Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Возможность трансовариальной передачи боррелий у таежного клеща (Ixodes Persulcatus Schulze) в природных очагах

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Судя по полученным нами данным, трансовариальная передача боррелий у клеща 1. persulcatus возможна, но её вероятность очень мала: ДНК В. burgdorferi sensu lato в исследованных личинках не была выявлена, а доля личинок, у которых боррелии обнаружены микроскопией (даже с учетом спирохе-то-подобных клеток) и число спирохет, содержащихся в этих инфицированных клещах, весьма невелики. Представленные… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. КРАТКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ИКСОДОВЫХ КЛЕЩЕВЫХ БОРРЕЛИОЗОВ КАК ПРИРОДНО-ОЧАГОВЫХ ИНФЕКЦИЙ
    • 1. 1. ИКБ как классические клещевые облигатно-трансмиссивные инфекции
    • 1. 2. Основные переносчики и резервуарные хозяева ИКБ
    • 1. 3. Феномен трансовариальной передачи боррелий
      • 1. 3. 1. Трансовариальная передача возбудителей трансмиссивных инфекций, передающихся клещами семейства Ixodidae
      • 1. 3. 2. Трансовариальная передача возбудителей аргасовых клещевых боррелиозов
      • 1. 3. 3. Трансовариальная и трансфазовая передача спирохет группы клещевых возвратных лихорадок у иксодид
      • 1. 3. 4. Трансовариальная и трансфазовая передача боррелий группы ИКБ
  • ГЛАВА 2. ЭКОЛОГО-ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ИКСОДОВЫХ КЛЕЩЕВЫХ БОРРЕЛИОЗОВ В ПЕРМСКОЙ ОБЛАСТИ
  • ГЛАВА 3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
  • ГЛАВА 4. СРАВНИТЕЛЬНЫЙ АНАЛИЗ РЕЗУЛЬТАТИВНОСТИ ИНДИКАЦИИ БОРРЕЛИЙ В ИКСОДОВЫХ КЛЕЩАХ
    • 4. 1. Сравнение результативности методов индикации боррелий темнопольной микроскопией и полимеразной цепной реакцией
    • 4. 2. Обсуждение результатов

Возможность трансовариальной передачи боррелий у таежного клеща (Ixodes Persulcatus Schulze) в природных очагах (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Патогенные для человека виды боррелий Borrelia burgdorferi sensu lato, передающиеся иксодовыми клещами, вызывают самостоятельные заболевания, выделенные в группу иксодовых клещевых боррелиозов (ИКБ) или инфекций группы Лайм-боррелиоза (Э.И. Коренберг, 1993, 1996). Это классические облигатно-трансмиссивные природно-очаговые инфекции с острым и/или хроническим течением, при которых возможны поражения кожи, нервной, сердечно-сосудистой системы, печени, опорно-двигательного аппарата. По уровню заболеваемости ИКБ занимают в России одно из ведущих мест среди природно-очаговых зоонозов. За четыре последних года (1999;2002 гг.) было зарегистрировано 31 902 случая ИКБ, что составило в интенсивных показателях от 5.1 до 5.8 на 100 тыс. человек.

Эколого-эпидемические и таксономические связи боррелий с иксодовыми клещами имеют две существенные особенности. Во-первых, тесную экологическую и коэволюционную связь с определенной сравнительно небольшой таксономической группой иксодовых клещей рода Ixodes (W. Burgdorfer et al., 1983; H. Hoogtraal, 1986; J.F. Anderson, 1989; W. Burgdorfer, S.F. Hayes, 1989; H.A. Филиппова, 1990; N.A. Filippova, J 991- J.E. Keirans et al., 1992), — группой Ixodes persulcatus (или комплексом 1.(1.) ricinus/persulcatus). Во-вторых — отсутствие специфических связей разных геновидов боррелий с определенным видом переносчика и возможность микстинфицирования последних (Э.И. Коренберг, 1999; Н. А. Филиппова, 1999).

На большей части лесной зоны Евразии основной эпидемически значимый переносчик Borrelia burgdorferi sensu lato — таежный клещ (Ixodes persulcatus Schulze), причем на людей нападают, главным образом, взрослые особи (Е. I. Korenberg et al., 2001, 2002). Уровень их зараженности боррелиями — это один из главных показателей эпизоотического состояния природного очага и его потенциальной эпидемической опасности (Э.И. Коренберг, Ю. В. Ковалевский, 2000; Е. I. Korenberg et al., 2002). Он определяется процессами горизонтальной (между резервуарными хозяевами) и вертикальной (трансфазовой) и, возможно, трансовариальной) передачи спирохет.

По имеющимся немногочисленным фрагментарным данным частота трансовариальной передачи боррелий у клеща I. persulcatus варьирует от 0% до 100% (Du Yong et al., 1990; M. Nakao, К. Miyamoto, 1992; Ю. С. Балашов, JI.А. Григорьева, 1997; Ю. С. Балашов и др., 1998; Л. А. Григорьева, К. А. Третьяков, 1998; H.V. Dubinina, 2000). На этом основании высказаны самые разные, порой взаимоисключающие мнения: от отрицания возможности трансовариальной передачи боррелий (М. Nakao, К. Miyamoto, 1992) до придания этому феномену очень важного значения (Ю.С. Балашов, Л. А. Григорьева, 1997; Ю. С. Балашов и др., 1998; Л. А. Григорьева, К. А. Третьяков, 1998). Изоляты боррелий были получены в очень редких случаях от голодных личинок I. ricinus, собранных в Северной Африке (Н. Younsi et al., 2001), Amblyomma amcricanum в США (T.L. Schulze et al., 1986), /. persulcatus в России (Н.Б. Горелова, не опубликованные данные). Также единичные изоляты были получены из биоптатов или крови лабораторных животных, на которых кормили личинок I. ricinus, собранных в природных очагах (G. Stanek et al., 1986, В. Hammer et al., 2002) или от напитавшихся личинок, происходивших от инфицированных в лаборатории клещей (Н.Е. Krampitz, 1986). Методами темнопольной микроскопии живые боррелии были обнаружены у голодных личинок следующих видов: I. scapularis (E.M. Bosler et al., 1983, J. Piesman et al., 1986), A. americanum (T.L. Schulze et al., 1986), I. ricinus (Z. Hubalek, J. Halouzka, 1998), I. persulcatus (Ю.С. Балашов, Л. А. Григорьева, 1997; Ю. С. Балашов и др., 1998). Эти данные плохо сопоставимы и не поддаются количественной оценке. В целом значимость трансовариальной передачи боррелий как одного из факторов, определяющих уровень зараженности взрослых клещей и, следовательно, влияющего на риск зараженности человека и интенсивность эпидемического проявления природных очагов ИКБ, оставалась слабо изученной. Это определило цель и задачи диссертационной работы.

Цель работы.

Изучить возможность трансовариальной передачи боррелий у их важнейшего переносчика в Евразии — клеща /. persulcatus, и оценить частоту этого феномена у естественно зараженных клещей в природных очагах.

Задачи исследования.

1. Провести сравнительную оценку результативности индикации боррелий у естественно зараженных клещей традиционным методом темнопольной микроскопии и методом полимеразной цепной реакцией (ПЦР) с праймерами, специфичными в отношении консервативных последовательностей В. burgdorferi 16S рРНК гена;

2. Оценить вероятность присутствия боррелий в яйцах, полученных от спонтанно зараженных клещей I. persulcatus;

3. Оценить результативность трансовариальной передачи путём индикации бор-релий в голодных личинках дочернего поколения, полученных из яйцекладок спонтанно зараженных самок 1. persulcatus;

4. Проанализировать значение трансовариальной передачи боррелий у таёжного клеща как одного из факторов, способных влиять на интенсивность эпизоотического процесса и эпидемического проявления природных очагов ИКБ в нашей стране.

Научная новизна:

— впервые на репрезентативном материале показана эффективность применения метода ПЦР для изучения трансовариальной передачи боррелий у их основного переносчика — клеща I. pcrsulcatus;

— получены данные, подтверждающие наличие геномной ДНК В. burgdorferi sensu lato в яйцах спонтанно инфицированных самок клеща I. persulcatus, что свидетельствует о способности зараженных самок инфицировать свои яйцекладки;

— впервые на репрезентативном материале оценена степень результативности трансовариальной передачи боррелий спонтанно зараженными самками I. persulcatus голодным личинкам дочернего поколения;

— проанализировано значение вертикальной передачи боррелий у таёжного клеща. для их циркуляции в природных очагах ИКБ в России.

Практическая значимость. Показано, что при определении уровня зараженности клещей 1. persulcatus боррелиями более дорогой и сложный метод ПЦР по своей результативности не имеет существенных преимуществ перед темнопольной микроскопией витальных препаратов. Поэтому в практической работе санэпидслужбы при осуществлении мониторинга за состоянием природных очагов ИКБ массовые исследования клещей с этой целью могут осуществляться методом тем-нопольной микроскопии витальных препаратов.

Апробация работы. Материалы диссертации представлены на 11 Интернациональных курсах по биологии переносчиков инфекций (Чехия, Чешские Будеёвице, июнь 2001 г.), межрегиональной научно-практической конференции по природно-очаговым инфекциям, посвященной 80-летию Омского НИИПИ (Омск, октябрь 2001 г.), Всероссийской научно-практической конференции с международным участием по иксодовым клещевым боррелиозам (Ижевск, ноябрь 2002 г.) и на VII Интернациональном Потсдамском симпозиуме по клещевым инфекциям (Германия, Берлин, март 2003 г.).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 8 работ.

Объем работы. Диссертационная работа состоит из введения, двух глав обзора литературы, собственных исследований, включающих описание материалов и методов, результаты и их обсуждения, заключения и выводов и списка литературы, включающего 333 источника, из них 272 зарубежных. Работа изложена на 119 страницах, иллюстрирована 8 таблицами, 16 рисунками.

выведи.

1. Результаты впервые проведенного параллельного исследования голодных самок Ixodes persulcatus, собранных в природе, на зараженность боррелиями методами темнопольной микроскопии и ПЦР с праймерами, специфичными в отношении консервативных последовательностей В. burgdorferi 16S рРНК гена, показали, что метод ПЦР как более чувствительный может быть применен для изучения трансовариальной передачи боррелий. Этим методом боррелии выявлены примерно у 30% самок, у которых их не удается обнаружить при микроскопии 250 полей зрения в каждом витальном препарате. Вместе с тем для массовых исследований клещей /. persulcatus из природных очагов на зараженность боррелиями более дорогой и сложный метод ПЦР не имеет существенных преимуществ перед темнопольной микроскопией витальных препаратов.

2. Показано, что спонтанно инфицированные самки таёжного клеща, как правило, способны передавать боррелии трансовариально: яйца из их кладок содержат ДНК В. burgdorferi sensu lato. Однако индивидуальная зараженность яиц в кладках незначительна и составляет в среднем менее 2,5%.

3. Впервые установлено, что дальнейшая вертикальная передача боррелий от яиц личинкам дочернего поколения происходит избирательно и крайне редко: ДНК боррелий не выявлена при исследовании методом ПЦР более 75 О личинок из кладок зараженных самок. Микроскопией фиксированных препаратов типичные боррелии выявлены только у 7% личинок в потомстве одной инфицированной самкипо данным, полученным этим методом, доля личинок, получивших боррелии от инфицированных самок, составляет во всех их кладках^ примерно 1,4%. Индивидуальная инфицированность этих личинок была очень низкой и составила 0.4−0.8 боррелий на 100 полей зрения.-4. Впервые показано, что трансовариальная передача Borrelia burgdorferi sensu. lato у их важнейшего в Евразии переносчика — таежного клеща I. persulcatus" практически не имеет заметного значения для поддержания циркуляции этиос. спирохет, формирования показателей зараженности взрослых клещей следующей: генерации, и, следовательно, слабо влияет на эпидемическое проявление: природных очагов ИКБ.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Сравнительный анализ результативности индикации боррелий у естественно зараженных голодных самок Ixodes persulcatus методами темнопольной микроскопии и ПЦР с праймерами, специфичными в отношении консервативных последовательностей Borrelia burgdorferi 16S рРНК гена, показал довольно близкую результативность этих двух методов. Методом ПЦР выявлена зараженность значительного числа клещей, у которых боррелии не обнаружены при микроскопии 25 О полей зрения в препарате от каждой особи. Тем не менее, в целом для изучения уровня зараженности клещей в природе метод ПЦР не имеет преимуществ перед темнопольной микроскопией.

О потенциальной возможности трансовариальной передачи боррелий свидетельствует обнаружение спирохет яичниках 3 (3,1 ±3,5%) голодных самок, а у напитавшихся самок (80,0±17,9%) из 20 — ДНК боррелий ПЦР методом. ДНК боррелий так же выявлена примерно в пятой части пулов по 10 яиц и в трети пулов по 20 яиц, полученных от напитавшихся самок. По показателям зараженности яиц, полученным групповым суспензионным методом, по формуле В. Н. Беклемишева (1963) рассчитана возможная индивидуальная зараженность яиц в кладке. По результатам исследования пулов по 10 яиц она составила 0,5 — 23,0%, а по данным инфицированное&tradeпулов по 20 яиц — 0,4 — 8,0%. Однако, у личинок, вылинявших из этих яиц, ДНК боррелий отсутствовала или, возможно, была в чрезвычайно низкой концентрации. Это может свидетельствовать о потере возбудителя на этапе развития яиц и вылинивания личинок. Типичные боррелии выявлены только в нескольких препаратах личинок, происходивших из одной и той же кладки. Самка, отложившая эту кладку, была единственной из 16 инфицированных, передававшей борре-лии через яйца личинкам дочернего поколения. Уровень зараженности личинок, вылинявших из яиц этой кладки, составил всего 7%, а степень их индивидуальной инфицированности была очень низка — 0.4−0.8 боррелий на 100 полей зрения. Общий уровень зараженности голодных личинок дочернего поколения по результатам светлопольной микроскопии составил примерно у 0,5%.

Судя по полученным нами данным, трансовариальная передача боррелий у клеща 1. persulcatus возможна, но её вероятность очень мала: ДНК В. burgdorferi sensu lato в исследованных личинках не была выявлена, а доля личинок, у которых боррелии обнаружены микроскопией (даже с учетом спирохе-то-подобных клеток) и число спирохет, содержащихся в этих инфицированных клещах, весьма невелики. Представленные данные позволяют думать, что трансо-вариальный путь передачи В. burgdorferi sensu lato у важнейшего в Евразии переносчика — клеща /. persulcatus, практически не имеет заметного значения в поддержании циркуляции этих спирохет и формировании показателей зараженности взрослых клещей следующей генерации.

На функционирование природных очагов ИКБ в России, решающее воздействие, по всей видимости, оказывают процессы горизонтальной и трансфазовой передачи возбудителя, причем определяющее влияние на уровень зараженности голодных взрослых клещей I. persulcatus, очевидно, оказывают показатели инфицированности напитавшихся нимф.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.Н. Система клещ возбудитель и ее емерджентные свойства. — СПб., 1993. — 204 е.-
  2. А.Н., Кондрашова З. Н. Организм членистоногих как среда обитания возбудителей. Свердловск, 1985. -180 с-
  3. И.И., Коренберг Э.И, Воробьева Н. Н. Риск заражения иксодовыми клещевыми боррелиозами населения различных ландшафтных подзон Пермской области // Мед. паразигол. 2002. — № 1. — С. 37−40-
  4. Ю.С. Иксодовые клещи паразиты и переносчики инфекций. — Спб., 1998. — 288 е.-
  5. Ю.С., Григорьева Л. А. Локализация боррелий в организме клеща Ixodes persulcatus (Ixoddae) // Доклады Академии наук. -1997.-T.352.-Ns 1.-С. 130−132-
  6. Ю.С., Григорьева ЛА Трансовариальная передача боррелий Borrelia burgdorferi s.l. таежным клещом Ixodes persulcatus (IxocSdae) //Доклады Академии наук. -1998. Т. 363. — № 3. — С. 422−424-
  7. Ю.С., Амосова Л. И., Григорьева Л. А. Трансовариальная и трансфазовая передача боррелий таежным клещом Ixodes persulcatus (IxocSdae) // Паразитология. -1998. Т. 32, вып. 6. -С. 489−494-
  8. Ю.С., Григорьева ЛА, Оливер ДжХ Локализация боррелий в организме клеща Ixodes persulcatus на разных стадиях развития // Паразитология. -1997. Т. 31, вып. 2. — С. 97−103-
  9. В.Н. К изучению зараженности клещей переносчиков энцефалита методом биопробы // Вопросы вирусологии -1963. — № 1- С. 240−242-
  10. Н.Б., Коренберг Э. И., Филиппова НА, Постик Д. Первая изоляция патогенных для человека боррелий от клещей Ixodes pavlovskyi Pom. II Доклады Академии наук. 2001. — Т. 378. — № 4. — С. 558−559-
  11. Н.Б., Коренберг Э. И., Ковалевский Ю. В. и др. Изоляция боррелий от клеща Ixodes trianguliceps (Ixodidae) и возможное значение этого вида в эпизоотологии иксодовых клещевых боррелиозов // Паразитология. -1996.-Т. 30, вып. 1.-С. 13−18-
  12. Н.Б., Коренберг Э. И., Postic D. и др. Первая изоляция Borrelia burgdorferi sensu stricto в России // ЖМЭИ. 2001. — № 4. — С. 10−12-
  13. Григорьева ЛА, Третьяков КА Особенности паразитарной системы иксодовые клещи боррелии — мелкие млекопитающие на Северо-Западе России // Паразитология. -1998. — Т. 32, вып. 5. — С. 422−430-
  14. АБ. Трансовариальная и транслермальная передача Coxiella bumeti у клещей Hyalomma asiaticum и их роль в экологии Q-риккетсиоза II Паразитология -1977. Том 11, вып. 5. — С. 403−411-
  15. Информационный сборник статистических и аналитических материалов. Раздел 13: Анализ деятельности центров Госсанэпиднадзора Российской Федерации по лабораторным исследованиям на клещевой энцефалит и болезнь Лайма за 1996−2000 гг.-
  16. Ю.В., Коренберг Э. И., Дауйотас С. В. Оценка разлитых способов приготовления витальных препаратов для выявления боррелий у иксодовых клещей II Мед. паразигол. -1990. № 1. — С. 33−35-
  17. Ю.В., Коренберг Э. И., Никиточкин ИТ. Оптимизация способа оценки зараженности и степени индивидуальной инфицированности клещей боррелиями II Мед. паразигол. -1991. № 3. — С. 18−21-
  18. Ю.В., Крючечников В. В., Коренберг Э. И. Сравнительная оценка двух методов индикации боррелий клещах переносчиках болезни Лайма // Мед. паразигол. -1988. — № 5. -С. 75−77-
  19. Ю.В., Коренберг Э. И., Кутлина Т. В., Устинова OA Нормы просмотра препаратов при исследовании нимф иксодовых клещей методом темнопольной микроскопии в очагах боррелиоза II Мед. паразитол. 1996. — № 4. -С. 18−21-
  20. З.Н., Котельникова Г. М. Поведение вируса клещевого энцефалита в клещах Ixodes F>^^"nsulcatus разного происхождения II Мед. паразитоа 1975. — № 1. — С. 25−29-
  21. Э.И. Боррелиозы. II В кн.: В. И. Покровский (ред.). Руководство по эпидемиологии инфоюшдионных болезней. М., Медицина, 1993. Т. 2. — С. 382−391-
  22. Э.И. Иксодовые клещевые боррелиозы как группа заболеваний человека и главные итоги ее дез-^^менияв России II Журн. инфекц. патол. -1996.-3 (4). С. 22−24-
  23. Э.И. Таксономия, филогенетические связи и области формообразования спирохет рода ВогтеПа, передающихся иксодовыми клещами II Успехи современной биологии. -1996. -116 (4). С. 389−406-
  24. Э.И. Взаимоотношения возбудителей трансмиссивных болезней в микстинфицированных и ««сводовых клещах (Ixodidae) II Паразитология. -1999. Т. 33, вып. 4. — С. 273−289-
  25. Э.И. Эрлихиозы новая для России гроблема инфекционной патологии II Мед. паразитол. — 1 Э99. — № 4.-С. 10−16-
  26. Э.И. Изучение и профилактика микст-инфекций, предающихся иксодовыми клещами /X Вестник Российской Академии мед. наук. 2001. — № 11. — С. 41−45-
  27. Э.И., Ковалевский Ю. В. Основные черты эко-эпидемиологии клещевые энцефалита IIВ кн.: П вооблемы клещевых и паразитарных заболеваний. СПб., 2000. С. 13−20-
  28. Э.И., Горелова Н. Б., Postic D., Котти Б. К. Новые для России виды боррелий возможные во^з-^Зудители иксодовых клещевых боррелиозов II Журн. микробиол. -1999. — № 2 — С. 3−5-
  29. Э.И., Крючечников В. Н., Ковалевский Ю. В. и др. Клещ Ixodes persulcatus Schulze новый п*==*у>еносчик Borrelia burgdorferi //Доклады Академии наук СССР -1987. -Т. 297. — № 5. — С. 1268−1270-
  30. Э.И., Щербаков С. В., Баннова Г. Г. и др. Зараженность клещей Ixodes persulcatus возбу^жг*ителями болезни Лайма и клещевого энцефалита одновременно II Паразитология -1990. Т. 24, вып. 1. — С. 102- «1 d>5-
  31. Э.И., Щербаков С. В., Ковалевский Ю. В. и др. Передача Borrelia burgdorferi от нимф к иплгкго Ixodes persulcatus Schulze II ДАН СССР. -1988. Т. 302. — № 3. — С. 759−760-
  32. В.В. Итоги развития учения о природной очаговости болезней человека и дальнейшие задачи. ГЧ/1, 1972. -С. 131-
  33. М.Л., Ковалевский Ю. В., Пискунова А. Ю., Щеголева Т. В. Оценка степени индившл^сщуальнойинфицированности клещей возбудителем болезни Лайма путем микроскопии фиксированных препарапго tai // В кн.: Проблемы клещевых боррелиозов. М&bdquo- 1993. С. 157−162-
  34. ПР., Лесникова М. В., Лаунер Л. Б. и др. Опыт параллельного выявления боррелий методом темнопольной микроскопии и в реакции непрямой иммунофлюоресценции у иксодовых клещей // В кн.: .^эпгериалы VIII съезда эпидемиологов. М., 2001. С. 352-
  35. В.Ю., Коренберг Э. И. Природная очаговость болезней: развитие концепции к исхо/д,-^^ века // Паразитология. -1999. Т. 33, вып. 3. — С. 179−191-
  36. В. А., Митрофанова Ю. Г. Материалы по распространению и экологии Ixodes persulcatus P. Sch. е» Пермской области// В кн.: Вопросы Арахноэнтомолоти. Ученые записки № 249. Пермь, 1971. С. 10−38-
  37. Т., Наумов Р. Л., Кудекен М., Харитоненков ИХ. Обнаружение Borrelia burgdorferi senst^a stricto в Московской области, Россия // Мед. паразитол. 2001. — № 2. — С. 52-
  38. Г. И. К вопросу об Artrophia cutis idiopathica progressiva acuisita II Проблемы |у/1≤х2ковского венерологического и дерматологического общества -1898 -1899. № 8. — С. 135−136-
  39. Г. Г., Коренберг Э. И., Слилман Э., Щеголева Т. В. О частоте генерализованной инфекции у взрослых голодных клещей Ixodes в очагах боррелиозов России и США II Паразитология. -1995. Т. 29, вып. 5. — О 353−359-
  40. Р.Л., Васильева И. С., Гутова В. П., Ершова АС. Размножение возбудителей болезни Лайма Borrelia burgdorferi в клещах Ixodes persulcatus // Паразитология. -1998. Т. 32, вып. 5. — С. 412−421-
  41. П.В. Демонстрация случая пятнистой атрофии кожи II В кн.: Дневник 6-го Конгресса Российских медиков памяти Н. И. Пирогова. -1896. Вып. 12 — С. 89-
  42. Е.Н. Аргасовые клещи (семейство Argasidae) (ред. ПА Петрищева) II В кн.: Переносчики возбудителей природноочаговых болезней. Москва, 1962. С. 263−290-
  43. Петрищева ПА Клещи Omithodoros и боррелии клещевого рекурренса IIВ кн.: Биологические взаимоотношения кровососущих членистоногих с возбудителями болезней человека. Москва, 1967. С. 233−245-
  44. В.Г. О трансовариальной передаче возбудителя туляремии у клещей Dermacentor marginatus Schulze // Мед. паразитол. -1962. № 1. — С. 62−66.-
  45. Н.Н. Случай идиопатической приобретенной атрофии кожи // Мед. обозрение -1902. № 37. — С. 710 713-
  46. В.М., Бердыев, А Защитные механизмы иксодоидных клещей и их прокормителей (паразитохозяинные взаимоотношения). Ашхабад, Ылым. 1991.-240 е.-
  47. Поспелов АН Руководство к изучению кожных болезней. • М., 1905. 650 е.-
  48. А.И. Два случая самостоятельной атрофии кожи у взрослых II Мед. обозрение -1906. № 26. — С. 565 574-
  49. В.Е. Полость тела аргасовых клещей, как среда обитания спирохет и бруцелл // Журн. Микробиод, эпидемиол. и иммунобиол. -1960. Вып. 6. — 91−97-
  50. Г. Н. Биогеоценозы таёжного леса (на примере Пермской области). Изд-во Московского Университета, 1974.-176 с.-
  51. АН. Роль различных видов клещей Omithodoros в передаче спирохет клещевого возвратного тифа // Зоологический журн. -1954. Том XXXIII, вып. 2. — С. 319−322-
  52. Слесарен ко В.В., Дунаевский КА О трансовариальной передаче спирохет клещевого возвратного тифа у Alectorcbius asperus // Мед. паразитол. 1964. — Том XXXIII, вып. 6. — С. 744−745-
  53. К. Г., Сарманова ЕС., Панов Г. П. Существует ли эритематозная форма клещевого энцефалита? II Клещевой энцефалит и другие арбовирусные инфекции. Москва, Минск, 1962. — С. 182−183-
  54. Филиппова НА II Энтомологическое обозрение. -1969. Т. 48. — № 3. — С. 675-
  55. Филиппова НА Таежный клещ Ixodes persulcatus Schulze (Acarina, Ixodidae). Морфология, систематика, экология, медицинское значение. Л.: Наука, 1985. С. 204-
  56. Филиппова НА Таксономические аспекты переносчиков возбудителя болезни Лайма II Паразитология. -1990. Т. 24, вып. 4,-С. 257−267-
  57. Филиппова НА Симпатрия близкородственных видов иксодовых клещей и её возможная роль в паразитарных системах природных очагов трансмиссивных болезней // Паразитология. -1999. Т. 33., вып. 3. — С. 223−241-
  58. АН., Кузнецова Р. И., Чурилова АА О клещевой эритеме // В кн.: Проблемы клещевых боррелиозов. Под ред. Э. И. Коренберга. М., 1993. — С. 56−65-
  59. Н.И. Общая продолжительность жизненного цикла II В кн.: Таежный клещ Ixodes persulcatus Schulze (Acarina, Ixoddae). Морфология, систематика, экология и медицинское значение (ред. НА Филиппова). Наука, Ленинград 1985. — С. 275−277-
  60. Н.И., Иоффе ИД. Развитие яиц некоторых видов иксодовых клещей (IxocSdae) при различной влажности II Мед. паразитол. -1980. № 5. — С. 79−85-
  61. Adam Т., Gassmann G.S., Rasiah С., Gobel U.B. Phenotypic and genotypic analysis of Borrelia burgdorferi isolates from various sources II Infec. Immun. -1991. Vol. 59. — P. 2579−2585
  62. Adam Т., Graf В., Neubert U., Gobel U.B. Detection and classification of Borrelia burgdorferi by direct sequencing of 16S rRNA amplified after reverce transcription//Med. Microbiol. Lett -1992.-Vol. 1.-P. 120−126-
  63. Aeschlimann A Development emmbryonnaire d’Ornithodorus moubata et transmission transovarienne de Borrelia duttone //Acta Tropica. -1958. Vol. 15. — P. 15−64-
  64. Afzelius A. Verhandlungen der Dermatologischen Gesellschaft zu Stockholm, 28 Oct 1909II Arch. Dermatol. Syphilis -1910.-Vol. 101.-P. 404−407-
  65. Afzelius A Erythema chronicum migrans II Acta Derm. Venerol. -1921. Vol. 2. — P. 120−125-
  66. Ai С.-Х., Wen Y.-X., Zhang J.-G. et al. Clinical manifestations and epidemiological characteristics of Lyme disease in Hailin County, Heilongjiang Province, China II Ann. N.Y. Acad. Sci. -1988. Vol. 539. — P. 302−313-
  67. Alekseev A.N., Oubinina H.V. Exchange of Borrelia burgdorferi Between Ixodes persulcatus (IxocSdae: Acarina) Sexual Partners II J. Med.Entomol. -1996. Vol. 33 (3). — P. 351−354-
  68. Alekseev A, Dubinina H., Rijpkema S. Some peculiarities of Borrelioses foci functioning in the Baltic Regions of Russia: disease nosoforms, pathogen genospecies and vectors behaviour// Bull. Scand. Soc. Parasitol. 1997. — Vol. 7, N 1. — P. 46-
  69. Alekseev AN., Dubinina H.V., Rijpkema S.G.T., Schouls L.M. Sexual transmission of Borrelia garinii by male Ixodes persulcatus (Ixodidae, Acarina) II Exp. App. Acarology -1999. Vol. 23 (2). — P. 165−169-
  70. Alekseev AN., Dubinina H.V., van De Pol I., Schouls L.M. Identification of Ehrlichia spp. and Borrelia burgdorferi in Ixodes Ticks in the Baltic Regions of Russia II J. Clin. Microbiol. 2001. — Vol. 39 — P. 2237−2242-
  71. Anderson J.F. Epizootology of Borrelia in Ixodes tick vectors and reservoir hosts II Rev. Infect. Dis.- 1989. Vol. 11. — P. 1451−1459-
  72. Anderson J.F., Magnarelli LA, Burgdorfer W., Barbour G. Spirochetes in Ixodes dammini and mammals from Connecticut//Amer. J. Trap. Med. Hyg. -1983. -Vol. 32. P. 818−824-
  73. Anderson J.F., Magnarelli L. A, LeFebvre R.B. et al. Antigenically variable Borrelia burgdorferi isolated from cottontail rabbits and Ixodes dentatus in rural and urban areas II J. Clin. Microbiol. -1989. Vol. 27. — P. 13−20-
  74. Angelov L., Arnaudov D., Kostova E, Liptehen G. Studies of epizootiological processes with Lyme Borreliosis in Bulgaria II Infectology. -1993. Vol. XXX (5). — P. 12−14-
  75. Angelov L., Dimova P., Berbencova W. Clinical and laboratory evidence of the tick Omithodoros marginatus as a vector of Borrelia burgdorferi in some areas of sporadic Lyme disease in Bulgaria II Europ. J. Epidemiol. 1996. — Vol. 12. — P. 499−502-
  76. Baferstedt B. Uber lymphadenosis benigna cutis II Acta Dermato-Venereologica (Stockholm). -1943. Suppl. 24. — P. 1202-
  77. Bannwarth A Chronische limphozytare Meningitis, entzundliche Polyneuritis und «Rheumatismus' II Arch. Psychiat. Nerven krankheiten -1941. Vol. 113. — P. 284−376-
  78. Bannwarth A Zur klinik und Pathogenese der «chronischen lymphocytaren Meningitis» II Arch. Psychiat. Nerven krankheiten -1944. Vol. 117. — P. 161−185-t
  79. Baptista S., Quaresma A., Kurtenbach K. et al. Lyme Borreiiosis spirochetes in ticks from Mainland Portugal // VII Intern. Potsdam Symposium on Tick-Borne Disease. 13−14 March 2003, Berlin, Germany-
  80. Baranton G., Postic D., Saint Girons I. et al. Delineation of Borrelia burgdorferi sensu stricto, Borrelia garinii sp. nov., and group VS461 associated with Lyme borreiiosis // Int J. SysL Bacterid. -1992. Vol. 42 — P. 378−383-
  81. Barbour A.G. Isolation and cultivation of Lyme dsease spirochetes II Vale J. Biol. Med. -1984. Vol. 57. — P. 521−525-
  82. Barbour A.G., Fish F. The biological and social phenomen of Lyme dsease // Sci. -1993. Vol. 260.-P. 1610−1616-
  83. Barbour A.G., Maupin G.O., Teltow G.J. et al. Identification of an unoitivable BorreSa species in the hard tick Amblyomma americanum: possible agent of a Lyme dsease-like illness // J. Infect Dis. -1996. Vol. 173. — P. 403−409-
  84. Beaty B.J., Marquardt W.C. The Biology of Disease Vectors. University Press of Colorado, 1996. 632 p.-
  85. Beklemishev A.B., Dobrotvorsky A. K, Livanova N.N. et al. Different genospedes of Borrelia burgdorferi sensu lato dominante in Ixodes persulcatus ticks in West Siberia and Far East Russia // Int J. Med. Microbiol. 2002. — Vol. 291, Suppl 33. — P. 203-
  86. Bellet-Edimo R., Gem R, Betschart B. Frequence and efficiency of transovarial transmission of Borrelia burgdorferi in Ixodes ricinus И VII Int Congr. Lyme Borreiiosis, San Francisco, 1996. P. 39-
  87. Benach J. L, Coleman J. L, Skinner RA, Bosler EM. Adult Ixodes dammini on rabbits: a hipothesis for the development and transmission of BorreSa burgdorferi II J. Infect Dis. -1987. Vd. 155. — P. 1300−6-
  88. Benjamowitsch E, Maschkilleisson C.N. Weitere Beitfrage zur Frage tier de Atrophie der Haut II Acta Dermato-Venereologica -1933. Suppl. XIV. — P. 313−341-
  89. Bissett M. L Hill W. Characterization of Borrelia burgdorferi strains isolated from Ixodes paa’ffcus ticks in California II J. Clin. Microbiol. -1987. Vol. 25. — P. 2296−301-
  90. Bosler EM., Ormiston J. L, Hanrahan J.P., Benach J. L Prevalence of the Lyme dsease spirochete in populations of white-tailed deer and white-footed mice II Yale J. Bidog. Med. -1984. Vd. 57. — P. 651−659-
  91. Bosler EM., Coleman J. L, Benach J. L et al. Natural dstribution of the Ixodes dammini spirochete II Science 1983. -Vol. 220.-P. 321−322-
  92. Brown R.N., Lane R.S. Lyme dsease in California: A novel enzootic transmission cycle of BorreSa burgdorferiSdence -1992.-Vol. 256.-P. 1439−1442-
  93. Buchwald A. Ein Fall von dffuser idopathischer Haut atrophie II Arch. Dermatd. Syphilis -1883. Vd. 10. — P. 553−556-
  94. Bunikis J., Luke C. J., Bunikiene E et al. A surface-exposed region of a novel outer membrane protein (P66) of Borrelia spp. is variable in size and sequence II J. Bacterid. -1998. Vd. 180 (7). — P. 1618−23-
  95. Bunikis J., Olsen В., Fingerle V. et al. Molecular polymorphism of the Lyme dsease agent Borrelia garinii in northern Europe is influenced by a novel enzootic Borrelia focus in the North Atlantic II J. Clia Microbid. -1996. Vol. 34. — P. 364 368-
  96. Burckhardt J. L Zur Frage der Fdlikel- und Keimzentrenbildung in der Haut// Frankfurter Zeitschrift fur Pathologic. -1911. -Vd. 6.-P. 352−359-
  97. Burgdorfer W. Analyse des Infektionsveriaufes bei Ornithodoros moubata (Murray) und der naturlichen Ubertragung von Spirochaeta duttonii II Ma Trop. -1951. Vd. 8. — P. 193−262-
  98. Burgdorfer W. Discovery of the Lyme cfsease spirochete and its relation to tick vectors // Yale J. Biol. Med -1984. Vol. 57.-P. 515−520-
  99. Burgdorfer W., Gage K. L Susceptibility of the black-legged tick, Ixodes scapularis, to the Lyme disease spirochete, Borrelia burgdorferi 1Ш. Bakt Hyg. -1986. -263. P. 15−20-
  100. Burgdorfer W., Hayes S.F. Vector-Spirochete Relationships in Louse-Bome and Tick-Borne Borrelioses with Emphasis on Lyme Disease II Advances in disease Vector Research. -1989. Vol. 6. — P. 128−150-
  101. Burgdorfer W, Varma M.G.R. Trans-stadial and Transovarial development of Disease Agents in Arthropods II Annual Review Entomology. -1967. Vol. 12. — P. 347−376-
  102. Burgdorfer W., Hayes S.F., Benach J. L Development of Borrelia burgdorferi in ixocid licks vectors In Lyme Disease and Releated Disorders II J. L Benach, E.M. Bosler, Ed: Annals of the New York Academy of Sciences. -1988. Vol. 539. — P. 172−179-
  103. Burgdorfer W., Anderson J.F., Gem L et al. Relationship of Borrelia burgdorferi to its arthropod vectors II Scan. J. Infect Dis. Suppl. -1991. Vol. 77. — P. 3540-
  104. Burgdorfer W., Barbour A.G., Hayes S.F. et al. Lyme disease a tick-bome spirochetosis? II Science. -1982. — Vol. 216. -P. 1317−1319-
  105. Burgdorfer W., Barbour A.G., Hayes S.F. et al. Erythema chronicun migrans a tickbome spirochetosis // Acta Tropica. -1983. — Vol. 40. — P. 79−83-
  106. Burgdorfer W., Lane R.S., Barbour A.G. et al. The western black-legged tick, Ixodes pacificus: A vector of Borrelia burgdorferi II Am. J. Trap. Med Hyg. -1985. Vol. 34. — P. 925−930-
  107. Burgess EC., Patrican LA. Oral infection of Peromyscus marvculatus with Borrelia burgdorferi and subseqquent transmission by Ixodes damminillPm. J. Trap. Med. Hyg. -1987. Vol. 36. — P. 402−407-
  108. Burkot T.R., J. Piesman, Wirtz RA Quantitation of Borrelia burgdorferi outer suface protein A in bodes scapularis: fluctuations during the tick life cycle, doubling times and loss while feeding II J. Infect Dis. -1994. Vol. 170. — P. 883−9-
  109. Canica M.M., Nato F., du Merle L et al. Monoclonal antibodes for identification of Borrelia afzelii sp. nov. associated with late cutaneous manifestations of Lyme borreliosis // Scand. J. Infect Dis. -1993. Vol. 25. — P. 441−448-
  110. Casjens S., Huang W.M. Linear chromosomal physical and genetic map of Borrelia burgdorferi, the Lyme disease agent II Mol. Microbiol. -1993. Vol. 8. — P. 967−980-
  111. Chernesky MA Powassan virus transmission by ixoclid ticks infected after feedng on viremic rabbits injected intravenously //Canada J. Microbiol.-1969.-Vol.15.-P. 521−530-
  112. Costero A., Grayson MA Experimental transmission of Powassan virus (Flaviviridae) by b (odes scapularis ticks (Acari, Ixodidae) //Am. J. Trap. Med Hyg. -1996. Vol. 55. — P. 536−546-
  113. Craine N.G., Nuttall PA, Marriott A.C., Randolph S. E Role of grey squirrels and pheasants in the transmission of Borrelia burgdorferi sensu lato, the Lyme dsease spirochete, in the U.K. II Folia Parasitol. -1997. Vol. 44. — P. 155−160-
  114. Crawen R., Dennis D. Isolation of Borrelia burgdorferi from Ixodes spinipalpis ticks in California and Colorado // Lyme Disease Surveillance Summary -1993. Vol. 4 (4). — P. 1−2-
  115. Davidson B.E., MacDougall J., Saint Girons I. Physical map of the linear chromosome of the bacterium Borrelia burgdorferi 212, a causative agent of Lyme dsease, and localization of rRNA genes// J. Bacterid. -1992.-Vol. 174, N 11, -P. 3766−74-
  116. Davidson M.M., Evans R., Ling C. L et af. Isolation of Borrelia burgdorferi from ticks in the Highlands of Scotland // J. Med Microbiol. -1999. Vol. 48 (1). — P. 595-
  117. Demaerschalck I., Messaoud A.B., Kesel D. E et al. Simultaneous presence of dfferent Borrelia burgdorferi genospecies in biological fluids of Lyme disease patients II J. Clin. Microbiol. -1995. Vol. 33. — P. 602−608-
  118. Dolan M.C., Lacombe EH., Piesman J. Vector Competence of Ixodes muris (Acari: Ixoddae) of Borrelia burgdorferi // J. Med. Entomol. 2000. — Vol. 37 (5). — P. 766−768-
  119. Dou Guilan, Yang Zhen. A Study on the dssemination of Lyme Disease by Ixodes persulcatus II Chinese J. Vector Biology Control. T. 1, N 2. — P. 117−119-
  120. Du Yong, Tou Xiyan, Wu Xiaoming, Qien Zhang. Dissemination and Transovarial Transmission of Borrelia burgdorferi in Ixodes persulcatus (Acari: Ixodidae) // Chin. Vector. Biol. Contr. J. -1990. Vol. 1 (6). — P. 367−369-
  121. Dubinina H.V. Some peculiarities of the mating behavior in Ixodes persulcatus and Ixodes ricinus ticks (Acarina, Ixodidae): Differences in a sexual transmission of the species of BorreSa/l Acarina 2000. — Vol. 8 (2). — P. 125−131-
  122. Estrada-Pena A., Oteo J A, Estrada-Pena R. et al. Borrelia burgdorferi sensu lato in ticks (Acarina: Ixoddae) from two different foci in Spain//Exp. Appl. Acarol.-1995.-Vol. 19.-P. 173−180-
  123. Faye O., Comet J. P, Camicas J. L et al. Experimental transmission of Crimean-Congo hemorrhagic fever vims: role of 3 vector species in the maintenance and transmission cycles in Senegal II Parasite (French) -1999. Vol. 6 (1). — P. 27−32-
  124. Felsenfeld O. Borrelia, human relapsing fever, and parasite-vector-host relationships II Bacteriol. Rev. -1965. Vol. 29, N 1.-P. 46−74-
  125. Felsenfeld Oscar. Borrelia Strains, Vectors, Human and Animal Borreliosis. St Louis: Warren H. Green, Inc., 1971-
  126. Filippova NA A hypothesis for the paleogenesis of the dstribution of the man vectors for Lyme Disease II In: F. Dusbabek, V. Bukva (eds.). Modem Acarology, Academia, Praque and SPB Academic Publishing The Hague. -1991. -Vol. 1. P. 109−118-
  127. Fingerle V., Munderloh U.G., Liegl G., Wilske B. Coexistence of EhriicNae of the phagocytophila group with Borrelia burgdorferi in Ixodes ridnusirom Southern Germany//Med. Microbiol. Immunol. (Bert.). -1999. Vd. 188 (3). — P. 145−9-
  128. Fingerle V., Bergmeister H. t Liegl G. et al. Prevalence of Borrelia burgdorferi sensu lato in Ixodes rianus in southern Germany//J. Spiroch. Tick-BomeDis.-1994.-Vd. 1.-P. 41−45-
  129. Fingerle V., Michel H., Hettche G. et al. Borrelia burgdorferi s.l. Osp-A-types are widely spread in Bavaria but show dstinct local patterns//VII Intern. Potsdam Symposium on Tick-Borne Disease. 13−14 March 2003, Berlin, Genmany-
  130. Fish D., Papero M. Laboratory maintenance of a novel relapsing fever spirochete transmitting by Ixodes scapularis IIIX International Conference on Lyme Borreliosis and other tick-bome dsease. August 18−22,2002, New York, New York. O-88-
  131. Fraenkel С.J., Garpmo U., Berglung J. Determination of Novel Borrelia genospecies in Swecfsh Ixodes ricinus ticks // J. Clin. Microbiol. -2002. Vol. 40. — P. 3308−3312-
  132. Fukunaga M., Yanagihara Y., Sohnaka M. The 23S/5S ribosomal RNA genes (nl/rrf) are separate from the 16S ribosomal RNA gene (rrs) in Borrelia burgdorferi, the aeb’dogical agent of Lyme disease// J. Gen. Microbiol. -1992 Vol. 138. — P. 871−7-
  133. Fukunaga M., Sohnaka M., Nakao M., Miyamoto K. Evalution of Genetic Divergence of Borrelia Isolates from Lyme Disease Patients in Hokkaido, Japan, by rRNA Gene Probes II J. Clin. Microbiol. -1993. Vol. 31. — P. 2044−2048-
  134. Fukunaga M, Hamase A, Okada K, Nakao M. Borrelia tanukii sp. nov. and Borrelia turdae sp. nov. found from ixodid ticks in Japan: rapid spedes identification by 16S rRNA gene-targeted PCR analysis II Microbiol. Immunol. -1996. Vol. 40. P. 877−81-
  135. Fukunaga.M., Takahashi Y., Tsuruta Y. et al. Genetic and phenotypic analysis of Borrelia miyamotoi sp. nov., isolated from the ixodid tick Ixodes persulcatus, the vector for Lyme disease in Japan /I Int J. Syst Bacterid. -1995. Vd. 45. — P. 804−810-
  136. Gaber M.S., Khalil G.M., Hoogstraal H. Borrelia croa’durae: venereal transfer in Egyptian Orrotfiodoros erraticus ticks II Exp. Parasitd. -1982. Vd. 54. — P. 182−4-
  137. Gaber M.S., Khalil G.M., Hoogstraal H., Aboul-Nasr A. E Borrelia crocidurae localization and transmission in Omithodoros erraticus and O. savignyi II Parasitdogy -1984. Vol. 88 (Pt 3). — P. 403−13-
  138. Garin C., Buajdoux J. Paralysie par les tiques II J. Med de Lyon -1922. Vd. 71. — P. 765−767-
  139. Gazumyan A., Schwartz J.J., Livens D., Schwartz I. Sequence analisis of the ribosomal RNA operon of the Lyme disease spirochete, Borrelia burgdorferi II Gene -1991. Vd. 146. — P. 57−65-
  140. Gem L, Lebet N. Development of Borrelia burgdorferi in Ixodes ricinus during blood meal: loss of borreliae and reinfection from the host IIVII lntem.Congr.Lyme borreliosis. San Frantisco. -1996. — P. 379-
  141. Gern L, Rais O. Effident transmission of Borrelia burgdoferi between cofeedng Ixodes ricinus ticks (Acari: Ixodidae) // J., Med. Entomd. -1996. Vd. 33. — P. 189−192-
  142. Gern L, Toutoungi LN., Ни C.M., Aeschlimann A. Ixodes (Phdeoixodes) hexagonus, an effident vector of Borrelia burgdorferi in the laboratoiy// Med. Vet Entomd. -1991. Vd. 5. — P. 431−435-
  143. Gil H., Banal M.(Garcia-Perez A. L et al. Observations of Borrelia burgdorferi infection in Ixodid ticks in two endemic regions from the North of Spain IIVIII Int Conference. 1999-
  144. Gray J.S., Kahl O., Janetzki-Mittman C. et al. Acquisition of Borrelia burgdorferi by Ixodes ricinus ticks fed on the European hedgehog, Erinaceus europaeus LII Exp. App. l Acarol. -1994. Vd. 18 (8). — P. 485−91-
  145. Gupta S.K., Schonberg A, Hiepe Th. Prevalence of ticks in relation to their role as vector of Borrelia burgdoferi under autochthone conditions II Appl. Parasitd. -1995. Vd. 36 (2). — P. 97−106-
  146. Gustafson R., Gardulf A, Svenungsson B. Comparison of Culture, Indirect Immunofluorescence and Dark-Field Microscopy for detection of Spirochetes from Ixodes ricinus Ticks II Eur. J. Clin. Microbid. Infect Dis. -1989. Vd. 8, N. 6. -P. 570−572¦
  147. Gustafson R., Svenungsson В., Gardulf A. et al. Prevalence of tick-bome encephalitis and Lyme borreliosis in a defined Swedish population II ScandI J/ Infec/ Dis. -1990. Vd. 22. — P. 297−306-
  148. Gylfe A., Olsen В., Strasevicius D. et al. Isolation of Lyme disease Borrelia from puffins Fratercula arctica and seabird ticks (Ixodes uriae) on the Faeroe Islands // J. Clin. Microbid. -1999. Vd. 37. — P. 890−896-
  149. Halouzka J., Juricova Z., Matiova Z., Hubalek Z. Borreliae in larval Ixodes ricinus ticks II Med. Vet. Entomol. 1995. -Vol. 9.-P. 205−206-
  150. Hammer В., Meiners Т., Marangoni A et al. Borrelia burgdorferi sensu lato transmission from tick vector to host Experimental evidence of the invdment of the larval stage Ixodes nanus II Int J. Med. Microbiol. 2002. — Vd. 291. — Supp. 33.-P. 211-
  151. Hayden J.D., Ho SA, Hawkey P.M. et al. The promises and pitfalls of PCRII Rev. Med. Microbiol. -1991. Vd. 2. — P. 129−137-
  152. Heldrlch J., Schonberg A, Steuber S. et al. Investigation of Scin Samples from Red Foxes {Vulpes vulpes) in Eastern Brandenburg (Germany) for the Detection of Borrelia burgdorferi s.l. II Zentr. Bacterid. -1999. -289.-P. 666−672-
  153. Hellerstrom S. Erythema chronicum migrans Afzelii II Acta Derm. Venerol. (Stockh.). -1930.-№ 11.-P. 315−321-
  154. Herxheimer K., Hartmann K. Uber Acrodermatitis chronica atrophicans II Arch. Dermatol. Syphilis -1902. Suppl. 61. -P. 57−76-
  155. Hoogstraal H. II Bull. Entomd. Soc. Amer. -1986. V. 32 — № 1. — P.22-
  156. Hu CM, Humair PF, Wallich R, Gern L Apodemus sp. rodents, reservoir hosts for Borrelia afzelii in an endemic area in Switzerland II Zentr. Bakterid. -1997. 285. — P. 55 864-
  157. Hubalek Z. Halouzka J. Prevavalence rates of Borrelia burgdorferi sensu lato in host-seeking Ixodes nanus ticks in Europe II Parasitol. Res. -1998. Vd. 84. — P. 167−172-
  158. Hubbard M.J., Baker AS., Cann K.J. Distribution of Borrelia burgdorferi s.l. spirochaete DNA in British ticks (Argasidae and Ixodidae) since the 19th century, assessed by PCR// Med. Vet Entomd. -1998. Vol. 12 — P. 89−97-
  159. Humair P.F., Gern L Relationship between Borrelia burgdorferi sensu lato spedes, red squirrels (Scuims vulgaris) and Ixodes ricinus in enzootic areas in Switzerland II Acta Tropica -1998. Vd. 69. — P. 213−227-
  160. Humair P.F., Rais O., Gem L Transmission of Borrelia afzeSi from Apodemus mice and Clethrionomys vdes to Ixodes ricinus ticks: dfferential transmission pattern and overwintering maintenance II Parasitology -1999. Vd. 118 (Pt 1). — P. 33−42-
  161. Humair PF., Postic D., Wallich R., Gern L An avian reservdr Turdus memla) of the Lyme disease spirochetes // Znt BakL -1998. 287. — P. 521−538-
  162. Jaenson T.G.T., Talleklint L Incompetence of roe deer as reservoir of the Lyme borreliosis spirochete II J. Med. Entomol. -1992. Vd. 29. — P. 813−817-
  163. Jaenson T.G.T., Talleklint L Lyme borreliosis spirochaetes in Ixodes ricinus (Acari: Ixiddae) and the varying hare on isolated islands in the Baltic Sea // J. Med Entomd. -1996. Vd. 33. — P. 339−343-
  164. Jaenson T.G.T., Bergstrom S., Burman N. et al. Spiroketirrfecterade fastingar (Ixodes ricinus) risk for angrepp aven i Norriand II Lakartidningen. -1989. — Vd. 86. — P. 2584-
  165. Jauris S., Fuchs R., Motz M. et al. Genetic heterogenity of the genes coding for the outer surface protein С (OspC) and the flagellin of Borrelia burgdorferi II Med. Microbid. Immund. -1993. Vd. 1821. — P. 37−50-
  166. Johnson B.J.B., Happ C.M., Mayer LW., Piesman J. Detection of Borrelia burgdorferi in Ticks by species-specific amplification of the flagellin gene II Am. J. Trap. Med. Hyg. -1992. Vd. 47 (6). — P. 730−741-
  167. Johnson R.S., Schmid G.P., Hyde F.W. et al. Borrelia burgdorferi sp. nov.: etiologic agent of Lyme dsease II InL J. Syst. Bacterid. 1984. — Vd. 34. — P. 496−497-
  168. Jonsson M., Noppa L, Barbour AG., Bergstrom S. Heterogeneity of outer membrane proteins in Borrelia burgdorferi -comparison of osp operons of tree isdates of different geographic origins It Infect Immun. 1992. — Vd. 60. — P. 18 451 853-
  169. Junttila J., Peltomaa M., Soini H. et aL Prevalence of Borrelia burgdorferi in Ixodes ricinus Ticks in Urban Recreational Areas of Helsinki // J. Clin. Microbiol. -1999. Vol. 37. — P. 1361−1365-
  170. Kaiser A., Seitz A., Strub 0. Prevalence of Borrelia bugdorferi sensu lato in the Nightingale (Luseinia megarhynchos) and ofter passerine birds И Int J. Med. Microbiol. -2002. Vol. 291, Suppl. 33. — P. 75−79-
  171. Kawabata H., Masuzawa Т., Yanagihara Y. Genomic analysis of Borrelia japonica sp. nov. isolated from Ixodes ovatus in Japan // Microbiol. Immunol. -1993. Vol. 37. — P. 843−848-
  172. Kawabata H., Baba S, Iguch! К et al. Lyme cfsease in Japan and its possible incriminated tick vector, Ixodes persulcatus II J. Infect Dis. -1987. Vol. 156. — P. 854-
  173. Kawabata H., Tashiby H., Yamada K. et al. Polymerase Chain Reaction Analysis of Borrelia Species Isolated in Japan II Microbiol. Immunol. -1994. -Vd. 38 (8). -P. 591−598-
  174. Kimura K., Isogai E., Isogai H. et al. Detection of Lyme dsease spirochaetes in the skin of naturally infected wild Sika deer (Cervus nippon yesoensis) by PCR//Appl. Environm. Microbiol, -1995. Vol. 61. — P. 1641−1642-
  175. Kirstein F., Rijpkema S4 Molkenboer M., Gray S. Local Variations in the Distribution and Prevalence of Borrelia burgdorferi Sensu Lato Genomospecies in Ixodes ricinus Ticks II Appl. Envir. Microbiol. -1997. Vol. 63, N 3. — P. 11 021 106-
  176. Kirstern F., Rijpkema S., Molkenboer M., Gray S. The dstribution and prevalence of Borrelia burgdorferi genomospecies in Ixodes ricinus ticks in Ireland II Europ. J. Epidemiol. -1997. Vol. 13. — P. 67−72-
  177. Korenberg E I., Gorelova N. В., Kovalevskii Y. V. Ecology of Borrelia burgdorferi sensu lato in Russia II In J. Gray, O. Kahl, R.S. Lane, G. Stanek (eds.) CAB International Lyme Borreliosis: Bidogy, Epidemiology and Control. 2002. — P. 175−200-
  178. Korenberg El., Kovalevskii Yu.V., Karavanov A.S., Moskvitina G.G. Mixed infection by tick-borne encefalitis vims and Borrelia in tick II Med. Vet Entomol. -1999. Vol. 13. — P. 204−208-
  179. Korenberg El., Kruchechnikov V.N., Ananyina Yu.V., Chernukha Yu.G. Preregui sites of the Existence of Lyme Disease in the USSR II Zntr. Bkt Mikrobid. Hyg. -1986. A 263. — P. 471−473-
  180. Korenberg El., Gorban LYa., Kovalevskii Yu.V. et al. Risk for Human Tick-Borne Encephalitis, Borrelioses, and Double Infection in the Pre-Ural Region of Russia II Emerg. Infect Dis. 2001. — Vd.7, № 3. — P.459−462-
  181. Kovalevsky Yu.V., Korenberg EL Differences in Borrelia infections in adult Ixodes persulcatus and Ixodes ricinus ticks (Acari: Ixoddae) in populations of north-western Russia II Exp. Appl.-Akarol. -1995. V. 19. — P.19−29-
  182. Krampitz H. E In vivo Isolation and maintenance of some wild Strains of European hard tick spirochetes in mammalian and arthropod II Zbl. Bakt Hyg. -1986. A 263. — P. 21−28-
  183. Kurtenbach K.I., Carey D., Hoodless AN. et al. Competence of pheasants as reservoirs for Lyme Disease spirochetes H J. Med Entomol. -1995. Vd. 35. — P. 77−81-
  184. Kurtenbach К., Peacey M., Rijpkema S.G.T. et al. Differential Transmission of the Genospecies of Borrelia burgdorferi Sensu Lato by Game Birds and Small Rodents in England//Appl. Envir. Microbiol. -1998. -Vol. 64, N 4. P. 1169−1174-
  185. Labuda M., Danielova V., Jones LD., Nuttall PA Amplification of tick-bome encephalitis virus infection during co-feeding of ticks // J. Med Entomd. -1993. Vol. 7. — P. 339−42-
  186. Labuda M., Kozuch 0., Zuffova E. et al. Tlck-bome encephalitis vims transmission between ticks cofeedng on specific immune natural rodent hosts 11 Virology. -1997. Vol. 235. — P. 138−143-
  187. Lane R.S., Burgdorfer W. Transovariai and transstadial passage of Borrelia burgdorferi in the Western Black-legged tick, Ixodes padficus (Acari: Ixoddae) //Am. J. Trop. Med. Hyg. -1987. Vol. 37 (1). — P. 188−192-
  188. Lane R.S., Burgdorfer W. Spirochetes in mammals and ticks (Acari: Ixoddae) from a focus of Lyme borreiiosis in California II J. Wild Dis. -1988. Vol. 24. — P. 1−9-
  189. Lane R.S., Piesman J., Burgdorfer W. Lyme borreiiosis: relation of its causative agent to its vectors and hosts in North America and Europe //Ann. Rev. Entomol. -1991. Vol. 36. — P.587-
  190. Lane R.S., Burgdorfer W., Hayes S.F., Barbour A.G. Isolation of a Spirochete from the Soft Tick, Ornithodoros coriaceus: A Possible Agent of Epizootic Bovine Abortion II Sdence. -1985. Vol. 230 (4). — P. 85−87-
  191. Lane R.S., Peavey CA, Padgett K.A., Hendson M. Life History of Ixodes (Ixodes) jelSsoni (Acari: Ixodidae) and its Vector Competence for Borrelia burgdorferi sensu lato II J. Med. Entomol. -1999. Vol. 36. — P. 329−340-
  192. Lebech A.M., Hindersson P., Vuust J., Hansen K. Comparison of in vitro culture and polymerase chain reaction for detection of Borrelia burgdorferi in tissue from experimentally infected animals // J. Clin. Microbiol. -1991. Vol. 29. — P. 731−737-
  193. Le Fleche A., Postic D., Girardet K. et al. Characterization of Borrelia lusitaniae sp. nov. by 16S ribosomal DNA sequences analysis II InL J. SysL Bacterid. -1997. Vd. 47. — P. 921−925-
  194. Leuba-Garcia S., Kramer M.D., Wallich R. et al. Characterization of Borrelia burgdorferi isdated from dfferent organs of Ixodes ricinus ticks cdlected in nature. II Zbl. Bakt -1994. Vd. 280. — P. 468−475-
  195. Levine J.F., Wilson M. L, Spielman A. Mice as reservdrs of the Lyme dsease spirochete II Am. J. Trop. Med. Hyg. -1985. -Vol. 34. -P. 355−360-
  196. Liang J.G., Zhang Z.F. Analisis of rRNA gene restriction fragment length pdimorphism of Borrelia burgdorferi sensu lato isolates in China II Chin. J. Microbid. Immund. -1996. Vd. 16. — P. 359−362-
  197. Liebisch G., Sohns В., Bautsch W. Detection and Typing of Borrelia burgdorferi Sensu Lato in Ixodes ricinus Ticks Attached to Human Skin by PCRII J. Clia Microbid. -1998. Vd. 36. — P. 3355−3358-
  198. LipschQtz B. Ober eine seltene Erythemform (Erythema chronicum migrans) //Arch. Dermatol. Syphilis -1913. Vd. 118. — P. 349−356-
  199. LipschQtz B. Weiterer Beitrag zur Kenntnis der «Erythema chronicum migrans* II Arch. Dermatol. Syphilis -1923. Suppl. 143.-P. 365−374-
  200. Livens D., Varde S., Iyer R. et al. Genetic Diversity of Borrelia burgdorferi in Lyme Disease Patients as Determined by Culture versus Direct PCR with Clinical Specimens II J. Clin. Microbiol. 1999. — Vol. 37. — P. 565−569-
  201. Livesley MA, Carey D., Gem L, Nuttall PA Problems of isolating Borrelia burgdorferi from ticks collected in United Kingdom foci of Lyme disease // Med. Vet Entomol.-1994.-Vol.8.-P. 172−178-
  202. Macaluso K.R., Sonenshine D.E., Ceraul S.M., Azad A.F. Infection and transovarial transmission of rickettsiae in Dermacentor variabilis licks acquired by artificial feeding // Vector Borne Zoonotic Diseases 2001. — Vol. 1 (1). — P. 45−53-
  203. Magnarelli LA., Swihart R.K. Spotted fever groups Rickettsiae or Borrelia burgdorferi in Ixodes cooki (Ixodidae) in Connecticut // J. Clin. Microbiol. -1991. Vol. 29. — P. 1520−1522-
  204. Magnarelli LA., Anderson J.F., Fish D. Transovarial transmission of Borrelia burgdorferi in Ixodes dammini (Acari: Ixodidae) II J. Inf. Dis. -1987. Vol. 156. — P. 234−236-
  205. Magnarelli LA., Anderson J.F., Apperson C.S. et al. Spirochetes in ticks and antibodies to Borrelia burgdorferi in white-tailed deer from Connecticut, New York State, and North Carolina // J. Wild. Dis. -1986. Vol. 22 (2). — P. 178−188-
  206. Marconi R.T., Konkel M.E., Garon C.F. Variability of osp genes and gene products among species of Lyme disease spirochetes II Infect Immunol. -1993. Vol. 61. — P. 2611−2617-
  207. Marshall III W.F., Telford III S.R., Rys P.N. et al. Detection of Borrelia burgdorferi DNA in Museum Specimens of Peromyscus leucopus/IJ. Inf. Dis. -1994. Vol. 170. — P. 1027−1032-
  208. Mast W. E, Burrows W.M. Erythema chronicum migrans in the United States IIJ Amer. Med Assoc. 1976. — Vol. 236. -P. 859−860-
  209. MasuzawaT., Fukui Т., Miyake M. et al. Determination of members of a Borrelia afzeBi-related group isolated from Ixodes nipponensis in Korea as Borrelia valaiaanall Int J. Syst Bacterid. -1999. Vol. 49 (Pt 4). — P. 1409−15-
  210. Masuzawa Т., Takada N., Kudeken M. et al. Borrelia sinica sp. nov. Lyme dissease-related Borrelia species isolated in China II Int. J. Syst Evol. Microbiol. 2001. — Vol. 51 (Pt 5). — P. 1817−1824-
  211. Mather T.N., Mather M.E. Intrinsic competence of three ixodid ticks (Acari: Ixoddae) as vectors of the Lyme disease spirochete II J. Med. Entomd. -1990. Vd. 27.- P. 646−650-
  212. Mathiesen DA, Oliver J.H., Jr., Kolbert C.P. et al. Genetic heterogeneity of Borrelia burgdorferi in United States II J. Infect Dis. -1997. Vol. 175. — P. 98−107-
  213. Matuscka F.R., Fischer P., Heiler M. et al. Capacity of European animals as reservoir hosts for the Lyme disease spirochete II J. Infect Dis. -1992. -Vol. 165. P. 479−483-
  214. Matuschka F.R., Heiler M., Eiffert H. et al. Diversionary role of hoofed game in the transmission of Lyme disease spirochetes //Am. J. Trop. Med Hyg. -1993. Vol. 48. — P. 693−699-
  215. Matuschka F.R., Ohlenbusch A, Eiffert H. et al. Characteristics of Lyme Disease spirochetes in archived European ticks II J. Inf. Dis. -1996. Vol. 174. — P. 424−426-
  216. Maupin G.O., Gage K. L, Piesman J. et al. Discovery of an enzootic cycle of Borrelia burgdorferi in Neotoma mexicana and Ixodes spinipalpis from northern Colorado, an area where Lyme dsease is nonendemic II J. Infect Dis. -1991. Vol. 170.-P. 636−643-
  217. Missone M.C., Van Impe G., Hoet P.P. Genetic heterogeneity of Borrelia burgdorferi sensu lato in Ixodes nanus ticks collected in Belgium II J. Clin. Microbiol. -1998. Vol. 36. — P. 3352−3354-
  218. Miyamoto K., Nakao M., Sato N. Mori M. Isolation of Lyme dsease spirochetes from ixodd tick in Hokkado, Japan II Acta Tropica -1991. Vol. 49. — P. 65−68-
  219. Miyamoto K., Nakao M., Uchikawa K., Fujita H. Prevalence of Lyme Borreliosis Spirochetes in Ixodd Ticks of Japan, with special Reference to a New Potential Vector, Ixodes ovatus (Acari: Ixoddae) II J. Med. Entomd. -1992. Vd. 29 (2). — P. 216−220-
  220. Molloy P. S., Persing D.H., Berardi V.P. False-positive Results of PCR testing for Lyme dsease II Clin. Infect. Disease -2001.-Vol. 33(3).-P. 412−413-
  221. Monin R., Gern L, Aeschlimann A. A Study of the Different Modes of Transmission of Borrelia burgdorferi by Ixodes ricinus II Stanek (Ed), Lyme Borreliosis II: Zbl. BacL Suppl. -1989. Vol. 18. — P. 14−20-
  222. Nakao M., Miyamoto K. Negative finding in detection of transovarial transmission of Borrelia burgdorferi in Japanese ixodid ticks, Ixodes persulcatus and Ixodes ovatus II Jpn. J. Sanit Zool. -1992. Vd. 43. — N 4. — P. 343−345-
  223. Nakao M., Miyamoto K. Isolation of spirochetes from Japanese ixodd ticks, Ixodes tanuki, Ixodes turdus, and Ixodes columnae // Jpn. J. Sanit Zod. -1993. Vd. 44. — P. 49−52-
  224. Nakao M., Sato Y. Refeeding activity of immature ticks of Ixodes persulcatus and transmission of Lyme dsease spirochete by partially fed larvae II J. Parasitol. -1996. Vd. 82 (4). — P. 669−72-
  225. Nakao M., Miyamoto K, Fukunaga M. Lyme dsease spirochetes in Japan: enzootic transmission cycles in birds, rodents, and Ixodes persulcatus ticks III Infect Dis. 1994. — Vd. 170, № 4. — P.878−882-
  226. Nakao M., Miyamoto K., Fukunaga M. Borrelia japonica in nature: genotypic identification of spirochetes isolated from Japanese small mammals II Microbid. Immund. -1994. Vol. 38. P. 805−8-
  227. Nuttall P., Randolph S., Carey D. et al. The ecology of Lyme borreliosis in the UK II In: Axford J.S., Rees D.H.E. (eds.) NATO ASI Series, Series A life Sciences. -1994. Vd. 260. — P. 125−129-
  228. Old I.G., MacDougall J., Saint Girons I., Davidson B.E. Mapping of genes on the linear chromosome of the bacterium Borrelia burgdorferi: possible locations for its origin of replication // FEMS Microbid. Lett -1992. Vd. 99. — P. 245−250-
  229. Oliver J.H., Jr. Lyme Borreliosis in the Southern United States: a review// J. Parasitd. -1996. Vd. 82 (6). — P. 926−935-
  230. Oliver J.H., Jr., Stallknecht D. E, Chandler F.S. et al. Detection of Borrelia burgdorferi in laboratory-reared Ixodes dammini (Acari: Ixoddae) fed on experimentally inoculated white-tailed deer // J. Med Entomol. -1992. Vol. 29. — P. 980 984-
  231. Olsen В. Birds and Borrelia In: PhD thesis, Umea University, Umea, Sweden, 1995.
  232. Park K.H., Chang W.H., Schwan T.G. Identification and characterisation on Lyme dsease spirochetes, Borrelia burgdorferi sensu lato, isolated in Korea // J. Clin. Microbiol. -1993. Vol. 31. — P. 1831−1837-
  233. Paster B.S., Pelletier DA, Dewhirst F. E et al. Phylogenetic position of the spirochetal genus Christispira II Appl. Environ. Microbiol. -1996. Vd. 62. — P. 944−946-
  234. Patrican LA Absence of Lyme dsease spirochetes in larval progeny on naturally infected Ixodes scapularis (Acari: Ixoddae) fed on dogs II J. Med. Entomd. -1997. Vd. 34. — P. 52−55-
  235. Persing D.H., Telford S.R., Spielman A, Barthold S.W. Detection of Borrelia burgdorferi infection in Ixodes dammini ticks with polymerase chain reaction II J. Clin. Microbiol. -1990. Vd. 28. — P. 566−572-
  236. Persing D.H., Telford S.R., Rys P.N. et al. Detection of Borrelia burgdorferi DNA in museum specimens of Ixodes dammini ticks//Sdence. -1990. Vd. 249. — P. 1420−1423-
  237. Picken R.N., Cheng Y., Strle F. et al. Patient isolates of Borrelia burgdorferi sensu lato with genotypic and phenotypic similarities to strain 25015II J. Inf. Dis. -1996. Vd. 174. — P. 1112−1115-
  238. Pies man J. Transmission of Lyme Disease Spirochetes (Borrelia burgdorferi) II Exp. Appl. Acarology. -1989. Vd. 7, N 1. -P. 71−81-
  239. Piesman J., Sinsky R.J. Ability of Ixodes scapularis, Dermacentor variabilis. and Amblyomma americanum (Acari: Ixodidae) to acquire, maintain, and transmit Lyme dsease spirochetes Borrelia burgdorferi) II J. Med Entomd. -1988. -Vol.25.-P. 336−339-
  240. Piesman J., Oliver J.R., Sinsky R.J. Growth kinetics of the Lyme Disease spirochete (Borrelia burgdorferi) in vector ticks Ixodes dammini) (Acari: Ixoddae) II J. Trop. Med. Hyg. -1990. Vd. 42. — P. 352−7-
  241. Piesman J., Donahue J.G., Mather T.N., Spielman A Transovarially acquired Lyme dsease spirochetes (Borrelia burgdorferi) in field-collected larval Ixodes dammini (Acari: Ixoddae)//J. Med Entomol. -1986. Vd. 23. — P. 219−219-
  242. Piesman J., Hicks T.C., Sinsky R.J., Obiri G. Simultaneous transmission of Borrelia burgdorferi and Babesia microti by individual nymphal Ixodes dammini ticks II J. Clin. Microbid. -1987. Vd. 25. — P. 2012−2013-
  243. Postic D., Assous M.V., Grimont PAD., Baranton G. Diversiti of Borrelia burgdorferi sensu lato evidenced by restriction fragment length pdymorhpism of rrf (5S)-n1 (23S) intergenic spacer amplicons II Int J. Sysl Bacterid. -1994. Vol. 44. — P. 743−752-
  244. Postic D., Edlinger C., Richaud C. et al. Two genomic spedes in Borrelia burgdorferi II Res. Microbiol. -1990. Vol. 141. — P. 465−475-
  245. Postic D., Marti Ras N. Lane R.S. et al. Expanded dversity among Califomian Borrelia isolates and description of Borrelia bissetti sp. nov. (formerly Borrelia group DN127) II J. Clia Microbiol. -1998. Vd. 36. — P. 3497−3504-
  246. Postic, D., Marti Ras N., Lane R.S. et al. Common Ancestry of Borrelia burgdorferi sensu lato strains from North America and Europe II J. Clia Microbid. -1999. Vd. 37. — N 9. — P. 3010−3012-
  247. Preac-Mursic V., Wilske V., Schierz G. European Borrelia burgdorferi isdated from humans and ticks. Culture conditions and antibiotic susceptibility II Zbl. Bakl Hyg. -1986. A 263. — P. 112−118-
  248. Radda A, Burger I., Stanek G., Wewalka G. Austrian hard ticks as vectors of Borrelia burgdorferi, overview II Zntr. Bkl Mikrobid. Hyg. -1986. A 263, — P. 79−82-
  249. Rand P.W., Lacombe E.N., Smith R.P. et al. Competence of Peromyscus marvculatus (Rodentia, Cricetidae) as a reservoir host for Borrelia burgdorferi (Spirochaetares, Spirochaetaceae) in the wild II J. Med Entomd. -1993. Vol. 30. -P. 614−618-
  250. Randolph S.E., Gern L, Nutall PA Co-feeding ticks: epidemidogical significance for tick-bome pathogen transmission II Parasitology Today. -1996. Vol. 12, № 12 — P. 472−479-
  251. Rennie L, Wilkinson P. J., Mellor P. S. Effects of infection of the tick Omithodoros moubata with African swine fever virus II Med. Vet Entomol. 2000. — Vol. 14 (4). — P. 355−360-
  252. Rennie L, Wilkinson P.J., Mellor P. S. Transovarial transmission of African swine fever virus in the argasid tick Omithodoros moubata // Med. Vet Entomol. 2001. — Vol. 15 (2). — P. 140−146-
  253. Ribeiro J.M.C., Mather T.N., Piesman J., Spielman A. Dissemination and salivary delivery of Lyme disease spirochetes invector tick (Acari: Ixoddae) // J. Med Entomol. -1987. Vol. 24. — P. 201−205-
  254. Rich S.M., Armstrong P.M., Smith R.D., Telford III S.R. Lone Star Tick-Infecting Borreliae are most closely related to the agent of Bovine Borreliosis // J. Clin. Microbiol. 2001. — Vol. 39. — P. 494−497-
  255. Rijpkema S., Bruinink H. Detection of Borrelia burgdorferi sensu lato by PCR in questing Ixodes ricinus larvae from the Dutch North Sea Island of Ameland // Exp. Appl. Acarol. -1996. Vol. 20. — P. 381−385-
  256. Rijpkema S., Nieuwenhuijs J., Franssen F.F.J., Jongejan F. Infection rates of Borrelia burgdorferi in dfferent instrs of Ixodes ricinus ticks from the Dutch North Sea Island of Ameland //Exp. Appl. Acarol.-1994.-Vol. 18.-P. 531−542-
  257. Ryder J. W, Pinger R.R., Glancy T. Inability of Ixodes cooker and Amblyomma americanum Nymphs (Acari: Ixoddae) to transmit Borrelia burgdorferi III Med Entomd.-1992.-Vd. 29(3).-P. 525−530-
  258. Salinas-Melendez JA, Tamez-Gonzales R., Welsh-Lozano O., Barrera-Saldana HA Detection of Borrelia burgdorferi DNA in Human Skin Biopsies and Dog Synovial FJiid by the PCR // Rev. Lat- Amer. Microbid. -1995. Vol. 37. — P. 7−10-
  259. Samuels D.S., Marconi R.T., Garon C.F. Variation in the size of the ospA containing linear plasmid, but not the linear chromosome, among the three Borrelia spedes associated with Lyme disease // J. Gen. Microbid. -1993. Vd. 139. — P. 2445−2449-
  260. Sato Y., Nakao M. Transmission of the Lyme Disase Spirochete, Borrelia garinii, between Infected and Uninfected Immature Ixodes persulcatus during Cofeedng on Mice II J. Parasitd. -1997. Vd. 83 (3). — P. 547−550-
  261. Schoeler G.B., Lane R.S. Effidency of transovarial transmission of the Lyme dsease spirochete, Borrelia burgdorferi, in the western blacklegged tick, Ixodes patiticus (Acari: Ixoddae) II J. Med. Entomd. -1993. Vd. 30 (1). — P. 80−86-
  262. Schonberg A., Carney C., Kahl O. et al. First Isdation of Borrelia burgdorferi, the Agent of Lyme Borreliosis, from Ixodes nanus (Acari: Ixodidae) in Berlin (West) II Zbl. Bakt Hyg. -1988. A 268. — P. 487−494-
  263. Schouls LM., Van De Pol I., Rijpkema S.G.T, Schot C.S. Detection and Identification of Ehrlichia, Borrelia burgdorferi Sensu Lato, and Bartonella Species in Dutch Ixodes ricinus Ticks II J. Clin. Microbid. -1999. Vd. 37, N 7. — P. 2215−2222-
  264. Schulze T. L, Bowen G.S., Bosler EM. et al. Lyme Disease in New Jersey II Sdence. -1984. Vd. 224. — P. 601−603-
  265. Schulze T. L, Lakat M.F., Parkin W. E et al. Comparison of Rates of Infection by the Lyme Disease Spirochete in Selected Populations of Ixodes dammini and Amblyomma americanum (Acari: Ixoddae) II Zbl. Bakt Hyg. -1986. A 263. — P. 7278-
  266. Schwartz J., Gazumyan A, Schwartz I. rRNA gene organization in the Lyme dsease spirochete, Borrelia burgdorferi II J. Bacterid. -1992. Vd. 174. — N11. — P. 3757−65-
  267. Schwartz I., Varde S., Nadelman R.B. et al. Inhibition of efficient pdymerase chain reaction amplification of Borrelia burgdorferi DNA in blood-fed ticks // Am. J. Trap. Med Hyg. -1997. Vd. 56 (3). — P. 339−342-
  268. Scoles G A, Papero M. f Beati L, Fish D. A Rdapsing Fever Group spirochete Transmitted by Ixodes scapularis Ticks II Vector Borne Zoonotic Disease 2001. — Vd. 1, N 1. — P. 21−34. — Maiy Ann Liebert, Inc.-
  269. Scrimenti R.J. Erythema chronicum migrans //Arch. Dermatol. -1970. Vol. 102. -P. 104−5-
  270. Sinskl E, Pawelczyk A. Detection of Reservoirs for Lyme Borreliosis in the Mazury District, Poland // Zenl Bl. Bacterid. -1999.-Vd. 289/5 6.-P.698−703-
  271. Sonenshine D.E., Ratzlaff R.E., Tpoyern J. et al. Borrelia burgdorferi in Eastern Virginia: Comparison between a Coastal and Inland Locality//Am. J. Trap. Med. Hyg. -1995. Vd. 53 (2). — P. 123−133-
  272. Stanczak J., Okroy-Kysop G., Racewicz M. et al. Prevalence of Borrelia burgdorferi sensu lato in the sdected Ixodes nanus (Acari: Ixoddae) population in the Weilburg forest, Hesse. Germany II InL J. Med Microbid. 2002. — 291, Suppl. 33. — P. 206 209-
  273. Stanek G., Burger I., Hirschel A. et al. Borrelia Transfer by Ticks During Their Life Cyde // Zbl. BacL Hyg. -1986. A 263. -P. 29−33-
  274. Steere AC., Broderick T.F., Mafawista S. E Erythema chronicum migrans and Lyme arthritis: Epidemidogic evidence for a tick vector II Am. J. Epidemid. -1978. Vd. 108. — P. 312−321-
  275. Steere AC., Grodzicki R. L, Kornblatt AN. et al. The spirochetal etidogy d Lyme dsease II New England J. Medcine. -1983, — Vd.308.-P.733−740-
  276. Steere AC., Malawista S. E, Hardin JA et al. Erythema chronicum migrans and Lyme arthritis: The enlarging clinical spectrum //Ann. Internal. Med -1977. Vd. 86. — P. 685−698-
  277. Stiernstedt G. Tick-bome Borrelia infection in Sweden II Scand J. Infect Dis. -1985. Suppl. 45. — P. 1−69-
  278. Stromdahl E., Kollars T.M., Guitekrez AG. et al. Evidence d Borrelia DNA sequences in Amblyomma americanum ticks IIIX International Conference on Lyme Borreliosis and other tick-bome dsease. August 18−22,2002, New York, New York-
  279. Takada N., Ishiguro F., lida H. et al. Prevalence of Lyme Borrelia in ticks, espetially Ixodes persulcatus (Acarina, Ixodidae), in Central and Western Japan// J. Med. Entomd.-1994.-Vd.31(3).-P. 474−478-
  280. Talleklint L Lyme borreliosis spirochetes in Ixodes ricinus and Haemaphysalis punctata ticks (Acari: Ixoddae) on three islands in the Baltic Sea // Exp. Appl. Acard. -1996. Vd. 20. — P. 467−476-
  281. Talleklint L, Jaenson T.G.T. Maintenance by Hares of European Borrelia burgdorferi in Ecosystems without rodents II J. Med. Entomd. -1993. Vd. 30 (1). — P. 273−276-
  282. Talleklint L, Jaenson T.G. Transmission of Borrelia burgdorferi s.l. from mammal reservoirs to the primary vector of Lyme borreliosis, Ixodes ricinus (Acari: Ixoddae), in Sweden II J. Med Entomd. -1994. Vd. 31. (6). — P. 880−6-
  283. Talleklint L, Jaenson T.G. Relationship between Ixodes ricinus density and prevalence of infection with Borre//e-like spirochetes and density of infected ticks // J. Med Entomd. -1996. Vd. 33 (5). — P. 805−11-
  284. Taseva E. Study of Ixodes ticks (Acarina, Ixoddae) for infection with Borreliae and Ehrlichiae in the parks d Sofia city and its surroundng II Pers. comm., 2001-
  285. Telford III S.R., Mather T.N., Moore S.I. et al. Incopetence of deer as reservdrs of the Lyme dsease spirochete // Am. J. Trop. Med Hyg. -1988. Vd. 39. — P. 105−109-
  286. Thyresson N. The penicillin treatment d acrodermatitis chronica atrophicans (Herheimer) II Acta Dermato-Venerologica (Stockhdm) -1949. Suppl. 29. — P. 572−621-
  287. Toutoungi L.N., Gern L Ability of transovarially and subsequent transstadially infected Ixodes hexagonus tick to maintain and transmit Borrelia burgdorferi in the laboratory// Exp. Appl. Aoarol. -1993. Vol. 17. — P. 581−586-
  288. Tylewska-Wierzbanowska S., Kruszewska D., Chmielewski T. Use of indirect immunofluorescence and polymerase chain reaction (PCR) for detection of Borrelia burgdorferi in ticks // Przegl. Epidemiol. (Polish). -1996. Vol. 50. — P. 239−244-
  289. Uchikawa K., Mukamatsu K., Miyamoto K, Nakao M. An extensive prevalence of Borrelia burgdorferi, the etiologic agent of Lyme borreiiosis, in Nagano Prefecture, Japan // Jpn. J. Sanit Zool. -1991. Vol. 42. — N 4. — P. 293−299-
  290. Vasiliu V., Herser P., Rossler D. et al. Heterogeneity of Borrelia burgdorferi sensu lato demonstrated by an Osp A type specific PCR in synovial fluid from patients with Lyme arthritis // Med Microbiol. Immunol. -1998. — Vol. 187 (2). — P. 97−102-
  291. Wallich R., Moter S. E, Simon M.M. et al. The Borrelia burgdorferi flageHun-associated 41-kilodalton antigen (flagellin): molecular cloning, expression, and amplification of the gene//Infect Immun. 1990.-Vol. 58.-P. 1711−1719-
  292. Wang G., van Dam A.P., Dankert J. Phenotypic and Genetic Characterization of a Novel Borrelia burgdorferi Sensu Lato Isolate from a Patient with Lyme Borreiiosis // J. Clin. Microbiol. -1999. Vol. 37. — N 9. — P. 3026−3028-
  293. Wang G., Van Dam A.P., Schwartz I., Dankert J. Molecular typing of Borrelia burgdorferi sensu lato: taxonomic, epidemiological, and clinical implications II Clin. Microbiol. Rev. -1999. Vol. 12. — P. 633−653-
  294. Wang G., Van Dam A.P., Le Fleche A. et al. Genetic and phenotypic analysis of Borrelia valaisiana sp. nov. (Borrelia genomic groups VS116 and M19) II Int J. Syst Bact -1997. Vol. 47. — P. 926−932-
  295. Weber K. Erythema-chronicum-migrans-Meningitis eine bacterielle Infections-krankheit II MQnchhen Medzinische Wochenschrift -1974. — Suppl. 116. — P. 1993−1998-
  296. Wilske В., Preac-Mursic V., Schierz G. Antigenic heterogeneity of European Borrelia burgdorferi strains isolated from patients and ticks II Lancet -1985. May 11. — P. 1099-
  297. Wilson M. L, Gonzalez J.P., Comet J.P., Camicas J. L Transmission of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus from experimentally infected sheep to Hyalomma truncatum ticks // Res. Virol. -1991. Vol. 142. — P. 395−404-
  298. Wittenbrink M.M., Thiele D., Krauss H. Comparison of dark-field microscopy, culture and polymerase chain reaction (PCR) for detection of Borrelia burgdorferi in field-collected Ixodes ricinus ticks. II Zbl. Bact -1994. Vol. A 281. — P. 183−191-
  299. Yano Y., Ishiguro F4 Takada N. Preliminary Observation on Ultrastmcture of Borreliae in Tissues of Ixodes persulcatus II Microbiol.Immunol.-1993.-Vol. 37(11).-P. 905−907-
  300. Yin H., Lu W.S., Luo JX et al. Experiments on the transmission of Babesia major and Babes/a bigemina by Haemaphysalis punctata II Veterinary Parasitology -1996. Vol. 67. — P. 89−98-
  301. Younsi H., Postic D., Baranton G., Bouattour A. High prevalence of Borrelia lusitarv’ae in Ixodes ricinus ticks iA Tunisia II Europ. J. Epidemid. 2001. — Vd. 17 (1). — P. 53−56-
  302. Zakovska A. Monitoring the presence of Borrelia in Ixodes ricinus ticks in Bmo park Pisarky, Czech Republic // Bidogia -2000.-Vd. 55 (6).-P. 661−666-
  303. Zhioua E., Gern L, Aeschlimann A. Infection d field-collected Ixodes nanus (Acari: Ixoddae) larvae with Borrelia burgdorferi in Switzerland II J. Med Entomd. -1994. Vd. 31. — P. 763−766-
Заполнить форму текущей работой