Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Генетическая характеристика источников устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле

Диссертация: Генетическая характеристика источников устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В то же время совершенно очевидчо, что число эффективных генов устойчивости недостаточно для обеспечения современных стратегий селекции. Так, еще до широкого использования на практике устойчивых линий в краснодарской популяции тли выявлены редко встречающиеся клоны, вирулентные к образцу к-1362 (Радченко, 2000). Однако далеко не все выявленные источники устойчивости (прежде всего, зернового… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Эколого-биологические особенности и вредоносность обыкновенной злаковой. В
    • 1. 2. Устойчивость сорго к обыкновенной злаковой тле
      • 1. 2. 1. Иммунологические барьеры растений
      • 1. 2. 2. Типы (механизмы) устойчивости
      • 1. 2. 3. Внутривидовая изменчивость обыкновенной злаковой тли
      • 1. 2. 4. Генетика устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле и задачи селекции
  • 2. УСЛОВИЯ, МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Условия и климатические особенности Кубанской опытной станции ВИР
    • 2. 2. Материал исследований
    • 2. 3. Методы исследований
      • 2. 3. 1. Оценка устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле в полевых условиях
      • 2. 3. 2. Лабораторные методы
      • 2. 3. 3. Гибридологический анализ
    • 2. 4. Статистическая обработка данных
  • 3. УСТОЙЧИВОСТЬ ГЕНОФОНДА СОРГО К ОБЫКНОВЕННОЙ ЗЛАКОВОЙ ТЛЕ
  • 4. ПОПУЛЯЦИОННАЯ ИЗМЕНЧИВОСТЬ ОБЫКНОВЕННОЙ ЗЛАКОВОЙ ТЛИ
    • 4. 1. Исследование внутривидовой изменчивости обыкновенной злаковой тли с помощью отрезков листьев, помещенных в водный раствор бензимидазола
    • 4. 2. Изменчивость по вирулентности к сорго краснодарской и саратовской популяций обыкновенной злаковой тли
  • 5. НАСЛЕДОВАНИЕ УСТОЙЧИВОСТИ СОРГО К ОБЫКНОВЕННОЙ ЗЛАКОВОЙ ТЛЕ
    • 5. 1. Генетический анализ устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле
    • 5. 2. Генетический контроль различных типов устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле
  • ВЫВОДЫ

Генетическая характеристика источников устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Интенсификация сельского хозяйства привела к существенному увеличению вредоносности тлей на зерновых культурах. Так, потери урожая зернового сорго в нашей стране при массовом размножении обыкновенной злаковой тли Schizaphis graminum Rond, могут превышать 85% (Бадулин, Любименко, 1998). Одна из основных причин резкого увеличения вредоносности тлей на зерновых культурах — генетическая однородность возделываемых сортов, способствующая ускорению адаптивной микроэволюции насекомых. Реализация любой из современных стратегий селекции на иммунитет, направленных на расширение биоразнообразия, должна быть основана на изучении генетики устойчивости растений и создании доноров с эффективными генами с одной стороны и исследовании структуры популяций вредителей — с другой.

Наиболее остра в нашей стране проблема расширения генетического разнообразия доноров устойчивости сорго к самому опасному вредителюобыкновенной злаковой тле. Единственный донор, широко использовавшийся в селекции — сорт Сарваши — утратил устойчивость к европейским популяциям насекомого. Во ВНИИ растениеводства имени Н. И. Вавилова идентифицировано 7 новых генов устойчивости к тле (Радченко, 2000). С помощью ограниченных беккроссов гены устойчивости двух доноров (к-924 и к-1362) перенесены в основу районированных и перспективных сортов, отобраны высокопродуктивные устойчивые линии.

В то же время совершенно очевидчо, что число эффективных генов устойчивости недостаточно для обеспечения современных стратегий селекции. Так, еще до широкого использования на практике устойчивых линий в краснодарской популяции тли выявлены редко встречающиеся клоны, вирулентные к образцу к-1362 (Радченко, 2000). Однако далеко не все выявленные источники устойчивости (прежде всего, зернового сорго) исследованы генетически. Кроме того, слабо изучены образцы суданской травы, которая в естественных условиях заселяется вредителем обычно в наименьшей степени.

Следует обратить особое внимание на изучение внутривидовой изменчивости и структуры популяций вредителя, что имеет большое фундаментальное и прикладное значение.

Цель работы — изучить наследование устойчивости к обыкновенной злаковой тле у образцов сорго, выделенных в результате иммунологического скрининга коллекции ВИР.

Для выполнения работы необходимо решить следующие задачи:

— в полевых и лабораторных условиях изучить наследственное разнообразие рода Sorghum Moench по устойчивости к обыкновенной злаковой тле;

— определить иммунологически ценный генофонд сорго для обеспечения селекционных программ;

— изучить генетику устойчивости к тле у выделенных образцов;

— изучить наследование различных типов устойчивости (антиксеноза и антибиоза) сорго к обыкновенной злаковой тле;

— исследовать внутривидовую дифференциацию и структуру популяций обыкновенной злаковой тлимодифицировать методы изучения внутривидовой изменчивости насекомого.

Научная новизна. В результате изучения наследственного разнообразия рода Sorghum Moenh (4074 образца) выделено 24 формы, обладающих устойчивостью к обыкновенной злаковой тле. С помощью анализа взаимодействия фитофаг — растение-хозяин показано различие генов, обуславливающих слабую поврежденность насекомым 12 форм сорго, а также их отличие от идентифицированных ранее генов Sgrl, Sgr3 — Sgr6. Предложен метод изучения структуры популяций обыкновенной злаковой тли, предусматривающий использование отрезков листьев, помещенных в водный раствор бензимидазола. Изучен полиморфизм двух популяций обыкновенной злаковой тли по признаку вирулентности к Sgr-генам устойчивости сорго. Показана вероятность существования более или менее изолированных популяций на территории европейской части России. Показана возможность использования образца Сар

Ьаш для проведения популяционно-генетических исследований обыкновенной злаковой тли. Изучен генетический контроль устойчивости к фитофагу у двух образцов зернового сорго и пяти образцов суданской травы. Доказано присутствие у сорта Сарваши рецессивного гена, эффективного против отдельных клонов насекомого. Показано, что доминантные гены образцов Cap-bam и к-928, проявляющиеся против отдельных клонов насекомого, отличаются от всех идентифицированных ранее генов устойчивости. Получены данные, подтверждающие положение о том, что антиксеноз и антибиоз сорго к обыкновенной злаковой тле представляют плейотропные эффекты взаимодействия одних и тех же генов устойчивости и вирулентности.

Практическая ценность результатов исследований. Для селекции на иммунитет к обыкновенной злаковой тле предлагаются образцы зернового сорго (к-928, к-929) и суданской травы (к-62, к-96, к-99, к-100) с изученной генетикой устойчивости к вредителю. Для вовлечения в селекцию рекомендуются также высокоустойчивые к популяции фитофага чистые линии, выделенные из образцов к-830, к-831, к-931, к-933, к-1059, к-1150, к-1285. Общность генетического контроля различных типов устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле означает, что селекцию можно вести лишь по результирующему признаку — поврежденности растений. Для изучения структуры популяций обыкновенной злаковой тли предлагается лабораторный метод, предусматривающий использование отрезков листьев, помещенных в водный раствор бензимидазола.

Апробация работы. Результаты исследований доложены на:

— Конференциях молодых ученых и специалистов ВИР (С.-Петербург, 2000, 2001);

— II съезде Вавиловского общества генетиков и селекционеров (С.Петербург, 2000);

— Международной конференции «Генетические коллекции, изогенные и аллоплазматические линии» (Новосибирск, 2001) — 7.

— IV Европейском симпозиуме по экофизиологии беспозвоночных (С.Петербург, 2001);

— XVI Конгрессе ЕУКАРПИА (Эдинбург, 2001);

— конференции «Проблемы защиты растений в Поволжье» (Кинель, 2002);

— XII съезде Русского энтомологического общества (С.-Петербург, 2002).

Выражаю глубокую благодарность научному руководителю — д.б.н., зав. отделом иммунитета ВИР Е. Е. Радченко. Считаю приятным долгом выразить благодарность также коллективам отделов иммунитета и генетики за помощь в работе. Глубоко благодарна зав. группой сорго Кубанской опытной станции ВИР Е. В. Малиновской и сотрудникам станции за постоянную помощь в проведении полевых экспериментальных работ.

Приношу искреннюю признательность Российскому фонду фундаментальных исследований за финансовую поддержку моей работы (инициативные гранты № 99−04−48 053 и № 02−04−48 948- экспедиционные гранты № 0004−63 002 и № 01−04−63 080- гранты MAC № 01−04−6 184 и № 02−04−7 510).

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

ВЫВОДЫ.

1. В результате изучения наследственного разнообразия рода Sorghum Moenh (4074 образца) выделено 24 формы, обладающих устойчивостью к обыкновенной злаковой тле.

2. С помощью анализа взаимодействия фитофаг — растение-хозяин показано различие генов, обуславливающих слабую поврежденность насекомым 12 форм сорго, а также их отличие от идентифицированных ранее генов Sgrl, Sgr3 — Sgr6.

3. Для исследования внутривидовой изменчивости и структуры популяций обыкновенной злаковой тли целесообразно использование метода оценки устойчивости к фитофагу отрезков листьев, помещенных в водный раствор бензимидазола.

4. Показан существенный полиморфизм краснодарской и саратовской популяций обыкновенной злаковой тли по признаку вирулентности к Sgr-генам устойчивости сорго. Предполагается, что на территории европейской части России существуют более или менее изолированные популяции фитофага. Образец Capbam (к-455, США) может быть использован в качестве сорта-дифференциатора для проведения популяционно-генетических исследований обыкновенной злаковой тли.

5. Сорт Сарваши (к-3852, Венгрия), помимо доминантного гена Sgrl, имеет также рецессивный ген (очевидно, Sgr2), эффективный против отдель-нйх клонов насекомого.

6. Образцы зернового сорго к-928 и к-929 (Джугара белая, Западный Китай) имеют по два высокоэффективных доминантных гена устойчивости, отличающихся от идентифицированных ранее генов Sgrl — Sgr4, Sgr6, Sgr9, SgrlO. Гены устойчивости образца к-929 отличаются также от гена Sgr5. Образец к-928 имеет третий доминантный ген устойчивости, проявляющийся против отдельных клонов тли.

7. Доминантные гены образцов СарЬаш (к-455, США) и к-928, проявляющиеся против отдельных клонов обыкновенной злаковой тли, отличаются от всех идентифицированных ранее генов устойчивости 8§-г1 — 8§-г11.

8. Образцы суданской травы к-100 и к-122 (Украина) имеют по два доминантных гена устойчивости к обыкновенной злаковой тлепо одному доминантному и рецессивному гену устойчивости выявлено у образцов суданской травы к-62, к-99 (Украина) и к-96 (Россия).

9. Получены данные, подтверждающие положение о том, что антиксеноз и антибиоз сорго к обыкновенной злаковой тле представляют плейотропные эффекты взаимодействия одних и тех же генов устойчивости и вирулентности. Об этом свидетельствует следующее:

— совпадение расщепления по антиксенозу и антибиозу в случаях монб-генного контроля устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле (8§-г4), дигенного с дупликатным эффектом (Sgrl, 8§-г2 и Б§ г7, 8§-г8) и для комплементарно взаимодействующих генов (8£г9, 8£г10);

— в результате длительного размножения меченого желтой окраской тела клона обыкновенной злаковой тли на устойчивом образце сорго к-1206 наблюдали коррелированное снижение антибиоза и антиксеноза.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. Для селекции на иммунитет к обыкновенной злаковой тле предлагаются образцы зернового сорго (к-928, к-929) и суданской травы (к-62, к-96, к-99, к-100) с изученной генетикой устойчивости к вредителю.

Для вовлечения в селекцию рекомендуются устойчивые к популяции фитофага чистые линии, выделенные из образцов к-830, к-831, к-931, к-933, к-1059, к-1150, к-1285.

2. Общность генетического контроля различных типов устойчивости (антиксеноза и антибиоза) сорго к обыкновенной злаковой тле означает, что селекцию можно вести лишь по результирующему признаку — поврежденно-сти растений.

3. Для изучения структуры популяций обыкновенной злаковой тли предлагается лабораторный метод, предусматривающий использование отрезков листьев, помещенных в водный раствор бензимидазола.

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.B., Любименко Т. А. Обыкновенная злаковая тля — вредительсорго // Защита растений. 1998. — № 5. — С. 25.
  2. Бей-Биенко Г. Я., Богданов-Катьков H.H., Ильинский A.M., Фалькен-штейн Б.Ю., Щеголев В. Н. Сельскохозяйственная энтомология. М.-Л.: Сельхозгиз. — 1941. — 648с.
  3. С.П. Совершенствование метода оценки устойчивости злаков к злаковым тлям (лабораторные опыты с Rhopalosiphum padi L.) на пшенице // Известия ТСХА. 1984. — Вып.З. — С.134−140.
  4. A.M., Гуйда А. Н. Исходный материал яровой пшеницы в селекции на устойчивость к злаковой тле Toxoptera graminum R.// Сельскохозяйственная биология. 1978, — Т.13.- N1.- С.136−139.
  5. Н.И. Происхождение и география культурных растений. М.: Наука.-1987.-440с.
  6. Ван дер Планк Я. Устойчивость растений к болезням. М.: Колос. -1972.-253с.
  7. Н.Д. Тли, вредящие злаковым культурам в Нахичеванской АССР // Труды нахичеванской комплексной зональной опытной станции. Баку. — 1966. — Вып.4, — С.52−61.
  8. H.A. Физиологические аспекты теории устойчивости растений к насекомым: Автореф. дис. доктора с.-х. наук. Л. — 1980. — 49с.
  9. .А. Методика полевого опыта. М.: Колос. — 1979. — 416с.
  10. П.М. Культурные растения и их сородичи. Л.: Колос. -1971.-751с.
  11. A.B. Насекомые, вредящие полеводству. 4.1 Вредители зерновых злаков // Труды Полтавской с.-х. опытной станции. 1926. -Вып.50. — 296с.
  12. В.И., Одинцова И. Г. Современные стратегии селекции растений на устойчивость к болезням // Селекция и семеноводство. 1990. -NI. — С.2−6.
  13. Г. Ф. Биометрия.-М.: Высшая школа. 1980.-296с.
  14. Т., Хиллз Ф. Сельскохозяйственное опытное дело. Планирование и анализ. М.: Колос. — 1981.- 320с.
  15. .Н. Сорго на Северном Кавказе. Ростов-на-Дону: Изд-во Ростовского университета. 1992. — 208с.
  16. В.А. Листоед Lema melanopus L. вредитель овса, ячменя и других злаков // Саратов: Изд-во энтом. отд. Саратов, обл. с.-х. опытной станции. — 1927. — 27с.
  17. О.С. Злаковая тля (Toxoptera graminum Rond.). (Биология, экология, испытание мер борьбы). Ростов-на Дону. 1930. — 60с.
  18. A.C., Шиловский В. Н. Реакция сортообразцов риса на повреждение тлей // Защита растений. 1980. — N12. — С.32−33.
  19. В.П. Тли Средней Азии. Ташкент: Узбекистанская опытная станция защиты растений. 1929. — 424с.
  20. М.П., Омельченко Л. И. Злаковые тли на озимой пшенице и обоснование мер борьбы с ними в условиях юга Украины: Методические рекомендации.- Одесса. 1974. — 10с.
  21. A.B. Некоторые результаты оценки кукурузы и сорго на устойчивость к тлям в условиях Молдавской ССР. В кн.: VII Всесоюзное совещание по иммунитету с.-х. растений к болезням и вредителям. Тезисы докладов. Новосибирск. — 1981. — С. 180−181.
  22. Е.Е. Генетика устойчивости зерновых культур к тлям и проблемы селекции // Генетика. 1994. — Т.30. -N10. — С.1374−1380.
  23. Е.Е. Новые гены устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле // Генетика. 1995. -Т.31. -N5. -С.668−673.
  24. Е.Е. Наследование различных механизмов устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле {Schizaphis graminum Rond.) // Журнал общей биологии. 1999а. — Т. 60. — N6. — С.622−632.
  25. Е.Е. Идентификация генов устойчивости зерновых культур к тлям. СПб.: ВИР, 19 996. 60с. е30. Радченко Е. Е. Идентификация генов устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле // Генетика. 2000. — Т.36. — N4. — С.510−519.
  26. Е.Е., Одинцова И. Г., Власова Т. В. Наследование признака слабо выраженной устойчивости сорго к обыкновенной злаковой тле // Генетика. 2001. — Т.37. — N10. — С.1364−1370.
  27. Е.Е., Андрияш Н. В., Алпатьев В. Н. Создание устойчивых к злаковой тле линий сорго // Кукуруза и сорго. 1996. — N1. — С.11−12.
  28. Е.Е., Столяренко С. Б. Устойчивость сахарного сорго к обыкновенной злаковой тле // Исходный материал для селекции кукурузы икрупяных культур. Сб. научн. трудов по прикл. бот., ген. и сел. -1990. -Т.136. С.61−65.
  29. Е.Е., Якшин Г. В. Устойчивые к обыкновенной злаковой тле образцы сорго // Селекция и семеноводство. 1990. — N1. — С.26−27.
  30. Е.Е., Якшин Г. В. Наследственное разнообразие сорго по устойчивости к обыкновенной злаковой тле // Устойчивость сортов генофонда ВИР к болезням и вредителям. Сб. научн. трудов по прикл. бот., ген. и сел. 2001. — Т. 159. — С.24−34.
  31. А.Г., Скляр В. И. Некоторые вопросы селекции сорговых культур на устойчивость к злаковым тлям // Селекция и семеноводство. Киев: Урожай. -Вып.40. 1978. — С.43−48.
  32. Н.К., Надирадзе Н. В. К изучению биологии обыкновенной злаковой тли Schizaphis (=Toxoptera) graminum Rond, в Грузии // Труды Грузинского с.-х. ин-та. 1977. — Т.102. — С.97−104.
  33. И.Д. Иммунитет полевых культур к насекомым и клещам. JL: Зоологический институт АН СССР. 1985. — 322с.
  34. И.Д., Вилкова H.A. Современные теоретические представления об иммунитете растений к вредителям //Экологические основы стратегии и тактики защиты растений. Труды ВИЗР. JI. — 1979. -С.41−55.
  35. Г. X. Эволюция тлей в связи со специализацией и сменой хозяев: Автореф. дис.. д-ра биол. наук. Л.: ЗИН. 1967. — 41 с.
  36. Ю.Б. Сосущие вредители злаковых культур в лесостепи Северного Зауралья // Труды Всеросс. НИИ защиты растений. 1977. -Т.5. — С.29−38.
  37. В.Н. Хлебные пилильщики (биология, экология, меры борьбы). М., Л.: Сельхозгиз, 1931. 11 Ос.
  38. .С., Добрякова Е. П. Некоторые особенности биологии обыкновенной злаковой тли на сорго в Саратовской области // Защита растений от вредителей и болезней на юго-востоке и в западном Казахстане. Саратов. — 1980. — С.3−7.
  39. Е.С., Варадинов С. Г., Корнейчук В. А., Баняи Л. Широкий унифицированный классификатор СЭВ и международный классификатор СЭВ возделываемых видов рода Sorghum Moench. Л. — 1982. -34с.
  40. Г. В. Устойчивость сорго к обыкновенной злаковой тле Schi-zaphis graminum Rond. в связи с селекцией на иммунитет: Автореф. дис.. канд. с.-х. наук. Л.: ВИР, 1990. 18с.
  41. Abid H.S., Kindler S.D., Jensen S.G., Thomas-Compton M.A., Spomer S.M. Isozyme characterization of sorghum aphid species and greenbug biotypes (Homoptera: Aphididae) // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1989. — V.82. -N3. — P.303−306.
  42. Archer T.L., Onken A.B., Matheson R.L., Bynum E.D.Jr. Nitrogen fertilizer influence on greenbug (Homoptera: Aphididae) dynamics and damage to sorghum // J. Econ. Entomol. 1982. — V.75. -N4. — P.695−698.
  43. Argandona V.H., Corcuera L.J., Niemeyer H.M., Campbell B.C. Toxicity and feeding deterrency of hydroxamic acids from Gramineae in synthetic diets against the greenbug, Schizaphis graminum II Entomol. exp. et appl. -1983. V.34. -N2. -P.134−138.
  44. Argandona V.H., Niemeyer H.M., Corcuera L, J. Effect of content and distribution of hydroxamic acids in wheat on infestation by the aphid Schizaphis graminum II Phytochemistry. -1981. V.20. — N4. — P.673−676.
  45. Argandona V.H., Pena G.F., Niemeyer H.M., Corcuera L.J. Effect of cysteine on stability and toxicity to aphids of cyclic hydroxamic acid from Gramineae // Phytochemistry. 1982. — V.21. — N7. — P.1573−1574.
  46. Arnold D.C. Effects of cold temperatures and grazing on greenbug populations in wheat in Noble County, Oklahoma, 1975−76 // J. Kans. Entomol. Soc. 1981. — V.54. -N3. -P.571−577.
  47. Atkins I.M., Dahms R.G. Reaction of small-grain varieties to green bug attack //USDA.- 1945. Techn.bull. N901. — 30p.
  48. Beregovoy V.H., Peters D.C. Biotype J, a unique greenbug {Homoptera: Aphididae) distinguished by plant damage characteristics // J. Kans. Entomol. Soc. 1994. — V. 67. — N 3. — P.248−252.
  49. Behle R.W., Michels G.J.Jr. Greenbug (Homoptera, Aphididae) feeding affects nonstructural carbohydrate levels in seedling sorghum // J. Econ. Entomol. 1993. — V.86. — N2. — P.363−368.
  50. Blackman R.L. Aphid genetics and host plant resistance // Bulletin SROP. -1981.-V.IV/1.-P.13−19.
  51. Boozaya-Angoon D., Starks K.J., Edwards L.H., Pass H. Inheritance of resistance in oats to two biotypes of the greenbug // Environm. Entomol. -1981. -V.10. -N4. -P.557−559.
  52. Brown H.D. The suitability of some crops to infestation by the wheat aphid, Schizaphis graminum (Homoptera: Aphididae) // Entomol. exp. et appl. -1972. V.15. -Nl. -P.128−138.
  53. Burton R.L. Effect of greenbug (Homoptera: Aphididae) damage on root and shoot biomass of wheat seedlings // J. Econ. Entomol. 1986. — V.79. -N3. -P.633−636.
  54. Cabrera H.M., Argandona V.H., Zuniga G.E., Corcuera L.J. Effect of infestation by aphids on the water status of barley and insect development // Phy-tochemistry. 1995. — V.40. -N4. — P.1083−1088.
  55. Campbell B.C., Jones K.C., Dreyer D.L. Discriminative behavioral responses by aphids to various plant matrix polysaccharides // Entomol. exp. et appl.- 1986.-V.41.-N1.-P. 17−24.
  56. Castro A.M., Martin L.M., Dixon A.F.G. Genetic variability in antibiotic resistance to the greenbug Schizaphis graminum in Hordeum chilense II Plant Breed. 1995. — V. 114. — N6. — P.510−514.
  57. Castro A.M., Martin A., Martin L.M. Location of genes controlling resistance to greenbug (, Schizaphis graminum) in Hordeum chilense // Plant Breed. 1996. — V.115. -N5. -P.335−338.
  58. Chaudhary J.P., Ramzan M., Atwal A.S. Preliminary studies on the biology of wheat aphids // Indian J. Agr. Sci. 1969. — V.39. — N7. — P.672−675.
  59. Chedester L.D., Michels G.J.Jr. An evaluation of greenbug resistance in oats // Southwest. Entomol. 1982. — V.7. -N3. — P. 166−169.
  60. Coppock S. Greenbugs. They’re back on sorghum 11 Crops and soils. 1969.- V.21. -N9. -P.9−10.
  61. Corcuera L.J. Effects of indole alkaloids from Gramineae on aphids // Phy-tochemistry. 1984. — V.23. — N3. — P.539−541.
  62. Corcuera L.J., Queirolo C.B., Argandona V.H. Effects of 2-B-D-glycosyl-4-hydroxy-7-metoxy-l, 4-benzoxazin~r.-one on Schizaphis graminum (Ron-dani) (Insecta, Aphididae) feeding on artificial diets 11 Experientia. 1985. -V.41. -N4. -P.514−516.
  63. Dahms R.G. Comparative tolerance of small grains to greenbugs from Oklahoma and Mississippi // J. Econ. Entomol. 1948. — V.41. — N5. — P.825−826.
  64. Dahms R.G., Connin R.V., Guthrie W.D. Grasses as hosts of the greenbug // J. Econ. Entomol. 1954.-V.47. — N6. — P. 1151−1152.
  65. Dahms R.G., Storks K.J. Preventing greenbug outbreaks // USDA. -1973. -leaflet. N309. 8p.
  66. Dahms R.G., Wood E.A.Jr. Evaluation of greenbug damage to small grains //J. Econ. Entomol. 1957. — V.50. — N4. -P.443−446.
  67. Daniels N.E. Greenbug populations and their damage to winter wheat as affected by fertilizer applications // J. Econ. Entomol. 1957. — V.50. — N6. -P.793−794.
  68. Daniels N.E. The effects of high temperatures on greenbug, Schizaphis graminum, reproduction // J. Kans. Entomol. Soc. 1967. — V.40. — N2. P. 133−137.
  69. Dickson R.C., Laird E.F.Jr. Crop host preferences of greenbug biotype attacking sorghum//J. Econ. Entomol. 1969. — V.62. -N5. -P.1241.
  70. Dixon A.F.G. Structure of aphid populations // Annu. Rev. Entomol. Vol.30.- Palo Alto, Calif. 1985. — P. 155−174.
  71. Dixon A.G.O., Bramel-Cox P.J., Harvey T.L. Diallel analysis of resistance in sorghum to greenbug biotype E: antibiosis and tolerance // Crop Sci. -1990a. V.30. — N5. — P. 1055−1059.
  72. Dixon A.G.O., Bramel-Cox P. J., Harvey T.L. Complementarity of genes for resistance to greenbug Schizaphis graminum (Rondani)., biotype E, in sorghum [Sorghum bicolor (L.) Moench] // Theor. Appl. Genet. 1991. — V.81. -Nl. -P.105−110.
  73. Dixon A.G.O., Bramel-Cox P.J., Reese J.C., Harvey T.L. Mechanisms of resistance and their interactions in twelve sources of resistance to biotype E greenbug (Homoptera: Aphididae) in sorghum // J. Econ. Entomol. 1990b. — V.83. — Nl. -P.234−240.
  74. Dorschner K.W., Ryan J.D., Johnson R.C., Eikenbary R.D. Modification of host nitrogen levels by the greenbug (Homoptera: Aphididae): its role in resistance of winter wheat to aphids // Environm. Entomol. 1987. — V.16. -N4. -P.1007−1011.
  75. Dorschner K.W., Johnson R.C., Eikenbary R.D., Ryan J.D. Insect-plant interactions: greenbugs (Homoptera: Aphididae) disrupt acclimation of winter wheat to drought stress // Environm. Entomol. 1986 — V. 15. — N1. — P. 118 121.
  76. Dreyer D.L., Jones K.C. Feeding deterrency of flavonoids and related phenolics towards Schizaphis graminum and Myzus persicae: aphid feeding deterrents in wheat // Phytochemistry. -1981. V.20. -Nil.- P.2489−2493.
  77. Flor H.H. The complementary genie systems in flax and flax rust // Adv. Genet. 1956. — V.8. — P.29−54.
  78. Frey K.J., Browning J.A., Simons M.D. Management systems for host genes to control disease loss // Ind. J. Genet. Plant Breed. 1979. — V.39. — N1. -P. 10−29.
  79. Gerloff E.D., Ortman E.E. Physiological changes in barley induced by greenbug feeding stress // Crop Sci. 1971. — V. l 1. — N2. — P. 174−176.
  80. Gildow F.E. Increased production of alatae by aphids reared on oats infected with barley yellow dwarf virus // Ana. Entomol. Soc. Amer. 1980. — V.73. -P.343−347.
  81. Hackerott H.L., Harvey T.L., Ross W.M. Greenbug resistance in sorghums //, Crop Sci. 1969. — V.9. — N5. — P.656−658.
  82. Hackerott H.L., Harvey T.L., Ross W.M. Registration of KS 30 sorghum germplasm // Crop Sci. 1972. — V. l2. — N5. — P.719.
  83. Harvey T.L., Hackerott H.L. Plant resistance to a greenbug biotype injurious to sorghum // J. Econ. Entomol. 1969. — V.62. -N6. — P. 1271−1274.
  84. Harvey T.L., Hackerott H.L. Chemical control of a greenbug on sorghum and infestation effects on yields // J. Econ. Entomol. 1970. — V.63. — N5. -P.1536−1539.
  85. Harvey T.L., Hackerott H.L. Effects of greenbugs on resistant and susceptible sorghum seedlings in the field // J. Econ. Entomol. 1974. — V.67. — N3. -P. 377−380.
  86. Harvey T.L., Hackerott H.L., Martin T.J., Dispersal of alate biotype C greenbugs in Kansas // J. Econ. Entomol. 1982. — V.75. — N1. — P.36−39.
  87. Harvey T.L., Kofoid K.D., Martin T.J., Sloderbeck P.E. A new greenbug virulent to E-biotype resistant sorghum // Crop Sci. 1991. — V.31. — N6. -P.1689−1691.
  88. Harvey T.L., Wilde G.E., Kofoid K.D. Designation of a new greenbug biotype K, injurious to resistant sorghum // Crop Sci. 1997. — V.37. — N3. -P.989−991.
  89. Harvey T.L., Wilde G.E., Kofoid K.D., Bramel-Cox P.J. Temperature effects on resistance to greenbug (Homoptera: Aphididae) biotype I in sorghum // J. Econ. Entomol. 1994. — V.87. -N2. — P.500−503.
  90. Haseman L. Influence of soil minerals on insects // J. Econ. Entomol. -1946. V.39. -Nl. -P.8−11.
  91. Inayatullah C., Fargo W.S., Webster J. A. Use of multivariate models in differentiating greenbug (Homoptera: Aphididae) biotypes and morphs // Environ. Entomol. 1987. — V.16. -N4. -P.839−846.
  92. Jackson O.W., Vessels K.J., Potter D.A. Resistance of selected cool and warm season turfgrasses to the greenbug (Schizaphis graminum) II Hort Science. 1981. — V.16. — N4. — P.558−559.
  93. Jenkins J.N. Breeding for insect resistance. In: Plant Breeding II. Edited by K.J.Frey. — The Iowa State University press. — 1981. — P.291−308.
  94. Johnson J.W., Rosenow D.T., Teetes G.L. Response of greenbug-resistant grain sorghum lines and hybrids to a natural infestation of greenbugs // Crop Sci. 1974. — V. 14. — N3. — P.442−443.
  95. Juneja P. S., Gholson R.K. Acidic metabolites of benzyl alcohol in greenbug resistant barley // Phytochemistry. 1976. — V.15. — N5. — P.647−648.
  96. Juneja P. S., Gholson R.K., Burton R.L., Starks K.J. The chemical basis for greenbug resistance in small grains. 1. Benzyl alcohol as a possible resistance factor // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1972. — V.65. — N4. — P.961−964.
  97. Juneja P. S., Pearcy S.C., Gholson R.K., Burton R.L., Starks K.J. Chemical basis for greenbug resistance in small grains. II. Identification for the major neutral metabolite of benzyl alcohol in barley // Plant Physiology. 1975. -V.56. -N3. -P.385−389.
  98. Kanehisa K., Rustamani M.A., Cheng W.-Y., Tsumuki H., Shiraga T. Quantitative variations of a resistance substance, DIMBOA, against aphids in wheat varieties // Bull. Res. Inst. Bioresour./ Okayama Univ. 1995. — V.3. -Nl.- P. 17−26.
  99. Kantack E J., Dahms R.G. A comparison of injury caused by the apple grain aphid and greenbug to small grains // J. Econ. Entomol. 1957. — V.50. -N2. -P.156−158.
  100. Kawada K., Lohar M.K. Effect of gramine on the fecundity, longevity and probing behaviour of the greenbug, Schizaphis graminum (Rondani) // Ber. Ohara Inst. Landwirt. Biol. Okayama Univ. 1989. — V.19. — N4. — P.199−204.
  101. Kerns D.L., Peters D.C., Puterka G.J. Greenbug biotype and grain sorghum seed sale surveys in Oklahoma // Southwest. Entomol. 1987. — V. 12. — N3. -P.237−243.
  102. Kerns D.L., Puterka G.J., Peters D.C. Intrinsic rate of increase for greenbug (Homoptera: Aphididae) biotypes E, F, G, and H on small grains and sorghum varieties // Environm. Entomol. 1989. — V.18. — N6. — P. 1074−1078.
  103. Kindler S.D., Elliott N.C., Giles K.L., Royer T.A., Fuentes-Granados R, Tao F. Effect of greenbugs (Homoptera: Aphididae) on yield loss of winter wheat // J. Econ. Entomol. 2002. — V.95. — Nl. -P.89−95.
  104. Kindler S.D., Spomer S.M. Biotypic status of six greenbug (Homoptera: Aphididae) isolates // Environ. Entomol. 1986. — V.15. — N3. — P.567−572.
  105. Kindler S.D., Spomer S.M., Harvey T.L., Burton R.L., Starks K.J. Status of biotype E greenbugs (Homoptera: Aphididae) in Kansas, Nebraska, Oklahoma, and Northern Texas during 1980 1981 // J. Kans. Entomol. Soc. -1984. — V.57. -Nl. -P.155−158.
  106. Kindler S.D., Staples R. Schizaphis graminum: effect on grain sorghum exposed to severe drought // Environ. Entomol. 1981. — V. 10. — N2. — P.247−248.
  107. Kirkland R., Peries I.D., Hamilton G.C. Differentiation and developmental rate of nymphal instars of greenbug reared on sorghum // J. Kans. Entomol.- Soc. 1981. — V.54. — N4. — P.743−747.
  108. Kofoid K.D., Ross W.M., Hackerott H.L., Harvey T.L., Kindler S.D. Evaluation of greenbug resistance in S2 progenies of grain sorghum // Crop Sci. 1976. — V. 16. — N2. — P.265−267.
  109. Kogan M., Ortman E.F. Antixenosis a new term proposed to define Painter’s «non-preference» modality of resistance // Bull. Entomol. Soc. Amer. — 1978. — V.24. — P.175−176.
  110. Livers R.W., Harvey T.L. Greenbug resistance in rye // J. Econ. Entomol. -1969. V.62. — N6. — P. 1368−1370.
  111. Maugh T.H. Exploring plant resistance to insects // Science. 1982. -V.216. -N4547. — P.722−723.
  112. Mayo Z. B Jr., Starks K.J. Chromosome comparisons of biotypes of Schizaphis graminum to one another and to Rhopalosiphum maidis, R. padi, and Sipha flava II Ann. Entomol. Soc. Amer. 1972. — V.65. -N4. — P.925−928.
  113. Mayo Z.B., Starks K.J., Banks D. ., Veal R.A. Variation in chromosome length among five biotypes of the greenbug (Homoptera: Aphididae) // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1988. -V.81. — Nl. — P. 128−131.
  114. Moharramipour S., Murata S., Kanehisa K., Tsumuki H. Relationship between gramine concentration and cereal aphid populations in seedling and maturation stages in barley lines // Bull. Res. Inst. Bioresour./ Okayama Univ. 1996. — V.4. — N1. — P.49−58.
  115. Montllor C.B., Campbell B.C., Mittler T.E. Natural and induced differences in probing behavior of two biotypes of the greenbug, Schizaphis graminum, in relation to resistance in sorghum // Entomol. exp. et appl. 1983. — V.34. -Nl. -P.99−106.
  116. Morgan J., Wilde G., Johnson D. Greenbug resistance in commercial sorghum hybrids in the seedling stage // J. Econ. Entomol. 1980. — V.73. -N4. -P.510−514.
  117. Nelson R.R. Genetics of horizontal resistance to plant diseases // Ann. Rev. Plant Pathol. 1978. — V.16. — P.359−378.
  118. Niemeyer H.F., Calcaterra N.B., Roveri O.A. Inhibition of energy metabolism by benzoxazolin-2-one // Comp. Biochem. and Physiol. 1987. -V.87B. — N1. — P.35−39.
  119. Patch E.M. Food plant catalogue of the aphids of the world including the Phylloxeridae // Maine Agr. Exp. Sta. 1938. — Bull. N293. — P.35−431.
  120. Peiretti R.A., Araj A., Weibel D.E., Starks K.J., McNew R.W. Relationship of «bloomless» (bm bm) sorghum to greenbug resistance // Crop Sci. 1980. — V.20. -N2. -P.173−176.
  121. Peters D.C., Kerns D., Puterka G.J., McNew R. Feeding behavior, development, and damage by biotypes B, C, and E of Schizaphis graminum (Homoptera: Aphididae) on «Wintermalt» and «Post» barley // Environ. Entomol. 1988. — V.17. -N3. -P.503−507.
  122. Peterson G.C. Breeding sorghum for midge and greenbug resistance in the USA // Proc. Intern. Sorghum Entomol. Workshop. Patancheru. — 1985. -P.361−370.
  123. Peterson G.C., Suksayretrup K., Weibel D.E. Inheritance of some bloomless and sparse-bloom mutants in sorghum // Crop Sci. 1982. — V.22. — N1. -P.63−67.
  124. Pitrat M., Lecoq H. Nonacceptance of melon to Aphis gossypii, its inheritance and relation to antibiosis, tolerance and resistance to virus transmission //Bull. SROP.- 1981.-V.4/1.-P.141−145.
  125. Pitrat M., Lecoq H. Relations genetiques entre les resistances par non-acceptation et par antibiose du melon a Aphis gossypii. Recherche de liaisons avec d’autres genes // Agronomie. 1982. — V.2. — N6. — P.503−508.
  126. Porter D.R., Burd J.D., Shufran K.A., Webster J.A., Teetes G.L. Greenbug (Homoptera: Aphididae) biotypes: selected by resistant cultivars or preadapted opportunists? // J. Econ. Entomol. 1997. — V.90. — V.5. -P.1055−1065.
  127. Porter K.B., Peterson G.L., Vise O. A new greenbug biotype // Crop Sci. -1982. V.22. — N4. — P.847−850.
  128. Powers T.O., Jensen S.G., Kindler S.D., Stryker C.J., Sandall L.J. Mitochondrial DNA divergence among greenbug (Homoptera: Aphididae) biotypes // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1989. — V.82. -N3. -P.298−302.
  129. Puterka G.J., Peters D.C. Inheritance of greenbug, Schizaphis graminum (Rondani), virulence to Gb2 and Gb3 resistance genes in wheat // Genome. -1989. V.32. -N1.-P.109−114.
  130. Puterka G.J., Peters D.C. Genetics of greenbug (Homoptera: Aphididae) virulence to resistance in sorghum // J. Econ. Entomol. 1995. — V.88. -N2. -P.421−429.
  131. Puterka G.J., Peters D.C., Kerns D.L., Slosser J.E., Bush L., Worrall D.W., McNew R.W. Designation of two new greenbug (Homoptera: Aphididae) biotypes G and H // J. Econ. Entomol. 1988. — V.81. -N6. — P. 1754−1759.
  132. Puterka G.J., Slosser J.E. Inducing oviparae and males of biotype C green-bugs, Schizaphis graminum (Rond.) // Southwest. Entomol. 1983. — V.8. -N4. -P.268−272.
  133. Puterka G.J., Slosser J.E., Gilmore K.C. Biotype C and E greenbugs: distribution in the Texas rolling plains and damage to four small grain varieties // Southwest. Entomol. 1982. — V.7. -Nl. — P.4−8.
  134. Rautapaa J. Preference of cereal aphids for various cereal varieties and species of Graminae, Juncaceae, and Cyperaceae // Ann. agric. fenn. 1970. -V.9. — N4. — P.267−277.
  135. Rector B.G., All J.N., Parrott W.A., Boerma H.R. Quantitative trait loci for antibiosis resistance to corn earworm in soybean // Crop Sci. 2000. — V.40. -Nl. -P.233−238.
  136. Reese J.C., Bramel-Cox P., Ma R., Dixon A.G.O., Mize T.W., Schmidt D.J. Greenbug and other pest resistance in sorghum // 44th Annual Corn and Sorghum Research Conference. 1S-90. — 29p.
  137. Rustamani M.A., Kanehisa K., Tsumuki H., Shiraga T. The relationship between DIMBOA concentration in corn lines and resistance to aphids // Bull. Res. Inst. Bioresour./ Okayama Univ. 1996. — V.4. — N1. — P.33−42.
  138. Saxena R.C., Barrion A.A. Biotypes of the brown planthopper Nilaparvata lugens (Stal) and stratedies in deployment of host plant resistance // Insect Sci. and Appl. 1985. — V.6. -N3. — P.271−289.
  139. Schuster D.J., Starks K .J. Greenbugs: components of host-plant resistance in sorghum // J. Econ. Entomol. 1973. — V.66. -N5. — P. l 131−1134.
  140. Schuster D.J., Starks K.J. Response of Lysiphlebus testaceipes in an olfactometer to a host and a non-host insect and to plants // Environ. Entomol. -1974. V.3. -N6. — P.1034−1035.
  141. Schuster D. J., Starks K.J. Preference of Lysiphlebus testaceipes for greenbug resistant and susceptible small grain species // Environ. Entomol. 1975. -Y.4. -N6. — P.887−888.
  142. Schweissing F., Wilde G. Predisposition and nonpreference of greenbug for certain host cultivars // Environ. Entomol. 1979. — V.8. — N6. — P.1070−1072.
  143. Shaposhnikov G.Ch. Organization (structure) of populations and species, and speciation // Aphids: Biol., Natur. Enemies, and Contr. Vol.A. Amsterdam e.a. — 1987. -P.415−430.
  144. Sneep J., Dieleman F.L. Breeding plant varieties resistant to pests // Bulletin OEPP. 1973. — V.3 — N3. — P.89−93.
  145. Starks K.J., Burton R.L. Greenbugs: determining biotypes, culturing, and screening for plant resistance with notes on rearing parasitoids // USDA. -1977. Techn.bull. N1556. — 12p.
  146. Starks K.J., Burton R.L., Merkle O.G. Greenbugs (Homoptera: Aphididae) plant resistance in small grains and sorghum to biotype E // J. Econ. Entomol. 1983. — V.76. -N4. — P.877−880.
  147. Starks K.J., Eberhart S.A., Casady A.J., Webster O.J. Developing greenbug resistant lines from the KP2BR sorghum breeding population // Crop Sci. -1976. V.16. -N3. — P.360−362.
  148. Starks K.J., Merkle O.G. Low level resistance in wheat to greenbug // J. Econ. Entomol. 1977. — V.70. -N3. — P.305−306.
  149. Starks K.J., Muniappan R., Eikenbary R.D. Interaction between plant resistance and parasitism against the greenbug on barley and sorghum // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1972. — V.65. -N3. -P.650−655.
  150. Starks K.J., Weibel D.E. Resistance in bloomless and sparse-bloom sorghum to greenbugs // Environ. Entomol. 1981. — V. 10. — N6. — P.963−965.
  151. Starks K.J., Wood E.A.Jr. Greenbugs: damage to growth stages of susceptible and resistant sorghum // J. Econ. Entomol. 1974. — V.67. — N3. -P.456−457.
  152. Starks K.J., Wood E.A.Jr., Burton R.L. Relationships of plant resistance and Lysiphlebus testaceipes to population levels of the greenbug on grain sorghum // Environ. Entomol. 1974. — V.3. — N6. — P.950−952.
  153. Starks K.J., Wood E.A.Jr., Weibel D.E. Nonpreference of a biotype of the greenbug for a broomcorn cultivar // J. Econ. Entomol. 1972. — V.65. -N2. — P.623−624.
  154. Teetes G.L., Johnson J.W. Assessment of damage by the greenbug in grain sorghum hybrids of different maturities // J. Econ. Entomol. 1974. — V.67. -N4. -P.514−516.
  155. Teetes G.L., Schaefer C.A., Gipson J.R., Mclntyre R.G., Iatham E.E. Greenbug resistance to organophosphorous insecticides on the Texas High Plains // J. Econ. Entomol. 1975. — V.68. — N2. — P.214−216.
  156. Teetes G.L., Schaefer C.A., Johnson J.W. Resistance in sorghums to the greenbug- laboratory determination of mechanisms of resistance // J. Econ. Entomol. 1974. — V.67. — N3. — P.393−396.
  157. Todd G.W., Getahun A., Cress D.C. Resistance in barley to greenbug, Schi-zaphis graminum. 1. Toxicity of the phenolic and flavonoid compounds and related substances // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1971. — V.64. — N3. -P.718−722.
  158. Van Marrewijk G.A.M., Dieleman F.L. Screening techniques for the determination of aphid resistance in barley // Bulletin SROP. 1977. — N3. -P.37−43.
  159. Walgenbach D.D., Elliott N.C., Kieckhefer R.W. Constant and fluctuating temperature effects on developmental rates and life table statistics of thegreenbug (Homoptera: Aphididae) //J. Econ. Entomol. 1988. — V.81. -N2. -P.501−507.
  160. Webster F.M., Phillips W.J. The spring grain-aphis or «green bug» // U.S. Dep. Agr. Entomol. 1912. — Bull. Nl 10. — 153p.
  161. Webster J.A., Inayatullah C. Aphid biotypes in relation to plant resistance: a selected bibliography // Southwest. Entomol. 1985. — V.10. — N2. — P. l 16 125.
  162. Webster J.A., Inayatullah C., Hamissou M., Mirkes K.A. Leaf pubescence effects in wheat on yellow sugar cone aphids and greenbugs (Homoptera: Aphididae) // J. Econ. Entomol. 1994. — V.87. — N1. — P.231−240.
  163. Weibel D.E., Starks K.J. Greenbug nonpreference for bloomless sorghum // Crop Sci. 1986. — V.26. — N6. — P. l 151−1153.
  164. Weibel D.E., Starks K.J., Wood E.A.Jr., Morrison R.D. Sorghum cultivars and progenies rated for resistance to greenbugs // Crop Sci. 1972. — V.12. -N3. -P.334−336.
  165. Wellso S.G. Cereal leaf beetle: larval feeding, orientation, development, and survival on four small grain cultivars in the laboratory // Ann. Entomol. Soc. Amer. 1973. — V.66. — N6. — P. 1201−1208.
  166. Went D.F. Parthenogenetic strategies in insect reproduction // Adv. Invertebrate Reprod. 3. Amsterdam, e.a. — 1984. — P.303−315.
  167. Wilson R.L., Starks K.J. Effect of culture-host preconditioning on greenbug response to different plant species // Southwest. Entomol. 1981. — V.6. -N3. -P.229−232.
  168. Wood E.A.Jr. Biological studies of a new greenbug biotype // J. Econ. Entomol. 1961. — V.54. — N6. — P. 1171 -1173.
  169. Wood E.A.Jr. Designation and reaction of three biotypes of the greenbug cultured on resistant and susceptible species of sorghum // J. Econ. Entomol. 1971.-V.64.-N1.-P.183−185.103
  170. Wood E.A.Jr., Starks K.J. Incidence of paedogenesis in the greenbug 11 Environ. Entomol. 1975. — V.4. — N6. — P. 1001−1002.
  171. Yoshida H., Tsumuki H., Kawada K., Kanehisa K. Gramine and resistance of barley to aphids: analysis of EDTA exudates from barley leaves // Bull. Res. Inst. Bioresour./ Okayama Univ. 1996. — V.4. -Nl. — P.73−78.
  172. Zuniga G.E., Argandona V.H., Niemeyer H.M., Corcuera L.J. Hydroxamic acid content in wild and cultivated Gramineae // Phytochemistry. 1983. -V.22. — N12. — P.2665−2668.
  173. Zuniga G.E., Corcuera L.J. Glycine-betaine accumulation influences susceptibility of waterstressed barley to the aphid Schizaphis graminum I I Phytochemistry. 1987a. — V.26. — N2. — P.367−369.
  174. Zuniga G.E., Corcuera L.J. Glycine-betaine in wilted barley reduces the effects of gramine on aphids // Phytochemistry. 1987b. — V.26. — N12. -P.3197−3200.
  175. Zuniga G.E., Varanda E.M., Corcuera L.J. Effect of gramine on the feeding behavior of the aphids Schizaphis graminum and Rhopalosiphum padi 11 Entomol. exp. et appl. 1988. — V.47. -N2. — P.161−165.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!