Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Исследование роли транспорта макромолекул в бактериальном и вирусном патогенезе растений и создание биотехнологической платформы продукции фармацевтических белков

Диссертация: Исследование роли транспорта макромолекул в бактериальном и вирусном патогенезе растений и создание биотехнологической платформы продукции фармацевтических белков
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

С помощью разработанной системы, был открыт новый механизм конкуренции за ядерный экспорт между кнРНК и кмРНК, с одной стороны, и другими более длинными мРНК, с другой стороны, характеризующийся следующими свойствами: а) экспорт из ядра в цитоплазму молекул РНК, синтезируемых в ядре РНК-полимеразой I, II или III, самостоятелен и не зависит друг от другаб) конкуренция приводит к подавлению синтеза… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • 1. Бактериальная инфекция и иммунитет растений
    • 1. 1. Модель зигзага, объясняющая взаимоотношение растения и патогена
    • 1. 2. Репертуар эффекторов и индукция ETI
    • 1. 3. Состояние растения-нехозяина по отношению к патогену
    • 1. 4. Ко-эволюция R-генов хозяина и эффекторов возбудителя
  • 2. Роль устьиц в бактериальном патогенезе
  • 3. «Переформатирование» ядра хозяйской клетки как неотъемлемая составляющая процесса бактериальной колонизации растения
    • 3. 1. Трансформация растительной клетки ДНК Agrobacterium с помощью системы IV типа секреции
    • 3. 2. Бактериальные белки, модифицирующие экспрессию генома клеток растения, и система III типа секреции
      • 3. 2. 1. Нуклеомодулгшы Xanthomonas
      • 3. 2. 2. Эффекторы Pseudomonas syringae
      • 3. 2. 3. Белки T3SS Pantoea
    • 3. 3. Бактериальные ферменты, изменяющие экспрессию генов клеток хозяина за счет влияния на посттрансляционную модификацию
  • 4. Роль плазмодесм в развитии бактериальной инфекции
    • 4. 1. Строение плазмодесм
    • 4. 2. Плазмодесма как поле битвы растения и бактерии
  • 5. Роль летучих органических соединений растения в развитии вирусной инфекции
    • 5. 1. JIOC как продукты метаболических путей растения
    • 5. 2. Роль повреоіедения в эмиссии ЛОС и вирусной инфекции растений
    • 5. 3. Праймирование растений, вызванное ЛОС, и его роль в вирусной инфекции
    • 5. 4. ЛОС и переносчики вирусов
      • 5. 4. 1. Неперсистентные вирусы
      • 5. 4. 2. Персистентные вирусы
  • 6. Система транзиентной экспрессии — патогены растений для целей биотехнологии
    • 6. 1. Агроинъекция и бинарные векторы
    • 6. 2. Иереплгщирующиеся векторы
    • 6. 3. Реплицирующиеся векторы
      • 6. 3. 1. Тобамовирусы
      • 6. 3. 2. Пошексвирусы
      • 6. 3. 3. Потивирусы
      • 6. 3. 4. Бромовирусы
      • 6. 3. 5. Комовирусы
      • 6. 3. 6. Система MagnlCON
  • МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
  • РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ОБСУЖДЕНИЕ
  • 1. Экспериментальная модель экспорта кнРНК из ядра растительной клетки
  • 2. Эффект, оказываемый кнРНК на репродукцию фитовирусов
  • 3. Влияние кмРНК на репродукцию геномной РНК вируса растений
  • 4. Модель экспорта мРНК из ядра цитоплазму
    • 5. 1. Разработка метода количественного измерения газообразного метанола, испускаемого травмированным растением
    • 5. 2. Определение количественных параметров эмиссии метанола и состава газов, испускаемых травмированным растением
    • 5. 3. Идентификация в растении генов чувствительных к метанолу
  • 6. Исследование участия метанола в межклеточном транспорте растений
  • 7. Метанол вызывает повышение репродукции ВТМ в растении
  • 8. Активизация межклеточного транспорта в растении связана с развитием антибактериальной устойчивости
    • 8. 1. Индукция антибактериальной устойчивости в листьях, обработанных газообразным метанолом и г (ис-3-гексен-1-олом в закрытой системе
    • 8. 2. Исследование роли метанола в развитии системной устойчивости растения к бактерии R. solanacearum на модели табака, трансгенного по ПМЭ
    • 8. 3. Индукция антибактериальной устойчивости в листьях растений, обработанных газообразным метанолом в проточной системе
    • 8. 4. Влияние метанола на число фокусов экспрессии GFP в листьях, агроинъецированных вирусным вектором KpBTM. GFP
  • 9. Концепция участия межклеточного транспорта макромолекул в бактериальном и вирусном патогенезе растений
  • 10. Исследование роли метанола и NCAPP в модификации ядерно-цитоплазматического транспорта клетки
  • 11. Биотехнологические основы эффективной продукции вакцин и антител в растении
    • 11. 2. Вектор на основе транскрнщионной кассеты РНК-полимеразы
    • 11. 1. Разработка систем продукции вакцинных белков в растениях
    • 11. 2. Технологическая платформа продукции фармаі{евтических препаратов в растении
  • ВЫВОДЫ
  • БЛАГОДАРНОСТИ

Исследование роли транспорта макромолекул в бактериальном и вирусном патогенезе растений и создание биотехнологической платформы продукции фармацевтических белков (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Произрастая в агробиоценозах, растения постоянно испытывают давление внешних факторов окружающей среды, как биотической, так и абиотической природы. Повреждающее воздействие ветра, осадков или фитофагов нарушают целостность покровных тканей растения, открывая путь для проникновения внутрь различных патогенов. Растения в ответ на вторжение вирусов и бактерий синтезируют макромолекулы (РНК и белки), транспортируемые в различные ткани и органы. Существует три уровня движения макромолекул по растению: (а) ядерно-цитоплазматический транспорт, включающий перемещение РНК из ядра в цитоплазму и движение белков, синтезированных в цитоплазме, в ядро- (б) межклеточное перемещение РНК и белка (ближний транспорт) — (в) дальний транспорт по сосудистой системе растения белков и РНК, в том числе вирусных нуклеопротеидов. Вирусы и бактерии различаются между собой в способности эксплуатировать эти три уровня транспорта. Вирусы растений, большая часть из которых цитоплазматические РНК-содержащие вирусы, активно используют ближний и дальний транспорт для переноса генетического материала по растению. Бактерии, как внеклеточные патогены, не нуждаются в транспорте генетического материала по растению, однако при колонизации используют ядерно-цитоплазматический транспорт, вводя белковые факторы вирулентности в хозяйское ядро для его «переформатирования». Современное представление о вирусном и бактериальном патогенезе предполагает возможность конкурентных взаимоотношений между макромолекулами хозяина и патогена на уровне транспорта. Однако экспериментальных данных на этот счет недостаточно, что определяет актуальность исследования роли транспорта макромолекул в иммунитете растений.

При рассмотрении ядерно-цитоплазматического транспорта макромолекул в растении следует иметь в виду, что растения в ответ на внешнее воздействие и атаку патогена проявляют серию защитных реакций, включающих повышенную транскрипцию некодирующих и кодирующих участков генома, вовлеченных в адаптивные реакции растений. Ядро растительной клетки структурно и функционально отделено от цитоплазмы, поэтому ядерно-цитоплазматический экспорт.

РНК через ядерную пору играет фундаментальную роль в регуляции генома. В последние годы установлена важная роль коротких некодирующих РНК (кнРНК) в иммунитете растений и в проявлении защитных реакций в ответ на вирусную и/или бактериальную инфекцию. В частности показана связь между вирулентностью вирусов и уровнем накопления в цитоплазме кнРНК (Bazzini и др., 2007, 2011). Более того, установлено, что суперэкспрессия кнРНК и увеличение их содержания в цитоплазме стимулирует репродукцию вируса табачной мозаики (ВТМ) (Dorokhov и др., 20 066). Молекулярные механизмы этих явлений неясны и требуют дополнительных экспериментов для выяснения роли ядерного экспорта РНК в реакциях растений на бактериальную и вирусную атаку. Этим определяется необходимость создания экспериментальной модели экспорта мРНК, а также коротких некодирующих РНК из ядра растительной клетки. На подобной модели можно охарактеризовать молекулярные механизмы конкуренции РНК за экспорт из ядра в цитоплазму и изучить участие ядерного транспорта макромолекул в бактериальном и вирусном патогенезе растений.

На втором уровне транспорта клеточных макромолекул, когда через плазмодесмы происходит перенос клеточных белков, например, транскрипционных факторов хозяина и кодирующих их мРНК, также может происходить конкуренция с вирулентными факторами патогенов, а именно, с вирусными транспортными белками (ТБ) и эффекторными молекулами бактерий. Вероятность такой конкуренции до сих пор не исследовалась, прежде всего, из-за отсутствия адекватной экспериментальной модели, позволяющей изучать роль межклеточного транспорта в бактериальном и вирусном патогенезе в условиях, максимально приближенных к природным. В интактном растении табака только молодые (0,5−3,0 см) верхние быстрорастущие листья, являющиеся акцепторами (sink) фотоассимилятов, характеризуются наличием «открытых» плазмодесм и интенсивным межклеточным транспортом. Эти листья, однако, не представляют собой природных «ворот» инфекции и малопригодны для экспериментального заражения. С другой стороны, зрелые крупные (10−20 см) листья табака, являющиеся донорами (source) фотоассимилята и обычно использующиеся для экспериментального заражения ВТМ и бактериями, такими как Ralstonia 9.

8о1апасеапип и А^гоЪас1ег'шт 1ите/асгет, содержат плазмодесмы, которые «закрыты» для крупных макромолекул. Пропускная способность плазмодесм «зоигсе"-листьев увеличивается при вирусной инфекции, например, с помощью транспортного белка вируса. Оптимальной экспериментальной системой могли бы быть растения, у которых плазмодесмы «зоигсе"-листьев «открываются» при воздействии газообразного вещества, не повреждающего листья и не вносящего в систему фактор травмы. Вообще, летучие органические вещества, которые могут играть роль сигналов коммуникации между растениями, известны достаточно давно. Среди них идентифицирован метанол, который образуются в реакции деметилирования пектина ферментом клеточной стенки табака, пектинметилэстеразой (ПМЭ). В нашей лаборатории этот фермент впервые был идентифицирован в качестве рецептора транспортного белка ВТМ (БогокЬоу и др., 1999).

Использование разработанной экспериментальной системы контролируемого межклеточного транспорта позволит проверить выдвинутую ранее гипотезу относительно участия ПМЭ и метанола в регуляции межклеточного транспорта и патогенезе растений (Дорохов, 2007). Кроме того, именно в условиях данной системы появляется возможность исследования роли ПМЭ и метанола как факторов мобилизации растительного сообщества в ответ на травму и проникновение вирусного или бактериального патогена.

В последние годы биотехнология рассматривает растения в первую очередь в качестве некоего «ферментера» рекомбинантных фармацевтических молекул, включая ферменты, вакцины и антитела. Поэтому другим направлением нашего исследования является определение молекулярных механизмов, лежащих в основе взаимодействия растения и вируса в искусственных условиях растения-биофабрики. Наиболее эффективными оказались системы продукции, основанные на введении вирусного вектора, кодирующего целевой белок, с помощью бактерии Agrobacteril^m иипе/аЫет в клетки растения ЪИсойапа Ьешкттста. Этот подход позволяет получить временную экспрессию гена целевого белка с высоким выходом конечного продукта и в короткие сроки (до 7 дней). Таким образом, мы рассматриваем возможность практического применения выявленных закономерностей.

10 переноса макромолекул хозяина и патогена в клетке и между клетками. Выяснение молекулярных механизмов, лежащих в основе подобных систем экспрессии, также представляется актуальным.

Цель и задачи исследования

Целью данной работы является расшифровка молекулярных механизмов участия ядерно-цитоплазматического и межклеточного транспорта макромолекул в бактериальном и вирусном патогенезе растений, а также создание на их основе биотехнологической платформы продукции фармацевтических белков.

Для достижения вышеописанной цели поставлены следующие задачи:

1. Создать экспериментальную модель экспорта РНК из ядра растительной клетки.

2. Изучить молекулярные механизмы и создать концепцию участия ядерного транспорта макромолекул в бактериальном и вирусном патогенезе растений.

3. Разработать экспериментальную модель модификации межклеточного транспорта макромолекул в листьях растений с использованием газообразного метанола.

4. Исследовать молекулярные механизмы и роль транспорта макромолекул в иммунитете растений и создать концепцию конкуренции макромолекул хозяина и патогена на уровне ядерно-цитоплазматического и межклеточного транспорта за общие рецепторы или белки переносчики.

5. Разработать биотехнологические основы эффективной продукции вакцин и антител в растении.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

выводы.

1. Разработана экспериментальная модель экспорта РНК из ядра растительной клетки, позволяющая исследовать перемещение в цитоплазму молекул коротких некодирующих РНК, синтезированных в ядре ДНК-зависимыми РНК-полимеразами I, II и III.

2. С помощью разработанной системы, был открыт новый механизм конкуренции за ядерный экспорт между кнРНК и кмРНК, с одной стороны, и другими более длинными мРНК, с другой стороны, характеризующийся следующими свойствами: а) экспорт из ядра в цитоплазму молекул РНК, синтезируемых в ядре РНК-полимеразой I, II или III, самостоятелен и не зависит друг от другаб) конкуренция приводит к подавлению синтеза в цитоплазме репортерного белка GFP и клеточного белка BiPв) ингибирование экспрессии мРНК не связано с конкуренцией промоторов Pol II35S за РНК-полимеразу II, но напрямую зависит от длины транскрипта и «силы» транскрипционного промотораг) молекулы кнРНК, синтез которых в ядре направляется РНК-полимеразами I или III, не оказывают влияния на экспрессию мРНКд) синтез в ядре кнРНК или кмРНК создает благоприятные условия для репродукции в цитоплазме вирусного вектора.

3. Разработана концепция конкуренции макромолекул на этапе ядерного транспорта в бактериальном и вирусном патогенезе растений.

4. Создана новая экспериментальная функциональная модель межклеточного транспорта, основанная на открытии важной роли метанола в жизни растений и его участии в: а) контроле генов, регулирующих устойчивость растений к абиотическим и биотическим факторамб) передаче сигнала от растения к растению, приводящего к мобилизации защитных реакций растенияв) межклеточном транспорте макромолекулг) создании условий, благоприятных для репродукции вирусовд) создании условий, препятствующих бактериальной колонизации.

5. Изучены молекулярные механизмы и определена роль транспорта макромолекул в иммунитете растений, создана концепция конкуренции макромолекул хозяина и патогена на уровне ядерно-цитоплазматического и межклеточного транспорта за общие рецепторы и/или белки переносчики.

6. Разработана технологическая основа эффективной продукции вакцин и антител в растении, основанная на выявленных закономерностях ядерно-цитоплазматического и межклеточного транспорта макромолекул в растении.

БЛАГОДАРНОСТИ.

В первую очередь хочу выразить искреннюю благодарность своему научному консультанту, учителю и наставнику, Дорохову Юрию Леонидовичу, за чуткое руководство, вдохновение, поддержку, а также за неоценимую помощь в подготовке материалов для публикаций и диссертации.

Хочу поблагодарить коллег, внесших весомый вклад в данную работу, в том числе Фролову Ольгу Юрьевну за огромную помощь в проведении исследований и обработке полученных данныхШеваля Евгения Валерьевича за техническую поддержку в экспериментах с использованием микроскопииЗиновкина Романа Алексеевича и Савченко Ирину Михайловну за проведение ОТ-ПЦР-РВСкулачева Максима Владимировича, Звереву Анну Сергеевну, Шварца Антона Марковича, Шевелеву Анну Александровну, Макарова Александра Алексеевича, Иванова Петра Алексеевича за помощь в получении генноинженерных конструкций и рекомбинантных белков, а также проведении экспериментовТашлицкого Вадима Нероновича, Кирьянова Глеба Ивановича и Смирнову Екатерину Анатольевну за проведение измерений концентраций ЛОСКрейга Пикарда, Хильдбург Бейер и Анну Саймон за предоставленные конструкцииВиталия Цитовского и Юрия Глебу за помощь в подготовке публикаций. Хочу выразить особую благодарность коллективу лаборатории трансгенных препаратов РОНЦ имени Н. Н. Блохина и ее руководителю, Косорукову Вячеславу Станиславовичу, за помощь в работе с моноклональными антителами. Хочу поблагодарить всех коллег и сотрудников кафедры вирусологии МГУ, а также заведующего кафедрой, Иосифа Григорьевича Атабекова.

И в заключение, выражаю огромную благодарность членам коллектива, Петруне Игорю Валерьевичу, Поздышеву Денису Валерьевичу, Шиндяпиной Анастасии Валерьевне, Фроловой Нине Николаевне и Шешуковой Екатерине Владимировне за ежедневную совместную плодотворную работу, теплую атмосферу, а также за помощь и поддержку.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ahlquist P, French R, Janda M, Loesch-Fries S. (1984) Multicomponent RNA plant virus infection derived from cloned viral cDNA. Proc. Natl Acad. Sci. USA 81, 7066−7070.
  2. M., Jehle A.K., Lipschis M., Mueller K., Zeng Y., Felix G. (2010) Regulation of cell behaviour by plant receptor kinases: Pattern recognition receptors as prototypical models. Eur. J. Cell Biol. 89: 200−207.
  3. Arimura, G., Ozawa, R., Shimoda, T., Nishioka, T., Boland, W., & Takabayashi, J. (2000). Herbivory-induced volatiles elicit defence genes in Lima bean leaves. Nature, 406 (6795), 512−515.
  4. Attaran, E., Zeier, T. E., Griebel, T., & Zeier, J. (2009). Methyl salicylate production and jasmonate signaling are not essential for systemic acquired resistance in Arabidopsis. The Plant Cell, 21(3), 954−971.
  5. F. M. (2005) Are innate immune signaling pathways in plants and animals conserved? Nature Immunol. 6, 973−979.
  6. Azhakanandam K, Weissinger SM, Nicholson JS, Qu R, Weissinger AK. (2007) Amplicon-plus targeting technology (APTT) for rapid production of a highly unstable vaccine protein in tobacco plants. Plant Mol. Biol. 63, 393−404.
  7. Balandin, T., Van Der Does, C., Albert, J. M., Bol, J. F., & Linthorst, H. J. (1995). Structure and induction pattern of a novel proteinase inhibitor class II gene of tobacco. Plant Molecular Biology, 27(6), 1197−1204.
  8. , I. T. (2010). Plant volatiles. Current Biology, 20(9), 392−397.
  9. , N. J., & Rothstein, S. J. (1998). C6-volatiles derived from the lipoxygenase pathway induce a subset of defense-related genes. The Plant Journal, 16(5), 561−569.
  10. Baulcombe DC, Chapman S, Santa Cruz S. (1995) Jellyfish green fluorescent protein as a reporter for virus infections. Plant J. 7, 1045−1053.
  11. Bazzini AA, Hopp HE, Beachy RN, Asurmendi S. (2007) Infection and coaccumulation of tobacco mosaic virus proteins alter microRNA levels, correlating with symptom and plant development. Proc Natl Acad Sci USA 104: 12 157−12 162.
  12. Bazzini AA, Manacorda CA, Tohge T, Conti G, Rodriguez MC, Nunes-Nesi A, Villanueva S, Fernie AR, Carrari F, Asurmendi S. (2011) Metabolic and miRNA profiling of TMV infected plants reveals biphasic temporal changes. PLoS One. 6 (12):e28466.
  13. Beauchemin C, Bougie V, Laliberte JF. (2005)Simultaneous production of two foreign proteins from a potyvirus-based vector. Virus Res. 112, 1−8.
  14. Benitez-Alfonso Y, Faulkner C, Ritzenthaler C, Maule AJ. (2010) Plasmodesmata: gateways to local and systemic virus infection. Mol Plant Microbe Interact. 23(11): 1403−1412.
  15. Benitez-Alfonso Y., Jackson D. (2009) Redox homeostasis regulates plasmodesmal communication in Arabidopsis meristems. Plant Signal Behav. 4: 655−659.
  16. Bertsch, C., M. Beuve, V.V. Dolja, M. Wirth, F. Pelsy, E. Herrbach & O. Lemaire. (2009) Retention of the virus-derived sequences in the nuclear genome of grapevine as a potential pathway to virus resistance. Biology Direct A:21 .
  17. M.W., Flavell R.B., Chilton M.D. (1983) A chimeric antibiotic resistance gene as a selectable marker for plant cell transformation. Nature. 304: 184−187.
  18. V., Meier S., Petersen L.N., Ingle R.A., Roden L.C. (2011) Defence Responses of Arabidopsis thaliana to Infection by Pseudomonas syringae Are Regulated by the Circadian Clock. PLoS ONE. 6(10): e26968.
  19. H., Cossart P. (2012) When bacteria target the nucleus: the emerging family of nucleomodulins. Cell Microbiol. 14(5): 622−633.
  20. G. (1985) Gene gating: a hypothesis. Proc Natl Acad Sci USA. 82(24): 8527−8529.
  21. A., Alfano J.R. (2011) Plant targets for Pseudomonas syringae type III effectors: virulence targets or guarded decoys. Curr Opin Microbiol. 14(1): 39−46.
  22. Block A., Li G., Fu Z.Q., Alfano J.R. (2008) Phytopathogen type III effector weaponry and their Plant targets. Curr Opin Plant Biol 11: 396 403.
  23. J. & Bonas U. (2010) Xanthomonas AvrBs3 family type III effectors: discovery and function. Annu Rev Phytopathol. 48: 419−436.
  24. Boch J., Scholze H., Schornack S., Landgraf A., Hahn S., Kay S., Lahaye T., Nickstadt A., Bonas U. (2009) Breaking the code of DNA binding specificity of TAL-type III effectors. Science. 326: 1509−1512.
  25. A.J., Schornack S. & Lahaye T. (2010) TAL effectors: finding plant genes for disease and defense. Curr Opin Plant Biol. 13:394−401.
  26. T. & Felix G. (2009) A renaissance of elicitors: perception of microbe-associated molecular patterns and danger signals by patternrecognition receptors. Annu. Rev. Plant Biol. 60: 379−406.
  27. Boiler T. and Felix G. (2009) A renaissance of elicitors: perception of microbe-associated molecular patterns and danger signals by patternrecognition receptors. Annu. Rev. Plant Biol. 60: 379406.
  28. Brigneti, G., Voinnet, O., Li, W.-X., Ji, L.-PI., Ding, S.-W., & Baulcombe, D. C. (1998). Viral pathogenicity determinants are suppressors of transgene silencing in Nicotiana benthamiana. EMBOJ. 17:6739−6746.
  29. D. M., Bender C. L. & Kunkel B. N. (2005) The Pseudomonas syringae phytotoxin coronatine promotes virulence by overcoming salicylic acid-dependent defences in Arabidopsis thaliana. Mol. Plant Pathol. 6: 629−640.
  30. Brugidou, C., Opalka, N., Yeager, M., Beachy, R. N., & Fauquet, C. (2002). Stability of Rice yellow mottle virus and cellular compartmentalization during the infection process in Oryza sativa (L.). Virology, 297(1), 98−108.
  31. Bucher GL, Tarina C, Heinlein M, Di Serio F, Meins F, Jr., Iglesias VA. (2001) Local expression of enzymatically active class I beta-1,3-glucanase enhances symptoms of TMV infection in tobacco. Plant J. 28: 361 369.
  32. , J. A. (1992). Attraction of bark beetles, Tomicus piniperda, Hylurgops palliatus, and Ttypodendron domesticum and other insects to short-chain alcohols and monoterpenes. Journal of Chemical Ecology, 18(12), 2385−2402.
  33. J., Marino D., Jauneau A., Pouzet C., Briere C., Roby D. & Rivas S. (2011) The Xanthomonas type III effector XopD targets the Arabidopsis transcription factor MYB30 to suppress plant defense. Plant Cell. 23: 3498−3511.
  34. Cao F.Y., Yoshioka K., Desveaux D. J. (2011) The roles of ABA in plant-pathogen interactions. Plant Res. 124(4): 489−499.
  35. Capelson M, Liang Y, Schulte R, Mair W, Wagner U, Hetzer MW. (2010) Chromatin-bound nuclear pore components regulate gene expression in higher eukaryotes. Cell. 140:372−383.
  36. , S. P. (1949). The movement of tobacco mosaic viruses and potato virus X through tomato plants. Annals of Applied Biology, 36(3), 307−319.
  37. Carr, J. P., Lewsey, M. G., & Palukaitis, P. (2010). Signaling in induced resistance. Advances in Virus Research, 76, 57−121.
  38. Castle, S. J., Mowry, T. M., & Berger, P. H. (1998). Differential settling by Myzus persicae (Homoptera: Aphididae) on various virus infected host plants. Annals of the Entomological Society of America, 91(5), 661−667.
  39. B.A., Longo D.L. (2001) Cancer Chemotherapy and Biotherapy: Principles and Practice.-3rd ed., Philadelphia: Lippincott.-Raven, 678−699.
  40. , P. C. (1970). Subliminal infection of cotton by tobacco mosaic virus. Journal of Phytopathology, 60, 4146.
  41. D., Bauer Z., Regenass M., Boiler T. & Felix G. (2006) The Arabidopsis receptor kinase FLS2 binds flg22 and determines the specificity of flagellin perception. Plant Cell. 8: 465−476.
  42. Chisholm S. T., Coaker G., Day B. & Staskawicz B. J. (2006) Host-microbe interactions: shaping the evolution of the plant immune response. Cell. 124: 803−814.
  43. R., Tomchick D.R., Brautigam C.A., Mukherjee S., Negi V.S., Machius M. & Orth K. (2007) Structural analysis ofXanthomonas XopD provides insights nto substrate specificity of ubiquitin-like protein proteases. J Biol Chem. 282: 6773−6782.
  44. Choudhary, D. K., Johri, B. N., & Prakash, A. (2008). Volatiles as priming agents that initiate plant growth and defence responses. Current Science, 94(5), 595−604.
  45. M., Cermak T., Doyle E.L., Schmidt C., Zhang F., Hummel A., Bogdanove A.J., Voytas D.F. (2010) Targeting DNA doublestrand breaks with TAL effector nucleases. Genetics. 186: 757−761.
  46. Citovsky V., Kozlovsky S.V., Lacroix B., Zaltsman A., Dafny-Yelin M., Vyas S., Tovkach A., Tzfira T. (2007) Biological systems of the host cell involved in Agrobacterium infection. Cell Microbiol. 9: 9−20.
  47. Citovsky, V., Knorr, D., Schuster, G., & Zambryski, P. (1990). The P-30 protein of tobacco mosaic virus is a single-strand nucleic acid binding protein. Cell, 60(4), 637−647.
  48. S.M., Moffett P. (2009) NB-LRRs work a 'bait and switch' on pathogens. Trends Plant Sci. 14: 521−529.
  49. Y.M. & Gelvin S.B. (2007) RNAi-mediated gene silencing reveals involvement of Arabidopsis chromatinrelated genes in Agrobacterium-mediated root transformation. Proc Natl Acad Sci USA. 104: 15 156−15 161.
  50. Crawford KM, Zambryski PC. (2000) Subcellular localization determines the availability of non-targeted proteins to plasmodesmatal transport. Curr Biol. 10:1032−1040.
  51. Cremer T, Cremer M. (2010) Chromosome territories. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2(3):a003889.
  52. S., Lindeberg M., Collmer A. (2009) Pseudomonas syringae type III secretion system effectors: repertoires in search of functions. Curr Opin Microbiol. 12: 53−60.
  53. D’Auria JC, Pichersky E, Schaub A, Hansel A, Gershenzon J. (2007) Characterization of a BAHD acyltransferase responsible for producing the green leaf volatile (Z)-3-hexen-l-yl acetate in Arabidopsis thaliana. Plant J. 49:194−207.
  54. Dader, B., Moreno, A., Vinuela, E., & Fereres, A. (2012). Spatiotemporal dynamics of viruses are differentially affected by parasitoids depending on the mode of transmission. Viruses, 4(11), 3069−3089.
  55. J.L. & Jones J.D. (2001) Plant pathogens and integrated defence responses to infection. Nature. 411: 826−833.
  56. T., Fuqua C. (2007) Biofilm formation by plant associated bacteria. Annual Review of Microbiology. 61: 401−422.
  57. De Vos, M., & Jander, G. (2010). Volatile communication in plant-aphid interactions. Current Opinion in Plant Biology, 13(4), 366−371.
  58. DebRoy S., Thilmony R., Kwack Y.B., Nomura K., He S.Y. (2004) A family of conserved bacterial effectors inhibits salicylic acid-mediated basal immunity and promotes disease necrosis in plants. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101: 9927−9932.
  59. Desclos-Theveniau M., Arnaud D., Huang T.Y., Lin G.J., Chen W.Y., Lin Y.C., Zimmerli L. (2012) The Arabidopsis lectin receptor kinase LecRK-V.5 represses stomatal immunity induced by Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000. PLoSPathog. 8(2):el002513.
  60. Deslandes L, Rivas S. (2012) Catch me if you can: bacterial effectors and plant targets. Trends Plant Sci. 17(11):644−55.
  61. A., Pitzschke A., Nakagami H., Rajh I., Hirt H. (2007) Trojan horse strategy in Agrobacterium transformation: abusing MAPK defense signaling. Science. 318: 453−456.
  62. P.N., Rathjen J.P. (2010) Plant immunity: Towards an integrated view of plant-pathogen interactions. Nat. Rev. Genet. 11: 539−548.
  63. Doelling JH, Pikaard CS. (1996) Species-specificity of rRNA gene transcription in plants manifested as a switch in RNA polymerase specificity. Nucleic Acids Res. 24:4725^1732.
  64. Dohi K, Tamai A, Mori M. (2008) Insertion in the coding region of the movement protein improves stability of the plasmid encoding a tomato mosaic virus-based expression vector. Arch Virol. 153(9): 1667−75.
  65. Dolja W, McBride HJ, Carrington JC. (1992) Tagging of plant potyvirus replication and movement by insertion of b-glucuronidase into the viralpolyprotein. Proc. Natl Acad. Sci. USA 89, 10 208−10 212.
  66. Dong X., Hong Z., Chatterjee J., Kim S., Verma D.P. (2008) Expression of callose synthase genes and its connection with Nprl signaling pathway during pathogen infection. Planta. 229: 87−98.
  67. Y.L., Ivanov P.A., Komarova T.V., Skulachev M.V. & Atabekov J.G. (2006 a) An internal ribosome entry site located upstream of the crTMV coat protein (CP) gene can be used for CP synthesis in vivo. Journal of General Virology, 87: 2693−2697.
  68. Dorokhov, Y. L., Alexandrova, N. M., Miroshnichenko, N. A., & Atabekov, J. G. (1983). Isolation and analysis of virus-specific ribonucleoprotein of tobacco mosaic virus-infected tobacco. Virology, 127(2), 237−252.
  69. Dou D., Zhou J.M. (2012) Phytopathogen effectors subverting host immunity: different foes, similar battleground. Cell Host Microbe. 12(4): 484−495.
  70. , N., & Pichersky, E. (2008). Metabolic engineering of plant volatiles. Current Opinion in Biotechnology, 19(2), 181−189.
  71. Dudareva, N., Negre, F., Nagegowda, D. A., & Orlova, I. (2006). Plant volatiles: recent advances and future perspectives. Critical Reviews in Plant Sciences, 25(5), 417−440.
  72. Dudareva, N., Pichersky, E., & Gershenzon, J. (2004). Biochemistry of plant volatiles. Plant Physiology, 135(4), 1893−1902.
  73. W.E. & Dong X. (2004) Systemic acquired resistance. Annu. Rev. Phytopathol. 42: 185−209.
  74. L. & Riedel K. (2011) Mining quorum sensing regulated proteins Role of bacterial cell-to-cell communication in global gene regulation as assessed by proteomics. Proteomics. 11: 3070−3085.
  75. K. & Kollmann R. (2001) Primary and secondary plasmodesmata: structure, origin, and functioning. Protoplasma. 216: 1−30.
  76. Elmore J.M., Lin Z.J., Coaker G. (2011) Plant NB-LRR signaling: upstreams and downstreams. Curr Opin Plant Biol. 14: 365−371.
  77. Engelberth, J., Alborn, H. T., Schmelz, E. A., & Tumlinson, J. H.2004). Airborne signals prime plants against insect herbivore attack. Proc Nat AcSci USA, 101(6), 1781−1785.
  78. Engler C, Gruetzner R, Kandzia R, Marillonnet S. (2009) Golden gate shuffling: a one-pot DNA shuffling method based on type lis restriction enzymes. PLoS One 4: e5553.
  79. Farag, M. A., Fokar, M., Zhang, H., Allen, R. D., & Pare, P. W.2005). (Z)-3-hexenol induces defense genes and downstream metabolites in maize. Planta, 220(6), 900−909.
  80. , E. E., & Ryan, C. A. (1990). Interplant communication— airborne methyl jasmonate induces synthesis of proteinase-inhibitors in plant leaves. Proc Natl Acad Sci USA, 87(19), 7713−7716.
  81. F., Zhou J.M. (2012) Plant-bacterial pathogen interactions mediated by type III effectors. Curr Opin Plant Biol. 15(4): 469−476.
  82. Fogh J., Fogh JM, Orfeo T. (1977) One hundred and twenty-seven cultured human tumor cell lines producing tumors in nude mice. J. Natl. Cancer Inst. 59: 221−226.
  83. S., Bennett M., Grant M., Mansfield J.W. (2010) Rapid linkage of indole carboxylic acid to the plant cell wall identified as a component of basal defence in Arabidopsis against hrp mutant bacteria. Phytochemistry. 71(8−9): 870−876.
  84. , A., & Garcia-Arenal, F. (2010). The coevolution of plants and viruses: resistance and pathogenicity. Advances in Virus Research, 76, 132.
  85. Fraley R. T, Rogers S.G., Horsch R.B., Sanders P.R., Flick J.S., Adams S.P., Bittner M.L., Brand L.A., Fink C.L., Fry J.S., et al. (1983) Expression of bacterial genes in plant cells. Proc Natl Acad Sci USA. 80: 4803−4807.
  86. Frost, C. J., Mescher, M. C., Dervinis, C., Davis, J. M., Carlson, J. E., & De Moraes, C. M. (2008). Priming defense genes and metabolites in hybrid poplar by the green volatile cis-3-hexenyl acetate. The New Phytologist, 180(3), 722−734.
  87. K.L. & Benfey P.N. (2005) Not just another hole in the wall: understanding intercellular protein trafficking. Genes Dev. 19: 189−195.
  88. Gallagher KL, Benfey PN. (2009) Both the conserved GRAS domain and nuclear localization are required for SHORT-ROOT movement. Plant J. 57(5):785−797.
  89. Garcia-Rodriguez F.M., Schrammeijer B. & Hooykaas P.J. (2006) The Agrobacterium VirE3 effector protein: a potential plant transcriptional activator. Nucleic Acids Res. 34: 6496−6504.
  90. Garrett JT, Rawale S, Allen SD, Phillips G, Forni G, Morris JC, Kaumaya PT. (2007) Novel engineered trastuzumab conformational epitopes demonstrate in vitro and in vivo antitumor properties against HER-2/neu. J Immunol 178: 7120−7131
  91. Geibler R., Scholze H., Hahn S., Streubel J., Bonas U., Behrens S.-E. & Boch J. (2011) Transcriptional activators of human genes with programmable DNA-specificity. PLoS ONE. 6: el9509.
  92. S.B. (2010) Plant proteins involved in Agrobacterium mediated genetic transformation. Annu Rev Phytopathol. 48: 45−68.
  93. Georgiev M.I., Agostini E., Ludwig-Muller J., Xu J. (2012) Genetically transformed roots: from plant disease to biotechnological resource. Trends Biotechnol. 30(10): 528−537.
  94. Geyer PK, Vitalini MW, Wallrath LL. (2011) Nuclear organization: taking a position on gene expression. Curr Opin Cell Biol. 23(3):354−9.
  95. Gibbs A J, Fargette D, Garcia- Arenal F, Gibbs MJ (2010) Time -the emergingdimension of plant virus studies. J Gen Virol. 91: 13−22
  96. Giritch A, Marillonnet S, Engler C, van Eldik G, Botterman J, Klimyuk V. & Gleba Y. (2006) Rapid high-yield expression of full-size IgGantibodies in plants coinfected with noncompeting viral vectors. Proc. Natl Acad. Sei. USA 103, 14 701−14 706.
  97. J. (2005) Contrasting mechanisms of defense against biotrophic and necrotrophic pathogens. Annu. Rev. Phytopathol. 43: 205−227.
  98. Gieba Y, Klimyuk V, Marillonnet S. (2005) Magnifection A new platform for expressing recombinant vaccines in plants. Vaccine 23, 2042−2048.
  99. Gieba Y, Klimyuk V, Marillonnet S. (2007)Viral vectors for the expression of proteins in plants. Curr. Opin. Biotechnol. 18, 134−141.
  100. Gomez-Gomez L. & Boller T. (2002) Flagellin perception: a paradigm for innate immunity. Trends Plant Sei. 7: 251−256.
  101. Gopinath K, Wellink J, Porta C, Taylor KM, Lomonossoff GP, van Kammen A. (2000) Engineering cowpea mosaic virus RNA-2 into a vector to express heterologous proteins in plants. Virology 267, 159−173.
  102. Gout, E., Aubert, S., Bligny, R., Rebeille, F., & Nonomura, A. R. (2000). Metabolism of methanol in plant cells. Carbon-13 nuclear magnetic resonance studies. Plant Physiology. 123(1), 287−296.
  103. Green BJ, Fujiki M, Mett V, Kaczmarczyk J, Shamloul M, Musiychuk K, Underkoffler S, Yusibov V, Mett V. (2009) Transient protein expression in three Pisum sativum (green pea) varieties. Biotechnol. J. 4, 230 237.
  104. J. T. & Yao N. (2004) The role and regulation of programmed cell death in plant-pathogen interactions. Cell. Microbiol. 6: 201−211.
  105. J.T. & Yao N. (2004) The role and regulation of programmed cell death in plant-pathogen interactions. Cell Microbiol. 6: 201 211.
  106. Gregory P. Pogue and Steven Holzberg (2012) Transient Virus Expression Systems for Recombinant Protein Expression in Dicot- and
  107. Monocotyledonous Plants, Plant Science, Dr. Nabin Kumar Dhal (Ed.), ISBN: 978−953−51−0905−1.
  108. M., Schellenberg B., Bachmann A.S., Archer C.R., Huber R., Powell T.K., Lindow S., Kaiser M., Dudler R. (2008) A plant pathogen virulence factor inhibits the eukaryotic proteasome by a novel mechanism. Nature. 452: 755−758.
  109. G.E., Torres P. S., Vojnov A.A. (2009) Stomata and pathogens. Warfare at the gates. Plant Signal Behav. 4(12): 1114−1116.
  110. G.E., Torres P. S., Vojnov A.A. (2009) Xanthomonas campestris overcomes Arabidopsis stomatal innate immunity through a DSF cell-to-cell signal-regulated virulence factor. Plant Physiol. 149: 1017−1027.
  111. R.W., Nemchinov L.G. (2009) Plant production of veterinary vaccines and therapeutics. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 332: 79 102.
  112. Hanssen, I.M., Lapidot, M., & Thomma, B.P. (2010). Emerging viral diseases of tomato crops. Molecular Plant-Microbe Interactions. 23(5), 539−48.
  113. I-Iauck P., Thilmony R., He S.Y. (2003) A Pseudomonas syringae type III effector suppresses cell wall-based extracellular defense in susceptible Arabidopsis plants. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100: 8577−8582.
  114. Haviv S, Galiakparov N, Goszczynski DE, Batuman O, Czosnek H, Mawassi M. (2006) Engineering the genome of Grapevine virus A into a vector for expression of proteins in herbaceous plants. J Virol Methods. 132:227−231.
  115. V., Kragler F., Lucas W.J. (2002) Plasmodesmata: pathways for protein and ribonucleoprotein signaling. Plant Cell. 14: S303-S325.
  116. , M. (2009). Damaged-self recognition in plant herbivore defence. Trends in Plant Science, 14(7), 356−63.
  117. , M., & Adame-Alvarez, R. M. (2010). Short signalling distances make plant communication a soliloquy. Biology Letters, 6(6), 843 845.
  118. Herrera-Estrella L., DeBlock M., Messens E., Hernalsteens J.P., VanMontagu M., Schell J. (1983) Chimeric genes as dominant selectable markers in plantcells. EMBOJ. 2: 987−996.
  119. JA. (2007) RNA viruses: hijacking the dynamic nucleolus. Nat Rev Microbiol. 5(2): 119−27.
  120. Flocine S, Singer RH, Grunwald D. (2010) RNA processing and export. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2(12):a000752.
  121. Hoekema A., Hirsch P. R., Hooykaas P. J. J. & Schilperoort R. A. (1983) A binary plant vector strategy based on separation of vir- and T-region of the Agrobacterium tumefaciens Ti-plasmid. Nature. 303: 179−180.
  122. , J .K., & Blande, J. D. (2012). Molecular plant volatile communication. Advances in Experimental Medicine and Biology, 739, 17−31.
  123. , J.K. (2004). Multiple functions of inducible plant volatiles. Trends in Plant Science, 9(11), 529−533.
  124. Hotson A., Chosed R., Shu H., Orth K. & Mudgett M.B. (2003) Xanthomonas type III effector XopD targets SUMOconjugated proteins in planta. Mol Microbiol. 50: 377−389.
  125. E.A., Zupan J.R., Citovsky V. & Zambryski P.C. (1992) The VirD2 protein of A. tumefaciens contains a C-terminal bipartite nuclear localization signal: implications for nuclear uptake of DNA in plant cells. Cell. 68: 109−118.
  126. Hyun IX, Uddin MN, Rim Y, Kim JY. (2011) Cell-to-cell trafficking of RNA and RNA silencing through plasmodesmata. Protoplasma. 248(1):101−16.
  127. Ingwell, L. L., S. D. Eigenbrode, Nilsa A. Bosque-Perez (2012). Plant viruses alter insect behavior to enhance their spread. Sei. Rep. 2: 578.
  128. J.D., Dangl J.L. (2006) The plant immune system. Nature. 444: 323−329.
  129. Karban, R., Maron, J., Felton, G. W., Ervin, G., & Eichenseer, H. (2003). Herbivore damage to sagebrush induces resistance in wild tobacco: evidence for eavesdropping between plants. Oikos, 100(2), 325−332.
  130. Karban, R., Shiojiri, K., Huntzinger, M., & McCall, A. C. (2006). Damage-induced resistance in sagebrush: volatiles are key to intra- and interplant communication. Ecology, 87(4), 922−930.
  131. F. & Tsuda K. (2010) Understanding the plant immune system. Mol. Plant Microbe Interact. 23: 1531−1536.
  132. Kay S., Hahn S., Marois E., Hause G. & Bonas U. (2007) A bacterial effector acts as a plant transcription factor and induces a cell size regulator. Science. 318: 648−651.
  133. Kelloniemi J, Makinen K, Valkonen JP. (2008) Three heterologous proteins simultaneously expressed from a chimeric potyvirus: infectivity, stability and the correlation of genome and virion lengths. Virus Res. 135, 282−291.
  134. Kenneth G. Karoll, Richard M. McCourt2, Matthew T. Cimino, Charles F. Delwiche. (2001) The closest living relatives of land plants. Science. 294: 2351−2353.
  135. , A., & Baldwin, I. T. (2002). Plant responses to insect herbivory: The emerging molecular analysis. Annual Review of Plant Biology, 53, 299−328.
  136. Kessler, A., Halitschke, R., Diezel, C., & Baldwin, I. T. (2006). Priming of plant defense responses in nature by airborne signaling between Artemisia tridentate and Nicotiana attenuata. Oecologia, 148(2), 280−292.
  137. C.H., Berruyer R., Giraldo M.C., Kankanala P., Park S.Y., Czymmek K., Kang S., Valent B. (2010) Translocation of Magnaporthe oryzae effectors into rice cells and their subsequent cell-to-cell movement. Plant Cell. 22: 1388−1403.
  138. Kim J.-G., Taylor K.W., Hotson A., Keegan M., Schmelz E.A. & Mudgett M.B. (2008) XopD SUMO protease affects host transcription, promotes pathogen growth, and delays symptom development in xanthomonas-infected tomato leaves. Plant Cell. lQ: 1915−1929.
  139. Kishimoto, K., Matsui, K., Ozawa R., & Takabayashi, J. (2005). Volatile C6-aldehydes and allo-ocimene activate defense genes and induce resistance against Botrytis cinerea in Arabidopsis thaliana. Plant and Cell Physiology, 46(7), 1093−1102.
  140. D. Y., Tamaki S. J. & Keen N. T. (1989) Cloned avirulence genes from the tomato pathogen Pseudomonas syringae pv. tomato confer cultivar specificity on soybean. Proc. Natl Acad. Sei. USA. 86: 157 161.
  141. Komarova TV, Skulachev MV, Zvereva AS, Schwartz AM, Dorokhov YL, Atabekov JG. (2006) New viral vector for efficient production of target proteins in plants. Biochemistty (Mose). 71(8):846−50.
  142. Kumar S, Ochoa W, Singh P, Hsu C, Schneemann A, Manchester M, Olson M, Reddy V. (2009) Tomato bushy stunt virus (TBSV), a versatileplatform for polyvalent display of antigenic epitopes and vaccine design. Virology 388, 185−190.
  143. Lacroix B., Loyter A., and Citovsky V. (2008) Association of the Agrobacterium T-DNA-protein complex with plant nucleosomes. Proc Natl AcadSci USA. 105: 15 429−15 434.
  144. , U.R. (1970). Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature, 227, 680−685.
  145. Lai H, Engle M, Fuchs A, Keller T, Johnson S, Gorlatov S, Diamond MS, Chen Q (2010) Monoclonal antibody produced in plants efficiently treats West Nile virus infection in mice. Proc Natl Acad Sci USA 107: 2419−2424.
  146. C. & Dixon R.A. (1997) The oxidative burst in plant disease resistance. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 48: 251−275.
  147. Laothawornkitkul, J., Taylor, J. E., Paul, N. D., & Hewitt, C. N. (2009). Biogenic volatile organic compounds in the Earth system. The New Phytologist- 183(1), 27−51.
  148. J.S., Curtis W.R. (2012) RNA viral vectors for improved Agrobacterium-mediated transient expression of heterologous proteins in Nicotiana benthamiana cell suspensions and hairy roots. BMC Biotechnol. 12:21.
  149. Lee L.Y., Gelvin S.B. (2008) T-DNA binary vectors and systems. Plant Physiol. 146: 325−332.
  150. Lee M.W., Jelenska J., Greenberg J.T. (2008) Arabidopsis proteins important for modulating defense responses to Pseudomonas syringae that secrete HopWl-1. Plant J. 54: 452−465.
  151. Lee, J. Y., & Lu, H. (2011). Plasmodesmata: the battleground against intruders. Trends in Plant Science, 16(4), 201−210.
  152. Lee, J. Y., Yoo, B. C., Rojas, M. R., Gomez-Ospina, N., Staehelin, L. A., & Lucas, W. J. (2003). Selective trafficking of non-cell-autonomous proteins mediated by NtNCAPPl. Science, 299(5605), 392−326.
  153. , S. M., & Turgeon, R. (1993). Movement of virus and photoassimilate in the phloem: a comparative analysis. BioEssays, 15(11), 741−748.
  154. Levy, A., Erlanger, M., Rosenthal, M., & Epel, B. L. (2007a). A plasmodesmata-associated beta-l, 3-glucanase in Arabidopsis. The Plant Journal, 49(4), 669−682.
  155. Levy, A., Guenoune-Gelbart, D., & Epel, B. L. (20 076). Beta-1,3-Glucanases:plasmodesmal gate keepers for intracellular communication. Plant Signaling and Behavior, 2(5), 404−407.
  156. Li J., Vaidya M., White C., Vainstein A., Citovsky V., and Tzfira T. (2005) Involvement of KU80 in T-DNA integration in plant cells. Proc Natl AcadSci USA. 102: 19 231−19 236.
  157. Li T., Huang S., Jiang W.Z., Wright D., Spalding M.H., Weeks D.P. & Yang, B. (2011) TAL nucleases (TALNs): hybrid proteins composed of TAL effectors and Fokl DNAcleavage domain. Nucleic Acids Res. 39: 359 372.
  158. Lico C, Chen Q, Santi L. (2008) Viral vectors for production of recombinant proteins in plants. J. Cell Physiol. 216, 366−377.
  159. C., Santi L., Twyman R.M., Pezzotti M., Avesani L. (2012) The use of plants for the production of therapeutic human peptides. Plant Cell Rep. 31(3): 439−451.
  160. Light WH, Brickner DG, Brand VR, Brickner JH. (2010) Interaction of a DNA zip code with the nuclear pore complex promotes H2A.Z. incorporation and INOl transcriptional memory. Mol Cell. 40:112 125.
  161. JA. (2007a) High-efficiency protein expression in plants from agroinfection-compatible Tobacco mosaic virus expression vectors. BMC Biotechnol. 7:52.
  162. Lindbo JA. TRBO: a high-efficiency tobacco mosaic virus RNA-based overexpression vector. Plant Physiol. (20 076) 145(4): 1232−40.
  163. M., Cunnac S., Collmer A. (2012) Pseudomonas syringae type III effector repertoires: last words in endless arguments. Trends Microbiol. 20(4): 199−208.
  164. Liu W, Zou P, Chen YH. (2004) Monoclonal antibodies recognizing EVETPIRN epitope of influenza A virus M2 protein could protect mice from lethal influenza A virus challenge. Immunol Lett. 93(2−3): 131−6.
  165. Liu, P. P., Von Dahl, C. C., & Klessig, D. F. (2011). The extent to which methyl salicylate is required for signaling systemic acquired resistance is dependent on exposure to light after infection. Plant Physiology, 157(4), 2216−2226.
  166. J. M., Shen H., Kobayashi D., Cooksey D. & Keen N. T. (1994) avrA and avrE in Pseudomonas syringae pv. tomato PT23 play a role in virulence on tomato plants. Mol. Plant Microbe Interact. 7: 208−215.
  167. T.J. & Lucas W.J. (2006) Integrative plant biology: role of phloem long-distance macromolecular trafficking. Annu. Rev. Plant Biol. 57: 203−232.
  168. W.J. & Lee J.Y. (2004) Plasmodesmata as a supracellular control network in plants. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 5: 712−726.
  169. Lukyanov SA, Gurskaya NG, Lukyanov KA, Tarabykin VS and Sverdlov ED (1994) Highly efficient subtractive hybridisation of cDNA. Russian Journal ofBioorganic Chemistiy. 20 (6):701−704.
  170. Ma K.-W., Flores C. & Ma W. (2011) Chromatin configuration as a battlefield in plant-bacteria interactions. Plant Physiol. 157: 535−543.
  171. Magori S., and Citovsky V. (2011) Epigenetic control of Agrobacteriam T-DNA integration. Biochim Biophys Acta. 1809: 388−394.
  172. A. (2012) RNA polymerase II transcription on the fast lane. Transcription. 3(l):29−34.
  173. Marillonnet S, Giritch A, Gils M, Kandzia R, Klimyuk V, Gleba Y. (2004) In planta engineering of viral RNA replicons: efficient assembly by recombination of DNA modules delivered by Agrobacterium. Proc. Natl Acad. Sci. USA m, 6852−6857.
  174. Marillonnet S, Thoeringer C, Kandzia R, Klimyuk V, Gleba Y. (2005) Systemic Agrobacterium tumefac/era-mediated transfection of viral replicons for efficient transient expression in plants. Nat. Biotechnol. 23, 718 723.
  175. Mauck, K. E., De Moraes, C. M., & Mescher, M. C. (2010a). Deceptive chemical signals induced by a plant virus attract insect vectors to inferior hosts. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 107(8), 3600−3605.
  176. Mauck, K. E., De Moraes, C. M., & Mescher, M. C. (20 106). Effects of Cucumber mosaic virus infection on vector and non-vector herbivores of squash. Communicative and Integrative Biology, 3(6), 579−582.
  177. , A.J. (2008) Plasmodesmata: structure, function and biogenesis. Curr. Opin. Plant Biol. 11, 680−686.
  178. A. (2012) Drug-Making Plant Blooms. Nature. 485:160.
  179. McCloskey A, Taniguchi I, Shinmyozu K, Ohno M. (2012) hnRNP C tetramer measures RNA length to classify RNA polymerase II transcripts for export. Science. 335(6076): 1643−1646.
  180. McCormick, C. A., Unsicker, S. B., & Gershenzon, J. (2012). The specificity of herbivore-induced plant volatiles in attracting herbivore enemies. Trends in Plant Science, 17(5), 303−310.
  181. McCullen C.A., Binns A.N. (2006) Agrobacterium tumefaciens and plant cell interactions and activities required for interkingdom macromolecular transfer. Annu Rev Cell Dev Biol. 22: 101−27.
  182. Mechtcheriakova IA, Eldarov MA, Nicholson L, Shanks M, Skryabin KG, Lomonossoff GP. (2006) The use of viral vectors to produce hepatitis B virus core particles in plants. J. Virol. Methods 131, 10−15.
  183. Melotto M., Underwood W., Koczan J., Nomura K., He SY. (2006) Plant stomata function in innate Immunity against bacterial invasion. Cell. 126: 969−980.
  184. , F. (2001). Pectin methylesterases: cell wall enzymes with important roles in plant physiology. Trends in Plant Science, 6(9), 414 419.
  185. Y., Matsuhita Y., Sakai R. (1987) Effect of coronatine on stomatal opening in leaves of braodbean and Italian ryegrass. Ann Phytopath Soc Japan. 53: 53−55.
  186. Moore MJ, Proudfoot NJ. (2009) Pre-mRNA processing reaches back to transcription and ahead to translation. Cell. 136(4):688−700.
  187. K.A., Takemoto J.Y. (1989) Syringomycin, a bacterial phytotoxin, closes stomata. Plant Physiol 90: 1435−1439.
  188. Moya, A., Holmes, E. C., & Gonzalez-Candelas, F. (2004). The population genetics and evolutionary epidemiology of RNA viruses. Nature Reviews Microbiology, 2, 279−288.
  189. Murad, L., K. Y. Kim, V. Christopodulou, R. Matyasek, C. P. Lichtenstein A. Kovarik. (2002) The origin of tobacco’s T genome is traced to a particular lineage within Nicotiana tomentosiformis (Solanaceae). American Journal of Botany. 89: 921 928 .
  190. Murad, L., J. P. Bielawski, R. Matyasek, A. Kovarik, R. A. Nichols, A. R. Leitch and C. P. Lichtenstein. (2004) The origin and evolution of geminivirus-related DNA sequences in Nicotiana. Heredity 92: 352 358.
  191. Negrouk V, Eisner G, Lee H, Han K, Taylor D, Wong H.C. (2005) Highly efficient transient expression of functional recombinant antibodies in lettuce. Plant Sci. 169, 433−438.
  192. Nemecek-Marshall, M., MacDonald, R. C., Franzen, J. J., Wojciechowski, C. L., & Fall, R. (1995). Methanol emission from leaves. Plant Physiology, 108, 1359−1368.
  193. Ng, J. C., & Falk, B. W. (2006). Virus-vector interactions mediating nonpersistent and semipersistent transmission of plant viruses. Annual Review of Phytopathology, 44, 183−212.
  194. Ngumbi, E., Eigenbrode, S. D., Bosque-Perez, N. A., Ding, H., & Rodriguez, A. (2007). Myzus persicae is arrested more by blends than by individual compounds elevated in headspace of PLRV-infected potato. Journal of Chemical Ecology, 33(9), 1733−1747.
  195. M.T., Dangl J.L. (2010) Arabidopsis and the plant immune system. Plant J. 61: 1053−1066.
  196. K., Melotto M. & He S. Y. (2005) Suppression of host defense in compatible pant-Pseudomonas syringae interactions. Curr. Opin. Plant Biol. 8: 361−368.
  197. , A., & Benson, A. (1992). The path of carbon in photosynthesis: improved crop yields with methanol. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 89(20), 97 949 798.
  198. Oh H.S., Park D.H., Collmer A. (2010) Components of the Pseudomonas syringae type III secretion system can suppress and may elicit plant innate immunity. Mol. Plant Microbe Interact. 23: 727−739.
  199. Opalka, N., Brugidou, C., Bonneau, C., Nicole, M., Beachy, R. N, Yeager, M., & Fauquet, C. (1998). Movement of Rice yellow mottle virus between xylem cells through pit membranes. Proc Natl Acad Sci USA, 95(6), 3323−3328.
  200. Otsus, M., Uffert, G., Somera, M., Paves, H., Olspert, A., Islamov, B., & Truve, E. (2012). Cocksfoot mottle sobemovirus establishes infection through the phloem. Virus Research, 166(1−2), 125−129.
  201. Pareja, M., Moraes, M. C., Clark, S. J., Birkett, M. A., & Powell, W. (2007). Response of the aphid parasitoid Aphidius funebris to volatiles from undamaged and aphid-infested Centaurea nigra. Journal of Chemical Ecology, 33(4), 695−710.
  202. Park, S. W., Kaimoyo, E., Kumar, D., Mosher, S., & Klessig, D. F. (2007). Methyl salicylate is a critical mobile signal for plant systemic acquired resistance. Science, 318(5847), 113−116.
  203. Paschold, A., Halitschke, R., & Baldwin, I. T. (2006). Using 'mute' plants to translate volatile signals. The Plant Journal, 45(2), 275−291.
  204. Pelloux, J., Rusterucci, C., & Mellerowicz, E. J. (2007). New insights into pectin methylesterase structure and function. Trends in Plant Science, 12(6), 267−277.
  205. , E., & Gershenzon, J. (2002). The formation and function of plant volatiles: perfumes for pollinator attraction and defense. Current Opinion in Plant Biology, 5(3), 237−243.
  206. Pichersky, E., Noel, J. P., & Dudareva, N. (2006). Biosynthesis of plant volatiles: nature’s diversity and ingenuity. Science, 311(5762), 808−811.
  207. Pieterse, C.M.J, Leon-Reyes, A, Van der Ent, S, and Van Wees, S.C.M 2009, Networking by small molecule hormones in plant immunity. Nature Chemical Biology, 5(5), 308−316.
  208. A., Hirt H. (2010) New insights into an old story: Agrobacterium-induced tumour formation in plants by plant transformation. EMBOJ. 29(6): 1021−1032.
  209. Pizarro-Cerda J. & Cossart P. (2006) Bacterial Adhesion and Entry into Host Cells. Cell. 124: 715−727.
  210. Qi Y., Tsuda K., Glazebrook J., Katagiri F. (2011) Physical association of pattern-triggered immunity (PTI) and effector-triggered immunity (ETI) immune receptors in Arabidopsis. Mol. Plant Pathol. 12: 702−708.
  211. J. E., Vesk M., Overall R. L. (1998) Callose deposition at plasmodesmata. Protoplasma. 201: 30−37.
  212. A.T., Chandran V., Waksman G. (2010) Two-step and one-step secretion mechanisms in Gram-negative bacteria: contrasting the type IVsecretion system and the chaperone-usher pathway of pilus biogenesis. Biochem J. 425(3): 475−488.
  213. Rinne P.L.H. & van der Schoot C. (2003) Plasmodesmata at the crossroads between development, dormancy, and defense. Can. J. Bot. 81: 1182−1197.
  214. S. (2012) Nuclear dynamics during plant innate immunity. Plant Physiol 158: 87−94.
  215. A.W. & Lucas W.J. (1990) Plasmodesmata. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 41: 369−419.
  216. A.G. & Oparka K.J. (2003) Plasmodesmata and the control of symplastic transport. Plant Cell Environ. 26: 103−124.
  217. L., Guttman D. S. & Dangl J. L. (2004) Diverse evolutionary mechanisms shape the type III effector virulence factor repertoire in the plant pathogen Pseudomonas syringae. Genetics. 167: 1341−1360.
  218. P., Hahn S., Jordan T., Strauss T., Bonas U. & Lahaye T. (2007) Plant pathogen recognition mediated by promoter activation of the pepper Bs3 resistance gene. Science. 318: 645−648.
  219. E.P., Chikwamba R., Koch M., Rhodes J.I., Groenewald J.H. (2012) Plant-made therapeutics: an emerging platform in South Africa. Biotechnol Adv. 30(2): 449−459.
  220. Ryu, C. M., Farag, M. A., Hu, C. H., Reddy, M. S., Kloepper, J. W., & Pare, P. W. (2004). Bacterial volatiles induce systemic resistance in Arabidopsis. Plant Physiol, 134(3), 1017−1026.
  221. Sainsbury F, Liu L, Lomonossoff GP. (2009) Cowpea mosaic virus-based systems for the expression of antigens and antibodies in plants. Methods Mol. Biol 483, 25−39.
  222. F., Lomonossoff G.P. (2008) Extremely high-level and rapid transient protein production in plants without the use of viral replication. Plant Physiol. 148: 1212−1218.
  223. Santa Cruz S, Chapman S, Roberts AG, Roberts IM, Prior DA, Oparka KJ. (1996) Assembly and movement of a plant virus carrying a green fluorescent protein overcoat. Proc. Natl Acad. Sci. USA 93, 6286−6290.
  224. B., Ramel C., Dudler R. (2010) Pseudomonas syringae virulence factor syringolin A counteracts stomatal immunity by proteasome inhibition. Mol Plant Microbe Interact. 23(10): 1287−1293.
  225. Schulze-Lefert P., Robatzek S. (2006) Plant Pathogenes Trick Guard Cells into Opening the Gates. Cell. 126: 831−834.
  226. Seco, R., Penuelas, J., & Filella, I. (2007). Short-chain oxygenated VOCs: Emission and uptake by plants and atmospheric sources, sinks, and concentrations. Atmospheric Environment, 41(12), 2477−2499.
  227. C. & Zipfel C. (2011) Activation of plant pattern recognition receptors by bacteria. Curr. Opin. Microbiol. 14: 54−61.
  228. Sels J, Mathys J, De Coninck BM, Cammue BP, De Bolle MF (2008) Plant pathogenesis-related (PR) proteins: a focus on PR peptides. Plant Physiol Biochem 46:941−950
  229. F.S., Doran P.M. (2007) Infection, propagation, distribution and stability of plant virus in hairy root cultures. J. Biotechnol. 131:318−329.
  230. F.S., Doran P.M. (2007) Propagation of plant viruses in hairy root cultures: a potential method for in vitro production of epitope vaccines and foreign proteins. Biotechnol. Bioeng. 96: 570−583.
  231. Shan L., Oh H.S., Chen J., Guo M., Zhou J., Alfano J. R, Collmer A., Jia X., Tang X. (2004) The HopPtoF locus of Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000 encodes a type III chaperone and a cognate effector. Mol Plant Microbe Interact. 17(5): 447−455.
  232. Shaw P, Brown J. (2012) Nucleoli: composition, function, and dynamics. Plant Physiol. 158(1):44−51.
  233. Shulaev, V., Silverman, P., & Raskin, I. (1997). Airborne signalling by methyl salicylate in plant pathogen resistance. Nature, 385, 718 721.
  234. Siebrasse JP, Kaminski T, Kubitscheck U. (2012) Nuclear export of single native mRNA molecules observed by light sheet fluorescence microscopy. Proc Natl Acad Sci USA. 109(24):9426−31.
  235. , R. N., & Scott, P. R. (2005). Plant disease: a threat to global food security. Annual Review of Phytopathology, 43, 83−116.
  236. S.J. (2007) Approaches to achieve high-level heterologous protein production in plants. Plant Biotechnol J. 5: 2−15.
  237. Sudarshana MR, Plesha MA, Uratsu SL, Falk BW, Dandekar AM, Huang TK, McDonald KA. (2006) A chemically inducible cucumber mosaic virus amplicon system for expression of heterologous proteins in plant tissues. Plant Biotechnol. J. 4, 551−559.
  238. , M. A., & Zaitlin, M. (1982). Tobacco mosaic virus replication in resistant and susceptible plants: in some resistant species virus is confined to a small number of initially infected cells. Virology, 121(1), 12−19.
  239. Sun G. (2012) MicroRNAs and their diverse functions in plants. Plant Mol Biol. 80:17−36.
  240. F. L., Albrecht M. & Tameling W. I. (2006) Resistance proteins: molecular switches of plant defence. Curr. Opin. Plant Biol. 9: 383— 390.
  241. Talianova M, Janousek B. (2011) What can we learn from tobacco and other Solanaceae about horizontal DNA transfer? Am J Bot. 98(8): 1231−42.
  242. Taliansky ME, Brown JW, Rajamaki ML, Valkonen JP, Kalinina NO. (2010) Involvement of the plant nucleolus in virus and viroid infections: parallels with animal pathosystems. Adv Virus Res. 77:119−58.
  243. Tameling W.I.L., Takken F.L.W. (2008) Resistance proteins: scouts of the plant innate immune system. Eur J Plant Pathol. 121: 243−255.
  244. G., Boudsocq M., Sheen J. (2011) Protein kinase signaling networks in plant innate immunity. Carr. Opin. Plant. Biol. 14: 519−529.
  245. L., Usal C., Menoret S., Leung E., Niles B.J., Remy S., Santiago Y., Vincent A.I., Meng X., Zhang L., Gregory P.D., Anegon I., Cost G.J. (2011) Knockout rats generated by embryo microinjection of TALENs. Nat Biotechnol. 29: 695−696.
  246. Thomas C.L., Bayer E.M., Ritzenthaler C., Fernandez-Calvino L., Maule A.J. (2008) Specific targeting of a plasmodesmal protein affecting cell-to-cell communication. PLoS Biol. 6: 180−190.
  247. B.P., Nurnberger T., Joosten M.H. (2011) Of PAMPs and effectors: the blurred PTIETI dichotomy. Plant Cell. 23: 4−15.
  248. Tian, D., Traw, M. B., Chen, J. Q., Kreitman, M. & Bergelson, J. (2003) Fitness costs of R-gene-mediated resistance in Arabidopsis thaliana. Nature. 423: 74−77.
  249. Tinland B., Schoumacher F., Gloeckler V., Bravo-Angel A.M., Hohn B. (1995) The Agrobacterium tumefaciens virulence D2 protein is responsible for precise integration of T-DNA into the plant genome. EMBO J. 14: 3585−3595.
  250. M.A. (2010) ROS in biotic interactions. Physiol Plant. 138: 414−429.
  251. GL. (1976) Human breast cancer in culture. Resent Results Cancer Res. 57: 33−41
  252. R. & Wolf S. (2009) Phloem transport: cellular pathways and molecular trafficking. Annu. Rev. Plant Biol. 60: 207−221.
  253. , R. (1989). The sink-source transition in leaves. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 40, 119−138.
  254. , D., & Lorito, M. (2011). Potato type I and II proteinase inhibitors: modulating plant physiology and host resistance. Current Protein and Peptide Science, 12(5), 374−385.
  255. Tzfira T., Vaidya M., and Citovsky V. (2004) Involvement of targeted proteolysis in plant genetic transformation by Agrobacterium. Nature. 431: 87−92.
  256. Uhde K, Fischer R, Commandeur U. (2005) Expression of multiple foreign epitopes presented as synthetic antigens on the surface of potato virus X particles. Arch. Virol 150, 327−340
  257. Underwood W., Melotto M., He S.Y. (2007) Role of plant stomata in bacterial invasion. Cell Microbiol. 9(7): 1621−1629.
  258. Van Lent, J., Storms, M., Van Der Meer, F., Wellink, J., & Goldbach, R. (1991). Tubular structures involved in movement of cowpeamosaic virus are also formed in infected cowpea protoplasts. The Journal of General Virology, 72, 2615−2623.
  259. Varrelmann M, Maiss E. (2000) Mutations in the coat protein gene of plum pox virus suppress particle assembly, heterologous encapsidation and complementation in transgenic plants of Nicotiana benthamiana. J. Gen. Virol. 81, 567−576.
  260. Verchot-Lubicz J, Ye CM, Bamunusinghe D. (2007) Molecular biology of potexviruses: recent advances. J. Gen. Virol. 88, 1643−1655.
  261. Verchot-Lubicz J. (2005) A new cell-to-cell transport model for Potexviruses. Mol. Plant Microbe Interact. 18, 283−290.
  262. Vickers, C. E., Possell, M. P., Cojocariu, C., Velikova, V., Laothawornkitkul, J., Ryan, A., Mullineaux, P. M., & Hewitt, C. N. (2009). Isoprene synthesis protects transgenic plants from oxidative stress. Plant, Cell and Environment, 32(5), 520−531.
  263. A.C., Dempsey D.A., Klessig D.F. (2009) Salicylic acid, a multifaceted hormone to combat disease. Annu. Rev.Phytopathol. 47: 177— 206.
  264. Vlot, A. C., Klessig, D. F., & Park, S. W. (2008). Systemic acquired resistance: the elusive signal’s. Current Opinion in Plant Biology, 11(4), 436−442.
  265. O. & Baulcombe D.C. (1997) Systemic signaling in gene silencing. Nature. 389:553.
  266. Voinnet, O., Pinto, Y. M., & Baulcombe, D. C. (1999). Suppression of gene silencing: A general strategy used by diverse DNA and RNA viruses of plants. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 96:14 147−14 152.
  267. Vojnov A.A., Slater H., Newman M.A., Daniels M.J., Dow J.M. (2001) Regulation of the synthesis of cyclic glucan in Xanthomonas campestris by a diffusible signal molecule. Arch Microbiol 176: 415−420.
  268. Von Dahl, C. C., Havecker, M., Schlogl, R., & Baldwin, I. T. (2006). Caterpillar-elicited methanol emission: a new signal in plant-herbivore interactions? The Plant Journal, 46(6), 948−960.
  269. Vuorinen, A. L., Kelloniemi, J., & Valkonen, J. P. (2011). Why do viruses need phloem for systemic invasion of plants? Plant Sei, 181(4), 355−363.
  270. Waigmann E, Chen MH, Bachmaier R, Ghoshroy S, Citovsky V. (2000) Regulation of plasmodesmal transport by phosphorylation of tobacco mosaic virus cell-to-cell movement protein. EMBO J. 19(18):4875−4884.
  271. M., Soyano T., Machida S., Yang J.Y., Jung C., Chua N.H. & Yuan Y.A. (2011) Molecular insights into plant cell proliferation disturbance by Agrobacterium protein 6b. Genes Dev. 25: 64−76.
  272. Wenke, K., Kai, M., & Piechulla, B. (2010). Belowground volatiles facilitate interactions between plant roots and soil organisms. Planta, 231(3), 499−506.
  273. C., Fricker M. (1996) Stomata, Ed 2. London: Chapman and Hall. 135.
  274. , T. M. (1984). Cotranslational disassembly of tobacco mosaic virus in vitro. Virology, 137(2), 255−265.
  275. Xu, X. M., & Jackson, D. (2010). Lights at the end of the tunnel: new views of plasmodesmal structure and function. Cur Opin Plant Biol, 13(6), 684−692.
  276. Yan, Z. G, & Wang, C. Z. (2006). Wound-induced green leaf volatiles cause the release of acetylated derivatives and a terpenoid in maize. Phytochemistry, 67(1), 34−42.
  277. Yang L., Wang H., Liu J., Li L., Fan Y., Wang X., Song Y., Sun S., Wang L., Zhu X., Wang X. (2008) A simple and effective system for foreign gene expression in plants via root absorption of agrobacterial suspension. J. Biotechnology 134: 320−324.
  278. Yao Y, Sun Q. (2012) Exploration of small non coding RNAs in wheat (Triticum aestivum L.). Plant MolBiol. 80(l):67−73.
  279. Yi, H.-S., Heil, M., Adame-Alvarez, R. M., Ballhorn, D. J., & Ryu, C.-M. (2009). Airborne induction and priming of plant defenses against a bacterial pathogen. Plant Physiol, 151(4), 2152−2161.
  280. Yu, F., & Utsumi, R. (2009). Diversity, regulation and genetic manipulation of plant mono- and sesquiterpenoid biosynthesis. Cell Мої Life Sci, 66(18), 3043−3052.
  281. V., Streatfield S.J., Kushnir N. (2011) Clinical development of plant-produced recombinant pharmaceuticals: vaccines, antibodies and beyond. Hum Vaccin. 7(3): 313−321.
  282. A., Krichevsky A., Loyter A. & Citovsky V. (2010) Agrobacterium induces expression of a host F-box protein required for tumorigenicity. Cell Host Microbe. 7: 197−209.
  283. R., Ueki S., Epel B.L., Citovsky V. (2011) Biology of callose (P-l, 3-glucan) turnover at plasmodesmata. Protoplasma. 248: 117 130.
  284. Zeng W., Melotto M., He S.Y. (2010) Plant stomata: a checkpoint of host immunity and pathogen virulence. Curr Opin Biotechnol. 21(5): 599 603.
  285. Zhao Y., Thilmony R., Bender C.L., Schaller A., He S.Y., Howe G.A. (2003) Virulence systems of Pseudomonas syringae pv. tomato promote bacterial speck disease in tomato by targeting the jasmonate signaling pathway. Plant J. 36: 485−499.
  286. Kim S.I., Ranjith-Kumar C.T., Choi Y.J., Hallan V.K., Chattopadhyay S., Sui X., Ziemienowicz A., Matthysse A.G., Citovsky V., Hohn В., Gelvin S.B. (2003) Identification of Arabidopsis rat mutants. Plant Physiol. 132: 494−505.
  287. Zhu Y.Y., Machleder E.M., Chenchik A., Li R., Siebert P.D. (2001) Reverse transcriptase template switching, a SMART approach for full-length cDNA library construction. Biotechniques 30, 892−897.
  288. C. & Felix G. (2005) Plants and animals: a different taste for microbes? Curr. Opin. Plant Biol. 8: 353−360.
  289. C. & Felix G. (2005) Plants and animals: a different taste for microbes. Curr. Opin. Plant Biol. 8: 353−360.
  290. C., Robatzek S., Navarro L., Oakeley E.J., Jones J.D., Felix G., Boiler T. (2004) Bacterial disease resistance in Arabidopsis through flagellin perception. Nature. 428: 764−767.
  291. J., Muth T.R., Draper O., Zambiyski P. (2000) The transfer of DNA from Agrobacterium tumefaciens into plants: A feast of fundamental insights. Plant J. 23:11−28.
  292. T.B., Скурат E.B., Фролова О. Ю., Семашко М. А., Дорохов Ю. Л. Пектинметилэстераза как фактор стабильности транскриптома. (2008) Молекулярная биология. 42, № 3, 478−486
  293. Ю.Л. Умолкание генов растений. (2007) Молекулярная биология. 41, 579−592
  294. , Т., Фрич, Э., Сэмбрук, Дж. (1984). Методы генной инженерии. Молекулярное клонирование. Москва. «Мир».
  295. , Д. (1988) Методы трансформации Е. coli. В книге: Клонирование ДНК: Методы, под редакцией Д.Гловера. Москва, «Мир».
Заполнить форму текущей работой

На отлично!