Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Перевиваемые линии клеток карпа (Cyprinus carpio) и сибирского осетра (Acipenser baeri) , их использование в ихтиовирусологии

Диссертация: Перевиваемые линии клеток карпа (Cyprinus carpio) и сибирского осетра (Acipenser baeri) , их использование в ихтиовирусологии
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Общее количество клеточных линий рыб с тех пор стало нарастать лавинообразно, и сегодня их насчитывается более 430. Этот процесс отражает общее развитие ихтиовирусологии. Благодаря большому разнообразию появившихся клеточных линий рыб и их применению в вирусологической работе было обнаружено около половины из открытых на сегодня почти 400 <�¦ ихтиовирусов. Новые клеточные линии позволяют… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • 1. ВВЕДЕНИЕ
    • 1. 1. Актуальность темы
    • 1. 2. Цель и задачи исследования
    • 1. 3. Научная новизна
    • 1. 4. Практическая значимость
    • 1. 5. Основные положения, выносимые на защиту
    • 1. 6. Апробация результатов
    • 1. 7. Публикация результатов
    • 1. 8. Личный вклад
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. История вопроса
    • 2. 2. Перевиваемые клеточные линии из тканей рыб
      • 2. 2. 1. Клеточные линии, полученные от рыб семейства карповые — СургШс1ае
      • 2. 2. 2. Клеточные линии, полученные от рыб семейства осетровые — АЫретег’к1ае
      • 2. 2. 3. Получение перевиваемых клеточных линий рыб
      • 2. 2. 4. Условия культивирования клеточных линий
      • 2. 2. 5. Характеристика клеточных линий
      • 2. 2. 6. Контаминация и деконтаминация культур клеток
      • 2. 2. 7. Криоконсервация культур клеток
      • 2. 2. 8. Применение культур клеток
    • 2. 3. Вирусы и вирусные заболевания рыб, обнаруженные в России и на прилегающих к ней территориях

Перевиваемые линии клеток карпа (Cyprinus carpio) и сибирского осетра (Acipenser baeri) , их использование в ихтиовирусологии (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Метод культуры клеток — основополагающий метод, появление которого в свое время привело к бурному развитию вирусологии, — и сегодня остается одним из главных её инструментов. Потенциально бессмертные перевиваемые клеточные линии являются незаменимой экспериментальной моделью и нашли чрезвычайно широкое применение при проведении вирусологических исследований болезней рыб и в биотехнологии при производстве противовирусных вакцин.

В 1957 г. в США на первичной культуре клеток из плавников радужной форели от рыб был выделен первый вирус — возбудитель инфекционного некроза поджелудочной железы [299], а вскоре там же была получена первая постоянная клеточная линия рыб из гонад радужной форели — ЫТО-2 [300]. Несколько лет спустя были получены новые перевиваемые клеточные линии рыб — ОР-1 из плавников синеполосой ронки, НаетиЬп бсЫгиб [87], БИМ из хвостового стебля черного толстоголова, РШеркаЫБрготе1аз [128], 8ТЕ-137 из эмбриона стальноголового лосося, Опсогкупскт туИяя [120], ВР-2 из хвостового стебля синежаберного солнечника, Ьерот18 тасгосЫгт [301] и другие.

Общее количество клеточных линий рыб с тех пор стало нарастать лавинообразно, и сегодня их насчитывается более 430. Этот процесс отражает общее развитие ихтиовирусологии. Благодаря большому разнообразию появившихся клеточных линий рыб и их применению в вирусологической работе было обнаружено около половины из открытых на сегодня почти 400 <�¦ ихтиовирусов. Новые клеточные линии позволяют обнаруживать и новые вирусы. Так после получения трех клеточных линий карпа — из мозга (ССВ), жабр (ССв) и плавников (СаР2) — от больных рыб удалось выделить сразу пять разных вирусов [216, 217].

В нашей стране метод культуры клеток рыб применили впервые 45 лет назад в ГосНИОРХе [35]. Позднее исследования по получению культур клеток рыб были развернуты в УкрНИИРХе [21], в ВИЭВе [29, 31], в БелНИИРХе [14], в БелНИВИ [4] и других институтах страны. Однако, несмотря на серьезные усилия, получить перевиваемые культуры клеток не удавалось.

За последнюю четверть века большой скачок в своем развитии претерпела мировая аквакультура — целенаправленное культивирование рыб и других гидробионтов для потребления человеком или восстановления их природных запасов. Однако развитие аквакультуры осложняется распространением имеющихся и появлением новых вирусных болезней рыб [227]. Для их своевременного выявления ихтиовирусологам необходимо иметь в своем арсенале набор клеточных линий, чувствительных к широкому спектру вирусов. Этого требует и значительно обострившаяся в последние годы в стране эпизоотическая ситуация по особо опасным вирусным болезням культивируемых рыб [39].

Так, начиная с 2000 г., на рыбоводных предприятиях страны были зарегистрированы две экзотические вирусные инфекции — инфекционный некроз гемопоэтической ткани лососевых рыб (IHN) и инфекционный некроз поджелудочной железы (IPN). В 2003;2006 г. г., после многолетнего перерыва, были выявлены новые случаи весенней виремии карпа (SVC), а в 2006 г. в стране была диагностирована первая вирусная болезнь у культивируемых осетровых рыб. Серьезную угрозу рыбоводству представляют и граничащие с Россией скандинавские страны, государства континентальной Европы и юго-восточной Азии, где зарегистрированы опасные болезни, не установленные в нашей стране. Ускоренное развитие аквакультуры и активизация международной торговли живыми объектами разведения несут угрозу дальнейшего распространения заразных болезней рыб. Поэтому для ихтиовирусологии исследования по получению перевиваемых клеточных линий рыб, являющихся ключевым инструментом при разработке методов диагностики и профилактики вирусных заболеваний, по-прежнему высоко актуальны.

5. ВЫВОДЫ.

1. При создании оптимальных условий культивирования, регулярной смене питательной среды и отборе наиболее жизнеспособных культур получены длительно переживающие (до 4−5 месяцев) первичные культуры клеток овариальной ткани неполовозрелого карпа, паренхиматозных органов и плавников сибирского осетра, пригодные для последующего субкультивирования.

2. Впервые получены и охарактеризованы по стандартному набору > признаков перевиваемые линии клеток пула паренхиматозных органов и плавников сибирского осетра (SSO-1, SSO-2, SSF-1 и SSF-2) и линия клеток яичников неполовозрелого карпа (ICO). Предложена схема действий по получению монослойных перевиваемых клеточных линий рыб.

3. Показано, что селекция активно пролиферирующих клеток, способных дать начало перевиваемым линиям, может быть осуществлена одним из двух путей: 1) естественным отбором клеток в ходе продолжительного пассирования in vitro (SSF-1) — 2) искусственным отбором с помощью метода дифференцированной дезагрегации клеточного монослоя (ICO, SSO-1, SSO-2 и, SSF-2).

4. Оптимальная посевная плотность клеток, обеспечивающая высокий индекс пролиферации, значительный урожай клеток и продолжительную сохранность их в культуре, составляет: ICO — 3×105 кл./см2, SSO-1 — (9−12) х104 кл./см2, SSO-2 — ЗхЮ4 кл./см2, SSF-1 — (8−10) хЮ4 кл./см2, SSF-2 — (13−15) хЮ4 кл./см2. Увеличение или уменьшение плотности посева клеток в два и более раз по сравнению с оптимальной приводит к уменьшению индекса пролиферации, ранней дегенерации культуры, разреженности монослоя или неспособности клеток к его образованию. ,.

5. Использование сред разного состава привело к получению из одних и тех же образцов донорской ткани перевиваемых клеточных линий, различающихся по свойствам. Оптимальной питательной средой для культивирования перевиваемых линий клеток являются среды, на которых они были получены (Игла 2МЕМ для ICO, SSO-1 и SSF-1- среда 199 для SSO-2 и SSF-2). Клеточные линии, растущие в малокомпонентной среде Игла 2МЕМ, толерантны к изменению состава среды, тогда как перевод линий клеток, растущих в многокомпонентной среде 199, на другие питательные среды негативно отражается на их пролиферативной активности.

6. Установлено, что на начальной стадии роста после очередного субкультивирования перевиваемых клеточных линий ICO и SSO-2 добавление в ростовую среду 10−20% сыворотки плода коровы оказывает защитное действие на клетки, способствуя быстрому началу их активной пролиферации. В то же время, на завершающей стадии пролиферации 20%-ное содержание сыворотки ингибирует рост клеток. Оптимальное содержание сыворотки в средах для роста обеих линий клеток составляет 10%.

7. Оптимальными температурами культивирования полученных перевиваемых линий клеток являются температуры, близкие к температурным оптимумам рыб-доноров ткани: ICO — 25°СSSO-1, SSF-1 и SSF-2 — 20°СSSO-2 — 20−25°С. Повышение температуры выше оптимальной на 5 °C стимулирует бурный рост культур, быстро сменяющийся их дегенерацией. Понижение температуры до 10−15°С позволяет длительно сохранять клеточные линии в условиях лаборатории в жизнеспособном состоянии.

8. В результате кариотипирования установлено, что модальное число хромосом клеток линии ICO за более чем 600 пассажей изменилось со 100 (диплоидный набор) до 90 (гиподиплоидный набор). Модальный класс клеток линии SSO-2 составляет 364 хромосомы (гипотриплоидный набор). Выявлен широкий диапазон варьирования числа хромосом в клетках обеих линий: ICOот 71 до 178, SSO-2 — от 186 до 371.

9. Все пять полученных линий клеток рыб (ICO, SSO-1, SSO-2, SSF-1 и SSF-2) чувствительны к широкому спектру вирусов рыб разных таксономических групп (семейств карповых, лососевых, угревых, щуковых и осетровых). Использование полученных линий клеток сибирского осетра позволило диагностировать первую вирусную болезнь осетровых рыб в России.

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Полученные перевиваемые линии клеток карпа и сибирского осетра используются в практической работе для диагностики вирусных болезней культивируемых рыб из семейств карповых, лососевых, угревых, щуковых и ! осетровых и в экспериментальных вирусологических работах.

Разработаны и предложены «Методические указания по идентификации вирусов и лабораторной диагностике вирусных болезней рыб», утвержденные Департаментом ветеринарии Минсельхозпрода России 10.10.1997 г. с использованием перевиваемой линии клеток ICO (приложение 8).

Результаты работ положены в основу главы «Методы изучения вирусных болезней рыб» учебного пособия для студентов ВУЗов «Лабораторный практикум по болезням рыб» (под ред. В. А. Мусселиус, 1983), которое используется в учебной практике. ?

Показать весь текст

Список литературы

  1. , Д.С. Получение первичных культур клеток из гонад судака для вирусологических исследований/ Д. С. Архангельский, О.В. Полякова// Биол. основы рыбных хозяйств, водоемов Средней Азии, Казахстана. Фрунзе, 1978. — С. 244−245.
  2. , В.П. Эволюционная кариология рыб / В. П. Васильев. М.: Наука, 1985.-300 с.
  3. , Ю.Б. Генетика соматических клеток / Ю. Б. Бахтин. Л.: Наука, 1974.-256 с.
  4. , Л.Н. О выделении возбудителя жаберного некроза карпа и его свойства/ Л. Н. Головнев, Р. З. Екельчик // Сб. науч. трудов. — Л.: Наука, 1988.-С. 29−44.
  5. , Д.Б. Руководство по применению клеточных культур в вирусологии/ Д. Б. Голубев, A.A. Соминина, М. Н. Медведева. Л.: Медицина, 1976.-224 с.
  6. , Г. Д. Однослойная клеточная культура почечной ткани леща/ Г. Д. Гончаров, Л. А. Зубкова, М.И. Степанова// Биология внутренних водоемов: Информ. бюл. 1970. — Т. 6. — С. 60−64.
  7. Животная клетка в культуре (Методы и применение в биологии) под ред. Л. Д. Дьяконова и В. И. Ситькова М.: Компания Спутник, 2000. — С. 148 158.
  8. , Л.А. Однослойная клеточная культура из гонад самок сома/ Л.А. Зубкова// Биол. внутренних водоемов: Информ. бюл. 1971. — Т. 11. — С. 63−65.
  9. Иммунология: в 3-х т. /пер. с англ.- под ред. У. Пола. М.: Мир, 1987. -1988.-476 с.
  10. Культура животных клеток. Методы/ Д. Конки и др. под ред. Р. И. Фрешни, перевод с англ.- под ред. М. А. Панова. М.: Мир, 1989. — 333с.
  11. Лабораторный практикум по болезням рыб/ под ред. В. А. Мусселиус. М.: Легкая и пищевая промышленность, 1983. — 296с.
  12. , Г. Ф. Биометрия / Г. Ф. Лакин — М.: Высшая школа. — 1990.352 с. I
  13. , Т.И. Жаберная болезнь рыб в Белоруссии (Распространение, | этиология, диагностика): автореф. дис. канд. биол. наук/ Т. И. Мамыш. -Минск, 1975. 19 с.
  14. Методические указания по идентификации и лабораторной диагностике вирусных болезней рыб. Вирусные болезни. Сб. инструкций по борьбе с болезнями рыб. М.: Отдел маркетинга АМБ-агро, 1998. — 4.1. — С. 60 113.
  15. Методы культивирования клеток: сб. науч. трудов/ под ред. Г. П. Пинаева Л.: Наука, 1988. — 320с.
  16. , Г. Р. Методические рекомендации по способу выявления J микоплазм в культурах перевиваемых клеток/ Г. Р. Михайлова, A.C. Новохатский, М. А. Родова. М., 1983. — 8 с.
  17. Наставление по применению тест-системы «МИК-КОМ» для диагностики микоплазмоза методом полимеразной цепной реакции: утверждена Деп. ветеринарии Минсельхозпрод России 17 августа 1998 г. 11с.
  18. , В.В. О методе культивирования почечных клеток карпа in vitro/ B.B. Никольский, Е.Ф. Осадчая// Материалы всесоюзной конф. По вопросам ветеринарной вирусологии. М., 1964. — С. 66−67.
  19. , H.H. Биология клетки в культуре / H.H. Никольский, | Ю. Б. Бахтин, Т.Н. Игнатова- под ред. A.C. Трошина. Л.: Наука, 1984. — 280 с.
  20. , Е.Ф. Выделение цитопатогенных агентов от карпов при острой форме краснухи/ Е. Ф. Осадчая // Ветеринария. 1964. — № 9. — С. 29.
  21. , Е.Ф. Методика культивирования однослойных клеточных культур из недозрелых гонад самок карпа/ Е. Ф. Осадчая // Рыбное хозяйство., I1969.-Вып. 9.-С. 88−92. !
  22. , Е.Ф. О применении полусинтетической питательной среды для культивирования почечных клеток рыб in vitro / Е. Ф. Осадчая // Рыбное хозяйство. 1969. — вып. 7. — С. 22−26.
  23. , Е.Ф. Рабдовирусы, выделенные от больных краснухой карпов, и некоторые их свойства/ Е. Ф. Осадчая // Рыбное хозяйство. 1977. — № 5.-С. 36−39.
  24. , Т.И. Выделение вируса от карпов, больных жаберным некрозом/ Т. И. Попкова, И.С. Щелкунов// Рыбное хоз-во. 1978. — № 4. — С.4−38. ,
  25. Практическая вирусология: перевод с нем.- под ред. В. Н. Сюрина. ^ М.: Колос, 1970.-352 с.
  26. Пятиязычный словарь названий животных. Рыбы. Латинский-русский-английский-немецкий-французский/ Ю. С. Решетников и др. М.: Русский язык, 1989.-734 с.
  27. , Е.М. Приготовление однослойной культуры тканей из гонад карася и карпа/ Е. М. Рабкин, P.A. Куденцова // Ветеринария. 1969. — № 12. -С. 91−92.
  28. , Н.И. Применение культур тканей рыб в изучении воспаленияIплавательного пузыря/ Н.И. Рудиков// Актуальные вопросы ветеринарной ! вирусологии. М., 1965. — 4.1. — С. 20−22.
  29. , Н.И. О клеточных культурах из эмбрионов и личинок пресноводных рыб/ Н.И. Рудиков// Тезисы докл. научно-методического производственного совещания по болезням рыб, 11−15 апреля 1967. М., 1967. -С. 30−31.
  30. , Н.И. О клеточных культурах из эмбрионов и личинок пресноводных рыб/ Н.И. Рудиков// Рыбоводство и болезни рыб. М., 1969. — С. 221−224.
  31. , Н.И. Весенняя вирусная болезнь рыб (ВВБ) / Н. И. Рудиков, j Л. И. Грищенко, К. А. Лобунцов // Бюл. ВИЭВ. 1975. — Т. 20. — С. 16−19
  32. , С.Л. Состояние здоровья популяций лососей на Камчатке и воздействие на них вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани: автореф. дис.. канд. биол. наук./ С. Л. Рудакова. -Петрозаводск, 2004.-24 с.
  33. Тец, В. И. Получение культуры тканей карпа и ее применение при изучении этиологии краснухи рыб/ В. И. Тец, Г. С. Яковлева// Научно-технический бюллютень ГОСНИОРХ. 1962. — Т. 15. — С. 73−77.
  34. , И.С. О выделении вируса от белого толстолобика ссиндромом краснухи / И. С. Щелкунов и др. // Экспресс-информ. ,
  35. ЦНИИТЭИРХ, 1984. Вып. 4. — С. 3−7. !
  36. Щелкунов, И.С. Rhabdovirus anguilla у угря в СССР и его патогенность для рыб/ И. С. Щелкунов и др. //Вопросы вирусологии. 1989. -№ 1.- С. 81−84.
  37. , И.С. Вирусные инфекции у осетровых рыб/ И. С. Щелкунов // Рыбное хозяйство. Аналитическая реферативная информация. Серия: Болезни гидробионтов в аквакультуре. — М.: ВВНИЭРХ, 2000. Вып. 1. -С. 3−16.
  38. , И.С. Эпизоотическая ситуация по вирусным болезням, культивируемых рыб/ И. С. Щелкунов // Ветеринария. 2006. — № 4. — С. 22−25.
  39. , И.С. Герпесвирусная болезнь у осетровых рыб в России/ И. С. Щелкунов и др.// Российский ветеринарный журнал (Сельскохозяйственные животные). 2007. — № 1. — С. 10−12.
  40. Щелкунова, Т.И. Rhabdovirus carpio у растительноядных рыб (выделение, идентификация, патогенность)/ Т. И. Щелкунова, И. С. Щелкунов //Сб. науч. трудов ВНИИПРХ М.: 1987. — Вып. 50. — С. 3−11.
  41. , Т.И. Клеточные линии из тканей сибирского осетра/ Т. И. Щелкунова и др. //Первый конгресс ихтиологов России: тез. докл. -Астрахань, 1997. С. 302−303.
  42. , М.А. Кормление рыб в пресноводной аквакультуре / М. А. Щербина, Е. А. Гамыгин М.: ВНИРО, 2006. — 360 с.
  43. , Н.Г. О культивировании in vitro соединительнотканных элементов у рыб/ Н. Г. Хлопин // Известия Биол. НИИ Биол. Станции Пермском
  44. Гос. Университете. 1925. — Т. IV, вып. 2. — С. 20−23. j
  45. Ahne, W. A rhabdovirus isolated from grass carp (Ctenopharyngodon idella Val.)l W. Ahne // Arch. Virology. 1975. — Vol. 48. — P. 181−185.
  46. Ahne, W. Persistent infection in CHSE-214 cells with IPN virus isolated from pike (Esox lucius)/ W. Ahne //Bull. Off. Int. Epizoot. 1977. — Vol. 87. — P. 415−416.
  47. Ahne, W. Untersuchungen zur Virusempfanglichkeit von Fishzellkulturen/ W. Ahne, A. Weiler // Deutsche Tierarztliche Wochenschrift. 1978. — В. 87. — S. 56−59.
  48. Ahne, W. Fish cell culture: a fibroblast line (PG) from ovaries of juvenile | pike (Esox lucius)/ W. Ahne // In Vitro. 1979. — Vol. 15. — P. 839−840.
  49. Ahne, W. Studies on the use of fish tissue cultures for toxicity tests in order to reduce and replace the fish tests/ W. Ahne// Zbl. Bakt. Hyg., Abt. Orig. B. 1985. -Vol. 180.-P. 480−504.
  50. Ahne, W. A new virus isolated from cultured grass carp Ctenopharyngodon idella / W. Ahne, Y. Jiang, J. Thomson// Dis. Aquat. Org. 1987. — Vol. 3. — P. 181 185.
  51. Andral, R. Establishment and characterization of rainbow trout kidney cellline, RTK Montpellier/ R. Andral et al. // Pathology in marine science- eds.: Perkins j F.O., Cheng C.C. San Diego: Academic Press, 1990. — P. 33−42.
  52. Babini, A. Coltivazione in vitro in monostratodi tessuti di pesci (Monolayer fish cell cultures in vitro)/ A. Babini, P. Ghittino // Atti. Soc. Ital. Sei. Vet. 1961. -Vol. 15.-P. 456−462.
  53. Bejar, J. A continuous cell line from the cultured marine fish gilt-head seabream {Sparus aurata L.)/ J. Bejar, J.J. Borrego, M.C. Alvarez// Aquacultrure. -1997.-Vol. 150.-P. 143−153.
  54. Bejar, J. An ES-like cell line from the marine fish Sparus aurata: characterization and chimaera production/ J. Bejar, Y. Hong, M.C. // Alvarez Transgenic Res. 2002. — Vol. 11, N3. — P. 279−289.
  55. Blohm, U. Rainbow trout {Oncorhyncus mykiss) slgM-leukocytes secrete an interleukin-2 like growth factor after mitogenic stimulation in vitro/ U. Blohm, E. Siegl, B. Kollner// Fish Shellfish Immunol. 2003. — Vol. 14, Iss. 5. — P. 449−465.
  56. Bols, N.C. Development of a cell line from primary cultures of rainbow trout, Onkorhynchus mykiss, gills/ N.C. Bols et al. // J. Fish Dis. 1994. — Vol. 17. -P. 601−611.
  57. Bols, N.C. Development of a rainbow trout pituitary cell line that expresses growth hormone, prolactin and somatolactin/ N.C. Bols et al. // Mol. Mar. Biol. Biotechnol. 1995. -N. 4. — P. 154−163.
  58. Borenfreund, E. Effect of methylazoxymethanol acetate on bluegill sunfish cell cultures in vitro/ E. Borenfreund, H. Babich, N. Matrin-Alguacil // Ecotoxicol. Environ Saf. 1989. — Vol. 17. — P. 297−307.
  59. Bovo, G. Characterization of a rhabdovirus isolated from carpione Salmo trutta carpio in Italy/ G. Bovo et al. // Dis. Aquat. Org. 1995. — Vol. 21, N. 2. — P. 115−122.
  60. Bowden, R.A. Lymphocystis in red drum/ R.A. Bowden et al. // J. Aquat. Anim. Health. 1995, N. 7. — P. 231−235.
  61. Bowser, P.R. Fish cell lines: establishment of a line from ovaries of channel catfish/ P.R. Bowser, J.A. Plumb// In Vitro 1980. — Vol. 16. — P. 365−368.
  62. Bylund, G. Aspects on fish disease problems in Scandinavian countries/ G. Bylund // Parasit. Dis. Natural waters aqualture Nordic Countries. 1987. — P. 102 111.
  63. Buonocore, F. Production and characterization of a continuous embryonic — cell line from sea bass {Dicentrarchus labrax L.)l F. Buonocore et al. // Marine biotechnology. 2006. — Vol. 8. — P. 80−85.
  64. Castric, J. A viral disease of hatchery- reared turbot Scophthalmus maximus L/J. Castric, F. Baudin-Laurencin, M.F. Coustans //2nd Intern. Colloq. Pathol. Marine Aquae. 7−11 Sept. 1986 Porto (Portugal), 1986. — P. 27.
  65. Chang, S.F. Development of a tropical marine fish cell line from Asian sea bass (Lates calcarifer) for virus isolation/ S.F. Chang et al. // Aquaculture. 2001. -Vol. 192.-P. 133−145.
  66. Chen, M. The establishment of a heteroploid line from crucian carp and its biological characteristics/ M. Chen, H. Chen, Y. Yi // J. Fish. China. 1985. — N. 9. -P. 121−130.
  67. Chen, S.L. Derivation of a pluripotent embryonic cell line from red sea bream blastulas/ S.L. Chen et al. // J. Fish Biol. 2002. — Vol. 63, Iss. 3. — P. 795- - 805. '
  68. Chen, S.L. Establishment of a pluripotent embryonic cell line from sea perch (Lateolabrax japonicus) embryos/ S.L. Chen, Z.X. Sha, H.Q. Ye// Aquaculture -2003. Vol. 218.-P. 141−151.
  69. Chen, S.L. Establishment of a continuous embryonic cell line from Japanese flounder Paralichthys olivaceus for virus isolation/ S.L. Chen et al. Il Dis. Aquat. Org. 2004. — Vol. 60. — P. 241−246.
  70. Chen, S.L. Development and characterization of a continuous embryonic cell line from turbot {Scophthalmus maximus)/ S.L. Chen et al. // Aquaculture -2005. Vol. 249, Iss. 1−4. — P. 63−68.
  71. Chen, S.N. A cell line derived from Japanese eel {Anguilla japonica) ovary/
  72. N. Chen, G.H. Kou//Fish Pathol.-1981.-Vol. 16.-P. 129−137.
  73. Chen, S.N. A cell line derived from Japanese eel {Anguilla japonica) kidney/ S.N. Chen, Y. Ueno, G.H. Kou // Proc. Nutl. Sci. Counc. R.O.C. 1982. — N.6. P. 93−100.
  74. Chen, S.N. Establishment of a cell line from kidney of tilapia/ S.N. Chen et al. // Bull. EAFP. 1983. — N. 3. — P. 1−4.
  75. Chen, S.N. A cell line derived from tilapia ovary/ S.N. Chen, Y. Ueno, G.H. Kou//Fish Pathol.-1984.-Vol. 18.-P. 13−18.
  76. Cheng, L. Development of cell cultures derived from lake trout liver and kidney in a hormone-supplemented, serum-reduced medium/ L. Cheng, P.R. Bowser, J.M. Spitsbergen//J. Aquat. Anim. Health. 1993. — N. 5. — P. 119−126.
  77. Cheng, Y.H. Molecular cloning and characterization of a fish PKR-like gene from cultured CAB cells induced by UV-inactivated virus/ Y.H. Cheng et al. // Fish Shellfish Immunol. 2004. — Vol. 17, Iss. 4. — P. 353−366.
  78. Chew-Lim. Grouper cell line for propagating grouper viruses/ Chew-Lim et al. // Sing. J. Pri. Ind. 1994. — Vol. 22. — P. 113−116.
  79. Chi, S.C. The effect of temperature on nervous necrosis virus infection in a grouper cell line and in grouper larvae/ S.C. Chi, S.C. Lin, W.W. Hu // Book Abst. 4 Intern. Symp. Viruses Lower Vertebr., Weymouth U.K., 12−15 May. 1998. — PP-07.
  80. Chi, S.C. Interference of the life cycle of fish nodavirus with fish retrovirus/ S.C. Chi et al. // 4th Intern. Sym. Aquat. Animal Health., 1−5 Sept. -2002, New Orleans- Louisiana USA. 2002. — P. 200.
  81. Chlopin, N.G. Studien uber Gewebeskuturen im artfremden Blutplasma. I. ' Allgemeints. II. Das Bindegewebe der Wirbeltiere/ N.G. Chlopin // Z. Mikroskop.-Anat. Forsch. 1925. — N. 2. — S. 324−365.
  82. Chlopin, N.G. Gewebskultur niederer Vertebraten/ N.G. Chlopin // Arch. Exptl. Zellforsch. Gewebezucht. 1928. -B. 6. — S. 97−102.
  83. Clem, L.W. Studies with cells from marine fish in tissue culture/ L.W. Clem, L. Moewus, M.M. Sigel // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1961. — Vol.108. — P. 762−766.
  84. Clem, L.W. An orphan virus isolated in marine fish cell tissue culture/, L.W. Clem, M.M. Sigel, R.R. Friis // Ann. N.Y. Acad. Sei. 1965. — Vol. 126. — P. ! 343−361.
  85. Collodi, P. Culture of cells from zebrafish (Brachydanio rerio) embryo and adult tissues/ P. Collodi et al. // Cell Biol. Tox. 1992. — Vol. 8. — P. 43−61.
  86. Comuzzi, M. Establishment of a fish cell line from gilt-head sea bream (Sparus aurata)/ M. Comuzzi, G. Bovo // Abstr. Book. VI Int. Conf. EAFP, Brest- France, 1993.-P. 130.
  87. Dannevig, B.H. Isolation of the causal virus of infectious salmon anaemia (ISA) in a long-term cell line from Atlantic salmon head kidney/ B.H. Dannevig, K. Falk, E. Namork//J. Gen. Virol. 1995. — Vol. 76. — P. 1353−1359.
  88. Dawe, CJ. Chondrosarcoma of a corn snake (Elaphe guttata) and nephroblastoma of a raibow trout (Salmo gairdneri) in cell culture/ C.J. Dawe et al.
  89. I Comp. Path. Zoo Anim.- Eds.: R. Montali, G. Migaki. 1979. — C. 151−156. '
  90. Dederer, P.H. The behavior of cells in tissue of Fundulus heteroclitus with special reference to the ectoderm/ P.H. Dederer// Biol. Bull. 1921. Vol. 41. — P. 221−240.
  91. Deng, C.X. Studies of cloning techniques in fish cells/ C.X. Deng, X.Q. Yang, H.Z. Chen // Acta Hydrobiolog. Sinica. 1985. — Vol. 9. — P. 194.
  92. Deng, C.X. Susceptibility to grass carp reovirus (GCRV) of several fish cell lines/ C.X. Deng, X.Q. Yang, H.Z. Chen // Acta Hydrobiolog. Sinica. 1985. -Vol. 9(4).-P. 351−358.
  93. Devoid, M. Use of RT-PCR for diagnosis of infectious salmon anaemia ! virus (ISAV) in carrier sea trout Salmon trutta after experimental infection/ M. Devoid et al. // Dis. Aquat. Organ. 2000. — Vol. 40. — P. 9−18.
  94. Dewitte-Orr, S.J. Expression of antiviral genes in different rainbow trout cell lines. SICB/ S.J. Dewitte-Orr, N.C. Bols // 2002 meeting. Abstr. Details. University Waterloo Waterloo, Ontario- University Waterloo, Waterloo, Ontario, 2002.-P. 40.
  95. Diago, M.L. Establishment and characterization of a pronephric stromal cell line (TPS) from rainbow trout, Oncorhynchus mykiss W/ M.L. Diago et al. // Fish Shellfish Immun. 1995. — Vol. 5. — P. 441−457. -
  96. Driever, W. Characterization of a cell line derived from zebrafish {Brachydanio rerio) embryos/ W. Driever, Rangini Z. // In Vitro Cell Dev. Biol. -1993. Vol. 29A. — P. 749−754.
  97. Ebitani, N. An established marine fish cell line with high plating efficiency/N. Ebitani, Kubo T. // Zool. Sci. 1988 — Vol. 5. — P. 183−186.
  98. Ellender, R.D. An established spleen cell line from Bairdiella chrysural R.D. Ellender, J.H. Wharton, B.L. Middlebooks // In Vitro. 1979. — Vol. 15. — P. 112−113.
  99. Estepa, A. Morphology of antigen dependent haematopoietic cells from trout surving rhabdoviral infections/ A. Estepa et al. // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. -1996. Vol. 16 (6). — P. 203−207.
  100. , H. /H. Etoh et al. // Natl. Cancer Inst. 1983. — Vol. 70. — P. 523 528.
  101. Etoh, H. Establishment and characterization of various cell lines from 1 medaka (Teleostei)/ H. Etoh et al. // Invertebrate and Fish Tissue Culture Eds.: Y. Kuroda, E. Kurstak, K. Maramorosch Tokyo: Japan Sci. Soc. Press, 1988. — P. 166−269.
  102. Faisal, M. A cell line (CLC) of adherent peripheral blood mononuclear leucocytes of normal common carp Cyprinus carpiol M. Faisal, W. Ahne // Dev. Comp. Immunol. 1990. — Vol. 14. — P. 255−260.
  103. Faisal, M. Fish cell lines of leukocytic origin: maintenance and characterization/ M. Faisal, S. Sami, B.J. Ruban // Techniq. Fish Immunol. FITC 2 Eds.: J.S. Stolen, T.C. Fletcher, D.P. Anderson, S.L. Kaattari, A.F. Rowley 1992. — 1 P. 35−59.
  104. Faisal, M. Development of continuous liver cell cultures from the marine teleost, spot (Leiostomus xanthurus, Pisces: Sciaenidae)/ M. Faisal, B.J. Rutan, S. Sami-Demmerle //Aquaculture. 1995. — Vol. 132. — P. 59−72.
  105. Fernandez, R.D. Comparative growth response of fish cell lines in different media, temperatures, and sodium chloride concentrations/ R.D. Fernandez et al. // Fish Pathol. 1993. — Vol. 28. — P. 27−34.
  106. Fernandez, R.D. Establishment and characterization of seven continuous cell lines from freshwater fish/ R.D. Fernandez et al. // J. Aquat. Anim. Health. | 1993.-N. 5.-P. 137−147.
  107. Fernandez, R.D. Characterization of three continuous cell lines from marine fish/ R.D. Fernandez et al. // J. Aquat. Animal Health. 1993. — N. 5. — P. 127−136.
  108. Fernandez-Puentes, C. Characterization of a cell line derived from turbot (iScophthalmus maximus L.) TV-l/C. Fernandez-Puentes, B. Novoa, A. Figueras // Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol. 1993. — N. 13. — P. 94−96.
  109. Fernandez-Puentes, C. Epithelial cell line (TBE-1) derived from turbot (jScophthalmus maximus L.)/ C. Fernandez-Puentes, A. Figueras // Dis. Fish and Shellfish: 7th Intern. Conf. EAFP, Palma de Mallorca 10−15 Sept. 1995. — P. 48.
  110. Fijan, N. Some properties of the Epithelioma papulosum cyprini (EPC) cell line from carp Cyprinus carpio/ N. Fijan et al. // Ann. Virol. (Inst. Pasteur). | 1983. — Vol. 134 E. — P. 207−220. '
  111. Fletcher, T.C. Defense mechanisms in fish/ T. C Fletcher // Biochemical and Biophysical Perspectives in Marine Biology Eds. Malins D.C., Sargent J.R. -London- New York: Academic Press, 1978. Vol. 4. — P. 189−222.
  112. Follett, J.E. Characterization of a cell line derived from Inconnu/J.E. Follett, M.K. Schmitt // J. Aquatic Animal Health. 1990. — N. 2. — P. 61−67.
  113. Fontana, F. Cytogenetic Characterization of cell lines from three sturgeon species/ F. Fontana et al. // Caryologia. 1997. — Vol. 50, N. 1. — P. 91−95.
  114. Frerichs, G.N. Ulcerative disease rhabdovirus: cell-line susceptibility and |iserological comparison with other fish rhabdoviruses/ G.N. Frerichs, B.J. Hill, K. Way//J. Fish Dis. 1989. — Vol. 12, N. 1.-P. 51−56.
  115. Frerichs, G.N. Spontaneously productive C-tipe retrovirus infection of fish cell lines/ G.N. Frerichs et al. // J. Gen. Virol. 1991. — Vol. 72. — P. 25 372 539.
  116. Fryer, J.L. Methods for the in vitro cultivation of cells from the tissues of salmonid fishes/ J.L. Fryer // Doctoral dissertation, Oregon State University. 1964. — 195p.
  117. Fryer, J.L. The in vitro cultivation of tissue and cells of Pacific salmon? and steelhead trout/ J.L. Fryer, A. Yusha, K.S. Pilcher // Ann. N.Y. Acad. Sci. ' 1965. — Vol. 126 (Art. 1).-P. 566−586.I
  118. Fryer, J.L. Three decades of fish cell culture: a current listing of cell lines j derived from fishes/ J.L. Fryer, C.N. Lannan // J. Tissue Cult. Method. 1994. -Vol.16.-P. 87−94.
  119. Ganassin, R.C. Development of a monocyte/macrophage-like cell line, RTS11, from rainbow trout spleen/ R.C. Ganassin, N.C. Bols // Fish Shellfish Immunol. 1998. — Vol. 8. — P. 457−476.
  120. Ghoush, C. Derivation and characterization of a zebrafish liver cell line/ C. Ghoush, Y.L. Zou, P. Collodi // Cell. Biol. Tox. 1994. — Vol. 10, Iss. 3. — P. 167−176.
  121. Gold, J.R. Cytogenetics/ J. R Gold // Fish Physiology. 1979. — Vol. VIII. -P. 353−405.j
  122. Grand, C.G. Tissue culture studies of pigmented melanomas: fish, mouse and human/ C.G. Grand, Cameron G. // N.Y. Acad. Sei. Spec. Publ. 1948. — Vol. 4. -P. 171−176.
  123. Gravell, M. A permanent cell line from the fathead minnow (Pimephales promelas)/ M. Gravell, Malsberger R.C. // Ann. N.Y. Acad. Sei. 1965. — Vol. 126. -P. 555−565.
  124. Grutzner, L. Versuche zur Zuchtung des gewebes von Macropodus opercularis (Linne) und Lebistes reticulates (Peters) in vitro/ L. Grutzner // Zentr. Bakteriol., Parasitenk., Abt. I. Orig. 1956. -B. 165. — S. 8−24.
  125. Grutzner, L. Uberprufung einiger Amwendungsmoglichkeiten der Gewebekultur von Lebistes reticulates (Peters) und Macropodus opercularis (Linne)in der Virusforschung/ L. Grutzner // Zentr. Bakteriol., Parasitenk., Abt. I. Orig. -1956.-B. 165 S. 81−96.
  126. Grutzner, L. In vitro — Zuchtung des Leber und Nierengewebes von Tineaivulgaris Cuv. (Schleic) in trypsinierten Einschichtgewebekulturen/ L. Grutzner // | Zentr. Bacterid., Parasitenk. Abt. I. Orig. 1958. — B. 173. — S. 195−202.
  127. Guo, H.R. Analysis of three marine fish cell lines by rapid assay/ H.R. Guo et al. // In Vitro Cell. Develop. Biol. Animal. 2001. — Vol. 37, N. 7. — P. 430 433.
  128. Haenen, O.L.M. The emergence of koi herpesvirus and its significance to European aquaculture / O.L.M. Haenen et al. // Bull. Eur. Ass. Fish Path. — 2004. -Vol. 24, N. 6. P. 293−307.
  129. Hansen, L.A. Ciprofloxacin treatment eliminates mycoplasma inIcontaminated channel catfish ovary cells/ L.A. Hansen, R.L. Thune // J. Aquat. | Animal Health. 1994. — N.6. — P. 82−84.
  130. Hasegawa, S. Fin cell line from isogeneic ginbuna crusian carp/ S. Hasegawa et al. // In Vitro Cell. Dev. Biol. Animal. 1997. — Vol. 33. — P. 232 233.
  131. Hasegawa, S. A cell line (CFK) from fin of isogeneic ginbuna crusian carp/ S. Hasegawa et al. // Fish Pathology. 1997. — Vol. 32(2). — P. 127−128.
  132. Hasegawa, S. Specific cell-mediated cytotoxicity against an allogeneic target cell line in isogeneic ginbuna crusian carp/ S. Hasegawa et al. // Fish Shellfish Immunol. 1998. — Vol. 8. — P. 303−313. !I
  133. Hedrick, R.P. Two cell lines from white sturgeon/ R.P. Hedrick et al. // Trans. Am. Fish Soc. 1991.-Vol. 120. — P. 528−534.
  134. Hedrick, R.P. A herpesvirus associated with mass mortality of juvenile and adult koi, a strain of a common carp/ R.P. Hedrick et al. // J. Aquat. Anim. Health. 2000. — Vol. 12. — P. 44−57.
  135. Hegde, A. Characterization, pathogenicity and neutralization studies of a j nervous necrosis virus isolated from grouper, Epinephelus tauvina, in Singapore/ A. Hegde et al. // Aquaculture. 2002. — Vol. 213, Iss. 1−4. — P. 55−72.
  136. Hightower, L.H. Recent applications of fish cell culture to biomedical research/ L.H. Hightower, J.L. Renfro // J. Exp. Zool. 1988. — Vol. 248. — P. 290 302. |
  137. Hino, K. TNF induces the growth of thymocytes in rainbow trout/ K. Hino ' et al. // Develop. Comp. Immunol. 2006. -Vol. 30, Iss. 7. — P. 639−647.
  138. Hong, Y. Pluripotency and differentiation of embryonic stem cell lines from the medakafish (Oryzias latipes)/ Y. Hong, C. Winkler, M. Schartl // Mech. Dev. 1996. — Vol. 60. — P. 33−44.
  139. Hong, Y. Establishment of a normal medakafish spermatogonial cell line capable of sperm production in vitro! Y. Hong et al. // Proceeding of the National Academy of Science. 2004. — Vol. 101, N. 21. — P. 8011−8016.
  140. Horiuchi, M. A new cell line from carp sac-fry/ M. Horiuchi, M. Nakata, K. Kohga // Bull. Jpn. Soc. Sci. Fish. 1979. — Vol. 45(2). — P. 147−151. !
  141. Hsu, Y.L. Characteristics of a new reo-like virus isolated from landlocked salmon {Oncorhynchus masou Brevoort)/ Y.L. Hsu, B.S. Chen, J.L. Wu // Fish Pathol. 1989. — Vol. 24, N. 1. — P. 37−45.
  142. Isa, K. Transfection and stable expression of a dominant selective marker Ecogpt in a cultured cell line of the fish, Carassius auratusl K. Isa, A. Shima // J. Cell Science. 1987. — Vol. 88. — P. 219−224.
  143. Isshiki, T. Incidence of yellowtail ascites virus (YAV) in wild yelloetail fingerling/ T. Isshiki, K. Kawai, R. Kusuda // Nippon Suisan Gakkaishi. 1989. -Vol. 55(4). — P. 633−637.
  144. Iwamoto, R. Isolation and characterization of the Japanese flounder (Paralichthys olivaceus) lymphocystis disease virus/ R. Iwamoto et al. // J. Aqut. Anim. Health. 2002. — Vol. 14. — P. 114−123.
  145. Iwamoto, T. Cloning of the fish cell line SSN-1 for piscine nodaviruses/ T. Iwamoto et al. // Dis. Aquat. Org. 2000. — Vol. 43. — P. 81−89.
  146. Jensen, M.H. Preparation of fish tissue cultures for virus research/ M.H. Jensen//Bull. Off. Intern. Epizoot. 1963.-Vol. 59.-P. 131−134.
  147. Jensen, N.J. A fish cell line from gonads of cod (Gadus morhua)/ N.J. Jensen, K. Christensen //Nord. Vet. Med. 1981. — Vol. 33. — P. 492−497.
  148. Jiang, Y. Some properties of the etiological agent of the. hemorrhagic disease of grass carp and black carp/ Y. Jiang, Ahne W. // Viruses Lower Verteb.
  149. Eds.: W. Ahne & Kurstak. Springer Verlag Berlin Heidelberg, 1989. — P. 227−240.i '
  150. Jiang, Y. Isolation of a aquareovirus from common carp (Cyprinus carpio) in the P.R. China/ Y. Jiang et al. // Second Intern. Symp. Virus. Low. Verteb., Oregon State Univers. Corvallis, Oregon USA, 1991. P. 287−292.
  151. Joseph, M.A. Evalution of tissues of Indian major carps for development of cell lines by explant method/ M.A.Joseph et al.//indian carp cell lines.htm. -1998.
  152. Kang, M.S. Establishment and characterization of two new cell lines derived from flounder, Paralichthys olivaceus (Temminck & Schlegel)/ M.S. Kang et al. // J. Fish Dis. 2003. — Vol. 26, Iss. 11−12. — P. 657−665.
  153. Kasai, H. Characterization of the cell culture replicated Japanese flounder j Lymphocystis disease virus/ H. Kasai et al. // Program and Abst. 5th Intern. Symp. Virus. Lower Vertebr., Seattle, Washington, 2002, P.46.
  154. Kasai, H. Establishment of two Japanese flounder embryo cell lines/ H. Kasai, M. Yoshimizu // Bull. Fish. Sei. Hokkaido Univ. 2001. — Vol. 52. — P. 67- j 70.
  155. Kelly, R.K. Some properties of an established fish cell line from Xiphophorus helleri (red swordtail)/ R.K. Kelly, Loh P.C. // In Vitro. 1973. — N. 9. — P.73−80.
  156. Kelly, R.K. Fish cell culture: characteristics of a continuous fibroblastic cell line from walleye (Stizostedion vitreum vitreum)/ R.K. Kelly et al. // Can. J. Fish. Aquat. Sei.-1980.-Vol. 37. P. 1070−1075.
  157. Kelly, R.K. Characterization of herpesvirusvitreum isolated from hyperplastic epidermal tissue of walleye, Stizostedion vitreum vitreum (Mitchill)/ R.K. Kelly et al. // J. Fish Dis. 1983. — Vol. 6. — P. 249−260.
  158. Kirsipuu, V.L. Largemouth bass virus in New York state: an Update/V.L. Kirsipuu et al. // Programm and Abst. 30th Eastern Fish Health Workshop, Clarion Inn and Confer. Center Shepherdstown. West Virginia, 2005. P. 50.
  159. Kolbl, O. Die Schwimmblasenentzundung des Karpfens: Nachweis eines j intrazytoplasmatisch wachsenden Einzellers mittels Gewebekultur/ O. Kolbl// 1 Zsterreichs Fischerei. 1989. — B. 42. — S. 54−60.
  160. Komura, J. Fish cell culture: esteblishment of two fibroblast-like cell lines (OL-17 and OL-32) from fins of the medaka, Oryzias shimal J. Komura, H. Mitani, A. Shima // In Vitro Cell Dev. Biol. 1988. — Vol. 24. — P. 294−298.
  161. Koski, P. A rhabdovirus isolated from brown trout {Salmo trutta m. lacustris L.) with lesions in parenchymatous organs/ P. Koski et al. // Bull. EAFP. -1992. Vol. 12, N. 5. — P. 177−180.
  162. Kou, C.C. Characterization of three cell lines derived from colored carp,. Cyprinus carpio/ C.C. Kou, Chen S.N. //J. Tiss. Cult. Method. 1991. — P. 140−145. i
  163. Kunst, L. Culture of kidney tissue of carp/ L. Kunst // Vet. Arhiv. 1961. -Vol. 31.-P. 241−245.
  164. Kunst, L. Kultura bubreznih stanica sarana (Culture of carp kidney cells) / L. Kunst// Vet. Arhiv. 1962. — Vol. 32. — P.121−126.
  165. Kunst, L. Preparation of primary monolayer cell cultures of carp ovary/ L. Kunst, N. Fijan// Vet. Archiv. 1966. — Vol. 36. — P. 235−238.
  166. Kusuda, R. Establishment and characterization of a cell line derived from the kidney of red sea bream, Pagrus major! R. Kusuda, A. Kawarasaki // Suisonzoshoku. 1993. — Vol. 41. — P. 455−460.
  167. Lai, Y.S. Two iridovirus-susceptible cells established from kidney and liver of grouper, Epinephelus awoara (Temminck& Schlegel), and partial characterization of grouper iridovirus/ Y.S. Lai et al. // J. Fish Dis. 2000. — Vol. 23. — P. 379−388.
  168. Lai, Y.S. Propagation of yellow grouper nervous virus (YGNNV) in a new nodavirus-susceptible cell line yellow grouper, Epinephelus awoara (Temminck& Schlegel), brain tissue/ Y.S. Lai et al. // J. Fish Dis. 2001. — Vol. 24. — P. 299−309.
  169. Lai, Y.S. Establishment of cell lines from a tropical grouper, Epinephelus awoara (Temminck& Schlegel), and their susceptibility to grouper irido- and nodaviruses/ Y.S. Lai et al. // J. Fish Dis. 2003. — Vol. 26. — P. 31−42.
  170. Lanfredi, M. Cytogenetic characterization of cell lines from six sturgeon species/ M. Lanfredi et al. // 3rd Intern. Symposium on Sturgeon-Piacenza, Italy, 1997,-El-P.
  171. Lannan, C.N. Fish cell lines: establishment and characterization of nine cell lines from salmonids/ C.N. Lannan, J.R. Winton, J.L. Fryer // In Vitro. 1984. -Vol. 20.-P. 671−676.
  172. Law, W.M. Fish cell culture: properties of a cell line from the sheepshead, Archosargus probatocephalus! W.M. Law et al. // J. Fish. Res. Board Can. 1978. -Vol. 35.-P. 470−473.
  173. Lee, M.H. Some properties of an established marine fish cell line, Caranx mate (Omaka)/ M.H. Lee, P.C. Loh // In Vitro. 1973. — Vol. 8. — P. 406.
  174. Lee, L.EJ. Development and characterization of a rainbow trout liver cell line expressing cytochrome P450-dependent monooxygenase activity/ L.E.J. Lee et al. // Cell. Biol. Tox. 1993. — Vol. 9. — P. 279−294.
  175. Lewis, D.H. Micricultures of Sarotherodon mossambicus (Peters) cells: their use in detecting fish viruses/ D.H. Lewis, J.E. Marks // J. Fish Dis. 1985. -Vol. 8. — P. 477−478.
  176. Li, H. Establishment of cell line PSF from the fibroblast cell of grass carp snout tissue and studies on its biological characteristics/ H. Li et al. // J. Chinese Acad. Fisheries Sci. 1988. -N. 1. — P. 1−8.
  177. Li, H. In vitro cytotoxicity of the organophosphorus insecticide methylparathion to FG-9307, the gill cell line of flounder {Paralichthys olivaceus)/ H. Li, S. Zhang // Cell Biol. Tox. 2002. — Vol. 18 (4). — P. 235−241.
  178. Li, M.F. A quantitative study of the effects of naturally occurring supplements on the growth of rainbow trout (Salmo gairderi) gonadal cells/ M.F. Li, Stewart J.E. // Can. J. Microbiol. 1965. — Vol. 11. — P. 9−14.
  179. Li, M.F. New cell line from the marine lumpfish, Cyclopterus lumpus/ M.F. Li, S. Clyburne//J. Fish Res. Board Can. 1977. — Vol. 34. — P. 134−139.
  180. Li, M.F. Fish cell culture: two newly developed cell lines from atlantic sturgeon, {Acipenser oxyrhynchus) and guppy (Poecilia reticulata)/ M.F. Li et al. // Canad. J. Zool. 1985. — Vol. 63. — P. 2867−2874.
  181. Li, M.F. A new fish cell line derived from alewife (Alosa pseudoharengus) kidney tissue (abstract)/ M.F. Li, A.R. Moore // In Vitro. 1986. -Vol. 22.-P. 52A.
  182. Lie, M.F. Fish cell culture: two newly developed cell lines from atlantic sturgeon, (Acipenser oxyrhynchus) and guppy (Poecilia reticulata)/ M.F. Lie et al. // Canad. J. Zool. 1985. — Vol. 63. — P. 2867−2874.
  183. Lidgerding, B.C. Fish cell lines: establishment of the first suspension culture/ B.C. Lidgerding, C.L. Schultz // In Vitro. 1979. — Vol. 15. — P. 216.
  184. Lidgerding, B.C. Fish cell lines: Characterization by isozyme analysis/ ! B.C. Lidgerding, S.R. Phelps, W.B. Schill // In Vitro, Tissue Culture Association, Inc. 1984. Vol. 20, N. 3 (Part. 1), P. — 167−171
  185. Lin, G.L. Phorbol ester/calcium ionophore activate fish leukocytes and induce long term cultures/ G.L. Lin et al. // Dev. Comp. Immunol. 1992. — Vol. 16.-P. 153−163.
  186. Lin, J.H.Y. The development and characterization of novel cell lines from grouper (Epinephelus coioides) and cobia (Rachycentron canadum) l J.H.Y. Lin et al. // Program, and Abstr. 3rd Intern. Symp. On Fish Vaccinology, Bergen, Norway, (2003. P. 80. i
  187. Liu, H. Isolation of spring viraemia of carp virus (SVCV) from cultured koi (Cyprinus carpio koi) and common carp (C. carpio carpio) in P.R. China/ H. Liu et al. // Bull. Eur. Ass. Fish Path. 2004. — Vol. 24, N. 4. — P. 194−202.
  188. Ljungberg, O. Epizootiological and experimental studies of skin tumors in Northern pike (Esox lucius L.) in the Baltic Sea/ O. Ljungberg // Prog. Exp. Tumor Res. 1976. — Vol. 20. — P. 156−165.
  189. Lu, Y. Fish cell lines: establishment and characterization of three new cell lines from grass carp (Ctenopharyngodon idella)/ Y. Lu et al. // In Vitro Cell. Dev. Biol. 1990. — Vol. 26. — P. 275−279. |
  190. Matsumoto, J. Permanent cell lines from erythrophoromas in goldfish (Carassius auratus)/ J. Matsumoto et al. // J. Natl. Cancer. Inst. 1980. — Vol. 64. -P. 879−890.
  191. Matsuyama, H. Compartibilities of antibody and complement among different fish species/ H. Matsuyama, M. Nakao, T. Yano // Nippon Suisan Gakkaishi. 1988. — Vol. 54, N. 5 — P.1993−1996.
  192. McAllister, P.E. Viral diseases of fish: first report of carp pox in golden ide (Leuciscus idus) in North America/ P.E. McAllister et al. // J. Wildlife Dis. i1985. Vol. 21(3). — P. 199−204. |
  193. McCain, B.B. The Oregon sockeye salmon virus: A. biophysical and. biochemical characteristics- B. antigenic relationship to two other salmonids viruses/ 1 B.B. McCain// Ph.D. thesis. Oregon State Univ., Corvallis. 1970. — 145 pp.
  194. McKenzie, L.S. Goldfish tissues/ L.S. McKenzie, N.G. Stephenson // Tissue Cult. Meth. Appl. 1973. — P. 143−146.
  195. Meguro, Y. A cell line derived from the fin of Japanase flounder, Paralichthys olivaceusfY. Meguro et al.// Fish Pathol. 1991. — Vol. 26. — P. 69−75.
  196. Middlebrooks, B.L. Gulf teleost cell culture: II Characteristics of cells from the speckled trout, Cynoscion nebulosus and the white trout, Cynoscion arenarus/ B.L. Middlebrooks et al. // In Vitro. 1974. — Vol. 10. — P. 379.
  197. Middlebrooks, B.L. Fish cell culture: a newcell line from Cynoscium nebulosus/ B.L. Middlebrooks, R.D. Ellender, J.H. Wharton// In Vitro 1979. — Vol. 15.-P. 109−111.
  198. Middlebrooks, B.L. Fish cell lines: two new cell lines derived from expiants of trunk musculature of Cynoscion arenariusl B.L. Middlebrooks et al. //, In Vitro-1981.-Vol. 17. P. 427−430. I
  199. Miller, N.W. Development and characterization of channel catfish long term B cell lines/ N.W. Miller et al. // J. Immunol. 1994. — Vol. 152. — P. 21 802 189.
  200. Miller, N.W. Development of leukocyte cell lines from the channel catfish (Ictalurus punctstus)/ N.W. Miller, V.G. Chinchar, L.W. Clem // J. Tissue Cult. Method.-1994.-Vol. 16.-P. 117−123.
  201. Moritomo, T. Establishment of a cell line with reticulo-endothelial characteristics from a rainbow trout spleen explants/ T. Moritomo, D.P. Anderson, W.B. Schill // Fish Pathol. 1990. — Vol. 25. — P. 165−170.
  202. Munday, B.L. Mass mortality associated with a virus-induced vacuolating encephalopathy and retinopathy of larval and juvenile barramundy, LatescalcariferBlochl B.L. Munday et al.// Aquculture. 1992. — Vol. 103. — P. 197−211. jI
  203. Nakajima, K. Biological and physico-chemical properties of the iridovirus isolated from cultured red sea bream, Pagrus major/ K. Nakajima, M. Sorimachi // Fish Pathology. 1994. — Vol. 29 (1). — P. 29−33.
  204. Nakata, M. Monolayer culture of ovary cells from eel, anguilla japonica: some characteristics and subcultivation techniques of the cells/ M. Nakata^ M. Horiuchi, K. Kohga // Bull. Jap. Soc. Scien. Fish. 1980. — Vol. 46(5)/- P: 599−606.
  205. Nelson, R.T. Isolation of a toga-like virus from farmed Atlantic salmo Salmo salar with pacreas disease/ R.T. Nelson et al. // Dis. Aquat. Org. 1995. -Vol. 22. — P. 25−32. j
  206. Neukirch, M. Isolation of a virus from koi with altered gills/ M. Neukirch, ! K. Bottcher, S. Bunnajirakul. // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1999. — Vol. 19, N. 5. -P. 221−224.
  207. Neukirch, M. Isolation and preliminary characterization of several viruses from koi (Cyprinus carpio) suffering gill necrosis and mortality/ M. Neukirch, U. Kunz//Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. -2001, — Vol. 21, N. 4.-P. 125−135.
  208. Nias, A.H. Clone size analysis: a parameter in the study of cell population kinetics/ A.H. Nias // Cell Tissue Kinet. 1968. — Vol. 1. — P. 153−165.
  209. Nias, A.H. Clone-size analysis in the study of cell growth following single i or during continuous irradiation/ A.H. Nias et al. // Intern. J. Radiat. Biol. 1965. -Vol. 9.-P. 275−290.
  210. Nicholson, B.L. An established cell line from the Atlantic salmon {Salmo salar)/ B.L. Nicholson, C. Byrne // J. Fish Res. Board Can. 1973. — Vol. 30. — P. 913−916.
  211. Nicholson, B.L. Growth of fish cell lines on micro carriers / B.L. Nicholson 11 Appl. Environ. Microbiol. 1980. — Vol. 39, N. 2. — P. 394−397.
  212. Nicholson, B.L. Techniques in fish cell culture/ B.L. Nicholson //Techniques in the life sciences, CI. Setting up and maintenance of tissue cell cultures, C 105. 1985.-P. 1−16.
  213. Nicholson, B.L. Three new continuous cell lines from marine fishes of Asia/ B.L. Nicholson, D.J. Danner, J.L. Wu // In Vitro Cell. Develop. Biology. j 1987. — Vol. 23, N. 3, Part I. — P. 199−204. '
  214. Nims, L. Studies of replication of four selected viruses in two cell lines derived from salmonids fish/ L. Nims, J.L. Fryer, K.S. Pilcher // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1970. — Vol. 135. — P. 6−12.
  215. Noga, E.J. Studies on channel catfish virus passaged in cell cultures of the walking catfish/ E.J. Noga// M.S. thesis. Florida Atlantic University, Boca Raton, 1977. 53 pp.
  216. Noga, E.J. Establishment of cell lines from the walking catfish (Clarias batrachus L.) and their infection with channel catfish virus/ E.J. Noga, Hartmann J.X., //In Vitro.-1977.-Vol. 13.-P. 160. '
  217. OIE Manual of Diagnostic Tests for Aquatic Animals. 4th ed. Paris -Office International des Epizooties, 2003.
  218. Ojima, Y. Fish chromosome methodology from embryos/ Y. Ojima, T. Ueda // Kwansei Gakuin Univ. Annu. Stud. 1976. — Vol. 25. — P. 121−124.
  219. Osowski, H. Uber active Zellbewequnq im explantat von Wirbeitierembryonen/ H. Osowski //Arch. Entuicklunqsmech. Orqan. 1914. — B. 38.-S. 547−583.
  220. Parameswaran, V. Splenic cell line from sea bass, Lates calcarifer. establishment and characterization/ V. Parameswaran et al. // Aquaculture. 2006. -Vol. 261.-P. 43−53.
  221. Park, E.H. Fish cell line (ULF-23HU) derived from the fin of the central mundminnow {Umbra limi): Suitable characteristics for clastogenicity assay/ E.H. Park et al. 11 In Vitro Cell. Dev. Biol. 1989. — Vol. 25. — P. 987−994.
  222. Parkinson, C. A cell line the tilapia Oreochromis spilurus Gunther/ C. Parkinson, C. Agius // J. Fish Biol. 1987. — Supplement A. — P. 239−240.
  223. Pfitzner, I. Cell and tissue culture of freshwater fish in virus research/ I. Pfitzner// Ann. N.Y. Acad. Sei. 1965. — Vol. 126. — P. 547−554.
  224. Pfitzner, I. In vitro-Zuchtung des Gonaden- und Schwimmblasengewebes von Tinea vulgaris Cuv. (Schleie) in trypsinierten Einschichtgewenbekulturen/ I. Pfitzner, L. Grutzner // Zentr. Bakteriol., Parasitenk., Abt. I. Orig. 1964. — B. 191. -S. 474−485.
  225. Plumb, J.A. Temperature and seeding density: effects on growth rates of RTG-2 cells/ J.A. Plumb, K. Wolf// In Vitro. 1969. -N. 4. — P. 125−126.
  226. Puck, T.T. Clonal growth of mammalian cells in vitro. Growth characteristics of clones from single HeLa cells with and without a feeder layer/ T.T. Puck, P.I. Marcus, S.J. Cieciura // J. Exp. Med. 1956. — Vol. 103. — P. 273−284.
  227. Rachlin, J.W. Monolayer cultures of gonadal tissue of the zebra danio Brachydanio rerio /J.W. Rachlin, A. Perlmutter, R.J. Seeley// Progress. Fish Cult. -1967. Vol. 29. — P. 232−234.
  228. Reed, L.J. A simple method of estimating fifty percent endpoints/ L.J. Reed, H.A. Muench // Amercan J. Hygiene. 1938. — Vol. 24. — P.493−497.
  229. Ribeiro, L. Fish cell culture: initiation of a line of pituitary cells from carp {Cyprinus carpio) to study the release of gonadotropin in vitro/ L. Ribeiro, W. Ahne //In Vitro.- 1982.-Vol. 18.-P. 419−420.
  230. Ristow, S.S. Susceptibility of four new salmonids cell lines to infectious hematopoietic necrosis virus/ S.S. Ristow, J. de Avila// J. Aquat. Anim. Health. -1994.-Vol. 6.-P. 260−265.
  231. Ristow, S.S. Development of long term cell lines from homozygous clones of rainbow trout/ S.S. Ristow et al. // Fish Health Newletter. 1998. — Vol. 26, N. 2. — P. 4−5.
  232. Rudakova, S.L. Occurrence and genetic typing of infectious hematopoietic necrosis virus in Kamchatka, Russia/ S.L. Rudakova, G. Kurath, E.V. Bochkova // Dis. Aquat. Org. 2007. — Vol. 75. — P. 1−11.
  233. Saito, H. Environmental Toxicology and Chemistry/ H. Saito et al. -1991.-Vol. 10.-P. 235−241.
  234. Sano, T. Herpesvirus cyprini: biological and oncogenic properties/ T. Sano, H. Fukuda, M. Furukawa // Fish Pathology 1985. — Vol. 20(2/3). — P. 381- j 388. '
  235. Sano, T. Principal microbial diseases of marine in Japan/ T. Sano, H. Fukuda// Aquaculture. 1987. — Vol. 67. — P. 59−69.
  236. Sano, T. A novel carp Coronavirus: characterization and pathogenicity/ T. Sano, T. Yamaki, H. Fukuda // Internat. Fish Health Conf. Conf. handbook, Vancover B.C. Canada, 1988. — P. 160.
  237. Sathe, P. S. Establishment and characterization of a new fish cell line, MG-3 from gills of Mrigal, Cirrhinus mrigala/ P. S. Sathe et al. // Indian J. Exp. Biol.- 1995.-Vol. 33.-P. 589−594. j
  238. Schmale, M.C. A virus-like agent associated with neurofiromatosis in damselfish/ M.C. Schmale, P.D. Gibbs, C.E. Campbell // Dis. Aquat. Org. 2002. -Vol. 49. — P. 107−115.
  239. Shchelkunova, T.I. Enhanced neutralization of spring viraemia of carp virus by fish antibodies in presence of complement/ T.I. Shchelkunova, I.S. Shchelkunov // Diseases Fish and Shellfish: abstract Vth Intern. Conf. EAFP. -Budapest, 1991. P. 95.
  240. Shchelkunov, I.S. Two continuous cell lines from carp, Cyprinus carpio L/ I.S. Shchelkunov et al.// Dis. Fish Shellfish: 7th Intern. Conf. EAFP, Palma de j Mallorca, 1995. P. 49.
  241. Shea, T.B. A serum-free medium that supports the growth of piscine cell cultures/ T.B. Shea, E.S. Berry // In Vitro. 1983. — Vol. 11. — P. 818−824.
  242. Shima, A. Continued in vitro growth of fibroblast-like cells (RBCF-1) derived from the caudal fin of the fish, Carassius auratus/ A. Shima et al. // Expl. Geront. 1980. — Vol. 15. — P. 305−314.
  243. Shima, A. Establishment of a cell line (PF line) from a gynogenetic teleost, Poecilia Formosa (Girard) and characterization of its repair ability of UVinduced DNA damage/ A. Shima, R.B. Setlow// Zool. Sci. 1985. — Vol. 2. — P. 477−483.
  244. Solis, J. Viral susceptibility range of the fathead minnow (Pimephales promelas) poikilothermic cell line/ J. Solis, E.C. Mora // Appl. Microbiol. 1970. -N. 19.-P. 1−4.
  245. Sonstegard, R.A. Establishment of a cell line from lymphosarcoma of theimuskellunge (Esox masquinongy)/ R.A. Sonstegard, K.S. Sonstegard // In Vitro.: 1973.-8.-P. 410.
  246. Sorimachi, M. Susceptibility of fish cell lines to eel viruses/ M. Sorimachi// Fish Pathol. 1982. — Vol. 9, N. 17(2). — P. 119−123.
  247. Stephenson, E.M. Temperature and other environmental effects on ammocoete organs in culture/ E.M. Stephenson, I.C. Potter // J. Embryol. Exptl. Morphol. 1967.-Vol. 17.-P. 441−452.
  248. Stephes, E.B. Establishment of a cell line from the Atlantic menhaden/ E.B. Stephes, F.M. Hetrick // In Vitro. 1979. — Vol. 15. — P. 216.
  249. Stone, D.M. Nucleotide sequence analysis of the glycoprotein gene ofiputative spring viraemia of carp virus and pike fry rhabdovirus isolates reveals four genogroups/ D.M. Stone et al. // Dis. Aquat. Org. 2003. — Vol. 53. — P: 203−210.
  250. Stuge, T.B. Development and analysis of various clonal alloantigen-dependent cytotoxic cell lines from channel catfish/ T.B. Stuge et al. // J. Immunol. 2000. — Vol. 164. — P. 2971−2977.
  251. Sun, L. ES-like cultures derived from early zebrafish embryos/ L. Sun et al. // Mol. Mar. Biol. Biotechnol. 1995. -N.4. — P. 193−199.
  252. Takano, R. Isolation of viral haemorrhagic septicaemia virus (VHSV) from wild Japanese flouhder, Paralichthys olivaceusl R. Takano et al. // Bull. Eur. i Ass.FishPath.-2000.-Vol. 20, N. 5.-P. 186−192. 1
  253. Tafalla, C. Molecular characterization of sea bream {Sparus aurata) transforming growth factor (3 1/ C. Tafalla et al. // Fish Shellfish Immunol. 2003. -Vol. 14, Iss. 5.-P. 405−421.
  254. Tamai, T. Purification and characterization of interferon-like antiviral protein derived from flatfish {Paralichthys olivaceus) lymphocytes immortalized by oncogenes/ T. Tamai et al. //Cytotechnol. 1993. — Vol. 11.-P. 121−131.
  255. Tamai, T. Immortalization of cells with oncogene transfection/ T. Tamai et al. // Techniques in Fish Immunology Eds: J.S. Stolen, T.C. Fletcher, A.F. Rowley, D.P. Anderson, S.L. Kaattari, J.T. Zelikoff, S.A. Smith 1994. — Vol. 3. -P.53−60.
  256. Tomasec, I. Weiterer Beitrag zur Aetiologie der infektiosen Bauchwassersucht des Karpfens/ I. Tomasec et al. // Jugoslav. Akad. Znanosti Umfetnosti, Zagreb, Mat.- Prirodoslovni Ruzred. 1964. — Vol. 16. — P. 35−44.
  257. Tong, S.L. The establishment and partial characterization of a continuous fish cell line FG-9307 from the gill of flounder, Paralichthys olivaceus/ S.L. Tong, H. Li, H.Z. Miao // Aquaculture. 1977. — Vol. 156. — P. 327−333.
  258. Tornton, J. Mycoplasma contamination of fish viruses vaccines/ J. Tornton et al. //Bull. EAFP. 1999. — Vol. 19(5). — P. 207−212.
  259. Townsley, P.M. Marine fish tissue culture/ P.M. Townsley, H.G. Wight, M.A. Scott// J. Fish. Res. Board Can. 1966. — Vol. 20. — P. 679−684.
  260. Tung, L.C. Three cell lines derived from spleen and kidney of black porgy {Acanthopagrus schlegeli)/ L.C. Tung, S.N. Chen, G.H. Kou // Fish. Pathol. 1991. -Vol. 26. — P. 109−117.
  261. Vallejo, A.N. Spontaneous development of functionally active long term, monocyte-like cell lines from the channel catfish/ A.N.Vallejo et al. // In Vitro Cell, j Dev. Biol. 1991.-Vol. 27A.-P. 279−285.
  262. Wakamatsu, Y. Fish hereditary melanoma cell lines of different degrees of cell differentiation/ Y. Wakamatsu et al. // Devel. Growth Differ. 1984. — Vol. 26. -P. 503−513.
  263. Wakamatsu, Y. Establishment of a pluripotent cell line derived from a medaka (Oryzias latipes) blastula embryo/ Y. Wakamatsu, K. Ozato, T. Sasado II (Mol. Mar. Biol. Biotechnol. 1994.-Vol. 3.-P. 185−191.
  264. Walker, D.P. Studies on the culture, assay of infectivity and some in vitro i properties of Lymphocystis virus/ D.P. Walker, B.J. Hill // J. Gen. Virol. 1980. -Vol. 51.-P. 385−395.
  265. Wang, H.C. Establishment and characterization of a cell line derived from milkfish (Chanos chanos) heart/ H.C. Wang// Master Thesis, Dep. Zool., Nation. Taiwan Univer., 1989. 56p.
  266. Wang, R. Establishment and characterization of macrophage cell line from the goldfish/ R. Wang et al. // Fish & Shellfish Immunol. 1995. — Vol. 5. — P. 329−436.
  267. Watanabe, T. Continuous cell line derived from the kidney of yamame,, i
  268. Oncorhynchus masoul T. Watanabe et al. II Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 1978. — Vol. I 44.-P. 415−418.
  269. Watanabe, T. Establishment and properties of the continuous cell line derived from the embryonated eggs of chum salmon, Oncorhynchus keta! T. Watanabe et al. II Bull. Jap. Soc. Sci. fish. 1980. — Vol. 46. — P. 1203−1209.
  270. Watanabe, Y. Monolayer cell cultures from marine fishes/ T. Watanabe, H. Hanada, M. Ushiyama // Fish Pathol. 1981. — Vol. 15. — P. 201−205.
  271. Watanabe, T. Continuous cell line derived from the kidney of Japanese eel, Anguilla japonical T. Watanabe// J. Tokyo Vet. Animal Sci. 1984. — Vol. 32. —, P. 65−69.
  272. Watanabe, T. Establishment and properties of a cell line derived from salmonid fish liver/ T. Watanabe, T. Moritomo // Invertebrate and fish tissue culture Eds.: Y. Kuroda, E. Kurstak, K. Maramorosch. Tokyo: Japan Sei. Soc. Press, 1988.- P. 199−202. j
  273. Watson, L.R. Characteristics and pathogenicity of a novel herpesvirus ' isolated from adult and sub adult white sturgeon Acipenser transmontanus/ L.R. Watson et al. // Dis. Aquat. Org. 1995. — Vol. 22. — P. 199−210.
  274. Wei, Y. Establishment of grass carp (Ctenophoryngodon idellus) caudalfin tissue diploid cell line: GCCF-2 and analysis of some of its biological |icharacteristics/ Y. Wei, R. Lu, G. Bai // Acta Hydrobiol. Sinica. 1986. — Vol. 10. — ! P. 293−294.
  275. Wen, C.M. Study of the established cell line derived from jarbua {Therapon jarbua) fin/ C.M. Wen// Master Thesis, Dep. Zool., National Taiwan Univer., 1989.-56 p.
  276. Wergeland, H.I. A salmonids cell line (TO) for production of infectious salmon anemia virus (ISAV) / H. I. Wergeland, R.A. Jakobsen // Dis. Aquat. Organ. -2001 Vol. 44.-P. 183−190.
  277. Wharton, J.H. Fish cell culture: characteristics of a cell line from the silver perch, Bairdiella chrysural J.H. Wharton et al. // In Vitro. 1977. — 13. — P. 389−397.
  278. Winton, J.R. Isolation of a Reovirus from Coho salmon {Oncorhynchus kisutch) in Oregon, USA/ J.R. Winton et al. // Viruses Lower Vertebrates Eds.: W. Ahne & Kurstak SpringerVerlag Berlin Heidelberg, 1989. — P. 257−269.
  279. Wizigmann, G. Serologische Untersuchungen uder das Vorkommenvon Antikorpern gegenuber Rhabdovirus Carpio bei Karpfen in bayerischen Teichwirtschaften/ G. Wizigmann, C. Pfeil-Putzien, C. Baath, H. Dangschat, G.
  280. Koppel // Fisch und Umwelt. Beitrage zur Fischpathologie und toxikologie.- Heft 8. Gustav Fischer Verlag. Stuttgart. N.Y., 1980. — S. 31−36.
  281. Wolf, K. Physiological saline for fresh-water teleost/ K. Wolf // Progressive Fish Culturist. 1963. — Vol. 25. -P. 135−140.
  282. Wolf, K. Fish cell culture/ K. Wolf, W. Ahne //Advances in cell culture. -1982.-Vol. 2.-P. 305−328.i
  283. Wolf, K. Cultivation of adult teleost tissues in vitro! K. Wolf, Dunbar C.E. !1
  284. Proc. Soc. Exptl. Biol. Med. 1957. — Vol. 95. — P. 455−458.
  285. Wolf, K. Poikilotherm vertebrate cell lines and viruses: a current listing for fishes/ K. Wolf, J. A. Mann//In Vitro.-1980.-Vol. 16 (2).-P. 168−179.
  286. Wolf, K. Preparation of monolayer cell cultures from tissues of some lower vertebrates/K. Wolf et al.//Science. 1960.-Vol. 132. -P. 1890−1891.
  287. Wolf, K. Infectious pancreatic necrosis in trout. A tissue culture study/ K. Wolf, M.C. Quimby, S.F. Snieszko // Prog. Fish. Cult. 1960. — Vol. 22. — P. 64−68.
  288. Wolf, K. Established eurythermic line of fish cells in vitro! K. Wolf, M.C. Quimby // Science. 1962. — Vol. 135. — P. 1065−1066.
  289. Wolf, K. Lymphocystis virus: isolation and propagation in centrarchid fish cell lines/ K. Wolf, M.C. Quimby // Science. 1966. — Vol. 151. — P. 1004−1005.
  290. Wolf, K. Low-temperature incubation using a water supply/ K. Wolf, M.C. Quimby//Appl. Microbiol. 1967.-Vol. 15.-P. 1501.153 'I
  291. Wolf, K. Fish cell and tissue culture/ K. Wolf, M.C. Quimby// Fish ! Physiology Eds.: W.S. Hoar and D.J. Randall. N.Y. Acad. Press, 1969. — Vol. 3. -P. 253−305.
  292. Wolf, K. Primary monolayer of fish cells initiated from minced tissues/ K. Wolf, M.C. Quimby // TCA Manual. 1976. — Vol. 2, N. 4. — P. 445−448.
  293. Wolf, K. Primary monolayer of fish cells initiated from trypsinized tissues/ K. Wolf, M.C. Quimby // TCA Manual. 1976. — Vol. 2, N. 4. — P. 453−456.
  294. Wolf, K. Procedures for subculturing fish cells and propagating fish cell lines/ K. Wolf, M.C. Quimby // TCA Manual. 1976. — Vol. 2, N. 4. — P. 471−474.
  295. Wolf, K. Fish Viruses and Fish Viral Diseases/K. Wolf. Ithaca and 1 London: Cornell University Press, 1988. — 476 p.
  296. Yamamoto, K. Chromosomal feature of a cell line from the triploid hybrid between rhodeine cyprinid fishes/ K. Yamamoto, A. Takai, Y. Ojima // CIS (Chromosome Information Service). 1988. — Vol. 45. — P. 27−28.
  297. Ye, X. Large-scale culture of grass carp cell and virus by using bioreartor/ X. Ye et al. // J. Fish. China. 1992. — Vol. 16. — P. 1−6.
  298. Ye, H.Q. Development and characterization of cell lines from heart, liver, spleen and head kidney of sea perch Lateolabrax japonicusl H.Q. Ye et al. // J. Fish Biology. 2006. — Vol. 69. — P. 115−126. !
  299. Yoshimizu, M. Viral diseases of freshwater fishes in Hokkaido/ • M. Yoshimizu// Sci. Rep. Hokkaido Fish Hatchery. 1994. — Vol. 48. — P. 15−24.
  300. Young, J.Z. The preparation of isotonic solutions for use in experiments with fish/ J.Z. Young // Publ. Staz. Zool. Napol. 1933. — N. 12. — P. 425−431.
  301. Zhang, N.C. The establishment of strain ZC-7901 and substrain ZC-7901Sfrom the snout tissue cells of grass carp/ N.C. Zhang, G.Z. Yang // J. Fish China. -1981. -N. 5. P. 111−119.
  302. Zhao, Z. Establishment and characterization of two cell lines from bluefin trevally Caranx melampygus/ Z. Zhao, Lu Yu. // DAO. 2006. — Vol. 68, N. 2. — P. 91−100.
  303. Zorriehzahra, M. J. Mortality of wild golden mullet {Liza auratus) in — iranian waters of the Caspian sea, associated with viral nervous necrosis-like agent/ M.J. Zorriehzahra et al.// Iranian J. Fish. Scie. 2005. — Vol. 4, N. 2. — P. 43−58.
  304. Zuo, W. A cell line derived from the kidney of grass carp {Ctenophoryngodon idellus) / W. Zuo, X. Yang // Freshw. Fish 1984. — N. 2. — P. 38−39.i
Заполнить форму текущей работой

На отлично!