Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Значение измерения авидности антител класса IgG к отдельным белкам вируса гепатита С для диагностики различных форм инфекций

Диссертация: Значение измерения авидности антител класса IgG к отдельным белкам вируса гепатита С для диагностики различных форм инфекций
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Несмотря на большое разнообразие лабораторных методов, основным тестом, повсеместно и широко применяемым для диагностики гепатита С, остается выявление суммарных антител к белкам вируса (анти-ВГС) в иммуноферментном анализе. Специальными исследованиями показана высокая специфичность и чувствительность иммуноферментных тест-систем третьего-четвертого поколения для выявления анти-ВГС. Однако… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. ВИРУС ГЕПАТИТА С И МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ ИНФЕКЦИИ, ВЫЗЫВАЕМОЙ ЭТИМ ВОЗБУДИТЕЛЕМ
    • 1. 1. Вирус гепатита С
    • 1. 2. Диагностика вирусного гепатита С
      • 1. 2. 1. Определение антител классов IgG и IgM к белкам вируса гепатита
  • С методами иммуноферментного анализа и иммуноблоттинга
    • 1. 2. 2. Определение ядерного антигена вируса гепатита С в сыворотке крови
    • 1. 2. 3. Качественное и количественное определение РНК вируса гепатита С
    • 1. 2. 4. Определение генотипа вируса гепатита С
    • 1. 3. Измерение авидности антител класса IgG — широко распространенный метод диагностики
    • 1. 3. 1. Принципы определения авидности антител класса IgG
    • 1. 3. 2. Использование определения авидности антител для диагностики стадий инфекционного процесса при различных инфекционных и паразитарных заболеваниях- и оценки эффективности вакцин
    • 1. 3. 3. Авидность антител при гепатите С

Значение измерения авидности антител класса IgG к отдельным белкам вируса гепатита С для диагностики различных форм инфекций (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность. После того, как 15 лет назад появилась первая публикация об открытии вируса гепатита С [105], началось интенсивное изучение инфекции, вызываемой этим возбудителем. Многими специалистами было показано, что вирусный гепатит С (ГС) является одной из самых актуальных проблем здравоохранения во всем мире, включая Россию [46, 47, 48, 53, 54, 61, 62, 63, 64, 65, 77], в связи с широкой распространенностью инфекции и ее частыми неблагоприятными исходами в хронический гепатит, цирроз печени и гепатоклеточный рак. Глубокое изучение любой инфекции невозможно без лабораторных методов диагностики. За сравнительно короткий период времени для диагностики ГС было разработано и апробировано множество тестов, основанных на принципах иммуноферментного анализа (ИФА), иммуноблоттинга, полимеразной цепной реакции (ПЦР) и других. Широкое применение разнообразных лабораторных методов позволило получить много важных данных об эпидемиологии ГС, естественном течении инфекции, патогенезе, эффективности противовирусного лечения.

Несмотря на большое разнообразие лабораторных методов, основным тестом, повсеместно и широко применяемым для диагностики гепатита С, остается выявление суммарных антител к белкам вируса (анти-ВГС) в иммуноферментном анализе. Специальными исследованиями показана высокая специфичность и чувствительность иммуноферментных тест-систем третьего-четвертого поколения для выявления анти-ВГС. Однако по наличию анти-ВГС можно установить только факт инфицирования человека вирусом ГС, но нельзя сделать заключения о давности процесса, что имеет значение для планирования и применения терапевтических мероприятий в клинике инфекционных болезней.

Одним из простых и доступных лабораторных методов для разграничения острой и хронической инфекции, а также имевшей место инфекции в прошлом, уже много лет является измерение авидности антител. Этот показатель характеризует суммарную величину прочности связывания всех молекул антител с целевыми антигенными детерминантами. Многими исследованиями было продемонстрировано, что в период острой инфекции синтезирующиеся антитела класса IgG обладают низкой авидностью, однако в дальнейшем они заменяются на высокоавидные антитела, которые могут длительно циркулировать. На основании этого феномена построен алгоритм разграничения острой и хронической инфекции при инфекциях, вызванных цитомегаловирусом, вирусом Эпштейна-Барр, вирусом герпеса и многих других [99, 158,159, 160, 195, 201].

При гепатите С значение измерения авидности антител для диагностики практически не изучено. Имеется лишь несколько публикаций на эту тему с ограниченным числом наблюдений [25, 148, 165, 229]. Остается неизвестным, как меняется авидность антител класса IgG к основным диагностически значимым белкам вируса ГС — ядерному и NS4 — в различные фазы инфекционного процесса. Во многом такое положение связано с отсутствием разработанного теста для определения авидности антител к белкам вируса ГС и обоснований для практической интерпретации получаемых результатов.

В связи с указанным, становится очевидной необходимость изучения авидности антител класса IgG к белкам вируса ГС у больных с различными формами гепатита С и разработки научных обоснований для использования теста измерения авидности в алгоритме лабораторных исследований при этой инфекции.

Цель исследования. Установить значение измерения авидности антител класса IgG к отдельным белкам вируса гепатита С для диагностики различных форм инфекции и определить место этого теста в алгоритме комплексной лабораторной диагностике гепатита С у детей.

Задачи исследования.

1 .Разработать диагностический тест для измерения авидности антител на основе синтетических пептидов, представляющих иммунодоминантные регионы ядерного и NS4 белков вируса гепатита С.

2. Измерить авидность антител класса IgG к ядерному белку и неструктурному белку NS4 у больных с острым и хроническим гепатитом С, в том числе в условиях динамического наблюдения.

3. Провести наблюдение за изменениями показателя авидности антител класса IgG у детей первого года жизни, рожденных матерями с ВГС-инфекцией.

4. Сопоставить данные определения суммарных антител к вирусу гепатита С, антител класса IgM к ядерному белку вируса, спектра антител к различным белкам вируса с уровнем авидности антител класса IgG.

5. Предложить новый алгоритм комплексной лабораторной диагностики гепатита С с учетом теста измерения авидности антител класса IgG.

Научная новизна работы.

Впервые разработан тест для измерения авидности антител класса IgG на основе синтетических пептидов — аналогов иммунодоминантных регионов ядерного и неструктурного NS4 белков.

Получена новая информация об авидности антител класса IgG к ядерному и NS4 белкам у больных с различными клиническими формами ГС-инфекции. Установлено, что антитела к ядерному белку вируса ГС встречаются наиболее часто у больных в острой стадии инфекционного процесса. С помощью теста измерения авидности показано, что авидность IgG антител к ядерному белку вируса ГС изменяется в течение инфекционного процесса. В стадии острого процесса этот показатель, как правило, не превышает 50%, а в стадии хронической инфекции — достигает 90 — 100%. Эти данные указывают на то, что при гепатите С наблюдаются общие для инфекционных заболеваний закономерности формирования иммунного ответа. В частности, продемонстрировано, что при одновременной циркуляции антител к ядерному белку вируса ГС классов IgM и IgG последние являются низкоавидными.

Измерение авидности антител класса IgG к ядерному белку вируса ГС у детей первых месяцев жизни, рожденных матерями с хронической ВГС-инфекцией, позитивных по анти-ВГС в коммерческих тестах, продемонстрировало, что этот показатель соответствовал таковому у лиц с длительным инфекционным процессом. Этот факт подтверждает мнение о том, что в первые месяцы жизни у детей, рожденных матерями с хронической ГС-инфекцией, обнаруживаются материнские антитела.

Практическая значимость работы.

Разработанный простой и экономичный тест определения антител к структурному ядерному и неструктурному NS4 белкам вируса гепатита С различной степени авидности расширяет методическую базу и возможности лабораторий, занимающихся рутинной диагностикой гепатита С.

Определение индекса авидности IgG антител может помочь врачу-инфекционисту дифференцировать у больных с гепатитом С острый процесс от хронического. У больных с острым гепатитом С низкоавидные антитела со временем всегда замещаются на высокоавидные антитела. При текущем хроническом процессе у пациентов постоянно циркулируют высокоавидные антитела. На основе этого предложен новый алгоритм лабораторных исследований при гепатите С с включением в него теста измерения авидности.

Для педиатрической инфекционной практики значение имеет определение индекса авидности антител у детей, рожденных матерями с хронической ГС-инфекцией. Обнаружение высокоавидных антител к ядерному белку вируса ГС у таких детей свидетельствовало о том, что антитела имеют материнское происхождение и не связаны с формированием инфекционного процесса. При динамическом наблюдении за детьми первого года жизни, рожденными матерями с хронической ГС-инфекцией, с включением в алгоритм лабораторного наблюдения теста измерения авидности антител можно прогнозировать состояние циркуляции материнских антител и диагностировать начало острой инфекции.

Положения, выносимые на защиту.

1. Разработан тест для измерения авидности антител класса IgG к ядерному и неструктурному NS4 белкам вируса гепатита С с использованием иммуносорбентов на основе синтетических пептидов, соответствующих иммунодоминантным регионам указанных белков. Определены основные параметры выполнения теста, включая кратность разведения образцов, концентрацию мочевины для обработки комплексов антиген-антитело, интерпретацию полученных результатов.

2. При гепатите С наблюдаются общие с другими вирусными, бактериальными и паразитарными инфекциями закономерности изменения авидности антител класса IgG к различным белкам вируса гепатита С. В связи с тем, что наиболее ранними и часто обнаруживаемыми антителами являются антитела к ядерному белку вируса, измерение авидности антител к этому белку имеет наибольшую диагностическую ценность.

3. У детей, рожденных матерями с хронической ВГС-инфекцией, в первые три месяца жизни наблюдается высокий уровень авидности антител к ядерному белку вируса гепатита С, что указывает на их материнское происхождение.

Реализация результатов исследования.

По результатам исследования получен патент Российской Федерации «Способ дифференциальной диагностики вирусного гепатита С» № 202 114 254 от 30.05.2002 (положительное решение от 11.09.2003).

Основные материалы работы представлены в учебных пособиях НИИДИ для врачей «Современные подходы в лечении хронических гепатитов у детей» (Санкт-Петербург, 2001) и «НС-вирусная инфекция у детей и подростков» (Санкт-Петербург, 2002).

Способ внедрен в практику работы Санкт-Петербургского НИИДИ (2001), клинической инфекционной больницы № 21 г. Волгограда (2001), Кировского областного центра по профилактике и борьбе со СПИД и инфекционными заболеваниями (2002), Санкт-Петербургского городского диагностического центра (вирусологического) в 2003 г.

Материалы диссертации используются в педагогическом процессе на кафедре инфекционных болезней у детей факультета постдипломного образования Санкт-Петербургской педиатрической медицинской академии.

Апробация работы.

Материалы диссертации доложены на итоговых научно-практических конференциях Санкт-Петербургского НИИДИ (2000, 2001, 2002), на Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 100 летию академика Смородинцева А. А. «Современные аспекты вакцинопрофилактики, химиотерапии, эпидемиологии, диагностики гриппа и других вирусных инфекций «(Санкт-Петербург, 2001г), на IV Российской научно-практической конференции «Гепатит В, С и D — проблемы диагностики, лечения и профилактики» (Москва, 2001), на заседании Санкт-Петербургского отделения Всероссийского общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов (2002), на Всероссийской научно-практической конференции, посвященной современным научным и практическим проблемам инфекционной патологии у детей (НИИДИ, Санкт-Петербург, 2003).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 13 научных работ.

Объем и структура диссертации.

Диссертация изложена на 153 страницах машинописного текста, включая 8 таблиц, 1 схему и 34 рисунка. Работа состоит из введения, обзора литературы, описания использованных материалов и методов, 3 глав собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов, практических рекомендаций и приложения.

Список литературы

включает 82 отечественных и 152 иностранных источника.

ВЫВОДЫ.

1. Разработан тест для измерения авидности антител класса IgG к отдельным белкам вируса ГС в ИФА на основе иммуносорбента, включающего синтетические пептиды, соответствующие иммунодоминантным регионам ядерного и NS4 белков вируса, и обработки комплексов антиген-антитело, образующихся при исследовании образцов, 6 М мочевиной. Тест отличается высокой воспроизводимостью результатов с максимальной вариабельностью показателей 12,2%.

2. В образцах анти-ВГС-позитивных сывороток, содержащих антитела класса IgM, средний индекс авидности антител класса IgG к ядерному белку составляет 50,9%, тогда как в образцах, не содержащих антител класса IgM, показатель индекса авидности достигает 95,7%. Это позволяет установить пограничное значение для низкоавидных антител на уровне <50%.

3. У больных острым гепатитом С наиболее часто обнаруживаются антитела класса IgG к ядерному (100%) и NS3 (84,6%) белкам вируса ГС, а антитела к NS4 и NS5 белкам выявляются всего в 23,1% - 7,7% случаев соответственно. У больных хроническим ГС частота выявления указанных антител колеблется от 90,9% (NS3) до 100% (Core, NS4). Значительная доля пациентов с антителами к ядерному белку вируса ГС делает использование теста измерения авидности антител к этому белку перспективным для разграничения острой и хронической инфекции.

4. Средний индекс авидности антител к ядерному белку вируса ГС у больных острым ГС в первые недели заболевания составляет 45,5%, а у больных хроническим ГС — 94,4%, что свидетельствует о преобладании низкоавидных антител к ядерному белку у пациентов с острым ГС и высокоавидных антител — у больных хроническим ГС. Средний индекс авидности антител у лиц с анти-ВГС, но без явных признаков заболевания, составляет 92,8%, что указывает на давность заражения и высокую вероятность у них хронической инфекции.

5. Полное созревание антител класса IgG к ядерному белку вируса ГС и достижение ими высокой авидности (>90%) у отдельных больных, перенесших острый ГС, происходит через различные промежутки времени, но в среднем этот процесс длится не менее 10 месяцев. У больных хроническим ГС постоянно циркулируют антитела высокой авидности.

6. У детей, рожденных матерями с хронической ГС-инфекцией, в первые месяцы жизни наблюдается высокая авидность антител класса IgG к ядерному белку вируса ГС (81,8%), что свидетельствует об их материнском происхождении. Снижение концентрации антител у таких детей при сохраняющемся высоком индексе авидности антител к ядерному белку вируса ГС является благоприятным прогностическим критерием, свидетельствующим о том, что дети не были инфицированы вирусом ГС.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. С целью диагностики острого и хронического гепатита С вирусологическим лабораториям рекомендуется использовать дополнительный тест определения авидности антител класса IgG к ядерному белку вируса ГС. Значение индекса авидности <50% свидетельствует о преобладании низкоавидных антител к ядерному белку в исследуемом образце, которые характерны для острого процесса. У больных с манифестным хроническим ГС индекс авидности антител, как правило, превышает 90%.

2. Для принятия решения об инфицированности вирусом ГС детей первого года жизни, рожденных матерями с хронической ГС-инфекцией, необходимо проводить динамическое наблюдение за уровнем суммарных антител к вирусу ГС или антител к ядерному белку вируса и показателями индекса авидности антител класса IgG к ядерному белку вируса. Снижение индекса авидности антител к ядерному белку при сохраняющемся высоком уровне антител является неблагоприятным признаком развития гепатита С.

Показать весь текст

Список литературы

  1. М.А. Прогностические маркеры хронизации вирусного гепатита С / М. А. Абдукадырова // Иммунопатология и клиническая иммунология. 2002. — № 1. — С.47−50.
  2. М.А. Клинические варианты острого вирусного гепатита С /М.А.Абдукадырова // Иммунопатология и клиническая иммунология. — 2002.- № 1. С.51−54.
  3. А.Г. Характеристика панели моноклональных антител к рекомбинантному белку NS3 вируса гепатита С / А. Г. Абдулмеджидова, О. В. Масалова, С. Н. Атанадзе и др. // Вопросы вирусологии. 2002. -№ 1.- С.21−25.
  4. А.Ю. ИФА-диагностика в разграничении гепатита С острого и хронического течения / А. Ю. Афанасьев, С. В. Зубов, Ю. Е. Юданов // Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии и колопроктологии. -1995.-Т.5, № 3.- прил.1. С. 12.
  5. М.С. Вирусные гепатиты: Энциклопедический словарь /М.С.Балаян, М. И. Михайлов // Изд.2-ое переработанное и дополненное — М.: Амипресс, 1999. 304с.
  6. М.Р. Возможные механизмы взаимного влияния инфекций, вызываемых ВИЧ и вирусом гепатита С / М. Р. Бобкова // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии — 2002. — № 5. — С.104−115.
  7. А.Б. Спектры антител к антигенам HCV при острой и хронической формах гепатита С / А. Б. Бузина // Гепатит В, С и D -проблемы диагностики, лечения и профилактики: Тезисы докладов IV Российской научно-практической конференции. — М., 2001. — С.50−51.
  8. Е.А. Сравнительная характеристика вирусных гепатитов В и С по данным клинико-лабораторного и эпидемиологического обследования: Автореф. дис. на соискание ученой степени канд. мед. наук. — СПб., 1995. — 24с.
  9. Т.А. Клиническое значение определения антител к поверхностным белкам вируса гепатита С: Автореф. дис. на соискание ученой степени канд. мед. наук. — СПб., 2003. — 15с.
  10. Вирусные гепатиты в Российской Федерации: Аналитический обзор/ Под ред. А. Б. Жебруна. — СПб.: НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Пастера, 2000. вып.З. — 256с.
  11. А. Иммунологические основы иммунизации. Вып.1.Общая иммунология. Женева, 1993. — 29 с.
  12. М.Ю. Распространение гепатита С в семейных очагах / М. Ю. Гончарук, Е. И. Ефимов, Т. Н. Быстрова и др. // Гепатит С (Российский консенсус): Тез. докл. Научно-практической конференции, 26−27 сентября 2000 г. М., 2000. — С.30−31.
  13. М.Ю. Вирусный гепатит С и наркотики / М. Ю. Гончарук, Е. И. Ефимов, Т. Н. Быстрова и др. // Гепатит В, С и D проблемы диагностики, лечения и профилактики: Тез. докл. TV Российской научно-практической конференции. — М., 2001. — С.82−83.
  14. Л.Г. Современные подходы в лечении хронических гепатитов у детей / Л. Г. Горячева, В. А. Тихонова, Н. В. Рогозина и др. // Учебное пособие. СПб., — 2000. — 20с.
  15. Е.А. Клинические варианты гепатита С у детей / Е. А. Григорьева, И. А. Московская, М. ИМихайлов и др.// Гепатит С (Российский консенсус): Тезисы докладов научно-практической конференции. М., 2000. — С.31.
  16. Дифференциальная лабораторная иммунодиагностика вирусных гепатитов: Методические рекомендации /А.А.Новик, В. Н. Цыган, В. Ю. Никитин и др. М., 2002. -78 с.
  17. Т.Г. Клинико-лабораторная характеристика вирусного гепатита С у детей: Автореф. дис. на соискание ученой степени канд. мед наук. СПб., 1999. — 27 с.
  18. О.Н. Характеристика современных эпидемиологических особенностей НС-вирусной инфекции и активность перинатальной передачи вируса гепатита С: Автореф. дис. на соискание ученой степени канд. мед. наук. М., 2000. — 29с.
  19. О.Н. Характеристика активности естественных путей передачи вируса гепатита С / О. Н. Ершова, И. В. Шахгильдян, С. Н. Кузин // Материалы VIII съезда Всероссийского общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов. М., 2002. — Т.З. — С.23−24.
  20. В.М. Вирусные гепатиты /В.М.Жданов, В. А. Ананьев, В. М. Стаханова. М.: Медицина, 1986. — 256с.
  21. О.О. Вирусный гепатит С (клиника, диагностика и исходы): Автореф. дис. на соискание ученой степени канд. мед. наук. — М., 1994. — 23с.
  22. С.В. Серологический профиль в разные фазы гепатита С / С. В. Зубов, С. Н. Соринсон, Ю. Е. Жданов // В кн. Идеи Пастера в борьбе с инфекциями. СПб., 1995. — 86с.
  23. Е.Н. Хронические вирусные заболевания печени / Е. Н. Ильина, Е. Е. Фомина, Е. К. Артемов. М., 2002. — С.21.
  24. О.В. Молекулярно-генетическая характеристика вариантов вируса гепатита С, циркулирующих в Санкт-Петербурге: Автореф. дис. на соискание ученой степени канд. биол. наук. — СПб., 2000. — 22с.
  25. М.В. Субпопуляционный состав лимфоцитов/моноцитов крови человека у больных острыми вирусными гепатитами В и С / М. В. Калышенко, И. П. Балмасова // Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. -2002.- N°3.-С.46−48.
  26. И.В. Серологическое исследование эпитопов белка NS5 вируса гепатита С и их значение для клиники и диагностики / И. В. Круглов, О. О. Знойко, М. П. Финогенова и др. // Вопросы вирусологии. 2000. — № 1. -С. 14−17.
  27. И.В. Спектр антител к различным антигенам HCV при различных вариантах течения хронической HCV-инфекции / И. В. Круглов, О. О. Знойко, О. Л. Огиенко // Вопросы вирусологии. — 2002. -№ 2. -С.11−16.
  28. B, дельта и С / С. Н. Кузин, И. В. Шахгильдян, А. Я. Буриев // Эпидемиология и инфекционные болезни. — 1998. — № 6. — С.25−28.
  29. С.Н. Распространение гепатита С и отдельных генотипов вируса гепатита С в регионе с умеренной активностью эпидемического процесса /
  30. C.Н.Кузин, Е. В. Лисицина, Е. И. Самохвалов и др. // Вопросы вирусологии. 1999.- № 2. — С.79−82.
  31. А.В. Случай внутрисемейной передачи HCV-инфекции / А. В. Кузнецова, А. И. Жердева // Гепатит В, С и D проблемы диагностики, лечения и профилактики: Тез. докл. IV Российской научно-практической конференции. — М., 2001. — С. 192−193.
  32. И.О. Результаты скрининга на антитела к вирусу гепатита С в различных группах населения в Свердловской области / И. О. Кузнецова,
  33. B.В.Романенко, О. С. Утницкая и др. // Гепатит С (Российский консенсус): Тезисы докладов научно-практической конференции. — М., 2000. С. 72.
  34. Д.К. Распространение генотипов вируса гепатита С, циркулирующих на территории Северо-Западной и Центральной частей России / Д. К. Львов, С. Миширо, Н. А. Селиванов и др. // Вопросы вирусологии. 1995. — № 6. — С .251−253.
  35. Д.К. Вирусные гепатиты / Д. К. Львов // Вопросы вирусологии. — 2002.-№ 6. С.44−46.
  36. О.В. Характеристика панели моноклональных антител и эпитопное картирование белков вируса гепатита С / О. В. Масалова, А. Г. Абдулмеджидова, С. Н. Атанадзе // Докл. АН. 2002. — Т.383. — № 4.1. C.545−550.
  37. О.В. Анализ белков вируса гепатита С в клетках печени больных хроническим гепатитом С / О. В. Масалова, А. Г. Абдулмеджидова, Т. В. Шкурко // Вопросы вирусологии.-2003. № 1.-С.9−14.
  38. В.В. Анализ генома изолята 27 4933RU вируса гепатита С, выделенного на территории Российской Федерации / В. В. Мохонов, Д. В. Новиков, Е. И. Самохвалов и др. // Вопросы вирусологии. 2002. -№ 1. — С.9−11.
  39. С.Л. Вирусные гепатиты / С. Л. Мукомолов, И. В. Валькова, Н. А. Чайка. СПб., — 1992. — 97с.
  40. С.Л. Вирусный гепатит С. Клинико-эпидемиологическая и лабораторная характеристика: Автореф. дис. на соискание ученой степени докт. мед. наук. СПб., 1994. — 35с.
  41. С.Л. Диагностическое значение определения антител класса IgM к ядерному белку вируса гепатита С / С. Л. Мукомолов, А. А. Яковлев, А. А. Колобов и др.// Вирусные гепатиты и другие актуальные инфекции. -СПб. 1997. — Т.1. -С.61−70.
  42. Л.И. Титры вирусспецифических антител в разные фазы инфекции вирусом гепатита С / Л. И. Николаева // Информационный бюллетень. Новости «Вектор-Бест». 2001. — № 19. — С.2−5.
  43. Г. Г. О состоянии заболеваемости вирусными гепатитами в Российской Федерации и неотложных медицинских мерах по ее стабилизации / Г. Г. Онищенко // Вопросы вирусологии. 2001. — № 4. -С.4−7.
  44. Парентеральные вирусные гепатиты (эпидемиология, диагностика, профилактика / И. В. Шахгильдян, М. И. Михайлов, Г. Г. Онищенко. М.: ГОУ ВУНМЦ МЗ РФ, 2003.-383с.
  45. АЛ. Актуальные проблемы гепатологии: эпидемиология вирусных гепатитов / Под ред. И. М. Чижа и Л. Л. Галина / АЛ. Раков, Ю. В. Лобзин, В. В. Горбаков и др.// Приложение к СССХХХШ тому «Военно-медицинского журнала». — М., 2002. 96 с.
  46. И.А. Разработка и использование метода определения генотип-специфических антител к вирусу гепатита С: Автореф. дис. на соискание ученой степени канд. биол. наук. СПб., 1999. — 20с.
  47. С.Н. Вирусные гепатиты в клинической практике / С. Н. Соринсон. СПб.: Теза, 1996. — С.204−234.
  48. С.Н. Вирусные гепатиты. Изд. 2-ое /С.Н.Соринсон- СПб.: Теза, 1998.-331с.
  49. И.Ф. Хронический вирусный гепатит С: особенности иммунитета у больных с персистенцией вируса в мононуклеарных клетках / И. Ф. Фридлянд, О. Н. Гришаева, М. П. Гришаев и др.// Иммунопатология и клиническая иммунология. 2002. — № 2. — С.121−124.
  50. Характеристика перинатальной передачи НС- и HG- вирусной инфекции / О. Н. Ершова и др. // Гепатит В, С, и D — проблемы диагностики, лечения и профилактики: Тез. докл. V Российской научно-практической конференции 3−5 июня 2003 г. М., 2003. — С.92−93.
  51. Т.В. Острый гепатит С на фоне хронической HBV-инфекции / Т. В. Шкурко, С. Г. Чешик, Д. М. Брагинский // Вопр.вирусологии. 2002. -№ 1. — С.12−14.
  52. А.В. Частота встречаемости маркеров гепатита С и факторы риска у персонала больниц Новосибирской области / А. В. Шустов, Г. В. Кочнева, Г. Ф. Сиволобова и др, // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2002. — № 2. — С.26−32.
  53. Alvarado-Esquivel С. Comparison of two commercially available avidity tests for toxoplasma-specific IgG antibodies / Alvarado-Esquivel C., Sethi S., Janitschke K. et al.// Arch. Med. Res. 2002. — v.33. — N6. — P.520−523.
  54. Abou-Basha L.M. Specific IgG avidity in acute and chronic human fascioliasis / Abou-Basha L.M., Shehab A.Y., Osman M.M., Farag H.F.// East.Mediterr. Health J. 2000. — v.6. — N5−6. — P.919−925.
  55. Aoyagi K. Development of a simple and highly sensitive enzyme immunoassay for Hepatitis С virus core antigen/ Aoyagi K., Ohue C., Iida K. et al.// J.Clin.Microbiol. 1999. -v.37. -N6. -P. 1802−1808.
  56. Aoyagi K. Performance of a conventional enzyme immunoassay for hepatitis С virus core antigen in the early phases of hepatitis С infection/ Aoyagi K., Iida K., Ohue C., et al.// Clin.Lab. 2001. — v.47. -N 3−4. — P. 119−127.
  57. Anderson S.C. Comparison of two second-generation anti-hepatitis С virus ELISA on 21 431 US blood donor samples/ Anderson S.C., Hathaway Т., Kuramoto I. K et al.// J. Viral Hepat. 1995. — v.2. — N1. — P.55−61.
  58. Arase Y. Efficacy of prolonged interferon therapy for patients with chronic hepatitis С with HCV-genotype lb and high virus load / Arase Y., Ikeda K., Tsubota A. et al.// J.Gastroenterol. -2003. v.38. -N2. -P.158−163.
  59. Baccard-Longere M. Multicenter evaluation of a rapid and convenient method for determination of cytomegalovirus immunoglobulin G avidity / Baccard1. ngere М., Freymuth F., Cointe D. et al.// Clin.Diagn.Lab.Immunol. 2001. -v.8. — N2. — P.429−431.
  60. Barerra J.M. Improved detection of anti-HCV in post-transfusion hepatitis by third-generation ELISA / Barerra J.M., Francis В., Ercilla G., et al.// Vox Sang.- 1995. v.68. — N1. — P.15−18.
  61. Berger A. Lack of correlation between different hepatitis С virus screening and confirmatory assays / Berger A., Doerr H.W., Preiser W., Weber B. // J.Virol.Methods. 1996. — v.59. — N1−2. -P.141−146.
  62. Bizollon T. Anti-hepatitis С virus core IgM antibodies correlate with hepatitis С recurrence and its severity in liver transplant patients / Bizollon Т., Si Ahmed S.N., Guichard S. Et al.// Gut. 2000. — v.47. — N47. — P.698−702.
  63. Bodeus M. Avidity of IgG antibodies distinguishes primary from nonprimary cytomegalovirus infection in pregnant women/ Bodeus M., Feyder S., Goubau P. // Clin. Diagn. Virol. 1998. — v.9. -Nl. -P.9−16.
  64. Bodeus M. Ability of three IgG-avidity assays to exclude recent cytomegalovirus infection/ Bodeus M., Beulne D., Goubau P. // Eur.J.Clin.Microbiol.Infect.Dis. 2001. — v.20. — N3. — P.248−252.
  65. Bottiger B. Maturation of rubella IgG avidity over time after acute rubella infection/ Bottiger В., Jensen LP. // Clin. Diagn. Virol. 1997. — v.8. — N2. -P.105−111.
  66. Bouvier-Alias M. Clinical utility of total HCV core antigen quantification: a new indirect marker of HCV replication/ Bouvier-Alias M., Patel K., Dahari H. et al.// Hepatology. 2002. — v.36. — N1. — P.211−218.
  67. Callahan J.D. Second generation hepatitis С virus assays: performance when testing African sera/ Callahan J.D., Constantine N.T., Kataaha P. et al.// J.Med. Virol. 1993. — v.41. -Nl. — P.35−38.
  68. Chamberlian R.W. The complete coding sequence of hepatitis virus genotype 5a, the predominant genotype in South Africa/ Chamberlian R.W., Adams N.J., Taylor L.A. et al.// Biochem. Biophys. Res.Commun. 1997. — v.236. — N1. — P.44−49.
  69. Choo Q.-L. Isolation of a cDNA clone derived from a blood-borne non-A, non-B viral hepatitis genome / Choo Q.-L., Kuo G., Weiner A.J. et al. // Science. 1989. — v.244. — P.359−362
  70. Chinchai T. Comparative study of different methods to genotype hepatitis С virus type 6 variants/ Chinchai Т., Labout J., Noppornpanth S. et al.// J.Virol.Methods. 2003. — v. 109. -N2. — P. 195−201.
  71. Courouce A.M. Hepatitis С virus (HCV) infection in haemodialysed patients: HCV RNA and anti-HCV antibodies (third generation assays)/
  72. Courouce A.M., Bouchardeau F., Chauveau P. et al.// Nephrol. Dial. Transplant. 1995. — v.10. -N2. -P.234−239.
  73. Courouce A.M. A comparative evaluation of the sensitivity of five anti-hepatitis С virus immunoblot assays/ Courouce A.M., Noel L., Barin F. et al.// Vox Sang. 1998. — v.74. -N4. -P.217−224.
  74. Courouce A.M. Efficacy of HCV core antigen detection during the preseroconversion period/ Courouce A.M., Le Marrec N., Bouchardeau F. et al.// Transfusion. 2000. — v.40. -N10. -P.l 198−1202.
  75. Cristina J. Hepatitis С virus phylogeny: a useful clinical tool / Cristina J., Mukomolov S., Colina R. et al.// Acta Virol. 2002. — v.46. -N3. — P.179−182.
  76. Dal Molin G. Mother-to-infant transmission of hepatitis С virus: rate of infection and assessment of viral load and IgM anti-HCV as risk factors/ Dal Molin G., D' Agaro P., Ansaldi F. et al.// J.Med.Virol. 2002. — v.67. — N2. -P.137−142.
  77. Davidson F. Survey of major genotypes and subtypes of hepatitis С virus using RFLP of sequences amplified from 5' non-coding region/ Davidson F., Simmonds P., Ferguson J.C. et al. // J.Gen.Virol. 1995. — v.76. — N5. -P.l 197−1204.
  78. Das B.R. Geographical distribution of hepatitis С virus genotypes in India/ Das B.R., Kundu В., Khandapkar R., Sahni S. // Indian J.Pathol.Microbiol. -2002. v.45. — N3. — P.323−328.
  79. De Cock L. Serotyping and genotyping of hepatitis С virus in Belgium/ De Cock L., Vranckx R.// Infection. 2003. — v.31. — N2. — P.92−97.
  80. De Ory F. Application of low-avidity immunoglobulin G studies to diagnosis of Epstein-Barr virus infectious mononucleosis/ De Ory F., Antonaya J., Fernandez M.V., Echevarria J.M.// J. Clin. Microbiol. 1993. — v.31. — N6. -P.1669−1671.
  81. Dentico P. Hepatitis С virus RNA, immunoglobulin M anti-HCV and risk factors in haemodialysis patients/ Dentico P., Sacco R., Buongiorno R. et al.// Microbios. 1999. — v.99. -N3. — P.55−62.
  82. Djebbi A. Genotypes of hepatitis С virus circulating in Tunisia/ Djebbi A., Triki H., Bahri O. et al. //Epidemiol.Infect. 2003. — v. l30. -N3. — P.501−505.
  83. Dusheiko G. Hepatitis С virus genotypes: an investigation of type-specific differences in geographic origin and disease/ Dusheiko G., Schmilovitz-Weiss H., Brown D. et al. //Hepatology. 1994. — v.19. -Nl. -P.13−18.
  84. Dussaix E. Analysis of sera indeterminate by Ortho-HCV RIBA-2 by using three confirmatory assays for anti-hepatitis С virus antibody/ Dussaix E., Charnaux N., Laurent-Puig P. et al. // J.Clin.Microbiol. 1994. — v.32. — N9. -P.2071−2075.
  85. El-Gohary A. HCV-RNA and anti-HCV IgM in Egyptian subjects bearing IgG anti-HCV antibodies/ El-Gohary A., Hosny A.M., Fawaz N. et al.// Jpn. J.Infect.Dis. 1999. — v.52. -N3. -P.l 13−116.
  86. El-Zayadi A. Response to interferon-alpha of Egyptian patients infected with hepatitis С virus genotype 4/ El-Zayadi A., Simmonds P., Dabbous H. et al. // J. Viral Hepat. 1996. — v.3. — N5. — P.261−264.
  87. Eroglu C. A highly sensitive and specific enzyme-linked immunosorbent assay of antibodies to hepatitis С virus/ Eroglu C., Yildiz E., Ozturk M., Pinarbasi E. // Acta Virol. 2000. — v.44. — N1. — P.29−33.
  88. Gassman C. Avidity determination of IgG directed against tick-born encephalitis virus improves detection of current infections/ Gassman C., Bauer G. // J.Med. Virol. 1997. — v.51. -N3. -P.242−251.
  89. Goldblatt D. Antibody avidity as a surrogate marker of successful priming by Haemophilus influenzae type b conjugate vaccine following infant immunization / Goldblatt D., Vaz A.R., Miller E. // J. Infect. Dis. 1998. -v.177. -N6. -P.1112−1115.
  90. Grandeot-Keros L. Value of cytomegalovirus (CMV) IgG avidity index for the diagnosis of primary CMV infection in pregnant women/ Grandeot-Keros L., Mayaux M.J., Lebon P. et al.// J.Infect. Dis. 1997. — v. 175. — N5. — P. 944−946.
  91. Grant P.R. Quantification of HCV RNA levels and detection of core antigen in donations before seroconversion/ Grant P.R., Sims C.M., Tedder R.S.// Transfusion. 2002. — v.42. — N8. — P. 1032−1036.
  92. Gutierrez J. Reliability of low-avidity IgG and IgA in the diagnosis of primary infection by rubella virus with adaptation of a commercial test/ Gutierrez J., Rodriguez M.J., De Ory F. et al.// J.Clin.Lab. Anal. 1999. — v. 13. -Nl.-P.l-4.
  93. Hanley J.P. Interferon treatment for chronic hepatitis С infection in hemophiliacs influence of virus load, genotype and liver pathology on response / Hanley J.P., Jarvis L.M., Andrew J. et al. // Blood. — 1996. — v.87. -N5. — P. 1704−1709.
  94. Hedman К. Recent rubella virus infection indicated by a low avidity of specific IgG / Hedman K., Seppala I.// J.Clin.Immunol. 1988. — v.8. — N3. — P.214−221.
  95. Hedman K. Measurement of avidity of specific IgG for verification of recent primary rubella / Hedman K., Rousseau S.A. // J.Med. Virology. 1989. — v.27. — N4. — P.288−292.
  96. Hedman K. Recent primary Toxoplasma infection indicated by a low avidity of specific IgG / Hedman K., Lappalainen M., Seppaia I., Makela O. // J.InfectDis. 1989. — v. 159. — N2. — P. 736−740
  97. Hedman K. Avidity of IgG in serodiagnosis of infectious diseases / Hedman K., Lappalainen M., Soderland M., Hedman L. // Rev.Med.Microbiol. — 1993. -v.4. —N1. —P.123−129.
  98. Hennig H. Evaluation of newly developed microparticle enzyme immunoassay for the detection of HCV antibodies / Hennig H., Schlenke P., Kirchner H. // J.Virol.Methods. 2000. — v.84. — N2. — P.181−190.
  99. Hitzler W.E. Screening of blood donation by hepatitis С virus polimerase chain reaction (HCV-PCR) improves safety of blood products by window period reduction / Hitzler W.E., Runkel S. // Clin.Lab. 2001. — v.47. — N5−6. -P.219−222.
  100. Hitzler W.E. Routine HCV PCR screening of blood donation to identify early HCV infection in blood donors lacking antibodies to HCV / Hitzler W.E., Runkel S. // Transfusion. 2001. — v. 41. -N3. — P.333−337.
  101. Houshofer A.C. Genotyping of hepatitis С virus comparison of three assays / Houshofer A.C., Berg J., Hauer R. et al.// J.Clin.Virol. — 2003. — v.27. -N3. — P.276−285.
  102. Hubner J. Diagnosis of the early phase of larval toxocariasis using IgG avidity / Hubner J., Uhlikova M., Leissova M. // Epidemiol. Mikrobiol. Immunol. 2001. — v.50. — N2. — P.67−70.
  103. Icardi G. Novel approach to reduce the hepatitis С virus (HCV) window period: clinical evaluation of a new enzyme-linked immunosorbent assay for
  104. HCV core antigen / Icardi G., Ansaldi F., Bruzzone B.M. et al, // J.Clin.Microbiol. 2001. — v.39. — N9. — P.3110−3114.
  105. Inouye S. Changes in antibody avidity after virus infections: detection by an immunosorbent assay in which a mild protein-denaturing agent is employed / Inouye S, Hasegava A., Matsuno S., Katow S. // J.Clin.Microbiol. 1984. -v.20. — N3. — P.525−529.
  106. Jenum P. A. Improved diagnosis of primary Toxoplasma gondii infection in early pregnancy by determination of antitoxoplasma immunoglobulin G avidity / Jenum P.A., Stray-Pedersen В., Gundersen A.-G. // J.Clin. Microbiol. 1997.- v.35. N8. — P.1972−1977.
  107. ICalinina O. Shift in predominating subtype of HCV from lb to 3a in St. Petersburg mediated by increase in injecting drug use / Kalinina O., Norder H., Vetrov T. et al. // J.Med.Virol. 2001. — v.65. -N3. — P.517−524.
  108. Kalinina O. A natural intergenotypic recombinant of hepatitis С virus identified in St. Petersburg / Kalinina O., Norder H., Mukomolov S., Magnius L.O. // J.Virol. 2002. — v.76. -N8. — P.4034−4043.
  109. Kanno A. Immunoglobulin G avidity assay for serodiagnosis of hepatitis С virus infection / Kanno A., Kazuyama Y. // J.Med.Virol. — 2002. v.68. — N2. -P.229−233.
  110. Kashiwakuma T. Detection of hepatitis С virus specific core protein in serum of patients by a sensitive fluorescence enzyme immunoassay (FEIA) / Kashiwakuma Т., Hasegava A., Kajita T. et al. // J.Immunol. Methods. 1996.- v. l 90. N1. — P.79−89.
  111. Kiely P.R. Anti-HCV confirmatory testing of voluntary blood donors: comparison of the sensitivity of two immunoblott assay / Kiely P.R., Eliades L.A., Kebede M. et al.// Transfusion. 2002. — v.42. -N8. — P. 1053−1058.
  112. Korhonen M.H. A new method with general diagnostic utility for the calculation of immunoglobulin G avidity / Korhonen M.H., Brunstein J., Haario H. et al. // Clin.Diag.Lab.Immunol. 1999. — v.6. -N5. — P.725−728.
  113. Krarup H.B. Performance of hepatitis С virus (HCV) antibody test systems in relation to HCV-RNA detection in the diagnosis of HCV infection / Krarup H.B., Jacobsen S.E., Varming K. et al. // Dan. Med. Bull. 1998. — v.45. — N1. -P.89−91.
  114. Kuo G. An assay for circulating antibodies to a major etiologic virus of human non-A, non-B hepatitis / Kuo G., Choo Q.-L., Alter H.J. et al. II Science. 1989. — v.244. -N3. -P.362−364.
  115. Kurtz J.B. The diagnostic significance of an assay for '4otal" hepatitis С core antigen/ Kurtz J.B., Boxall E., Quisir N. et al.// J.Virol.Methods. 2001. -V.96.-N2.-P. 127−132.
  116. Lappalainen M. Toxoplasmosis acquired during pregnancy: improved serodiagnosis based on avidity of IgG / Lappalainen M., Koskela P., Koskeniemi M. et al.// J.Infect.Dis. 1993. — v. 167. -N3. — P.691−697.
  117. Lazzarotto Т. Prenatal indicators of congenital cytomegalovirus infection / Lazzarotto Т., Varani S., Guerra B. et al.// J.Pediatr. 2000. — v.137. -Nl. — P. 90−95.
  118. Le Guiloou H. Antibody avidity: use for the diagnosis of HIV early infection / Le Guiloou H., Le Meur A., Bourdon S. et al. // Ann.Biol.Clin. 2001. — v.59. -Nl. -P.41−47.
  119. Lee S.R. Increased detection of hepatitis С virus infection in commercial plasma donors by a third generation screening assay / Lee S.R., Wood C.L., Lane M.J. et al. // Transfusion. 1995. — v.35. -N10. — P.845−849.
  120. Lee S.R. Efficacy of a hepatitis С virus core antigen enzyme-linked immunosorbent assay for the identification of «window» phase blood donation / Lee S.R., Peterson J., Niven P. et al.// Vox Sang. 2001. — v.80. — N1. — P.19−23.
  121. Lelie P.N. Patterns of serological markers in transfusion-transmitted hepatitis С virus infection using second generation HCV assays / Lelie P.N., Cuypers H.T., Reesink H.W. et al. //J.Med.Virol. 1992. — v.37. — N1. — P.203−209.
  122. Leon P. Detection of low-avidity IgG antibodies in the diagnosis of primary acute infection by hepatitis С virus / Leon P., Lopez J.A., De Ory F. et al. // Enferm. Infecc. Microbiol. Clin. -1997. -v.15. -Nl. -P.14−18.
  123. Leon P. Typing of hepatitis С virus antibodies with specific peptides in seropositive blood donors and comparison with genotyping of viral RNA / Leon P., Lopez J.A., Elola C. et al.// Vox Sang. 1997. — v.72. -N2. -P.71−75.
  124. Leon P. Use of overlapping synthetic peptides to characterize samples from blood donors with indeterminate results to hepatitis С virus core antigen / Leon P., Lopez J.A., Elola C. et al. //Vox Sang. 1998. — v.75. — Nl. — P.32−36.
  125. Lin H.H. Effectiveness of second- and third generation immunoassays for the detection of hepatitis С virus infection in pregnant women / Lin H.H., Kao J.H. // J.Obstet.Gynaecol. Res. 2000. — v.26. -N4. — P.265−270.
  126. Longworth E. Avidity maturation following vaccination with a Meningococcal recombinant hexavalent PorA OMV vaccine in UK infants / Longworth E., Borrow R., Goldblatt D. et al.// Vaccine. 2002. — v.20. — N.19−20. — P.2592−2596.
  127. Marcipar I.S. Antibody maturation in Trypanosoma cruzi infected rats / Marcipar I.S., Risso M.G., Silber A.M. et al. // Clin.Diagn.Lab.Immunol. -2001. v.8. -N4. -P.802−805.
  128. Martin P. Automated RIB A hepatitis С virus (HCV) strip immunoblot assay for reproducible HCV diagnosis / Martin P., Fabrizi F., Dixit V. et al. // J.Clin.Microbiol. 1998. — v.36. -N2. — P.387−390.
  129. Mellor J. Genotype dependance of hepatitis С virus load measurement in commercially available quantitative assays / Mellor J., Hawkins A., Simmonds P. // J.Clin.Microbiol. 1999. — v.37. — N8. — P.2525−2532.
  130. Moatter T. Comparative anlysis of viral titers and histologic features of Pakistani patients infected with hepatitis С virus type 3 / Moatter Т., Hussainy A.S., Hamid S et al. // Int.J.Infect.Dis. 2002. — v.6. — N4. — P.272−276.
  131. Mohan K.V. Diagnosis of hepatitis С virus infection by ELISA, RIBA and RT-PCR: a comparative evaluation / Mohan K.V., Murugavel K.G., Rajanikanth M.S. et al. // Indian J. Gastroenterol. 1999. — v.18. — N2. — P.73−75.
  132. Montoya J.G. VIDAS test for avidity of Toxoplasma-specific immunoglobulin G for confirmatory testing of pregnant women / Montoya J.G., Liesenfeld O., Kinney S. et al. // J.Clin.Microbiol. 2002. — v.40. — N7. -P.2504−2508.
  133. Mostafa N.E. Low avidity IgG antibodies in diagnosis of recent human schistosomiasis / Mostafa N.E., Awad A., Shalaby M. // J.Egypt. Soc. Parasitol. 2002. — v.32. — N3. — P. 979−985.
  134. Muerhoff A.S. Detection of HCV core antigen in human serum and plasma with an automated chemiluminescent immunoassay / Muerhoff A.S., Jiang L., Shah D.O. et al. // Transfusion. 2002. — v.42. -N3. — P.349−356.
  135. Narita M. Analysis of Mumps vaccine failure by means of avidity testing for mumps virus specific immunoglobulin G / Narita M., Matsuzono Y., Takekoshi Y. et al. // Clin. Diag. Lab.Immunol. 1998. — v.5. — N6. — P.799−803.
  136. Nolte F.S. Clinical evaluation of two methods for genotyping hepatitis С virus based on analysis of the 5' noncoding region / Nolte F.S., Green A.M., Fiebelkorn K.R. et al. // J.Clin.Microbiol. 2003. — v.41. -N4. — P. 1558−1564.
  137. Nubling C.M. Sensitivity of HCV core antigen and HCV RNA detection in the early infection phase / Nubling C.M., Unger G., Chudy M. et al. // Transfusion. 2002. — v.42. — N8. — P. l037−1045.
  138. Odievre M.H. The assessment of IgG avidity in the evaluation of perinatal herpes simplex virus infection / Odievre M.H., Cointe D., Thebaud B. et al. // J.Perinatol. 2002. — v.22. — N8. — P.669−671.
  139. Palacios A. Development of low cost peptide based anti-hepatitis С virus screening and confirmatory assays: comparison with commercially available tests / Palacios A., Taylor L., Haue L. et al. // J.Med.Virol. 1999. — v.58. -N3. -P.221−226.
  140. Pawlotsky J.M. Serological determination of hepatitis С virus genotype: comparison with a standardized genotyping assay / Pawlotsky J.M., Prescott L., Simmonds P. et al. // J.Clin.Microbiol. 1997. — v.35. -N7. -P.1734−1739.
  141. Pawlotsky J.M. What strategy should be used for diagnosis of hepatitis С virus infection in clinical laboratories? / Pawlotsky J.M., Lonjon I., Hezode C. et al. // Hepatology. 1998. — v.27. -N6. — P. 1700−1702.
  142. Pawlotsky J.M. Quantification of hepatitis С virus RNA in serum by branched DNA-based signal amplification assays / Pawlotsky J.M., Martinot
  143. Peignoux M., Poveda J.D. et al. // J.Virol.Methods. 1999. — v.79. — N2. -P.227−235.
  144. Peterson J. Detection of hepatitis core antigen in the antibody negative «window» phase of hepatitis С infection / Peterson J., Green G., Iida K. et al. // Vox Sang. 2000. — v.78. -N2. — P.80−85
  145. Prescott L.E. Detection and clinical features of hepatitis С virus type 6 infections in blood donors from Hong Kong / Prescott L.E., Simmonds P., Lai C.L. et al. // J.Med.Virol. 1996. — v.50. -N2. -P.168−175.
  146. Prince H.E. Simplified assay for measuring Toxoplasma gondii immunoglobulin G avidity / Prince H.E., Wilson M. // Clin.Diagn.Lab.Immunol. 2001. — v.8. -N5. — P.904−908.
  147. Prince H.E. Validation of an in-house assay for cytomegalovirus immunoglobulin G (CMV IgG) avidity and relationship of avidity to CMV IgM levels / Prince H.E., Leber A.L. // Clin.Diagn.Lab.Immunol. 2002. — v.9. -N4. — P.824−827.
  148. Pullen G.R. Antibody avidity determination by ELISA using thiocyanate elution / Pullen G.R., Fitzgerald M.G., Hosking C.S. // J.Immunol.Methods. -1986. v. 106. — N1. — P. 119−125.
  149. Rauer S. Avidity determination of Borrelia burgdorferi-specific IgG antibodies in Lyme disease / Rauer S., Beitlich P., Neubert U. et al. // Scand. J. Infect.Dis. 2001. — v.33. — N11. — P.809−811.
  150. Re V. Hepatitis С virus genotypes in Cordoba, Argentina. Unexpected high prevalence of genotype 2 / Re V., Lampe E., Yoshida C.F. et al. // Medicina (B.Aires). -2003. v.63. -N3. -P.205−210.
  151. Robertson P. Measurement of EBV-IgG anti-VCA avidity aids the early and reliable diagnosis of primary EBV infection / Robertson P., Beynon S., Whybin R. et al. // J. Med. Virology. 2003. — v.70. -N4. — P.617−623 .
  152. Ross R.S. Performance characteristics of a transcription-mediated nucleic acid amplification assay for qualitative detection of hepatitis С virus RNA / Ross R.S., Viazov S.O., Hoffman S., Roggendorf M. // J.Clin.Lab.Anal. -2001. v.15. -N6. -P.308−313.
  153. Sandres-Saune K. Determining hepatitis С genotype by analyzing the sequence of the NS5b region / Sandres-Saune K., Deny P., Pasquier C. et al. // J.Virol.Methods. 2003. — v.109. -N2. — P. l 87−193.
  154. Schreiber G.B. The risk of transfusion-transmitted viral infection. The retrovirus epidemiology donor study / Schreiber G.B., Busch M.P., Kleinman S.H., Korelits J.J. //N.Engl.J.Med. 1996.- v.334.-N9.-P.1685−1690 .
  155. Schroter M. Strategies for reliable diagnosis of hepatitis С infection: the need for a serological confirmatory assay / Schroter M., Schafer P., Zollner B. et al. // J.Med.Virol. 2001. — v.64. — N3. — P.320−324.
  156. Schubert J. Comparative evaluation of the use of immunoblots and of IgG avidity assays as confirmatory test for the diagnosis of acute EBV infections / Schubert J., Zens W., Weissbrich B. // J.Clin.Virology. 1998. — v. l 1. — N3. -P.161−172.
  157. Sensini A. IgG avidity in the serodiagnosis of acute Toxoplasma gondii infection: a multicenter study / Sensini A., Pascoli S., Marchetti D. et al. // Clin.Microbiol.Infect. 1996. — v.2. — N1. — P.25−29.
  158. Shah D.O. Combination HCV core antigen and antibody assay on a fully automated chemiluminescent analyzer / Shah D.O., Chang C.D., Jiang L.X. et al. //Transfusion. -2003. v.43. -N8. -P.1067−1074.
  159. Shioda A. Immunoglobulin G and M hepatitis С virus core antibody (JCC.2) response in chimpanzees infected experimentally with hepatitis С virus / Shioda A., Moriyama M, Hayashi N. et al. // Intervirology. 2000. — v.43. — N3. -P.146−153.
  160. Simmonds P. Classification of hepatitis С virus into six major genotypes and a series of subtypes by phylogenetic analysis of the NS5 region / Simmonds P., Holmes E.C., Cha T.A. et al. // J. Gen. Virol. 1993. — v.74. — N11. — P.2391−2399.
  161. Simmonds P. A proposed system for the nomenclature of hepatitis С viral genotypes / Simmonds P., Alberti A., Alter H.J. et al. // Hepatology. — 1994. — v.19. -N5. -P.1321−1324.
  162. Simmonds P. Identification of genotypes of hepatitis С virus by sequence comparisons in the core, El and NS5 regions / Simmonds P., Smith D.B., McOmish F. et al. // J.Gen.Virol. 1994. — v.75. — N5. — P.1053−1061.
  163. Simmonds P. Epidemiological, clinical and therapeutic associations of hepatitis С types in western European patients / Simmonds P., Mellor J., Craxi A. et al. // J.Hepatol. 1996. — v.24. -N5. -P.17−24.
  164. Soffredini R Increased detection of antibody to hepatitis С virus in renal transplant patients by third generation assays / Soffredini R.} Rumi M., Lampertico P. et al. // Am.J.Kidney Dis. -1996. v.28. -N3. -P.437−440.
  165. Stuyver L. Hepatitis С virus genotyping by means of 5' UT/core line probe assays and molecular analysis of untypeable samples / Stuyver L., Wyseur W., Van Arnhem W. et al. // Virus Res. 1995. — v.38. -Nl. -P.137−157.
  166. Takahashi K. Demonstration of a hepatitis С virus-specific antigen predicted from the putative core gene in the circulation of infected host / Takahashi K., Okamoto H., Kishimoto S. et al. // J.Gen.Virol. 1992. — v.73. — N3. — P.667−672.
  167. Tran A. Significance of serum immunoglobulin M to hepatitis С virus core in patients with chronic hepatitis С / Tran A., Yang G., Dreyfus G. et al. // Am.J.Gastroenterol. 1997. — v.92. -N10. -P.1835−1838.
  168. Trimoulet P. Evaluation of the VERS ANT HCV RNA 3.0 asay for quantification of hepatitis С virus RNA in serum / Trimoulet P., Halfon P., Pohier E. et al. // J.Clin.Microbiol. 2002. — v.40.' - N6. — P.2031−2036.
  169. Urdea M.S. Hepatitis С -diagnosis and monitoring / Urdea M.S., Wuestehube L.I., Laurenson P.M., Wilber J.C. // Clin. Chemistry. 1997. -v.43. -N8. -P.1507−1511.
  170. Usinger W.R. Avidity as a determinant of the protective efficacy of human antibodies to pneumococcal capsular polysaccharides / Usinger W.R., Lucas A.H. // Infect.Immun. 1999. — v.67. -Nil.- P.2366−2370.
  171. Valentine-Thon E. Quality control in nucleic acid testing — where do we stand? J.Clin.Virol. 2002. — v.25. — Suppl 3. — S13−21
  172. Verachai V. Prevalence and genotypes of hepatitis С virus infection among drug addicts and blood donors in Thailand / Verachai V., Phutiprawan Т., Theamboonlers A. et al. // Southeast Asian J.Trop.Med.Public Health. 2002. -v.33. — N4. — P.849−851.
  173. Viana Lde G. Antibody subclass profile and avidity during acute and chronic human Schistosoma mansoni infection / Viana Lde G., Rabello A., Katz N. // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 2001. — v.95. — N5. — P. 550−556.
  174. Vrielink H. Comparison of two anti-hepatitis С virus enzyme-linked immunosorbent assays / Vrielink H., Zaaijer H.L., Reesink H.W. et al. // Transfusion. 1995. — v.35. -N7. -P.601−604.
  175. Vrielink H. Performance of three generations of anti-hepatitis С virus enzyme immunosorbent assays in donors and patients / Vrielink H., Reesink
  176. H.W., Van Den Burg P.J. et al. // Transfusion. 1997. — v.37. — N8. — P.845−849.
  177. Ward K.N. Measurement of antibody avidity for hepatitis С virus distinguishes primary antibody responses from passively acquired antibody / Ward K.N., Dhaliwal W., Ashworth K.L. et al. // J.Med.Virol. 1994. — v.43.- N4. — P.367−372.
  178. Ward K.N. Use of immunoglobulin G antibody avidity for differentiation of primary human herpesvirus 6 and 7 infections / Ward K.N., Turner D.J., Couto-Parada X., Thiruchelvam A.D. // J.Clin. Microbiol. 2001. v.39. — N3. -P.959−963.
  179. Widell A. Detection of hepatitis С core antigen in serum or plasma as a marker of hepatitis С viraemia in the serological window-phase / Widell A., Molnegren V., Pieksma F. et al. // Transfiis. Med. 2002. — v. 12. — N2. -P.107−113.
  180. Yamaguchi N. Humoral immune response in Japanese acute hepatitis patients with hepatitis С virus infection / Yamaguchi N., Tokushige K., Yamauchi K., Hayashi N. // Can J.Gastroenterol. 2000. — v. 14. — N7. — P.593−598.
  181. Yang J.H. Real-time RT-PCR for quantitation of hepatitis С virus RNA / Yang J.H., Lai J.P., Douglas S.D. et al. // J.Virol.Methods. 2002. — v. 102. -N1−2. —P.l 19−128.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!