Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Влияние rol-генов на углеводный метаболизм в процессе клубнеобразования у картофеля

Диссертация: Влияние rol-генов на углеводный метаболизм в процессе клубнеобразования у картофеля
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В случае ВЗЗ: га/С-растений, влияние чужеродного гена на углеводный метаболизм и цитокининовый статус клубней было более заметным и отчасти противоположным влиянию га/Я-гена. В го1С-клубнях обнаружены повышенное содержание сахарозы, а у отдельных линий глюкозы и/или фруктозы, а также относительно высокая инвертазная активность. В противовес гаШ-растениям, крахмальные гранулы га/С-клубней… Читать ещё >

Содержание

  • Список условных сокращений
  • Введение. Обзор литературы
  • 1. Клубнеобразование у картофеля
  • 2. Факторы, влияющие на процесс клубнеобразования
    • 2. 1. Факторы окружающей среды (экологические факторы)
    • 2. 2. Гормоны
    • 2. 3. Углеводы
  • 3. Ферменты углеводного метаболизма
    • 3. 1. Инвертаза
    • 3. 2. Сахарозосинтаза
    • 3. 3. Фруктокиназа, УДФ-глюкозопирофосфорилаза и гексокиназа
    • 3. 4. АДФ-глюкозопирофосфорилаза
    • 3. 5. Синтез крахмала
    • 3. 6. Формирование крахмальных гранул
  • 4. Трансгенные растения
    • 4. 1. Плазмиды агробактерий рода Agrobacterium: Ti- и Ri-плазмиды
    • 4. 2. Гены rol
  • Материалы и методы
  • 1. Реактивы, использованные в работе
  • 2. Объекты
  • 3. Выращивание растений in vitro. ф 4. Препарирование растений для цитологических исследований
  • 5. Определение активности ферментов углеводного метаболизма
    • 5. 1. Гистохимическое определение локализации активности ферментов углеводного метаболизма in situ
    • 5. 2. Определение активности ферментов углеводного метаболизма в экстрактах
  • 6. Определение содержания цитокининов в микроклубнях картофеля
  • 7. Определение содержания Сахаров в микроклубнях картофеля
  • 8. Определение содержания крахмала в микроклубиях картофеля
  • 9. Статистическая обработка данных
  • Резул ь таты
  • 1. Морфогенетические особенности растений картофеля, содержащих ген дрожжевой инвертазы, rolC- и rolB-гены
    • 1. 1. Рост в условиях, неблагоприятных для клубнеобразования
    • 1. 2. Образование клубней в условиях, благоприятных для клубнеобразования
  • 2. Анатомическое строение микроклубней контрольных и трансформированных вариантов растений картофеля
    • 2. 1. Соотношение различных тканей клубня
    • 2. 2. Исследование крахмальных зерен в микроклубнях трансформированных и контрольных растений
    • 2. 3. Определение средней площади крахмальных гранул на суспензиях микроклубней
  • 3. Влияние трансгенов rolC, rolB и inv на углеводный метаболизм растений картофеля
    • 3. 1. Гистохимическое определение локализации активности ферментов углеводного метаболизма в стеблях растений картофеля разных генотипов
    • 3. 2. Гистохимическое определение локализации активности ферментов углеводного метаболизма в микроклубнях картофеля разных генотипов
    • 3. 3. Определение активности сахарозосинтазы и инвертазы в экстрактах микроклубней различных генотипов растений картофеля
    • 3. 4. Содержание моно- и дисахаридов в микроклубпях растений картофеля различных генотипов
    • 3. 5. Содержание крахмала в микроклубнях растений картофеля различных генотипов
  • 4. Содержание цитокининов в микроклубнях контрольных и трансформированных rolC-, rolB- и iTiv-генами растений картофеля
  • Обсуждение

Влияние rol-генов на углеводный метаболизм в процессе клубнеобразования у картофеля (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Картофель принадлежит к числу важнейших сельскохозяйственных культур. ® Клубни картофеля содержат около 25% сухих веществ (крахмала — 14−22%, белков — 1,4−3%, клетчатки — около 1%, жира — 0, 3% и 0,8−1% зольных веществ), витамины С, В (Вь В2, В6), РР и К, а также каротиноиды.

Установлены два центра происхождения возделываемых видов картофеля. Первый центр расположен в тропическом поясе Южной Америки, в горных районах Анд — на высоте 2000;4800 м над уровнем моря — в Боливии и Перувторой центр расположен в умеренных широтах Чили, на высотах от 0 до 250 м над уровнем моря. В первом поясе возникли сорта основного тетраплоидного подвида Solatium ssp andigena, во втором поясе — сорта тетраплоидного подвида Solatium ssp tuberosum (Чайлахян, 1984). # Из Америки в Европу (Испанию) картофель был ввезен около 1565 года, а из.

Испании — в другие страны Центральной Европы. В Россию первые растения картофеля были отправлены из Голландии Петром Первым в конце XVII века.

В настоящее время эту культуру возделывают более чем в 70 странах. В плане ежегодного мирового производства картофель занимает четвертое место после пшеницы, риса и кукурузы. Картофель является не только ценной пищевой культурой, но также используется как кормовая и техническая культура.

Клубнеобразование у картофеля представляет собой многоэтапный процесс, включающий образование столонов, индукцию и инициацию формирования клубней, их дальнейший рост и созревание. Все этапы клубнеобразовапия ф регулируются целым комплексом различных факторов. Среди них факторы внешней среды, гормональные сигналы и метаболитная (углеводная) регуляция. Все эти факторы влияют не только на количество получаемой продукции и сроки созревания урожая, но и на биохимический состав клубней.

Крахмал — основной запасной метаболит картофельного клубня, он является основным питательным компонентом собираемых органов — клубней. В последние десятилетия резко возросла потребность в крахмале как при производстве специализированных пищевых продуктов, так и в технических целях (Katz, 1991). Ф Это произошло главным образом в результате разработки технологий получения широко употребляемых напитков с высоким содержанием фруктозы, а также получения био-этанолов (производства этанола). Изучен целый ряд специальных типов крахмала по их пригодности в качестве материала для тех или иных пищевых продуктов и их производства, а также использования при биодеградации (сбраживании). Кроме того, крахмал активно используют в бумажной, текстильной и фармакологической промышленностях, а также при производстве саморазлагающихся упаковочных материалов (биопластмасс). Картофельный крахмал отличается от крахмала злаковых культур по нескольким функционально важным аспектам. В частности, амилоза, составляющая приблизительно 25% картофельного крахмала, имеет более высокую степень полимеризации по сравнению с амилозой из крахмала злаковых. Поэтому картофельный крахмал коммерчески более выгоден для производства биопластмасс (НоГуапс1ег е1 а1., 2004). В свете всего вышесказанного, выяснение критических звеньев в углеводном метаболизме картофеля, ведущего к синтезу крахмала, вызывает большой интерес исследователей.

Процесс клубнеобразования исследуется с помощью различных методов, причем в последнее время с этой целью широко используются различные формы трансгенных растений, в частности трансформанты с измененными гормональными и/или углеводными характеристиками. В частности, в лаборатории роста и развития им. М. Х. Чайлахяна ИФР РАН проводятся активные исследования с использованием коллекции трансгенных растений картофеля. Именно эти фундаментальные исследования и послужили исходной базой для данной диссертационной работы.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

выводы.

1. Гены rolB и особенно rolC из A. rhizogenes, экспрессируемые под контролем промотора пататина ВЗЗ, существенно влияют на процесс клубнеобразования, а также на морфологические, анатомические и цитологические характеристики микроклубней трансформированного картофеля, культивируемого in vitro.

2. Методом гистохимической локализации in situ в комбинации с биохимическим анализом не выявлено различий между контрольными и трансгенными растениями по активности ключевых ферментов углеводного метаболизма: сахарозосинтазы, гексокиназы, фруктокиназы и АДФ-глюкозопирофосфорилазы.

3. В клубнях контрольных и rolB-растений активность инвертазы была низкой и локализовалась в апикальной почке и базальной части, тогда как у rolC-трансформантов обнаружена заметная активность инвертазы с локализацией не только в апикальной и базальной, но и в срединной частях клубня.

4. Экспрессия трансгенов влияет на содержание Сахаров в клубнях растений картофеля. Экспрессия генов rolB и rolC приводила к увеличению содержания сахарозы, а также глюкозы и/или фруктозы, тогда как экспрессия гена дрожжевой инвертазы приводила к снижению содержания сахарозы.

5. Чужеродные гены влияют на параметры отложения крахмала в амилопластах клубней. Содержание крахмала в клубнях ro/5-растений было достоверно выше, чем в клубнях rolC-растений. В клубнях растений, экспрессирующих гены rolC и инвертазы, формировались более мелкие крахмальные гранулы, а в клубнях го/5-трансформантов — более крупные, чем у контрольных вариантов.

6. Анализ широкого спектра цитокининов показал, что экспрессия го/-генов влияет па гормональный статус растений. Клубни го/С-трансформантов содержали повышенное количество рибозидов и отдельных глюкозидов изопентениладенина и зеатина (ZR, IPR, IP7G, IP9G). В клубнях rolB-трансформантов было выше содержание IP7G.

Таким образом, экспрессия го1-генов в клубнях картофеля приводит к геноспецифичному изменению их углеводного метаболизма. В клубнях гоС-растений наблюдалось парадоксальное сочетание активности сахарозосинтазы и (вакуолярной) инвертазы, тогда как в норме активность инвертазы замещается на активность сахарозосинтазы. Такие изменения в сочетании с повышенным содержанием ряда цитокининов могут быть одной из причин атипичной морфологии го/С-клубней.

Автор выражает глубокую благодарность научным руководителям проф. д.б.н. Георгию Александровичу Романову и с.н.с. к.б.н. Лидии Ивановне Сергеевой за практическую помощь при выполнении и подготовке этой работы, за понимание и поддержку, в.н.с. к.б.н. Нине Павловне Аксеновой за постоянное внимание к работе и ценные консультации, с.н.с. к.б.н. Ирине Арменаковне Гукасян за оказанное содействие в освоении микроскопической техники, с.н.с к.б.н. Татьяне Николаевне Константиновой и с.н.с. к.б.н. Светлане Андреевне Голяновской за повседневную помощь, внимание и поддержку, а также всем сотрудникам лаборатории роста и развития им. акад. М. Х. Чайлахяна ИФР РАН за доброжелательное отношение и дружескую атмосферу.

Автор выражает признательность директору Института экспериментальной ботаники Чешской Академии наук, г. Прага (Чехия) Иване Махачковой за помощь в проведении работы по определению цитокининов.

Автор благодарит заведующего лаборатории физиологии корня проф. д.б.н. Виктора Борисовича Иванова за оказанную техническую поддержку при выполнении данной работы.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Выполненная работа показывает, что экспрессия трансгенов го1 В и га/С влияет на углеводный метаболизм и цитокининовый статус микроклубней растений картофеля.

В клубнях растений генотипа ВЗЗ\rolB обнаружено повышенное содержание сахарозы и фруктозы, наблюдалась тенденция к повышению активности сахарозосинтазы и общего количества крахмала по сравнению с микроклубнями контрольных вариантов. В го1В-клубнях, в целом, формировались более крупные, чем в контроле, крахмальные гранулы. При этом пороговая концентрация сахарозы в среде для инициации клубнеобразования снижалась до 2%, тогда как у контрольных растений она равнялась 3−4%. В темноте, экспрессия гена го1 В приводила к уменьшению массы и размеров клубня.

В случае ВЗЗ: га/С-растений, влияние чужеродного гена на углеводный метаболизм и цитокининовый статус клубней было более заметным и отчасти противоположным влиянию га/Я-гена. В го1С-клубнях обнаружены повышенное содержание сахарозы, а у отдельных линий глюкозы и/или фруктозы, а также относительно высокая инвертазная активность. В противовес гаШ-растениям, крахмальные гранулы га/С-клубней, в целом, были намного меньше гранул обоих контролей, хотя явного снижения содержания крахмала при этом не отмечено. Инициация клубнеобразования у га/С-трансформантов начиналась при относительно высоком (8%) содержании сахарозы в среде. Яо1С-клубни превышали по размеру контрольные клубни и по форме напоминали укороченные побеги с большим количеством почек-«глазков» и редуцированных листьев. В клубнях, экспрессирующих ген га/С, отмечено повышенное содержание активных форм цитокининов, а именно ZR и 1Р11, а также глюкозидных форм 1Р7 В и 1Р90.

В целом, вызванная га/-трансгенами перестройка углеводного метаболизма и гормонального статуса показывает усиление аттрагирующей способности экспрессирующих эти гены тканей. Это согласуется с биологической функцией изучаемых га/-генов, которые в природе вызывают у пораженных растений опухолевидный рост «бородатых корней».

Обнаруженное сохранение активности инвертазы в ro/C-клубнях является аномальным для клубней картофеля. Согласно литературным (Farre et al., 2000; Viola et al., 2001; Appeldoorn et al., 1997, 2002; Bologa et al., 2003) и нашим данным, в норме переход от линейного роста (столон, стебель) к запасающему росту (клубень) сопровождается полным замещением инвертазпого пути расщепления сахарозы на сахарозосинтазный путь. Однако в клубнях rolCрастений одновременно присутствуют два пути расщепления сахарозы: сахарозосинтазный и инвертазный. Оба эти пути имеются и в клубнях растений с инвертазным трансгеном, у которых высокая активность инвертазы на фоне активно работающей сахарозосинтазы является результатом апопластной экспрессии гена дрожжевой инвертазы (Hajirezaei et al., 2000). В клубнях растений, трансформированных rolC-геном, проявлялась повышенная активность растворимой, скорее всего, вакуолярной инвертазы.

Известно, что клубень — это модифицированный стебель (столон). Ранее высказывалось предположение о том, что у ro/C-растений наблюдается частичный возврат к исходной стеблевой форме как в отношении морфологических, так и биохимических характеристик (Romanov et al., 2000). Результаты, полученные нами, свидетельствуют в пользу этого предположения. Присутствие (вакуолярной) инвертазы, типичное для органов, растущих в длину (Herbers and Sonnewald, 1998; Sergeeva et al., 2006), возможно, в определенной мере формирует необычный вытянутый фенотип го/С-клубней.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н. П., Константинова Т. Н., Голяновская С. А., Коссманн Й., Вилльмитцер JI., Романов Г. А. (2000) Генетические трансформанты картофеля как модель изучения гормональной и углеводной регуляции клубнеобразования. Физиология растений, 47, 3: 420−430
  2. Р. А., Собянина Е. А., Поздеева А. А., Яшков М. Ю. (1998) Действие фитогормонов на крахмалсинтезирующую способность в процессе роста клубней картофеля. Физиология растений, 45, 4: 557−566
  3. Р. А., Боровкова М. П. (2003) Динамика распределения фитогормонов по различным зонам клубней картофеля в связи с ростом и запасания крахмала. Физиология растения, 50, 1: 129−135
  4. А. И. (1970) Анатомия. Морфология и анатомия растений картофеля. Н. С. Бацанов (ред.), Картофель. Москва: Изд-во «Колос», с. 26
  5. Ю. И. (2005) Сомаклональная изменчивость растений и возможности ее практического использования (на примере кукурузы). Автореферат диссертации на соискание ученой степени) доктора биологических наук, Москва, 1−45
  6. Е. М., Романов Г. А. (2003) Изучение особенностей функционирования промотора гена пататина класса I картофеля. Тезисы V Съезда Общества физиологов растений России. (Пенза, 15−21 сентября).
  7. В. П., Бондарь П. И., Сакало В. Д. (1982) Амилопласты. Изд-во «Наукова думка», Киев с. 5
  8. Л. А., Павлова 3. Б., Иванова М. М. (1998) Агробактериальная трансформация как способ изменения гормонального метаболизма у высших растений. Генетика, 34,2: 165−182
  9. Л. А., Проворов Н. А., Тиходеев О. Н., Тихонович И. А., Ходжайова Л. Т., Шишкова С. О. (2000) Генетика развития растений. Изд-во «Наука», Санкт-Петербург с. 429−431
  10. А. М. (2002) Причины цветения длиннодневных видов картофеля в условиях короткого дня и холодной ночи. Физиология растений, 49, 4: 521−525
  11. Т. И., Кириллова И. Г., Якушкина Н. И. (2000) Динамика индолилуксусной кислоты в органах картофеля на разных этапах онтогенеза и ее роль в регуляции роста клубня. Известия РАН сер. биол., 2: 170−177
  12. Н. И., Жукова В. М., Чеканова Е. Г., Саляев Р. К., Мапелли С. П., Гаманец Л. В. (1999) Ауксиновый статус трансформированных растений Solanum в связи с устойчивостью к 2,4-Д и продуктивностью. Физиология растений, 46, 5: 699−710
  13. Г. А. (2000) Генетическая инженерия растений и пути решения проблемы биобезопасности. Физиология растений, 47,3: 343−353
  14. Г. А. (2002) Рецепторы фитогормонов. Физиология растений, 49, 4: 615 625
  15. С. В., Балакшина Н. О., Красавина М. С. (2002) Активация растворимой кислой инвертазы сопровождает индуцированное цитокинином превращение донорного листа в акцептор. Физиология растений, 49, 1: 98−104
  16. Ф., Филлипс И. (1984) Рост растений и дифференцировка. Изд-во «Мир», Москва с. 212
  17. М. X. (1984) Фотопериодическая и гормональная регуляция клубнеобразования у растений. Изд-во «Наука», Москва с. 6−17
  18. М. X. (1988) Регуляция цветения высших растений. Изд-во «Наука», Москва с. 422
  19. М. X. (1990) Механизм клубнеобразования у растений. Регуляция роста и развития картофеля. Изд-во «Наука», Москва с. 48−61
  20. Н. И., Лузина Т. И., Бахтенко Е. Ю., Кириллова И. Г. (1997) Значение ^ гормонального баланса в реакции растений картофеля на формы азотного питания.
  21. Физиология растений, 44, 6: 926−930
  22. N. P., Konstantinova Т. N., Sergeeva L. I., Machaikova I., Golyanovskaya S. A. (1994) Morphogenesis of potato plants in vitro. I. Effect of Light Quality and Hormones, 13: 143−146
  23. M. M., Capitani F., Gazza L., Capone I., Costantino P. (1994) The plant oncogene rolB stimulates the formation of flower and root meristemoids in tobacco thin cell layers. New Phytol., 126: 283−293
  24. Y., Haigler С. H., Johnson S., Wainscott M., Delmer D. P. (1995) A membrane-associated form of sucrose synthase and its potential role in synthesis of cellulose and callose in plants. Plant Biology, 92: 9353−9357
  25. Appeldoorn N. J. G. (19 996) Developmental changes in carbohydrate metabolism during early tuberisation of potato. PhD thesis of Wageningen University. Wageningen, Netherlands. 133
  26. Appeldoorn N. J. G., Sergeeva L. I., Vreugdenhil D., van der Plas L. H. M., Visser R. G. ф F. (2002) In situ analysis of enzymes involved in sucrose to hexose-phosphate conversionduring stolon to tuber transition of potato. Physiol. Plant., 114: 1−8
  27. G. (1982) Sucrose and other disacharides. Loewus F. A. and Tanner W. (ed), Encyclopedia of Plant Physiology, vol. 13A, Plant Carbohydrates I. Springer, Berlin, 217−347
  28. Ball S., Guan H-P., James M., Myers A., Keeling P. et al. (1996) From glycogen to amylopectin: a model explaining the biogenesis of the plant starch granule. Cell, 86: 349 352
  29. Balibrea Lara M. E., Gonzalez G. M. C., Fatima Т., Ehness R., Lee Т. K., Proels R.,
  30. W., Roitsch T. (2004) Extracellular invertase cytokinin-mediated delay of senescence. Plant Cell, 16: 1276−1287
  31. N., Grinier J., Chrispeels M. J. (1991) Accumulation of beta fructosidase in the cell walls of tomato roots following infection by fungal wilt pathogen. Plant Physiology, 97,2: 739−750
  32. R. L. (1964) The problem of halting enzyme action when extracting plant tissues. Anal. Biochem., 9: 431−442
  33. Bologa K. L., Fernie A. R., Loureiro A. L. M. E., Geigenberger P. (2003) A Bypass of sucrose synthase leads to low internal oxygen and impaired metabolic performance in growing potato tubers. Plant Physiology, 132: 2058−2072
  34. Burch L. R., Davies H. V., Cuthert E. M., Machray G. G., Hedley P. and Waugh R. (1992) Purification of soluble invertase from potato. Phytochemistry, 31: 1901−1904
  35. Burton R. A., Bewley J. D., Smith A. M., Bhattacharyya M. K., Tatge H., et al. (1995) Starch branching enzymes belonging to distinct enzyme families are differentially expressed during pea embryo development. Plant J., 7, 1: 3−15
  36. Claassens M. M. J., Vreugdenhil D. (2000) Is dormancy breaking of potato tubers the reverse of tuber initiation? Potato Research, 43: 347−369
  37. Claassens M. M. J. (2002) Carbohydrate metabolism during potato tuber dormancy and sprouting. PhD thesis of Wageningen University. Wageningen, Netherlands. 145
  38. B. R., Denyer K., Jenner C. F., Smith A. M. (1999) The relationship between the rate of starch synthesis, the adenosine 5'-diphosphoglucose concentration and the amylase content of starch in developing pea embryos. Planta, 209: 324−329
  39. J. E., Hatzfeld W. D., Stitt M. (1990) Cytosolic cycles regulate the turnover of sucrose in heterotrophic cell-suspension cultures of Chenopodium rubrum L. Planta, 182: 223−231
  40. K., Sidebottom C., Hylton C. M., Smith A. M. (1993) Soluble isoforms of starch synthase and starch-branching enzyme also occur within starch granules in developing pea embryos. Plant J., 4,1: 191−198
  41. D. C. (1987) Substrate inhibition of maize endosperm sucrose synthase by™ fructose and its interaction with glucose inhibition. Plant Sci., 52: 153−157
  42. J., Hall M. A. (1964) Effect of growth hormones on the development of invertase associated with cell wall. Nature, 201: 296−297
  43. Edwards A., Marshall J., Sidebottom C., Visser R. G. F., Smith A. M., Martin C. (1995) Biochemical and molecular characterization of a novel starch synthase from potato tubers. Plant J., 8, 2: 283−294
  44. A., Borthakur A., Bornemann S., Venail J., Denyer K., Waite D., Fulton D., Smith A., Martin C. (1999) Specificity of starch synthase isoforms from potato. Eur. J. Biochem., 266: 724−736
  45. EhneB R., Roitsch T. (1997) Co-ordinated induction of mRNAs for extracellular invertase and a glucose transporter in Chenopodium rubrum by cytokinins. The Plant # Journal, 11: 539−548
  46. El-Antabli H. M. M., Wareing P. F., Hillman J. (1967) Some physiological responses to D, L-abscisin (dormin). Planta, 73: 74−90
  47. M., Mayer A. M., (1974) Acid invertase in germinating Lactuca sativa seeds: evidence for de novo synthesis. Phytochemistry, 13: 389−395
  48. J. J., Chriqui D., Grossmann K., Schell J., Spena A. (1991a) The plant oncogene rolC is responsible for the release of cytokinins from glucoside conjugates. EMBO J., 10, 10: 2889−2895
  49. J. J., Schell J., Spena A. (19 916) The protein encoded by the rolB plant oncogene hydrolyses indole glucosides. EMBO J., 10, 11: 3125−3128
  50. E. E. (1995) The role of hormones in potato (Solanum tuberosum L.) tuberization.
  51. P. J. Davies (ed.), Plant Hormones, Physiology, Biochemistry and Molecular Biology. Dordrecht: Kluwer Acad. Publ. 698−724
  52. E. M., Geigenberger P., Willmitzer L., Trethewey R. N. (2000) A possible role for pyrophosphate in the coordination of cytosolic and plastidial carbon metabolism within the potato tuber. Plant Physiol., 123: 681−688
  53. A. R., Roessner U., Geigenberger P. (2001) The sucrose analog palatinose leads to a stimulation of sucrose degradation and starch synthesis when supplied to discs og growing potato tubers. Plant Physiol., 125: 1967−1977
  54. A. R., Willmitzer L., Trethewey R. N. (2002) Sucrose to starch: a transition in molecular plant physiology. Plant Science, 7: 35−41
  55. Fillipini F., Rossi R., Marin O., Trovato M., Costantino P., Downey P. M., Lo Schiavo F., Terzi M. (1996) A plant oncogene as a phosphatase. Nature, 379: 499−500
  56. Fisher D. K., Gao M., Kim K-N., Boyer C. D., Guiltinan M. J. (1996) Allelic analysis of the maize amylose-extender locus suggests that independent genes encode starch-branching enzymes Ila and lib. Plant Physiol., 110: 611−619
  57. M., (1990) Transformation of diploid and tetraploid potato clones with the rolC gene of Agrobacterium rhizogenes and characterization of transgenic plants. Plant Breeding, 104: 295−304
  58. M., Ballvora A. (1992) Further characterization of rolC transgenic tetraploid potato clones, and influence of daylength and level of rolC expression on yield parameters. Plant Breeding, 109: 18−27
  59. M., Ballvora A., Schmulling T. (1993) Constitutive or light-regulated expression of the rolC gene in transgenic potato plants has different effects on yield attributes and tuber carbohydrate composition. Plant Molecular Biology, 23: 749−757
  60. U., (2000) Transport in and out of plastids: does the outer envelope membrane control the flow? Trends Plant Sci., 5: 135−137
  61. P. L., Langille A. R. (1975) Endogenous cytokinins in Solanum tuberosum as influenced by photoperiod and temperature. Physiol. Plant. 34: 75−77
  62. Galis I., Macas J., Vlasak J" Ondrej M., Van Onckelen H. A. (1995) The effect of an elevated cytokinin level using the ipt gene and N6-benzyladenine on single node and intact potato plant tuberization in vitro. J. Plant Growth Regul. 14: 143−150
  63. J. M. (1992) Carbon catabolite repression in yeast. Eur. J. Biochem., 206: 297 313
  64. V., Vrain T., Jouanin L. (1994) Bacterial genes modifying hormonal balances in plants. Plant Physiol. Biochem., 32, 1: 11−29
  65. Geigenberger P. and Stitt M. (1993) Sucrose synthase catalyses a readily reversible reaction in vivo in developing potato tubers and other plant systems. Planta, 189, 3: 329 339
  66. P., Merlo L., Reimholz R., Stitt M. (1994) When growing potato tubers are detached from their mother plant there is a rapid inhibition of starch synthesis, involving inhibition of ADP-glucose pyrophosphorylase. Planta, 193, 4: 486−493
  67. Geigenberger P., Muller-Rober B., Stitt M. (1999) Contribution of adenosine 5-diphosphoglucose pyrophosphorylase to the control of starch synthesis is decreased by water stress in growing potato tubers. Planta, 209: 338−345
  68. P., Stitt M. (2000) Diurnal changes in sucrose, nucleotides, starch synthesis and AGPS transcript in growing potato tubers that are suppressed by decreased expression of sucrose phosphate synthase. Plant J., 23, 6: 795−806
  69. Gerrits N., Turk S. C. H. J., van Dun K. P. M., Hulleman S. H. D., Visser R. G. F., Weisbeek P. J., Smeekens S. C. M. (2001) Sucrose metabolism in plastids. Plant Physiol., 125: 926−934
  70. K. T. (1969) Control of enzyme formation and inactivation in plants. Annual Reviews Plant Physiology 20: 63−88
  71. M., Godt D. E., Roitsch T. (2000) Tissue-specific induction of the mRNA for an extracellular invertase isoenzyme of tomato by brassinosteroids suggests a role for steroid hormones in assimilate partitioning. The Plant Journal, 22, 6: 515−522
  72. P., Croisille Y., Croisille F., Ledoigt G. (1988) Jerusalem artichoke invertases -immunocharacterization of a soluble form and its putative precursors. Plant Science, 54: 45−54
  73. J. L., Williams L. E. (2000) Assimilate transport and partitioning in fungal biotrophic interactions. Australian Journal of Plant Physiology, 27, 6: 549−560
  74. Hajirezaei M-R., Takahata Y., Trethewey R. N., Willmitzer L., Sonnewald U. (2000) Impact of elevated cytosolic and apoplastic invertase activity on carbon metabolism during potato tuber development. Journal of Experimental Botany, 51: 439−445
  75. H., Miersch O., Vreugdenhil D., Sembdner G. (1993) Occurrence of hydroxylated jasmonic acids in leaflets of Solanum demissum plants grown under long- and short-day conditions. Physiol. Plant. 88: 647−653
  76. H. W., Sauer F., (1971) The inner membrane of the chloroplast envelope as site of specific metabolite transport. Biochim. Biophys. Acta, 234: 83−91
  77. K., Sonnewald U., (1998) Molecular determinants of sink strength. Current Opinion Plant Biol., 1: 207−216
  78. K., Takahata Y., Melzer M., Mock H. P., Hajirezaei M., Sonnewald U. (2000) Regulation of carbohydrate partitioning during the interaction of potato virus Y with tobacco. Molecular Plant Pathology, 1, 1: 51−59
  79. R., Willmitzer L. (1990) Biochemical and genetic analysis of different patatin isoforms expressed in various organs of potato (Solanum tuberosum). Plant Sci. 66: 221 230
  80. Jameson P. E., McWha J. A., Haslemore R. M. (1985) Changes in cytokinins during initiation and development of potato tubers. Physiol. Plant. 63: 53−57
  81. P. (2000) Cytokinins and auxins in plant-pathogen interactions: an overview. Plant Growth Regulation, 32: 369−380
  82. Jane J., Xu A., Radosavljevic M., Seib P. A. (1992) Location of amylase in normal starch granules. I. Susceptibility of amylase and amylopectin to cross-linking reagents. Cereal Chem., 69: 405−409
  83. Jang J-C., Sheen J. (1994) Sugar sensing in higher plants. Plant Cell, 6: 1665−1679
  84. Jang J-C., Leon P., Zhou L., Sheen J. (1997) Hexokinase as a sugar sensor in higher plants. Plant Cell, 9: 5−19
  85. P. J., Cameron R. E., Donald A. M. (1993) A universal feature in the structure of starch granules from different botanical sources. Starch, 45: 417−420
  86. F. R., (1991) Biotechnology and food ingredients. Acad. Press., 315−326
  87. Kaufman P. B., Ghosheh N. S., LaCroix J. D., Soni S. L., Ikuma H. (1973) Regulation of invertase levels in Avena stem segments by gibberellic acid, sucrose, glucose and fructose. Plant Physiology, 52: 221−228
  88. F., Frehner M., Wiemken A. (1988) Sucrose synthase, a cytosolic enzyme in protoplasts of Jeruzalem artichoke tubers. Plant Physiology, 88: 239−241
  89. L. A. (2001) A new player in the starch field. Plant Phisiol. Biochem., 39: 759−761
  90. Koch K. E., Nolte K. D., Duke E. R., McCarty D. R., Avigne W. T. (1992) Sugar levels modulate differential expression of maize sucrose synthase genes. The Plant Cell, 4: 5969
  91. K. E. (1996) Carbohydrate-modulated gene expression in plants. Annu. Res. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 47: 509−540
  92. Y. (1982) Changes in levels of butanol- and water-soluble cytokinins during the life cycle of potato tubers. Plant Cell Physiol., 23, 5: 843−849
  93. Y., Kikuta Y., Tazaki H., Tsujino Y., Sakamura S., Yoshihara T. (1991) Potato tuber-inducing activities of jasmonic acid and related compounds. Phytochemistry, 40: 1435−1438
  94. S., Greiner S., Koster U., Vogel R., Rausch T. (1998) In transformed tobacco cells the apoplasmic invertase inhibitor operates as a regulatory switch of cell wall invertase. The Plant Journal, 13, 2: 275−280
  95. H. B., Blanchette J. T., Okita T. W. (1985) Wheat invertase. Characterization ofcell wall-bound and soluble forms. Plant Physiology, 78: 241−245
  96. N. J. (1990) Carbohydrate synthesis and degradation. Dennis D.T. and Turpin D. M., (ed.), Plant physiology, biochemistry and molecular biology. Harlow: Longman. 5976
  97. Kulpers A. G. J., Jacobsen E., Visser R. G. F. (1994) Formation and deposition of amylase in the potato tuber starch granule are affected by the reduction of granule-bound starch synthase gene expression. The Plant Cell, 6: 43−52
  98. D., Wareing P. F. (1972) Factors controlling stolon development in the potato # plant. New Phytol., 71: 639−648
  99. J., Sidebottom C., Debet M., Martin C., Smith A. M., Edwards A. (1996) Identification of the major starch synthase in the soluble fraction of potato tubers. Plant Cell, 8: 1121−1135
  100. C., Smith A. M. (1995) Starch biosynthesis. Plant Cell, 7: 971−985
  101. C. S., Langille A. R. (1978) Physiology of tuberization in Solanum tuberosum L.: cis-zeatin riboside in the potato plants its identification and changes in endogenous levels as influenced by temperature and photoperiod. Plant Physiol., 62: 438−442
  102. Maurel C., Brevet J., Barbier-Brygoo H., Guern J., Tempe J. (1990) Auxin regulates the promoter of the root-inducing rolB gene of Agrobacterium rhizogenes in transgenic tobacco. Mol Gen Genet., 223, 1: 58−64
  103. Mauro M.L., Trovato M., De Paolis A., Gallelli A., Costantino P., Altamura M. M. (1996) The plant oncogene rolD stimulates flowering in transgenic tobacco plants. Developmental Biology, 180: 693−700
  104. McGaw B. A., Burch L. R. (1995) Cytokinin Biosynthesis and Metabolism. A. Crozier and J. Hillman (eds.) Plant Hormones: Physiology, Biochemistry and Molecular Biology. Dordrecht: Kluwer. 98−117
  105. Melis R. J. M., van Staden J. (1984) Tuberization and Hormones. Z. Planzen Physiol. Bd., 113: 271−283
  106. Memelink J., Hoge J. H. C., Schilperoort R. A. (1987) Cytokinin stress changes the developmental regulation of several defence-related genes in tobacco. EMBO Journal, 6: 3579−3583
  107. L., Geigenberger P., Hajirezaei M. R., Stitt M. (1993) Changes of carbohydrates, metabolites and enzyme activities in potato tubers during development, and within a single tuber along a stolon-apex gradient. J. Plant Physiol., 142: 392−402
  108. W. B., Ranwala A. P. (1994) Characterization and localization of three soluble invertase forms from Lilium longiflorum flower buds. Physiologia Plantarum, 92: 247 253
  109. M., Copenland L. (1985) Sucrose synthase of soybean nodules. Plant Physiology, 78: 149−154
  110. J. M., (1984) Osmoregulation and water stress in higher plants. Annu. Rev. Plant Physiol., 35: 299−319
  111. D. A., Arthur E.D. (1984) Invertase and auxin-induced elongation in internodal segments of Phaseolus vulgaris. Phytochemistry, 23: 2163−2167
  112. D. A., Arthur E.D. (1985) Effects of gibberellic acid on patterns of carbohydrate distribution and acid invertase activity in Phaseolus vulgaris. Phisiologia Plantarum, 65: 257−262
  113. Muller-Rober B. T., Kossmann J., Hannah L. C., Willmitzer L., Sonnewald U. (1990) One of two different ADP-glucose pyrophosphorylase genes responds strongly to elevated levels of sucrose. Mol. Gen. Genet., 224: 136−146
  114. Miiller-R6ber B., La Cognata U., Sonnewald U., Willmitzer L. (1994) A truncated version of an ADP-glucose pyrophosphorylase promoter from potato specifies guard-cell selective expression in transgenic plants. Plant Cell, 6: 601−612
  115. M., Tetlow I. J., Emes M. J. (1997) Starch synthesis in amyloplasts purified from developing potato tubers. Plant J., 11, 5: 1095−1103
  116. P. A., Okita T. (1996) C/s-elements important for the expression of the ADP-glucose pyrophosphorylase small-subunit are located both upstream and downstream from its structural gene. Mol. Gen. Genet., 250: 581−592
  117. H.E., Henrichs G., Scheibe R. (1995) Starch degradation in intact amyloplasts isolated from cauliflower floral buds (Brassica oleracea L.). Planta, 195: 496−504
  118. H. E., Wagner R. (2000) Solute pores, ion channels, and metabolite transporters in the outer and inner envelope membranes of higher plant plastids. Biochim. Biophys. Acta, 1465: 307−323
  119. O., Crozier A., Crozier A., Schmulling T., Sandberg G., Olsson O. (1993) Indol3.acetic homeostasis in transgenic tobacco plants expressing the Agrobacterium rhizogenes rolB gene. The Plant Journal, 3, 5: 681−689
  120. O., Moritz T., Imbault N., Sandberg G. & Olsson O. (1993) Hormonal characterization of transgenic tobacco plants expressing the rolC gene of Agrobacterium rhizogenes TL-DNA. Plant Physiology, 102, 2: 363−371
  121. O., Moritz T., Sandberg B., Sandberg G. & Olsson O. (1996) Expression of the Agrobacterium rhizogenes rolC gene in a deciduous forest tree alters Growth and development and leads to stem fasciation. Plant Physiology, 112,2: 493−502
  122. O., Olsson O. (1997) Getting to the root: The role of the Agrobacterium rhizogenes rol genes in the formation of hairy roots. Physiol. Plant., 100: 463−473
  123. K. D., Koch K. E. (1993) Companion-cell specific localization of sucrose synthase in zones of phloem loading and unloading. Plant Physiol., 101: 899−905
  124. Obata-Sasamoto H., Suzuki H. (1979) Activities of enzymes relating to starch synthesis and endogenous levels of growth regulators in potato stolon tips during tuberization. Physiol. Plant., 45: 320−324
  125. Y., Chapman W. H. (1962) Regulation of tuber formation in the potato plant. Physiol. Plant., 15: 413−419
  126. Y. (1967) Phyziological studies on the tuberization of potato plants. J. Fac. Agr. Hokkaido Univ., 55: 267−275
  127. K. J. (1985) Changes in partitioning of current assimilate during tuber bulking in potato (Solanum tuberosum L.) cv Maris Piper. Ann. Bot., 55: 705−713
  128. J. M. (1966) The influence of growth regulating substances on the development of enhanced metabolic rates in thin slices of beetroot storage tissue. Plant Physiology, 41: 1173−1178
  129. C.E., Smith O.E. (1969) Cytokinins and tuber initiation in the potato Solanum tuberosum L. Nature, 221: 279−280
  130. C. E., Barker W. G. (1973) Influence of ethylene and kinetin on tuberization and enzyme activity in Solanum tuberosum stolons cultured in vitro. Ann. Bot., 37: 85−93
  131. E., Smith A. M. (2003) Growth ring formation in the starch granules of potato • tubers. Plant Physiol., 132: 365−371
  132. S. (2004) Hormonal and daylength control of potato tuberization. P. J. Davies (ed.), Plant Hormones: Biosynthesis, Signal Transduction, Action! Netherlands: Kluwer Acad. Publ. 538−560
  133. R. (1966) Separation and properties of potato invertase and invertase inhibitor. ^ Archives of Biochemistry and Biophysics, 113: 667−674
  134. R. (1969) Potato sucrose synthetase: purification, properties, and changes in activity associated with maturation. Plant Physiol., 44: 759−764
  135. A. P., Suematsu C., Masuda H. (1992) Soluble and wall-bound invertase in strawberry fruit. Plant Science 84, 1: 59−64
  136. T., Greiner S. (2004) Plant protein inhibitors of invertases. Biochimica et Biophysica Acta, 1696: 253−261
  137. Redig P., Schmulling T., van Onckelen H. (1996) Analysis of cytokinin metabolism in ipt transgenic tobacco by liquid chromatography tandem mass spectrometry. Plant Physiol., 112: 141−148
  138. A., Merlo L., Stitt M. (1993a) Partial purification from potato tubers of threefructokinases and three hexokinases which show differing organ and developmental specificity. Planta, 190: 156−165
  139. A., Stitt M. (19 936) Substrate specificity and product inhibition of different forms of fructokinases and hexokinases in developing potato tubers. Planta, 190: 166−175
  140. E. W., Cripps R. F., Cowan A. K. (2000) Factors affecting 'Hass' avocado fruit size: carbohydrate, abscisic acid and isoprenoid metabolism in normal and phenotypically small fruit. Physiologia Plantarum, 109, 1: 81−89
  141. Rocha-Sosa M., Sonnewald U., Frommer W., Stratmann M., Schell J., Willmitzer L. (1989) Both developmental and metabolic signals activate the promoter of a class I patatin gene. The EMBO Journal, 8, 1: 23−29
  142. Roessner-Tunali U., Urbanczyk-Wochniak E., Czechowski T., Kolbe A., Willmitzer L.,
  143. A. R. (2003) De novo amino acid biosynthesis in potato tubers is regulated by sucrose levels. Plant Physiology, 133: 683−692
  144. T., Bittner M., Godt D. E. (1995) Induction of Apoplastic Invertase of Chenopodium rubrum by D-glucose and a glucose analog and tissue-specific expression suggest a role in sink-source regulation. Plant Physiol., 108: 285−294
  145. Roitsch T (1999) Source-sink regulation by sugars and stress. Current Opinion in Plant Biology, 2: 198−206
  146. Roitsch T., EhneB R. (2000) Regulation of source/sink relations by cytokinins. Plant Growth Regulation, 32: 359−367
  147. T., Balibrea M. E., Hofmann M., Proels R., Sinha A. K. (2003) Extracellular invertase: key metabolic inztme and PR protein. Journal of Experimental Botany, 54: 513−524
  148. Roitsch T., Gonzalez M-C., (2004) Function and regulation of plant invertases: sweet sensation. Trends Plant Sci., 9, 12: 606−613
  149. J. A., Hatch M. D., Glasziou K. T. (1963) Regulation of invertase synthesis in sugar cane by auxin and sugar-mediated control system. Physiology Plantarum, 16: 836 842
  150. M., Belliard G. (1987) Molecular cloning and sequencing of sucrose synthase cDNA from potato (Solanum tuberosum L.): preliminary characterization of sucrose synthase mRNA distribution. Gene, 60: 47−56
  151. Sampietro A. R., Vattuone M. A and Prado F. E. (1980) A regulatory invertase from sugar cane leaf-sheaths. Phytochemistry, 19: 1637−1642
  152. A., Krausgrill S., Greiner S., Weil M., Rausch T. (1996) Sucrose protects cell wall invertase but not vacuolar invertase against proteinaceous inhibitors. FEBS Letters, 385:171−175
  153. B., Marschner H. (1978) Cytokinin activity in stolons and tubers of Solanum tuberosum during the period of tuberization. Physiol. Plant., 44: 69−72
  154. J., Vanderveer P. J., Sharkey T. D. (1998) Export of carbon from chloroplasts at night. Plant Physiol., 118: 1439−1445
  155. T., Schell J., Spena A. (1988) Single genes from Agrobacterium rhizogenes influence plant development. EMBO J., 7: 2621−2626
  156. T., Fladung M., Grossmann K., Schell J. (1993) Hormonal content and sensitivity of transgenic tobacco and potato plants expressing single rol genes of Agrobacterium rhizogenes T-DNA. The Plant Journal, 3, 3: 371−382
  157. V., Unger C., Hardegger M., Sturm A. (1995) Biochemical, physiological and molecular characterization of sucrose synthase from Daucus carota. Plant Physiology, 108:75−83
  158. K., Lang A. (1968) Ivertase activity and cell growth in lentil epicotyls. Plant Physiology, 43: 1075−1082
  159. L. I., Vreugdenhil D. (2002) In situ staining of activities of enzymes involved in carbohydrate metabolism in plant tissues. Journal of Experimental Botany, 35, 367: 361−370
  160. Sergeeva L. I., Keurentjes J. B., Bentsink L., Vonk J., van der Plas L. H. W., Koornneef M., Vreugdenhil D. (2006) Vacuolar invertase regulates elongation of Arabidopsis thaliana roots as revealed by QTL and mutant analysis. PNAS, 103, 8: 2994−2999
  161. Silva M. P., Ricardo C. P. P. (1992) P-fructosidases and in vitro dedifferentiation -redifferentiation of carrot cells. Phytochemistry, 31: 1507−1511
  162. O. E., Rappaport L. (1969) Gibberellins, inhibitors and tuber formation on stolons of Solanum tuberosum L. Amer. Potato J., 46: 185−191
  163. A. M., Denyer K., Martin C. (1995) What controls the amount and structure of starch in storage organs? Plant Physiol., 107: 673−677
  164. A. M., Denyer K., Martin C. (1997) The synthesis of the starch granule. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 48: 67−87
  165. Smith-White B. J., Preiss J. (1992) Comparison of proteins of ADP-glucose pyrophosphorylase from diverces sources. J. Mol. Evol., 34: 449−464
  166. J., Boltner B., Wagner R., Hinnah S. C. (2000) The chloroplast outer envelope: a molecular sieve? Trends Plant Sci., 5: 137−138
  167. U., Lerchl J., Zrenner R., Frommer W. (1994) Manipulation of sink-source relations in transgenic plants. Plant, Cell and Enviromment, 17: 649−658
  168. U., Hajirezaei M. R., Kossmann J., Heyer A., Trethewey R. N., Willmitzer L. (1997) Increased potato tuber size resulting from appoplastic expression of a yeast invertase. Nat. Biotechnol., 15: 794−797
  169. J. (1976) Pyrophosphorylases in Solanum tuberosum- I. Changes in ADP-glucose and UDP-glucose pyrophosphorylase activities associated with starchbiosynthesis during tuberization, maturation and storage of potatoes. Plant Physiol., 57: 63−68
  170. A., Schmiilling T., Koncz C. & Schell J. S. (1981) Independent and synergistic activity of rol A, B and C loci in stimulating abnormal growth in plants. EMBO J., 6: 3891−3899
  171. M. (1998) Pyrophsphate as an energy donor in the cytosol of plant cells: an enigmatic alternative to ATP. Bot. Act., Ill: 167−175
  172. Struik P. C., Vreugdenhil D., Haverkort A. J., Bus C. B., Dankert R. (1991) Possible mechanisms of hierarchy among tubers on one stem of potato {Solatium tuberosum L.) plant. Potato Research, 34: 187−203
  173. A., Chrispeels M. J. (1990) cDNA cloning of carrot extracellular p-fructosidase and its expression in response to wounding and bacterial infection. The Plant Cell, 2: 1107−1119
  174. A., Sebkova V., Lorenz K., Hardegger M., Lienhard S., Unger C. (1995) Development- and organ-specific expression of genes for sucrose synthase and three isoenzymes of acid p-fructosidases in carrot. Planta, 195: 601−610
  175. A. (1999) Invertase. Primary structures, functions, and roles in plant development and sucrose partitioning. Plant Physiology, 121: 1−7
  176. A., Tang G. Q. (1999) The sucrose-cleaving enzymes of plants are crucial for development, growth and carbon partitioning. Trends Plant Sci., 4, 10: 401−407
  177. Sun C., Sathish P., Ek B., Deiber A., Jansson C. (1996) Demonstration of in vitro starch branching enzyme activity for a 51/50-kDa polypeptide isolated from developing barley {Hordeum vulgare) caryopses. Physiol. Plant., 96: 474−483
  178. J. C. (1998) Postharvest changes in endogenous cytokinins and cytokinin efficacy in potato tubers in relation to bud endodormancy. Physiologia Plantarum, 103: 59−69
  179. J. C., Banowetz G. M. (2000) Changes in cw-zeatin and cis-zeatin riboside levels and biological activity during potato tuber dormancy. Physiologia Plantarum, 109: 68−74
  180. Sweetlove L. J., Muller-Rober B., Willmitzer L., Steven A. H. (1999) The contribution of adenosine 5-diphosphoglucose pyrophosphorylase to the control of starch synthesis in potato tubers. Planta, 209, 3: 330−337
  181. L. J., Kruger N. J., Steven A. H. (2001) Starch synthesis in transgenic potato tubers with increased 3-phosphoglyceric acid content as a consequence of increased 6-phosphofructokinase activity. Planta, 213: 478−482
  182. J., Mohlmann T., Kampfenkel K., Henrichs G., Neuhaus H. E. (1998) Altered plastidic ATP/ADP-transporter activity influences potato (Solanum tuberosum L.) tuber morphology, yield and composition of tuber sterch. The Plant Journal, 16, 5: 531−540
  183. Trethewey R. N. et al. (2001) Expression of a bacterial sucrose phosphorylase in potato tubers results in a glucose-independent induction of glycolysis. Plant Cell Environ, 24: 357−365
  184. Turnbull C. G. N., Hanke D. E. (1985) The control of bud dormancy in potato tubers. Measurement of the seasonal pattern of changing concentrations of zeatin-cytokinins. Planta, 165: 366−376
  185. J. F., Turner D. H. (1980) The regulation of glycolysis and the pentose phosphate pathway. Stumpf P.K. and Conn E. E. (ed.), The biochemistry of plants, vol. 2. New York: Academic Press. 279−316
  186. Tymoska-Lalanne Z., Kreis M. (1998) The plant invertases: physiology, biochemistry and molecular biology. Advances in Botanical Research, 28: 71−117
  187. C., Hardegger M., Lienhard S., Sturm A. (1994) cDNA cloning of carrot (Daucus carota) soluble acid P-fructosidases and comparison with the cell wall isoenzyme. Plant Physiology, 104: 1351−1357
  188. R. (1996) Hexose metabolism in discs excised from developing potato (Solanumtuberosum L.) tubers II. Estimations of fluxes in vivo and evidence that fructokinase catalyses a near rate-limitung reaction. Planta, 198: 186−196
  189. R., Roberts A. G., Haupt S., Gazzani S., Hancock R. D., Marmiroli N., Machray G. C., Oparka K. J. (2001) Tuberization in potato involves a switch from apoplastic to symplastic phloem unloading. The Plant Cell, 13: 385−398
  190. Visser R. G. F., Vreugdenhil D., Hendriks T., Jacobsen E. (1994) Gene expression and carbohydrate content during stolon to tuber transition in potatoes (Solanum tuberosum). Physiologia Plantarum, 90: 285−292
  191. D., Struik P. C. (1989) An integrated view of the hormonal regulation of 0 tuber formation in potato (Solanum tuberosum L.). Physiol. Plant., 75: 525−531
  192. D., Helder H. (1992) Hormonal and Metabolic control of tuber formation. C. M. Karssen, L. C. van Loon, D. Vreugdenhil (eds.), Progress in Plant Growth Regulatory. Netherlands: Klumer Acad. Pabl. 393−400
  193. H., Borisjuk L., Wobus U. (1996) Controlling seed development and seed size in Vicia faba: a role for seed coat-associated invertases and carbohydrate state. Plant J., 10, 5: 823−834
  194. A., Servaites J. C., Geiger D. R., Kofler H., Hille D., Groner F., Hebbeker U., Fliigge U. (2000) Identification, purification and molecular cloning of a putative plastidic glucose translocator. Plant Cell, 12: 787−801
  195. M., Rauch T. (1990) Cell wall invertase in tobacco crown gall cells. Plant Physiology, 94,4: 1575−1581
  196. Wu L. L., Song I., Karupiach N., Kaufman P. B. (1993a) Kinetic induction of oat shoot pulvinus invertase mRNA by gravistimulation and partial cDNA cloning by polymerase chain reaction. Plant Molecular Biology, 21: 1175−1179
  197. Wu L. L., Song I., Kim D., Kaufman P. B. (19 936) Molecular basis of the increase in invertase activity elicited by gravistimulation of oat-shoot pulvini. Journal of Plant Physiology, 142: 179−183
  198. Wu L. L., Mitchel J. P., Cohn N. S., Kaufman P. B. (1993b) Gibberellin (GA3) enhaces cell wall invertase activity and mRNA levels in elongating dwarf pea (Pisum sativum) shoot. International Journal of Plant Sciences, 154, 2: 280−289
  199. Xu J., Avigne W. T., McCarty D. R., Koch K. E. (1996) A similar dichotomy of sugar modulation and developmental expression affects both paths of sucrose metabolism: evidence from a mize invertase gene family. The Plant Cell, 8: 1209−1220
  200. Xu X., van Lammeren A. A. M., Vermeer E., Vreugdenhil D. (1998) The role of gibberellin, abscisic acid, and sucrose in the regulation of potato tuber formation in vitro. Plant Physiol., 117: 575−584
  201. Zeng Y., Wu Y., Avigne W. T., Koch K. E. (1999) Rapid repression of maize invertases by low oxygen. Invertase/sucrose synthase balance, sugar signaling potential, and seedling survival. Plant Physiology, 121: 599−608
  202. R., Willmitzer L., Sonnewald U. (1993) Analysis of the expression of potato uridinediphosphate-glucose pyrophosphorylase and its inhibition by antisense RNA. Planta, 190: 247−252
  203. E., Adams C. J., Machackova I., Malbeck J., Scollan C., Meyer P. (2002) Activation tagging identifies a gene from Petunia hybrida responsible for the production of active cytokinins in plants. The Plant Journal, 29, 6: 797−808
Заполнить форму текущей работой

На отлично!