рост содержания Са в цитоплазме (Колупаев, Карпец, 2009). Анализ экспрессии генов, проведенный различными генными методами, показал, что возрастание уровня Н202 влияет не только на экспрессию генов антиоксидантной защиты, но и на экспрессию генов вовлеченных в регуляцию транскрипции генов связанных с липидным и белковым метаболизмом клетки.

Согласно разработанной схеме (рис. 77) в растениях, обработанных ИЗС (ХСС, КС и закаливающие температуры) увеличивается активность антиоксидантных ферментов, усиливается накопление низкомолекулярных антиоксидантов (каротиноиды, флавоноиды и др.), осмолитов, стрессовых и сигнальных белков, а также повышается уровень стрессовых гормонов. Одной из причин развития таких изменений может быть обнаруженная нами транзитная генерация Н202 и, вероятно, других АФК, при действии ИЗС растений.

В заключении укажем, что наиболее перспективным направлением этих исследований является, на наш взгляд, попытка найти общие механизмы стресс-зашитного действия КС на уровне животных и растительных организмов. Важно обнаружить в животных организмах фоторецептор, подобный по основным свойствам (свет-индуцированная обратимость эффектов, мобильность) растительному фоторецептору фитохрому, и изучение его роли в формировании стресс-защитных систем животных организмов.

Другое актуальное направление — это исследование роли различных фоторецепторов, в частности фитохромов, в формировании повышенной устойчивости растений и их ФА к свету высокой интенсивности и УФ-радиации.

Показать весь текст

Список литературы

  1. О.В., Беркович Ю. А., Ерохин А. Н., Жигалова Т. В., Погосян С. И., Смолянина С. О. 2009. Особенности роста и фотосинтеза растений китайской капусты при выращивании под светодиодными светильниками. Физиология растений. 56: 17−26.
  2. Т.В., Титов А. Ф., Топчиева JI.B. 1994. Сравнительное изучение реакции растений на действие высоких закаливающих и повреждающих температур. Физиология растений. 41(3): 381−385.
  3. Н.П., Константинова Т. Н., Голяновская С. А., Гукасян И. А., Гатс К., Романов Г. А. 2002. Клубнеобразование и рост в культуре in vitro трансгенного картофеля с суперпродукцией фитохрома В. Физиология растений. 49(4): 535−540.
  4. В.Я. 1975. Клетки, макромолекулы и температура. Л.: Наука, 329 с.
  5. В. Я. 1985. Реактивность клеток и белки. Л.: Наука, 317 с.
  6. В.Я., Фельдман Н. Л. 1958. Исследование реактивного повышения устойчивости клеток при действии нагрева. Бот. журн. 43(2): 194−213.
  7. В.Я., Кислюк И. М. 1994. Реакция клеток на тепловой шок: физиологический аспект. Цитология. 36: 5−59.
  8. М.М., Сидорук К. В., Зинченко В. В., Нефедова Л. Н., Церфф Р., Шестаков C.B. 2003. Об участии регуляторного гена prqR в развитии устойчивости к метилвиологену у цианобактерии Synechosystis sp. РСС 6803. Генетика. 39(1): 18−24.
  9. Т.И., Кособрюхов A.A., Иванов «A.A., Креславский В. Д. 2005. Влияние кадмия на С02 газообмен, переменную флуоресценцию хлорофилла и уровень антиоксидантных ферментов в листьях Pisurn sativum. Физиология растений. 52(1): 21−26.
  10. В.А. 1991 Механизмы стресса и перекисное окисление липидов. Успехи современной биологии. 111: 923−932.
  11. Т.А., Бугадже С. М., Ракитин В. Ю., Власов П. В., Кузнецов Вл.В. 2001. Тепловой шок повышает устойчивость растений к УФ-Б облучению. 2. выделение этилена и СОг. Физиология растений. 48(5): 733−738.
  12. Л.С., Кислзок И. М., Палева Т. В., Шерстнева O.A. 2004. Защитный эффект тепловой закалки от фотоингибирования фотосинтетического аппарата пшеницы при высокой температуре. Физиология и биохимия культурных растений. 36(6): 485−494.
  13. A.B. 2008. Теория и практика лазерной обработки растений. Мичуринск-наукоград РФ: Рос. акад. с.-х. наук, 548 с.
  14. Н., Хебер У., Шувалов В. А., Карпантье Р. 2001. Нефотохимическая диссипация возбужденных состояний в фотосистемах 1 и 2 хлоропластов: механизмы защиты от ингибирования. Вестник Башкирского университета. № 2(1): 17−19.
  15. В.Ф., Креславский В. Д., Кузнецов Е. Д. 1991. Хлорхолинхлорид как модификатор ряда регулируемых фитохромом процессов роста и фотосинтеза. Докл. АН СССР. 316 (6): 1512−1514.
  16. А.П. 2001. Гормональная и антиоксидантная системы при ответе растения на тепловой шок: Автореф. дисс. докт. биол. наук, М: ИФР, 40с.
  17. А.П., Лобов В. П., Олюнина Л. Н. 1998. Изменение в содержании фитогормонов в ответной реакции растений при тепловом шоке и в период его последействия. Физиология растений. 45(5): 709−715.
  18. Т.В., Веселовский В. А., Чернавский Д. С. 1993. Стресс у растений. Биофизический подход. М.: Изд-во Моск. ун-та, 144 с.
  19. В.А., Веселова Т. В. Люминесценция растений. М.: Наука, 1990.
  20. В.А., Веселова Т. В., Чернявский Д. С. 1993. Стресс растения.
  21. Т.Й. 2001. Клеточные механизмы низкоинтенсивной лазерной терапии».
  22. Успехи современной биологии. 121(1): 110−120.
  23. Е.Ф., Креславский В. Д., Кузнецов Е. Д., Музафаров E.H. 1997. Взаимодействие холиновых соединений и фитохромной системы в процессе роста и развития проростков пшеницы. Докл. РАН. 63: 696−698.
  24. Е.Ф., Креславский В. Д., Музафаров E.H. 1996. Фитохромный контроль роста и зеленения проростков пшеницы и их модификация УФ-светом. 1-ая всеросс. Конф. фотобиологов. 28−30 мая. Пущино. С. 21−22.
  25. Ю.Е., Карпец Ю. В. 2009. Активные формы кислорода при адаптации растений к стрессовым температурам. Физиология и биохимия культурных растений. 41(2): 95−108.
  26. Ю.Е., Карпец Ю. В. 2010. Формирование адаптивных реакций растений на действие абиотических стрессов. Киев: Основа, 352 с.
  27. Т.Н., Аксенова Н. П., Гукасян И. А., Голяновская С. А., Романов Г. А. 2004. Усиление устойчивости к средневолновой области ультрафиолетовой радиации у фитохромных трансформантов картофеля. Докл. РАН. 395(3): 424−426.
  28. И.В. 2008. Стрессовые белки растений. Киев: Институт ботаники им Н. Г. Холодного. 151с.
  29. A.A. 2008. Адаптационные изменения фотосинтеза при повышенной концентрации С02. Дисс. докт. биол. наук. М.: МСХА, 230 с.
  30. A.A., Креславский В. Д., Храмов Р. Н., Браткова Л. Р., Щелоков Р. Н. 2000. Модифицирующее действие низкоэнергетического люминесцентного света 625 нм на рост и фотосинтез растений. Докл. РАН. 372(6): 827−829.
  31. F.B. 2008: Участие фитохромов- А и< В в регуляции? устьичных движений. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Москва: МГУ, 24 с.
  32. Е. И: 2010. Физиология устойчивости сельскохозяйственных культур. М.: Дрофа, 638 с.
  33. В.Д. 1982. Исследование спектральных и фотохимических свойств комплексов- фотосинтетических пигментов с донорами и акцепторами электрона-. Автор- Дисс. канд. физ-мат. наук. Пущино: Институт биофизики РАН, 32 с.
  34. В.Д., Герц С. М., Столовицкий Ю. М., Евстигнеев В. Б. 1979- Специфическая сольватация хлорофилла эфирами. Биофизика. 24(4): 770.
  35. Креславский В: Д., Брандт А. Б., Киселева М-И,. Руденко Т. И-, Якунин А'.Ф.,. Макаров А. Д. 1989. Гормональная и световая регуляция роста хлореллы. Биопродуктивность агроценозов как комплексная, проблема. Пущино. ОНТИ НЦБП АН СССР, с. 112−116.
  36. Креславский В. Д, Василенко В. Ф., Кузнецов Е. Д. и Музафаров E.H. 1993а. О первичных стадиях трансдукции светового сигнала в растительной клетке (обзор). Успехи современной биологии. 113: 422−431.
  37. В.Д., Садовникова Н-А, Оловянишникова Г.Д., Столовицкий Ю. М. 19 936. Спектральные и фотохимические свойства комплексов фотосинтетических пигментов с азотсодержащими «-донорами. Ж. Физ. Хим. 67(5): 1059−1066.
  38. В. Д., Иванов А. А., Храмов Р. Н. и Кособрюхов А. А. 2001. Низкоэнергетический красный свет повышает устойчивость фотосинтетического аппарата проростков шпината к УФ-В. Вестник Башкирского университета. 2(1): 50−52.
  39. В.Д., Христин М. С. 2003. Последействие теплового шока на индукцию флуоресценции и низкотемпературные спектры флуоресценции листьев пшеницы. Биофизика. 48(5): 865−872.
  40. В.Д., Иванов А. А., Кособрюхов А. А. 2004а. Низкоэнергетический красный свет в области длин волн 620−660 нм уменьшает УФ-В-индуцированное уменьшение повреждения фотосистемы II в листьях шпината. Биофизика. 49(5): 840−844.
  41. В.Д., Кобзарь Е. Ф., Музафаров E.H., Кузнецов Е. Д. 20 046. Влияние кратковременного красного света и холиновых соединений на рост, зеленение и уровень цитокининов в проростках пшеницы. Докл. РАСХН. N6: 3−5.
  42. В.Д., Кузнецов Е. Д., Миляев В. А. 2004в. Теория и практика живого питания. Препринт. М.: Институт общей физики РАН, 45 стр.
  43. В.Д., Аллахвердиев С. И. 2006. Механизмы трансдукции фоторецепторного сигнала в растительной клетке (обзор). Биол. Мембраны. 23: 275−295.
  44. В. Д., Карпентиер Р., Климов В. В., Мурата Н., Аллахвердиев С. И. 2007а. Молекулярные механизмы устойчивости фотосинтетического аппарата к стрессу (обзор). Биол. Мембраны. 24(3): 195−217.
  45. В. Д., Любимов В. Ю., Шабнова Н. И., Балахнина Т. И., Кузнецов Е. Д., Кособрюхов А. А. 20 076. Последействие теплового шока наактивность фотосинтетического аппарата и перекисное окисление липидов в листьях пшеницы. Докл. РАСХН. № 4: 5−9.
  46. В.Д., Фомина И. Р., Кособрюхов A.A., Херберт С. К., Бабыкин М. М., Биль К. Я. 2007в. Эффекты индукторов окислительного стресса на фотосинтетический аппарат мутанта Prq20 цианобактерии Synechocystis sp. PPC 6803. Биофизика. 52: 277−286.
  47. В.Д., Балахнина Т. И., Жармухамедов С. К., Шабнова Н. И., Христин М. С., Любимов В. Ю. 20 106. Механизм повышения термоустойчивости ФС2 растений пшеницы хлорхолинхлоридом. Докл. РАСХН. № 3: 7−10.
  48. В.Д., Любимов В. Ю., Котова Л. М., Котов A.A. 2010в. Влияние предобработки хлорхолинхлоридом на устойчивость ФС 2 растений фасоли к УФ-В радиации, содержание фитогормонов и перекиси водорода. Физиология растений (принято в печать).
  49. Г. Р., Чередова Е. П., Гюли-Заде В.З., Мустафина А. Р., Крутьков В. М. 1988. Влияние глифосата на содержание свободных и связанных ауксинов в проростках кукурузы. Физиология растений. 35(5): 888−892.
  50. Г. Р., Веселов С. Ю., Каравайко H.H., Гюли-Заде В.З., Чередова Е. П., Мустафина А. Р., Мошков И. Е., Кулаева О. Н. 1990. Иммуноферментная тест-система для определения цитокининов. Физиология растений. 37(1): 193−199.
  51. А. М. 1991. Проблема малых доз и идеи гормезиса в радиобиологии. Радиобиология. 31(1): 16−21.
  52. Вл. В., Дмитриева Г. А. 2006. Физиология растений: Учебник. М.: Высш. шк., 742 с.
  53. Вл. В., Ракитин В. Ю., Садомов Н. Г., Дам Д.В., Стещенко Л. А., Шевякова H.H. 2002. Участвуют ли полиамины в дистанционной передаче стрессового сигнала у растений? Физиология растений. 49(1): 136−147.
  54. В.В., Рощупкин Б. В. 1994. Стрессорный ответ клеток Nicotiana sylvestris L. на засоление и высокую температуру. Синтез белков теплового шока и фосфорилирование полипептидов. Физиология растений. 41(4): 566−572.
  55. Кузнецов B. B, Кимпел Дж, Гокджиян Дж, Ки Дж. 1987. Элементы неспецифической реакции генома растений при холодовом и тепловом стрессе. Физиология растений. 34(5): 859−868.
  56. Кузнецов В. В, Трофимова М. С, Андреев И. М. 1997. Кальций как регулятор синтеза белков теплового шока в клетках растений. Докл. РАН. 354(3): 416−418.
  57. Кузнецов Вл. В, Шевякова H.H. 1999. Пролин при стрессе: биологическая роль, метаболизм, регуляция. Физиология растений. 46: 391−336.
  58. Кузнецов В. В, Хыдыров Б. Т, Рощупкин Б. В, Борисова H.H. 1990. Общие системы устойчивости хлопчатника к засолению и высокой температуре: факты и гипотезы. Физиология растений. 37: 987−996.
  59. E.H. 2004. Роль света в устойчивости растений томата к вирусу табачной мозаики. Автор, дисс. канд. биол. наук. Томск, 154 с.
  60. О.Н. 1973. Цитокинины, их структура и функция. М.: Наука. 264 с.
  61. О.Н. 1982. Гормональная регуляция физиологических процессов у растений на уровне синтеза РНК и белка. М.: Наука, 83 с.
  62. О.Н. 1997. Белки теплового шока и устойчивость растений к тепловому шоку. Соросовский образовательный журнал. № 2:5−13.
  63. Кулаева О. Н, Кузнецов В. В. 2002. Новейшие достижения и перспективы в области изучения цитокининов. Физиология растений. 49(4): 626−640.
  64. О. Н, Кузнецов В.В. 2004. Аналитический обзор: новейшие достижения и перспективы изучения механизма действия фитогормонов и их участия в сигнальных системах целого растения. Вестник РФФИ. № 2: 12−26.
  65. Курганова JI. H, Веселов А. П, Гончарова Т. А, Синицына Ю. В. 1997. Перекисное окисление липидов и антиоксидантная система хлоропластовгороха (Pisum sativum L.) при тепловом шоке. Физиология растений. 44(5): 742−746.
  66. В.Г., Дабижук Т. М., Ременюк Г. Л., Берестецкий В. А., Негрецкий В. А. 1995. Действие ретардантов на гормональный статус, мезоструктуру листьев и рост растений малины. Физиология и биохимия культурных растений. 27(5−6): 374−382.
  67. В. Г. 1970. Пигментные мутанты Chlamydomonas reinhardtu, индуцированные нитрозоэтилмочевиной и ультрафиолетовыми лучами. Генетика. 6(3): 42−50.
  68. В. Г., Ширшикова Г. Н., Семенова Г. А. И Креславский В. Д. 2001. Ультраструктура хлоропластов и рост клеток Chlamydomonas reinhardtii при действии холинхлорида. Биофизика. 46(2): 256−264.
  69. Т.В., Кузнецов В. В., Каравайко H.H., Кулаева О. Н., Селиванкина С. Ю. 2002. Изучение функциональных свойств зеатин-связывающего белка, участвующего в гормон-зависимой регуляции транскрипции хлоропластного генома. Физиология растений. 49: 105−112.
  70. М.Н. 1999. Активированный кислород и жизнедеятельность растений. Соросовский образовательный журнал. № 9: 20−26.
  71. И. Б. 2005. Влияние красного низкоэнергетического люминесцентного излучения на морфогенез и баланс эндогенных гормонов растений. Дисс. канд. биол. наук, Томск, 105 с.
  72. E.H., Креславский В. Д., Назарова Т. Н. 1995. Световая и гормональная регуляция фотосинтеза и роста растений. Пущино: ОНТИ ПНЦРАН, монография. 1995, 140 с.
  73. Муромцев Г. С, Кукорин A.B., Павлова З. Н. 1984. Физиологические механизмы действия ретардантов. Изв. АН СССР. Сер. Биол. № 5: 669−675.
  74. Е.А. 2005. Влияние локального прогрева и охлаждения на устойчивость растений. Автореф. дисс. канд. биол. наук, Петрозаводск, 22 с.
  75. JI.H., Фантин Ю. С., Зинченко В. В., Бабыкин М. М. 2003. ГеныprqA и mvrA, кодирующие белки-транспортеры, контролируют устойчивость к метилвиологену у цианобактерии Synechocystis sp. РСС 6803. Генетика. 39(3): 336−340.
  76. Г. В., Кочешкова Т. К., Феофилактова Т. В., Новицкий Ю. И. 2004. Действие холинхлорида на состав и содержание липидов в листьях основных магнитоориентационных типов редиса. Физиология растений. 51(3): 404−414.
  77. В.М., Чернов И. А. 1996. Некоторые особенности индуктивной фазы неспецифического адаптационного синдрома растений. Докл. РАН. Сер. биол. № 6: 705−715.
  78. Т.П., Иванов A.A. 2002. Биологически активные добавки к пище. М.: Авваллон, 710с.
  79. H.A. Математические методы в биологии. М.: МГУ. 1978, 226с.
  80. Л.Д., Лукман А-К., Мещерякова А. Б. 1993. Влияние хлорхолинхлорида на устойчивость яровой пшеницы к хлоридному засолению. Физиология растений. 40: 776−780.
  81. Т.Н., Баврина Т. В., Ложникова В. Н. Жданова Н.Е. 1997. Использование трансгенных растений для выяснения роли цитокининов в устойчивости к засухе. Докл РАН. 354: 702−704.
  82. Т.Я., Власов П. В., Жалилова Ф. Х. Кефели В.И. 1994. Абсцизовая кислота и этилен в мутантах, различающихся по устойчивости к ультрафиолетовой (УФ-Б) радиации. Физиология растений. 41: 682−686.
  83. Г. А. 2009. Как цитокинины действуют на клетку. Физиология растений. 56(2): 295−319.
  84. Г. А. 1982. Рецепторы фитогормонов. Физиология растений 49: 615 625.
  85. Г. 1982. Стресс без дистресса. М.: Прогресс, 125с.
  86. Г. 1972. На уровне целого организма. М.: Наука, 122 с.
  87. Р.К., Дударева Л. В., Ланкевич C.B., Екимова Е. Г., Сумцова В. М. 2003. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на процессы перекисного окисления липидов в культуре ткани. Физиология растений. 50(4): 561−563.
  88. В.А. 1998. Система фитохромов: фотобиофизика и фотобиохимия in vivo. Биол. Мембраны. 15(5): 549−572.
  89. А. Е., Мерзляк M. Н. 2008. Экранирование видимого и УФ излучения как механизм фотозащиты у растений. 55(6): 803−822.
  90. В.В. 2009. Фитогормоны как регуляторы устойчивости растений к неблагоприятным факторам среды. Автореф. дисс. докт. биол. наук, Петрозаводск, 45 с.
  91. В.В., Акимова Т. В., Титов А. Ф. 2003. Динамика содержания АБК в листьях и корнях проростков огурца и их теплоустойчивости подвлиянием общего и локального прогрева. Физиология растений. 50(1): 100−104.
  92. В.В., Топчиева JI.B., Титов А. Ф. 2006. Влияние абсцизовой кислоты на устойчивость проростков огурца к комбинированному действию высокой температуры и хлоридного засоления. Известия РАН. Сер. биологическая. № 5: 757−761.
  93. И.А. 1993. Катаболизм и стресс растений. М.: Наука, 83с.
  94. И.А. 2002. Сигнальные системы клеток растений. М.: Наука, 294 с.
  95. А.Ф., Акимова Т. В., Таланова В. В., Топчиева JI.B. 2006. Устойчивость растений в начальный период действия неблагоприятных температур. М.: Наука, 143 с.
  96. А.Ф., Дроздов С. Н., Таланова В. В., Акимова Т. В. 1987. О механизмах повышения теплоустойчивости растений' при краткосрочном и длительном действии высоких температур. Физиология растений. 34(1): 173−177.
  97. А.Ф., Критенко* С.П. 1983. Влияние цитокинина на терморезистентность проростков огурца и содержание пигментов в их листьях. Биол. Науки. № 11: 69−73.
  98. Т.И. 2007. Растение и низкотемпературный стресс. LXIV Тимирязевские чтения. М.: Наука, 54 с.
  99. ОЮ. 2007. Распространение путей свободного окисления дыхательных субстратов и регуляция их экспрессии в митохондриях высших растений. Автореф. канд. биол. наук, Воронеж, 23 стр.
  100. Г. Я., Пиняскина Е. В., Страховская М. Г. 1995. Новая фотоиндуцибельная защитная система в клетках при летальном действиисредневолнового ультрафиолетового излучения. Докл. АН СССР. 343(2): 265−267.
  101. Хавинсон В. Х, Баринов В. А, Арутюнян А. В, Малинин В. В. 2003. Свободнорадикальное окисление и старение. Спб: Наука, 327 стр.
  102. Храмов Р. Н, Катков Ю. А, Креславский В. Д, Мурашев А. Н, Цыганова В. Г, Симонова В. Б, Манохин A.A. 2007. Оранжево-красный свет снижает ингибирование ультрафиолетом-А пролиферации фибробластов крыс. Докл. РАН. 413: 1−3.
  103. Христин М. С, Креславский В. Д, Хоробрых A.A. 2001. Восстановление фотосистемы 2 после кратковременного прогревания листьев пшеницы. Вестник Башкирского университета. № 2 (I): 84−85.
  104. A.B., Гордон JT.X, Колесников О. П, Минибаева Ф. В. 2002. Пероксидаза клеточной поверхности — генератор супероксид-аниона в корневых клетках пшеницы при раневом стрессе. Цитология. 44(7): 691−696.
  105. И.И. 1997. Фотосинтез растений в условиях водного стресса и протекторное влияние цитокининов (Обзор). Прикл. Биохимия и микробиол. 33: 5−17.
  106. И.И. 2005. Влияние водного стресса на фотосинтетический аппарат растений и роль цитокининов (обзор). Прикл. Биохим. Микробиол. 41(2): 133−147.
  107. Чернядьев И. И, Монахова О. Ф. 2003. Влияние цитокининовых препаратов на пул пигментов и белков, различных по устойчивости к водному стрессу сортов пшеницы. Прикл. Биохим. Микробиол. 39(5): 593−601.
  108. Т.В. 1988. Пути адаптации растений к гипоксии и аноксии. Л.: ЛГУ, 244 с.
  109. Т.В. 2002. Физиологические основы устойчивости растений. СПб.: Изд-во Санкт-Петербургского ун-та, 244 с.
  110. Ф.М. 2001. Неспецифическая устойчивость растений к стрессовым факторам и ее регуляция. УФА. Гилем, 160 с.
  111. Ф.М. 2000. Салициловая кислота — индуктор устойчивости растений (Обзор). Агрохимия. 11: 87−95.
  112. В.Е. 2001. Влияние теплового шока на способность клеток растений пшеницы к восстановлению фотосинтетического транспорта электронов после действия света или повторного теплового шока. Физиология растений. 48: 911−916.
  113. B.C. 1992. Рост растений и его регуляция в онтогенезе. М.: Колос, 594 с.
  114. Н.И., Стеценко JI.A., Мещеряков А. Б., Кузнецов Вл. В. 2002. Изменение активности пероксидазной системы в процессе стресс-индуцированного формирования САМ. Физиология растений. 49(5): 670 677.
  115. М. В. 2008. Роль фитогормонов и света в регуляции транскрипции хлоропластных генов в ячмене. Автореф. дисс. канд. биол. наук. М, ИФР РАН, 23 С.
  116. А.И., Романюха А. А., Михальский А. И., Новосельцев В. Н., Украинцева С. В., Халявкин А. В., Анисимов В. Н. 2007. Геронтология in silico: становление новой дисциплины. Успехи геронтологии. 20(1): 7−19.
  117. Adir N., Zer Н., Shochat S., Ohad I. 2003. Photoinhibition a historical perspective. Photosynth. Res. 76: 343−370.
  118. Alexieva V., Ivanov S., Sergiev L, Karanov-E. 2003. Interaction between’Stresses, Bulg. J: Plant Physiol: Special Issue: P: 1—17.
  119. Alia, Hayashi H., Sakamoto A., Murata N. 1998″. Enhancement of» the tolerance of Arabidopsis to, high temperatures by genetic engineering of the synthesis of glycinebetaine. Plant J. 16: 155−161.
  120. Al-Khatib K., Paulsen G.M. 19 891 Enhancement* of thermal* injury to photosynthesis in wheat"plants and thylakoids by high light intensity. Plant Physiol. 90: 104 148?.
  121. S.I., Nishiyama Y., Suzuki I., Tasaka Y., Murata N. 1999. Genetic engineering of the unsaturation of fatty acids in membrane lipids alters the tolerance of Synechocystis to salt stress. Proc. Natl. Acad: Sci.USA. 96: 5862— 5867.
  122. Allakhverdiev S. I, Kinoshita M., Inaba M., Suzuki I., Murata N. 2001. Unsaturated fatty acids in membrane lipids protect the photosynthetic machinery against salt-induced damage in Synechococcus. Plant Physiol. 125:1842−1853.
  123. S.I., Klimov V.V., Hagemann M. 2005. Cellular energization protects the PM against salt-induced inactivation in Synechococcus. Biochim. Biophys. Acta. 1708: 201−208.
  124. Allakhverdiev S.I., Los D.A., Mohanty P., Nishiyama Y., Murata N. 2007. Glycinebetaine alleviates the inhibitory effect of moderate heat stress on the repair of photosystem II during photoinhibition. Biochim Biophys Acta. 1767: 1363−1371.
  125. Allakhverdiev S.I., Kreslavski V.D., Klimov V.V., Los D.A., Carpentier R., Mohanty P. 2008. Heat stress: An overview of molecular responses in photosynthesis. Photosynth. Res. 98(1−3): 541−550.
  126. A.C., Maddumage R., Simons J.L., Neill S.O., Ferguson I.B. 2006. Heat-induced oxidative activity protects suspension-cultured plant cells from low temperature damage. Funct. Plant Biol. 33: 67−76.
  127. R. 1995. Dissection of oxidative stress tolerance using transgenic plants. Plant Physiol. 107: 1049−1054.
  128. R.D., Webb R.P., Schake S.A. 1997. Use of transgenic plants to study antioxidant defenses. Free Radicals Biol. Med. 13: 437−479.
  129. R.G., Donahue J.L., Cramer C.L. 1997. Reactive oxygen species and antioxidants: relationships in green cells. Physiologia Plantarum. 100: 224— 233.
  130. R.G., Erturk N., Heath L.S. 2002. Role of superoxide dismutases (SODs) in controlling oxidative stress in plants. J. Exp. Bot. 53(372): 1331−1341.
  131. Andersson B., Aro E.-M. 2001. Photodamage and D1 protein turnover in photosystem II. Regulation of photosynthesis. Eds Aro E-M., Andersson B. Dordrecht, Netherlands: Kluwer Acad. Publ. P. 377−393.
  132. Aro E.-M., Virgin I., Andersson B. 1993. Photoinhibition of photosystem II: inactivation, protein damage and turnover. Biochem. Biophys. Acta. 1143: 113−134.
  133. K., Kiso K., Yoshikawa K. 1974. Univalent reduction of molecular oxygen by spinach chloroplasts on illumination. J. Biol. Chem. 249: 2175−2181.
  134. K. 1996. Radical production and scavenging in the chloroplasts. Photosynthesis and the environment. Ed. Baker N.R. Dordrecht, Netherlands: Kluwer Acad. Publ., P. 123−150.
  135. K. 1999. The water-water cycle in chloroplasts: scavenging of active oxygen and dissipation of excess photons. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 50: 601−639.
  136. K. 2006. Production and scavenging of reactive oxygen species in chloroplast and their functions. Plant Physiol. 141: 391−396.
  137. Barber J, Andersson B. 1992. Too much of a good thing: light can be bad for photosynthesis. Trends Biochem Sci. 17: 61−66.
  138. J. 1981. Biosynthesis of the light-harvesting chlorophyll a/b protein. Polypeptide turnover in darkness. Eur J. Biochem. 118: 61−70.
  139. Bergo E, Segalla A, Giacometti G. M, Tarantino D, Soave C, Andreucci F, Barbato R. 2003. Role of visible light in the recovery of photosystem II structure and function from ultraviolet-B stress in higher plants. J. Exp. Bot. 54(388): 1665 1673.
  140. Berova M, Zlatev Z, Stoeva N. 2002. Effect of paclobutrazol on wheat seedlings under low temperature stress. Bulg. J. Plant Physiol. 28(1−2): 75−84.
  141. Berry J. A, Bjorkman O. 1980. Photosynthetic response and adaptation to temperature in higher plants. Annu Rev Plant Physiol. 31: 491−543.
  142. Bharti A. K, Khurana J.P. 1997. Mutants of Arabidopsis as tools to understand the regulation of phenylpropanoid pathway and UV-B protection mechanisms. Photochem Photobiol. 65: 765−776.
  143. S. 2005. Reactive oxygen species and oxidative burst: Roles in stress, senescence and signal transduction in plants. Current Science. 89(7): 11 131 121.
  144. Bigler W, Schreiber U. 1990. Chlorophyll luminescence as an indicator of stress-induced damage to the photosynthetic apparatus. Effects of heat-stress in isolated chloroplasts. Photosynth Res. 25: 161−71.
  145. R., Singariya P., Mathur N., Bohra S.P. 2007. Triazoles: Their effects on net photosynthetic rate, transpiration rate and stomatal resistance in Setaria italica plants grown in vivo. Asian J. Exp. Sci. 21(2): 271−276.
  146. B., Joshi P. N., Kulandaivelu G. 1997. Changes in leaf protein and pigment contents and photosynthetic activities during senescence of detached maize leaves influence of different ultraviolet radiations. Photosynthetica 34: 37−44.
  147. Biswal U. C, Biswal B. 1984. Photocontrol of leaf senescence. Photochem Photobiol. 39: 875−879.
  148. U.C., Biswal B., Raval M.K. 2003. Chloroplast biogenesis. From propastid to gerontoplast. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers.
  149. H.E., Mazza C.A., Mazzella M.A., Casal J. J., Bailare C.L. 2001. Ultraviolet B radiation enhances a phytochrome-B mediated photomorphogenic response in Arabidops. Plant Physiol. 126(2): 780−788.
  150. J., Wild A. 1984. The influence of (2-(chloroethyl)treemethylammoniumchloride (CCC) on growth and photosynthetic metabolism of young wheat plants (Triticum aestivum L.). J. Plant Physiol. 116: 435−446.
  151. Bowler, C., Van Montagu M., Inze D. 1992. Superoxide dismutase and stress tolerance. Ann. Rev. Plant Physiol. Mol. Biol. 43: 83−116.
  152. J.S. 1982. Plant productivity and environment. Science. 218: 443−448.
  153. Brookes P. S., Y. Yoon, J. L. Robotham, M. W. Anders and S.-S. Sheu. 2004. Calcium, ATP, and ROS: A mitochondrial love-hate triangle. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 287: 817−833.
  154. B.A., Cloix C., Jiang G.H., Kaiserli E., Herzyk P., Kliebenstein D.J., Jenkins G.I. 2005. A UV-B-specific signaling component orchestrates plant UV protection. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 102(50): 18 225−30.
  155. Caldas T., Demont-Caulet N., Ghasi A., Richarme G. 1999. Thermoprotection by glycinebetaine and choline. Microbiology. 145: 2543−2548.
  156. Caldwell M.M., Teramura A.H., Tevini M., Bornman J. F, Bjorn L.O., Kulandaivelu G. 1995. Effects of increased solar ultraviolet radiation on terrestrial plants. Ambio 24: 166−173.
  157. Cary A.J., Liu W, and Howell S.H. 1995. Cytokinin action is coupled to ethylene in its effects on the inhibition of root and hypocotyl elongation in Arabidopsis thaliana seedlings. Plant Physiol. 107: 1075−1082.
  158. J.J., Sanchez R.A., Botto J.F. 1998. Modes of action of phytochromes. J. Exp. Bot.49: 127−138.
  159. H. M. 1964. Physiology of growth retarding chemicals. Ann.Rev.Plant Physiol. 15:271−302.
  160. Che F-S., Cho C., Hyeon S-B., Isogai A., Suzuki A. 1990. Metabolism of choline chloride and its analogs in wheat seedlings. Plant Cell Physiol. 31(1): 45−50.
  161. Che F.-S., Sato F., Hyeon S.-B., Isogai A., Yamada Y., Suzuki A. 1993. Stimulation of photosynthesis and growth of photoautotrophically cultured plant cells by choline and its analogs. Plant Cell Reports. 12: 691−693.
  162. Z., Silva H., Klessig D.F. 1993. Active oxygen species in the induction of plant systemic acquired resistance by salicylic acid. Science. 262: 1883−1885.
  163. M., Chory J., Fankhauser C. 2004. Light signal transduction in higher plants. Ann. Rev. Gen. 38: 87−117.
  164. Chinnusamy V., Yagendorf A., Zhu J.-K. 2005. Understanding and improving salt tolerance in plants. Crop Sci. 45: 437−448.
  165. J.M. 2007. Phototropin blue-light receptors, Annu. Rev. Plant Biol. 58: 21— 45.
  166. E.E., Means A.R. 2001. Defining Ca /calmodulin-dependent protein kinase cascades in transcriptional regulation. J. Biol. Chem. 276(5): 29 752 978.
  167. M.J., Prichard P.M. 1968. An investigation of the mechanism of the luminescent peroxidation of luminal by stopped flow techniques. J. Biol. Chem. 243:4706−4714.
  168. J., Beck C.F. 1998. Characterization of photoreceptor and signaling pathway for light induction of the Chlamydomonas heat-shock gene HSP70A. Phochem. Photobiol. 68: 414−419.
  169. S., Mohanty N. 2001. Evaluation of assays for the analysis of thermo-tolerance and recovery potentials of seedlings of wheat (Triticum aestivum L.) cultivars. J. Plant Physiol. 158: 1153−65.
  170. S., Mohanty N. 2002. Response of seedlings to heat-stress in cultivars of wheat: Growth temperature-dependent differential modulation of photosystem 1 and 2 activity, and foliar antioxidant defense capacity. J. Plant Physiol. 159: 49−59.
  171. Dat J.F., Lopez-Delgado H., Foyer C.H., Scott I.M. 1998. Parallel changes in H202 and catalase during thermotolerance induced by salicylic acid or heat acclimation in mustard seedlings. Plant Physiol. 116: 1351−1357.
  172. Dat J., Yandenbeele S., Vranova E., Van Montagu M., Inze D., Van Breusegm F. 2000. Dual action of the active oxygen species during plant stress responses. Cell. Mol. Life Sci. 57: 779−795.
  173. Dekker J. P., Hassold A., Petterson A., Roon Van H., Groot M-L., and R. Van Grondelle. 1995. On the nature of the F695 and F685 emission of photosystem II. In: P. Mathis (ed), Photosynthesis: from Light to Biosphere, 1, 53−56.
  174. Demmig-Adams B., Adams W.W. 2002. Antioxidants in photosynthesis and human nutrition. Science. 298- 2149−2153.
  175. Demmig-Adams B., Adams W. W. 2006. Photoprotection in an ecological context: the remarkable complexity of thermal energy dissipation. New Phytolog. 172: 11—21.
  176. Desikan R., Mackerness A.H.S., Hancock J.T., Neill SJ. 2001. Regulation of the Arabidopsis transcriptome by oxidative stress. Plant Physiol. 127: 159−172.
  177. El-Khawas S., Khatab H. 2007. Comparative studies on the Effects of Different Light Qualities on Vigna Sinensis L. and Phaseolus Vulgaris L. Seedlings. Res. J. Agric. Biol. Sci. 3(6): 790−799.
  178. El-Shitinawy F., Ebrahim M.K.H, Sewelam N., El-Shourbagy M.N. 2004. Activity of photosystem 2, lipid peroxidation, and the enzymatic antioxidant protective system in heat shocked barley seedlings. Photosynthetica. 42: 15−21.
  179. A., Smith H. 1976. Localization of phytochrome in etioplasts and its regulation in vitro of gibberellin levels. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 73: 138−142.
  180. D.M., Dhindsa P.P., Reid D.M. 1981. Effects of two growth retardants on tissue permeability in Pisum sativum and Beta vulgaris. Planta. 152: 481−486.
  181. R.A., Hofstra G. 1988.: Triazoles as potential plant protectants. In: Berg D. and M. Plempel (ed.): Sterol biosynthesis inhibitors. Pp.321−331. Ellis Horwood Ltd, Chichester England.
  182. R., Gilley A., Davi T., Sankhla N. 2000. Triazoles as plant growth regulators and stress protectants. Hort. Rev., 24: 55−138.
  183. Fomina I.R., Balakhnina T.I., Hertz S.M., Ivanov A.A., Ivanova E.P., Kosobrukhov A.A., Lyubimov V.Yu., Nazarova G.N., Serdyuk O.P., Smolygina L.D., Bil'
  184. Foyer C. H, Halliwell B. 1976. The presence of glutathione and-glutathione reductase in chloroplasts: A proposed role in ascorbic acid metabolism. Planta-133: 2125.
  185. Foyer C. H, Descourvieres P, Kunert K.J. 1994. Protection against oxygen radicals: an important defense mechanism studied in transgenic plants. Plant Cell Environ. 17: 507−523.
  186. Foyer C. H, Lopez-Delgado'H, Dat J. F, Scott I.M. 1997. Hydrogen peroxide- and glutathione-associated mechanisms of acclimatory stress tolerance and signalling. Physiol. Plant. 1004: 241−254.
  187. Foyer C. H, Noctor G. 2003. Redox sensing and signalling associated with reactive oxygen in chloroplasts, peroxisomes and mitochondria, Physiol. Plant. 119: 355−364.
  188. Frohnmeyer H, Staiger D. 2003. Ultraviolet-B Radiation-Mediated Responses in Plants. Balancing Damage and Protection. Plant. 133: 1420−1428.
  189. M., Tuominen I., Keranen M., Tyystjarvi T., Tyystjarvi E. 2005. Evidence for the role of oxygen-evolving manganese complex in photoinhibition of photosystem II. Biochim. Biophys. Acta. 1706: 68−801
  190. Hader D.-P., Kumar HI D., Smith R. C., Worrest R. C. 2003. Aquatic ecosystems: effects pf solar ultraviolet radiation and interactions with other climatic change factors. Photochem. Photobiol. Sci., 2: 39−50.
  191. Hall-A.E. 2001. Grop responses to environment. CRS Press LLC, Boca Raton, p. 324.
  192. Halliwell Bl 1994. How to characterize an antioxidant: an update. Biochem. Soc. Symp. 61: 73−101.
  193. Han T., Sinha R. P., Hader D.-P. 2001. UV-A/blue light-induced reactivation of photosynthesis in UV-B irradiated cyanobacterium, Anabaena sp. J. Plant Physioll, 158: 1403−1413.
  194. M. 1993. Rapid photosynthetic adaptation to heat stress triggered in potato leaves by moderately elevated temperatures. Plant Cell Environ. 16: 461−467
  195. M., Greppin H., Strasser R.J. 1991. Functioning of photosystems I and II in pea leaves exposed to heat stress in the presence or absence of light. Planta 186: 88−98
  196. M., Tardy F. 1996. Temperature-dependent adjustment of the thermal stability of photosystem II in vivo: possible involvement of xanthophyll-cycle pigments. Planta. 198: 324−333.
  197. H., Murata N. 1998. Genetically engineered enhancement of salinity tolerance in higher plants. Stress responses of photosynthetic organisms / Eds Satoh K., Murata N. Amsterdam, Tokyo: Elsevier, P. 133−148.
  198. S.A., Downs S.A., Sharkey T.D., Soleman J.S. 1998. The small, methionine-rich chloroplast heat shock protein protects photosystem II electron transport during heat stress. Plant Physiol. 116 (1): 439—444.
  199. E., Kalai T., Hideg K., Vass I. 1998. Photoinhibition of photosynthesis in vivo results in singlet oxygen production detection via nitroxide-induced fluorescence quenching in broad bean leaves. Biochemistry 37: 11 405−11 411.
  200. Hu X., Zhang A., Zhang J. s Jiang M. 2006. Abscisic acid is a key inducer of hydrogen peroxide production in leaves of maize plants exposed to water stress. Plant Cell physiol. 47(11): 1484−1495.
  201. Hung S.-H., Yu C.-W., C.H. Lin. 2005. Hydrogen peroxide functions as a stress signal in plants. Bot. Bull. Acad. Sin. 46: 1−10.
  202. Gaspar T, Penel C, Thorpe T, Greppin H. (Eds.) Peroxidases 1970−1980. A survey of their biochemical and physiological roles in higher plants. University of Geneva, Switzerland. 1982.
  203. A., Fletcher R.A. 1997. Relative efficacy of paclobutrazol, probiconanzole and tetraconazole as stress protectants in wheat seedlings. Plant Growth Reg. 4: 181−188.
  204. V., Yordanov I. 1997. Mathematical model of prompt and delayed chlorophyll fluorescence induction kinetics. Photosynthetica 33: 571−586.
  205. V., Chernev P., Zaharieva I., Lambrev P., Strasser R. J. 2005. Kinetics of delayed chlorophyll a fluorescence registered in milliseconds time range. Photosynth. Res. 84: 209−215.
  206. Z., Wada H., Hideg E., Murata N. 1994. The unsaturation of membrane lipids stabilizes photosynthesis against heat stress. Plant Physiol. 104: 563 567.
  207. Gong M., Li Y. J., Chen S. Z. 1998. ABA induced thermotolerance in maize seedlings is mediated by calcium and associated antioxidant systems. J. Plant Physiol. 153: 488−497.
  208. Gong M., Chen B., Li Z.G., GuoL.H. 2001. Heat shock-induced cross adaptation to heat, chilling, drought and salt stresses in maize seedlings and involvement of H202. J. Plant. Physiol. 158: 1125−1130.
  209. A. 2002. Molecular biology of stress responses. Cell Stress Chap. 7(1): 1−5
  210. Grover A., Agarwal M., Katiyar-Agarwal S., Sahi C., Agarwal S. 2000. Production of high temperature tolerant transgenic plants through manipulation of membrane lipids. Curr. Sci. 79: 557−559.
  211. K. 1990. Plant growth retardants as tools in physiological research. — Physiol Plant. 78: 640−648.
  212. Jansen M.A.K., Gaba V., Greenberg B.M., Mattoo A.K., Edelman M. 1996. Low threshold levels of ultraviolet-B in a background of photosynthetically active radiation trigger rapid degradation of the D2 protein of photosystem II. The Plant J. 9: 693−699.
  213. Jansen M.A.K., Gaba V., Greenberg B.M. 1998. Higher plants and UV-B radiation: balancing damage, repair and acclimation. Trends Plant Sci. 3: 131−135.
  214. M., Zhang J. 2002. Water stress-induced abscisic acid accumulation triggers the increased generation of reactive oxygen species and up-regulates the activities of antioxidant enzymes in maize leaves. J. Exp. Bot. 53(379): 2401−2410.
  215. Jiao Y., Lau O.S., Deng X.W. 2007. Light-regulated transcriptional networks in higher plants. Nat. Rev. Genet. 8: 217—30.
  216. Jones P.D., New M., Parker D.E., Mortin S., Rigor I.G. 1999. Surface areatemperature and its change over the past 150 years. Rev. Geophys. 37: 173— 199.
  217. P.N., Biswal B., Biswal V.C. 1991. Effect of UV-A on aging of wheat leaves and role of phytochrome. Environ Exp. Bot. 31: 267−276.
  218. Kadir S., Von Weihe M. 2007. Photochemical efficiency and recovery of photosystem II in grapes after exposure to sudden and gradual heat stress. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 132: 751−882.
  219. A.N., Kotov A.A., Bukhov N.G. 1997. Specific distribution of gibberellins, cytokinins, indole-3-acetic acid, and abscisic acid in radish plants closely correlates with photomorphogenetic responses to blue or red light. J. Plant Physiol. 151:51−59.
  220. T. 2000. Mechanisms of low-power laser light action on cellular level, In: Lasers in Medicine and Dentistry, Simunovic, Z., ed., Vitgraf, Rijeka, (Croatia), pp. 97−125.
  221. T.I. 2008. Mitochondrial signaling in mammalian cells activated by red and near-IR radiation. Photochem. Photobiol. 84: 1091−1099.
  222. T. I., Pyatibrat L.V., Afanasyeva N. I. 2004. A novel mitochondrial signaling pathway activated by visible-to-near infrared radiation. Photochem. Photobiol. 80: 366−372.
  223. Kendrick R. E., Kronenberg G. H. M. (eds) (1994) Photomorphogenesis in Plants, 2nd Ed., Martinus Nijhoff Publishers, Dordrecht, The Netherlands.
  224. A. 1995. Chlorophyll and carotenoid contents in cereals as affected by growth retardants of the. triazol series. Cereal Res. Comm. 23: 183−189.
  225. Kim K., Portis Jr. A.R. 2004. Oxygen-dependent H2O2 production by Rubisco. Fed. Europ. Biochem. Soc. Lett. 571:124−128.
  226. Kobzar' E.F., Kreslavski V.D., Muzafarov E.N. 1998. Photomorphogenetic responses to UV radiation and short-time red light in lettuce seedlings. Plant Growth Regul. 26: 73−76.
  227. Kobzar' E.F., Kreslavski V.D., Muzafarov E.N. 1999. Red radiation and choline compounds influence growth and greening of wheat seedlings. Photosynthetica. 36 (3): 333−340.
  228. B. K., Tiwari S., Mohanty P. 1998. Ultraviolet-B induced damage to photosystem II in intact filaments of Spirulina platensis, Z. Naturf. 53c: 369 377.
  229. R., Gupta P.K., Dube A. 2000. Helium-neon laser preirradiation induces protection against UVC radiation in wild-type E. Coli strain K12AB1157. Rad. Res. 153: 181−185.
  230. H., Tromballa H.W., Loppert H.G. 2008. Early events in signalling high-temperature stress in tobacco BY2 cells involve alterations in membrane fluidity and enhanced hydrogen peroxide production. Plant Cell Environ. 31(12):1771−80.
  231. A.A., Kreslavski V.D., Khramov R. N., Bratkova L.R., Shchelokov R.N. 2000. Effect of additional low intensity luminescence radiation 625 nm on plant growth and photosynthesis of plants. Biotronics. 29: 1−6.
  232. T., Telelberg R., Julkunen T., Lindfors A., Aphalo P.J. 2007. Metabolic specific effects of solar UV-A and UV-B on alder and birch leaf phenolics. Global Change biology. 14(6): 1294−1304.
  233. Kotov A.A., Kotova L.M. The contens of auxins and cytokinins in pea internodes as related to the growth of lateral buds. J. Plant Physiol. 2000. 156(4): 438−448.
  234. G.H. 1994. The role of oxygen photoinhibition of photosynthesis. Causes of photooxidative stress and amelioration of defense system in plants / Eds Foyer C.H., Millenaux P.M. Boca Raton: CRC Press, P. 43−76.
  235. G.H., Weis E. 1991. Chlorophyll fluorescence and photosynthesis: the basics. Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 42: 313−349.
  236. V.D., Kobzar E.F., Muzafarov E.N. 1997. Effect of red radiation, kinetin and linurone on growth and ethylene production in Chlorella. Biol. Plant. 39: 427−430.
  237. V.D., Balakhnina T.I., Khristin M.S., Bukhov N.G. 2001. Pretreatment of bean seedlings by choline compounds increases the resistance of photosynthetic apparatus to UV radiation and elevated temperatures. Photosynthetica. 39(3): 353−358.
  238. V.D., Carpentier R., Klimov V.V., Allakhverdiev S.I. 2009a. Transduction mechanisms of photoreceptor signals in plant cells (review). J. Photochem. Photobiol. Photochem. Rev. 10: 63−80.
  239. V., Kobzar E., Ivanova E., Kuznetsov E. 2005. Effects of short-time red radiation and choline compounds on cytokinin content, chlorophyll accumulation and photomorphogenesis in wheat seedlings. Plant Growth Regul. 47: 9−15.
  240. P. 2003. Brassinosteroid-mediated stress responses. J. Plant Growth Regul. 22:289−297.
  241. D.T., Britz S.J., Mirecki R.M. 1998. Inhibitory effects of ambient levels of solar UV-A and UV-B radiation on growth of cv. New Red Fire lettuce. Physiol Plant 103: 1−7.
  242. E., Dziubinska H., Stolarz M., Trebacz K. 2006. Effects of ion channel inhibitors on cold- and electrically-induced action potentials in Dionae muscipula. Biol. Plant. 50: 411 416.
  243. Kuk Y.I., Shin J.S., Burgos N.R., Hwang T.E., Han O., Cho B.H., Jung S., Guh J.O. 2003. Antioxidative enzymes offer protection from chilling damage in rice plants. Crop Sci. 43:2109−2117.
  244. E. D., Vasilenko V. F., Kreslavski V. D. 1992. Stimulation effects of short-term red light and plant growth retardant on greening and formation of photosynthetic apparatus in wheat seedlings. Plant Physiol. Biochem. 30: 559 564.
  245. Kuznetsov E. D., Kobzar' E. F., Kreslavski V. D, Muzafarov E. N. 1996. Cytokinin level changes by chlorocholine chloride and red light. 10th FESPP CONGRESS, Florence, Italy, September 9−13, p.208.
  246. Mackay C.E., Senaratna T., McKersie B.D., Fletcher R.A. 1987. Ozone induced injury to cellular membranes in Triticum aestivum L. and protection by the Triasole S-3307. Plant Cell Physiol. 128: 1271−1278.
  247. Maestri Ev Klueva N., Perrotta C., Gullil M., Henry T., Nguyen H.T., Marmiroli N. 2002. Molecular genetics-of heat tolerance and heat shock proteins in cereals. Plant Mol. Biol9. 48: 667−81.
  248. C., Thimann K.V. 1972. The role of protein synthesis in the senescence of leaves. Plant Physiol. 49: 64−71.
  249. B.D., Leshem Y.Y. 1994. Stress and stress coping in cultivated plants. Kluwer Academic Publishers, Netherland.
  250. McKee I.F., Long S.P. 2001. Plant growth regulators control ozone damage to wheat yield. New Physiologist. 152(1): 41−51.
  251. A., Nemson J.A., Harrison M. 1992. Damage to functional components and partial degradation of photosystem II reaction center proteins upon chloroplast exposure to ultraviolet-B radiation. Biochim. Biophys. Acta. 1100: 312−320.
  252. A.I., Johnson T.E., Cypser J.R., Yashin A.I. 2001. Heating stress patterns in Caenorhabditis elegans longevity and survivorship. Biogerontology. 2:35−44.
  253. G., Mittler R. 2006. Could heat shock transcription factors function as hydrogen peroxide sensors in plants? Ann. Bot. (Lond) 98:279−288.
  254. Minorsky. 2004. The hot and the classic. Plant Physiol. 134:16−17.
  255. R.M., Teramura A.H. 1984. Effect of ultraviolet B irradiance on soybean. V. The dependence of plant sensitivity on photosynthesis flux density during and after leaf expansion. Plant Physiol. 74: 475−480.
  256. T., Shibapka H. 1984. Effects of S-3307, an inhibitor of gibberellin biosynthesis, on swelling of leaf sheath cells and an arrangement of cortical microtubules in onion seedlings. Plant Cell Physiol. 25: 1531−1839.
  257. R. 2002. Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance. Trends in Plant Sci. 7(3): 405−410.
  258. M0ller S.G., Ingles P. J, Whitelam G.C. 2002. The cell biology of photochrome signalling. New Physiol. 154: 553−590.
  259. M., Khorobrykh S., Ivanov B. 2006. Oxygen reduction in chloroplast thylakoids results in production of hydrogen peroxide inside the membrane. Biochim. Biophys. Acta. 1757: 1496−1503.
  260. Muller-Moule P., Golan T., Niyogi K.K. 2004. Ascorbate-deficient mutants of Arabidopsis grow in high light despite chronic photooxidative stress. Plant Physiol. 134: 1163−1172.
  261. N., Nishiyama Y. 1998. Molecular mechanisms of the low-temperature tolerance of the photosynthetic machinery. Stress responses of photosynthetic organisms. Eds Satoh K., Murata N. Amsterdam, Tokyo: Elsevier, P. 93−112.
  262. N., Takahashi S., Nishiyama Y., Allakhverdiev S.I. 2007. Photoinhibition of photosystem II under environmental stress. Biochim. Biophys. Acta. 1767: 414−421.
  263. Y., Asada K. 1981. Hydrogen peroxide is scavenged by ascorbate -specific peroxide in spinach chloroplasts. Plant Cell Physiol. 22: 867−880.
  264. Neuhaus G., Bowler C., Kern R, Chua N.-H. 1993. Calcium/calmodulin-dependent and -independent phytochrome signal transduction pathways. Cell. 73: 937 952.
  265. Neuhaus G., Bowler C., Hiratsuka K., Yamagata H., Chua N-H. 1997. Phytochrome-regulated repression of gene expression requires calcium and cGMP. EMBO J. 16(10): 2554−2564.
  266. Y., Yamamoto H., Allakhverdiev S.I., Inaba M., Yokota A., Murata N. 2001. Oxidative stress inhibits the repair of photodamage to the photosynthetic machinery. EMBO J. 20: 5587−5594.
  267. Y., Allakhverdiev S.I., Yamamoto H., Hayashi H., Murata N. 2004. Singlet oxygen inhibits the repair of photosystem II by suppressing the transport elongation of the D1 protein in Synechocystis sp. PCC 6803. Biochemistry (USA). 43: 11 321−11 330.
  268. Y., Allakhverdiev S.I., Murata N. 2005. Inhibition of the repair of photosystem II by oxidative stress in cyanobacteria. Photosynth Res. 84:1−7.
  269. Y., Allakhverdiev S.I., Murata N. 2006. A new paradigm for the action of reactive oxygen species in the photoinhibition of photosystem II. Biochim. Biophys. Acta. 1757: 742−749.
  270. K., Suzuki N., Honma D., Kaneko Y., Nakamoto H. 2005. Ultrastructural stability under high temperature or intensive light stress conferred by a small heat shock protein in cyanobacteria. FEBS Lett. 579:1235−1242.
  271. Nooden L.D. Plant cell death processes. Academic Press/Elsevier Science Pub. 2004.
  272. G., Fletcher R.A. 1995. Paclobutrazol treatment alters peroxidase and catalase activities in heat stressed maize coleoptiles. Physiol. Mol. Biol. Plants. 1: 171−178.
  273. P., Krinsky N.I. 1992. (3-Carotene and a-tocopherol are synergistic antioxidants. Arch. Biochem. Biophys. 297: 184−187.
  274. F., Aldinicci D., Mocali A., Caparrini A. A. 1986. Sensitive spectrophotometric method for the determination of superoxide dismutase activity in tissues extracts. Anal. Biochem. 154: 536−541.
  275. G.M., Foyer C.H. 2002. Common components, networks and pathways of cross-tolerance to stress. The central role of 'redox' and abscisic-acid-mediated controls. Plant Physiol. 129: 460−468.
  276. P., Webb R., Kornyeyev D., Allen R., Holaday S. 2001. Protecting cotton photosynthesis during moderate chilling at high light intensity by increasing chloroplastic antioxidant enzyme activity. J. Exp. Bot. 52: 2345−2354.
  277. Pei Z.-M., Murata Y., Benning G., Thomine S., Klusener B., Allen G.J., Grill E., Schroeder J.I. 2000. Calcium channels activated by hydrogen peroxide mediate abscisic acid signalling in guard cells. Nature. 406: 731−734.
  278. Pinhero R.G., Rao M.V., Paliyath G., Murr D.P., Fletcher R.A. 1997. Changes in activities of antioxidant enzymes and their relationship to genetic and paclobutrazol induced chilling tolerance of maize seedlings. Plant Physiol. 114:685−704.
  279. Piippo M., Allahverdiyeva Y., Paakkarinen V., Suoranta U-M., Battchikova N., Aro E-M. 2006. Chloroplast-mediated regulation of nuclear genes in Arabidopsis thaliana’m the absence of light stress. Physiol. Genomics. 25:142−152.
  280. L.H., Repetti P., Zilinskas B.A. 1994. Overproduction of ascorbate peroxidase protects transgenic tobacco plants against oxidative stress (abstract No. 623). Plant Physiol. 105: S-169.
  281. C.J. 1981. Effects of cycloheximide and light on leaf senescence in maize and hydrangea. Plant Cell Physiol. 22: 847−854.
  282. Pjon C.-J., Kim Yu-M., Pak J-Y. 1992. Interaction of cycloheximide and light onchlorophyll content and chloroplast ultrastructure in Brassica campestris. Bot. Mag. Tokyo 105: 681−685.
  283. S.B. 1984. Photoinhibition of photosynthesis induced by visible light // Annu. Rev. Plant Physiol. 35: 15−44.
  284. M.K., Joshi P. N., Nair J. S., Ramaswamy N.K., Iyer R.K., Biswal B., Biswal U. C. 2006. UV-B exposure enhances senescence of wheat leaves: modulation by photosynthetically active radiation. Rad. Environ. Bioph. 45{3}: 221−229.
  285. T.K., Anderson M.D., Stewart C.R. 1995. Localization and characterization of peroxidases in the mitochondria of chilling-acclimated maize seedlings. Plant Physiol. 108: 1597−1605.
  286. V., Agafonov A., Demidova R. 2002. Effects of heterocyclic and tertiary permeant amines on the electron transfer in thylakoid membranes. Photosynth. Res. 72: 243−53.
  287. Qi Z., Yue M., Wang X.L. 2000. Laser pretreatment protects cells of broad bean from UV-B radiation damage. J. Photochem. Photobiol. B: Biology. 59: 33−37.
  288. Qi Z., Yue M., Han R., Wang X.L. 2002. The damage repair role of He-Ne laser on plants exposed to different intensities of ultraviolet-B radiation. Photochem. Photobiol. 75(6): 680−686.
  289. P.H. 2002. Phytochrome photosensory signaling networks. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 3: 85−93.
  290. P.H. 2006. Phytochrome signal transduction network. In E. Schafer, F. Nagy, eds, Photomorphogenesis in Plants and Bacteria. Springer, Dordrecht, The Netherlands, pp. 335−356.
  291. P.H. 2007. Phytochrome-regulated gene expression. J. Integrative Plant Biol. 49:11−20.
  292. G., Cambell D., Clarke A., Gustafsson P. 1995. The cyanobacterium Synechococcus modulates photosystem II function in response to excitation stress through D1 exchange, Photosynth. Res. 46: 151—158.
  293. W. 1990. New types of plant growth retardants: Additional perspectives for practical application in agriculture and horticulture. In: Plant growth substances. Springer-Verlag. Berlin. Heidelberg, P. 611−618.
  294. Rajala A., Peltonen-Sainio P. 2001. Grain and oil crops. Plant growth regulator effects on spring cereal root and shoot growth. Agron. J. 93:936−943.
  295. I. 1992. Role of salicylic acid in plants. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant, Mol. Biol. 43: 439−463. '
  296. Renger G, Volker M, Eckert H. J, Fromme R, Hohm-Veit S, Graber P. 1989. On mechanism of photosystem II deterioration by UV-B radiation. Photochem. Photobiol. 49: 97−105.
  297. Robertson A. J, Ishikawa M, Gusta L, MacKenzie S.L. 1994. Abscisic acid-induced heat tolerance cell Bromus inermis Leyss suspension culture. Plant Physiol. 105: 181−190.
  298. Rodriguez E. M, Svensson J. T, Malatrasi N. Choi D. W, Close T.J. 2005. Barley Dhnl3 encodes a KS-type dehydrin with constitutive and stress responsive expression. Theor. Appl. Genet. 140: 852−858.
  299. Ryan M. T, Hoogenraad N. J. 2007. Mitochondrial-nuclear communications. Annu. Rev. Biochem. 76: 701−722.
  300. G. 1988. Light-stimulated respiration in green alga Dunaliella tertiolecta: involvement of ultraviolet/blue light photoreceptors and phytochrome. Planta. 174: 422−425.
  301. Sabehat A, Weiss D, Lurie S. 1998. Heat shock proteins and cross-tolerance in plants. Physiol. Plant. 103: 437−441.
  302. Sairam R. K, Svastava G. G, Saxena D.C. 2000. Increased antioxidant activity under elevated temperatures: A mechanism of heat stress tolerance in wheat genotypes. Biol. Plant. 43 (2): 245−251.
  303. Salvucci M. E, Crafts-Brandner J. 2004. Relationship between the heat tolerance of photosynthesis and the thermal stability of rubisco activase in plants from contrasting thermal environments. Plant Physiol. 134:1460−1470.
  304. Salvucci M. E, DeRidder B. P, Portis A.R.Jr. 2006. Effect of activase level and isoform on the thermotolerance of photosynthesis in Arabidopsis. J.Exp. Bot, 57: 3793−3799.
  305. Sankhla N, Davis T. D, Upadhyaya A, Sankhla D, Walser R. H, Smith B.N. 1985. Growth and metabolism of soybean as affected by paclobutrazol. Plant Cell Physiol. 26:913−921.
  306. J.G. 2005. Oxidative stress: molecular perception and transduction of signal triggering antioxidant gene defenses. Braz. J. Med. Biol. Res. 38(7): 995−1014.
  307. E., Bowler C. 2002. Phytochrome-mediated1 photoperception and signal transduction in higher plants. EMBO reports. 3(11): 1042−1048.
  308. E., Nagy F. 2006. Photomorphogenesis in Plants and Bacteria. Function and Signal Transduction Mechanisms. Springer, Dordrecht, the Netherlands.
  309. S., Krause G.H. 1990. Protective systems against active oxygen in spinach: response to cold acclimation in excess light. Planta. 180: 383−389.
  310. U., Kriger A. 1996. Two fundamentally different types of variable chlorophyll fluorescence in vivo. FEBS Lett. 397: 131−135.
  311. Schroda M., Vallon O., Wollman F-A., Beck C.F. 1999. A chloroplast-targeted heat shock protein 70 (HSP70) contributes to the photoprotection and repair of photosystem II during and after photoinhibition. The Plant Cell. 11: 1165— 1178.
  312. T.D. 2005. Effects of moderate heat stress on photosynthesis: importance of thylakoid reactions, rubisco deactivation, reactive oxygen species, and thermotolerance provided by isoprene. Plant Cell Env. 28: 269−277.
  313. Shao H-B., Chu L-Y., Lu Z-H., Kang C-M. 2008. Primary antioxidant free radical scavenging and redox signaling pathways in higher plant cells. Int. J. Biol. Sei. 4:8−14.
  314. Sharma R., Sopory S.K., Guha-Mukherjee S. 1976. Phytochrome regulation of peroxidase activity in maize. Plant Sei. Lett. 6(1): 69−75.
  315. N., Kaur N., Gupta A.K. 1998a. Effects of gibberellic acid and chlorocholine chloride on tuberisation and growth of potato {Solanum, tuberosum L.). J. Sei. Food Agric. 244(78): 466−470.
  316. P.K., Anand P., Sankhalkar S. 19 986. Oxidative damage and changes in activities of antioxidant enzymes in wheat seedlings exposed to ultraviolet-B radiation. Curr. Sei. 75: 359−366.t325. •
  317. Sheng R.Y., Li P! M., Xue G.X., Zhao X.X., Gao H.Y. 2006- Choline chloride protects ceirmembrane and the photosynthetic apparatus in-cucumber seedling leaves at low temperature and- weak light:-!- PlanfcPhysidl- Mol. Bioll 32:87−93-:
  318. Sicora C., Mate Zl, Vass I. 2003. The interaction of visible and UV-B light during. photodamage and repair of photosystem II. Photosynth. Res. 75: 127−137.
  319. Sidoruk K., Melnik V., Babykin M-, Cerff R-,. Shestakov S. 1999. The Phototrophic Prokaryotes / Eds. .G-A.':. Peschek, W- Eoffelhardtj G- Schmetterer. Plenum" Publ. N.Y.: Kluwer Acad., P. 715−718.
  320. N.K., Handa A.K., Hasegawa P.M., Bressam R.A. 1985. Proteins associated with adaptation of cultured tobacco cells to NaCl. Plant Physiol. 79:126−137.
  321. A., Grover A. 2008. Genetic engineering for heat tolerance in plants. Physioli Mol. Biol. Plants. 14(1, 2): 155−166:
  322. Singh I, Shono Mi 2005. Physiological and molecular effects of 24-epibrassinolide, a brassinosteroid on thermotolerance of tomato. Plant Growth Regul. 47:111−119.
  323. N. 1993 : The role of active oxygen in the response of plants to water deficit and desiccation- New Phytol. 125:27−58.
  324. N. 2000- Ascorbic acid: metabolism and functions of a multi-faceted molecule. Curr. Opin. Plant Biol. 3: 229−235.
  325. H., Whitelam G.C. 1997. The shade, avoidance syndrome: Multiple responses mediated by multiple phytochromes. Plant Cell Environ. 20: 840−844.
  326. Spalding E. P-, Eolta K.M. 2005. Illuminating topics in plant photobiology. Plant Cell Environ. 28: 39−53.
  327. Stapel D. E. Kruse K. Kloppstech. 1993. The protective effect of heat shock proteins against photoinhibition under heat shock in barley (Hordeum vulgare). J. Photochem. Photobiol. B. 21: 211−218.
  328. G., Imlay J.A. 1999. Oxidative Stress. Curr. Opin.Microbiol. 2: 188−194.
  329. A.W., Chow S., Anderson J.M. 1994. UV-B damage and protection at the molecular level in plants. Photosynth. Res. 39: 475−489.
  330. N., Mittler R. 2006. Reactive oxygen species and temperature stresses: Adelicate balance between signaling and destruction. Physiol. Plant. 126(1): 45−51.
  331. S., Murata N. 2008. How do environmental stresses accelerate photoinhibition? Trends in Plant Science. 13:178−182.
  332. V.V., Titov A.F. 1994. Endogenous abscisic-acid content in cucumber -leaves under the influence of unfavorable temperatures and salinity. J. Exp. Bot. 45: 1031−1033.
  333. Talbott L.D., Zhao J., Han Swez. 2002. Phytochrome and blue light -mediated stomatal opening in the orchid, Paphiopedilum. Plant Cell Physiol. 43: 639−646.
  334. L.D., Shmayevich I.J., Chung Y., Hammad J.W., Zeiger E. 2003. Blue light and phytochrome-mediated stomatal opening in the npql and photl phot2 mutants of Arabidopsis. Plant Physiol. 133:1522−29.
  335. Y., Nishiyama Y., Murata N. 2000. Acclimation of the photosynthetic machinery to high temperature in Chlamydomonas reinhardtii requires synthesis de novo of proteins encoded by the nuclear and chloroplast genomes. Plant Physiol. 124: 441−450.
  336. Tang Y., Wen X., Lu O., Yang Z., Sheng Z. and Lu C. 2007. Heat stress induces an aggregation of the light-harvesting complex of photosystem II in spinach plants. Plant Physiol. 143:629−638.
  337. Tepperman J.M., Hwang Y-S., Quail P.H. 2006. PhyA dominates in transduction of red-light signals to rapidly responding genes at the initiation of Arabidopsis seedling de-etiolation. Plant J. 48:728−742.
  338. Teramura A. H 1983. Effects of ultraviolet-B radiation on growth and yield of crop plants. Physiol. Plant. 58: 415−427.
  339. A. H., Sullivan J. H. 1991. Potential impacts of increased solar UV-B on global plant productivity. In Photobiology, ed. E. Riklis. New York: Plenum Press, p. 625−634.
  340. A.H., Sullivan J.H. 1994. Effects of UV-B radiation on photosynthesis and growth of terrestrial plants. Photosynth. Res 39: 463−473.
  341. A., Herold M., Lenk I., Quail P.H., Gatz C. 1999. Heterologous expression of Arabidopsis phytochrome B in transgenic potato influences photosynthetic performance and tuber development. Plant Physiol. 120: 73−81.
  342. D.J., Thomas J., Youderian P.A., Herbert S.K. 2001. Photoinhibition and light-induced electron transport in ndhB~ and psaK mutants of Synechocystis sp. PCC 6803. Plant Cell Physiol. 42(8): 803−812.
  343. L.K., Blaylock R., Sturtevant J.M., Brudvig G.W. 1989. Molecular basis of the heat denaturation of photosystem II. Biochemistry. 28: 6686−6695.
  344. M., Vermaas W. 1999. In vivo role of catalase-peroxidase in Synechocystis sp. strain PCC 6803. J. Bacteriol. 181: 1875−1882.
  345. G., Pitcher L.H., Zilinskas B.A., Pell E.J. 1997. Overproduction of ascorbate peroxidase in the tobacco chloroplast does not provide protection against ozone. Plant Physiol. 114: 529−537.
  346. Trebst A., Depka B., Hollander-Czytko H. 2002. A specific role for tocopherol and of chemical singlet oxygen quenchers in the maintenance of photosystem II structure and function in Chlamydomonas reinhardtii. FEBS Lett. 516:156−160.
  347. I. 1997. Adverse effects of UV-B light on the structure and function of the photosynthetic apparatus. In M Pessarakli, ed, Handbook of Photosynthesis. Marcel Dekker, Inc., New York, pp 931−949.
  348. E. 1991. The roles of heat shock proteins in plants. Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 42: 579−620.
  349. R., Panchuk I., Mullineaux P., Schoffl F. 2006. Heat stress-induced H202 is required for effective expression of heat shock genes in Arabidopsis. Plant Mol. Biol. 61:733−746.
  350. M., Mihara M. 1978. Determination of malonaldehide precursor in tissues by thiobarbituric acid test. Anal. Biochem. 86: 287−349.
  351. Wahid A., Gelani S., Ashraf M., Foolad M. R 2007. Heat tolerance in plants: An overview. Environ. Exp. Bot. 61: 199−223
  352. H., Deng X.W. 2003. Dissecting the photochrome A-dependent signaling network in higher plants. Trends in Plant Science. 8: 172−178.
  353. H., Xiao L. 2009. Effects of chlorocholine chloride on phytohormones and photosynthetic characteristics in potato (Solarium tuberosum L.). J. Plant Growth Regul. 28(1): 21−27.
  354. Weber G., Teale F.W.J. 1957. Determination of the absolute quantum yield of fluorescent solutions. Trans. Faraday Soc. 53: 646−655.
  355. C., Gravuer K.A., Kane N.C., Schmitt J. 2004. Testing adaptive plasticity to UV: costs and benefits of stem elongation and light-induced phenolics. Evolution. 58(12): 2645−2656.
  356. K.R., Wiskich J.T. 1968. Photosynthetic control by isolated pea chloroplasts. Biochem. J. 109: 527−532.
  357. Weaver L. M, Amasino R.M. 2001. Senescence Is induced in individually darkened Arabidopsis leaves, but inhibited in whole darkened plants. Plant Physiol. 127: 876−886.
  358. Wraight C. A, Crofts A.R. 1971. Delayed fluorescence and light-energy state of chloroplasts. European J. Biochem. 19:386−397.
  359. Yamaguchi R, Nakamura M, Mochizuki N, Kay S. A, Nagatani A. 1999. Light-dependent translocation of a phytochrome B-GFP fusion protein to the nucleus in transgenic Arabidopsis. J. Cell Biol. 145: 437−445.
  360. Yang X, Liang Z, Lu C. 2005. Genetic engineering of the biosynthesis of glycinebetaine enhances photosynthesis against high temperature stress in transgenic tobacco plants. Plant Physiol. 138: 2299−2309.
  361. Yang X, Wen X, Gong H, Lu Q, Yang Z, Tang Y, Liang Z, Lu C. 2007. Genetic engineering of the biosynthesis of glycinebetaine enhances thermotolerance of photosystem II in tobacco plants. Planta. 225: 719−733.
  362. I.T. 1993. Response of photosynthetic apparatus to temperature stress and molecular mechanisms of its adaptation. Photosynthetica 26: 517−531.
  363. I. 1995. Responses of photosynthesis to stress and plant growth regulators. Bulg. J. Plant Physiol. 21(2−3): 51−70.
  364. Yorio N. C, Goins G. D, Kagie H. R, Wheeler R. M, Sager J.C. 2001. Improving spinach, radish and lettuce growth under red light emitting diodes (LEDs) with blue light supplementation. Hort. Science. 36: 380−383.
  365. Yoshimura K, Miyao K, Gaber A, Takeda T, Kanaboshi H, Miyasaka H, Shigeoka S. 2004. Enhancement of stress tolerance in transgenic tobacco plants overexpressing Chlamydomonas glutathione peroxidase in chloroplasts or cytosol. Plant J. 37: 21−33.
  366. Zavaletta-Mancera H. A, Lopez-Delgado H, Loza-Tavera H, Mora-Herrera M, Trevilla-Garcia C, Vagras-Suarez M, Ougham H. 2007. J. Plant Physiol.
  367. Cytokinin promotes catalase and ascorbate peroxidase activities and preserves the chloroplast integrity during dark-senescence. 164(12): 1572−1582.
  368. Zhang L., Paakkarinen V., Van Wijk K.J., Aro E.-M. 2000. Biogenesis of the chloroplast-encoded D1 protein: regulation of mechanisms of D1 protein translation elongation, insertion and assembly. Plant Cell. 12: 1769−1781.
  369. Zhao H., Tan J., Qi C. 2007. Photosynthesis of subjected to drought stress is enhanced by choline chloride through alleviating lipid peroxidation and increasing proline accumulation. Plant Growth Regul. 51(3): 255−262.
  370. Zeevaart J.A.D., Creelman R.A. 1988. Metabolism and physiology of abscisic acid. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 39: 43973.
  371. C., Brunner K. D., Perbandt M., Betzel Ch., Wagner G. 1998. Cloning, recombinant expression and characterization of wild type-105-trp-calmodulin of the green alga Mougeotia scalaris. Bot. Acta. Ill: 346−353.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!