Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Биологические и морфофункциональные особенности Trichinella spiralis Owen, 1835 и Trichinella pseudospiralis Garkavi, 1972 у различных видов хозяев

Диссертация: Биологические и морфофункциональные особенности Trichinella spiralis Owen, 1835 и Trichinella pseudospiralis Garkavi, 1972 у различных видов хозяев
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

При экспериментальном заражении насекомых личинками Т^рпаНв и Т. рзеисЬзркаНз количество трихинелл в кишечнике насекомых зависит от возраста (личинки слепней) и зараженности инвазионного субстрата. Время пребывания личинок Т. вркаИз и Т. рзеис1о8рцаН8 в кишечнике насекомых равно 12−24 часам. Оба вида трихинелл в период нахождения в кишечнике насекомых сохраняют свою инвазионную способность, что… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Распространение трихинелл по ландшафтно-климатическим зонам мира
    • 1. 2. Трихинеллез человека
    • 1. 3. Современные воззрения о систематическом положении трихинелл
    • 1. 4. Восприимчивость разных видов животных к трихинеллам и взаимоотношения в системе «паразит — хозяин» .5. Генетическая изменчивость Т. БркаНз и Т. рБешкюркаИз
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Методы выявления личинок трихинелл
    • 2. 2. Определение видов трихинелл методом скрещивания
    • 2. 3. Гистологический метод исследования пораженных трихинеллами мышц
    • 2. 4. Статистическая обработка материала
    • 2. 5. Прижизненная диагностика трихинеллеза методом иммуноферментного анализа (ИФА)
    • 2. 6. Метод полимеразной цепной реакции со случайными проймерами
      • 2. 6. 1. Выделение геномной ДНК из гельминтов
      • 2. 6. 2. Выделение ДНК с использованием хлористого лития
      • 2. 6. 3. Технология геномной дактилоскопии
        • 2. 6. 3. 1. Обработка ДНК рестриктазами
        • 2. 6. 3. 2. Электрофорез в агаровом геле
        • 2. 6. 3. 3. Перенос ДНК на нитроцеллюлозный фильтр
        • 2. 6. 3. 4. Приготовление Р-меченного М13 ДНК — зонда
        • 2. 6. 3. 5. Гибридизация с меченной ДНК фага М
        • 2. 6. 3. 6. Радиоавтография
      • 2. 6. 4. Метод таксонопринтного анализа ДНК
        • 2. 6. 4. 1. Постановка таксонопринитного анализа ДНК
      • 2. 6. 5. Полимеразная цепная реакция (ПЦР)
      • 2. 6. 6. Постановка реакции амплификации
      • 2. 6. 7. Математическая обработка данных
  • ГЛАВА 3. РАСПРОСТРАНЕНИЕ И ВИДОВОЙ СОСТАВ ТРИХИНЕЛЛ В АРМЕНИИ
    • 3. 1. Распространение и видовой состав трихинелл у диких, домашних и синантропных животных
    • 3. 2. Обследование населения Армении на трихинеллез
    • 3. 3. Пути передачи инвазии и взаимоотношения в системе «паразит-хозяин»

Биологические и морфофункциональные особенности Trichinella spiralis Owen, 1835 и Trichinella pseudospiralis Garkavi, 1972 у различных видов хозяев (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Проблемы, стоящие в настоящее время перед паразитологами, можно дифференцировать и по степени фундаментальной значимости, срочности, остроты и важности решения, и по степени хозяйственной значимости. Однако, всегда можно считать приоритетными задачи, касающиеся здоровья человека. По мнению ряда паразитологов нет более масштабной и значимой задачи, чем оздоровление населения от гельминтозов (Ф.Сопрунов, О. Полетаева, 1969; Л. Бургасов, 1982; А. Бессонов, 1972; Ф. Сопрунов, 1982 и др.).

Особенно это касается таких актуальных в патологии человека и животных гельминтозоонозов, как эхинококкоз, описторхоз, альвеококкоз и, конечно же, наиболее опасный в отношении частой встречаемости и очаговости — трихинеллез.

Трихинеллез — острое инвазионное заболевание человека, сопровождающееся лихорадкой и выраженными аллергическими явлениями. Возбудитель — нематоды рода — ТпсЫпе11а. Трихинеллез широко распространен среди многих видов домашних идиких млекопитающих, особенно хищных, а также всеядныхему свойственна природная очаговость (Ю. А. Березанцев, 1974).

Коэволюционный подход в паразитологии позволяет обоснованно предполагать древнейшее «сосуществование» человека и возбудителя этой опаснейшей болезни. Несомненно, что на протяжении многих веков заражение людей трихинеллезом было достаточно частым явлением. Однако, впервые, научное описание клинического поражения человека трихинеллезом было сделано лишь в 1835 году.

В настоящее время, несмотря на высокий уровень развития медицинской и ветеринарной гельминтологии, паразитоценологии трихинеллез представляет серьезнейшую опасность для людей практически на всем земном шаре. (Подробно фактографический обзор современного состояния распространения трихинеллеза дан в 1-й главе данной работы).

Среди гельминтозов человека и животных трихинеллез выделяется особой патогенностью. В связи с тем, что он является природно-очаговым заболеванием, изучение биологических особенностей, характеристика циркуляции возбудителя в природе, выявление очагов инвазии представляет большое значение в профилактике этого заболевания.

Несмотря на достаточную изученность возбудителей, следует констатировать, что пока еще достаточно спорным остается вопрос о систематическом статусе трихинелл. Накопившиеся с 60-х годов данные о биологических свойствах географически отдаленных популяций трихинелл наметили обоснованность воззрений о неоднородности возбудителей трихинеллеза. Новый этап в изучении трихинеллеза был связан с описанием трех новых видов трихинелл. Однако, единая четкая позиция о генетической гетерогенности этих видов у разных авторов не достигнута. Одни авторы рассматривают в роде ТпсЫпеИа 4 вида, другие из вновь описанных видов признали валидными только 2 (из 3-х). Два других вида отдельными авторами рассматриваются, как подвиды или штаммы. Следует отметить, что на сегодняшний день все (предполагаемые) виды (или другие таксоны) трихинелл были в той или иной мере исследованы по морфологическим признакам, ультраструктуре, адаптивной кинетике к факторам внешей среды, числу хромосом, энзимной структуре, биохимии, иммунологии. Однако, единого мнения относительно валидности видов трихинелл по-прежнему нет.

Многообразие факторов окружающей среды, в том числе и элементов климата имеет огромное значение для экологии гельминтов, цикл развития которых проходит в одном хозяине. В связи с этим, особую значимость приобретает комплексный эколого-биологический, эколого-фенологический, эпизоотологический и эпидемиологический аспекты изучения трихинеллеза, особенно в природно-геогафических регионах, ранее не охваченных широкомасштабными гельминтологическими исследованиями. По данным акад. РАСХН А. С. Бессонова (1972) территория Армении при интенсивном изучении трихинеллеза в бывшем СССР, к сожалению, оставалась «белым пятном» на карте. Поэтому, исследования на данную тему именно в Армении пусть и с некоторым запозданием, но должны были быть реализованы.

Все вышесказанное определило необходимость и актуальность данной диссертационной работы.

Цель и задачи исследований. Основной целью исследования было эколого-фаунистическое изучение распространения трихтнеллеза в Армении, определение морфолого-таксономического статуса трихинелл и разработка средств профилактики и борьбы с трихинеллезом. Реализация данной цели определила следующие задачи исследований:

1) Изучение эколого-географических особенностей распространения очагов трихинеллеза на территории Армении.

2) Дифференцированное исследование роли диких и синантропных животных в циркуляции трихинеллеза в различных природно-климатических и социо-экологических условиях.

3) Методическая отработка принципов камеральных исследований трихинеллеза с помощью новых технологий (включая выделение ДНК трихинелл).

4) Изучение биологических особенностей развития трихинелл в организме различных хозяев и исследование особенностей отношений «паразит-хозяин», а также путей передачи инвазии.

5) Морфо-таксономические исследования и установление видового состава трихинелл в Армении.

6) Предложить математико-статистический аппарат дифференциации «относительной опасности» диких и синантропных хозяев трихинелл.

7) Разработать научно-практические рекомендации по борьбе с трихеннелезом в Армении в современных условиях с учетом достижений отечественного и зарубежного опыта в данном аспекте.

Научная новизна. Впервые изучено распространение и развитие очагов трихинеллеза в различных природно-климатических зонах на территории Республики Армения. Новым был комплексный подход к дифференциальному изучению роли диких и синантропных животных в определении процессов циркуляции трихинеллеза. Предложен математический метод, позволяющий количественно оценивать степень «опасности» тех или иных хозяев в распространении трихинеллеза и напряженности его очагов. Определены основные объекты санитарно-эпидемиологического мониторинга трихинеллеза в горных и равнинных районах на примере Малого Кавказского хребта.

Впервые в таксономическом плане предложен принципиально новый поход (С.О.Мовсесян, А. М. Асатрян, 1983; А. М. Асатрян 1992, 1997) предполагающий изучение развития трихинелл в организме различных хозяев. При этом изучаются пути циркуляции и сохранения трихинелл в природе, дается анализ ландшафтных особеннностей формирования очагов трихинеллеза. Определен видовой состав трихинелл на территории Армении.

Отмечены патомикроморфологические изменения мышц, печени и тонкой кишки хозяев при мышечной фазе экспериментального трихинеллеза.

Выявлена генетическая изменчивость T. spiralis и T. pseudospiralis при монои смешанной инвазии.

Практическая значимость исследований. Разработаны и внедрены научно-практические рекомендации по борьбе с трихинеллезом в Армении в современных социально-экологических условиях.

Предложенные нами практические рекомендации внедрены в системе Государственного санитарного надзора Минздрава РА, в том числе для составления планов работ паразитологической службы по обеспечению эпидемиологического благополучия населения РАпри осуществлении эпидемиологического надзора Центрами.

Гигиенического и Противоэпидемического Надзора (бывшие санэпидемстанции) в указанных нами районах природных очагов трихинеллеза, особенно в районах горно-лесной природно-ландшафтной зоны республикипри корректировке учебных планов постдипломной подготовки специалистов паразитологов, эпидемиологов, врачей клинико-диагностических лабораторий, паталогоанатомов). Материалы диссертационных исследований введены в компьютерный Национальный Банк данных Республиканского информационно-аналитического центра Минздрава (часть «медицинская география», раздел «заболеваемость». код «зоонозы») и используются при проведении эпидемиологических ситуационных анализов.

На основе наших рекомендаций утверждено начальником санитарно-эпидемиологического управления Минздрава циркулярное письмо «Трихинеллез в Армении» (N04−689/30 от 19.12.90). В качестве учебного пособия в серии «В помощь практическому врачу» опубликована брошюра «Трихинеллез» .

Ереван, 1992, С. 28,в соаторстве). За время прохождения докторантуры в Москве нами подготовлены (в соавт.) материалы «Морфофункциональные механизмы взаимоотношений партнеров паразитарной системы при трихинеллезе и внутривидовая изменчивость трихинелл» в рамках выставки «ученые-городу» (работы РАН в интересах г. Москвы, 22−30 сентября, 1997). По заказу редакционно-издательского отдела Минздрава РА подготовлена и сдана в печать монография «Трихинеллез» (серия «Важнейшие зоонозы Армении»), предназначенная для специалистовпаразитологов, медицинских и ветеринарных работников.

Подтверждение упомянутых внедрений (6 официально заверенных документов) приводится в Приложении к диссертации.

Апробация работы. Материалы диссертационной работы были доложены и обсуждены на: IV национальной конференции по паразитологии (Варна, 1983), IV Всесоюзной конфереции по проблеме трихинеллеза у человека и животных (Ереван, 1985), Ш-й, 1У-й и У-й Закавказских конференциях по паразитологии (Баку, 1981, Тбилиси, 1985, Ереван, 1987), выездных сессиях АН Арм. ССР (19 821 989), заседании Армянского отделения ВОГ (Ереван, 1988), Конференции «Медико-экологические проблемы паразитологии (Кемерово, 1996), Седьмой научной конференции по трихинеллезу человека и животных (Москва, ВИГИС, 1996), Всероссийской Конференции ИНПАРАН «Систематика, таксономия и фауна паразитов» (Москва, 1996), Всероссийской конференции РВМА «Актуальные вопросы медицинской паразитологии» (С.-Петербург, 1998), Европейском мультиколлоквиуме по паразитологии (ЕМАР VII) Парма, Италия, 1996, а также на Ученом совете Института зоологии НАН Армении и Ученом совете Института паразитологии РАН (1998).

Основные положения выносимые на защиту:

1. Распространение и видовой состав трихинелл в различных природно-климатических зонах Армении.

2. Пути циркуляции и сохранения трихинелл в природе, ландшафтные особеннности формирования очагов трихинеллеза.

3. Дифференциация роли диких и синантропных животных в циркуляции трихинеллеза на основе оригинального математического метода вычисления «индекса относительной опасности» тех или иных хозяев в распространении трихинеллеза и напряженности его очагов.

4. Эволюционный аспект особенностей развития трихинелл у различных групп хозяев (насекомые, рыбы, земноводные, пресмыкающиеся, птицы, млекопитающие).

5. Патомикроморфологические изменения мышц, печени и тонкой кишки хозяев при мышечной фазе экспериментального трихинеллеза.

6. Генетическая изменчивость T. spiralis и T. pseudospiralis при монои смешанной инвазии.

ВЫВОДЫ.

1. Впервые, нами было организовано целевое обследование распространения трихинеллеза в Армении (ранее не охваченной подобными исследованиями), локализованы основные очаги трихинеллеза, собраны, проанализированы и обобщены данные за последние 15 лет с учетом эколого-географических особенностей региона исследований.

2. Было проведено дифференцированное исследование роли диких, домашних и синантропных животных в циркуляции трихинеллеза, как в различных природно-климатических, так и в различных социо-экологических условиях республики.

3. Получена общая картина распростанения трихинеллеза у диких домашних и синантропных хозяев. Всего на територии республики было обследовано 1821 диких животных 18-и видов и 2083 домашних и синантропных — 6 видов.

4. Впервые, для Армении новыми хозяевами трихинелл установлены: полевка обшественная, полевка кустарниковая, медведь бурый, мышь домовая и дикобраз индийский. У всех инвазированных трихинеллами животных констатирована поражаемость видом Trichinella spiralis Owen, 1935.

5. В Армении локализовано 7 очагов трихинеллеза, которые в основном находятся в горно-лесной зоне республике в следующих административных районах: Ноемберянском, Таушском,.

Иджеванском, Вайкском, Горисском, Сисианском и Мегринском.

6. Серодиагностика населения Армении на трихинеллез позволила разделить ее на три зоны по уровню напряженности эпидемиоэпизоотологических процессов: зона высокого риска заражения людей трихинеллезом (районы горно-лесной зоны) — зона умеренного риска заражения (г. Ереван) — зона низкого риска заражения (районы горно-степной и пустынно-полупустынной зоны).

7. Предложен математико-статистический аппарат дифференциации «относительной опасности» диких и синантропных хозяев трихинелл. На основе оригинальной, предложенной нами математической формулы вычисленные индексы позволяют по новому оценить роль того или иного вида в распространении и циркуляции трихинеллеза. Математически строгое ранжирование позволяет говорить о неравноценности ролевой функции одних и тех же видов не только на уровне — агробиоценоз/естественный биоценоз, но различия констатируются и на уровне различий по природно-климатическим зонам.

Метод может быть рекомендован и для других регионов.

8. Сохранение и пути передачи трихинеллеза в природных и синантропных очагах зависит от количества и качества инвазионного начала и степени адаптации трихинелл к организму хозяина. Для свиней, кроме указанных выше факторов, большую роль играет традиционно сложившияся система вольного выпаса животных, а также скармливание им кухонных отходов.

9. При экспериментальном заражении насекомых личинками Т^рпаНв и Т. рзеисЬзркаНз количество трихинелл в кишечнике насекомых зависит от возраста (личинки слепней) и зараженности инвазионного субстрата. Время пребывания личинок Т. вркаИз и Т. рзеис1о8рцаН8 в кишечнике насекомых равно 12−24 часам. Оба вида трихинелл в период нахождения в кишечнике насекомых сохраняют свою инвазионную способность, что подтверждается положительными результатами биопроб на белых мышах. Личинки слепней, осы бембексы и пестряки являются для личинок трихинелл транзитными хозяевами и имеют большое значение в распространении и круговороте трихинелл. Роль кожеедов в распространении трихинеллеза низка, что очевидно связано с характером их питания.

10. У пойкилотермных животных (рыбы, земноводные, пресмыкающиеся) температурный фактор имеет определяющее значение для развития трихинелл. В конкретных природноклиматических условиях агробиоценозов Армении эти животные являются транзитными хозяевами трихинелл. При постоянных температурах (35° С — для рыб, 37−40° С — для земноводных и пресмыкающихся) трихинеллы завершают полный цикл развития за 35 дней.

11. У птиц (петушки белой русской породы, перепела, розовые скворцы, серые утки) оба вида трихинелл проходят кишечную фазу развития. Отрожденные личинки Т^ркаНв после проникновения и внедрения в мышечную ткань хозяина погибают, а личинки Т. рзеидозриаНз продолжают развитие. Следовательно, птицы для Т. БрпаНз являются неспецифичным облигатным хозяином, тогда как для Т. рзеидозриаБв — облигатным.

12. Характер питания птиц также имеет важное значение для развития Т.рзегкЗозрпаЦз. У серых уток, которые питаются водно-болотной растительностью и беспозвоночными трихинеллезная инвазия сопровождается выраженностью клеточно-воспалительных процессов, особенно при высоком уровне инвазионных нагрузок.

13. Хищные млекопитающие (собака домашняя, кошка домашняя, лисица обыкновенная, куница каменная) имеют естественную устойчивость к трихинеллезу, что, очевидно, обосновано продолжительным времени коэволюции паразита и хозяина.

14. Сравнение КАРБ-спектров двух видов трихинелл, подтверждает значительные различия в геноме Т-БриаНв и Т.рзеискэзрггаНз. Установлено, что личинки трихинелл, выделенные от мышей и пассированные в линейных крыс оказались менее изменчивыми, чем эти же личинки, пассированные через линейных и беспородных крыс.

При смешанной инвазии Т^рцаИв и Т. рзеисЬзрггаНз на крысах получено «гибридное» потомство, которое отличается по некоторым морфологическим признакам. По КАРО-спектрам такие «гибриды» более сходны с Т^ркаНв, нежели с Т.рзеиёозрггаНз.

15. Установлено, что у животных при мышечной фазе трихинеллеза в результате глубоких патомикроморфологических перестроек в соматических мышцах возникает ангиолиизит, в печени имеются отдельные признаки гепатита, а в тонкой кишке проявляются многие черты эрозивно-геморрагического энтероколита. Все патогистологические изменения имеют неспецифический аллергический характер.

4.9.

Заключение

.

При экспериментальном заражении насекомых личинками Т. spiralis и T. pseudospiralis количество трихинелл в кишечнике насекомых зависит от возраста (личинки слепней) и зараженности инвазионного субстрата. Время пребывания личинок T. spiralis и T. pseudospiralis в кишечнике насекомых равно 12−24 часам. Оба вида трихинелл в период нахождения в кишечнике насекомых сохраняют свою инвазионную способность, что подтверждается положительными результатами биопроб на белых мышах. Личинки слепней, осы бембексы и пестряки являются для личинок трихинелл транзитными хозяевами и имеют большое значение в распространении и круговороте трихинелл. Роль кожеедов в распространении трихинеллеза низка, что очевидно связано с характером их питания.

Рыбы, содержащиеся при температуре воды 25−27° С являются для T. spiralis и T. pseudospiralis транзитными хозяевами. В их организме трихинеллы не развиваются и выводятся из организма через 3 дня после заражения, сохраняя при этом свою инвазионную способность. При постоянной температуре 35° С оба вида трихинелл в организме рыб проходят полный цикл развития.

Лягушки в естественных условиях (при дневной температуре 25−30° С и ночной 15−20° С) являются транзитными переносчиками трихинелл. В их кишечнике декапсулированные личинки T. spiralis и личинки T. pseudospiralis без роста задерживаются три дня и вполне инвазионны для своих консументов. При постоянной температуре 35−37 0 С трихинеллы проходят полный цикл развития.

Прыткие ящерицы и кавказские агамы в естественных условиях являются транзитными хозяевами для T. spiralis и T.pseudospiralis. При постоянной температуре среды 37−40° С в их организме происходит полное развитие гельминтов.

Таким образом, у пойкилотермных животных температурный фактор имеет определяющее значение для развития трихинелл.

У петушков русской белой породы и перепелов оба вида трихинелл кишечную фазу развития проходят на 2−5 день после заражения. Ораждение личинок трихинелл происходит на 2−5 день. Отрожденные личинки Т^рпаНя после проникновения и внедрения в мышцы птиц погибают полностью, а личинки Т-рзеибозриаШ продолжают свое развитие, уступая, однако, в этом росту гельминтов у контрольных животных. Мышечная фаза Т. рзеидоврпаНз у птиц в течение опыта сопровождается сильными клеточно-воспалительными процессами в мышцах, гибелью личинок на 15−20%, что отражается на снижении ИИ по сравнению с животными контрольной группы на 52,7%.

У сорок и розовых скворцов задержка в продолжительности сроков роста и развития, низкая интенсивность инвазии, по сравнению, с серыми утками, очевидно обусловлены характером питания этих птиц. Являясь всеядным в процессе эволюции у них был контакт с трихинеллами в чем и выражается сопротивляемость их организма к трихинеллезу. У серых уток, которые питаются водно-болотной растительностью и беспозвоночными, трихинеллезная инвазия протекает со слабо выраженными воспалительно-клеточными процессами и высокой интенсивностью инвазии.

Полученные данные показывают, что птицы являются для Т-эрпаИз неспецифичным облигатным хозяином, тогда как для Т. рзеиёозрпаНБ — облигатным хозяином.

При одинаковой дозе заражения сроки развития Т^ркаИв и Т. рзеискэзрпаИз в организме собак (опытная группа) по сравнению с крысами (контрольная группа) задерживается. Инвазия протекает с сильно воспалительно-клеточными явлениями и низкой интенсивностью инвазии и гибелью личинок на 40%. Очевидно, в процессе эволюции при частой встрече паразита (трихинелл) и хозяина (собака) у последних выработалась устойчивость к трихинеллам.

При одинаковой дозе заражения изменения в сроках развития T. spiralis и T. pseudospiralis у крыс и кошек не наблюдается, хотя интенсивность инвазии T. spiralis у кошек по сравнению с крысами низка: на 17-й день 15,8%- на 20-й день 17,2%- на 35-й день 12,5%, a T. pseudospiralis, соответственно, на 32%- 32,3%- 22,4%.

У лисиц на 3-й день после заражения отмечено легкое угнетение. При вскрытии животных на 35-й день после заражения личинки T. spiralis в мышцах были инкапсулированы. Личинки T. pseudospiralis завернуты в тугую спираль. Вокруг личинок T. spiralis и T. pseudospiralis воспалительно-клеточная инфильтрация отсутствовала. Интенсивность инвазии личинок T. spiralis в среднем составила 105+3,1 л/г, a T. pseudospiralis — 95+2,8 л/г. Таким образом, у обыкновенных лисиц, как и у других плотоядных есть естественная устойчивость к трихинеллам.

Каменные куницы также имеют естественную сопротивляемость организма к трихинеллам. Это выражается в сильной воспалительно-клеточной инфильтрации вокруг личинок трихинелл, числом погибших личинок трихинелл (8−10%) и низкой интенсивности инвазии (по сравнению с контролем на 31%).

Результаты, полученные при сравнении RAPD-спектров двух видов трихинелл, свидетельствуют о наличии весьма значительных различий в геноме T. spiralis и T.pseudospiralis. Установлено, что личинки трихинелл от мышей, пассированные в линейных крыс, оказались менее изменчивы, чем эти же личинки, пассированные через линейных крыс в беспородных.

При смешанной инвазии личинками Т. spiralis и Т. pseudospiralis на крысах получено «гибридное» потомство, которое отличается по некоторым морфологическим признакам. По RAPD спектрам такие «гибриды» более схожны с Т. spiralis, чем с Т. pseudospiralis.

В результате гистологических исследований показано, что у животных при мышечной фазе трихинеллеза имеют место глубокие микроморфологические и гистофункциональные перестройки мышц и барьерных органов — печени и тонкой кишки. Патомикроморфологические изменения соматических мышц определили четкую картину неспецифического аллергического ангиомиозита. В печени выявились многие признаки неспецифического аллергического гепатита. Для тонкой кишки характерно состояние эрозивно-геморрагического энтероколита с массивной лимфоидно-эозинофильной инфильтрацией. Анализ и сопоставление собственных и имеющихся в литературе данных показали, что патогистологические изменения печени и тонкой кишки хозяев при мышечном трихинеллезе практически не отличаются от таковых, наблюдаемых при других гельминтозах.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ю.Г., Дикова О. А. Вивчення адаптацшнах можливостейличинок трихинелл // Ветеринария. 1979. N 5. С.64−66.
  2. Асатрян А. М. Случай обнаружения трихинелл у черного дрозда
  3. Материалы IV Закавказской конференции по паразитологии. Тбилиси. 1985. С. 158.
  4. Асатрян А. М. Распространение и видовой состав трихинелл в
  5. Армении // Зоологический сборник. Ереван. 1987. Т.21. С.34−40.
  6. А.М., Мовсесян С.О. Проблема трихинеллеза в Ар мении
  7. Материалы докладов IV Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Ереван. 1985. С. 14−18.
  8. В., Груодите С., Лайшконис А., Тутосене С.
  9. Клинико-иммунологические особенности трихинеллеза// Материалы докладов к четвертой Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Ереван. 1985. С.61−63.
  10. С.Н. Применение не прямой реакциииммунофлуоресценции (РИФ) для прижизненной диагностики трихинеллеза свиней// Материалы докладов ко II Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1976. С. 175−178.
  11. Т., Кейданс П., Ладзыня М. О трихинеллезе в
  12. Латвийской ССР// Тезисы докладов конференции ВОТ АН СССР М. 1980. С.20−22.
  13. М.Я. Труды Красноярского с.-х. ин-та 1960. Т.6,С.95−101.
  14. М.Я. Трихинеллез животных в Красноярском крае//
  15. Бюллетень ВИГИС. М. 1969. N 3. С.8−10.
  16. Ю.А. Материалы по природной очаговоститрихинеллеза// Зоологический журнал. 1956. Т.35. вып. 11. С.1730−1732.
  17. Березанцев Ю. А. Изучение природной очаговости трихинеллеза в
  18. СССР//Wiadomosci Parazytol. 1962. N 1. С.47−50.
  19. Ю.А., Крайняя B.C. Изучение видового составатрихинелл от животных Алтайского края// Материалы докладов III Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1981. С.37−40.
  20. A.C. Эпизоотология (эпидемиология), диагностика ипрофилактика трихинеллеза: Автореф. дис. .д-ра вет. наук. М. 1970. 23с.
  21. A.C. Эпизоотология (эпидемиология) и профилактикатрихинеллеза// Вильнюс. Минтае. 1972. 304с.
  22. A.C. Трихинеллез// М. Колос. 1976. 335с.
  23. A.C. Трихинеддез в Советском Союзе (1979−1983 гг.)//
  24. Материалы докладов IV Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Ереван. 1985. С.8−13.
  25. A.C. Распространение трихинеллеза Trichinella spiralisв России (1980 1994 гг.): анализ причин и условий//Материалы докладов VII научной конференции по трихинеллезу человека и животных М. 1996. С. 10−12.
  26. Бессонов A.C. Таксономический статус нематод рода Trichinella
  27. Railliet, 1895// Материалы докладов VII на учной конференции по трихинеллезу человека и животных М. 1996. С. 12−14.
  28. A.C., Пенькова P.A., Успенский A.B. Труды ВИГИС М.1975. Т.22. С. 15−27.
  29. С., Буркаускас А., Кайрюштис И., Сангайла И.
  30. Ситуация трихинеллеза человека и животных в Литовской ССР и меры борьбы с ним// Материалы докладов III Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1981. С.25−30.
  31. С., Буранаускас А., Федерене М., Кайрюкштис И.
  32. О трихинеллезе в Литве// Материалы 8 научно-координационной конференции по проблемам паразитологии в Прибалтике. Тарту. 1979. С. 100−102.
  33. A.A. Трихинеллез животных в Белорусской ССР//
  34. Материалы докладов IV Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Ереван. 1985. С.39−40.
  35. С.Н. Виды-двойники в систематике гельминтов//
  36. Жизненные циклы, экология и морфология гельминтов животных в Казахстане// Вопросы природной очаговости болезней. Алма-Ата. 1978. С.8−18.
  37. С.Н., Бондарева В. И., Соколова И. Б. Очаговостьтрихинеллеза в Казахстане// Впросы природной очаговости болезней. Алма-Ата. 1966. С. 6−7.
  38. С.Н., Бритов В. А., Соколова И. Б. К видовому составутрихинелл в Казахстане// Вопросы природной очаговости болезней. Алма-Ата. 1975. С.94−96.
  39. С.Н., Шайкенов Б. Трихинеллы и трихинеллез в
  40. Казахстане// Животный мир Казахстана и проблемы его охраны. Алма-Ата. 1982. С.32−39.
  41. С.Н., Шайкенов Б., Соколова Л. Н. О спорных вопросахтаксономии трихинелл//Паразитология. 1979. Т. 13. N 2. С.144−149.
  42. В., Бангизов И. Некоторые медоко-социальные проблемыпри трихинеллезе в НРБ// IV Национальная конференция по паразитологии. София. 1983. С.154−155.
  43. Д.З. К эпизоотологической характеристике очагатрихинеллеза в Свердловской области// Тезисы докладов на ученой конференции ВОТ. М. 1960. С. 19−20.
  44. В.И., Тазиева З. Х. Значение ондатры враспространении трихинеллеза в Казахстане// Вопросы природной очаговости болезней. Алма-Ата. 1976. N 8. С. 132 135.
  45. В.А. Интенсивность трихинеллезной инвазии уживотных в зависимости от вида, возраста и иммунитета// Зоологический журнал. 1962. Т.41. вып.2. С.287−288.
  46. В.А. О роли рыб и ракообразных в передаче трихинеллезаморским млекопитающим// Зоологический журнал. 1962. Т.41. вып.5. С.776−777.
  47. В.А. Динамика патоморфологических реакций в мышцахсвиней при заражении их дальневосточными природными личинками трихинелл// \%(1ото8с1 РагагуЫ. 1968. N 4. С.327−333.
  48. В.А. Трихинеллез в Хабаровском крае и на о. Сахалин//
  49. Материалы научной конференции Всесоюзного общества гельминтологов. 1971. вып.22. С. 150−154.
  50. В.А. Сравнительный анализ размеров капсул вокругличинок двух популяций ТпсЫпеИа пекош// IX конференция Украинского паразитологического общества. Киев: Наукава думка. 1980. 4.1. С.92−93.
  51. В.А. Возбудители трихинеллеза// М.: Наука. 1982. 271с.
  52. В.А., Боев С. Н. Таксономический ранг трихинеллразличных штаммов и характер их циркуляции// Вест. АН Каз.ССР. 1972. N 4. С. 27−32.
  53. В.А., Гаркави Б. Л. Идентификация трихинел, выделенныхот енота-полоскуна// Вопросы природной очаговости болезней. Алма-Ата. 1975. вып.7. С.106−108.
  54. В.А., Файнфельд И. А. Интенсивность инвазии у крыс, зараженных разными видами трихинелл//Гельминтозы Дальнего Востока. Хабаровск. 1973. вып.2. С. 17−18.
  55. В.Г. Паразитофауна рептилий юга Казахстана и их роль вциркуляции некоторых гельминтов человека и животных: Автореф. дис. .канд. биол. наук. Алма-Ата. 1970. 20с.
  56. В.Г. Роль рептилий в циркуляции трихинелл// Вопросыприродной очаговости болезней. Алма-Ата. 1972. вып.5. С.180−185.
  57. О.В., Елецкий Ю. К. Основы гистологии сгистологической техникой// М.: Медицина. 1962. 304с.
  58. .Л. Трихинелла от енота-полоскуна// Материалыдокладов Всесоюзной конференции по проблемам трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1972. С.53−54.
  59. .Л. Состав потенциальных хозяев трихинеллы Trichinellapseudospiralis// Паразитология. 1974. Т.8. вып.6. С.489−493.
  60. .Л. Восприимчивость птиц к Trichinella pseudospiralis//
  61. Тезисы докладов IX Всесоюзной конференции по природной очаговости болезней человека и животных. Омск. 1976. С. 174−1 75.
  62. Гаркави Б.Л. Trichinella pseudospiralis в сравнении с Tricinellaspiralis// Тезисы докладов IV Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Ереван. 1985. С.24−28.
  63. .Л., Чушкина А. Э., Семенов Ю. Ю. Взаимоотношенияпаразита и хозяина в системе ТпсЫпеПа рзеМоэрпаНз -рептилии// Тезисы докладов 2-го Всесоюзного съезда паразитоценологов. Киев. 1983. С.70−71.
  64. Э.Р. и др. Изучение паразито-хозяинных отношенийпритрихинеллезе// Материалы докладов Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1972. С.55−58.
  65. Э.Р. Об особенностях экологических адаптацийтрихинелл// Проблемы общей и прикладной гельминтологии. М.: Наука. 1973. С.191−196.
  66. Э.Р., Гридасова Л. Ф., Малыкина А. Н. Потенциальная рольптиц в циркуляции природного трихинеллеза, обусловленного ТпсЫпеПа рзеМозрпаНз Оагкау1, 1972// Научные и прикладные проблемы гельминтологии. М. 1978. С.30−35.
  67. Э.Р., Малыкина А. Н., Симакова Л. Н., Тимонов Е.В.
  68. Морфофизиологические критерии таксономической самостоятельности вида ТпсЫпеПа рзеидозрпаПз Сагкау, 1972// Паразитология. 1977. Т.П. N 2. С. 113−116.
  69. Э.Р., Петров А. М. О штаммах трихинелл в природе//
  70. Магериалы научной конференции ВОГ. М. 1958. С.37−39.
  71. Я. Трихинеллез в Чехословакии// Yiad. Рагагу1о1. 1976.1. Т.21. N 4−5. С.541−544.
  72. С.К. Животный мир Армянской ССР// Ереван: изд-во АН1. Арм ССР. 1954. 300с.
  73. В.В. Определение видовой принадлежноститрихинелл, циркулирующих на территории Хабаровского и Приамурского краев и значение выделяемых видов в эпизоотологии трихинеллеза// Гельминтозы Дальнего Востока. Хабаровск. 1976. вып.З. С.43−51.
  74. В.И. К характеристике трихинеллезной ситуации вдельте Волги// Труды Астраханского заповедника. Астрахань. 1966. Т.П. С. 115−122.
  75. В.И. Некоторые особенности природного очагатрихинеллеза в дельте Волги// Материалы докладов Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1972. С.142−147.
  76. Захрялов Я.Н. К вопросу о природной очаговости трихинеллеза в
  77. Амурской области// Материалы научной конференции ВОТ. М. 1963. 4.1. С.106−107.
  78. Зиморой И. Я. Природный трихинеллез и синантропность его в
  79. Курской и смежных областях// Автореф.дис.. канд.биол.наук. М. 1964. 23с.
  80. С.И., Коколова JI.M., Верховцева JI.A. Трихинеллезчеловека и животных в Якутии// Материалы докладов VII научной конференции по трихинеллезу человека и животных М. 1996. С.31−33.
  81. В.А. К вопросу о ликвидации трихинеллеза// Врачебноедело. 1934. N 5. С.355−359.
  82. Ю.С., Веденьков А. Л. Трихинеллез человека в Белоруссиина современном этапе// Материалы докладов VII научной конференции трихинеллезу человека и животных М.1996. С.33−36.
  83. Ю.С., Кумпина Л. И. Синантропность и природнытрихинеллез в Белоруссии// Материалы докладов III Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1981. С.63−66.
  84. Д.П. Труды гельминтологической лаборатории АН1. СССР.1963. Т.6. С.56−74.
  85. И.А., Гаврилюк Н. Д., Денисенко B.C.
  86. Распространение трихинеллеза среди диких плотоядныхживотных Украинской ССР// Мед. паразитология и паразитарные болезни. 1977. N 5. С.623−624.
  87. B.C., Горбунов Н. С., Иванов A.C. Случай групповогозаражения людей природным штаммом трихинелл в Алтайском Крае// Мед. Паразитология и паразитарные болезни. 1979. Т.48. N 1. С.87−88.
  88. B.C., Мариц Н. М., Абрамова JI.A. Роль кошек вэпидемиологии гельминтозов// Мед. паразитология и паразитарные болезни. 1961. Т.ЗО. N 2. С. 227.
  89. H.A. Роль личинок падальных мух в распространениитрихинеллеза// Материалы научной конференции ВОГ. М.1966. 4.1. С.144−149.
  90. .Е. и др. Трихинеллез животных в Грузии//
  91. Паразитологический сборник. Тбилиси. 1971. N 2. С.19−48.
  92. Г. Ф. Биометрия// М.: Высшая школа. 1968. С.50−123.
  93. М.А., Виксме А. Е., Гринберг А. Р. Проблематрихинеллеза в Латвийской ССР// Паразиты животных и борьба с ними. Рига: Зинате. 1966. С.5−22.
  94. Н.П. Об элективном расселении личинок трихинеллв организме млекопитающих// Wiad. Parazytol. 1962. Т.8(6) С.603−612.
  95. Т., Орич Э., Сэмбрук Дж. Молекулярноеклонирование// М.: Мир. 1984. С.43−86.
  96. К. К вопросу о мышечной фазе приобретенногоиммунитета трихинеллеза// Изв. центральной гельминтологической лаборатории. София: изд-во Болгарской Академии на науките. 1960. кн.Ю. С.134−142.
  97. Г. В. Гельминты микромаммалий Грузии//
  98. Тбилиси: Мецниереба. 1976. 235с.
  99. А.Т., Семов В.Н. Трихинеллез диких животных в
  100. Мордовии// Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1971. Т.40(5). С.532−534.
  101. .М. Закономерности эволюции генома//
  102. Молекулярные механизмы генетических процессов М.: Наука. 1982. С.76−85.
  103. A.C. О распространении трихинеллеза средиплотоядных животных в Челябинской области//Материалы научной конференции ВО Г. М. 1964. 4.1. С.257−260.
  104. A.B. Эпизоотология трихинеллеза и вопросы егодиагностики// Автореф. дис.. д-ра вет.наук. JL 1954. 22с.
  105. A.B. О круговороте трихинеллезной инвазии вприроде и природных очагах// Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1955. N 2. С. 125−130.
  106. JI.C. Восприимчивость птиц к трихинеллезу//
  107. Материалы докладов II Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1976. С.86−89.
  108. JI.C. Патоморфология скелетных мышц у птицпри трихинеллезе//Wiad. Parazytol. 1978. N 1. С.91−96.
  109. Т.М. Клиническая характеристика трихинеллезачеловека на Северном Кавказе и в районах севера РСФСР//Материалы докладов IV Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Ереван. 1985. С.94−97.
  110. Н.Е., Моренец Т. М., Журба Н. В. Характеристикаочага трихинеллеза в Краснодарском крае// Материалы докладов IV Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Ереван. 1985. С.46−47.
  111. С.А. Видовой состав трихинелл, паразитирующих уживотных Краснодарского края// Материалы докладов IV
  112. Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Ереван. 1985. С.27−28.
  113. Овсюкова Н. И. Гельминты и основные гельминтозымлекопитающих Чукотки// Дис.. канд.вет.наук. М. 1966.
  114. H.H. Труды I Московского мед. ин-та им.
  115. Сеченова. 1967. Т.46. С. 179−194.
  116. H.H., Романова В. И., Бронштейн А.М.
  117. Трихинеллез в Советской Арктике от мяса белого медведя// Белый медведь и его охрана в Советской Арктике. JI.: Гидрометеоиздат. 1969. С. 157−180.
  118. H.H. Медицинские проблемытрихинеллеза//Материалы докладов III Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1981. С. 15−22.
  119. H.H., Тумольная Н. И., Поверенный A.B.,
  120. В.К. Неспецифическое (иммуномодулирующее) действие новых антгельминтиков -природных имидазола и бензилимидазола// Научные и прикладные проблемы гельминтологии. М. 1978. С.128−134.
  121. Павловский E.H.Теория паразитоценозов и паразитарныеболезни// Тезисы докладов 8-го совещ. по паразитологическим проблемам. 1955. С.110−126.
  122. P.A. Идентификация видов трихинелл методоммикропреципитации на живых личинках// Бюллетень ВИГИС. М. 1974. вып. 13. С. 80−85.
  123. Пенькова P.A. Морфологические и биологические особенности
  124. Trichinella pseudospiralis// Материалы докладов II Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1976. С.90−91.
  125. P.A., Романенко Л. Н. Труды ВИГИС М. 1973. Т.20.1. С.133−142.
  126. М.Ф. Изменение некоторых свойств поперечнополосатых мышц после денервации и тендотомии// Физиол. журнал СССР. 1956. N 11. С.977−980.
  127. Ю.Н. О трихинеллезе диких зверей Ашхабадскогозоопарка// Тр. Туркменского с.-х. ин-та 1977. Т. 18. N 3.C.173−177.
  128. М.И., Довженко В. А. Эпидемиологическая ситуацияпо трихинеллезу в РСФСР//Маиериалы докладов Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1976. С.15−20.
  129. Прокофьев A.A. Некоторые данные по трихинеллезу в
  130. Приморском крае// Ветеринария. 1960. N 9. С.79−80.
  131. Романов И. В. Гельминтофауна домашних плотоядных Среднего
  132. Поволжья в связи с проблемой девастации ельминтозоонов// Материалы научной конференции ВОГ. М. 963. Т.2. С.61−62.
  133. В.А. О трихинеллезах животных Воронежскогозаповедника// Материалы научной конференции ВОГ. М. 1965. т .4. С.228−231.
  134. A.A. Трихинеллез человека в Литовской ССР//
  135. Материалы докладов IV Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Ереван. 1985. С.49−50.
  136. И.А. Обнаружение Trichinella spiralis (Owen, 1835) улеопарда (Pantera pardus tuliana Valenciennas, 1986) в Азербайджане// Докл. АН АзССР. 1968. Т.24. N 9. С.69−71.
  137. И.А. Эколого-эпизоотологические особенноститрихинеллеза диких животных Азербайджана// Проблемы паразитологии. Труды 6-й научной конференции паразитол. УССР. Киев. 1969. 4.1. С.208−209.
  138. И.А. О мерах профилактики природно-очаговыхгельминтозов человека в Азербайджане// Проблемы мед. географии Кузбасса. Ма|ериалы научной конференции.Новокузнецк. 1981. С.69−71.
  139. С.К., Романова Е. А., Бенедиктов И. И., Рысков А.П.
  140. Анализ генетической изменчивости печеночного сосальщика Fasciola hepatica с помощью полимеразной цепной реакции со случайными праймерами// Генетика. 1995. Т.31. N 2. С.273−275.
  141. С.К., Романова Е. А., Рысков А. П. Генетическаядифференциация гельминтов на основе данных полимеразной цепной реакции со случайными праймерами// Генетика. 1996. Т.32. N 2. С.304−309.
  142. Ф.Ф. Молекулярные основы паразитизма//М.: Наука.1987. С.35−74.
  143. К.И. Всебелорусское совещание по борьбе стрихинеллезом // Русский журнал тропической медицины. 1928. N 5. С. 329−332.
  144. Г. Г. Природная очаговость трихинеллеза в Арктике//
  145. Зоологический журнал. 1963. Т.42. вып.З. С.338−344.
  146. Советский Союз. Армения// Под.ред. А. Б. Багдасаряна. Ереван: Мысль. 1966. 350с.
  147. И.Б., Шайкенов Б. Ш. К сравнительной морфологиивидов-двойников трихинелл// Материалы докладов II Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1976. С.95−100.
  148. Е.В. Распространение трихинеллеза среди диких идомашних животных Ненецкого национального округа// Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1966. 37(3). С.366−367.
  149. B.B. К вопросу о зараженных трихинеллезомнекоторых животных в Литве// Проблемы паразитологии. Труды VII научной конференции паразитологов УССР. Киев. 1972. Ч.2.С.293−294.
  150. А. Д. Трихинеллез диких животных в Тувинской
  151. АССР// Гельминтозы животных. Омск. 1964. С.97−99.
  152. Сянь-жун Царэн, Лань Сяо-жуэй, Го Кий-юй, Ли Гоу-и. Случайтрихинеллеза у человека в Тибетском районе// Чжунхуа исюэ чзагжи. 1975. Т.55. N 1. С.56−58.
  153. О., Говорка Я. Восприимчивость разныхэкологических групп птиц к T.pseudospiralis Garkavi, 1972// Тезисы 3-го Международного симпозиума Гельминтологического Института САН. 1976. С. 209.
  154. К.К. Наземные моллюски как возможные транзитныехозяева трихинелл// Вопросы природной очаговости болезней. Алма-Ата. 1971. вып.4. С. 135−141.
  155. К.К. Возможная роль моллюсков в циркуляциитрихинелл// Материалы докладов II Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1976. С.100−104.
  156. К.А. Эколого-фаунистическая характеристикараспространения гельминтов пушно-промысловых зверей на Малом Кавказе и в Милето-Карабахской степи Азербайджана// Автореф. дис. .канд.биол.наук. Баку. 1980.
  157. Федоров В. Г. Материалы к изучению очагов трихинеллеза в
  158. Западной Сибири// Природно-очаговые антропозоонозы. Тезисы докладов IX Всесоюзной конференции по природной очаговости болезней человека и животных. Омск. 1976. С.183−184.
  159. H.A., Литвинов В. А., Литвтнов В.Ф. Trichinella spiralisу хищных млекопитающих Кызыл-Агачского заповедника// Доклады АН АзССР. 1977. Т.ЗЗ. N 2. С.61−62.
  160. В.А., Бритов В. А., Журавлев Л. Ф., Василии М.Г.,
  161. А.Г., Тихонова Л. В. Случаи трихинеллеза на Камчатке и островах Курильской гряды// Материалы докладов к III Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1981. С.67−69.
  162. М.В. О трихинеллезе в Таджикистане// Тезисы докладов10. й Всесоюзной конференции по природной очаговости болезней. Алма-Ата. 1979. 4.1. С.227−228.
  163. .Ш., Соколова Л. А. О распространении Trichinellapseudospiralis Garkavi, 1972 в природе// Материалы докладов III Всесоюзной конференции по проблеме трихинеллеза человека и животных. Вильнюс. 1981. С.73−77.
  164. .Ш., Каиров И.Х. К вопросу о трихинеллезе в
  165. Узбекистане// Вопросы природной очаговости болезней. Межведомственное совещание по трихинеллезу, альвеококцидиозу и описторхозу. Алма-Ата: Колтнар. 1966. С. 18−19.
  166. Е.И. К вопросу р природной очаговости трихинеллезав Хабаровском крае// Ученые записки Хабаровского педагогического ин-та. Хабаровск. 1964. Т.Н. С.86−89.
  167. Ялымова Е. И. Трихинеллез диких и домашних животных в
  168. Хабаровском крае// Гельминтозы Дальнего Востока. Благовещенск. 1974. С.59−60.
  169. Alcaino H.A., Gorman T.R., Santibanez M., Vilches G.
  170. Trichinellosis en gatos y perros del area metropolitana de Chile// Rev. iber. parasitol. 1981. V.41. N 3. P.461−462.
  171. Arribas В., Siles M., Bolas F., Martine Z.A.K. Randomly amplifild
  172. DNA polymorphism within Trichinella species and isolates//
  173. Eighth International Conference on Trichinellosis. Orvieto (Italy). 1993. Abstract book. P. 10.
  174. Bandi C., Damiani G. Applichation of RAPD markers inmolecular systematics and population biology of Trichinella spp.// Eighth International Conference on Trichinellosis. Orvieto (Italy). 1993. Abstract book. P. 11.
  175. Bandi C., La Rosa G., Comincini S., Tasciotti L., Domiani
  176. G., Wang G., Pozio E. Microtacsonomy of Trichinella spp.: coasistency of resalis obtained by RAPD and isozyme analyses// Eighth International Conference on Trichinellosis. Orvieto (Italy). 1993. Abstract book. P. 12.
  177. Bandi C., La Rosa G., Comincini S. et al. Random amplifiedpolymorphic DNA technique for the identification of Trichinella species// Parasitology. 1993. V.107. P.419−424.
  178. Barus V., Tenora F., Wiger R., Genov T., Komandarev S. Scanningelectron microscopic studies on males of Trichinella species// Folia parasitol. 1979. V.26. N 2. P.97−101.
  179. Barrett J. Biochemistry of parasitic helminths// L. McMillan.1981.
  180. Bessonov A.S., Penkova R.A. The epizootologic significanceof trichinella strains and species// Abstr. in Fourth Int. Conf. on Trichinellosis. Poznan, Poland. 1976. P.7
  181. Biagi F., Robledo E. Estado actual de conocimientos sobre
  182. Triguinosis en Mexico//Wiadom. parazytol. 1962. N 6. P.585−588.
  183. Biziulavicius S., Vitkauskiene G., Trichinellosisin the Lithuanian
  184. SSR// Wiad. parazytol. 1979. V.25. N 5. P.595−596.
  185. Boch Y., Horchner F. Untersuchungen uber Helminthen des
  186. Schwarzwildes// Ztschr. Parasitenk. 1961. N 2. P. 113−122.
  187. Boyd D., de Vos T., Klassen G., Dick T.A.
  188. Characterization of the ribosomal DNA from Trichinella spiralis // Mol. and Biochem. Parasitol. 1989. V.35. P.67−72.
  189. Cairns G.C. The occirence of Trichinella spiralis New Zeland pigs, rats and cats// N.Z.Vet, J. 1966. V. 14(7). P.84−88. «Helm.Abstr.», Ser. A. 1968. V.37. N 1. P.4555.
  190. Calero R., Martinez F., Hernandez S., Acosta Isabel. Parasitacionde Buteo butei por Trichinella sp. en el porque zoologico de jezez de la frontera// Rev iber. parasitol. 1978. V.38. N 1. P.135−138.
  191. Cameron T. Trichinellosis in Canada// Wiadom. parasitol. 1960. N 4.1. P.304.
  192. Cameron T. Immunizing effect of enteral and enteral-parenteralinfections of T. spiralis in mice// J.Parasitol. 1962. V.51. P.185−194.
  193. Castro G., Olsen L. Relationship between body weight and waterintake in T. spiralis infected guinea pigs// J.Parasitol. 1967. V.53. N 3. P.589−594.
  194. Charles R. The effect of body tempereture on development of
  195. T.spiralis in bats// J. Parasitol. 1981. V.46. N 6.P.855−858.
  196. Chambers Anne E., Veil M. Almond, Matty
  197. Knight. Repetitive DNA as a tool for the «identification and comparison of nematode variants: application to Trichinella isolates//Molecular and Biochem. Parasitol. 1986. V.21. P. 113−120.
  198. Chroust K., Mittermayer T. Effect of large doses of cortisoneupon the ability// J. Lab. Med. 1983. N 42. P.746−748.
  199. Cironeanu Y. Consideratii asupra trichinellkzei si examenuluitrichinoscopic// Produsa Animale Bucuresti. 1960. V.ll. N 11. P.338−342.
  200. Cironeanu Y. Considerations on trichinellosis and trichinoscopicexaminations//Wiadom. Parazytol. 1962. VIII. N 1. P.149−150.
  201. Cironeanu Y. Letters to the secretary of the internationalcommission on trichinellosis// Wiadom. Parazytol. 1967. VIII. n l.P.149−150.
  202. Cironeanu Y. Trichinellosis in domestic and wild animals in
  203. Rumania// Proc. #rd Int. Conf. on Trichinellosis. USA. 1974. P.549−555.
  204. Cironeanu Y. Trichinellosis in Rumania// Wiad. Parazytol.1979. V.25. N 5. P.597−598.
  205. Clausen B., Henriksen Sv.Aa. Trikinunder sogel se af Dansk vildt//
  206. Med.lemsbl. Dan. Lyrlacgeforen. 1974. V.57. N 8. P.329−332.
  207. Clough K.A., Drew A.C., Bribldey P.J. Host-like sequences inthe Shistosome genome// Parasitol. Today. 1996. V.12. N 7. P.283−286.
  208. De Guisti D.L., Field W.A. A survey of Trichinella spiralis inrats, dogs and cats in Detroit// J. of Parasitology. 1952. 38 (Suppl.) P. 16.
  209. Diaz M., Kuscevic T., Cantia F., Hamede D. Encuesta detriguinosis en un pueblo cerdillerano// Bol. chileno. parasitol. 1960. V.15. N 4. P.72−73.
  210. Dick T.A., Belosevic M. Trichinella spiralis. Comparison with anarctic isolate// Exp. Parasitol. 1978. V.49. N 2. P.266−276.
  211. Dick T.A., Chadee K. Interbreading and gene flow in the genus
  212. Trichinella// J. Parasitol. 1983. V.69. N l.P.176−180.
  213. Dick T.A., Lu M.C., de Vos T., Ma K. The use of the polymerasechain reaction to identify porcine isolates of trichinella// J. Parasitol. 1992. V.78. P.145−148.
  214. Dupory-Camet J., Robert F., Guillou J.P., Vallet C., Perret C,
  215. Soule C. Genetic analisis of Trichinella isolates with random amplified polymorphic DNA markers// Eighth International Conference on Trichinellosis. Owieto. Italy. 1993. Abstract, book. P.51.
  216. Dupoey-Gamet J., Soule C., Fuillou J.-P. et al. Detection ofrepetitive sequences to Truchinella spiralis by the polymerase chain reaction in experimentally infected mice// Parasitol. Res. 1991. V.77. P.180−182.
  217. Dissamarn R., Chai-Anan P. Some animal reservoirs of Trichinellaspiralis in North Trailand// Helm. Abstr. 1970. V.40. N 3. P.3958.
  218. Egilmez N.K., Ebert IIR.H., Reis R.J.S. Strain evolution in
  219. Caenorhabditis elegans: Trasposable elements as markers of interstrain evolutionary hystory// J. Mol. Evo. 1995. V.40. P.372−381.
  220. Ellsworth D.L., Rittenhouse K.D., Honeycutt R.L. Artifactualvariation in randomly amplified polymorphic DNA banding patterns//Biotechniques. 1993. V. 14. N 12. P.214−217.
  221. El-Nawawa F.A. Swine trichinellosis in Egypt// Arch.1.bensmottelhyg. 1981. V.32. N 5. P.156−158.
  222. Ermolin G.A., Efremov E.E. Trichinella spiralis, isolation andpurification of the main functional antigen from decapsulated larvae// Trichinellosis N.Y.at Stone Brook. 1974. P.187−197.
  223. Flockhart H.H., Harrison S.E., Dobinson A.R., James E.R. Enzymepolymorphism in Trichinella// Trans. Roy. Sos. Trop. Med. and Hyg.1982. V.76. N 4. P.541−545.
  224. Golding G.B., Strobeek C. Increased number of alleles found inhybrid polulations due to intragenic recombination// Evolution. 1983. V.37. P. 17−29.
  225. Gordero del Compillo M., Martinez F.A., Aller C.B. Some factsconcerning the epizootology of trichinellosis in Spaim// An. Fac Veterin. Leon. 1969.V.15. N 5/1. P.87−100.
  226. Gould S.E. Trichinosis in man and animals// Charles
  227. C.Thomas, Publ. Sp ingfield. USA 1970. 540p.
  228. Gretillat S. La truchunose des animeux sauvages en Afrique doitetre consideree comme une zoonose L’avenire //Helm. Abstr. 1972. V.41. P.3490.
  229. Gretillat S. Trichinella spiralis immunologica response to infection inmice// Expl. Parasitol. 1973. V.31. N 3. P.378−399.
  230. Gretillat S., Vassiliader G. Receptivites camparees du chat et dupore domestiques a la sonche ouest-africane de T. spiralis// C. r. A.cad. sci. D. 1968. V.266. N 11. P. l 139−1141.
  231. Guevara-Pozo D., Contreras-Pena Y.A. Experiencias deinfestacion en diversos vertebrados// Rev. Iber. Parasitol. 1966. V.26. N.2. P.239−288.
  232. Guevara-Pozo D., Contreras-Pena Y.A. Trichinella spiralis
  233. Owen, 1835- experiencias de infectacion endiversos vertebrados// Rev. Iber. Parasitol. 1966. V.26. N.2. P.239−288.
  234. Henriksen Sv.Aa. Recovery of Trichinella spiralis larvae from frozenmuscle samples// Acta vet. scand. 1978. V.19. N 4. P.607−608.
  235. Himonas C.A. Report on Trichinella spiralis status in Greece//
  236. Wiad. parazytol. 1979. V.25. N5. P.591−596.
  237. Hinaidy H.K. Report on trichinellosis in Austria// Wiad. parazytol.1978. V.24. N 1. P. 109−110.
  238. Hoick S. The distribution of Trichinella spiralis in countries in
  239. Southeast Asia and Far East// Proceedingsof the 1-st International Congress of Parasitology. Milano. 1966. V.2. P.666−668.
  240. Holz J. Untersuchungen uder Trichinellose in Gava und Sumatra//
  241. Wiadom. Parazytol. 1966. V.12. P.511−518.
  242. Holz J. Trichinellosis in Indonesia// Wiadom. Parazytol. 1979. V.25.1. N 5. P.597.
  243. Horning В. Weitere Trichinen fiinde in der Schweiz (19 751 976)// Schweiz. Arch. Tierheilk. 1977. V.119. N 8. P.337−339.
  244. Horning В. Short report concerning Trichinella research in
  245. Switzerland, 1977−1978//Wiad.parazytol. 1979. V.25. N 5. P.580−582.
  246. Hovorka J. Trichinellosis in Czechoslovakia (1962−1974) //Wiad.
  247. Parazytol. 1975. V.21. N 4−5. P.541−544.
  248. Hulianska D., Shaikenov В., Grim M. Histochemicaldifferentiation offour species of the genus Trichinella from days 1040 of their development in muscles of experimentally infected mice// Folia parasitol. 1984. V.31. N 1. P. 19−27.
  249. Jarubovska A., Rebandel H. Infectivity of Trichinella spiralis and
  250. Trichinella pseudospiralis in experimentally infected rabbits// 4th Int. Congr. Parasitol. Warszawa. 1978. P.25.
  251. Jordan Ch.S. Experimentally trichinized Texas horned lizards//J.
  252. Parasitol. 1964. V.50. N 3. P.24.
  253. Juranek K., Schultz M. The specificity of the immune respomsestimulated by the intestinal stage// J. Helminthology. 1975. V.49. N 1. P.43−47.
  254. Kagan Y.G. Trichinosis: A review of biologic, serologic andimmunologic aspects// J. Infect. Diseases. 1960.V. 107. N 1. P.65−93.
  255. Kjars-Hanssen B. Treatment of trichinosis//J.A.M.A. 1984. V. 190.1. P.852−853.
  256. С., Михов JI. Исследования върху механизма ифакторите на имунитета при трихинелозата. IX. Опит за интраутеринно предаване на иммулогична толерантностилиимунитет// Изв. Центр, хелминтол. лабор. Болг. АН. 1972. Т.15. С.135−142.
  257. Massen G.R., Thiessen J.P., Dick Т.А. Restriction endonucleaseanalysis of repetitive sequences in the Trichinella genome: three strain-specific patterns// J. of Parasitology. 1986. V.72. P.772−775.
  258. Kozar Z., Kozar M. The course of experimental trichinellosisin mice// Wiad. parazytol. 1963. N 5. P.403−418.
  259. Kozar Z., Ogielski L. Plosnica swin w Polsce w Latach
  260. Powejennych zoszezegolnym Unzglendnieniem okresn 1960−1962// Wiad. parazytol. 1965. N 4. P.245−283.
  261. Kozar Z., Kozar M. Incidence of T. spiralis in the Polish populationon the basis of post-morten examinations// Wiad. parazytol. 1965. N 4. P.233.
  262. Kozar Z., Kozar M. A comparison of the infectivity andpathogenicity of Trichinella spiralis strains from Poland and Kenya// J. Helminthol. 1965. V.39. N 1. P. 19−34.
  263. Kozar Z. Triabendazole therapy in human trichinellosis// Acta
  264. Parasitol. Polon. 1979. V.12. P.605−607.
  265. Kruger S.P., Collins M.N., Niekerk J.W., McCully R. MXBosson
  266. P.A. Experimental ibservations on the SouthAfrican strain of T. spiralis// Wiad. Parazytol. 1969. V.5/6. P.546−554.
  267. Kullman E. Die Entwicklung d. Trichinellen zum reifen
  268. Geschietstier im Darme d. Wirtes// Ztblt. f. Bact. Abt. 1965. N 1. P.25−302.
  269. Kullman E. Feststellungen zur Trichinellosis in der Freien
  270. Wildbahn Afganistans// Wiad. Parazytol. 1970. V.16. N 1. P. l 11 116.
  271. Madsen H. The distribution of T. spiralis in sledge dogs and wildmammals in Greenland under a global aspects// Medd. Greenland. 1961. V.159. N 7. P. 124.
  272. Minchella D.I., Branstetter B.A., Kazacos K.R. Molecularcharacterization of sylvatic isolates of Trichinella spiralis// J. Parasitol. 1989. V.75(3). P.388−392.
  273. Marty W.G. The intestinal phase of on experimental infection ofchicks with T. spiralis// J. Parasitol. 1966. N 5. P.903−907.
  274. Meerovitch E., Ghadirian E. Effect of Trichinella spiarlisinfection on the experimental amebic liver abscess in hamsters// Arch, invest, med. 1980.V.11. N 1. P.185−188.
  275. Mobedi Y. et al. Sylvatic focus of trichineasis in the Caspian region, northern Iran// Amer. J. Trop. Med. and Hyg. 1972. V.22. N 6. P.720−722.
  276. Murrell K.D. Preslaughter control of trichinosis// Food Technology.1987. V.37. P.87−90.
  277. Mutafova T., Kmandarev S. On the karyotype of laboratory
  278. Trichinella strain from Bulgaria// Z. Parastenk. 1982. V.48. P.247−250.
  279. Mydynski L.I., Dick T.A. The use enzyme polymorphisms to dentitygenetic differences in the Genus Trichinella// J. Parasitol. 1985. V.71. N 5. P.671−677.
  280. Neghme A. Trichinellosis in Latin America// Wiad. Parazytol.1975. V.21. N 4−5. P.547.
  281. G.S. Mukundi J. //Wiad. Parazytol. 1962. N 6. P.629−632.
  282. Nelson G.S., Mukundi J. A strain of T. spiralis from Kenya of low infectivity to rats and domestic pigs// J. Helminthol. 1963. V.37. N 4.1. P.329−338.
  283. Nelson G.S., Rickman L.R. Feral Trichinosis in Africa// Trans. Roy.
  284. Soc. Trop. Med. and Hyg. 1961. V.55. N 6. P.514−517.
  285. Nelson G.S., Forrester A.T. Trichinosis in Kenya// wiad.Parazytol.1962 N 1. P.17−28.
  286. Nelson G.S., Guggisberg C.W.A., Mukundi J. Animal hosts T. spiralisin East Africa// Ann. Trop. Med. and Parasitol. 1963. V.57. N 3. P.332−346.
  287. Nemeseri L. A trichinellosis hazakban// Helm. Abstr. 1965. V.40.1. N 1. P.315.
  288. Nemeseri L. Importance of trichinellosis in Hungary// 11 International
  289. Conference on Trichinellosis. 1969. P.190−191.
  290. Nemeseri L. The importance of trichinellosis in Hungary// Wiad.
  291. Parazytol. 1970. V.16. P.80−83.
  292. Pavlov P. Trichinellosis in Bulgaria// Wiadom. Parazytol.1979. N 5. P.580.
  293. Przujalkowski Z., Golinska Z., BanyJ. The effect of intestinalflora on the course of infection immunological and haematological changes in mice exposed to T. pseudospiralis// 4-th Intern. Congr. Parasitol. Warszawa. 1978.
  294. Robinson E.J., Olson O.W. The role of rats and mice in thetransmission of the pork worm T. spiralis// J. Parasitol. 1960. V.46. N 5. P.589−597.
  295. Rukavina J., Brglez Y. Trichinellosis of some species of wild animalsin Yugoslavia//Wiadom. Parazytol. 1970. V.16. N 1. P.79.
  296. Sadykov Y.a. Trichinellosis of animal in the Azerbaijan SSR// 4-th1.tern. Congr. Parasitol., Warszawa. 1978. V.l. P. 149.
  297. Sapunar J., Szekely R. T. spiralis in carnivores and rodents// J.
  298. Parasitol. 1977. V.59. N 6. P.986.
  299. Schaal G.A., Nundy S., Chowdhury A. B, Bandyopadhyay A.K.
  300. T.spiralis India. II. Characteristics a strain isolated from a civet cat in Calkutta// Trans. Roy. Soc. Trop. Med. and Hyg. 1967. V.61. N 2. P.249−258.
  301. Schenone H. et al. Epidemia de triquinesis en Temuco// Bolm. chil.parasitol. 1972. V.27. N 1−2. P.33−36.
  302. Shaikenov B., Tazieva Z.Ch., Horning B. Zur Atiologie der
  303. Naturherd-Trichinellose in der Schweiz// Acta Trop. 1977. V.34. N 4. P.327−330.
  304. Schaikenov B. Spontaneous infection of birds with Trichinellapseudospiralis Garkavi, 1972// Folia parasitol. 1980. Y.27. N 3. P.227−230.
  305. Smith H.J. Differentiation of Trichinella spiralis spiralis and
  306. Trichinella spiralis nativa based on resistance to low temperature refrigeration// Can. J.Comp. Med. 1983. V.47. N 4. P.501−502.
  307. Simpson A.J.G., Sher A., Gutchan T.F.Mc. The genome of
  308. Shistosome mangoni isolation of DNA, its size based andrepetitive seguences// Mol. and Biochem. Parasitol. 1982.V.6. P.67−140.
  309. Stoll L., Haase M., Fuhr R. Untersuchungen uber das biologische
  310. Verhalten von Trichinella spiralis-Stammen verschiedener Herkunft bei Mausem//Arch. Lebensmittel- hyg. 1979. V.30. N 1. P.9−13.
  311. Stoll L., Haase M., Fuhr R. Zur serologischen Diagnose der
  312. Trichinellase-Vergleichende experimentalle Untersuchungen bei Maus and Schwein unter Vermendung der Agar-Gel-Prazipitation, der Direktprazipitation und des indirekten Immunofluorescenz-Antikorpertests// Arch. Lebensmittelhyg. 1979 V.30. N 6. P.208−214.
  313. Tailyour J.M., Steele J.R. Trichinella infection in swine in the
  314. Vancouver Area// Canad. J. Publ. 1960. V.51 N 8. P.309.
  315. Tomasovicova O. Dynamic of growth of Trichinellaspiralis larvae inthe muscle pase of their development in laboratory mice// Helminthologia. 1981. V.18. N 2. P. 113−116.
  316. Trommer G. Fleischfressende vogel als Ubertrager von Trichinen//
  317. Bakt. Tierar. 1970. N 2. P.46−47.
  318. Tighe P.I., Goyal P.K., Wilson L.A., Wakelin D., Pritchard D.I.
  319. Analysis of genetic variatin in isolates of Truchinella using random amplified polymorphic DNA// Mol. and Biochem. Parasitol. 1994. V.63. N 1. P.175−178.
  320. Terry D.A. Infectivity of isolates of Trichinella and the ability ofan arctic isolate to survive breezing temperatures in the raccoon, Procyon lotor, under experimental conditions// J. Wildlife Diseases 1983. Y.19. N 4. P.333−336.
  321. Vamaguchi T. Report on trichinellosis in Japan//Wiadom. Parazytol.1978. V.24. N 1. P.114−117.
  322. Yenugopal G., Trivedi H.N., Mohapatra S. Arbitrary singleprimers identify polymorphic DNA markers that distinguish inbred strains of mice// Biochem. Biophys. Res. Commun. 1994. V.203. N 1. P.659−665.
  323. Yillella J.B. Morphologic criteria for distinguishing the sex of
  324. Trichinella spiralis larvae from muscle// J.Parasitol. 1966. V.52. N 5. P.908−910.
  325. Wetton J.H., Carter R.E., Parkin D.T., Watters D. Demographicstudy of a wild hous sparrow population by NA fingerprinting// Nature. 987. V.327. P. 147−149.
  326. Welsh I., McClelland M. Fingerprinting genomus using PCR with
  327. Arbitrary Primes//Nucl. Acids Res. 1990. V.18. P.7213−7218.
  328. Williams I.G.K., Kubelik A.R., Rafalski I.A., Tingey S.V. DNApolymorphism amplified by arbitraryprimers are seful as genetic markers// Nucl. Acid Res. 1990. V.18. P.6531−6535.
  329. Young E., Whyte J. Trichinosis in wild animals of the Kruger
  330. National Park// J. S. Afr. Vet. Med. Assoc. 1975.V.46. N 3. P.233−234.
  331. Zarlenga D.S., Dame J.B. The indentification andcharacterization of break within the large subunit ribosomal RNA of Trichinella spiralis: comporeson of gap sequences within the genus// Molecular, and Biochem. Parasitology. 1992. V.51(2). P.281−289.
  332. Zimmerman W.J., Schwarte L.H., Biester H.E. On the occurenceof T. spiralis in pork sousage available in Iowa (1953−1960)// J. Parasitol. 1961. V.47. N 3. P.429−432.
  333. Zimmerman W.J., Zinter D.E. The prevalence of trichiniasisin swine in the United States, 1966−1970 // Helm. Abstr. 1972 V.41. N 3. P.2788.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!