Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Исследование состояния популяции водоросли Scenedesmus quadricauda в норме и при интоксикации методом микрокультур

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Проведенные исследования продемонстрировали важную роль покоящихся клеток в жизни популяции Scenedesmus quadricauda. Оказалось, что в разные моменты существования культуры их доля составляет от 40 до 80%. Таким образом, рост и развитие культуры определяются достаточно небольшим количеством клеток ответственных за размножение, остальная же часть только поддерживает существование популяции… Читать ещё >

Содержание

  • I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • 1. Методы исследования состояния популяций водорослей в норме и при экстремальных воздействиях
    • 1. 1. Интегральные методы
      • 1. 1. 1. Определение общей численность клеток и анализ полученных результатов
      • 1. 1. 2. Интегральные методы оценки состояния культуры водоросли по люминесценции и флуоресценции хлорофилла
    • 1. 2. Методы изучения гетерогенности популяции
      • 1. 2. 1. Основные подходы к объяснению гетерогенности популяции микроводорослей
      • 1. 2. 2. Изучение морфологических характеристик отдельных клеток
      • 1. 2. 3. Изучение размерной гетерогенности культур микроводорослей
      • 1. 2. 4. Изучение флуоресцентных характеристик отдельных клеток
      • 1. 2. 5. Изучение полярных характеристик клеток
      • 1. 2. 6. Дифференциальное окрашивание и плазмолитический методы
      • 1. 2. 7. Методы микро и макроколоний (методы подращивания)
      • 1. 2. 8. Технические методы отбора отдельных клеток
  • 2. Водоросли, как тест — объект при оценках качества водной среды
  • II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • 1. Объект исследования
  • 2. Техника культивирования
  • 3. Исследуемые показатели
  • III. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
  • 1. Разработка метода раздельного культивирования ценобиев водоросли
  • Scenedesmus quadricauda
    • 1. 1. Развитие культур водоросли Scenedesmus quadricauda
    • 1. 2. Получение микрокультур водорослей
    • 1. 3. Сопоставление развития макро- и микрокультур
  • 2. Исследование гетерогенности лабораторной популяции водоросли Scenedesmns qaadricanda по выживаемости и способности клеток к делению
    • 2. 1. Исследование методом микрокультур фракционного состава макрокультур в разные периоды роста
    • 2. 2. Оценка наследуемости структуры микрокультур
    • 2. 3. Исследование флуоресценции хлорофилла водорослей
    • 2. 4. Исследование линейных размеров клеток водорослей
  • 3. Исследование влияния хлорида меди на выживаемость и размножение Scenedesmns quadricanda
    • 3. 1. Влияние внесения меди на лаг-фазе роста макрокультуры
    • 3. 2. Влияние внесения меди на экспоненциальной фазе роста макрокультуры
    • 3. 3. Влияние внесения меди на стационарной фазе роста макрокультуры
    • 3. 4. Влияние меди на флуоресценцию хлорофилла водорослей
    • 3. 5. Влияние меди на линейные размеры клеток водорослей
  • 4. Определение времени лизиса отмирающих клеток Scenedesmus quadricauda и оценка влияния на скорость процесса присутствия токсиканта

Исследование состояния популяции водоросли Scenedesmus quadricauda в норме и при интоксикации методом микрокультур (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Токсичные вещества оказывают влияние на самые разные компоненты водных биоценозов: бактерии, водоросли, простейшие, ракообразные, моллюски, рыбы и др. При этом их влияние сказывается как на уровне отдельного организма или клетки, так и на уровне всей популяции и экосистемы вцелом.

Удобным объектом изучения влияния токсичных веществ на популяционном уровне являются культуры микроводорослей. Главным образом, это связано с коротким жизненным циклом отдельных клеток, что позволяет в ходе одного опыта проследить влияние неблагоприятного фактора на нескольких поколений. Кроме того, высокая численность клеток в опыте позволяет получать массовый материал для статистических сравнений.

Особый интерес к процессам, происходящим в популяции культивируемых одноклеточных организмов, появился в 50-х годах прошлого века, когда были опубликованы работы, в которых популяцию (в первую очередь, микроорганизмов) стали рассматривать как единую систему со многими разнообразными связямисистему, которая нередко ведет себя как целостный организм. В частности, в работах Иерусалимского И. Д. (1952) отмечается, что популяции микроорганизмов даже в пределах лабораторных культур характеризуются:

1) фенотипической гетерогенностью составляющих ее клеток как основой для дифференциации клеток по социальным ролям- 2) наличием внутри популяции (например, колонии микроорганизмов) в той или иной мере обособленных микроколоний- 3) целостностью популяции в процессе развития, наличием у нее интегральных свойств, отсутствующих у индивидуальных клеток- 4) способностью популяции влиять на характеристики окружающей среды при достаточной плотности клеток в ней.

Многочисленные работы по колониальной организации микроорганизмов свидетельствуют о морфологической и физиологической гетерогенности входящих в её состав клеток (Олескин, 2001). Так в популяции микроорганизмов отмечают наличие активно делящихся, покоящихся и спонтанно автолизирующихся клеток (Уголев, 1987). Особенно четким разделение клеток на эти группы становится в стационарной фазе роста (Ждан-Пушкина, Хасанова, 1991). Гетерогенность (разнородность) клеток в популяции обеспечивает устойчивость культуры к меняющимся внешним условиям (Greenberg, 2003).

По сравнению с микроорганизмами культуры водорослей изучены слабее, но имеющиеся данные позволяют предположить наличие сложных связей и в их популяциях.

Так в культурах водорослей предполагается появление резерва покоящихся клеток, обеспечивающего выживание популяции в целом при неблагоприятном воздействии (Гапочка, 1981; Саакян, 1987). Кроме того, у водорослей была обнаружена программируемая клеточная смерть, ранее описываемая только у микроорганизмов (Segovia, 2003). Этот феномен является ярким примером социального контроля, когда в интересах популяции в целом происходит гибель отдельных клеток.

Другим примером сложности процессов, происходящих в популяции микроводорослей, является наличие у них сложной коммуникативной системы. Информация между клетками культуры может передаваться с помощью различных химических агентов, на уровне метаболитоввыделяемых клетками в среду (Кажлаева, Плеханов, Максимова, 1991) — путем контактного ингибирования (Costas et al, 1993). Одним из средств передачи информации может являться кальций, входящий в состав оболочки клетки (Sanders, Brownlee, Harper, 1999). Установлена возможность передачи информации из поколения в поколение путем записи ее в клеточную мембрану (Costas, Rodas. Lopez, 1991).

Вместе с тем, малоизученными остаются вопросы о роли гетерогенности культуры в процессах ее роста и развития. Не известно, какая часть клеток в популяции участвует в процессах размножения.

Целью настоящей работы являлась исследование структурных перестроек модельной популяции водоросли Scenedesmus quadricauda в норме и при токсическом воздействии.

Задачами работы служило следующее:

1. Разработка метода раздельного культивирования ценобиев водоросли Scenedesmus quadricauda и наблюдения за микрокультурами;

2. Исследование гетерогенности лабораторной популяции водорослей по выживаемости и способности отдельных клеток к делению;

3. Изучение влияния токсического воздействия на выживаемость и размножение водорослей в лабораторных популяциях;

4. Определение временив лизиса отмирающих клеток водорослей и оценка влияния на скорость лизиса присутствия токсиканта.

I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

выводы.

1. Прием раздельного культивирования клеток водоросли Scenedesmus quadricauda, называемый нами методом микрокультур, позволил оценить жизнеспособность и активность клеток в макрокультуре водоросли. В частности в культуре удалось определить относительное и абсолютное число размножающихся, покоящихся и погибающих клеток.

2. Основную часть культуры составляли клетки, находящиеся в покоящемся состоянии, особенно увеличивалась их численность в стационарной фазе роста культуры.

3. В контроле доля размножающихся клеток была сравнительно невелика, их абсолютное количество возрастало первые недели, достигая максимума к 18 суткам, с последующим снижением, в результате чего уровни размножающихся и погибающих клеток становились близкими. Фракция погибающих клеток была меньше фракции размножающихся в период с 5 по 20 сутки. Изменение скорости прироста числа клеток в ходе развития культуры происходило за счет изменения показателей рождаемости на фоне относительно постоянной смертности.

4. Внесение меди на лаг — фазе и фазе экспоненциального роста оказывало угнетающее воздействие на общую численность клеток, в целом усиливающееся с увеличением концентрацией токсиканта. При внесении меди на стационарной фазе роста эффект угнетения отмечался при концентрациях меди 0,1 и 1,0 мгСи/л. При средних концентрациях- 0,001 и 0,01 мгСи/л, напротив, происходила стимуляция процессов размножения, так что снижения общей численности клеток в культуре не происходило.

5. Наиболее сильное влияние на фракционный состав культур медь оказывала при внесении ее на экспоненциальной фазе, когда в популяции был велик процент более чувствительных размножающихся клеток. В начале эксперимента при всех концентрациях здесь происходила полная остановка процессов размножения и некоторое усиление процессов отмирания и только через 2 недели было отмечено некоторое восстановление культуры.

6. При внесении меди на лаг-фазе и фазе стационарного роста хлорид меди, главным образом, оказывал угнетающее воздействие на процессы размножения клеток, а начиная с концентрации 0,001 мгСи/л происходило еще и увеличение смертности клеток.

7. Время лизиса клеток в контроле оказалось малым по сравнению с длительностью жизненного цикла клеток (2−3 часа), а при добавлении меди в концентрации 1,0 мгСи/л возрастало до 3−6 суток. Таким образом, высокие концентрации токсиканта вызывали накопление мертвых клеток в культуре, а высокая доля мертвых клеток в макрокультуре, определенная с помощью люминесцентных методов, была связана не только с возрастанием смертности клеток, но и с замедлением процессов их лизиса.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Проведенные исследования продемонстрировали важную роль покоящихся клеток в жизни популяции Scenedesmus quadricauda. Оказалось, что в разные моменты существования культуры их доля составляет от 40 до 80%. Таким образом, рост и развитие культуры определяются достаточно небольшим количеством клеток ответственных за размножение, остальная же часть только поддерживает существование популяции. В отличие от бактерий и синезеленых водорослей, где покоящиеся клетки являются особыми устойчивыми формами с пониженной физиологической активностью и служат, главным образом, для выживания при наступлении неблагоприятных условий, у Scenedesmus quadricauda покоящиеся клетки достаточно активно фотосинтезируют. Это позволяет предположить, что их существование в культуре не связано исключительно с задачей выживания, а необходимо для развития культуры в нормальных условиях.

По мере роста культуры и перехода ее в стационарную фазу доля покоящихся клеток в ней возрастает. При этом при пересадке ценобия в камеру количество среды и света, приходящееся на один ценобий, увеличивается, однако, это не приводит к усилению размножения. Это свидетельствует о том, что торможение процессов деления клеток в этот момент связано не с автозатенением, а с какими-то метаболическими процессами в самих клетках или накоплением метаболитов в среде. Следует отметить, что в опытах с микроколониями хлореллы (Аникеева, Ваулина, Шевченко, 1964), где при переносе клеток на агар полностью снималось влияние накопленных в среде метаболитов, доля покоящихся клеток не превышала 5%. Это может являться косвенным свидетельством важной роли веществ, накапливаемых в среде, в переходе клеток к состоянию покоя.

Покоящиеся клетки не являются глубоко законсервированной системой. При слабых неблагоприятных воздействиях, когда возможность восстановление культуры зависит от скорости нарастания численности клеток в ней, они способны перейти к размножению. Примером такой ситуации может служить двукратное увеличение доли размножающихся клеток по сравнению с контролем в стационарной фазе при внесении средних концентраций хлорида меди (0,001 и 0,01 мгСи/л).

Существование культуры и ее рост при небольшой доле размножающихся клеток возможны только на фоне медленно текущих процессов отмирания. В экспериментах было продемонстрировано, что в контроле количество отмирающих клеток не превышает 10% в сутки (в периоды активного роста культуры около этот показатель опускается до 3%).

Метод микрокультур позволил разделить и рассмотреть отдельно три процесса, которые определяют общую численность клеток в культуре в конкретный момент времени: размножение, отмирание и лизис отмерших клеток.

Оказалось, что в контроле смертность клеток остается примерно на одном уровне в ходе всего роста культуры. Это означает, что главным процессом, определяющим динамику развития популяции, является размножение, а изменение скорости прироста популяции связано с изменениями в процессах рождаемости. В стационарной фазе, когда рост культуры замедляется, происходит ослабление процессов размножения, а не усиление гибели клеток.

Возможность раздельного рассмотрения процессов размножения и отмирания клеток особо важна при оценках токсичности загрязняющих веществ. Дело в том, что угнетение культуры и более низкая численность клеток по сравнению с контролем может быть связана, как с усилением процесса гибели клеток, так и с подавлением размножения.

Исследования показали, что первой реакцией культуры на токсикант является, обычно, снижение доли размножающихся клеток и их переход в покоящееся состояние. И лишь при усилении уровня токсического воздействия происходит возрастание смертности клеток. В опытах с длительной экспозицией показано, что при восстановлении культуры, в первую очередь, таюке происходит снижение смертности клеток и лишь при низких концентрациях токсичных веществ идет некоторое восстановление процессов размножения. Это свидетельствует о том, что размножение является наиболее чувствительным к неблагоприятным воздействиям процессом. Вероятно, именно с этим связана более низкая устойчивость культуры в фазе экспоненциального роста, отмеченная в наших экспериментах, когда процесс размножения в момент внесения токсиканта шел наиболее активно.

При оценке смертности клеток в культуре встает вопрос о времени лизиса отмерших клеток. Дело в том, что количество погибших клеток, оцениваемое с помощью люминесцентной микроскопии, зависит от того за какой период проходит их разрушение. При условии высокой скорости лизиса (порядка нескольких часов), которое наблюдается в контроле и при низких дозах хлорида меди, процессы отмирания и разрушения клеток оказываются сбалансированными и доля мертвых клеток остается на одном невысоком уровне. При замедлении лизиса в присутствии высоких доз хлорида меди (1 мгСи/л) количество погибших клеток в культуре постоянно возрастает, достигая к концу эксперимента 65% от общей численности клеток. При этом реальная смертность клеток в культуре не увеличивается, и к концу эксперимента соответствует контрольным значениям. Причиной замедления лизиса может быть ингибирование процесса автолизиса, так и угнетение активности сопутствующей микрофлоры, обеспечивающей утилизацию погибших клеток.

Таким образом, метод микрокультур позволил рассмотреть популяционные процессы связанные с гибелью и размножением клеток в процессе роста культуры в норме и при воздействии хлорида меди.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Аль-Сальман И.М. (1988). Исследование влияния Zn, Cd, Со и сульфатного засоления на зеленые водоросли. -Дисс.. канд. биол. наук. М.- 74с.
  2. В.М. (1975). Род Chlorella. Морфология, систематика, принципы классификации. Л.: Наука. — 110 с.
  3. И.Д., Ваулина Э. Н., Шевченко В. А. (1964). Действие УФ лучей на хлореллу// Радиобиология. 4, N 6.- С. 883—892.
  4. В.И., Дмитриева А. Г., Филенко О. Ф., Чжао Цзюнь (1996). Влияние бихромата калия на динамику культуры и размеры клеток Scenedesmus quadricauda (Тигр.) в различные сезоны года// Альгология. 6, N 1.- С. 26—35.
  5. С.В., Санин М. В., Эйнор Л. О. (1992). Пестициды и их воздействие на водные экосистемы: Обзорная информация. М.: ВНИИТЭИагропром. 48 с.
  6. Г. К., Киристаева Н. М. (1977). Токсичность соединений меди для Chlorella pirenoidosa// Гидробиолог, журнал. 13, N 4.- С. 92—94.
  7. Т. А. Динамика биомассы и функциональные характеристики морских планктонных водорослей при воздействии кадмия. Дисс.. канд. биол. наук. М. -106с.
  8. В.Н., Сидько Ф. Я., Тренкенису А. П. (1980) Энергетика фотосинтезтирующей культуры микроводорослей. Новосибирск: Наука. 136 с.
  9. М., Харпер Дж., Таундсенд К. (1989). Экология. Особи, популяции и сообщества (в 2-х томах).- М.: Мир.-. 477 с.
  10. А.И. (1997). К вопросу о факторах, влияющих на токсичность сернокислой меди для Dunaliella vulgaris// Альгология. 7, N 3, — С. 251—261.
  11. Л.П., Величко И. М., Щербань Э. П. (1987). Пресноводный планктон в токсической среде.- Киев.: Наукова думка, — 180 с.
  12. И.Р., Маторин Д. Н., Венедиктов П. С. (1988). Метод биотестирования природных вод по замедленной флуоресценции микроводорослей//Методы биотестирования вод. Черноголовка. С.23—26.
  13. Т.В. (1988). Токсико-генетическая оценка качества водной среды с использованием альготестов (на хлорелле). Дисс.. канд. биол. наук.- Одесса.- 149с.
  14. Т.В., Веселовский В. А., Власенко В. В. (1990). Вариабильность как тест перехода клетки в состояние стресса в условиях интоксикации// Физиология растений. 37, N 4, — С. 733—738.
  15. В.А. (1990). Структурно-функциональные изменения мембран растительной клетки при адаптации к повреждающим воздействиям. Дисс.. докт. биол. наук.- М.- 155с.
  16. В.А., Веселова Т. В. (1990). Люминесценция растений, — М.: Наука, — 201с.
  17. В.А., Веселова Т. В., Дмитриева А. Г., Маренков B.C. (1987) Биотестирование природных вод при помощи полевого портативного флуориметра//Методы биоиндикации и биотестирования природных вод.-Л.:Гидрометеоиздат, — С.58−63.
  18. М.Г., Семененко В. Е. (1962). Интенсивная культура одноклеточных водорослей.- М.: Изд-во АН СССР.- 59 с.
  19. Водоросли. Справочник (1989)/Вассер С.П., Кондратьева Н. В., Масюк Н. П. и др.- Киев: Наукова думка.- 608 с.
  20. О.В., Рудакова Е. Е. (2001). Влияние спектрального состава света на морфогенез коккоидных зеленых водорослей (Chlorophyta)// Альгология. И, N 2.- С. 165—175.
  21. JI.Д. (1981). Об адаптации водорослей, — М.: Изд-во МГУ.- 80 с.
  22. Л.Д. (1994). Популяционные аспекты устойчивости цианобактерий и микроводорослей к токсичечкому фактору. Дисс.. докт. биол. наук.- М.- 155с.
  23. Л.М. (1974) Специфика морфологических изменений некоторых водорослей в процессе их роста и развития в синхронных культурах. Автореф. дисс.. канд. биол. наук, — М, — 21с.
  24. Н.Я., Малиновский О. В. (1980). Go-фаза в клеточном цикл/Надежность клеток и тканей.- Киев: Наукова думка.- С.99—106.
  25. В.К. (1976) Зеленые водоросли.- Минск: Изд-во БГУ.- 80 с.
  26. С.В. (1952). Применение метода люминесцентной микроскопии для распознания живых и мертвых клеток водорослей// Труды ин-та микробиологии АН СССР. вып. 2.- С. 64—78.
  27. С.В. (1956). Техника применения метода люминесцентной микроскопии для гидробиологических исследований// Жизнь пресных вод СССР.- М.-Л.:Изд-во АН СССР, — 101 с.
  28. С.В., Герасименко Л. М., Пушева М. А. (1980). Роль нуклеопептидов в клеточном делении водорослей.-. М.: Наука.- 198 с.
  29. Д.М. (1983). Надежность растительных систем.- Киев: Наукова думка.- 365 с.
  30. И.Н. (1977). Гетерогенность образовательных тканей высших растений и ее роль в радиочувствительности/Системы надежности клетки. -ЬСиев.: Наукова думка.- С. 118—136.
  31. А.Г. (1988). Метод биотестирования по определению живых и мертвых клеток водорослей с помощью люминесцентной микроскопии//Методы биотестирования вод. Черноголовка. С.85—89.35,3637,3839,40
Заполнить форму текущей работой