Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Изучение механизмов регуляции водопроницаемости плазмодесм и тонопласта импульсным методом ЯМР

Диссертация: Изучение механизмов регуляции водопроницаемости плазмодесм и тонопласта импульсным методом ЯМР
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Поток воды по тканям растения может идти двумя путями: внеклеточному (апопластному) и трансклеточному. Оказалось, что эти два пути взаимодействуют между собой: при уменьшении водного потока по апопластному пути может увеличиваться водопроницаемость трансклеточного. В механизме соответствующих переключений существенная роль может принадлежать’фитогормону стресса — абсцизовой кислоте (АБК). Роль… Читать ещё >

Содержание

  • Глава 1. Современные представления о плазмодесмах и аквапоринах как структурных элементах растительной ткани, обеспечивающих регуляцию трансклеточного водообмена
    • 1. 1. Структура, функции и биогенез плазмодесм
      • 1. 1. 1. Плазмодесмы — межклеточные «мостики»
      • 1. 1. 2. Биогенез плазмодесм
      • 1. 1. 3. Регуляция пропускающего размера (SEL) плазмодесм
      • 1. 1. 4. Регуляция симпластной проницаемости ионами II группы
      • 1. 1. 5. Внутренний сфинктер плазмодесм
      • 1. 1. 6. Внешний сфинктер плазмодесм
      • 1. 1. 7. Роль плазмодесм в межклеточном транспорте воды
    • 1. 2. Строение, систематика и особенности регуляции аквапоринов
      • 1. 2. 1. Общие представления об аквапоринах
      • 1. 2. 2. Строение аквапоринов
      • 1. 2. 3. Многообразие аквапоринов
      • 1. 2. 4. Регуляция работы аквапоринов
  • Постановка цели и задач диссертации
  • Глава 2. Физические аспекты самодиффузии молекул в пористых средах
    • 2. 1. Метод ЯМР с импульсным градиентом магнитного поля в исследовании самодиффузии
    • 2. 2. Простейшие примеры ограниченной диффузии
    • 2. 3. Зависимость эффективного коэффициента самодиффузии в пористых системах от времени диффузии
      • 2. 3. 1. Режим малых времен диффузии
      • 2. 3. 2. Режим промежуточных времен диффузии
      • 2. 3. 3. Длинновременной режим диффузии
  • Глава 3. Новые аргументы в пользу существования вакуолярного симпласта
  • Глава 4. Регуляция водопроницаемости вакуолярного симпласта
  • Глава 5. Изменение уровня гидратации акто-миозиновых белков, локализованных в цитоплазматическом канале плазмодесм, как возможный механизм регуляции водопроницаемости этого канала
  • Выводы

Изучение механизмов регуляции водопроницаемости плазмодесм и тонопласта импульсным методом ЯМР (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. На современном этапе исследований [13, 14, 15] возникли новые представления о структурно-функциональной организации транспортной системы высших растений. В частности, предполагается существование в растительной ткани не только цитоплазматического симпласта, но и другого надклеточного континуума, образованного эндоплазматическими пространствами (вакуолями) соседних клеток с помощью десмотрубочек (второго транспортного канала в плазмодесмах). В настоящей работе такой надклеточный континуум будем называть вакуолярным симпластом.

Предполагается, что водопроницаемость вакуолярного симпласта контролируется как водопроницаемостью десмотрубочек, способных изменять свой просвет или совершать переходы из открытого в закрытое состояние и обратно за счет локализованного в плазмодесмах акто-миозинового сфинктера [13], так и водопроницаемостью вакуолярной мембраны (тонопласта), которая также способна к регуляции, поскольку связана со специфическими белками аквапоринами [232].

Поток воды по тканям растения может идти двумя путями: внеклеточному (апопластному) и трансклеточному. Оказалось, что эти два пути взаимодействуют между собой: при уменьшении водного потока по апопластному пути может увеличиваться водопроницаемость трансклеточного. В механизме соответствующих переключений существенная роль может принадлежать’фитогормону стресса — абсцизовой кислоте (АБК) [176]. Роль плазмодесм и тонопласта в регуляции трансклеточного водообмена, при этом, остается не раскрытой. Это обстоятельство и определило цель и задачи данной работы.

Цель и задачи исследования

Цель работы состояла в изучении механизмов регуляции водопроницаемости тонопласта и транспортных каналов плазмодесм с позиции существования вакуолярного симпласта. Исходя из указанной цели, были поставлены следующие задачи:

1. Получить дополнительные экспериментальные доказательства, подтверждающие идею о вакуолярном симпласте, как регулируемом русле водообмена у растений, и разработать ЯМР-подход для контроля водопроницаемости этого симпласта.

2. Изучить влияние экзогенной АБК и ингибитора энергетического метаболизма — азида натрия — на водопроницаемость десмотрубочек и тонопласта как структурных элементов вакуолярного симпласта, предположительно обеспечивающих регуляторные возможности этой транспортной системы.

3. Выяснить влияние некоторых ингибиторов акто-миозиновых белков цитоскелета на параметры диффузионного затухания спинового эха от протонов клеточной воды и обсудить роль предполагаемых изменений уровня гидратации подобных белков, локализованных внутри цитоплазматического канала плазмодесм, в регуляции водопроницаемости этого канала.

Научная новизна работы. При изучении особенностей ограниченной диффузии молекул воды в тканях корня, были получены новые аргументы в пользу существования вакуолярного симпласта. Разработан методический подход к изучению водопроницаемости этого симпласта методом спинового эха ЯМР (на протонах) с импульсным градиентом магнитного поля (метод ЯМР ИГМП). Установлено, что АБК оказывает влияние на водопроницаемость вакуолярного симпласта только путем временного увеличения водопроницаемости его мембраны — тонопласта — и не затрагивает водопроницаемость десмотрубочек. Показано, что водопроницаемость десмотрубочек вакуолярного симпласта АТФ-зависима. Выдвинута гипотеза о том, что акто-миозиновые белки локализованные внутри цитоплазматического канала плазмодесм, могут регулировать его водопроницаемость за счет изменения уровня собственной гидратации.

Теоретическая и практическая значимость работы. Полученные результаты подтверждают гипотезу о существовании в растительной ткани не только цитоплазматического, но и вакуолярного симпласта, водопроницаемость которого контролируется как водопроницаемостью десмотрубочек, так и водопроницаемостью тонопласта.

Разработан новый методический подход к изучению механизмов регуляции трансклеточного пути водообмена в растениях методом ЯМР ИГМП. Материалы диссертации могут быть рекомендованы для включения в лекционные курсы по физиологии растений и биофизике транспортных процессов в растениях.

Работа выполнена в лаборатории биофизики транспортных процессов Казанского института биохимии и биофизики КазНЦ РАН.

ВЫВОДЫ.

При изучении особенностей ограниченной самодиффузии молекул воды вакуолярных компартментов клеток корня в нормальных условиях и в условиях применения ингибитора энергетического метаболизма азида натрия получены новые экспериментальные доказательства существования вакуолярного симпласта как межклеточного континуума.

Разработан методический подход для контроля водопроницаемости структурных элементов вакуолярного симпласта (десмотрубочек и тонопласта) методом ЯМР с импульсным градиентом магнитного поля.

При изучении влияния экзогенной АБК и ингибитора энергетического метаболизма азида натрия на водопроницаемость вакуолярного симпласта обнаружена аддитивность действия этих двух агентов.

Показано, что АБК влияет на водопроницаемость вакуолярного симпласта только путем временного увеличения водопроницаемости его мембраны — тонопласта и не затрагивает водопроницаемость десмотрубочек, в то время как под влиянием азида натрия изчезла межвакуолярная диффузионная связь по десмотрубочкам, которая контролируется АТФ-зависимым процессом.

Обнаружено, что действие АБК на водопроницаемость тонопласта осуществляется напрямую, без затрат АТФ, предполагается важная роль аквапоринов и/или ионных каналов тонопласта в эффекте АБК на водопроницаемость этой мембраны.

Установлено, что под действием ингибиторов акто-миозиновых элементов цитоскелета происходят изменения в уровне гидратации последнего, на основании чего выдвинута гипотеза, что акто-миозиновые белки цитоскелета, расположенные вдоль всего цитоплазматического канала плазмодесм, могут влиять на водопроницаемость этого канала за счет изменения уровня собственной гидратации.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , А.В. Транспорт воды в растениях. Исследование импульсным методом ЯМР / А. В. Анисимов, С.Раткович.// М.: Наука. 1992. — 144 с.
  2. , А.Е. Сравнительная структурно-функциональная характеристика цитоскелета животных и высших растений / А. Е. Васильев // Журнал общей биологии. 1996. — Т.57. -№ 3. — С.293−325.
  3. , Е.Н. Самодиффузия в регулярных пористых системах (Метод ЯМР с импульсным градиентом магнитного поля) / Е. Н. Васина,
  4. B.Д.Скирда, В. И. Волков // Учебное пособие для студентов физического факультета. Казань: Изд-во Казанского университета. 2001. — 50 с.
  5. , Д.Б. Тимирязевские чтения XLIX. Пространственная организация ионного транспорта в корне / Д. Б. Вахмистров // М.: Наука. -1991.-49 с.
  6. , А.А. Ядерная магнитная релаксация и ее применение в химической физике / А. А. Вашман, И. С. Пронин // М.: Наука. 1979. -236с.
  7. Вакуолярный симпласт регулируемое русло для водообмена у растений / Г. А. Великанов, О. В. Волобуева, Л. П. Белова, Е. М. Гапоненко // Физиология растений. — 2005. — Т. 52. — С. 372−377. .
  8. , Г. А. Водообмен и системы переноса ионов у клеток в высших растениях // Автореф. дис.. докт. биол. наук: (03.00.02) / Г. А. Великанов // Ин-т биол. клетки РАН. Изд-во Каз. ун-та, 1997. — 34с.
  9. , Г. А. Изучение водопроницаемости транспортных каналов плазмодесм по данным импульсного метода ЯМР / Г. А. Великанов, О. В. Волобуева, Л. П. Хохлова // Физиология растений. 2001. — Т. 48.1. C.375−383.
  10. , Г. А. Неэкспоненциальное диффузионное затухание спинового эха от протонов воды в корне пшеницы / Г. А. Великанов, О. В. Волобуева,
  11. О.А.Опанасюк // Известия АН. Серия биологическая. 2002. — № 2. — С. 165−171.
  12. , Г. А. Самодиффузия воды внутри вакуолярного и цитоплазматического симпластов / Г. А. Великанов, О. В. Волобуева, Л. П. Хохлова // Доклады Российской Академии наук -. 1999. Т.368, — № 3. -С.420−422.
  13. , В.Я. Исследование трансляционных движений молекул жидкостей в пористых средах импульсным методом ЯМР // Дисс. кандидата физ.-мат. наук / В. Я. Волков // КГУ. — Каз. типогр., 1976.
  14. , О.В. Особенности регуляции межклеточного водообмена в разных зонах корня кукурузы в условиях осмотического и гормонального стрессов / О. В. Волобуева, Г. А. Великанов, Ф. Балушка // Физиология растений. 2004. — Т. 51. — С. 751−758.
  15. , Ю.В. Надклеточная организация растений / Ю. В. Гамалей // Физиология растений. 1997. — Т.44. — С.819−846.
  16. , Ю.В. Транспортная система сосудистых растений / Ю. В. Гамалей // СПб.: Изд-во С.-Петерб. ун-та. 2004. — 424 с.
  17. , Ю.В. Фотосинтез и экспорт фотосинтантов. Развитие транспортной системы и донорно-акцепотрных отношений / Ю. В. Гамалей // Физиология растений. 1998. — Т.45. — С.614−631.
  18. , Н.А. Состояние воды в растении / Н. А. Гусев // Москва: Наука. -1974.- 134с.
  19. , Б.В. Некоторые применения идей Гиббса в статистической термодинамике поверхностных явлений / Б. В. Дерягин // В кн.: Современная теория капиллярности. JL: Химия. — 1980. — С.86−99.
  20. , П.М. Ботаника / П. М. Жуковский // 5-е изд. испр. и доп. М.:1. Колос. 1982.-380 с.
  21. Природный ингибитор роста абсцизовая кислота / В. И. Кефели, Э. М. Коф, П. В. Власов, Е. Н. Кислин // М.: Наука. — 1989. — 484 с.
  22. , A.M. Ионная проницаемость-мембраны изолированной вакуоли Beta vulgaris L. / А. М. Корзун, Р. К. Саляев // Доклады АН СССР. 1984. — Т. 277.-С. 1020−1024.
  23. , А.И. Самодиффузия в растворах и расплавах полимеров /
  24. A.И.Маклаков, В. Д. Скирда, Н. Ф. Фаткуллин // Казань: Изд. Казанского университета. 1987. — 224 с.
  25. , Ю.М. Что такое математическая биофизика (Кинетические модели в биофизике) / Ю. М. Романовский, Н. В. Степанова, Д. С. Чернавский //М.: Просвещение. -1971, — 136 с.
  26. , Ч. Основы теории магнитного резонанса // Пер. с англ.- под ред. Г. В. Скроцкого. М.: Мир. — 1981. — 448с.
  27. , Т. Импульсная и Фурье-спектроскопия ЯМР / Т. Фаррар, Э. Беккер // Пер. с англ.- под ред. Э. П. Федина. М.: Мир. — 1973. — 164с.
  28. Макрокинетика процессов в пористых средах / Ю. А. Чизмаджев,
  29. B.С.Маркин, М. Р. Тарасевич, Ю. Г. Чирков // М.: Наука. 1971. — 363 с.
  30. , А.Ю. Аквапорины: строение, систематика и особенности регуляции / А. Ю. Шапигузов // Физиология растений. Т.51. — № 1.1. C.142−152.
  31. Aquaporins CHIP: the archetypal molecular water channel / P. Agre, G. Preston, B. Smith et al. // Am. J. Physiol. 1993. — V.265. — P. F463-F476.
  32. Agre, P. Molecular physiology of water transport: Aquaporine nomenclature workshop. Mammalian aquaporins/ P. Agree // Biol. Cell. 1997. — V.89. -P.255−257.
  33. Cloned human aquaporin-I is a cyclic GMP-gated ion channel / T. Anthony, H. Brooks, D. Boassa et al. // Mol. Pharmacol. 2000. — V.57. — P. 576−588.
  34. Pulsed-field-gradient NMR analogue of the single-slit diffraction pattern // M. Appel, G. Fleischer, D. Geschke et al. // J. Magn. Reson. A. 1996. — V.122. -P.248−250.
  35. Asada, T. Molecular motors in higher plants / T. Asada, D. Collings // Trends Plant Science. 1997. — V.2. — P.29−37.
  36. Plant aquaporins / I. Baiges, A. Schaffner, M. Affenzeller, A. Mas // Physiol. Plant. 2002. — V. l 15. — P. 175−182.
  37. Phloem sap proteins from Cucurbita maxima and Ricinus communis have the capacity to traffic cell-to-cell through plasmodesmata / S. Balachandran, Y. Xiang, C. Schobert et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997. — V.94. -P.14 150−14 155.
  38. Plant calreticulin is specifically and efficiently phosphorylated by protein kinase CK2 / B. Baldan, L. Navazio, A. Friso et al. // Biochem. Biophys. Rec. Commun. 1996. — V.221. — P.498−502.
  39. Baluska, F. A polarity crossroad in the transition growth zone of maize root apices: cytoskeletal and developmental implications / F. Baluska, D. Volkmann, P. Barlov // J. Plant Growth Regul. 2001. — V.20. — P. 170−181.
  40. Baluska, F. Actin and myosin VIII in developing root cells / F. Baluska, P.W. Barlow, D. Volkmann // Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands. 2000b. — P.457−476.
  41. Baluska, F. Actin-based domains of the «cell periphery complex» and their associations with polarized «cell bodies» in higer plants / F. Baluska, D. Volkmann, P.W. Barlow // Plant Biol. 2000a. — V.2. — P.253−267.
  42. Maize calreticulin lacalizes preferentially to plasmodesmata in root apex / F. Baluska, J. Samaj, R. Napier, D. Volkmann // Plant J. 1999. — V.19, — № 4. -P.481−488.
  43. Rearrandements of F-actin arrays in growing cells of intact maize root apex tissues: a major developmental switch occurs in the postmitotic transition region / F. Baluska, S. Vitha, P.W.Barlow, D. Volkmann // Eur, J. Cell Biol. -1997.-V. 72.- P. 113−121.
  44. Sink plasmodesmata as gateways for phloem unloading. Myosin VIII and calreticulin as molecular determinants of sink strenght / F. Baluska, F. Curkova, J. Kendrick-Jones, D. Volkmann // Plant Physiol. 2001. — V.126. — P.39−46.
  45. Dynamic continuity of cytoplasmic and membrane compartments between plant cells / O. Baron-Epel, D. Hernandez, L.-W. Jiang et al. // J. Cell Biol. 1988. -V.106.-P.715−721.
  46. Barrowclough, D. Radial hydraulic conductivity along developing onion roots / D. Barrowclough, C. Peterson, E. Steudle // J. Exp. Bot. 2000. — V. 51. — P. 547 557.
  47. Belister, N.V. Ca -binding sites and Ca -ATPase activity in barley root tip cells /N.V. Belister, G.V. Zaalishvili, N.P. Sytnianskaja// Protoplasma. 1982. — V.111.-P.63−78.
  48. Analysis of the pore of the unusual major intrinsic protein channel, yeast Fpslp / R. Bill, K. Hedfalk, S. Karlgren et al. // J. Biol. Chem. 2001. — V.276. — P. 36 543−36 549.
  49. Boassa, D. A fascinating tail: cGMP activation of aquaporin-1 ion channels / D. Boassa, A. Yool // Trends Pharmacol. Sci. 2002. — V.23. — P. 558−562.
  50. Virus mediated delivery of the green fluorescent protein to the endoplasmic reticulum of plant cells / P. Boevink, S. Santa Cruz, C. Hawes et al. // Plant J. -1996.-V.10.-P.935−941.
  51. Calreticulin expression in plant cells: developmental regulation, tissue specificity and intracellular distribution / N. Borisjuk, L. Sitailo, K. Adler et al. // Planta. 1998. — V.206. — P.504−514.
  52. Braun, M. Immunolocalization of myosin in rhizodids of Chara globularis Thuill / M. Braun // Protoplasma. 1996. — V. 191. — P. 1−8.Щ
  53. Burgess, J. Observation on structure and diffentiation in plasmodesmata / J. Burgess // Protoplasma. 1971. — V.73. — P.83−95.
  54. Diffusion in porouse systems and the influence of pore morphology in pulsed gradient spin-echo nuclear magnetic resonance studies / P.T. Callaghan, A. Coy, T.P.J. Halpin et al. // J. Chem. Phys. 1992. — V.97. — P.651.
  55. Callaghan, P.T. Generalised calculation of NMR imaging edge effects arising from restricted diffusion in porous media / P.T.Callaghan, S.L.Codd // Magn. Reson. Imaging. 1998. — V. 16. — P. 471−477.
  56. Callaghan, P.T. Generalized analysis of motion using magnetic field gradients / P.T. Callaghan, J. Stepishnik // in «Advences in magnetic and optical resonans» (W.S. Warren, Ed.). Academic Press, San Diego. — 1996. — Vol.19. — P.326−389.
  57. Callaghan, P.T. High magnetic field PGSE NMR in the presence of a large polarizing field // P.T. Callaghan, M.E. Komlosh, M. Nyden // J. Magn. Reson. 1998. — V.133. -P.177−182.4 I
  58. Camacho, P., L. Calreticulin inhibits repetitive intracellular Ca waves / P. Camacho, J.D. Lechleiter// Cell. 1995. — V.82. — P.765−771.
  59. Cantrill, L.C. Changes in symplastic permeability during adventitious shoot regeneration in tobasso thin cell layers / L.C.Cantrill, R.L.Overall,
  60. P.B.Goodwin // Planta. 2001. — V. 211. — P. 188−194.
  61. Carr, D.J. Plasmodesmata in growth and development / In: Intercellular communications in plants: studies on plasmodesmata. B.E.S. Gunning, A.W. Robards, Eds // Springer, Berlin Heilderberg New York. 1976a. — P.243−289.
  62. Carvajal, M. Responses of wheat plants to nutrition deprivation may involve the regulation of water-channel function // M. Carvajal, D. Cooke, D. Clarkson // Planta. 1996. — V. 199. — P. 372−381.
  63. Intercellular calcium signaling via gap junctions in glioma cells / A.C. Charles, C.C.G. Naus, D. Zhu et al. //J. Cell Biol. 1992. — V. l 18. — P.195−201.
  64. Plasma membrane intrinsic proteins from maize cluster in two sequence subgroups with differential aquaporin activity / F. Chaumont, F. Barrieu, R. Jung,
  65. M.Chrispeels // Plant Physiol. 2000. — V. 122. — P. 1025−1034.
  66. Interaction between the tobacco mosaic virus movement protein and host cell pectin methylesterases is required for viral cell-to-cell movement / M.H. Chen, J. Sheng, G. Hind et al. // EMBO J. 2000. — V.19. — P.913−920.
  67. Heterotrimeric G-protein and signal transduction in the nematode-trapping fungus Arthrobotrys dactyloides / T. Chen, C. Hsu, P. Tsai et al. // Planta. 2001. -V. 212.-P. 858−863.
  68. Chrispeels, M. Proteins for transport of water and mineral nutrients across the membranes of plant cells / M. Chrispeels, N. Crawford, J. Schroeder // Plant Cell. 1999. — V.11.-P.661−676.
  69. Intercellular diffusion of Ca in cultured human corporal smooth muscle cells / G.J. Christ, A.P. Moreno, A. Melman, D.C. Spray // Am. J. Physiol. 1992. -V.263. — P.373−383.
  70. Phosphorylation of tobacco mosaic virus cell-to-cell movement protein kinase / V. Citovsky, B.G. McLean, J.R. Zupan, P. Zambryski // Genes Dev. 1993. -V.7. — P.904−910.
  71. Root hydraulic conductance: Diurnal aquaporin expression and the effects of nutrient stress / D. Clarkson, M. Carvajal, T. Henzler et al. // J. Exp. Bot. 2000. -V. 51.-P. 61−70.
  72. Clarkson, D.T. The mineral nutrition of higher plants / D.T. Clarkson, J.B. Hanson // Annu. Rev. Plant Physiol. 1980. — V.31. — P.239−298.
  73. Cleland, R.E. Plasmodesmata-mediated cell-to-cell transport in wheat roots in modulated by anaerobic stress / R.E.Cleland, T. Fujiwara, W.J.Lucas // Protoplasma. 1994. — V. 178. — P. 81−85.
  74. Transport of volatile solutes through AQP1 / G. Cooper, Y. Zhou, P. Bouyer, I. Grichtchenko // J. Physiol. 2002. — V.542. — P. 17−29.
  75. Conservation within the motor domain: implications for structure and function / M.J.T.V. Cope, J. Whisstock, I. Rayment, J. Kendrick-Jones // Structure.1996. V.4. — P.969−987.
  76. Calreticulin is essential for integrin-mediated calcium signalling and cell adhesion / M.G. Coppolino, M.J. Woodside, N. Demaurex et al. // Nature.1997.-V.386.-P.843−847.
  77. Inducible interaction of Integrin alpha 2 beta 1 with calreticulin. Dependence on the activation state of the integrin / M.G. Coppolino, C. Leung-Hagesteijn, S. Dedhar, J. Wilkins//J. Biol. Chem. 1995. — V.270. — P.23 132- 23 138.
  78. Cote, G.G. Biochemistry of phosphoinositides / G.G. Cote, R.C. Crain // Ann.Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1993. — V.44. — P.333−356.
  79. Coy, A. Pulsed gradient spin echo nuclear magnetic resonance for molecules diffusing between partially refrecting rectangular barriers / A. Coy, P.T. Callaghan // J. Chem. Phys. 1994. — V.101. — P.4599−4609.
  80. Crawford, K.M. Subcellular localization determines the availability of non-targetes proteins to plasmodesmatal transport / K.M. Crawford, P.C. Zambryski // Curr. Biol. 2000. — V.10. — P. 1032−1040.
  81. Characterization of a new vacuolar membrane aquaporin sensitive to mercury at a unique site / M. Daniels, F. Chaumont, T. Mirkov, M. Chrispeels // Plant Cell. -1996. V.8. — P.587−599.
  82. Dedhar, S. Novel function for calreticulin: interaction with integrins and modulation of gene expression / S. Dedhar // Trends Biochem. Sci. 1994. -V.19. — P.269−271.
  83. The tobacco homolog of mammalian calreticulin is present in protein complex in vivo / J. Denecke, L.E.Carlsson, S. Vidal et al. // Plant Cell.- 1998. V.7.-P.391−406.
  84. Identification, purification and partial characterization of a novel Mr 28.000 integral membrane protein from erythrocytes and renal tubules / B. Denker, B. Smith, F. Kuhajda, P. Agre // J. Biol. Chem. 1988. — V.263. — P.15 634−15 642.
  85. Derrick, P.M. Increase in plasmodesmatal permeability during cell-to-spread of tobacco rattle virus from individually inoculated cells / P.M. Derrick, H. Barker, K.J. Oparka // Plant Cell. 1992. — V.4. — P. 1405−1412.
  86. Ding, B. Intercellular protein trafficking through plasmodesmata / B. Ding // Plant Mol. Biol. 1998. — V.38. — P.279−310.
  87. Correlation between arrested secondary plasmodesmal development and the onset of accelerated senescence in yeast acid invertase transgenic tobacco / B. Ding, J.S. Haudenshield, L. Willmitzer, W.J. Lucas // Plant Journal. 1993. -V.4. — P.179−189.
  88. Ding, B. Evidence that actin filaments are involved in controlling the permeability of plasmodesmata in tobacco mesophyll / B. Ding, M.O. Know, L. Warnberg // Plant J. 1996. — V.10. — P. 157−164.
  89. Ding, B. Secondary plasmodesmata: biogenesis, special functions and evolutions / B. Ding, W.J. Lucas // In: Smallwood M, Knox J.P., Bowles D.J., Eds, Membranes: specialized functions in plants. Oxford: BIOS Scientific Publishers. 1996. — P.489−506.
  90. A novel function for a uniquitous plant enzyme pectin methylesterase: the host-cell receptor for the tobacco mosaic virus movement protein / Y.L. Dorokhov, K. Makinen, O.Y. Frolova et al. // FEBS Lett. 1999. — V.461. — P.223−228.
  91. Drake, G. Plasmolysis, plasmodesmata, and the electrical coupling of oat coleoptile cells / G. Drake, D.J. Carr, W.P. Anderson // J. Exp. Bot. 1978. -V.29. — P.1205−1214.
  92. Identification of calreticulin-like protein as one of the phosphoproteins modulated in response to oligogalacturonides in tobacco cells / M.-J. Droillard, J. Guclu, J.-P. Le Caer et al. // Planta. 1997. — V.202. — P.341−348.
  93. Dye-coupling in the root epidermis of Arabidopsis is progressively reduced during development / C.M.Duckett, K.J.Oparka, D.A.M.Prior et al. // Development. 1994. — V.120. — P.3247−3255.к
  94. Dusschoten, D. van. Extraction diffusion constants from echo-time dependent PFG NMR data using relaxation-time information / D. van Dusschoten, P.A. de Jager, H. van As // J. of Magnetic Resonance. 1995. — Series A 116. — P. 22−28.
  95. Echevarria, M. Aquaporins / M. Echevarria, A. Hundain // J. Physiol. Biochem. -1998.-V. 54.-P. 107−118.
  96. Ehlers, K. Formation of branched plasmodesmata in regenerating Solanum nigrum protoplasts / K. Ehlers, R. Kollmann I I Planta. 1996. — V.199. — P. 126 138.
  97. Ehlers, K. Subcellular localization of ubiquitin in plant protoplasts and the function of ubiquitin of selective degradation of outer-wall plasmodesmata in regenerating protoplast / K. Ehlers, M. Schulz, R. Kollmann // Planta. 1996. -V.199.-P.139−151.
  98. Erwee, M.G. Characterization of the Egeria densa symplast. Inhibition of the intercellular movement of fluorescent probes by group II ions / M.G.Erwee, P.B.Goodwin//Planta. 1983. — V.158. — P.320−328.
  99. Structural analysis of cloned plasma membrane proteins by freeze-fracture electron microscopy / S. Eskandari, E. Wright, M. Kreman et al. // Proc. Nail. Acad. Sci. USA. 1998. — V. 95. — P. 11 235−11 240.
  100. Glucose transporters serve as water channels / J. Fischbarg, K. Kuang, J. Vera et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990. — V.87. — P.3244−3247.
  101. Fisher, D.B. Post-phloem transport principles and problems / D.B.Fisher, K.J.Oparka // J. Exp. Bot. 1996. — V.47. — P. 1141−1154.
  102. Structure of a glycerol-conducting channel and the basis for its selectivity / D. Fu, A. Libson, L. Miercke et al. // Science. 2000. — V. 290. — P. 481−486.
  103. Pathway of phloem unloading of sucrose in corn roots / R.T.Giaquinta, W. Lin, N.L.Salder, V.R.Franceschi // Plant Physiol. 1983. — V.72. — P.362−367.
  104. Gilbertson, R.L. How do viruses traffic on the «vascular highway»? / R.L.Gilbertson, WJ. Lucas //Trends Plant Sci. 1996. — V.l. — P.260−267.
  105. Goldschmidt-Clermont, P.J. Profilin, a weak CAP for actin and RAS / P.J.Goldschmidt-Clermont, P. AJanmey // Cell. 1991. — V.66. — P.419−421.
  106. Goodwin, P.B. Use and limitations of fluorochromes for plasmodesmal research / P.B.Goodwin, L.C.Cantrill // Plasmodesmata. Structure, function, role in cell communication. Eds A.J.E. van Bel, W.J.P. van Kesteren. Berlin: Springer, 1999.-P. 68−84.
  107. The maior intrinsic protein (MIP) of the bovine lens fiber membrane: characterization and structure based on cDNA cloning / M. Gorin, S. Yancey, J. Cline et al II Cell. 1984. — V.39. — P.49−59.
  108. Grabski, S. Endoplasmic Reticulum forms a dynamic continuum for lipid diffusion between contiguous soybean root cells / S. Grabski, A.W. de Feijter, M. Schindler // Plant Cell. 1993. — V.5. — P.25−38.
  109. Gunning, B.E.S. Intercellular communication in plants: studies on plasmodesmata / B.E.S.Gunning, A.W.Robards // Springer, Berlin. 1976.
  110. Gunning, B.E.S. Plasmodesmata and cell-to-cell transport in plants / B.E.S.Gunning, RL. Overal // Bioscience. 1983. — V. 33. — P. 260−265.
  111. Gunning B.E.S. Plasmodesmata and symplastic transport // Transport and transfer processes in plants / B.E.S. Gunning, A.W. Robards // San Francisco- L.:Acad. Press. 1976. — P.15−41.
  112. Multiple serine phosphorylation sites on 30 kDa TMV cell-to-cell movement protein synthesized in tobacco protoplasts / A. Haley, T. Hunter, P. Kiberstis, D. Zimmern // Plant J. 1995. — V.8. — P.715−724.
  113. Hall, J.C. Localization of cell surface adenosine triphosphatase activity in maize roots / J.C. Hall // Planta. 1969. — V.85. — P. 105−107.
  114. Hassan, A.M. Calreticulin is the major Ca2±storage protein in the endoplasmic reticulum of the pea plant (Pisum sativum) / A.M.Hassan, C. Wesson, W.R.Trumble // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1995. — V.211. — P.54
  115. Changing patterns of localization of the tobacco mosaic virus movement protein and replicase to the endoplasmic reticulum and microtubules during infection / M. Heinlein, H.S.Padgett, J.S.Gens et al. // Plant Cell. 1998. — V.10. — P. l 1 071 120.
  116. Calnexin, calreticulin and the folding of glycoproteins / A. Helenius, E.S.Trombetta, D.N.Hebert, J.F.Simons // Trends Cell Biol. 1997. — V.7. -P. 193−200.
  117. Hepleer, P.K. Endoplasmic reticulum in the formation of the cell plate and plasmodesmata/P.K. Hepleer//Protoplasma. 1982. -V.111. — P. 121−133.
  118. Heymann, J. Aquaporins: phylogeny, structure, and physiology of water channels / J. Heymann, A. Engel // News Physiol. Sci. 1999. — V. 14. — P. 187 193.
  119. Molecular cloning, water channel activity and tissue specific expression of two isoforms of radish vacuolar aquaporin / T. Higuchi, S. Suga, T. Tsuchiya et al. // Plant Cell Physiol. 1998. — V. 9. — P. 905−913.
  120. Hodge, T. A mysion family tree / T. Hodge, M.J.T.V. Cope // J.Cell.Sci. 2000.- V.133.-P.3353−3354.
  121. Physiological elevations in cytoplasmic free calcium by cold or ion injection result in transient closure of higher plant plasmodesmata / T.L.Holdaway-Clarke, N.A.Walker, P.K.Hepler, R.L.Overall // Planta. 2000. — V.210. — P. 329−335.
  122. Hose, E. Abscisic acid and hydraulic conductivity of maize roots: a study using cell- and root-pressure probes / E. Hose, E. Steudle, W. Hartung // Planta. 2000.- V.211.-P. 874−882.
  123. Evidence for proteolytic processing of tobacco mosaic virus movement protein in Arabidopsis thaliana / R.K. Hughes, M.-C. Perbal, A.J. Maule, R. Hull // Mol. Plant-Microbe Interact. 1995. — V.8. — P.658−665.
  124. Spin echoes in a constant gradient and in the presence of simple restriction / M.D.Hurlimann, K.G.Helmer, T.M. de Swiet et al. // J. Magn. Reson. 1995. -Series A 113.-P. 260−266.
  125. Hussey, R.S. Ultrastructure of root cortical cells parasitized by the ring nematod Criconemella xenoplax / R.S. Hussey, C.W. Mims, S.W. Westcott // Protoplasma. 1992. — V.167. — P.55−65.
  126. Iglesias, V.A. Movement of plant viruses is delayed in a -1,3-glucanase-deficient mutant showing a reduced plasmodesmatal size exclusion limit and enhansed callose deposition / V.A. Iglesias, F.Jr. Meins // Plant J. 2000. -V.21.-P.157−166.
  127. Rice phloem thioredoxin h has the capacity to mediate its own cell-to-cell transport through plasmodesmata / Y. Ishiwatari, T. Fujiwara, K.C. McFarland et al. // Planta. 1998. — V.205. — P.12−22.
  128. Jans, D.A. The regulation of protein transport to the nucleus by phosphorylations / D.A. Jans // Biochem. J. 1995. — V.311. — P.705−716.
  129. Javot, H. The role of aquaporins in root water uptake / H. Javot, C. Maurel // Ann. Bot. (Lond.). 2002. — V. 90. — P. 301−313.
  130. Jensen, M. The mechanism of glycerol conduction in aquaglyceroporins / MJensen, E. Tajkhorshid, K. Schulten // Structure. (Camb.). 2001. — V. 9. — P. 1083−1093.
  131. Johanson, U. A new subfamily of major intrinsic proteins in plants / U. Johanson, S. Gustavsson / U. Johanson // Mol. Biol. Evol. 2002. — V. 19. — P.456.461.
  132. The major integral proteins of spinach leaf plasma membranes are putative1. Л Iaquaporins and are phosphorylated in response to Ca and apopbistic water potential / I. Johansson, C. Larsson, B. Ek, P. Kjellbom // Plant Cell. 1996. — V.8. — P.1181−1191.
  133. Water transport activity of the plasma membrane aquaporin PM28A is regulated by phosphorylation / I. Johansson, M. Karlsson, V. Shukla et al. // Plant Cell. 1998.-V. 10.-P. 451−459.
  134. Kaldenhoff, R. Regulation of the Arabidopsis thaliana aquaporin gene atWI (PIPIb) / R. Kaldenhoff, A. Kolling, G. Richter // J. Photochem. Photobiol. B. -1996.-V. 36.-P. 351−354.
  135. Kempers, R. Symplasmic connection between sieve element and companion cell in the stem phloem of Vicia faba L. have a molecular exclusion limit of at least 10 kDa / R. Kempers, A.J.E. van Bel // Planta. 1997. — V.201. — P. 195 201.
  136. Kendrick-Jones, J. Miosin, plant / J. Kendrick-Jones, S. Reichelt // In The Guidebook of Cytoskeletal and Motor Proteins 2nd Edn Kreiss, T. And Vale, R., eds).Oxford: Oxford University Press. 1999. — P.457−460.
  137. Kinkema, M. A myosin from a higher plant has structural similarities to class V myosins / M. Kinkema, J.W. Schielfelbein // J. Mol. Biol. 1994. — V.239. -P.591−597.
  138. Kinkema, M. Molecular analysis of the myosin gene family in Arabidopsis thaliana / M. Kinkema, H. Wang, J.W. Schielfelbein I I Plant Mol. Biol. 1994. -V.26.-P.1139−1153.
  139. Aquaporins and water homeostasis in plants / P. Kjellbom, C. Larsson, I. Johansson et al. // Trends Plant Sci. 1999. — V. 4. — P. 308−314.
  140. Knight, A.E. A myosin-like protein from a higher plant / A.E. Knight, J. Kendrick-Jones //J. Mol. Biol. 1993. — V.231. — P.148−154.
  141. Kong, Y. Dynamic mechanisms of the membrane water channel aquaporin-1 (AQPI) / Y. Kong, J. Ma // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. — V. 98. — P.106 ' 14 345−14 349.
  142. Functional expression and characterization of an archaeal aquaporin: AqpM from Methanothermobacter marburgensis / D. Kozono, X. Ding, I. Iwasaki et al. // J. Biol. Chem. 2003. -V. 278. — P. 10 649−10 656.
  143. Kragler, F. Plasmodesmata: dynamics, domains and patterning / F. Kragler, W.J. Lucas, J. Monser // Annals of Botany. 1998. — V.81. — P. l-10.
  144. Kragler, J. Principles and application of self-diffusion measurement by NMR /
  145. J. Kragler, H. Pfeifer, W. Heink // Adv. Magn. Reson. 1988. — V. 12. — P. 1−89.
  146. Krause, K.-H. Calreticulin / K.-H. Krause, M. Michalak // Cell. 1997. — V.88. — P.439−443.
  147. Macromolecular trafficking indicated by localization and turnover of sucrose transporters in enucleate sieve elements / C. Kuhn, V.R. Franceschi, A. Schulz et al. // Science. 1997. — V.275. — P.1298−1300.
  148. Three-dimensional reconstruction of tubular structure of vacuolar membrane throughout mitosis in living tobacco cells / N. Kutsuna, F. Kumagai, M.H. Sato,
  149. La Claire, J.W.identification of a myosin-like protein in Chlamydomonas pheinhardtii (Chlorophyta) / J.W. La Claire, R. Chen, D.L. Herrin // J. Phycology. 1995. — V.31. — P.302−306.
  150. Lassaro, M.D. The vacuolar-tubular continuum in living trichomes of chickpea (Cicer arietinum) provides a rapid means of solute delivery from base to tip / M.D.Lassaro, W.W.Thomson // Protoplasma. 1996. — V.193. — P.181−190.
  151. Liebe, S. Myosin in onion {Allium сера) bulb scale epiderorganelles and endoplasmic reticulum / S. Liebe, H. Quander // Physiol. Plant. 1994. — V.90. -P. 114−124.
  152. Liu, L. Maize myosins: diversity, localisation, and function / L. Liu, J. Zhou, T.C. Pesacreta // Cell Motil. Citoskel. 2001. — V.48. — P.130−148.
  153. Lloyd, C.W. The plant cytoskeleton // Curr. Opinions Cell Biol. 1989. — V.l. -P.30−35.
  154. Lopez-Saez, J.F. Fine structure of the plasmodesm / J.F.Lopez-Saez, G. Gimenez-Martin, M.C.Risueno // Protoplasma. 1966. — V. 61. — P. 81−84.
  155. Lorenz, A. A major integral protein of the plant plasma membrane binds flavin / A. Lorenz, R. Kaldenhoff, R. Hertel // Protoplasma. 2003. — V. 221. — P. 19−30.
  156. Lucas, W.J. Plasmodesmata and the supracellular nature of plants / W.J. Lucas, B. Ding, C. van der Schoot//New Physiologist. 1993. — V.125. — P.435−476.
  157. Lucas, W.J. Plasmodesmata in relation to viral movement within leaf tissues / W.J. Lucas, R.L. Gilbertson // Annu. Rev. Phytopathol. 1994. — V.32. — P.387−411.
  158. Lucas, W.J. Plasmodesmata: intercellular channels for macromolecular transport in plants / W.J. Lucas // Current Opinion in Cell Biology. 1995. -V.7. — P.673−680.
  159. Luttge, U. Transport in plants / U. Luttge, N. Higinbotham // Springer, Berlin Heilderberg New York. 1979.
  160. Maklakov, A.I. Selfdiffusion in polymer systems / A.I. Maklakov, V.D. Skirda, N.F. Fatkullin // in «Encyclopedia of fluid mechanics», Gulf-Publishing Co., Houston. 1990. — Chap.22. — P.705−745.
  161. The vacuolar membrane protein gamma-TIP creates water specific channel in Xenopus oocytes / C. Maurel, J. Reizer, J. Schroeder, M. Chrispeels // EMBO J. -1993. V. l2. -P.2241−2247.
  162. Phosphorylation regulates the water channel activity of the seed-specific aquaporin alpha-TIP / C. Maurel, R. Kado, J. Guern, M. Chrispeels // EMBO J. -1995.-V. 14.-P. 3028−3035.
  163. Purified vesicles of tobacco cell vacuolar and plasma membranes exhibit dramatically different water permeability and water channel activity / C. Maurel, F. Tacnet, J. GucIu et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 1997. — V. 94. — P. 7103−7108.
  164. McLean, B.G. Interactions between viral movement proteins and the cytoskeleton / B.G. McLean, P.C. Zambryski // Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands. 2000. — P.571−540.
  165. Meiners, S. Gap junction protein homologue from Arabidopsis tha liana: evidence for connexin in plants / S. Meiners, A. Xu, M. Schindler // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991. — V.88. — P.4119−4122.
  166. Meinild, A. Bidirectional water fluxes and specificity for small hydrophilic molecules in aquaporins 0−5 / A. Meinild, D. Klaerke, T. Zeuthen // J. Biol. Chem. 1998. — V.273. — P.32 446−32 451.
  167. Purification of calreticulin-like proteins from spinach leaves / P. Menegazzi, F. Guzzo, B. Baldan et al. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1993. — V.3. -P.l 130−1135.
  168. Overexpression of calreticulin increases intracellular Ca2+ storage and decreases store-operated Ca2+ influx / L. Mery, N. Mesaeli, M. Michalak et al. // J. Biol. Chem. 1996. — V.271. — P.9332−9339.
  169. Calreticulin is essential for cardiac development / N. Mesaeli, K. Nakamura, E. Zvaritch et al. //J. Cell Biol. 1999. — V.144. — P.857−868.
  170. Mezitt, L.M. Plasmodesmal cell-to-cell transport of proteins and nucleic acids / L.M. Mezitt, W.J. Lucas // Plant Molecular Biology. 1996. — V.32. — P.251−273.
  171. Monzer, J. Ultrastructure of secondary plasmodesmata formation in regenerating Solanum nigrum protoplast cultures I I Protoplasma. 1991. -V.165. — P.86−95.
  172. Moosekar, M.S. Organization, chemistry, assembly of the cytoskeletal apparatus of the intestinal brush border / M.S. Moosekar // Annu. Rev. Cell. Boil. 1985.-V.1.-P. 209−241.
  173. Brassinolide may control aquaporin activities in Arabidopsis thaliana / R. Morillon, M. Catterou, R. Sangwan et al. // Planta. 2001. — V.212. — P. 199 204.
  174. Morillon, R. The role of ABA and the transpiration stream in the regulation of the osmotic water permeability of leaf cells / R. Morillon, M. Chrispeels // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. — V. 98. — P. 14 138−14 143.
  175. Immunogold localization of pectin methylesterases in the cortical tissues of flax hypocotil / O. Morvan, M. Quentin, A. Jauneau et al. // Protoplasma. 1998. -V.202. — P. 175−184.
  176. Mushegian, A.R. The proposed plant connexin is a protein kinase-like protein / A.R. Mushegian, E.V. Koonin // Plant Cell. 1993. — V.5. — P.998−999.
  177. Effect of expressing the water channel aquaporin-1 on the C02 permeability of Xenopus oocytes / N. Nakhoul, B. Davis, M. Romero, W. Baron // Am. J. Physiol. 1998. — V.274. — P. C543-C548.
  178. Purification, seqencing and functions of calreticulin from maize / R.M. Napier, S. Trueman, J. Henderson et al. // J. Exp. Bot. 1995. — V.46. — P.1603−1613.
  179. Ginkgo biloba expresses calreticulin, the major calcium-binding reticuloplasmin in eukaryotic cells / M.C. Nardi, E. Giacomelli, P. Dainese et al. // Bot. Acta. 1998. — V. 111. — P.66−70.
  180. Nelson, D.E. Abundant accumulation of the calcium-binding molecular chaperone calreticulin in specific floral tissues of Arabidopsis thaliana / D.E. Nelson, B. Glaunsinger, H.J. Bohnert // Plant Physiol. 1997. — V. l 14. — P.29−37.
  181. Newman, B.E.J. Wather movement through root system // Philos. Trans. Roy. Soc. London B. 1976. — V.273. — P.463−478.
  182. O’Brien, T.P. A suberised layer in the cell walls of the bundle sheath of grasses / T.P. O’Brien, D.J. Carr 11 Aust. J. Bot. 1970. — V.23. — P.275−278.
  183. Obata, S. Morphogenesis of the photoreceptor outer segment during postnatal development in the mouse (BALA/c) retina / S. Obata, J. Usucura // Cell Tissure Res. 1992. — V.269. — P.39−48.
  184. Low aquaporin content and low osmotic water permeability of the plasma and vacuolar membranes of a CAM plant Graptopetalum paraguayense: comparison with radish / Y. Ohshima, I. Iwasaki, S. Sugo et al. // Plant Cell Physiol. 2001. — V. 42. — P. 1119−1129.
  185. Olesen, P. Plasmodesmata between mesophyll and bundle sheath cells in relation to the exchange of C4-acids / P. Olesen // Planta. 1975. — V. 123, — № 2. -P. 199−202.
  186. Olesen, P. The neck constriction in plasmodesmata / P. Olesen // Planta. 1979.- V. 144. P.349−358.
  187. Olesen, P. The neck constriction in plasmodesmata: evidence for a peripheral sphincter-like structure revealed by fixation with tannic acid / P. Olesen // Planta. 1980. — V.144. — P.349−358.
  188. Osherov, N. In vivo function of class I myosins / N. Osherov, G.S. May // Cell Motil. Cytoskelet. 2000. — V.47. — P.163−173.
  189. Otto, B. Cell-specific expression of the mercury-unsensitive plasma-membrane aquaporine NtAQPl from Nicotiana tabacum / B. Otto, R. Kaldenhoff // Planta.- 2000. V.211. — P.167−172.
  190. Overall, R.L. A model of the macromolecular structure of plasmodesmata / R.L. Overall, L.M. Blackman // Trends in Plant Science. 1996. — V.l. — P.307−311.
  191. Actin and myosin in plasmodesmata-/ R.L. Overall, R.G. White, L.M. Blackman, J.E. Radford // Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands. 2000. — P.513−531.
  192. Overall, R.L. Intercellular communication in Azolla roots: I. Ultrastructure of plasmodessmata / R.L. Overall, J. Wollfe, B.E.S. Gunning // Protoplasma. -1982.-V.111.-P.134−150.
  193. Pelham, H.R.B. Control of protein exit from the endoplasmic reticulum / H.R.B. Pelham// Annu. Rev. Cell Biol. 1989. — V.5. — P. l-23.
  194. Pollard, T.D. Myosin 1 / T.D. Pollard, S.K. Doberstain, H.G. Zot // Annu. Rev. Physiol. — 1991. — V.53. — P.653−681.
  195. Radford, J. Callose deposition at plasmodesmata / J. Radford, M. Vesk, R.L. Overall // Protoplasma. 1998. — V.201. — P.30−37.
  196. Radford, J. Localization of a myosin-like protein to plasmodesmata / J. Radford, R.G. White // Plant J. 1998. — V. 14. — P.743−750.
  197. Ratajczak, R. Adaptation of the tonoplast V-type ATPase of Mesembryanthemum crystallinum to salt stress, C3-CAM transition and plant age / R. Ratajczak, J. Richter, V. Luttge //.Plant Cell Envirom. 1994.- V. 17. -P. 1101−1112.
  198. Characterization of the unconventional myosin VIII in plant cell and its localization at the post-citokinetic cell wall / S. Reichelt, A.E. Knight, T.P. Hodge et al. // Plant J. 1999. — V. 19. — № 5. — P.555−567.
  199. Robards, A.W. A new interpretation of plasmodesmatal ultrastructure / A.W. Robards // Planta. 1968. — V. 82. — P.200−210.
  200. Robards, A.W. Cytochemical localization of phosphotase in differentiating secondary vascular cells / A.W. Robards, P. Kidwal // Planta. 1969. — V.87. -P.227−238.
  201. Robards, A.W. Plasmodesmata / A.W. Robards, WJ. Lucas // Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology. 1990. — V.41. — P.3 69−420.
  202. Robards, A.W. Plasmodesmata in Higher Plants // Intercellular communication in plants: Studies on plasmodesmata / Eds. Guning B.E.S., Robards A.W.ф Berlin: Springer. 1976. — P.15−58.
  203. Hepatocyte gap junctions are permeable to the second messenger, inositol 1,4,5-trisphosphate, and to calcium ions / J.C. Saez, J.A. Connor, D.C. Spray, M.V.L. Bennett//Prog. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. — V.86. — P.2708−2712.
  204. Cell-to-cell and phloem-mediated transport of potato virus X: the role of virions / S. Santa Cruz, A.G. Roberts, D.A.M. Prior et al. // Plant Cell. 1998. — V.10. -P.495−510.
  205. The high diversity of aquaporins reveals novel facets of plant membrane H functions / V. Santoni, P. Gerbeau, HJavot, C. Maurel // Curr. Opin. Plant Biol.2000. V. 3. — P. 476−481.
  206. Identification of immunologically related proteins in sieve-tube exudate collected from monocotyledonous and dicotyledonous plants / C. Schobert, P. Grossmann, M. Gottschalk et al. // Planta. 1998. — V.206. — P.245−252.
  207. Sieve-tube exudate from Ricinus communis L. seedlings contains ubiquitin and chaperones / C. Schobert, P. Grossmann, M. Gottschalk et al. // Planta. 1995. -V.196. — P.205−210.
  208. Schroeder, J.I. Repetitive increase in cytosolik calcium of cuard cells by abscisic acid activation of nonselective calcium permeable channels / J.I.Schroeder, S. Hagiwara // PNAS. 1990. — V. 87. — P. 9305−9309.
  209. Seagull, R.W. The plant cytoskeleton / R.W. Seagull // Crit. Rev. Plant Sci. -r 1989. V.8. — P.131−167.
  210. Aluminium-induced 1−3-P-D-glucan inhibits cell-to-cell trafficking of molecules through plasmodesmata: a new mechanism of aluminum toxicity in plants / M. Sivaguru, T. Fujiwara, J. Samaj et al. // Plant Physiol. 2000. -V.124. — P.991−1005.
  211. Spanswick, R.M. Symplasmic transport in tissues. In: Encyclopedia of plant physiology, N.S., vol.2 B: Transport in plants B: Tissues and organs, pp.35−56, Luttge U., Pitman M.G., Eds. Springer, Berlin Heilderberg New York. -1976.
  212. Staehelin, L.A. The plant ER: a dynamic organelle composed of a large number of discrete functional domains / L.A. Staehelin // Plant J -.1997. V.ll. -P.l 151−1165.
  213. Staiger, C.J. Actin localization and function in higher plants / C.J. Staiger, M. Schliwa // Protoplasma. 1987. — V. 141. — P. 1−12.
  214. Microinjected profilin affects cytoplasmic streaming in plant cells by rapidly depolymerizing actin microfilaments / C.J. Staiger, M. Yuan, R. Valenta et al. // Curr. Biol. 1994. — V.4. — P.215−219.
  215. Staiger, C.J. The plant cytoskeleton / C.J. Staiger, C.W. Lloyd // Curr. Opinion Cell Biol. 1991. — V.3. — P.33−42.
  216. The profilin multigen family of maize: differential expression of 3 isoforms / C.J. Staiger, K.C. Goodbody, P.J. Hussey et al. // Plant J. 1993. — V.4. -P.631−641.
  217. Steudle, E. How does water get through roots? / E. Steudle, C. Peterson // J. Exp. Bot. 1998. — V. 49. — P. 775−788.
  218. Subramanian, К. Calcium-induced restructuring of nuclear envelope and endoplasmic reticulum calcium stores / K. Subramanian, T. Meyer // Cell. -1997. V.89. — P.963−971.
  219. Tanner, J.E. Restricted self-diffusion of protons in colloidal systems by the pulse-gradient spin-echo method / J.E.Tanner, E.O.Stejskal // J. Chem. Phys. -1968. V.49. — P.1768−1777.
  220. Passive entry of CO2 and its energy-dependent intracellular conversion to HCO" 3 in cyanobacteria are driven by a photosystem i-generated deltamuH+ / D. Tchernov, Y. Helman, N. Keren et al. // J. Biol. Chem. 2001. — V.276. — P. 23 450−23 455.
  221. Terashima, I. Effects of HgCh on CO2 dependence of leaf photosynthesis: evidence indicating involvement of aquaporins in C02 diffusion across the plasma membrane / I. Terashima, K. Ono // Plant Cell Physiol. 2002. — V.43. -P. 70−78.
  222. Aquaglyceroporins, one channel for two molecules / P. Bron, G. Ranchy, L. Duchesne et al. // Biochim. Biophys. Acta. 2002. — V. 1555. — P. 181−186.
  223. Tirlapur, U. Near-infrared femtosecond laser pulses as a novel noninvasible means for dye-coupling in the Arabidopsis root meristem / U. Tirlapur, K. Konig // Plant J. 1999. — V.20. — P.363−370.
  224. Tucker, E.B. Mastoparan induced intracellular Ca2+ fluxes may regulate cell-to-cell communication in plants / E.B. Tucker, W.F. Boss // Plant Physiol. 1996. — V. l 11. — P.459−467.
  225. Plant aquaporins: their molecular biology, biophysics and significance for plant water relations / S.D.Tyerman, HJ. Bohnert, C. Maurel et al. // J. Exp. Bot. -1999.-V. 50.-P. 1055−1071.
  226. Tyree, M.T. The symplastic transport according to the thermodinamics of irreversible processes / M.T. Tyree // J. Theor. Biol. 1970. — V.26. — P. 181
  227. Vacuolar membrane dynamics revealed by GFP-AtVam3p fusion protein / T. Uemura, S.H. Yoshimura, K. Takeyasu, M.H. Sato // Gene. Cell. 2002. — V.7. — P.743−753.
  228. Identification of profilin as a novel pollen allergen- IgE autoreactivy in sensitized individuals / R. Valenta, M. Duchene, K. Pettenburger et al. // Science. 1991. — V.109. — P.619−626.
  229. Nuclear magnetic resonance imaging of membrane permeability changes in plant during osmotic stress / L. Van der Weerd, M.M.A.E. Claessens, C. Efde, H. Van AS // Plant Cell and Environment. 2002. — V.25. — P. 1539−1549.
  230. Vianello, A. Proton pumping pyrophosphatasa from higher plant mitochondria / A. Vianello, F. Macri // Physiologia Plantarum. 1999. — V. 105. — P. 763−768.
  231. Steedman’s wax for F-actin visualization / S. Vitha, F. Baluska, J. Jasik et al. // Actin: a dynamicframework for myltiple plant cell functions / Eds. Staiger C.J. et al. Dordrecht: Kluver Acad. Publ. 2000. — P.619−636.
  232. The developmental gene Knotted-1 is a member of a maize homeobox gene family / E. Vollbrecht, B. Veit, N. Sinha, S. Hake // Nature. 1991. — V.350. -P.241−243.
  233. Waigmann, E. Tobacco mocaic virus movement protein-mediated protein transport between trichome cells / E. Waigmann, P. Zambryski // Plant Cell. -1995. V.7. — P.2069−2079.
  234. Wang, N. The use of fluorescent tracers to characterize the postphloem transport pathway in maternal tissues of developing wheat grains / N. Wang, D.B. Fisher // Plant Physiol. 1994. — V.104. — P. 17−27.
  235. Watanabe, Y. In vivo phosphorylation of the 30-kDa protein of tobacco mosaic virus / Y. Watanabe, T. Ogawa, Y. Okada // FEBS Lett. 1992. — V.313. -P.181−184.
  236. Wayne, R. The actin cytoskeleton and polar water permeability in characean cells / R. Wayne, U. Tazawa // Protoplasma. 1988. — V. Suppl 2. — P. 116−130.
  237. Actin associated with plasmodesmata / R.G. White, J.K. Badel, R.L. Overall, M. Vesk // Protoplasma. 1994. — V. l80. — P. l69−184.
  238. Williamson, R.E. Organelle movement / R.E. Williamson // Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1993. — V.44. — P. 181−202.
  239. Plasmodesmatal function is probed using transgenic tobacco plants that express a virus movement protein / S. Wolf, C.M. Deom, R.N. Beachy, W.J. Lucas // Plant Cell. 1991. — V.3. — P.593−604.
  240. A calcium-dependent protein kinase is associated with maize mesocotyl plasmodesmata / A. Yahalom, R. Lando, A. Katz, B.L. Epel // J. Plant Physiol. 1998.- V.153.-P.354−362.
  241. Yokota, E. Biochemical, immunochemical of myosin heavy chains / E. Yokota, T. Mimura // Plant Cell Physiol. 1995. — V.36. — P. 1541−1547.
  242. Zambryski, P. Plasmodesmata: gatekeepers for cell-to-cell transport of developmental signals in plants / P. Zambryski, K. Crawford // Annu Rev. Cell Dev. Biol. 2000. — V.16. — P.393−421.
  243. Zardoya, R. A phylogenetic framework: for the aquaporin family in eukaryotes / R. Zardoya, S. Villalba // J. Mol. Evol. 2001. — V. 52. — P. 391−404.
  244. Reconstitution of functional water channels in liposomes containing purified red cell СШР28 protein / M. Zeidel, S. Ambudkar, B. Smith, P. Agre // Biochemistry. 1992. — V.31. — P.7436−7440.
  245. Quality control in the secretory pathway: the role of calreticulin, calnexin and BiP in the retention of glicoproteins with C-terminal truncations / J.-X. Zhang, I. Braakman, K.E.S. Matlack, A. Helenius // Mol. Biol. Cell. 1998. — V.8. -P.1943−1954.
  246. Zhang, W.H. Effect of low O2 concentrations and azide on hydraulic conductivity and osmotic volume of the cortical cells of wheat roots / W.H. Zhang, S.D. Tyerman // Aust. J. Plant Physiol. 1991. — V.18. — P.603−613.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!