Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Клеточная селекция яровых твердых и мягких пшениц на устойчивость к засолению

Диссертация: Клеточная селекция яровых твердых и мягких пшениц на устойчивость к засолению
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Методы культуры клеток для гексаплоидной пшеницы достаточно хорошо разработаны и уже применяются для создания исходных форм для селекции. Тетраплоидные пшеницы, до последнего времени были трудной культурой в биотехнологии. Исследователям удавалось получать каллусную ткань, которая через три-четыре месяца культивирования теряла способность к морфогенезу. Поэтому, создание системы для длительного… Читать ещё >

Содержание

  • Глава I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Влияние засоления почв на растения
    • 1. 2. Действие соли на точку роста растения
    • 1. 3. Сравнение действия хлоридного и сульфатного засоления на рост растений
    • 1. 4. Механизмы солеустойчивости у растений
    • 1. 5. Биохимические основы солеустойчивооти
    • 1. 6. (^неустойчивость у пшеницы
    • 1. 7. Регистрация флуоресценции хлорофилла, как тест на устойчивость к стрессам
    • 1. 8. Культура клеток и клеточная селекция на солеустойчивость
    • 1. 9. Особенности культуры тканей и морфогенеза у мягких и твёрдых пшениц
  • Глава II. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ II.1. МАТЕРИАЛУ И МЕТОДЫ
    • 11. 1. 1. Характеристика исходных сортов
    • II. 1.2. Получение и поддержание культуры клеток пшеницы
    • II. 1.2.1. Экспланты и среды
      • 11. 1. 2. 2. Определение интенсивности роста каллуса пшеницы
    • II. 1.3. Условия регенерации растений и адаптация регенерантов в почве
    • II. 1.4. Определение энергии прорастания семян
    • II. 1.5. Анализ растений — ренерантов с помощью мето да замедленной флуоресценции
    • II. Z. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
      • 11. 2. 1. Генотипические особенности формирования каллусной ткани у твердых и мягких пшениц
      • 11. 2. 2. Влияние засоления на индукцию каллуса у твердой и мягкой пшеницы
      • 11. 2. 3. Влияние генотипа на морфогенный потенциал культивируемых тканей двух видов пшеницы
      • 11. 2. 4. Влияние солевого стресса на пролиферацию каллуса у сортов твердой и мягкой пшеницы
      • 11. 2. 5. Влияние солевого и осмотического стрессов на рост каллусных клеток пшеницы
      • 11. 2. 6. Влияние света на рост каллусных тканей пшеницы в нормальных и стрессовых условиях
      • 11. 2. 7. Клеточная селекция на устойчивость к засолению
      • 11. 2. 8. Анализ растений-регенерантов
  • I1.2.8.1. Оценка солеустойчивости сортов по энергии прорастания семян
    • 11. 2. 8. 2. Тестирование растений-pereнерантов с помощью индукции каллуса в стрессовых условиях
      • 11. 2. 8. 3. Тестирование растении-регенерантов с помощью регистрации замедленной флуоресценции

Клеточная селекция яровых твердых и мягких пшениц на устойчивость к засолению (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Изменяющийся климат планеты, вызванный влиянием жизнедеятельности человека, ставит перед селекционерами задачи создания новых форм культурных растений, устойчивых к экстремальным факторам окружающей среды (засухе, засолению почв, низким температурам). Кроме того, возрастающие потребности в пище и потери земли из-за засоления вследствие орошения требуют создания высокопродуктивных и устойчивых форм культурных растений.

В последние годы активно развиваются исследования в области солеустойчивости во многих странах мира: США, Канаде, Англии, Индии, Мексике, Австралии, Саудовской Аравии, Сирии. Проводится отбор солеустойчивых образцов из мировой коллекции семян. Проводятся работы по локализации генов солеустойчивости на хромосомах, для чего создаются межвидовые гибриды и замещенные линии. Целью этих работ является повышение продуктивности растений для получения пищи, сырья и энергии в аридных и полуаридных зонах земледелия.

Использование устойчивых к засолению генотипов позволит вовлечь в сельскохозяйственную практику новые земли и снизить потери урожая от неблагоприятных климатических условий.

Пшеница — одна из важнейших зерновых культур в мире. На её долю приходится почти одна четверть из мирового пищевого продукта. В основном, культурные сорта пшеницы (особенно твердой) не обладают устойчивостью к засолению. Поэтому, изучение механизмов и повышение солеустойчивости пшеницы имеет не только теоретическое, но и практическое значение.

Одним из путей для решения подобных задач может быть расширение арсенала методов повышения генетического разнообразия за счет применения культивируемых клеток растений. В настоящее время методами клеточной селекции уже созданы новые солеустойчивые формы люцерны, риса, томатов и других растений. Повышение устойчивости растений пшеницы к абиотическим стрессам позволит сократить потери урожая от воздействия неблагоприятных факторов окружающей среды.

Солеустойчивость у гексаплоидной пшеницы Triticum aestivum (геном АА ВВ DD) контролируется множеством генов, проявляющихся, как на клеточном уровне, так и на уровне целого растения. В работах Gorham с соавторами (1987) показано, что за контроль целого организма над транспортом ионов натрия в надземную часть побега у гексаплоидных пшениц отвечают гены расположенные в длинном плече хромосомы 4D. Тет-раллоидные пшеницы (Triticum durum L.), обладающие геномом ААВВ, лишены организменного механизма противостояния солевому стрессу вследствие отсутствия D генома. В этом случае на передний план выходят клеточные механизмы устойчивости. Поэтому изучение влияния солевого стресса на рост клеток твердых и мягких пшениц и селекция устойчивых к засолению клеточных линий с последующей регенерацией измененных растений приобретает не только теоретическое, но практическое значение.

Методы культуры клеток для гексаплоидной пшеницы достаточно хорошо разработаны и уже применяются для создания исходных форм для селекции. Тетраплоидные пшеницы, до последнего времени были трудной культурой в биотехнологии. Исследователям удавалось получать каллусную ткань, которая через три-четыре месяца культивирования теряла способность к морфогенезу. Поэтому, создание системы для длительного культивирования клеток тетраплоидных пшениц и включения их в биотехнологический процесс является особенно актуальным.

Целью данной работы было создание новых форм твердой пшеницы и изучение особенностей ответа на солевой стресс на клеточном уровне у твердых и мягких пшениц.

Для достижения поставленных целей было необходимо:

— разработать систему, позволяющую культивировать клетки твердых сортов пшеницы длительное время без потери ими способности к морфогенезу;

— оценить вклад физиологического состояния исходного растения в поцесс формирования каллусной ткани;

— провести сравнительное изучение влияния солевого и осмотического стресса на формирование каллусной ткани и рост уже сформированного каллуса у твердых и мягких сортов пшеницы;

— отселектировать устойчивые к засолению клеточные линии и получить из них растения регенеранты;

— провести лабораторную оценку растений-регенерантов.

выводы.

1. Формирование каллусной ткани из незрелых зародышей двух видов пшеницы в нормальных и стрессовых условиях существенным образом зависит от генотипа и физиологического состояния исходного растения.

2. Изменение содержания 2,4 Д в среде позволило создать систему для длительного культивирования тканей тетраплоидной пшеницы без потери ими способности к морфогенезу.

3. При работе с сортовым материалом необходимо иметь ввиду генетическую неоднородность некоторых сортов, для чего предпочтительнее вести работу не колосовом материале.

4. Изучение влияния хлоридного и сульфатного засоления на индукцию и пролиферацию каллуса выявило различия по чувствительности между сортами к разным типам солей.

5. В результате проведенной клеточной селекции на устойчивость к засолению на сортах тетраплоидной и гексапло-идной пшеницы получении устойчивые клеточные линии и растениярегенеранты.

6. Тестирование на солеустойчивость первого семенного поколения растений-регенерантов методом регистрации замедленной флуоресценции показало, что фотосинтетический аппарат некоторых растений-регенерантов по устойчивости к засолению превосходит исходный сорт.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Создание новых форм растений через систему культуры in vitro в настоящее время широко применяется в мировой практике. Культуру клеток применяют как для повышения устойчивости растений к экстремальным факторам окружающей среды, так и для улучшения качетва культурных растений (Akbar et al., 1990, Carver and Johnson 1989, Rosarin et al., 1988, Дридзе 1990,1992).

Известно, что культивирование соматических тканей приводит к различным изменениям генетического аппарата клетки: хромосомным аберрациям, обменам сестринских хромотид, деле-циям, амплификации повторяющихся последовательностей, активации перемещающихся элементов, точечными мутациями. Кроме того, происходят наследуемые изменения в геномах хлороплас-тов и митохондрий (Lapitan et al., 1988, Morrison et al., 1987, Phillips and Peschke 1988, Mohanty et al., 1986, Becraft and Taylor 1989). Полагают, что главную роль в повышении частоты хромосомных нарушений играют экзогенные ауксины, добавляемые в культуральные среды (Zienddin and Kasha 1990, Murata, 1989).

Следовательно, для создания новых форм растений методами культуры in vitro необходимо создать систему, в которой соматические клетки растений длительное время размножаются в дедифференцированном состоянии под влиянием экзогенных регуляторов роста. В этом случае клетки накапливают генетические изменения, которые в последствии могут реализоваться в целом растении.

В нашей работе, одной из задач было создание подобной системы для соматических клеток твердой пшеницы (Triticum durum). Литературные данные убеждали нас в том, что сорта твердой пшеницы значительно труднее поддаются культивированию, чем сорта мягкой пшеницы (см. обзор литературы). Быстрая потеря способности к морфогенезу тканями твердой пшеницы не позволяла проводить работы по клеточной селекции. Результаты нашей работы показали, что для создания технологии длительно культивируемых клеток твердой пшеницы не требуется больших изменений уже существующих. Повышение концентрации 2,4 Д в среде позволило избежать преждевременного проратстания соматических эмбриоидов у сорта Дамсинская 90 и поддерживать каллусные ткани в дедифференцированном состоянии. Такой успех можно было бы отнести за счет удачно подобранных генотипов, однако работа Шаяхметова (1988), который использовал сорт Безенчукская 139 и получал регенерацию только в из первичного каллуса, убеждают нас в том, что дело не только в генотипе, но и в системе.

Созданная нами система, позволила нам провести клеточную селекцию. Кроме того, появилась возможность изучения особенностей ответа на солевой стресс на клеточном уровне у двух видов пшеницы Triticum aestivum и Triticum durum.

Тот факт, что для работы были использованы растения, выращенные в различных климатических условиях, позволил нам выявить огромное влияние физиологического состояния донор-ного растения не только на процесс дедифференциации, но и на реакцию на солевой и осмотический стресс в процессе дедифференциации. Вероятно, балланс эндогенных гормонов в незрелых зародышах у некоторых генотипов может значительно изменяться под влиянием окружающей среды, что приводит к изменению реакции на условия культивирования.

Полученные на базе сомаклональной вариабельности новые формы растений отличались от исходных сортов по различным параметрам:

1. По морфологии — растения-регенеранты сорта Безенчукская 139 и их потомство отличались от исходного сорта по характеру остистости. У сорта Безенчукская 139 ости располагаются параллельно оси колоса, а у растений-регенерантов ости расходящиеся (Фото 8).

— 110.

2. По способности индуцировать морфогенный каллус иэ незрелых зародышей. Потомство линии 16 сорта Ишимская превосходило исходный сорт по этому признаку. Охранение признака в потомстве свидетельствует о его генетической природе. Согласно Kaleikau (1989) признак способности к развитию в культуре in vitro контролируется основными генами (TCR-ген), расположенными в длинном плече хромосомы 2D и малыми TCR-генами, расположенными в хромосомах 2А и 26. Можно предположить, что при культивировании ткани сорта Ишимская 90 произошла мутация в каком-либо из этих генов и закрепилась в линии 16.

3. По реакции фотосинтетического аппарата на солевой стресс. Регистрация замедленной флуоресценции позволила выявить среди растений-регенерантов формы, у кторых кинетика замедленной флуоресценции в стрессовых условиях практически не отличается от кинетики ЗФ в контроле, что может свидетельствовать в пользу большей устойчивости к стрессу у некоторых растений.

Для детального анализа влияния засоления на рост и продуктивность растений-регенерантов необходимы дополнительные исследования и полевые испытания.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Бабаева С.А.Г. К. Сомаклональная изменчивость твердой и мягкой пшеницы, (автореферат) Москва 1993.
  2. Р.Г., Джардемалиев Ж. К., Гаврилова Н. Ф. Каллу-сообразуюшря способность эксплантов из разных органов различных сортов пшеницы Triticum aestivum // Физиология растений. -1986. -Т. 33, вып.2-С.350.
  3. Р.Г., Джардемалиев Ж. К., Гаврилова Н. Ф. Регенерация растений из каллусных тканей полученных из различных органов озимой пшеницы // Физиология растений.-1986.-Т. 33, вып.33-С.837−842.
  4. Ф.К., Мутян М. А., Маликова Н. И. Регенирация растений различных генотипов пшеницы Triticum aestivum L. in vitro // Док. АН ССОР.-1984.-Т.278.-N5.-С.1231.
  5. И.Л. Использование аналога пролина для отбора стрессоустойчивых вариантов в культуре тканей сои и табока: Афтореф. дис. на соискание степ. канд. биол. наук:-М., 1990.
  6. Еаттатхоттам Д. Д. Клеточная селекция яровой пшеницы на устойчивость к стрессам, (автореферат) Москва 1991.
  7. Ф., Кузнецов В. В., Шамина З. Б. Организменный и клеточный уровни солеустойчивости двух сортов хлопчатника (133, ИНЭБР-85) // Физиология растений. 1993. — Т. 40 -N.1 — С.128−131.
  8. Е.И. Действие NaCl Na SO на рост тканей разных экологических групп в культуре in vitro // Физиология растений.-1969.-Т.16.-N4.-C.633−637.
  9. Ф.Б., Шамина З. Б., Строганов Б. П. Действие высоких концентраций NaCl на размножение клеток Crepis capillaris in vitro // Физиология растений.-1975.-Т.22.-N1.-С.131−135.
  10. В.В., Турганобаева Б. А., Клеточная селекция люцерны на устойчивость к комплексному сульфатно-хлоридному засолению // Тез.док. Всесоюзн. Конф. по генетике соматических клеток в культуре.-1989-М.-С. 83−84.
  11. А.Н., Хадеева Н. В., Дридзе И. Л. Селекция и изучение свойств клеточных линий сои и табака устойчивых к Ь-азетин-2-карбоновой кислоте // Тез. докл. Всесоюзн. конференции по генетике соматических клеток в культуре.-Звенигород. 1986.
  12. А.В., Карелина Влияние генотепических особенностей исходного материала и различного уровня засоленности среды на эффективность каллусо- и эмбриогенеза у люцерны // Информ. бюл. СЭВ.-1981.-М., С.57−60.
  13. В.И., Шамина З. Б. Культура клеток Nicotiana sylvestris: характеристика роста и селективная система для выделения солеустойчивых вариантов //Физиология растений. -1982.-Т.29.вып.1-С.161−167.
  14. В.И., Шамина З. Б., Бутенко Р. Г. Получение резистентных к NaCl и этионину клеточных линий Nicotiana sylvestris и их характеристика // Генетика.-1983.-Т.XIX, N. 5 -С.822−827.
  15. .П., Физиологические основы солеустойчивос-ти растений.-М.:Изд-во Акд. наук СССР, 1962.
  16. .П., Кабанов В. В., Шевякова Н. И. и др. Структура и функции клеток растений при засолении.-М.: Наука,^©-.
  17. .П. Метаболизм растений в условиях засоления. -XXXIII Тимирязевское чтение. М.:Наука, 1973.- 114
  18. Г. В. Определение солеустойчивости сортов пшеницы по прорастанию семян и росту проростков на солевых растворах // методическое указание. Ленинград. -1972. -С. 5−11.
  19. Г. В. Солеустойчивость культурных растений.-Л.: Колос, 1977.
  20. Г. В., Синельникова В. Н., Давыдова Г. В. Оценка солеустойчивости растений // Методическое руководство: Ди1. W М W. агностика устойчивости растении к стрессовым воздействиям / ВИР.-Ленинград:1988.-С.85−97.
  21. Г. В. Механизмы адаптации растений к засолению почвы: физиологические и генетические аспекты солеустойчивости. Проблемы солеустойчивости растений: Сб. науч. тр./Инт. Эксп. биол. раст. АН УзССР-Ред. А.И. Имамали-ев.-Ташкент: ФАН, 1989.
  22. И.Ф., Иштерякова Ф. К., Хабирова М. М. Особенности каллусообразования и регенирации растений в культуре незрелых зародышей яровой твердой пшеницы.//Сельскохозяйственная биология.-N4.-1988.
  23. Г. Н., Левенко Б. А., Новожилов 0.В. Плоидность каллусной ткани твердой и мягкой пшеницы.// Цитология и генетика, 1985, Т.19, N. 4, С. 264−267
  24. Akbar М, Gena К.К., Seshu D.V. Effect of salinity on mitotic index in rice cultivars // Oryza.- 1987.- V.24.- P. 374−375.
  25. Armstrong- C.L., Phillips R.L. Genetic and cytogenetic variation in plants regenerated from organogenic and friable embryogenic tissue cultures of maize // Crop. Sci.-1988.- V.28.- P.363−369.- 115
  26. Asana R.D., Kale V.R. A study of salt tolerance of four varieties of wheat // Indian J. Plant Physiol.-1965.-4.8.- P.5−22.
  27. Ayers A.D. Seed germination as affected by soil moisture and salinity // Agron. J.- 1952.-V.44.- P.82−84.
  28. Azhar P.M., McNeilly T. The genetic basis of variation for salt tolerance in Sorghum bicolor (L.) Moensch seedlings // Plant Breed.- 1988.- V.101.- P.114−121.
  29. Bajaj Y.P.S. In vitro regeneration of diverse plants and the cryopreservation of germplasm in wheat (Triticum aestivumL.) // Cereal Res. Commun.-1986.- V.14.-P.305−311.
  30. Ben-Hayyim G., Relationship between salt tolerance and resistance to polyethylene glycol-induced water stress in cultured citrus cells // Plant Physiol.- 1987.- V.85.-P.430−433.
  31. Ben-Hayyim G., Goffer J. Plant regeneration from a NaCl-selected salt-tolerant callus culture of Shamouti orange (Citrus sinesis L. Osbeck) // Plant Cell Rep. -1989. V.7, N8. — P.680−683.
  32. Ben-Hayyim G., Kochba J. Growth characteristics and stability of tolerance of citrus callus cells subjected to NaCl stress //Plant. Sci.Lett. 1982.- V.27.- P.87−94.
  33. Ben-Hayyim G., Zelcer A. Potential use of tomato root cultures for selection of increased tolerance to salinity / /' Abstr. 6 Intl* Congress on plant Tissue and Cell Culture, Amsterdam. 1990.
  34. Bennici A., D’Amato F. In vitro regeneration of durum wheat plants. 1. chromosome numbers of regenerated- 116 plantlets.//Z.Pflanzenzuchtg., 1978, v.81, P. 305−311.
  35. Bennici A., Baroncelli S., D’Amato F. Cytogenetics of durum wheat plants regenerated in vitro .// In: Jar- Ital Joint Meet Genet. Breed Crop Plant. 1st. Sperimentale CerealiсоIt, Rome: 1979, P.177−188.
  36. Bennici A. Durum wheat (Triticum durum Desf.). // In. Biotechnology in Agriculture and Forestry v.2: Crops 1 (ed. by X.P.S. Baiaj) Springer Verland Berlin Heidelberg: 1986, P.89−104.
  37. Bennici A., Caffaro L., Dameri R.M., Gastaldo P., Profumo P. Callus formation and plantlet regeneration from immature Triticum durum Desf. embryos //
  38. Euphyt ica. -1988.-V.39-P.255−263.
  39. Ben-Zioni A., Itai C., Vaadia Y. Water and salt stresses, Kinetin and protein in tobacco leaves // Plant Physiol.- 1967.- V.42.- P.361.
  40. Ben-Zioni A., Mizrahi Y., Richmond A. Effect of kinetin on plant response to salinity // New Phytol.-1974.-V.73.- P.315−319.
  41. Bernstein L. Salt tolerance of plants // Agric.Inf. Bull.- 1965.- N.283, USDA.
  42. Bhaskaran S., Smith R.H., Schertz K.F. Sodium chloride tolerant callus of Sorghum bicolor (L) Moench // Z. Pflanzenphysiol.-1983.- V.122.-S.459−463.
  43. Bhaskaran S., Smith R.H., Schertz K.F. Progeny screening of sorghum plants regenerated from sodium chloride-selected callus for salt tolerance // J. Plant. Physiol.-1986.- V.122.- P.205−210.
  44. Binarova P., Novotny F., Nedbalkova B. Selection and- 117 characterization of alfalfa cell line resistant to lysine+threonine and/or ethionine // Biochem. and Physiol. Phlanz.-1989.- V.185.- N1−2.- P.99−107.
  45. Binzel M.L., Hasegawa P.M., Handa A.K., Bressan R.A. Adaptation of tobacco cells to NaCl // Plant Physiol.-1985.- V. 79.- P. 118−125.
  46. Borowitzak L, J. Solute accumulation and regulation of cell water activity // In: The Physiology and Biochemistry of Drought Resistance in Plants, paleg L.G., Aspinal D. (Eds.) Academic Press, Sydney. 1981.- P.97−130.
  47. Bressan R.A., Hasegawa P.M., Handa A.K. Resistance of cultured higher plant cells to polyethylene glycol-induced water stress // Plant Sci. Lett.- 1981.- V.21.- P.23−30.
  48. Bressan R.A., Sing N.K., Handa A.K. Stable and unstable tolerance to NaCl in cultured tobacco cells // Plant Genetics.- New York: Liss, 1985.- P.755−769.
  49. Brown C., Brooks F.J., Pearson D., Mathias R.J. Control of embryogenesis and organogenesis in immature whea embryo callus using increased medium osmolarity and abscisic acid // J. Plant Physiol. 1989 — V. 133. — N.6. — P.727- 733.
  50. Butenko R.G., Nikiforova I.D., Chernov V.A. Growth and morphogenesis in cell cultures of spring wheat under stress conditions and selection of tolerant cell lines // pros. Inter. Conf. Potsdam. 1988.- P.9−19.
  51. Carver B.F., Johnson В.В. Partitioning of variation derived from tissue culture of winter wheat //Theor. and Appl. Genet. 1989 — V. 78. — No.3. — P. 405−410
  52. Catarino F.M., Trewaras A.J. Metabolic changes in- 118 nucleic acids associated with the development of succulence // Phytochemistry.-1970.- V.9.- P.1807−1809.
  53. Chandler S.F., MandalB.B., Thorpe T.A. Effect of sodium sulphate on tissue cultures of Brassica napus cv Westar and Brassica campestris L. cv Tobin // J. Plant Physiol.- 1986.- V.126.- P. 105−117.
  54. Chandler S.F., Thorpe T.A. Characterization of growth, water relations, and proline accumulation in sodium sulphate tolerant callus of Brassica napus L. cv Wester (Canola) // Plant Physiol.- 1987.- V.84.- P.106−111.
  55. Chandler S.F., Peak K.J., HacheyJ.E., Thorpe T.A. Sodium sulphate tolerance in Beta vulgaris (sugar beet) callus cultures /7 Bot. Gaz.- 1989.- V.150.- P. 247−250.
  56. Croughan T. P, Stavarek S.J., Rains D.W. Selection of NaCl tolerant line of cultured alfalfa cells // Crop Sci.-1978.- V.18.- P. 959−963.
  57. Daines R.J., Gould A.R. The cellular basis of salt tolerance studied with tissue cultures of the halophytic grass Distichlis spicata // J. Plant Physiol.-1985.-V.199.-P.269−280.
  58. Dekeyser A., Lhoest J., Van Caneghen L., Bouharmont J. Sel- ection and characterization of cold- and salt tolerant- 119 rice varieties by in vitro culture techniques // Med. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent.- 1987.- V.52.- P.1439−1448.
  59. De Paepe R., Prat D., Huquet T. Heritable nuclear DNA changes in doubled haploid plants obtained by pollen culture of Nicotiana sylvestris // Plant Sci. Lett.-1982.-V.28.- P.11−28.
  60. Dhillon S.S., Wersman E.A., Miksche J.P. Evolution of nuclear DNA and heterochromatin changes in anther-derived dihaploids of tobaco (nicotiana tabacum) cv.Coker. // Can. J. Genet. Cytol.- V.25.-P.169−173.
  61. Dix P.J., Street H.E. NaCl-resistant cultured cell lines from Nicotiana sylvestris and Capsicum annum // Plant Sci. Lett.- 1975.- V.5.- P.231−237.
  62. Dix P.J., Pearce R.S. Proline accumulation in NaCl-resistant and sensitive cell lines of Nicotiana sylvestris // Z. Pflanzenphysiol.-1981.- V.102.-P.243−248.
  63. Downton W.J.S., Millhouse J. Turgor maintenence during salt stress prevents loss of variable fluorescence in grapevine leaves. //Plant Science Letters. 1983 — V. 31. — P. 1−7.
  64. Eapen S., Rao P. S. Plant regeneration from callus cultures of Durum and Emmer. wheat.// Plant Cell Rep., 1982, V. l, P. 215−218.
  65. Eaton F.M. Toxicity and accumulation of chloride and sulphate salts in plants // J. Agric. Res.-1942.-V.64.-P.357−399.
  66. El Mekkaoui M., Monneveux P., Damania A.B. Chlorophyll fluorescence as a predictive test for salt tolerance in cereals .-Preliminary results on durum wheat. //Rachis- 120 1989 V.8. — No.2 — P.16−19.
  67. El Mekkaoui M. Etude des mecanismes de tolerance a la salinite chez le ble dur (triticum durum Desf.) et l"org:e (hordeum vulgare L.) .-Recherche de tests precices de selection //These ENSA Motpellier, 1990.-P.193.
  68. Epstein E. Responses of plant to saline environments / / In: Genetic Engineering of Osmoregulation: Impact on Plant productivity for Food, Chemicals and Energy. Rains D. W., Valetine R.C., Hollaender A. (Eds.). Plenum Press, New York. 1980.-P.7−21.
  69. Epstein E., Norlyn J.D., Seawater based production: a feasibility // Science.-1977.-V.197.-P.249−251.
  70. Epstein E., Norlyn J.D., Rush D.W., Kingsbury R.W., Kelley D.B., Cunningham G.A., Wrona A.F. Saline culture of crops: A genetic apporoach // Scince. 1980. — V.210. -P.399−404.
  71. Ericson M.C., Alfinto S.H. Proteins produced during salt stress in tobacco cell cultures // 1984.- Plant Plant Physiol.- V.74.- P.506−509.
  72. Eshan B.A., Nazir Ahmad., Piracha I.A., Khan M.A. Salt tolerance of three wheat varieties // J. agric. Res. Pakistan.- 1986.- V.24.- P.53−58.
  73. Feldman M., Sears E.r. The wild gene resoureses of wheat // Sci. Am.-1981.-V.244.-P.98−109.
  74. Flowrs T.J. Troke P.F., Yeo A.R. The mechanisms of salt tolerance in halophytes // Ann. Rev. Plant Physiol.-1977.- V.28.-P.89−121.
  75. Flowrs Т., Lachno D., Flowers S., Yeo A. Some effects of NaCl on cells of rice cultured in vitro // Plant- 121 -Sci.-1985.- V.39.-P.205−211.
  76. Forster B.P., Gorham J., Miller Т.Е. Salt tolerance of an amphiploid between Triticum aestivum and Agropyron junceum // Plant Breeding:.- 1987.- V.98.- P. 1−8.
  77. Forster B.P., Miller Т.Е. A 5B deficient hybrid between Triticum aestivum and Agropyron junceum // Cer. Res. Commun.-1985.- V.13.- P.93−95.
  78. Froster B.P., Miller T.S., Law C.N. Salt tolerance of two wheat- Agropyron junceum disomic addition lines // Genome. 1988. — V.30. — P.559−564.
  79. Galiba G., Yamada Y. A novel method of increasing the frequency of somatic embryogenesis in wheat tissue culture by NaCl and KCl supplementation // Plant Cell Rep.- 1988.4.7.- P.57−58.
  80. Galiba G., Kovacs G., Sutka J. Substitution analysis of plant regeneration from callus culture in wheat // Plant Breed.- 1986.- V.97.- P.261−263.
  81. Garcia-reina G., Moreno «'
  82. Gorham J. Salt tolerance in the Triticeae: Solute accumulation and Distribution in an amphidiploid derived from Triticum aestivum cv. Chinese Spring and Thinopyrum bessarabicum. //Journal of Experimental Botany. 1986 — V. 37 No. 183. P. 1435−1449.
  83. Gorham J., Hardy c., Wyn Jones R.G., Joppa L.R., Law C.N. Chromosomal location of a K/Na discrimination- 122 character in the D genome of wheat. // Theor. Appl. Genet.- 1987 V. 74. P. 584−588.
  84. Gorham J. Salt tolerance in the Triticeae: K/'Na discrimination in Aegilops Species. // Journal of Experimental Botany. 1990 — V.41. No.226. P.615−621.
  85. Gorham J. Salt tolerance in the Triticeae: K/Na discrimination in synthetic hexaploid wheats. // Journal of Experimental Botany. 1990 — V.41. No.226. P. 623−627.
  86. Gorham J., Wyn Jones R.G., Bristol A. Partial characterization of the trait for enhanced K+ Na+ discrimination in the D genome of wheat. // Planta. — 1990- V.180. P. 590−597.
  87. Gosch-Wackerle G., Avivi L., Galun E. Induction, Culture and Differentiation of Callus from Immature Rachises, Seeds and Embryos of Triticum // Z.Pflanzenphysiol. 1979 — Bd. 91. P. 267−278.
  88. Govindjee, Downton W.J.S., Fork D.C., Armond P.A. Chlorophyll a fluorescence transient as an indicator of water potential in leaves.//Plant Science Letters. 1981 -V.20. — P.191−194.
  89. Greco B., Tanzarella O.A., Blanco A. Plant regeneration from leaf base callus in durum wheat (Triticum durum desf.) //Cereal Res. 1984 — V.12.- No.3−4. P.171−177.
  90. Greenway H., Munns R. Mechanisms of salt tolerance in non-halophytes. // Ann. Rev. Plant Physiol. 1980 — V. 31. P. 149−190.
  91. Gupta S.C., Srivastava J.P. Effect of salt stress on morpho-physiological parameters in wheat // Indian J. Plant- 123
  92. Physiol.- 1989.- V.32.- P.169−171.
  93. Hagemann К. M., Cantrell and Deckard E.L. Tissue culture in Triticum turgidum L. var. durum // Seventh international Genetics Symposium. 1988 — V.l. — P. 741−744.
  94. Hampson C.R., Simpson G.M. Effects of temperature, salt, and osmotic potential on early growth of wheat (Triticum aestivum). 1. Germination // Canadian J. Bot.-1990.- V.68.- P.524−528.
  95. Hampson C.R., Simpson G.M. Effects of temperature, salt, and osmotic potential on early growth of wheat (Triticum aestivum). 11. Early seedling growth // Canadian J. Bot.-1990.- V.68.- P.529−532.
  96. Handa A.K., Bressan R.A., Handa S., Hasegawa P.M. Characteristics of cultured tomato cells after prolonged exposure to medium containing polyethylene glycol // Plant Physiol.- 1982.- V.71.- P.514−521.
  97. Handa A.K. Bressan R.A., Handa S., Hasegawa P.M. Clonal variation for tolerance to polyethylene glycol induced stress in cultured tomato cells // Plant Physiol.-1983.- V.72.- P.645−653.
  98. Hanning G., Nabors M. In vitro tissue culture selection for sodium chloride (NaCl) tolerance in rice and the performance of the regenerants under saline conditions. // Review of advances in plant biotechnology. 1988 -C.239−248
  99. Hanson A.D., Nelson C.E., Everson E.H. Evaluation of free proline accumulation as index of drought resistance using two contrasting barley cultivars // Crop. Sci.1977.- V.-17.- P.720−726.
  100. Harms С.Т., Oertli J.J. The use of osmotically adapted cell cultures to study salt tolerance in vitro // J. Plant Physiol.- 1985.- V.120.- P.29−38.
  101. Hasegawa P.M., Bressan R.A., Handa A.K. Growth characteristics of NaCl-selected cells of Nicotiana tabaccum L. // Plant Cell Physiol.- 1980.- V.21.-P.1347−1355.
  102. Hasegawa P.M., Bressan R.A., Handa S., HAnda A.K. Cellular mechanisms of tolerance to water stress // Hort. Sci.- 1984.- V.19.- P.371−377.
  103. Hasegawa P.M., Bressan R.A., Handa A.K. Cellular mechanisms of salinity tolerance // Hort. Sci.- 1986.-V.21.- P.1317−1324.
  104. Havaux M., Ernez M., Lannoye R. Selection de varietes de ble dur (Triticum durum Desf.) adaptees a la secheresse par la mesure de 1'extinction de la fluorescence de la chlorophylle in vivo. //Agronomie 1988 — V.8.- No.3 -P.193−199.
  105. Havaux M., Lannoye R. Drought resistance of hard wheat cultivars measured by a rapid chlorophyll fluorescence test. // Journal of Agricultural science. 1985 — V.104 -P.501−504.
  106. HeyserJ.W., Nabors M.W. Osmotic adjustment of cultured tobacco cells (Nicotiana tabaccum var. Samsum grown on NaCl. // Plant Physiol. 1981.- V.67.- P.720−727.
  107. Higgins P., Mathias R.J. The effect of the 4B chromosomes of hxaploid wheat on the growth and regeneration of callus cultures. // Theor. Appi. Genet.-1987. V.74. — P. 439−444.
  108. Joshi Y.C., Dwivedi S.R. Quadar A., Bal A.R. Salt tolerance in diploid, tetraploid, and hexaploid wheat // Indian J. Plant Physiol.- 1982.- V.25.- P.421−422.
  109. Kaleikau E.K., Sears R.G., Gill B.S. Monosomic analysis of tissue culture response in wheat (Triticum aestivum L.) //Theor. and Appl. Genet. 1989 — Y.78. -No.5 — P.625−632.
  110. Kaleikau E.K., Sears R.G., Gill B.S. Control of tissue culture response in wheat (Triticum aestivum L.) //Theor. and Appl. Genet. 1989 — V.78. — No.6 — P.783−787.- 126
  111. Katz A., Tal M. Salt tolerance in the wild relatives of the cultivated tomato: proline accumulation in callus tissue of Lycopersicom esculentum L. and peruvianum // Z.pflanzenphysiol. 1980. — V.98. — P.429−435.
  112. Kavikishor P.B. Effect of salt stress on callus cultures of Oryza sativa L. //J. Exp. Bot.- 1988.- V.39.-P.235−240.
  113. Kavikishor P.B. Salt stress in callus cultures of rice // Abstr.6 Intl* Congress on Plant Tissue and Cell Culture, Amsterdam. 1990.
  114. Keck R.W., Boyer J.S. Chloroplast response to low leaf water potentials. 111. Differing inhibition of electron transport and photophosphorylation.//Plant Physiology.-1974 V.53. — P.417−479.
  115. Kemal-Ur-Rahim K. The effects of salinity on photosynthesis and other physiological processes in spring wheat varieties //Dissertation Abstracts International.-1988.- V.49.- P.1470.
  116. Key J. L., Lin C.Y., Chen Y.M. Heat shok protiens of higher plants.// Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1981. V.78 -P.3526−3530.
  117. Kim Y.H., Chung T.Y., Choi W.Y. Increased regeneration from NaCl tolerant callus in rice // Euphytica.- 1988.-V.39.- P.207−212.
  118. King J., Khanna V. A Nitrate reductase less variant isolated from suspension cultures of Datura innoxia // Plant Physiol.- 1980.- V.66.- P.632−636.
  119. King G.J., Hussey C.E., Turner V.A. Aprotein induced by NaCl in suspension cultures of Nicotiana tobaccum- 127 accumulates in whole plant roots //Plant Mol.Biol.- 1986.-V.7.- P.441−449.
  120. Kingsbury R.W., Epstein E., Pearchy. Physiological responses to salinity in selected lines of wheat //Plant Physiol. 1984 — V.74. — P.417−423.
  121. Kingsbury R.W., Epstein E. Salt sensitivity in wheat. // Plant physiology. 1986 — V. 80. P. 651- 654.
  122. Kingsbury R.W., Epstein E. Selection for salt-resistant spring wheat //Crop Sci.- 1984.- V.24.-P.310−315.
  123. Kirkham M.B., Gardner W.B., Gerloff G.C. International water status of Kinetin-treatd, salt stressed plants // Plant Physiol.- 1974.- V.53.- P.241.
  124. KochbaJ., Ben-Hayyim G., Saad S., Neumann H. Selection of stable salt-tolerant callus cell lines and embryos in Citrus sinensis and Citrus aurantium // Z. Pflanzenphysiol.- 1982.- V.106.- P.111−118.
  125. Kononowicz A.K., Hasegawa P.M., Bressan R.A. Chromosome number and nuclear DNA content of tobacco plants regenerated from salt adapted plant cells // Plant Cell Rep.- 1990.- V.8.- P.676−679.
  126. Kosuge Т., Bruening G., Harada J., Hollander J. tailoring genes for crop improvement: An Agricultural perspective, Proceedings. University of California, Davis. 1986.
  127. Maas E.V., Hoffman G.J. Crop salt tolerance: — 129 evaluation of existing data // In: Managing saline Water for Irrigation. H.E. Dregre (ed.), Proo. Int. Conf. Texas Technical Univ. 1976.- P.187−198.
  128. Marschner H., Kylin A., Kuiper P.J.C. Differences in salt tolerance of three sugar beet genotypes // Physiol. Plant.- 1981.- V.51.- P.234−238.
  129. Mass E.Y. Nieman R.H. Physiology of plant tolerance to salinity // In: crop tolerance to suboptimal land conditions. Ed. Jung G.A. American Soc. Agron.- Publ.-32.-1978.- P.277−299.
  130. Mass E.V., Poss J.A. Salt sensitivity of wheat at various growth stages // Irrigation Science.- 1989.- V.10.-P.29−40.
  131. Massoud F. I. Salinity and alkalinity as soil degradation hazards // FAO/UNEP Expert Consultation on Soil Degradation, 1974.- FAO, Rome.
  132. Mathias R.J. Fukui K. The effect of specific chromosome and cytoplasm substitution on the tissue culture response of wheat (Triticum aestivum L.) callus. //Theor. Appl. Genet. 1986 — V.71., P. 797−800.
  133. McCoy T.J. Tissue culture evaluation of NaCl tolerance in Medicago species: Cellular versus whole plant response // Plant Cell Rep.-1987.- V.6.- P.31−34.
  134. McHughen A., Rowland G. Canadas' first biotic crop variety: an early maturing, rust resistant flax from cellular selection for salt tolerance // Genome.- 1988.-V.30.- P.469.
  135. Meiri A., Kamburoff J., Poljakoff-Mayber A. Response of bean plants to NaCl and Na SO salinization // Ann. Bot.1971.- V. 35.- P.837−847.
  136. Munns R., Greenway H., Delane R., Gibbs J. Ion concentration and carbohydrate status of the elongating leaf tissue of Hordeum vulgare growing at high external NaCl. 11. Cause of the growth reduction // J. Exp. Bot.-•1982.- V.33.- P. 574−583.
  137. R., Greenway H., Kirst G. 0. Halotolerant eukaryotes. In Encyclopedia of Plant Physiology, New Series, V.12C.-Physiological Plant Ecology, lll.ds. Lange 0. L., Nobel P. S., Osmond C.B., Ziegler H.
  138. Springier-Verleg, Berlin. 1983.-P.59−135.
  139. Murashige T., Skoog F. A revised medium for repid growth and bio-assay with tobacco tissue cultures // Plant Physiol.-1962.-V.15.-P.473−479.
  140. Nabors M.W., Daniels A., Nadolny L., Brown C. Sodium chloride tolerant lines of tobacco cells // Plant Sci. Let. -1975-V.4-P.155−159.
  141. Nabors M.W., Daniels A., Nadolny L., Brown C. NaCl-tolerant cell lines of tobacco cells // Plant Sci. Lett.-1975-V.4.-P. 155−159.
  142. Nabors M.W., Gibbs S.В., Bernstein С.S., Meis M.E. NaCl-tolerant tobacco plants from cultured cells // Z.Pflanzenphysiol.- 1980.- V.97.- P.13−17.
  143. Nabors M.W., Heyser J.W., Dykes T.A., DeMott K.J.//Long- 131 duration, high-frequency plant regeneration from cereal tissue cultures.//Planta 1983 — V.157.- N.5 — P. 385−391.
  144. Narayanan K.K., Sree Rangasamy S.R. Inheritance of salt tolerance in progenies of tissue culture selected variants of rice // Curr. Sci.- 1989.- V.58.- P.1204−1205.
  145. Nieman R.H. Expension of bean leaves and its suppression by salinity // Plant Physiol.-1965-V.40.- P.156 -161.
  146. Nierman R.H., Maas E.V. The energy change of salt stressed plants // Sixth Internl. Biophysics Cong. Abst.-1978.- P. 121.
  147. Norlyn J.D., Epstein E. Variability in salt tolerance of four triticale lines at germination and emergence // Crop Sci.-1984.- V.24.- P.1090−1092.
  148. Ojha R.J., Bhargava S.C. Genotypic differences in salt tolerance of wheat // Annals Agri.Res.- 1988.-V.9.-P.76−81.
  149. Orton T.J. Comparison of salt tolerance between Hordeum vulgare and Hordeum jubulatum in whole plants and callus cultures // Z.Pflanzenphysiol. 1980-V.98.-P.105−118.
  150. Orton T.J. Genetic instability in celery tissue and cell cultures // Iowa State J. Res.-1987-V.61.- P.481−498.
  151. Paek K.Y., Chandler S.F., Thorpe T.A. Physiological effects of Na SO and NaCl on callus cultures of Brassica compestris (Chinese cabbage) // Physiol. Plant.- 1988.-V.72.- P.160−166.
  152. Pandey R., Ganapathy P. S. Isolation of NaCl-tolerant callus line of Cicer arietinum L. cv. BG-203 //Plant Cell
  153. Rep. -1984- V.3.- P.45−47.
  154. Pandey R., Ganapathy P. S. The proline enigma: NaCl-tolerant and NaCl-sensitive callus lines of Cicer arietinum // Plant Sci. -1985.- V.40. P13−17.
  155. Parasher A., Varma S.K. Effect of рге-sowing seed soaking in gibberellic acid on growth of wheat (Triticum aestivum L.) under different saline conditions // Indian J. Exp. Biol.- 1988.- V.26.- P.473−475.
  156. Pastore D., Flagella Z., Rascio A., CedolaM.C., Wittmer G. Field studies on chlorophyll fluorescence as drought tolerance test in Triticum Durum Desf. genotypes.// Journal of Genetics and Breeding. 1989 — ЧЛЗ. P.45−51.
  157. Pollard A., Wyn Jones R.G. Enzyme activities in concentrated solutions of glycinebetaine and others solutes // Plants.-1979- V.144. P.291−298.
  158. PrakashK.S., Padayatti J.D. Transfer of saline tolerance from one strain of rice to another by injection of DNA // Curr. Sci. -1989- V.58.- P.991−993.
  159. PuaE.C., Ragolsky E., Chandler S.F., Thorpe T.A. Effect of sodium sulphate on in vitro organogenesis of tobacco callus // Plant Cell Tissue Organ Culture.- 1985.-V.5.- P.55−62.
  160. Pua E.G., Thorpe T.A. Differential Na SO tolerance in tobacco plants regenerated from Na SO -grown callus // Plant Cell Envt.- 1986.- V.9.- P.9−16.
  161. Pua E.C., Thorpe T.A. Differential response of nonselected and Na SO -selected callus cultures of Beta vulgaris L. to salt stress // J. Plant Physiol.- 1986.-V.123.- P.241−248.- 133
  162. Purnhauser L., Medgyesy P., Czaco M., Dix P.J., Marton L. Stimulation of shoot regeneration in Triticum aestivum and Nicotina plumbaginifolia Viv. tissue cultures using the ethylen inhibitor AgNO // Plant Cell Rep. 1987 — V.6- P. l -4.
  163. Quershy R.H., Ahemd R., Ilyas M., Aslam Z. Screening of wheat (Triticum aestivum L.) for salt tolerance // Рак. J. Agri. Sci.- 1980 P.3−4.
  164. Rahman M.M., Kaul K. Differentiation of NaCl-tolerant cell lines of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) cv. Jet Star // J. Plant Physiol. 1989 — V.133.- P.710−712.
  165. Ramagopal S. Protein synthesis in a maize callus exposed to NaCl and mannitol // Plant Cell Rep. 1986 — V. 5 — P.430−434.
  166. Ramagopal S. Salinity stress induced tissue-specific proteins in barley seedling // Plant Physiol.- 1987.- V.84. P.324−331.
  167. Rana R.S. Genetic diversity of salt-stress resistance of wheat in India // Rachis.- 1986.- V.5.- P.53−57.
  168. Reuveny Z., Filner P. Regulation of adenosine triphosphate sulfurylase in cultured tobacco cells // J.Biol. Chem. 1977 — V.252. — P.1858−1864.
  169. Rosen A., Tal M. Salt tolerance in wild relatives of- 134 the cultivated tomato: response of naked protoplasts isolated from leaves of Lycopersicon esculentum and L. peruvianum to NaCl and proline // Z. Pflanzenphysiol. -1981 V.102. — P.91−94.
  170. Sayed J. Diversity of salt tolerance in a germplasm collection of wheat (Triticum spp.) // Theor. Appl. Genet.-1985.- V.69.- P.651−657.
  171. Schreiber U., Bilger W. Rapid assessment of stress effects on plant leaves by chlorophyll fluorescence measurements. In: Proceedings of a Nato Advanced Research Workshop. 1985 — Sesimbra. Portugal. Springer. Berlin.
  172. Sears R.G., and Decard Tissue culture variability in wheat: Caiius induction and plant regeneration // Crop.Sci. 1983 — V.22.- P.546−550.
  173. Setter T.L., Greenway H., Kuo J. Inhibition of cell division by high external NaCl concentration in synchronised cultures of Chlorella emersonii // Aust. J. Plant Physiol. 1982 — V.9. — P.176−196.
  174. Shah S.H., Gorham J., Forster B.P., Wyn Jones R.G. Salt tolerance in the Triticeae: The contribution of the D genome to cation selectivity in hexaploid wheat. // Journal of Experimental Botany. 1987 — V.38. P.254−269.
  175. Sharma K.D., Datta K.S., Varma S.K. Effect of chloride and sulphate types of salinity on some metobabolic drifts in chickpea, Cicer arietinum L. // Indian J. Exp.Biol. -1990.- V.28.- P.890−892.
  176. Sharma S.K. Effect of salinity on growth, ionic and water relations of three wheat genotypes di ng in salt tolp""~?-e // Indian J. rxcuiu Physiol.- 1989.- V.32.- P.200sos.
  177. Shimada Т. Plant regeneration from the callus indased from wheat embryo // Jap. J. Genet.- 1978 -V.53.-P.371−374.
  178. Shoe M.G.T., Gale G. Effects of NaCl stress and nitrogen source on raspiration, growth and photosynthesis in lucerne (Medicago sativa L.) // J. Exp. Bot. 1983.- V. 34. — P.1117−1125.
  179. Singh N.K., Handa A.K., Hasegawa P.M., Bressan R.A. Proteins associated with adaption of tobacco cells to NaCl // Plant Physiol.- 1985.- V.79.- P.126−137.
  180. Singh N.K., Nelson D.E., Kuhn D., Hasegawa P.M., Bressan R.A. Molecular cloning of osmotin and regulation of its expression by abscisic acid and adaptation to low water potential // Plant Physiol.- 1989.- V.90.- P.1096−2001.
  181. Smillie R.P., Nott R. Salt tolarent in crop plant monitored by chlorophyll fluorescence in vivo.//Plant Physiology. 1982 — V.70. P.1049−1054.
  182. Smith M.K., McComb J.A. Effect of NaCl on the growth of whole plants and their corresponding callus cultures // Aust. J. Plant Physiol. 1981 -V.8.- P.267−275.
  183. Smith M.K., McComb J.A. Selection for NaCl tolerance in cell cultures of Medicago sativa and recovery of plants from a NaCl- tolerant cell line // Plant Cell Rep.- 1983.-V.2.- P.126−128.
  184. Srivastava J.P., Gupta S.C., Lai P., Muralia R.N. Effect of salt stress on physiological and biochemical parameters of wheat // Annals of Arid Zone.- 1988.- V.27.-P.197−204.- 136
  185. Stavarek S.J., Rains D.W. Mechanisms for salinity tolerance in plants // Iowa State J. Res.-1983.-V.57.-P.457 -476.
  186. Strogonov B.P. Salt tolerance in isolated tissue and cells // In: Structure and function of plant cell in saline habitats, Gollek B. (Ed.) Israeli Programme for Scientific Translations, Jerusalem. 1973.- P.1−33.
  187. Subhashini K., Reddy G.M. In vitro selection for salinity and regeneration of plants in rice // Curr. Sci. -1989.- V.58.-P.584−586.
  188. Subhashini K., Reddy G.M. Evalution of the progeny under stress of regenerated salt tolerant rice // J. Genet. Breed.-1989.-V.43.- P.125−130.
  189. Subhashini K., Reddy G.M. Effect of salt stress on enzyme activities in callus cultures of tolerant and susceptible rice cultivars // Indian J. Exp. Biol.- 1990.-V.28.- P.277−279.
  190. Tal M., Heikin H., Dehan K. Salt tolerance in the wild relatives of the cultivated tomato: responses of callus tissue of Lycopersicon esculentum, L. peruvianum and Solanum pennellii to high solinity // Z. Pflanzenphysiol. 1978 -V .86.- P. 231−240.
  191. Tanzarella 0.A., Greco B. Clonal propagation of triticum durum Desf. From immature embryos and shoot base- 137 explants. // Euphytica.-1985.-V.34-P.273−277.
  192. Termaat A., Passioura J.В., Munns R. Shoot turgor does not limit shoot growth of NaCl-affected wheat and barley // Plant Physiol.- V.77.- P.869−872.
  193. Tonelli C., Gavazzi G., Arreghini E. Induction of salt and water stress tolerance in tomato through samoclonal variation and chemical mutagenesis // Abstr. 6 Intl Congress on Plant Tissue and Cell Culture, Minnesota, USA. 1986.- P.76.
  194. Tyagi A.K., Rashid A., Maheshwari S.C. Sodium chloride resistant cell line from haploid Datura innoxia Mill. //Protoplasma.-1981.- V.105.- P.327−332.
  195. Vertucci C.W., Ellenson J.L., Leopold A.C. Chlorophyll fluorescence characteristics associated with hydration level in pea cotlydons.// Plant Physoilogy. 1985 — V.79.-P.248−252.
  196. WatadA.A., Reinhold L., Lerner H.R. Comparison between a stable NaCl-selected Nicotiana cell line and the wild type // Plant Physiol.- 1985.- V.73.- P.624−629.
  197. Weimberg R., Lerner H.R., Poljakoff-Mayber A. Changes in growth and water-soluble solute concentrations in Sorghum bicolor stressed with sodium and potassium salts // Physiol. Plant.-1984- V.62.-P.472−480.
  198. Wetlzien E., Winslow M.D. Resistance of durum wheat genotypes to saline-drought field conditions // Rachis.-1984.- V.3.-P.34−36.
  199. Widholm J.M. Selection and characterisation of amino and acid analog resistant plant cell cultures // Crop Sci.-1977.- V.17. P.597−600.- 136
  200. Winicov I., Button J.D. Photosynthesis gene induction in salt tolerance of cultures of alfalfa // J. Cell Biochem. -1989.- V.13D.Suppl. P.328.
  201. Winicov I. Gene expression in salt tolerant alfalfa cell cultures and the salt tolerant plants regenerated from these these cultures // Abstr. 6 Intl Congress on Plant Tissue and Cell Culture, Amsterdam. 1990.
  202. Wyn Jones R.G., Brady C.J., Speirs J. Ionic and osmotic relations in plant cells // In: Recent advances in the biochemistry of cereals, Laidman D.L., Wyn Jones R.G.(Eds.) Academic Press, London. 1979.-P.63−103.
  203. Wyn Jones R.G., Gorham J. Osmoregulation // In: Encyclopedia of Plant Physiology, New Series, Physiological Plant Ecology. Lange 0.I., Nobel P. S., Osmond
  204. C.B.(Eds.).Springer-Verlag, Berlin. 1980.- V.12C.- P.35−58.
  205. Wyn Jones R.S., Pollard A. Proteins, enzymes and inorganic ions // In: Encyclopedia of Plant Physiology, New Series, Inorganic Plant Nutrition Lauchli A., Bieleski R.L. (Eds). Springer-Verlag, Berlin.1983- V.15B.- P.528−562.
  206. Yeo A.R. Salt tolerance in the halophyte Suaeda maritima L. Dum.: Intracellular compartmentation of ions // J. Exp. Bot. -1981- V.32.- P.487−497.
  207. Yeo A.R. Flowers. Accumulation and localisation of sodium ions within the shoots of rice (Oryza sativa) varieties differing in salinity resistance //Physiol. Plant.- 1982.- V.56.- P.343−348.
  208. Yeo A.R. Salinity resistance: Physiological and prices // Physiol. Plant.- 1983 V.58. — P.214−222.
  209. Zenk M.H. Haploids in physiological and biochemical- 139 research // In: Haploids in Higher Plants, Kasha K.J.(Ed), Univ. of Guelph Press, Canada. 1974.- P.339−353.i
Заполнить форму текущей работой

На отлично!