Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Разработка методов молекулярной гибридизации и полимеразной цепной реакции для идентификации вируса бешенства

Диссертация: Разработка методов молекулярной гибридизации и полимеразной цепной реакции для идентификации вируса бешенства
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

На защиту выносятся следующие положения: результаты разработки «Набора препаратов.» на основе метода молекулярной гибридизации для выявления РНК вируса бешенстварезультаты разработки «Набора препаратов .» на основе полимеразной цепной реакции для выявления РНК вируса бешенства с использованием праймеров, комплементарных консервативной и вариабельной областям генома вируса бешенстварезультаты… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • 1. ВВЕДЕНИЕ
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Структура генома вируса бешенства
    • 2. 2. Антигенные свойства вируса бешенства
    • 2. 3. География распространения бешенства
    • 2. 4. Эпизоотическая обстановка по бешенству
    • 2. 5. Диагностика бешенства
      • 2. 5. 1. Диагностические методы, применяемые для выявления вируса бешенства
      • 2. 5. 2. Гибрццизация
      • 2. 5. 3. Принцип метода ОТ-ПЦР
      • 2. 5. 4. Практическое применение метода ПЦР в диагностике бешенства
      • 2. 5. 5. Альтернативные методы ПЦР
    • 2. 6. Филогенетический анализ генома лиссавирусов
      • 2. 6. 1. Применение филогенетического анализа в молекулярной эпизоотологии
      • 2. 6. 2. Полиморфизм гена нуклеопротеина вируса бешенства
      • 2. 6. 3. Филогенетический аналго изолятов первого генотипа вируса бешенства
      • 2. 6. 4. Полиморфизм РиМгенов вируса бешенства
      • 2. 6. 5. Полиморфизм в-Ь генов вируса бешенства
      • 2. 6. 6. Сравнительный анализ Ь протеина
  • Мопопе|*алга1е

Разработка методов молекулярной гибридизации и полимеразной цепной реакции для идентификации вируса бешенства (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Контроль за распространением бешенства продолжает оставаться актуальной проблемой во всем мире. Хотя диагностика бешенства за последние несколько десятилетий значительно усовершенствовалась, она все еще нуждается в разработке новых более чувствительных лабораторных методов. Классическая гистопатология оказалась недостаточно надежной. Внутримозговое заражение мышей все еще остается наиболее широко применяемым методом в диагностике бешенства. Однако главным недостатком биопробы остается длительный инкубационный период уличного бешенства у мышей (7−18 суток).

М.А. Селимовым, H.A. Хисматулиной, Р. Х. Юсуповым было показано, что в культуре клеток НГУК-1 (клетки невриномы Гассерова узла крысы) уличный рабический вирус может быть выделен в более ранние сроки (24−72 ч.), с последующим анализом по МФА. Данный метод выделения уличного вируса бешенства в культуре клеток НГУК-1 был рекомендован для внедрения в практику ветеринарных лабораторий.

Одним из эффективных методов быстрой диагностики бешенства является иммуноферменгаый метод определения вирусных антигенов с использованием поликлональных и моноклональных антител. При использовании сенсибилизированных специфическим иммуноглобулином пластин результат может быть получен спустя 3−4 часа после внесения исследуемого антигена. Метод ИФА позволяет выявлять рабический антиген с титром инфекционного вируса не менее 3,3 lg МЛД50/мл и процент выявления вируса бешенства составляет 94,2%. Следует отметить, что основным недостатком серологических методов и биопробы является то, что они не позволяют работать с деградированным патологическим материалом.

В последние годы, в связи с широким распространением арктического бешенства за пределы полярного круга, возрастает актуальность этой проблемы. А. Д. Ботвинкиным с сотрудниками с помощью набора моноклональных антител (36 МонАТ института Вистар, США, Wiktor et al., 1980; 36 МонАТ центральной ветеринарной лаборатории, Великобритания, King et al., 1990; МонАТ Р-41 исследовательского института вирусных болезней животных, Германия, Schneider et al., 1985), исследована антигенная вариабельность изолятов вируса бешенства, выделенных от животных и человека с 1969 по 1991 гг. из различных ландшафтно-географических зон России. Изоляты вируса бешенства первого серотипа были классифицированы на 9 антигенных вариантов, большинство которых связано с определенной территорией. Изоляты вируса бешенства, циркулирующею на северо-востоке нашей страны, имели общие эпитопы с изолятами с Аляски и северо-западных территорий Канады. Изоляты, имеющие маркер арктического варианта вируса бешенства, впервые были обнаружены в умеренных широтах России в виде отдельных очагов, наиболее крупный из которых находится в Прибалтийском регионе.

В Азиатской части Российской Федерации арктический вариант вируса бешенства обнаружены в горных районах на удалении до 1700 км от Северного полярного круга (Забайкалье, Тува, Якутия), в северо-западных районах России (Калининградская, Псковская, Ленинградская области), в Прибалтике и Белорусии — до 1000 км (А. Д. Ботвинкин, 1992 г.). На американском континенте арктический вирус бешенства также обнаружен не только на Аляске, Северо-Западных территориях Канады, но и в умеренных широтах — в штатах Онтарио, Квебек, Нью-Йорк, то есть до 50° северной широты (Smith, 1989).

Хотя вирус арктического бешенства не патогенен для человека, однако, дифференциация штаммов и изолятов классического и арктического бешенства, а также поиск генетических маркеров является важной задачей.

Анализ данных литературы показывает, что, несмотря на все преимущества традиционных методов даашостики бешенства, во многих лабораториях за рубежом и в нашей стране все шире и шире для лабораторной диагностики используются методы молекулярной гибридизации и полимеразной цепной реакции. Преимуществом этих методов является их высокая чувствительность, специфичность, быстрота и безопасность.

Методы ПЦР и молекулярной гибридизации имеют преимущество перед серологическими методами в тех случаях, когда выявление специфического антигена не дает четких результатов или невозможно выделить вирус в культуре клеток и лабораторных животных при исследовании деградировавших патматериалов.

В настоящее время ПЦР технологию применяют в комбинации с секвенированием, что делает ее незаменимым и очень чувствительным методом идентификации вируса и определения его родства в отношении других штаммов. Для сравнительной характеристики геномов штаммов вирусов также проводят рестрикционный анализ ПЦР продуктов.

Исходя из вышесказанного нами были поставлены следующие цели и задачи исследования. Целью данной рабош является разработка методов идентификации вируса бешенства на основе молекулярной гибридизации и полимеразной цепной реакции. В соответствии с поставленной целью были определены следующие задачи:

— провести клонирование фрагментов кДНК вируса бешенства в составе плазмидных векторов и отобрать клоны для конструирования ДНК-зондовоптимизировать условия проведения дот-гибридизации, определить специфичность ДНК-зондов и чувствительность метода молекулярной гибридизации для выявления РНК вируса бешенства в культуре клеток н в патологическом материале;

— подобрать специфичные праймеры для амплификации различных участков генома вируса бешенства, отработать методы подготовки проб и оптимизировать условия проведения ПЦР;

— определить специфичность и чувствительность метода полимеразной цепной реакции для идентификации вируса бешенства;

— провести дифференциацию вакцинных штаммов и полевых изолятов вируса бешенства на основе рестрикционного анализа ПЦР продуктов.

Научная новизна работы состоит в том, что:

— клонированы нуклеотидные последовательности генома вируса бешенства штамма ТС-80, разработаны условия постановки дот-гибридизации для идентификации вируса бешенства.

— определены праймеры и разработаны условия постановки ПЦР, позволяющие идентифицировать вирус бешенства в пробах патматериала.

— проведена дифференциация вакцинных штаммов вируса бешенства на основе рестрикционного анализа ПЦР продуктов. Установлена принадлежность штамма ТС-80 к генетической группе ERA.

— показана возможность дифференциации полевых изолятов арктического бешенства методом ПЦР.

Практическая значимость. Практическая ценность работы состоит в том, что на основании экспериментальных данных разработаны: «Набор препаратов для выявления РНК вируса бешенства методом молекулярной гибридизации», «Набор препаратов для выявления РНК вируса бешенства методом ПЦР». Проведены комиссионные испытания «Наборов препаратов.» для выявления РНК вируса бешенства, разработаны методические указания по применению методов молекулярной гибридизации и ПЦР, которые утверждены на заседании ученого совета и подписаны директором ВНИИВВиМ (протокол № 6 от 09.07.98). «Наборы препаратов.» могут быть рекомендованы для включения в схему лабораторных исследований с целью диагностики болезни. Предложен способ дифференциации вакцинных штаммов вируса бешенства с помощью рестрикционного анализа ПЦР — продуктов, который может быть использован для паспортизации производственных штаммов и контроля за изменениями вакцинных штаммов в процессе их хранении и культивирования.

На защиту выносятся следующие положения: результаты разработки «Набора препаратов.» на основе метода молекулярной гибридизации для выявления РНК вируса бешенстварезультаты разработки «Набора препаратов .» на основе полимеразной цепной реакции для выявления РНК вируса бешенства с использованием праймеров, комплементарных консервативной и вариабельной областям генома вируса бешенстварезультаты дифференциации вакцинных штаммов вируса бешенства с помощью рестрикционного анализа ПЦР продуктоврезультаты исследований арктических изолятов вируса бешенства, выделенных из патологических материалов, и дифференциация их от вакцинных штаммов вируса бешенства методом ПЦР.

Исследования по диссертационной работе выполнены в 1996 -1998 г. г. во ВНИИВВиМ в соответствии с утвержденными плановыми заданиями (тема 01.03.02.М),.

Апробация результатов исследований. Материалы диссертационной работы доложены и обсуждены на: заседании ученого совета ВНИИВВиМ, 1998 г.- научных конференциях: ВНИИВиМ 1998 г, институте полиомиелита и вирусных энцефалитов им. М. П. Чумакова РАМН, г. Москва 1998 г.

Публикации по работе. По материалам диссертации опубликовано 9 печатных работ в материалах научных конференций.

В выполнении отдельных разделов работы оказали помощь научный сотрудник лаб. Биофизики, кандидат биологических наук Пантюшенко М. С., младший научный сотрудник лаб. Диагностики Недосеков В. В., зав. отделом Республиканской ветеринарной лаборатории Саха (Якутия) Романова У. Н., которым автор выражает искреннюю признательность.

6. ВЫВОДЫ.

1. Методом молекулярного клонирования получены две рекомбинантные плазмиды, содержащие полный ген нуклеопротеина размером 1500 п. о. и фрагменты G-L генов, фланкирующие псевдоген размером 3200 п. о. штамма ТС-80 вируса бешенства,.

2. Использование в качестве ДНК-зондов рекомбинантных плазмид, содержащих ген нуклеопротеина и фрагменты G-L генов при температуре гибридизации 65° С позволяет обнаружить РНК вируса бешенства в пробах головного мозга и культур клеток при инфекционной активности вируса 100 и 1000 МДД>о/мл, при применении радиоактивной и нерадиоакшвной меток, соответственно.

3. Праймеры, комплементарные гену нуклеопротеина при оптимальных условиях проведения ПЦР (концентрация MgCl2 2,5 мМ, температура отжига 50° С) выявляют РНК вакцинных штаммов и полевых изолятов вируса бешенства в пробах головного мозга и кулыур клеток при инфекционной активности вируса 1 -10 МЛДзо/мл.

4. Рестрикция вариабельного участка генома вируса бешенства (псевдогена) специально подобранными ферментами (Hind III, Bam Н I, Rsa I, Taq I) позволяет провести дифференциацию вакцинных штаммов вируса бешенства, Установлено, что вакцинные штаммы ТС-80, Внуково-32 и ERA принадлежат к одной генетической группе.

5. При рестрикционном анализе ПЦР продуктов, комплементарных гену нуклеопротеина, установлены различия исследованных вакцинных штаммов и полевых изолятов из Якутии. Этот метод может быть использован для дифференциации изолятов арктического бешенства.

7. ПРАКТИЧЕСКИЕ. ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

На основании проведенных исследований разработаны и предложены:

— «Набор препаратов для выявления РНК вируса бешенства методом молекулярной гибридизации», «Набор препаратов для выявления РНК вируса бешенства методом ПЦР», которые могут быть рекомендованы для включения в схему лабораторных исследований с целью диагностики болезни.

— Способ дифференциации вакцинных штаммов вируса бешенства с помощью рестрикционного анализа ПЦР продуктов псевдогена, который может быть использован для паспортизации производственных штаммов и контроля за изменениями вакцинных штаммов в процессе их хранения и культивирования.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.Д., Чернов С. М., Грибанова Л. Я. Обнаружение вируса бешенства в головном мозге и слюнных железах животных с помощью иммуноферментного метода. // Вопросы вирусологии. 1987, — N -6 — с, 747−750.
  2. А.Д., Наволокин О. Ц. Обнаружение антител к вирусу бешенства с помощью ELISA в пробах крови, собранных на бумажные диски. // Лаб. дело. 1988.-N 3. — с. 73−74.
  3. А.Д. Особенности эпидемиологии гидрофобии и экология вируса бешенства в условиях преобладания очагов природаого типа: Дис.. д-ра мед. наук в форме научного доклада: 14.00.30. Москва, 1992.
  4. Т.В. Дисс. кацд. биол. наук. Покров, 1992. — Хранится во ВНИИВВиМ.
  5. Г. И., Мишанькин М. Б., Козловский В. Н. и др. Цитокининдуцирующая активность «мышиного» токсина Yersinia pestis. // ЖМЭйИ, 1998, № 1, с. 61−64.
  6. В.А., Седов В. А., Ивановский Э. В. Бешенство животных М.: Колос, 1974,-с. 112.
  7. В. А., Седов В. А. Современные особенности эпизоотологии бешенства. // Ветеринария.-1976, — N 8.- с. 57−61.
  8. И.Ф., Цыбанова Л. Я., Молчанова Т. В., Вергун Л. Ю. Иммуноферменгаый анализ при диагностике инфекционных болезней с/х животных. // В сб.: Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии.-Покров, 1983.- с. 66−76.
  9. Л.Я., С. В. Грибенча, Г, Б, Мальков, И. Ф. Баринский. Изучение биологических свойств вариантов уличного вируса бешенства.// Вопросы вирусологии. 1988, № 2/201−206.
  10. С. В., Л.Я. Грибанова, Г. Б. Мальков, И. Ф. Баринский. Абортивное и возвратное бешенство у собак, зараженных в мозг уличным вирусом бешенства. // Вопросы вирусологии, 1989, № 2, С. 217−220.
  11. М.И. Характеристика эпизоотического процесса бешенства животных. // Вестник Российской Академии Сельскохозяйственных Наук. 1998, № 4, с. 62−64.
  12. М. М., Шагу Koprowski. Методы лабораторных исследований по бешенству.// ВОЗ, Женева, 3-е издание, 1975, изд. «Медицина», рус., с. SO-¡-С.
  13. Комитет экспертов ВОЗ по бешенству. Восьмой доклад.// ВОЗ, Женева, 1994, Мин. здравоохр. РФ «Медицина» р о. 112.
  14. Т., Э. Фрич, Дж. Сэмбрук. Молекулярное клонирование.// под. Редак. А.Баева. Москва «Мир», 1984, ^ • 3 7 9
  15. Р. Лиссавирусы. // Вопросы вирусологии. 1996, № 1, с. 2−6.
  16. Г. С., Ивановский Э. В. // Всесоюзная конференция по эпизоотологаиб 3-я: Тезисы докладов. Новосибирск, 1991, с. 387−388.
  17. , A.A. Горкунов. Эпизоотическая ситуация по бешенству в Московской области и пути ее улучшения. // Вопросы вирусологии, 1998, № 1, с. 47−48.
  18. М. А. Бешенство М.: Медицина — 1978, с. 203.
  19. М.А. К эволюции природных очагов рабической инфекции. // Актуал. пробл. вирусол. Тез. докл. Конф., Москва, 21−23 мая, 1985. М., 1985, с.164−165.
  20. М.А. Моноклональные антитела и антигенный анализ лиссавирусов. // Серия эпидемиология, вирусология и инфекционные заболевания. Выпуск 4. Современные достижения в обл. рабиологаи Москва, 1987.- с.32−36.
  21. Т.В., Вишняков И. Ф., Никишин И. В. Совершенствование МФА для обнаружения антигена вируса бешенства. // Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии. Материалы научн. конф. / ВНИИВВиМ.-Покров, 1992а, — с. 260.
  22. Т.В., Никишин И. В., Вишняков И. Ф. Выявление антител к вирусу бешенства методом ингибирования ТФ ИФА. // В сб.: Вопросы вет. вирус., микробиол. и эпизоотологии. Покров, 1992Ь, с. 261.
  23. В.Н., Белоусова Р. В., Фомина Н. В. Диагностика вирусных болезней животных. // Справочник, Москва ВО «Агропромиздат», 1991, стр. 254−270.
  24. В.Н., Самуйленко А. Я., Соловьев Б. В., Фомина Н. В. Вирусные болезни животных.// Москва, ВНИТИБП, 1998, с. 294−319
  25. М.Г., Ковалев Н. А., Кузнецов П. П. Бешенство животных. // Минск «Ураджай» 1990, с. 65−80.
  26. А.Г., Селимов М. А., Кармышева В. Я., Хисматуллина Н. А. Экспресс-диагностика бешенства в линии клеток невриомы-Гассенова узла крысы (НГУК-1).// Акту ал. пробл. вирусол. Тез. докл. Конф., Москва, 21−23 мая, 1985. М., 1985р.172−173.
  27. Н.А., Суханов Ю. С., Асади Мобархан А.Х., Артемьев М. И. Полимеразная цепная реакция (ПЦР).// Москва, 1996, с. 36
  28. И. Г. Тенденции развития методов диагностики в вирусологии. // Соврем, методы иммунохим. и молекулярнобиол. диагност, в мед., АМН СССР. НИИ вакцин сывороток., М. 1992, с. 12−20.
  29. Е.М., Волкова P.A. Отработка оптимальной схемы учета результатов при применении имммуноферментной тест-системы для определения антигенной активности культуральной антирабической вакцины.// Вопросы вирусологии, 1996, N-1, с.21
  30. В.Ф., Егоров И. Я., Тугутов Л. Д., Строева Н. Р., Карпов B.C. Основные результаты изучения бешенства в Якутии.// Актуал. пробл. вирусол. Тез. докл. Конф., Москва, 21−23 мая, 1985. М., 1985^.168−169.
  31. Ю. Н., Дзюблик H.A., Антонова JI. А., Моргунов О. И. Итоги борьбы с гидрофобией на Украине (к 100 летию пастеровских прививок).// Актуал. пробл. вирусол. Тез. докл. Конф., Москва, 21−23 мая, 1985. М., 1985, с152−153.
  32. Феннер Ф, Мак-Ослен Б., Сэмбрук Дж., Уайт Д. Биология вирусов животных. // «МИР» Москва, 1997, стр 171−176.
  33. Agchomo Н.О., Tomori О., Oduye О.О., Rupprecht С.Е. Detection of Mokola virus neutralizating antibodies in Nigerian dogs. // Res. Vet. Sci, 1990, 48, 264
  34. Alexander R.A. Rabies in South Africa: a raview of the present position. // J. S. Air. Vet. Assoc. 1972, 23,135−139
  35. Ambinder F., Wingard J.R., Burns W.H. et al., Detection of Epstein-Barr virus DNA in mouthwashes by hybridization.// Journal of Clinical Microbiology, 1985, 21, 353−6.
  36. Amengyal В., Whitly J.E., King A., Serra Cobo J. and Bourhy H. Evolution ofEuropean bat lyssavirusses. //of General Virology (1997), 78, 2315−2328.
  37. Anilionis A., Wunner W.H., Curtis P.J. Structure of the glycoprotein gene in rabies virus.// Nature, 1981, 294, 275−278
  38. Anon. (1995). Summary of rabies in Europe. Rabies Bulletin Europe 19 (4), 3−4.
  39. Y. Т., К. Yamada, Y. Kameoka, T. Horimoto, K. Yamamoto, S. Yabe, M. Nakayama, and M. Tashiro. Nucleoprotein gene analysis of fixed and street rabies virus variants using RT-PCR. // Arch Virol (1997) 142:1787−1796.
  40. Aray S.C. Failures of post-exposure rabies and other immunotherapies in developing countries. // Vaccine, 1989, 7, 372.
  41. Astoul-E Lafage-M Lafon-M Rabies Superantigen as a V-Beta T-Dependent Adjuvant.// JOURNAL OF EXPERIMENTAL MEDICINE 1996, Vol 183, Iss 4, pp 1623−1631
  42. Atanasiu P. The immunoperoxidase reaction for demonstration of rabies virus. In Laboratory Techiques in Rabies. 1973. (Kaplan M.M., Koprowski H. eds) pp. 358−60. Geneva: World Health Organization.
  43. Atanasiu P. Animal inoculation and Negri body. In The History of Rabies. 1975. (Baer, G.M., ed.) pp. 374−98. London, New York, San Francisko: Academic Press.
  44. Belak-S Ballagipordany-A. Application of the Polymerase Chain-Reaction (PCR) in Veterinaiy Diagnostic Virology.// VETERINARY RESEARCH COMMUNICATIONS 1993, Vol 17, Iss 1, pp 55−72
  45. Benmansour, M. Brahimi, C. Tuffereau, P. Coulon, F. Lafay and A. Flamand. Rapid Sequence Evolution of Street Rabies Glycoprotein is Related to the Highly Heterogeneus of the Viral Population. // Virology, 1992, 187, N 1, 33−45.
  46. Berninger M., Hammer M., Hoyer В., Cerin J. An assay for the detection of the DNA genome of hepatitis В virus in serum. // Journal of Medical Virology, 1982, 9, 57−68.
  47. Bilsel P.A., Rowe J.A., Fitch W.M., Nichols S.T. Phosphoprotein and nucleocapsid protein evolution of visicular stomatitis virus New Jersey. // J. Virol. 1990, 64, 2498−2504.
  48. Bourhy H.F., Lafon M., Berthonneau M.C., Renner Y., Rollin P.E., Sureau P. Rabies in vaccinated dogs in Gabon. // Veterinary Record, 1988, 122, 361−362.
  49. Bourhy H., Kissi B., Lafon M., Sacramento D. and Tordo N. Antigenic and molecular characterization of bat rabies virus in Europe. // Journal of Clinical Microbiology, 1992, 30, 2419−2426.
  50. Bourhy-H Kissi-B Tordo-N Taxonomy and Evolutionary Studies on Lyssaviruses with Special Reference to Africa.// ONDERSTEPOORT JOURNAL OF VETERINARY RESEARCH 1993, Vol 60, Iss 4, pp 277−282
  51. Borhy H., Kissi B., Tordo N. Molecular diversity of the Lyssavirus Genus.// Virology 1993, 194, 70−81-
  52. Bourhy-H Kissi-B Tordo-N Badrane-H Sacramento-D Molecular Epidemiologic Tools and Phylogenetic Analysis of Bacteria and Viruses with Special Emphasis on Lyssaviruses.// PREVENTIVE VETERINARY MEDICINE 1995, Vol 25, Iss 2, pp 161−181
  53. , D. M. & Perrault, J. (1996). Stabilization of vesicular stomatitii virus L polymerase protein by P protein binding: a small deletion in th (C-terminal domain of L abrogates binding. Virology 219, 376−386.
  54. Chariton KM, Webster WA, Casey GA, Rupprecht CE (1988) Skunk rabies. Rev Meet Dis 10: S626-S628
  55. Chenik M., Chebli K., Gaudin Y., Blondel D. In vivo interaction of rabies virus phosphoprotein (P) and nucleoprotein (N): existence of two N-binding sites on P protein.// J.Gen. Virol. 1994, 75, 2889−2896
  56. Chenik M, Chebli K, Blondel D (1995) Translation initiation at alternate in-frame AUG codons in the rabies virus phosphoprotein mRNA is mediated by a ribosomal leaky scanning mechanism. J Virol 69:707−712
  57. Chou S." Merigan T.C. Rapid detection and quantitation of human cytomegalovirus in urine through DNA hybridization. New England Journal of Medicine, 1983, 308, 921−5.
  58. Clark H. F., Wiktor T.J. Rabies virus. In «Strains of Human Viruses» (Majer M., Plotkin S.A. Eds) 1972, pp 177−182, Karger, Basel.
  59. Coll-JM The Glycoprotein-G of Rhabdoviruses. // Archives of virology 1995, Vol 140, Iss 5, pp 827−851
  60. Conzelmann K.K., Cox J. H., Schneider L.G., and Thiel H.J. Molecular Cloning and Complete Nucleotide Sequence of the Attenuated Rabies Virus SAD B19. // Virology (1990)175,485−499.
  61. Cox J.H., Dietzcxhold B., Schneider L.G. Rabies virus glycoprotein n. Biological and serological characterization. // Infect. Immun. 1977, 16, 754−759
  62. Cox J.H., Weiland F., Dietzschold B., and Schneider L.G. Reevalution of the structural proteins Mj and M2 of rabies virus. (1981) // In «The Replication of Negative Strand Viruses"(D.H.L. Bishop and R. W. Compans, Eds.) Amer. Elsevier, New York
  63. Crysler J.G., Lee P., Reinders M. s Prevec L. The sequence of the nucleocapsid protein (N) gene of Piiy virus: possibble domains in the N protein of vesiculoviruses. // Journal of General Virology, 1990, 71, 2191−2194
  64. Cumming D.H.M. A case history of the kspread of rabies in an African country. // S. Air. J. Sci 1982, 78, 443−447
  65. Davis-C Neill-S Raj-P Microwave Fixation of Rabies Specimens for Fluorescent-Antibody Testing.// JOURNAL OF VIROLOGICAL METHODS 1997, Vol 68, Iss 2, pp 177−182
  66. Dietzschold B., Wunner W.H., Vanichird A. Chemical and immunological analysis of the rabies soluble glycoprotein. // Virology 1983a, 124, 330−337.
  67. Dietzschold B., Wunner W.H., Wiktor T.J. et al. Characterization of antigen determinant of the glycoprotein that correlates with pathogenicity of rabies virus. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1983b, 80, 70−74
  68. Dietzschold B., Wiktor T.J., Trojanowski J.Q., et al. Differrences in cell-to-cell spread of pathogenic and apatogenic rabies virus in vivo and in vitro. // J. Virol. 1985, 56, 12−18
  69. Dietzschold B., Lafon M., Wang H-H., Otvos L JR., Celis E., Wunner WH., Koprowski H. Localozation and immunological characterization of antigenic domain of the rabies virus internal N and NS proteins. // Virus Res. 1987a, 8, 103−125-
  70. Dietzschold B., Wang H-H., RupprechtC.E., Celis E., Tollis M., Heber-Katz E., Koprowski H. Induction of kprotective immunity atgainst rabies by immunization with rabies virus ribonucleoprotein.// Proc Natl Acad Sci USA 1987b, 84, 9165−9169
  71. Domingo D., Escarmis C., Sevilla N., Moya A., Elena S.F., Quer J., Novella I.S., Holland J.J. Basic concepts in RNA virus evolution.// Faseb J., 1996a, 10, 859−864.
  72. Duck P., Alvarado-Urbina G., Burdick B., Collier B. Probe amplifier system based on chimeric cyclic oligonucleotides. // Biotechniques, 1990, v. 9, N 2, p. 142−147.
  73. Durst M., Gissman L., Ikenberg H., Zur Hausen H. A papillomavirus DNA from cervical carcinoma and its prevalence in cancer biopsy samples from differents geographic regions. // Prociidings of the National Academy of Sciences, US A, 1983, 80, 3812−15.
  74. Ermine A., Noel Toedo and Henri Tsiang. Rapid diagnosis of rabies infection by means of a dot hybridization assay. // Molecular and Cellular Probes (1988), 2, 75−82.
  75. Ertl H C J., Dietzschold B., Otvos L. T Helper cell epitope of rabies virus nucleoprotein defined by tri- and tetrapeptides.//Eur. J. Immunol. 1991, 21, 1−10
  76. Esterhuysen-JJ Prehaud-C Thomson-GR A Liquid-Phase Blocking ELISA for the Detection of Antibodies to Rabies Virus.// JOURNAL OF VIROLOGICAL METHODS 1995, Vol 51, Iss 1, pp 31−42
  77. Fang Fu Z., Dietzschold B., Schumacher C. L, Wunner W. H., Ertl H.C.J., Koprowski H. Rabies virus nucleoprotein expressed in and purified from insect cells is efficacious as a vaccine.// Proc. Nad. Acad. Sci. USA, 1991, 88, 2001−2005-
  78. Felsenstein J. Fhylogenies from molecular sequences: inference and reliability. // Ann. Rev. Genet. 1988, 22, 521−565.
  79. Felsenstein J. PHYLIP: phylogeny inference package, version 3.52c.// University of Washington. Washington 1993.
  80. Fekadu M., SummerJ. W, Shaddock J.H., Sanderlin D.W., Baer G.M. Sickness and recovery of dogs challenged with a street rabies virus after vaccination with a vaccinia virus recombinant expressing rabies virus N protein. // J. Virol. 1992, 66, 2601−2604
  81. Flamand A., Delagneau J.F. Transcriptional mapping of rabies virus in vivo. // J. Virol. 1978, v. 28, 518−523
  82. Flamand A., Wiktor T.J., Koprowski H. Use of hybiidoma monoclonal antibodies in the detection of antigenic differences between rabies and rabies-related virus proteins. H The glycoprotein. // Journal of General Virology, 1980, 48,105−9.
  83. Flores J., Boeggeman E., Purcell R.H. et al., A dot hybridization assay for detection rotavirus. // Lancet, 1983, 24, 555−9.
  84. Fu Z.F., Zheng Y., Wunner W.H., Koprowski H., Dietzshold B. Both the N- and the C-terminal domains of the nominal phosphoprotein of rabies virus are invilved in binding to the nucleoprotein.// Virology, 1994, 200, 590−597
  85. Gamoh-K Senda-M Itoh-O Muramatsu-M Hirayama-N Koike-R Endoh-YS Minamoto-N Use of ELISA for in-Vitro Potency Test of Rabies Vaccines for Animal Use.// BIOLOGICALS 1996, Vol 24, Iss 2, pp 95−101
  86. Gaudin Y.H., Tuffereau C., Benmansour A., Flamand A. Fatty acylation of rabies virus proteins. //Virology 1991a, 184, 441−444
  87. Gaudin Y.H., Rugrok R.H., Tuffereau C., et al. Rabies virus glycoprotein is a trimer. // Virology 1992, 187, 627−632
  88. Gaudin-Y Raux-H Flamand-A Ruigrok-RWH. Identification of Amino-Acids Controlling the Low-pH-Induced Conformational Change of Rabies Virus Glycoprotein.// JOURNAL OF VIROLOGY 1996, Vol 70, Iss 11, pp 7371−7378
  89. Gojobori T., Moriama E.N., Kimura M. Molecular clock of viral evolution, and the neutral theoiy. //Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1990, 87,10 015−10 018.
  90. Gorman O. T., Bean W.J., Kawaoka Y., and Webster R.G. Evolution of the nncleoprotion gene of enfluenza A virus. // J. Virol. 1990, 64, 1487−1497.
  91. Gorman O. T., Bean W.J., Kawaoka Y., Donatelli L., Guo Y., and Webster R.G. Evolution of influenza A virus nucleoprotein genes: implications for the origin of H 1N1 human and classical swine viruses. /7 J.Virol. 1991, 65, 3704−3714.
  92. Grandien-M Viral Diagnosis by Antigen-Detection Techniques.// CLINICAL AND DIAGNOSTIC VIROLOGY 1996, Vol 5, Iss 2−3, pp 81−90
  93. Gribencha, S.V., Vanag K.A., Obukhova V.R., Barinsky I.F., Shubladze A.K. Experimental studies of chronic rabies.// Ann Virol (Inst Pasteur) 1980, 131 E: 301−312.
  94. Gribencha, S.V., Vanag K.A., Barinsky I.F. Separation of two street rabies virus strain population into two biological variants.// Acta Virol (1981) 25:168.
  95. Giibencha S.V., Gribanova L. Ya., Malkov G.B., and Barinsky I.F. Population structure of some street rabies virus strains.// .Arch Virol (1989) 104: 347−350.
  96. Hass L. Molecular Epidemiology of Animal Diseases. // J. Vet. Med., 1997, Vol. 44, 257 272.
  97. Hamir-AN Moser-G Fu-ZF EHetzschold-B Rupprecht-CE Immimohistochemical Test for Rabies Identification of a Diagnostically Superior Monoclonal-Antibody.// VETERINARY RECORD 1995, Vol 136, Iss 12, pp 295−296
  98. Hamir-AN Moser-G Wampler-T Hattel-A Dietzschold-B Rupprecht-CE. Use of a Single Anti-Nucleocapsid Monoclonal-Antibody to Detect Rabies Antigen in Formalin-Fixed, Paraffin- Embedded Tissues.// VETERINARY RECORD 1996, Vol 138, Iss 5, pp 114−115
  99. Harrison P. J., Pearson R.C.A. In situ hybridization histochemistiy and the study of gene expression in the human brain.// Prog. Neurobiol. 1990, v. 34, 271−312.
  100. Heaton-PR Johnstone-P Mcelhinney-LM Cowley-R Osullivan-E Whitby-JE. Heminested PCR Assay for Detection of 6 Genotypes of Rabies and Rabies-Related Viruses. // JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY 1997, Vol 35, Iss 11, pp 27 622 766
  101. Higgins D.G., Sharp P.M. Fast and sensitive multiple sequence aligments on a microcomputer. //Cabios, 1989, 5, 151−153.
  102. Hiramatsu K. Mifune K. Mannen K, Nishizono A, Kawano H. Ito Y, Kawai A (1992) Mapping of the antigenic determinants recognised by monocional antibodies asamsi- the M2 protein of rabies virus. Virology 187: 472—479
  103. Hiramatsu K. Mannen K, Mifune K, Nishizono A, Takita-Sonoda Y Comparative sequence analysis of the M gene among rabies virus strains and its expression by recombinant vaccinia virus. Virus Genes (1993) 7: 83−88 .
  104. Holland J.J., Carlos Torre, Steinhauer D.A., Clarke D., Durte E., Domingo E. Virus mutation frequencies can be greatly understimated by monoclonal antibody neutralization of virions. // Journal of Virology, 1989, 63, 5030−5036.
  105. Holland J.J., Torrey J.C., Steinhauer D.A. RNA virys populations an quasispecies. // Curr. Top. Microbiol. Immunol. 1992, 176, 1−20.
  106. Horikami, S. M., Smallwood, S., Bankamp, B. & Moyer, S. A. (1994). An amino proximal domain of the L protein binds to the P protein in the measles virus RNA polymerase complex. Virology 205, 540−545.
  107. Hostnik-P Grom-J. An Indirect Immunofluorescent Test for Detection of Rabies Virus-Antibodies in Foxes. JOURNAL OF WILDLIFE DISEASES 1997, Vol 33, Iss 1, pp 143 145
  108. Hughes A.L., Nei M. Nucleotide substitution at major histocompatibility complex class II loci: Evidence for overdominant selection.// Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989, 86, 958−962.
  109. Hyppia T. Detection of adenovirus in nasopharyngeal by radioactive and nonradioactive DNA probes. // Journal of Clinical Microbiology, 1985, 21, 730−3.
  110. Ito Y. Nishizono A. Mannen K. Iiiramatsu K. Mifune K (1996) Rabies virus M protein expressed in Escherichia coli and its regulatory role in virion-associated transcriptase activity. Arch Virol 141: 671−683
  111. Iversion L.E., Rose J.K. Localized attenuation and discontinuous synthesis during vesicular stomatitis virus transcription. // Cell, 1981, v. 23, 477−484.
  112. Jacson A. C., Dorothy L. Reimer and William H. Wunner. Detection of rabies system of experimentally infected mice using in situ hybridization with RNA probes. // Journal of Virological Methods, 25 (1989) 1−12.
  113. Jacson A. C, and William H. Wunner. Detection of Rabies Virus Genomic RNA and mRNA in Mouse and Human Brains by Using In Situ Hybridization. // Journal of Virology, 1991, vol. 65, N 6.
  114. Jayakumar-R Thirumuragan-G Nachimuthu-K Padmanaban-VD
  115. Johnson H.N., Emmons R.W. Rabies virus. In Laboratory Diagnosis of viral Infections. 1985. (Lennette E.H., eds) pp. 425−40. New York, Basel: Marcel Dekker, Inc.
  116. Kamolvarin-N Tirawatnpong-T Rattanasiwamoke-R Tirawatnpong-S Panpanich-T Hemachudha-T. Diagnosis of Rabies by Polymerase Chain-Reaction with Nested Primers.//JOURNAL OF INFECTIOUS DISEASES 1993, Vol 167, Iss 1, pp 207−210
  117. , A. (1989). Bat rabies surveillance in Europe. Rabies Bulletin Europe 13 (4), 1213.
  118. Kawano H., Mifune K., Manen K., et al. Protection against rabies in mice by a cytotoxic T cell clone recognizing the gltcoprotein of rabies virus. // J. Gen. Virol. 1990, 71, 281−287
  119. Kimura M. Recent development of the neutral theory viwed from the Wrightian tradition of theoretical population genetics. //Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1991, 88, 5969−5973.
  120. King A.A., Crick J. Rabies-related viruses. In: Campbell J.B., Charlton K.M. (eds) Developments in veterinary virology: rabies. 1988. Kluwer, Dordrecht
  121. King, A., Davies, P. & Lawrie, A. (1990). The rabies viruses of bats. Veterinary Microbiology 23,165−174.
  122. King A.A. Studies of the antigenic relationships of rabies and rabies-related viruses using anti-nucleocapsid monoclonal antibodies. // Thesis 1991, University of Surrey
  123. King-AA Monoclonal-Antibody Studies on Rabies-Related Viruses.// ONDERSTEPOORT JOURNAL OF VETERINARY RESEARCH 1993, Vol 60, Iss 4, pp 283−287
  124. King A. A. African overview and antigenic variation. In: King A (ed) Proceedings of the international conference on epidemiology control and prevention of rabeis in eastern and southern Africa. 1993. Fondation Marcel Merieux
  125. King-AA., Meredith C.D., Thomson G.R. Canid and viverrid rabies viruses in South Africa. // Onderstepoort J. Vet. Res. 1994, 60, 295−299.
  126. Kissi B., TordoN., Bourhy H. Genetic Polymorphim in the Rabies Virus Nucleoprotein Gene. //Virology, 1995, 209, 526−537, 1995.
  127. Kumar S., Tamura K., Nei M. MEGA: molecular evolutionary genetics analysis software for microcomputers. //Cabios, 1994, 10, 189−191.
  128. Kissi B., Noel Tordo, Herve Bourhy. Genetic Polymorphism in the Rabies Virus Nucleoprotein Gene. //Virology (1995) 209, 526−537
  129. Kitvits T., Gemed B., Strijpetal D. NASBA TM isothermal enzymatic in vitro nucleic acids amplification optimized for diagnosis of HTV-1 infection. // J. Virol Methods, 1991, v. 35, p. 273−286.
  130. Lafon M., Wiktor T. J., Macfarlan R.I. Antigenic sites on the CVS rabies virus glycoprotein: analysis with monoclonal antibodies. // J. Gen. Virol. 1983, 64, 843−861
  131. Lafon M., Boruhy H., Sureau P. Immunity against the European bat rabies (Duvenhage) virus induced by rabies vaccines: An experimental study in mice. // Vaccine 1988, 6, 362 368.
  132. Lafon J., Lafage M., Martinez-Arendz A., Ramirez R., Vullier F., Charron D., Lotteau V., Scott-Algara D. Evidence for viral superantigen in humans.//Nature 1992, 358, 507−510
  133. Larson J.K., Wunner W.H. Nucleotide and deduce amino acid sequences of the nominal nonstructural phosphoprotein of the ERA, PM and CVS-11 strain of rabies virus.// Nucleic Acids Res (1990), 18, 7172
  134. Last-RD Jardine-JE Smit-MME Vanderlugt-JJ Application of hnmunoperoxidase Techniques to Formalin-Fixed Brain-Tissue for the Diagnosis of Rabies in Southern Africa.// ONDERSTEPOORT JOURNAL OF VETERINARY RESEARCH 1994, Vol 61, Iss 2, pp 183−187
  135. Lee H. Infection Disease testing by ligase chain reaction. // Clin. chem. 1993, v.30, p. 729 730
  136. Lemercier-P Jacob-Y Tordo-N The Complete Mokola Virus Genome Sequence -Structure of the RNA-Dependent RNA-Polymerase.// JOURNAL OF GENERAL VIROLOGY1997, Vol 78, Iss JUL, pp 1571−1576
  137. Lentz T.L., Wilson P.Т., Hawrot E., et al. Amino acid sequence similaiyty between rabies virus glycoprotein and snake venom curaremimetic neurotoxons. // Science 1984, 226, 847 848
  138. Lentz Thomas. Rabies virus receptors. // Trends Neurosci., 1985, 8, № 8, 360−364.
  139. Li W.H., Gojobori Т., Nei M. Pseudogenes as a paradigm of neutral evolution. // Nature, 1981, 292, 237−239.
  140. Lizardi P.M., Kramer F.R. Exponential amplification of nucleic acids: new diagnostics using DNA polymerase and RNA replicases. // Trends in Biotechnol. 1991, v.9, p. 53−59.
  141. Lodmel D.L., Sumner J.W., Esposito J.J., Bellini W.J., and Ewalt L.C. Raccoon poxivirus recombinants expressing the rabies virus nucleoprotein protect mice against lethal rabies virus infection.// J. Virol. 1992, 65, 3400−3405-
  142. Lowe J.B. Clinical applications of gene probes in human genetic disease, malignancy, and infectious disease. // Clinica et Chemica Acta, 1986, 157, 1−32.
  143. MacFarlan R.I., Dietzschold В., Wiktor T.J., et al. T cell responses to cleaved rabies virus glycoprotein and to sythetic peptides. // J. Immunol 1984, 133, 2748−2752
  144. Mannen K., Niramatsu K., Mifune K., Sakamoto S. Consserved nucleotide sequence of rabies virus cDNA encoding the nucleoprotein.// Virus Genes 1991, 5, 69−73
  145. Martin M. Kaplan, Hilary Koprowski. Методы лабораторных исследований по бешенству.// ВОЗ, Женева, 3-е издание, 1975, изд. „Медицина“, рус.
  146. Martinez M.Z., Carrfflo С., Gonzalez-Candelas F., Моуа A., Domingo Е., Sobrino F. Fitness alteration of foot-and-mouth disease virus mutants: measurement of adaptability of viral quasispecies. II Jounal of Virology, 1991, 65, 3954−3957.
  147. Martinezarends-A Astoul-E Lafage-M Lafon-M Activation of Human Tonsil Lymphocytes by Rabies Virus Nucleocapsid Superantigen.// Clinical Immunology and Immunopathology, 1995, Vol 77, Iss 2, pp 177−184
  148. Martinezarends-A Superantigen Properties of the Rabies Virus Nucleocapsid.// INTERCIENCIA 1997, Vol 22, Iss 2, pp 68−72
  149. Mccoll-KA Gould-AR Selleck-PW Hooper-PT Westbuiy-HA Smith-JS. Polymerase Chain-Reaction and Other Laboratoiy Techniques in the Diagnosis of Long Incubation Rabies in Australia// AUSTRALIAN VETERINARY JOURNAL 1993, Vol 70, Iss 3, pp 84−89
  150. Mebatsion-T Cox-JH Conzelmann-KK Molecular Analysis of Rabies-Related Viruses from Ethiopia.// ONDERSTEPOORT JOURNAL OF VETERINARY RESEARCH 1993, Vol 60, Iss 4, pp 289−294
  151. Mercier, Y. Jacob and N. Tordo. The complete Mokola vims genome sequence: structure of the RNA-dependent RNA polymerase. // Journal of General Virology (1997), 78, 15 711 576.
  152. Meslin F.X., Kaplan M.M., Koprowski H. Laboratory Techniques in Rabies. // World Healf Organization, 1996, 4-th edition, Geneva.
  153. Minamoto-N Tanaka-H Hishida-M Goto-H Ito-H Naruse-S Yamamoto-K Sugiyama-M Kinjo-T Mannen-K Mifune-K Linear and Conformation-Dependent Antigenic Sites on the Nucleoprotein of Rabies Virus.// MICROBIOLOGY AND IMMUNOLOGY 1994, Vol 38, Iss 6, pp 449−455
  154. Morimoto K, Ohkubo A., Kawai A. Structurt and transcription of the glycoprotein gene of attenuated HEP-Flury strain of rabies virus. // Virology 1989, 173, 46−477
  155. Morimoto K., Ni Y-J., Kawai A. Syncitium formation is induced in the murine neuroblastoma cell cultures which produce pathogenic type G proteins of the rabies virus. // Virology, 1992, 189, 203−216
  156. Myers G., Machines K., Korber B. The emergence of simian/human immunodeficiency viruses.// .AIDS Res. Hum. Retrovir. 1992, 8, 373−386.
  157. Myerson D., Hackmsn R.C., Meyers J.D. Diagnosis of eytomegaloviral pnemonia by in situ hybridization. Journal of Infectious Diseases, 1984, 150, 272−7.
  158. Nadin-Davis S. A., G.A. Casey and Wandeler. Identification of regional variants of the rabies virus within the Canadian of Ontario. // Journal of General Virology (1993), 74, N 5, 829−837
  159. Nadin-Davis-SA Casey-GA Wandeler-AI A Molecular Epidemiologic-Study of Rabies Virus in Central Ontario and Western Quebec.// JOURNAL OF GENERAL VIROLOGY 1994, Vol 75, Iss 10, pp 2575−2583
  160. Nadin-Davis S.A., Huang W., Wandeler A. I. Polymorphism of rabies viruses within the phosphoprotein and matrix protein genes. // Arch Virol (1997) 142: 979−992
  161. Nel-LH Thomson-GR Vonteichman-BF Molecular Epidemiology of Rabies Virus in South-Africa.// ONDERSTEPOORT JOURNAL OF VETERINARY RESEARCH 1993, Vol 60, Iss 4, pp 301−306
  162. Patton J.T., Davis N.L., Wertz G.W. N protein alone satisfies the requirement for protein synthesis during RNA replication of vesicular stomatitis wus.// J. Virol. 1984, 49, 303−309
  163. Perrin P., Rollin P.E., Sureau P. A rapid rabies enzyme immuno-diagnosis (RRIED): a useful and simple technique for the routine diagnosis of rabies. // Journal of Biological Standardization 1986, 14, 217−22
  164. Perrin P., Joffret M. L., Zanetti C., Bourhy H., Goneir C., Fritzell C., Leclerc C., Sureau P. Rabies-speciffic production of interleukin-2 by peripheral blood lymphocytes from human rabies vaccines.// Vaccine, 1991, 9, 549−558
  165. Poch, 0., Blumberg, B.M., Bougueleret, L. & Tordo, N. (1990). Sequence comparison of five polymerases (L proteins) of unsegmented negative-strand RNA viruses: theoretical assignments of functional domains. Journal ofGeneml Virology 71, 1153—1162.
  166. Rayssiguer C., Livia Cioe, Elizabeth Withers, William H. Wunner and Peter J. Curtis. Cloning of rabies virus matrix protein mRNA and determination of its amino acid sequence. // Virus Research, 5 (1986) 177−190.
  167. Rooijakkers-EJM Uittenbogaard-JP Groen-J Osterhaus-ADME. Rabies Vaccine Potency Control Comparison of ELISA Systems for Antigenicity Testing.// JOURNAL OF VIROLOGICAL METHODS 1996, Vol 58, Iss 1−2, pp 111−119
  168. Rosatte R.C. Rabies in Canada: history, epidemiology and control. // Canadian Veterinary Journal, 1988, 29, 362−365
  169. Rupprecht C.E., Dietzschold B., Wunner W.H., Koprowski H. Antigenc relationships of lyssaviruses. In: Baer G.H. (ed) The natural hystory of rabies, 2nd edn. 1991, CRC, Boca Raton
  170. Rupprecht C.E., Dietzschold B., Koprowski EL Lyssaviruses. // Springer-Verlad (1994) Berlin Heidelberg, New York, London, Paris, Tokyo, Hong Kong, Barcelona, Budapest
  171. Sacramento-D Bourhy-H Tordo-N. PCR Technique as an Alternative Method for Diagnosis and Molecular Epidemiology of Rabies Virus. // Molecular and Cellular probes, 1991, Vol 5, Iss 3, pp 229−240-
  172. Sacramento D., Hassan Badrane, Herve Bourhy and Noel Tordo. Molecular epidemiology of rabies virus in France: comparison with vaccine strains. // Journal of General Virology (1992), 73, N 5, 1149−1158.
  173. Sagara J., Kawa A. Identification of heat shock protein in the rabies virion. // Virol. 1992.-v.190, N-2. -p. 845−848.
  174. Sang-E Farr-RW Fisher-MA Hanna-SD. Antemortem Diagnosis of Human Rabies.// JOURNAL OF FAMILY PRACTICE 1996, Vol 43, Iss 1, pp 83−87
  175. Schneider L.G., Diringer H. Structure and molecular biology of rabies virus. // In: Compans RW, Cooper M., Koprowski H. et al. (eds) Current topics in microbiology and immunology, 1976, vol. 75. Springer, Berlin Heidelberg New York, pp 153−180
  176. Seif I., Coulon P., Rollin P.E., Flamand A. Rabies virulence: effect on pathogenicity and sequence characterization of rabies virus mutations affection antigenic site in of the glycoprotein. // J. Virol 1985, 53, 926−934
  177. Selimov, M. A., Tatarov, A. G» Botvmkin, A. D., Klueva, E. V" Kulikova, L. G. & Khismatullina, N. A. (1989). Rabies-related Yuli virus: identifica-tion with a panel of monoclonal antibodies. Rabies Bulletin Europe 6, 690−692.
  178. Selimov, S. A., Botvinkin, A. D., Khozinski, V. V., Klyieva, E. V., King, A., Petrenko, L. G., Doizhanov, P. B., Chernyavski, V. F., Kolotvina, P. V., Machitidze, C. Z., Korneeva,
  179. S. A., Barinova, L. 1. & Kor-zhenkova, A. A. (1990). Lyssavirus characterization with monoclonal antibodies on strains of certain regions of the USSR. Rabies Bulletin Europe 14, 8−9.
  180. Shu L.L., Bean W.J., Webster R.G. Analysis of the evolution and variation of the human influenza A virus nucleoprotein gene from 1933 to 1990. // J. Virol. 1993, 67, 2723−2729.
  181. Smallwood, S., Sumners, E. R. & Mayer, S. A. (1994). Determinants of serotype specificity in transcription of vesicular stomatitis virus synthetic nucleocapsids. Virology 199,11−19.
  182. Smith J.S., Yager P.A., Baer G.M. A rapid tissue culture test for detemiining rabies neutralizing antibody. In Laboratoiy Techniques in Rabies 1973 (Kaplan M.M., Koprowski H., eds) pp 354−7. Geneva: World Health Organization.
  183. Smith J.S. Rabies virus epitopic variation: use in ecologic studies. In Advances in Virus Research (Maramorosch K., Murphy F.A., Shatkin A. J., eds) 1989, pp 215−53. San Diego: Academic Press.
  184. Smith J.S., Orciari L.A., Yager P., Seedel H.D., Warner C.K., Epidemiologic and historical relationships among 87 rabies virus isolates as determined by limited sequence analysis. // J. Infect. Dis. 1992, 166, 296−307.
  185. Sokol F., Schlumberger H.D., Wiktor T.J., Koprowski H. and Humeler K. Biochemical and biophysical studies on the nucleocapsid and on the RNA of rabies virus.// Virology, 1969, 38, 651−665-
  186. Sokol F., Clark F. Fosphoproteins, structural components of rhabdoviruses.// Virology 1973, 52, 246−263-
  187. Sumner J.W., Fekadu M., Shaddock J.H., Esposito J.J., and Bellini W.J. Protection of mice with vaccinva virus recombinants that express the rabies nucleoprotein. // Virology, 1991, 183, 703−710
  188. Sureau P., Rollin P., and Wiktor T.J. Epidemiodogic analysis of antigenic variantions of street rabies virus: Detection by monoclonal antibodies. // Am. J. Elidemiol. (1983) 117, 605−609.)
  189. Tabel H, Comer AH. Webster WA, Casey GA (1974) Histoiy and epizootiology of rabies in Canada. Can Vet J 15:271−281
  190. Tignor G.H., Smith A.L. Vaccination and Challenge of mice with viruses of the rabies group. // Journal of Infectious Diseases, 1972, 125, 322−324.
  191. Thoulouze-MI Lafage-M Montanohirose-JA Lafon-M. Rabies Virus Infects Mouse and Human-Lymphocytes and Induces Apoptosis.// JOURNAL OF VIROLOGY, 1997, Vol 71, Iss 10, pp 7372−7380
  192. Tordo N., Poch O., Ermine A., Keith G. Primary structure of leader RNA and nucleoprotein genes of the rabies genome: segmented homology with VSV.// Nucleic Acid Res 1986a, 14, 2671−2683
  193. Tordo N., Poch Q., Ermine A., Keit G., and Rougeon F. Walking along the rabies genome: Is the lage G-L intergenic region a remnant gene? Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1986b, 83, 3914−3918-
  194. Tordo N., Poch O., Ermine A., Keit G., and Rougeon F. Completion of the rabies virus genome sequence determination: Highly conserved domains among the L (Polymerase) proteinsof unsegmented negative-strand RNA viruses. //Virology 1988, 165, 565−567
  195. Tordo N., Poch O. Structure of rabies virus. In Rabies (Campbell J.B., Charlton K.M., eds)1988, pp. 25−45. Boston: Kluwer Academic Publishers.
  196. Tordo-N Badrane-H Bourhy-H Sacramento-D. Molecular Epidemiology of Lyssaviruses -Focus on the Glycoprotein and Pseudogenes. // ONDERSTEPOORT JOURNAL OF VETERINARY RESEARCH 1993, Vol 60, Iss 4, pp 315−323
  197. Tordo-N Badrane-H Bourhy-H Sacramento-D. Molecular Epidemiology of Lyssaviruses -Focus on the Glycoprotein and Pseudogenes // ONDERSTEPOORT JOURNAL OF VETERINARY RESEARCH 1993, Vol 60, Iss 4, pp 315−323
  198. Tufferead C., Fischer S., Flamand A. Phosphoiylation of the N and Mi proteins of rabies virus.// J Gen Virol 1985, 66, 2285−2289-
  199. Tuffereau C., Leblois H., Benejean J., Coulon P., Lafay F., Flamand A. Arginine of Lisine in position 333 of ERA anl CVS glicoprotein is necessary for rabies virulence in adult mice. // Virology. 1989, 172, № 2, 206−212.
  200. Villareal L.P., Breindl M., Holland J.J. Determination of molar ratios of vesicular stomatitis virus induced RNA species in BHK 21 cells. // Biochemistry, 1976, v. 15, 1663−1667.
  201. Vincent J., Bussereau F., Sureau P. Immunological relationships between rabies virus and rabies-ralated viruses studied with monoclonal antibodies to Mokola virus. // Annals de I’lnstitut Pasteur/ Virologie, 1988, 139, 157−73.
  202. Vonteichman-BF Thomson-GR Meredith-CD Nel-LH Molecular Epidemiology of Rabies Virus in South-Africa Evidence for 2 Distinct Virus Groups.// JOURNAL OF GENERAL VIROLOGY 1995, Vol 76, Iss JAN, pp 73−82
  203. Warner C.K., Schurr T.G., Fekadu M. Molecular characterization of carrief rabies isolates. // Virus Res. (19%) 41, 133−140.
  204. Webster W.A., casey G.A., charlton K.M. Major antigenic groups of rabies virus in Canada determined by antinucleocapsid monoclonal antibodies. // Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases (1986) 9, 59−69.
  205. Whitby-JE Johnstone-P Sillerozubiri-C. Rabies Virus in the Decomposed Brain of an Ethiopian Wolf Detected by Nested Reverse Transcription-Polymerase Chain-Reaction. JOURNAL OF WILDLIFE DISEASES 1997, Vol 33, Iss 4, pp 912−915
  206. Wiktor T.J., Gyorgy E., Schlumberger H.D., Sokol F., Koprowski H. Antigenic properties of rabies virus components. // J. Immunol 1973a, 110, 269−276
  207. Wiktor T.J. and Clark H.F.Comparison of rabies virus strains by means of the plaque reduction test. // Ann. Microbiol. 1973b, 124A, 283−287
  208. Wiktor T.J., Koprowski H. Monoclonal antibodies against rabies virus produced by somatic cell hybridization: detection of antigenic variants. // Prociidings of the National Academy of Sciences, USA, 1978, 75, 3938−42.
  209. Wiktor T.J., Flamand A., Koprowski H., Use of monoclonal antibodies in diagnosis of rabies virus infection and differentiation of rabies and rabies-related viruses. // Journal of Virological Methods, 1980, 1, 33−46.
  210. Wiktor T.J., and Koprowski H. Antigenic variants of rabies virus. // J. Exp. Med. (1980) 152, 99−112.
  211. Winkler WG, Jenkins SR (1991) Raccoon rabies. In: Baer GM (ed) The natural history of rabies, 2nd ed. CRC Press. Boca Raton, pp 325−340
  212. Wunner W.H., Larson J.K., Dietzschold B., Smith C.L. The molecular biology of rabies viruses. // Reviews of Infectious Diseases, 1988, 10, S771−84.
  213. Wunner WH (1991) The chemical composition and molecular structure of rabies viruses. In: Baer GM (ed) The natural history of rabies, 2nd ed. CRC Press. Boca Raton, pp 31−67
  214. Yamamoto K., Yoshikura H. Relation between genomic and capsid structures in RNA viruses.// Nucleic Acids Res. 1986, 14, 389−396.
  215. Yelverton E., Norton B., Obijeski J.F., Geoddel D.V. Rabies virus glycoprotein analogs: biosynthesis in Esherihia coli. // Science 1983, 219, 614−620
  216. Zavadova-J Svrcek-S Madar-M Durove-A. Titration of Antibodies by Rapid Fluorescent Focus Inhibition Test (Rffit).// VETERINARNI MEDICINA 1996, Vol 41, Iss 7, pp 225−230
  217. РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ НАУК
  218. ВСЕРСЮСИЙСЙИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ
  219. ВЕТЕРИНАРНОЙ ВИРУСОЛОГИИ И МИКРОБИОЛОГИИ1 '-1 V1. УТВЕРЖДАЮ
  220. Директор ВНИИВВиМ член-корреспондеиг РАСХН/ Л ,..: ^Р^ВиШНЯКОВ
  221. МЕТОДИЧЕСЬСИЕ УКАЗАНИЯ ПО ПОСТАНОВКЕ ПОЛИМЕРАЗНОР1 ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ ПРИ БЕШЕНСТВЕ.1. ПОКРОВ 1998 г.
  222. М.С. Пантгошенко МА. Наумкина
  223. И.Ф. Вишняков С. Ж. Цыбанов В.В. Недосеков
  224. Материалы по разрабо^е методических указаний рассмотрены! и одобрены на заседании ученого совета ВНИИВВиМ 1протоколы? от 9 101 1998 г.
  225. Ученый секретарь, кандидат ветеринарных наук1. Г. П. Федоров1. НАУК
  226. Материалы по разработке методических указаний рассмотрены и утверждены на заседаШи ученого совета ВЙИИВВиМ, протоколы 6 от 0 3.07. 199? г.
  227. Ученый секретарь, I кандидат ветеринарных наук1. Г. П. Федоров
  228. УТВЕРЖДАЮ Директор ВНИИВВиМ член-корреётшдент РАСХНuimaccbeifЙ1. АКТкомиссионных испытаний набора препаратов для выявйеНи^^К-^ вируса бешенства с помощью полимеразной цепной реакции
  229. ОСНОВАНИЕ: Выполнение НИР по теме 01.02.03.М. и указание директора ВНИИВВиМ № 13 от 21 апреля 1998 г.
  230. Комиссионные испытания проведены на базе лаборатории «Биофизики».1. ЦЕЛЬ ИСПЫТАНИЙ
  231. Результаты испытаний представлены в прилагаемом протоколе.2. ЗАКЛЮЧЕНИЕ
  232. Провести межведомственные комиссионные испытания наборов с целью их практического применения в схеме диагностики и дифференциальной диагностики бешенства.1. ПРЕДЛОЖЕНИЯ1. Члены комиссии:
  233. ЩетниковаЛ.А. .г*}***? Пантюшенко М. С. 'V^'1. Наумкина М. Недосеков В.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!