Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Экотоксикологическое влияние кадмия на антиоксидантные процессы млекопитающих в модельной системе белых крыс и их потомства

Диссертация: Экотоксикологическое влияние кадмия на антиоксидантные процессы млекопитающих в модельной системе белых крыс и их потомства
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Научно-практическая значимость. Показано, что наиболее подвержены токсическому влиянию низких доз кадмия процессы ПОЛ и активность глутатионовой системы мозга. Установлено, что пренатальный и неонаталь-ный периоды являются столь чувствительными для токсического воздействия, что даже незначительные количества кадмия, проникающие к плоду или в организм потомства с материнским молоком, способны… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ
  • 1. КАДМИЙ КАК ЭКОЛОГИЧЕСКИЙ ФАКТОР, ВОЗДЕЙСТВУЮЩИЙ НА ЖИВЫЕ ОРГАНИЗМЫ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
  • 1. Л Распространение кадмия в среде обитания человека
    • 1. 2. Воздействие кадмия на организм человека и животных 18 1.2 Л Токсикокинетика кадмия
      • 1. 2. 2. Токсическое влияние кадмия на организм человека и животных
      • 1. 2. 3. Влияние кадмия на организм матери, новорожденного и эмбрион
    • 1. 3. Кадмий и окислительный стресс
      • 1. 3. 1. Состояние окислительного стресса
      • 1. 3. 2. Глутатионовая система
        • 1. 3. 2. 1. Глутатион
        • 1. 3. 2. 2. Глутатионредуктаза
        • 1. 3. 2. 3. Глутатионпероксидаза
        • 1. 3. 2. 4. Глутатион-Б-трансфераза
        • 1. 3. 2. 5. у-Глутамилтрансфераза
      • 1. 3. 3. Влияние кадмия на глутатионовую систему
  • 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Объекты исследования
    • 2. 2. Методы исследования
      • 2. 2. 1. Определение содержания восстановленного глутатиона
      • 2. 2. 2. Определение активности глутатион-Б-трансферазы
      • 2. 2. 3. Определение активности глутатионредуктазы
      • 2. 2. 4. Определение активности у — глутамилтрансферазы
      • 2. 2. 5. Определение содержания оксида углерода (И)
      • 2. 2. 6. Исследование методом индуцированной хемилюминесценции
      • 2. 2. 7. Определение содержания белка
      • 2. 2. 8. Определение содержания гемоглобина 56 3 РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Изучение краткосрочных механизмов адаптации к воздействию Сс1(ТЧОз)2 у самок крыс
      • 3. 1. 1. Обсуждение результатов
    • 3. 2. Исследование воздействия ионов Cd2+ в период беременности самок крыс на постнатальное развитие потомства
      • 3. 2. 1. Изучение воздействия ионов Cd на двухмесячное потомство самок крыс
      • 3. 2. 2. Изучение воздействия ионов Cd на четырехмесячное потомство самок крыс
      • 3. 2. 3. Обсуждение результатов
    • 3. 3. Исследование воздействия ионов Cd2+ в период лактации самок крыс на постнатальное развитие потомства
      • 3. 3. 1. Изучение воздействия ионов Cd на двухмесячное потомство крыс
      • 3. 3. 2. Изучение воздействия ионов Cd на четырехмесячное потомство крыс
      • 3. 3. 3. Обсуждение результатов
  • ВЫВОДЫ
  • СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ
  • GPx — глутатионпероксидаза
  • GR — глутатионредуктаза
  • GSH — глутатион восстановленный
  • GSNO — S-нитрозоглутатион
  • GSSG — глутатион окисленный
  • GST — глутатион-Б-трансфераза
  • НО — гемоксигеназа
  • НЬ — гемоглобин
  • ONOO" - пероксинитрит
  • ROH — оксикислота
  • ROOH — органические перекиси y-GCS — у-глутамилцистеинсинтетаза y-GT — у-глутамилтрансфераза
  • AJIT — аланинаминотрансфераза
  • АО — антиоксиданты
  • АОС — антиоксидантная система
  • ACT — аспартатаминотрансфераза
  • АФК — активные формы кислорода
  • ВОЗ — Всемирная организация здравоохранения
  • Г6ФД — глюкозо-6-фосфатдегидрогеназа
  • ГКНА — Ь-глутамил-3-карбокси-4-нитроанилид
  • МТ — металлотионеин
  • ОДК — ориентировочно допустимая концентрация
  • ПДК — предельно допустимая концентрация
  • ПОЛ — перекисное окисление липидов
  • СОД — супероксиддисмутаза
  • СРО — свободнорадикальное окисление
  • УЛЗ — урболандшафтная зона
  • ХДНБ — 1-хлор-2,4-динитробензол

Экотоксикологическое влияние кадмия на антиоксидантные процессы млекопитающих в модельной системе белых крыс и их потомства (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность исследования. Изменение состояния окружающей среды в промышленно развитых странах побуждает проводить интенсивное изучение воздействия экологических факторов на биологические объекты. Рост урбанизации неизбежно приводит к усложнению экологической обстановки в городах, на площадях, занятых промышленными предприятиями, транспортными магистралями, а также на прилегающих к ним территориях. По данным доклада министерства природных ресурсов Российской Федерации, около 10% городов России имеют высокий уровень загрязнения природных сред. Практически во всех городах с населением свыше 1 млн. человек экологическое неблагополучие оценивается как «наиболее высокое». Не менее 60% городов с населением 0,5−1 млн. жителей характеризуются острой экологической ситуацией (Государственный доклад ., 2006, 2007).

Во многих странах приоритетной группой экотоксикантов считаются тяжелые металлы и, в частности, кадмий (Unamuno et al., 2006; Cesur and Kar-tal, 2007; Jaji et al., 2007; Lu et al., 2007; Wang et al, 2007). Загрязненность окружающей среды тяжелыми металлами отмечается в ряде регионов России, в том числе в Поволжье.

По информации комитета охраны окружающей среды и природопользования Саратовской области, в Саратове на протяжении последних лет сохраняется превышение предельно допустимых концентраций кадмия в грунтовых водах, почве и снеговом покрове, обусловленное наличием в селитебной зоне города стационарных промышленных источников загрязнения (О состоянии., 2002, 2006). Ухудшение состояния окружающей среды не может не отражаться на здоровье населения: по большинству медико-демографических показателей в последние годы в Саратовской области наблюдаются негативные тенденции (О состоянии ., 2007).

Особенность кадмия состоит в том, что он очень медленно выводится из организма, а длительное поступление даже небольших доз этого элемента в условиях экологического неблагополучия может привести к развитию нарушений деятельности сердечно-сосудистой (Jamall and Smith, 1985аJamall et al., 1989; Wang et al., 1994) и нервной систем (Shukla et al., 1988a), функций почек (Bompart et al., 1991; El-Safty et al., 1996; Jimi et al., 2004), печени (El-Maraghy et al., 2001; Koyu et al., 2006), развитию онкологических заболеваний (Koizumi and Li, 1992; Arriazu et al., 2005). Считается, что главным механизмом токсического действия кадмия является индукция окислительного стресса (Ognjanovic et al., 2003; Ikediobi el al., 2004; Babu et al., 2006; Lopez et al., 2006; Rho and Kim, 2006; Jadhav et al, 2007; Thijssen et al., 2007). В связи с этим весьма перспективной представляется оценка про-антиоксидантного баланса организма в условиях экологического неблагополучия с целью ранней диагностики и патогенетически обоснованного лечения заболеваний. Одной из основных антиоксидантных систем клетки является глутатионовая система, представляющая собой трипептид глутатион и группу ферментов, катализирующих реакции с его участием. В многочисленных работах зарубежных ученых показано влияние кадмия на глутатионовую систему деток-сикации (Ulusu et al., 2003; Casalino et al., 2004, 2006; El-Demerdash et al., 2004; Hsiao and Stapleton, 2004; Han et al., 2006; Kirschvink et al., 2006; Koyu et al., 2006; Esrefoglu el al., 2007; Sinha et al., 2007; Zirong and Shijun, 2007). Тем не менее, в литературе отсутствуют сведения об активности этой системы и интенсивности процессов перекисного окисления у потомства при воздействии соединений кадмия в период беременности и лактации.

Актуальность настоящего исследования связана с необходимостью прогнозирования последствий влияния ионов кадмия на организмы матери и ребенка с целью разработки профилактических мероприятий по снижению детской заболеваемости и смертности, особенно в послеродовой период.

В связи с этим целью работы было выявление экотоксикологического воздействия кадмия на антиоксидантные процессы у млекопитающих в модельной системе белых крыс и их потомства.

Для реализации цели в ходе исследования решали следующие задачи:

1) изучить активность ферментов глутатионовой системы (глутатион-S-трансферазы и глутатионредуктазы) и содержание восстановленного глута-тиона в эритроцитах, а также процессы свободнорадикального окисления в тканях самок белых крыс при воздействии нитрата кадмия и рассмотреть их изменения в процессе адаптации;

2) оценить ответную реакцию глутатионовой системы эритроцитов у двухи четырехмесячного потомства самок белых крыс, подвергавшихся влиянию ионов Cd2+ во время беременности;

3) исследовать активность глутатионовой системы в эритроцитах, печени, почках, сердце и мозге двухи четырехмесячного потомства белых крыс при неонатальном воздействии ионов Cd2+;

4) рассмотреть динамику процессов свободнорадикального окисления в плазме крови и органах двухи четырехмесячного потомства после токсического действия ионов Cd2+ в неонатальный период;

5) оценить половые различия и органоспецифичность кадмиевого воздействия, определить особенность действия различных доз ионов Cd на активность глутатионовой системы и уровень свободнорадикального окисления в организме экспериментальных животных.

Научная новизна работы. Показано, что подострое воздействие нитрата кадмия сопровождается краткосрочным увеличением активности ферментов глутатионовой системы и содержания восстановленного глутатиона в эритроцитах. Впервые установлено, что воздействие кадмия на самок крыс во время беременности вызывает изменения активности глутатионовой системы эритроцитов, отличающиеся в зависимости от пола и возраста потомства. В группе самок активность повышается к двухмесячному возрасту с последующей нормализацией к четырем месяцам развития. У самцов наблюдается сниженная активность глутатионовой системы к двум месяцам, сменяющаяся повышением к четырехмесячному возрасту. Впервые выявлено дозозависи-мое снижение интенсивности работы глутатионовой системы, содержания антиоксидантов и усиление перекисного окисления липидов (ПОЛ) в эритроцитах, печени, почках, сердце и мозге у двухмесячного потомства, получавшего Cd2+ с материнским молоком. Установлено, что к четырехмесячному возрасту активность глутатионовой системы возрастает в печени и эритроцитах, в почках и сердце возвращается к контрольному уровню, а в мозге остается сниженной. Отмечено, что процессы свободнорадикального окисления усиливаются при неонатальном воздействии кадмия у двухмесячных животных, к четырехмесячному возрасту наблюдается тенденция к стабилизации во всех изученных органах. В плазме крови к четырехмесячному возрасту пероксидация прогрессирует.

Введение

токсиканта в пренатальный или не-онатальный периоды приводит к более интенсивному изменению изучаемых параметров у потомства в группе самцов по сравнению с самками.

Научно-практическая значимость. Показано, что наиболее подвержены токсическому влиянию низких доз кадмия процессы ПОЛ и активность глутатионовой системы мозга. Установлено, что пренатальный и неонаталь-ный периоды являются столь чувствительными для токсического воздействия, что даже незначительные количества кадмия, проникающие к плоду или в организм потомства с материнским молоком, способны вызывать изменения в функционировании глутатионовой системы и нарушения процессов свободнорадикального окисления, которые регистрируются у подопытных животных даже по достижении половой зрелости. В связи с этим представляется целесообразным рекомендовать пересмотр в сторону уменьшения предельно допустимых концентраций кадмия для снижения риска развития патологических состояний. Изменение активности глутатионовой системы может быть признано маркером не только прямого, но и опосредованного через материнский организм экотоксикологического воздействия кадмия на потомство. Выявленные тендерные различия в реакции на кадмиевую интоксикацию могут в дальнейшем послужить основой для подбора антидотов или ведения антитоксической терапии не только в зависимости от возраста и дозы токсиканта, но и с учетом пола.

Основные положения, выносимые на защиту:

1) В условиях экологического неблагополучия низкие дозы кадмия, попадающие в организм потомства, способны изменять активность глутатионо-вой системы и вызывать состояние окислительного стресса.

2) В ответ на кадмиевую интоксикацию активность глутатионовой системы изменяется по-разному у самок и самцов в эритроцитах при пренаталь-ном, и в сердце и почках при неонатальном воздействии.

3) Влиянию кадмия в неонатальный период наиболее подвержены биохимические процессы в мозге потомства.

Внедрение результатов в практику. Основные результаты работы используются в научно-педагогической деятельности кафедры биохимии и биофизики Саратовского государственного университета. Материалы диссертации включены в руководство к практическим занятиям по экологической токсикологии для студентов биологического факультета СГУ, применяются в работе Центральной научно-исследовательской лаборатории Саратовского государственного медицинского университета.

Апробация работы. Основные результаты диссертационного исследования были доложены и обсуждены на: 6-й международной конференции «Эколого-биологические проблемы бассейна Каспийского моря» (Астрахань,.

2003) — 2-м Съезде токсикологов Украины (Киев, 2004) — 5-й открытой окружной конференции молодых ученых «Наука и инновации XXI века» (Сургут,.

2004) — международной научной конференции «Свободные радикалы и анти-оксиданты» (Лодзь, Польша, 2004) — 9-й международной научной конференции «Науки о жизни 04» (Нова Горица, Словения, 2004) — 6-м конгрессе молодых ученых и специалистов «Науки о человеке» (Томск, 2005) — 43-м конгрессе Европейского общества токсикологов и 6-м конгрессе токсикологии в развивающихся странах «Евротокс 2006/6 КТРС» (Кавтат/Дубровник, Хорватия, 2006) — 6-й международной научной конференции «Состояние биосферы и здоровье людей» (Пенза, 2006) — международной научной конференции «Свободные радикалы, антиоксиданты и старение» (Астрахань, 2006) — научной конференции «Исследования молодых ученых и студентов в биологии» (Саратов, 2007) — международной научной конференции «Структурные преобразования органов и тканей на этапах онтогенеза в норме и при воздействии антропогенных факторов. Экология и здоровье человека» (Астрахань, 2007).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 13 работ, две из которых в изданиях перечня ВАК РФ.

Объем и структура диссертации. Работа изложена на 153 страницах машинописного текста, состоит из введения, трёх глав, выводов и списка цитируемой литературы, содержащего 430 источников, в том числе — 341 зарубежный, иллюстрирована 28 рисунками и 11 таблицами.

ВЫВОДЫ:

1. Воздействие на организм самок белых крыс кадмия, относящегося к неблагоприятным экологическим факторам, вызывает выраженный дисбаланс в про-антиоксидантной системе: снижение активности ферментов глутатионовой системы, уровня восстановленного глутатиона эритроцитов и активизацию свободнорадикальных процессов в тканях и плазме крови. Интоксикация сопровождается реализацией краткосрочных адаптационных механизмов, проявляющихся во временном увеличении активности глутатионовой системы эритроцитов. Процессы свободнорадикального окисления и уровень антиоксидантов стабилизируются с течением времени в плазме крови и печени, но не в сердце и мозге самок крыс.

2. Кадмиевая интоксикация в пренатальный период характеризуется разнонаправленными изменениями в активности глутатионовой системы эритроцитов у самок и самцов. У самок компенсаторное увеличение активности данной системы происходит ко второму месяцу жизни, а у самцовтолько к четырехмесячному возрасту.

3. У двухмесячных самок и самцов при неонатальном воздействии.

Л I ионов Cd снижается активность глутатионовой системы во всех исследованных тканях. У четырехмесячных животных после неонатальной кадмиевой интоксикации активность глутатионовой системы увеличивается в печени и эритроцитах, а в мозге остается сниженной, но менее значительно, чем в двухмесячном возрасте. Половые различия в реакции изучаемой системы обнаружены в сердце и почках подопытных животных. У самцов наблюдается снижение активности глутатионовой системы, а у самок функционирование поддерживается на контрольном уровне.

4. Воздействие ионов кадмия в неонатальный период сопровождается увеличением показателей индуцированной хемилюминесценции и содержания СО у двухи четырехмесячных крыс во всех тканях и плазме крови. К четырем месяцам постнатального развития показатели также остаются увеличенными, но в меньшей степени, чем у двухмесячных животных.

5. Продемонстрирован дозозависимый эффект кадмиевого воздействия в неонатальный период на активность глутатионовой системы, уровень оксида углерода и показатели хемилюминесценции во всех изученных органах двухмесячных животных. К четырехмесячному возрасту после токсического влияния сохраняется дозозависимый эффект в изменении активности у-глутамилтрансферазы и глутатионредуктазы в эритроцитах и печени у самцов и глутатион-S-трансферазы во всех органах в обеих тендерных группах.

6. В ответ на токсическое воздействие кадмия во время лактации у двухи четырехмесячного потомства наиболее значительно изменяются активность у-глутамилтрансферазы, глутатионредуктазы и показатели хемилюминесценции. Более сильные изменения изучаемых показателей при воздействии кадмия происходят в мозге и почках экспериментальных животных, а печень и сердце на неонатальную интоксикацию реагируют менее выраженными изменениями.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.П., Жаворонков А. А., Риш М.А., Строчкова Л. С. Микроэлементозы человека: этиология, классификация, органопатология. -М.: Медицина, 1991. 496 с.
  2. Н.А., Скальный А. В. Химические элементы в среде обитания и экологический портрет человека. М.: КМК, 2001. — 83 с.
  3. М.Е. Тяжёлые металлы: механизмы нефротоксичности // Нефрология и диализ. 2000. — № 1−2. — С. 26 — 39.
  4. Ю.В. Тяжелые металлы в почвах и растениях. Л.: Агропромиздат, 1987. — 142 с.
  5. С.А., Еремин В. Н., Иванов А. В. Саратов: комплексный геоэкологический анализ. Саратов: Изд-во СГУ, 2003. — 248 с.
  6. Н.О., Главати О. Л. Экологические последствия загрязнения кадмием грунтов и почвенных вод (обзор) // Экотехнологии и ресурсосбережение. 2001. — № 1. — С. 39 — 48.
  7. А.К., Дубовенко Л. И., Луковская Н. М. Хемилюминесцентный анализ. Киев: Техшка, 1966. — 250 с.
  8. А.Л., Гудзовский Г. А., Дубейковская Л. С. Вредные химические вещества: Неорганические соединения элементов I-IV групп. Л.: Химия, 1988.-512 с.
  9. М.П. Справочник предельно допустимых концентраций вредных веществ в пищевых продуктах и среде обитания. М.: Госсанэпиднадзор, 1993. — 141 с.
  10. Г. П., Кротов Ю. А. Предельно допустимые концентрации химических веществ в окружающей среде. Справочник. Л.: Химия, 1985.-528 с.
  11. В.М. Ишемические и реперфузионные повреждения органов. -М.: Медицина, 1989. 388 с.
  12. А.А. Парадоксы окислительного метаболизма мозга // Биохимия. 1995. — Т. 60, № 9. — С. 1536 — 1542.
  13. А.Ф. Динитрозильные комплексы железа и S-нитрозотиолы две возможные формы стабилизации и транспорта оксида азота в биосистемах // Биохимия. — 1998. — Т. 63, № 7. — С. 924 — 938.
  14. .Т. Свободнорадикальное окисление как звено срочной и долговременной адаптации к факторам окружающей среды // Вестник РАМН. 2001. — № 6. — С. 45 — 52.
  15. Ю.А., Азизова О. А., Деев А. И. Свободные радикалы в главных системах // Итоги науки и техники. Биофизика. 1991. — Т. 29. -252 с.
  16. Ю.А., Потапенко А. Я. Физико-химические основы фотобиологических процессов. -М.: Высшая школа, 1989. 199 с.
  17. М.С., Дэвидсон К. А., Камински П. М. Механизмы передачи сигнала оксидант оксид азота в сосудистой ткани // Биохимия. — 1998. -Т. 63, № 7.-С. 958−965.
  18. С.Н., Саноцкий И. В., Тиунов Л. А. Общие механизмы токсического действия. -М.: Медицина, 1986. 189 с.
  19. Н.Я., Карасева Т. Л. Сравнительная биохимия чужеродных соединений. Киев: Наук. Думка, 1983. — 200 с.
  20. Государственный доклад о состоянии и об охране окружающей среды Российской Федерации в 2005 году / Министерство природных ресурсов Российской Федерации. М.: АНО Центр международных проектов, 2006.-500 с.
  21. Государственный доклад о состоянии и об охране окружающей среды Российской Федерации в 2006 году / Министерство природных ресурсов Российской Федерации. М.: АНО Центр международных проектов, 2007.-502 с.
  22. П.В., Дудченко A.M., Зайцев В. В. Гепатоцит: Функционально-метаболические свойства. -М.: Наука, 1985. 272 с.
  23. А.В., Котов С. А., Конторщикова К. Н., Потехина Ю. П. Озонотерапия в неврологии. Н. Новгород: Литера, 1999. — 178 с.
  24. В.В. Тяжелые металлы в окружающей среде. М.: Изд-воМГУ, 1980. — 132 с.
  25. Е.Е. Антиоксидантная система плазмы крови // Украинский биохимический журнал. 1992. — Т. 64, № 2. — С. 3 — 15.
  26. Е.Е., Морозова М. Г., Леонова Н. В., Гашпер Н. Л. Окислительная модификация белков плазмы крови больных психическими расстройствами (депрессия, деперсонализация) // Вопросы медицинской химии. 2000. — № 4. — С.34 — 45.
  27. A.M., Филиппов Ю. Н., Симонов В. В. Хемилюминесценция и антиокислительные свойства липидов человека // Биофизика. 1964. -№ 6.-С. 671 -677.
  28. А.И. Биохемилюминесценция. М.: Наука, 1983. — 280 с.
  29. М.В., Глотова И. А. Повышение качества баранины в зонах техногенного загрязнения среднего Поволжья // Вестник СГАУ. 2005. — № 3. — С. 17−20.
  30. И.П., Западнюк В. И., Захария Е. А., Западнюк Б. В. Лабораторные животные. Разведение, содержание, использование в эксперименте. Киев: Выща школа, 1983. — 383 с.
  31. И.А., Банникова М. В. Антиоксидантная система организма, её значение в метаболизме, клинические аспекты // Вестник РАМН. -1995,-№ 6.-С. 53 59.
  32. Ю.А. Экология и контроль состояния природной среды. М.: Гидрометеоиздат, 1984. — 560 с.
  33. В.Б. Тяжелые металлы в системе почва растение. -Новосибирск: Наука, 1991.-151 с.
  34. В.Б., Сысо А. И. Микроэлементы и тяжелые металлы в почвах и растениях Новосибирской области. Новосибирск: Изд-во СО РАН, 2002. 229 с.
  35. Я.М. Практикум по эндокринологии. Основные методики экспериментально-эндокринологических исследований. М.: Изд-во МГУ, 1968. — 153 с.
  36. Е.А., Потатуева Ю. А. Кадмий в почвах, растениях, удобрениях // Химизация сельского хозяйства. 1990. — № 2. — С. 44 — 47.
  37. Н.Б., Хмелевский Ю. В. Глутатион-8-трансферазы, ферменты детоксикации // Украинский биохимический журнал. 1983. — Т. 55, № 1.-С. 86−92.
  38. B.C., Луковенко В. П. Тяжелые металлы во внешней среде. -Минск: Наука и техника, 1994. 285 с.
  39. Л.С., Кулинский В. И. Глутатионтрансферазы // Успехи современной биологии. 1989. — Т. 107. — С. 179 — 194.
  40. А.А., Богданов М. В. Медицинская экология. М.: Академия, 2003.-253 с.
  41. В.И., Колесниченко Л. С. Биологическая роль глутатиона // Успехи современной биологии. 1990. — Т. 110, Вып. 1. — С. 20 — 33.
  42. В.И., Леонова З. А., Колеснеченко Л. С., Малов И. В., Данилов Ю. А. Система глутатиона в эритроцитах и плазме крови при вирусных гепатитах // Биомедицинская химия. 2007. — Т. 53, № 1. — С. 91 — 97.
  43. Н.В., Гадаскина И. Д. Вредные вещества в промышленности. -Л.: Химия, 1977.-608 с.
  44. В.З., Тихазе А. К., Ковалевская А. Л. Возрастание изменения глутатион-8-трансферазной и глутатионпероксидазной активности цитозоля печени крыс // Доклады Академии Наук СССР. 1981. — Т. 261, № 6.-С. 1467−1470.
  45. .В., Маймулов В. Г., Мясников И. О., Пацюк Н. А., Скальный А. В., Чернякина Т. С. Гигиеническая диагностика загрязнения среды обитания солями тяжелых металлов. Оренбург: РИК ГОУ ОГУ, 2003. -122 с.
  46. В.Н. Загрязнение атмосферы автомобильным транспортом: Справочно-методическое пособие. СПб.: НПК Атмосфера, 2001. -297 с.
  47. П.Н. Интоксикационные заболевания органов пищеварения. -Воронеж: Изд-во ВГУ, 1990. 184 с.
  48. А.А., Гальченко С. В. Эколого-гигиенические аспекты загрязнения почвы Рязани тяжелыми металлами // Гигиена и санитария. 2005. — № 1.-С. 8- 11.
  49. В.К. Глутатион как компонент антиоксидантной системы желудочно-кишечного тракта // Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 1998. -№ 1. — С. 47 — 53.
  50. В.З. Ландшафтно-экологический анализ крупного промышленного города / Под ред. Селиверстова Ю. П. Саратов: Изд-во СГУ, 2001.-176 с.
  51. В.З., Новаковский Б. А., Чумаченко A.M. Эколого-географическое картографирование городов. М.: Науч. мир, 2002. -140 с.
  52. Х.М. Окись азота и окись углерода новый класс сигнальных молекул // Успехи физиологических наук. — 1996. — Т. 27, № 4. — С. 30 -41.
  53. А.Н., Маянский Д. Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге. -Новосибирск: Наука, 1989. 344 с.
  54. Медицинские лабораторные технологии. Справочник: В 2 т. / Под ред. А. И. Карпищенко СПб.: Интермедика, 2002. — Т. 2. — 600 с.
  55. Е.Б., Зенков Н. К., Шергин С. М. Биохимия окислительного стресса. Оксиданты и антиоксиданты. Новосибирск, 1994. — 203 с.
  56. А.Н., Бедняков Д. А. Влияние ионов кадмия в среде на уровень активности ферментов, обеспечивающих процессы мембранного пищеварения у карпа // Экология. 2004. — № 2. — С. 152 — 155.
  57. Л.Р. Биологическая роль микроэлементов в организме животных и человека. М.: Наука, 1977. — 184 с.
  58. А.Н., Кащеева Е. П., Иксымбаева Ж. С. Индукция кадмием перекисного окисления липидов в тканях белых крыс и ее профилактика аскорбиновой кислотой // Гигиена и санитария. 1989. -№ 3. — С. 77−78.
  59. О состоянии и об охране окружающей среды Саратовской области в2005 году. Саратов, 2006. — 250 с.
  60. О состоянии и об охране окружающей среды Саратовской области в2006 году. Саратов, 2007. — 283 с.
  61. О состоянии окружающей природной среды Саратовской области в 2001 году. Саратов, 2002. — 180 с.
  62. С.С., Гарец В. И., Талько В. В. Морфология артерий сердца и аорты у крыс после комбинированного воздействия облучения, солей кадмия и свинца // Морфология. 2007. — Т. 1, № 1. — С. 100- 104.
  63. В.В., Подосиновикова П. П., Кубарская Л. Г., Долго-Сабуров В.Б. Вклад прооксидантного компонента в механизмы токсичности тяжелых металлов и марганца // Токсикологический вестник. 2004. — № 1. — С. 12 — 15.
  64. Н.В. Эколого-геохимическая роль автотранспорта в условиях городской среды // Вестник СамГУ. 2005. — Т. 39, № 5. — С. 188 — 199.
  65. О.Ю. Статистический анализ медицинских данных. Применение пакета прикладных программ STATISTICA. М.: МедиаСфера, 2002. -312 с.
  66. И.М., Абрамов С. В., Покровский В. И. Ферментемия -адаптивный механизм или маркер цитолиза // Вестник РАМН. 2002. -№ 8. — С. 3 — 9.
  67. B.C. Природные и антропогенные источники загрязнения атмосферы // Итоги науки и техники. Сер. Охрана природы и воспроизводство природных ресурсов. М.: ВИНИТИ, 1991. — Т. 31. -212 с.
  68. А.Н. Ферменты метаболизма и детоксикации ксенобиотиков // Успехи биологической химии. 1991. — Т. 32. — С. 280 — 283.
  69. П.В. Стероидные гормоны. М.: Наука, 1984. — 240 с.
  70. Я.И., Дружинина Н. А., Хриенко А. П. Хемилюминисценция крови при радиационном воздействии. Киев: Наук, думка, 1989. -176 с.
  71. Н.П. Защитный эффект антиоксидантов при экспериментальной интоксикации организма // Гигиена и санитария. 1986. — № 2. — С. 16 -20.
  72. А.В. Микроэлементозы человека (диагностика и лечение). -М.: КМК, 1999.-96 с.
  73. А.В. Химические элементы в физиологии и экологии человека. М.: Мир, 2004. — 216 с.
  74. В.П. Старение организма особая биологическая функция, а не результат поломки сложной живой системы: биохимическое обоснование гипотезы Вейсмана // Биохимия. -1997. — Т. 62, № 11. — С. 1394- 1399.
  75. В.В. Экология и охрана природы. М.: Академия, 2000. — 384 с.
  76. В.А., Дмитруха Н. Н., Лампека Е. Г. К механизму материальной кумуляции тяжелых металлов в организме белых крыс // Гигиена труда. 2001а. — Вып. 32. — С. 219 — 230.
  77. И.М., Колесников B.C., Луковенко В. П. Тяжелые металлы во внешней среде (современные гигиенические и токсикологические аспекты). Минск: Наука и техника, 1994. — 285 с.
  78. В.А. Ферментные механизмы защиты организма от чужеродных веществ пищи // Вестник Академии Медицинских Наук СССР. 1984. — № 8. — С. 84 — 89.
  79. Урбанизированная территория как Среда обитания человека / На правах доклада о состоянии окружающей среды г. Саратова в 1997 году. -Саратов: ИЦ Добродея ГП Саратовтелефильм, 1998. 168 с.
  80. П., Семеро Д. Биохимическая адаптация. М.: Мир, 1988. -586 с.
  81. М. Неорганическая химия биологических процессов. М.: Мир, 1983.-416 с.
  82. Г. С., Громовая В. Ф. Механизмы антиоксидантной защиты организма при действии активных форм кислорода // Украинский биохимический журнал. 2003. — Т. 75, № 2. — С. 5 — 12.
  83. Г. А. Техногенные загрязнения и целебное питание. М.: Медицина, 1998, — 249 с.
  84. Д.П., Матвеец М. А. Аналитическая химия кадмия. М.: Наука, 1973.-256 с.
  85. В. Яды в нашей пище. -М.: Мир, 1993. 192 с.
  86. Экологические проблемы. Саратов на рубеже XX и XXI веков / Комитет охраны окружающей среды и природных ресурсов г. Саратова. -Саратов: ИЦ Добродея, 1996. 127 с.
  87. Abnet С.С. Carcinogenic food contaminants // Cancer Invest. 2007. — Vol. 25, N3,-P. 189- 196.
  88. Acan N.L., Tezcan E.F. Inhibition kinetics of sheep brain glutathione reductase by cadmium ion // Biochem. Mol. Med. 1995. — Vol. 54, N 1. — P. 33 -37.
  89. Adamis P.D., Gomes D.S., Pinto M.L., Panek A.D., Eleutherio E.C. The role of glutathione transferases in cadmium stress // Toxicol. Lett. 2004. — Vol. 154, N 1−2.-P. 81−88.
  90. Agar A., Yargicoglu P., Izgut-Uysal V.N., Senturk U.K. The effect of pre and postnatal cadmium exposure on somatosensory evoked potentials: relation to lipid peroxidation // Int. J.Neurosci. 2000. — Vol. 101, N 1−4. — P. 45 — 56.
  91. Ahokas R.A., Dilts P.V. Cadmium uptake by the rat embrio as a function of gestational age // Am. J. Obstet. Gynecol. 1979. — Vol. 135. — P. 219 -222.
  92. Akesson A., Berglund M., Schutz A., Bjellerup P., Bremme K., Vahter M. Cadmium exposure in pregnancy and lactation in relation to iron status // Am. J. Public. Health. 2002. — Vol. 92, N 2. — P. 284 — 287.
  93. Alessio L., Dell’orto A., Calzaferri G., Buscaglia M., Motta G. Cadmium concentrations in blood and urine of pregnant women at delivery and their offspring // Sci. Total. Environ. 1984. — Vol. 34, N 3. — P. 261 — 266.
  94. Andre M., Felley-Bosco E. Heme oxygenase-1 induction by endogenous nitric oxide: influence of intracellular glutathione // FEBS Lett. 2003. — Vol. 546, N2−3.-P. 223 -227.
  95. Anguiano O.L., de Castro A.C., de Angelo C.L. The role of glutathion conjugation in the regulation of early toad embryos' tolerance to pesticides // Сотр. Biochem. Physiol. C. Toxicol. Pharmacol. 2001. — Vol. 128, N 1. -P. 35−43.
  96. Aravind P., Prasad M.N. Modulation of cadmium-induced oxidative stress in Ceratophyllum demersum by zinc involves ascorbate-glutathione cycle and glutathione metabolism // Plant Physiol. Biochem. 2005. — Vol. 43, N 2. — P. 107−116.
  97. Awasthi J.C., Beutler E., Srivastava S.K. Purification and properties of human eiythrocyte glutathione peroxidase // J. Biol. Chem. 1975. — Vol. 250, N 13. -P. 5144−5149.
  98. Azpilicueta C.E., Pena L.B., Tomaro M.L., Gallego S.M. Modifications in catalase activity and expression in developing sunflower seedlings under cadmium stress // Redox. Rep. 2008. — Vol. 13, N 1. — P. 40 — 46.
  99. Babu K.R., Rajmohan H.R., Rajan B.K., Kumar K.M. Plasma lipid peroxidation and erythrocyte antioxidant enzymes status in workers exposed to cadmium // Toxicol. Ind. Health. 2006. — Vol. 22, N 8. — P. 329 — 335.
  100. Baecklund M., Pedersen N.L., Bjorkman L., Vahter M. Variation in blood concentrations of cadmium and lead in the elderly // Environ. Res. 1999. Vol. 80, N3.-P. 222−230.
  101. Baker Т.К., Van Vooren H.B., Smith W.C., Carfagna M.A. Involvement of calcium channels in the sexual dimorphism of cadmium-induced hepatotoxicity // Toxicol. Lett. 2003. — Vol. 137, N 3. — P. 185 — 192.
  102. Barannik T.V., Inshina N.M., Kaliman P.A. Free heme pool and activity of key enzyme of heme synthesis in the rat liver under action of agents affecting reduced glutathione level // Ukr. Biokhim. Zh. 2005. — Vol. 77, N 5. — P. 120- 122.
  103. Baranski B. Effect of maternal cadmium exposure on postnatal development and tissue cadmium, copper and zinc concentrations in rats // Arch. Toxicol. -1986. Vol. 58, N 4. — P. 255 — 260.
  104. Baranski В., Stetkiewicz I., Sitarek K., Szymczak W. Effects of oral, subchronic cadmium administration on fertility, prenatal and postnatal progeny development in rats // Arch. Toxicol. 1983. — Vol. 54. — P. 297 — 302.
  105. Berglund M., Akesson A., Nermell В., Vahter M. Intestinal absorption of dietary cadmium in women depends on body iron stores and fibre intake // Environ. Health Perspect. 1994. — Vol. 102, N 12. — P. 1058 — 1066.
  106. Berry E.M., Kohen R. Is the biological antioxidant system integrated and regulated // Med. Hypotheses. 1999. — Vol. 53, N 5. — P. 397 — 401.
  107. Beyer R.E. The participation of coenzyme Q in free radical production and antioxidation // Free Rad. Biol. Med. 1990. — Vol. 8, N 6. — P. 545 — 565.
  108. Beyersmann D., Hechtenberg S. Cadmium, gene regulation, and cellular signaling in mammalian cells // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1997. — Vol. 144, N2.-P. 247−261.
  109. Bhaskaran M., Radhakrishnan N., Patni H., Singh P., Chaudhary A.N. Dialysis membrane-induced oxidative stress: role of heme oxygenase-1 // Nephron. Exp. Nephrol. 2007. — Vol. 105, N 1. — P. e24 — e32.
  110. Biego G.E., Joyeux M., Hartemann P., Debry G. Determination of mineral contents in different kinds of milk and estimation of dietary intake in infants // Food Additives and Contaminants. 1998. — Vol. 15, N7.-P. 775 — 781.
  111. Blazka M.E., Nolan C.V., Shaikh Z.A. Developmental and sex differences in cadmium distribution and metallothionein induction and localization // J. Appl. Toxicol. 1988. — Vol. 8, N 3. — P. 217 — 222.
  112. Bobillier-Chaumont S., Maupoil V. Metallothionein induction in the liver, kidney, heart and aorta of cadmium and isoproterenol treated rats // J. Appl. Toxicol. 2006. — Vol. 26, N 1. — P. 47 — 55.
  113. Bompart G., Orfila C., Manuel Y. Cisplatin nephrotoxicity in cadmium-pretreated rats. Enzymatic, functional and morphological studies // Nephron. -1991.-Vol. 58, N1.-P. 68 -74.
  114. Borras C., Sastre J., Gsrsia-Sala D., Lloret A., Pallardo F.V., Vina J. Mitochondria from females exhibit higher antioxidant gene expression and lower oxidative damage then males // Free Rad. Biol. Med. 2003. — Vol. 34, N5.-P. 546−552.
  115. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein using the principle of protein-dye binding // Anal. Biochem. 1976. — Vol. 72. — P. 248 — 254.
  116. Brako E.E., Wilson A.K., Jonah M.M., Blum C.A., Cerny E.A., Williams K.L., Bhattacharyya M.H. Cadmium pathways during gestation and lactation in control versus metallothoinein 1,2-knockout mice// Toxicol. Sci. 2003. — Vol. 71, N2. — P. 154 — 163.
  117. Brown S.D., Piantadosi C.A. Recovery of energy metabolism in rat brain after carbon monoxide hypoxia // J. Clin. Invest. 1992. — Vol. — 89, N 2. — P. 666 -672.
  118. Cartana J., Romeu A., Arola L. Effects of copper, cadmium and nickel on liver and kidney glutathione redox cycle of rats (Rattus sp.) // Сотр. Biochem. Physiol. C.-1992. Vol. 101, N2.-P. 209−213.
  119. Casalino E., Sblano C., Calzaretti G., Landriscina C. Acute cadmium intoxication induced alpha-class glutathione S-transferase protein synthesis and enzyme activity in rat liver // Toxicology. 2006. — Vol. 217, N2−3.-P. 240−245.
  120. Casalino E., Sblano C., Landriscina C. Enzyme activity alteration by cadmium administration to rats: the possibility of iron involvement in lipid peroxidation // Arch. Biochem. Biophys. 1997. — Vol. 346, N 2. — P. 171 — 179.
  121. Casalino E., Sblano C., Landriscina V., Calzaretti G., Landriscina C. Rat liver glutathione S-transferase activity stimulation following acute cadmium or manganese intoxication // Toxicology. 2004. — Vol. 200, N 1. — P. 29 — 38.
  122. Castillo C., Salazar V., Ariznavarreta C., Vara E., Tresguerres J.A. Effect of melatonin administration on parameters related to oxidative damage in hepatocytes isolated from old Wistar rats // J. Pineal. Res. 2005. — Vol. 38, N4. — P. 240−246.
  123. Cesur H., Kartal M.E. Determination of Cadmium Levels in Agricultural Areas of Carsamba and Bafra Plains // Environ. Monit. Assess. 2007. — Vol. 132, N1−3.-P. 165−169.
  124. Chan H.M., Tamura Y., Cherian M.G., Goyer R.A. Pregnancy-associated changes in plasma metallothionein concentration and renal cadmium accumulation in rats // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1993. — Vol. 202, N 4. -P. 420−427.
  125. Chen R.W., Ganther H.E. Relative cadmium binding capacity of metallothionein and other cytosolic fractions in various tissues of the rat // Environ. Physiol. Biochem. 1975. — Vol. 5, N 6. — P. 378 — 388.
  126. Chevalier G., Ricard A.C., Manca D. Age-related variations of lipid peroxidation in cadmium-treated rats // Toxicol. Ind. Health. 1994. — Vol. 10, N 1−2. -P. 43−51.
  127. Choe S.Y., Kim S.J., Kim H.G., Lee J.H., Choi Y" Lee H., Kim Y. Evaluation of estrogenicity of major heavy metals // Sci. Total Environ. 2003. — Vol. 312, N1−3.-P. 15−21.
  128. Chung Т.К., Funk M.A., Baker D.H. L-2-oxothiazolidine-4-carboxylate as a cysteine precursor efficacy for growth and hepatic glutathione synthesis in chicks and rats // J. Nutr. — 1990. — Vol. 120, N 2. — P. 158 — 165.
  129. Cikrt M., Hurych J., Kuklova D., Havrdova J., Lepsi P., Kopecky J., Malek B. Analysis of the renal tissue of a woman chronically exposed to cadmium // Int. Arch. Occup. Environ. Health. 1985. — Vol. 55, N 3. — P. 241 — 246.
  130. Clandinin M.T. Brain development and assessing the supply of polyunsaturated fatty acid // Lipids. 1999. — Vol. 34, N 2. — P. 131 — 137.
  131. Cogan T.P., Bare R.M., Waalkes M.P. Cadmium-induced DNA damage: effects of zinc pretreatment // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1992. — Vol. 113, N2.-P. 227−233.
  132. Corpas I., Antonio M.T. Study of alterations produced by cadmium and cadmium/lead administration during gestational and early lactation periods in the reproductive organs of the rat // Ecotox. Environ. Saf. 1998. — Vol. 41, N 2.-P. 180- 188.
  133. Dabeka R.W., Karpinski K.F., McKenzie A.D., Bajdik C.D. Survey of lead, cadmium and fluoride in human milk and correlation of levels with environmental and food factors // Food Chem. Toxicol. 1986. — Vol. 24, N9. — P. 913 — 921.
  134. Danielsson B.R., Dencker L. Effects of cadmium on the placental uptake and transport to the fetus of nutrients // Biol. Res. Pregn. 1984. — Vol. 5, N 3. -P. 93−101.
  135. Dass P.D., Misra R.P., Welbourne T.C. Presence of gamma-glutamyltransferase in the renal microvascular compartment // Can. J. Biochem. 1981. — Vol. 59, N 6. — P. 383 — 386.
  136. Di Sant’Agnese P.A., Demesey Jensen K., Levin A., Miller R.K. Placental toxicity of cadmium in the rat: an ultrastructural study // Placenta. 1983. -Vol. 4, N2.-P. 149- 164.
  137. Dixit V., Pandey V., Shyam R. Differential antioxidative responses to cadmium in roots and leaves of pea (Pisum sativum L. cv. Azad) // J. Exp. Bot.-2001,-Vol. 52, N 358.-P. 1101−1109.
  138. Eaton J.W. Catalases and peroxidases and glutathione and hydrogen peroxide: Mystery of the bestiary // J. Lab. Clin. Med. 1991. — Vol. 118, N 1. — P. 3 -4.
  139. Egan S.K., Bolger P.M., Carrington C.D. Update of US FDA’s Total Diet Study food list and diets // J. Expo. Sci. Environ. Epidemiol. 2007. — Vol. 17, N6.-P. 573 -582.
  140. Eisenmann C.J., Miller R.K. Cadmium and glutathione: effect on human placental thromboxane and prostacyclin production // Reprod. Toxicol. -1995. Vol. 9, N 1.-P. 41 -48.
  141. Eklund G., Grawe K.P., Oskarsson A. Bioavailability of cadmium from infant diets in newborn rats // Arch. Toxicol. 2001. — Vol. 75, N 9. — P. 522−530.
  142. E1-Maraghy S.A., Gad M.Z., Fahim A.T., Hamdy M.A. Effect of cadmium and aluminum intake on the antioxidant status and lipid peroxidation in rat tissues // J. Biochem. Mol. Toxicol. 2001. — Vol. 15, N 4. — P. 207 -214.
  143. El-Safty I.A., Shouman A.E., Anwar S.J. Early detection of nephrotoxic effects due to low-dose exposure of cadmium among cigarette smokers // Egypt Public Health Assoc. 1996. — Vol. 71, N 1−2. — P. 9 — 29.
  144. Engstrom В., Nordberg G.F. Factors influencing absorption and retention of oral io<)Cd in mice: age pretreatment, and subsequent pretreatment with nonradioactive cadmium // Acta Pharmacologica et Toxicologica. 1979. — Vol. 45, N4.-P. 315 -324.
  145. Erden-Inal M., Sunal E., Kanbak G. Age-related changes in the glutathione redox system // Cell Biochem. Funct. 2002 — Vol. 20, N 1. — P. 61 — 66.
  146. Esrefoglu M., Gul M., Dogru M.I., Dogru A., Yurekli M. Adrenomedullin fails to reduce cadmium-induced oxidative damage in rat liver // Exp. Toxicol. Pathol. 2007. — Vol. 58, N 5. — P. 367 — 374.
  147. Fang Y.Z., Yang S., Wu G. Free radicals, antioxidants, and nutrition // Nutrition. 2002. — Vol. 18, N 10. — P. 872 — 879.
  148. Fasitsas C.D., Theocharis S.E., Zoulas D., Chrissimou S., Deliconstantinos G. Time-dependent cadmium-neurotoxicity in rat brain synaptosomal plasmamembranes // Сотр. Biochem. Physiol. С. 1991. — Vol. 100, N 1−2. — P. 271 -275.
  149. Filipic M., Hei Т.К. Mutagenicity of cadmium in mammalian cells: implication of oxidative DNA damage // Mutat. Res. 2004. — Vol. — 546, N 1−2.-P. 81−91.
  150. Floris В., Bomboi G., Sechi P., Pirino S., Marongiu M.L. Cadmium chronic administration to lactating ewes: reproductive performance, cadmium tissue accumulation and placental transfer // Ann. Chim. -2000. Vol. 90, N 11−12. — P. 703 — 708.
  151. Foulkes E.C. Absorption of cadmium // Handbook of Experimental Pharmacology / Ed. E.C. Foulkes. Berlin: Springer-Verlag, 1986. Vol. 80. -P. 75 — 100.
  152. Frankel D., Mehindate K., Schipper H.M. Role of heme oxygenase-1 in the regulation of manganese superoxide dismutase gene expression in oxidatively challenged astroglia // J. Cell. Physiol. 2000. — Vol. — 185, N 1. — P. 80 — 86.
  153. Funakoshi Т., Ohta O., Shimada H., Kojima S. Effects of dithiocarbamates and cadmium on the enzymatic activities in liver, kidney and blood of mice // Toxicol. Lett. 1995. — Vol. 78, N 3. — P. 183 — 188.
  154. Gazit V., Rozenberg В., Katz Y. Nitric oxide and carbon monoxide a new generation of neuronal messengers // Harefuah. — 1996. — Vol. 130, N 12. — P. 854−858.
  155. Gill K.D., Pal R., Nath R. Effect of cadmium on lipid peroxidation and antioxidant enzymes in undernourished weanling rat brain // Pharmacol. Toxicol. 1989. — Vol. 65, N 1. — P. 73 — 77.
  156. Gonzales S., Perez M.J., Perazzo J.C., Tomaro M.L. Antioxidant role of heme oxygenase-1 in prehepatic portal hypertensive rats // World J. Gastroenterol. -2006.-Vol. 12, N26. -P. 4149−4155.
  157. Grawe K.P., Pickova J., Dutta P.C., Oskarsson A. Fatty acid alterations in liver and milk of cadmium exposed rats and in brain of their suckling offspring // Toxicol. Lett. 2004. — Vol. 148, N 1−2. — P. 73 — 82.
  158. Grazeiwicz M.A., Day B.J., Coperland W.C. The mitochondrial DNA polimerase as a target oxidative damage // Nucl. Acids. Res. 2002. — Vol. 30, N13.-P. 2817−2824.
  159. Gregus Z., Stein A.F., Klaassen A.F. Age-dependent biliary excretion of glutathione-related thiols in rats: role of gamma-glutamyltransferase // Am. J. Physiol. 1987. — Vol. 253, Pt. 1. — P. G86 — G92.
  160. Gregus Z., Stein A.F., Klaassen C.D. Age-dependent biliary excretion of glutathione-related thiols in rats: role of gamma-glutamyltransferase // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 1987. — Vol. 253, Issue 1. -P. G86 -G92.
  161. Griffith O.W. Biologic and pharmacologic regulation of mammalian glutathione synthesis // Free Rad. Biol. Med. 1999. — Vol. 27, N 9−10. — P. 922−935.
  162. Grimble R.F., Jackson A.A., Persaud C., Wride M.J., Delers F., Engler R. Cysteine and glycine supplementation modulate the metabolic response to tumor necrosis factor-a in rats fed a low protein diet // J. Nutr. 1992. — Vol. 122, N 11. — P. 2066−2073.
  163. Groppa M.D., Tomaro M.L., Benavides M.P. Polyamines and heavy metal stress: the antioxidant behavior of spermine in cadmium- and copper-treated wheat leaves //Biometals. 2007. -Vol. 20, N2.-P. 185 — 195.
  164. Guarino M.P., Afonso R.A., Raimundo N., Raposo J.F. Hepatic glutathione and nitric oxide are critical for hepatic insulin-sensitizing substance action // Am. J. Physiol. 2003. — Vol. 284, N 4. — P. G588 — G594.
  165. Gupta A., Gupta A., Chandra S.V. Gestational cadmium exposure and brain development: a biochemical study // Ind. Health. 1991. Vol. 29, N2. -P. 65−71.
  166. Gupta A., Gupta A., Shukla G.S. Development of brain free radical scavenging system and lipid peroxidation under the influence of gestational and lactational cadmium exposure // Hum. Exp. Toxicol. -1995. Vol. 14, N 5. — P. 428 — 433.
  167. Gupta A., Shukla G.S. Ontogenic profile of brain lipids following perinatal exposure to cadmium // J. Appl. Toxicol. 1996. — Vol. 16, N 3. — P. 227 — 233.
  168. Hallen I.P., Jorhem L., Lagerkvist B.J., Oskarsson A. Lead and cadmium levels in human milk and blood // Sci. Total Environ. 1995. — Vol. 166. -P. 149- 155.
  169. Han X.Y., Xu Z.R., Wang Y.Z., Huang Q.S. Effect of cadmium on lipid peroxidation and activities of antioxidant enzymes in growing pigs // Biol. Trace Elem. Res. 2006. — Vol. 110, N 3. — P. 251 — 263.
  170. Haouem S., Sakly R. Lactational transfer of cadmium from meriones shawi shawi mothers to their pups and its effects on calcium homeostasis and bone calcium in pups // Annals of Nutrition and Metabolism. 2005. — Vol. 49. — P. 296 — 299.
  171. Haye S., Slaveykova V.I., Payet J. Terrestrial ecotoxicity and effect factors of metals in life cycle assessment (LCA) // Chemosphere. 2007. — Vol. 68, N 8. -P. 1489- 1496.
  172. Hazelhoff R.W., Roelofsen A.M., Herber R.F., Leene W., Copius Peereboom-Stegeman J.H. Effects of chronic cadmium administration on placental and fetal development // J. Trace. Elem. Electrolytes Health Dis. 1987. — Vol. 1, Nl.-P. 49−53.
  173. Hazelhoff R.W., Zahn-Breidenbach U., Copius Peereboom-Stegeman J.H. Light and electron microscopic investigation of the rat placenta after cadmium administration during pregnancy // Anat. Embryol. 19 886. — Vol. 178, N4. -P. 345−351.
  174. Hazelton G.A., Lang C.A. Glutathione peroxidase and reductase activities in the aging mouse. //Mech. Ageing. Dev. 1985. — Vol. 29, N 1. — P. 71 — 81.
  175. He Z.L., Yang X.E., Stoffella P.J. Trace elements in agroecosystems and impacts on the environment // J. Trace Elem. Med. Biol. 2006. — Vol. 19, N 2−3.-P. 125- 140.
  176. Hianaut P., Milner J. A structural role for metal ions in the 'wild-type' conformation of the tumor suppressor protein p53 // Cancer Res. 1993. -Vol. 53, N8.-P. 1739- 1742.
  177. Hill-Kapturczak N., Sikorski E., Voakes C., Garcia J., Nick H.S., Agarwal A. An internal enhancer regulates heme- and cadmium-mediated induction of human heme oxygenase-1 // Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2003. — Vol. 285, N3.-P. F515-F523.
  178. Hinchman C.A., Ballatori N. Glutathione-degradating capacities of liver and kidney in different species // Biochem. Pharmacol. 1990. — Vol. 40, N 5. -P. 1131 — 1135.
  179. Hirano S., Tsukamoto N., Suzuki K.T. Biochemical changes in the rat lung and liver following intratracheal instillation of cadmium oxide // Toxicol. Lett. 1990. — Vol. 50, N 1. — P. 97- 105.
  180. Houston M.C. The role of mercury and cadmium heavy metals in vascular disease, hypertension, coronary heart disease, and myocardial infarction // Altern. Ther. Health Med. 2007. — Vol. 13, N 2. — P. 128 — 133.
  181. Huel G., Boudene C., Ibrahim M.A. Cadmium and lead content of maternal and newborn hair: relationship to parity, birth weight, and hypertension // Arch. Environ. Health. 1981. — Vol. 36, N 5. — P. 221 — 227.
  182. Hultberg В., Andersson A., Isaksson A. Alterations of thiol metabolism in human cell lines induced by low amounts of copper, mercury or cadmium ions // Toxicology. 1998. — Vol. 126, N 3. — P. 203 — 212.
  183. Igarashi Т., Satoh Т., Ueno K., Kitagawa H. Sex-related difference in the hepatic glutathione level and related enzyme activities in rat // J. Biochem. -1983.-Vol. 93, N1.-P. 33 -36.
  184. Ikediobi C.O., Badisa V.L., Ayuk-Takem L.T., Latinwo L.M., West J. Response of antioxidant enzymes and redox metabolites to cadmium-induced oxidative stress in CRL-1439 normal rat liver cells // Int. J. Mol. Med. 2004. -Vol. 14, N1.-P. 87−92.
  185. Immenschuh S., Schroder H. Heme oxygenase-1 and cardiovascular disease // Histol. Histopathol. 2006 — Vol. 21, N 6. — P. 679 — 685.
  186. International Guiding Principles for Biomedical Research Involving Animals / Council for International Organizations of Medical Sciences. Geneva: CIOMS, 1985.-28 c.
  187. Ip S.P., Мак D.H., Li P.C., Poon M.K., Ко K.M. Effect of a lignan-enriched extract of Schisandra chinensis on aflatoxin B1 and cadmium chloride-induced hepatotoxicity in rats // Pharmacol. Toxicol. 1996. — Vol. 78, N 6. -P. 413−416.
  188. Iscan M., Ada A.O., Coban Т., Kapucuoglu N., Aydin A. Combined effects of cadmium and nickel on testicular xenobiotic metabolizing enzymes in rats // Biol. Trace Elem. Res. 2002. — Vol. 89, N 2. — P. 177 — 190.
  189. Jacobson K.B., Turner J.E. The interaction of cadmium and certain other metal ions with protein and nucleic acids // Toxicology. 1980. — Vol. 16, N l.-P. 1−37.
  190. Jadhav S.H., Sarkar S.N., Tripathit H.C. Cytogenetic effects of a mixture of selected metals following subchronic exposure through drinking water in male rats //Indian J. Exp. Biol. 2006. — Vol. 44, N 12. — P. 997 — 1005.
  191. Jahangir Т., Khan Т.Н., Prasad L., Sultana S. Pluchea lanceolata attenuates cadmium chloride induced oxidative stress and genotoxicity in Swiss albino mice // J. Pharm. Pharmacol. 2005. — Vol. 57, N 9. — P. 1199 — 1204.
  192. Jahoor F., Jackson A., Gazzard В., Philips G., Sharpstone D., Frazer M.E., Heird W. Erythrocyte glutathione deficiency in symptom-free HIV infection is associated with decreased synthesis rate // Am. J. Physiol. 1999. — Vol. 276, Pt. l.-P. E205 -E211.
  193. Jaji M.O., Bamgbose O., Odukoya O.O., Arowolo T.A. Water quality assessment of Ogun river, South West Nigeria // Environ. Monit. Assess. -2007. Vol. 133, N 1−3. — P. 473 — 482.
  194. Jamall I.S. Differential effects of cadmium on cytosolic and mitochondrial glutathione levels in the rat heart // FEBS Lett. 1987. — Vol. 214, N 1. — P. 62 — 64.
  195. Jamall I.S., Smith J.C. Effects of cadmium on glutathione peroxidase, superoxide dismutase, and lipid peroxidation in the rat heart: a possible mechanism of cadmium cardiotoxicity // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1985a. -Vol. 80, N l.-P. 33−42.
  196. Jamall I.S., Smith J.C. The effects of dietary selenium on cadmium binding in rat kidney and liver // Arch. Toxicol. 1985b. — Vol. 56, N 4. — P. 252 — 255.
  197. James M.O., Foureman G.L., Law F.C., Bend J.R. The perinatal development of epoxide-metabolizing enzyme activities in liver and extrahepatic organs of guinea pig and rabbit // J. Drug Metab. Dispos. 1977. — Vol. 5, N 1. — P. 19 -28.
  198. Jancinova V., Drabikova K., Nosal R., Rackova L., Majekova M., Fabryova V. Chemiluminescence a sensitive method to detect extra- and intracellular oxidants // Biolog. Bratislava. — 2005. — Vol. 60, Suppl. 17. — P. 133 — 135.
  199. Jarup L. Cadmium overload and toxicity // Nephrol. Dial. Transplant. -2002. Vol. 17, Suppl. 2. — P. 35 — 39.
  200. Jimi S., Uchiyama M., Takaki A. Mechanisms of cell death induced by cadmium and arsenic // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2004. — Vol. 1011. — P. 325 -331.
  201. Jin Т., Nordberg G., Sehlin J., Wallin H., Sandberg S. The susceptibility to nephrotoxicity of streptozotocin-induced diabetic rats subchronically exposed to cadmium chloride in drinking water // Toxicology. 1999. — Vol. 142, N 1. -P. 69 -75.
  202. Johnson A.T., Kaufmann Y.C., Luo S., Todorova V., Klimberg V.S. Effect of glutamine on glutathione, IGF-1, and TGF- betal // J. Surg. Res. 2003a. -Vol. Ill, N2.-P. 222−228.
  203. Johnson M.D., Kenney N., Stoica A., Hilakivi-Clarke L., Singh В., Chepko G., Clarke R., Sholler P.F. Cadmium mimics the in vivo effects of estrogen in the uterus and mammary gland // Nat. Med. 20 036. — Vol. 9, N 8. — P. 1081 — 1084.
  204. Jones D.P. Redox potential of GSH/GSSG couple: assay and biological significance // Methods Enzymol. 2002. — Vol. 348. — P. 93 — 112.
  205. Justo R., Boada J., Frontera M., Oliver J., Bermudez J., Gianotti M. Gender dimorphism in rat liver mitochondrial oxidative metabolism and biogenesis // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2005. — Vol. 289, N 2. — P. 372 — 378.
  206. Kang Y.J. Exogenous glutathione decreases cellular cadmium uptake and toxicity // J. Drug Metab. Dispos. 1992. — Vol. 20, N 5. — P. 714 — 718.
  207. Kashiwagi A., Asahina Т., Nishio Y. Enzymes of a carbohydrate exchange // Diabetes. 1996. — Vol. 45, N 3. — P. 84 — 86.
  208. Katoh M., Mizutani N., Keino H., Kashiwamata S. A low-molecular-weight cadmium-binding substance in human and rat livers and human blood // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1984. — Vol. 73, N 1. — P. 97 — 104.
  209. Kawahara A., Yoshizuka M., Hirano Т., Ohsato K., Fujimoto S. Cadmium toxicity in perinatal rat hepatocytes: electron microscopy, X-ray microanalysis, and morphometric analysis // Exp. Mol. Pathol. 1990. — Vol. 53, N2.-P. 180- 190.
  210. Kello D., Kostial K. Influence of age and milk diet on cadmium absorption from the gut // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1977. — Vol. 40, N 2. — P. 277 -282.
  211. Khandelwal S., Agnihotri N., Biochemical response to cadmium. Dose-time effect//Biol. Trace Elem. Res. 1991. — Vol. 29, N2. — P. 157- 164.
  212. Kim C.Y., Lee M.J., Lee S.M., Lee W.C., Kim J.S. Effect of melatonin on cadmium-induced hepatotoxicity in male Sprague-Dawley rats // Tohoku J. Exp. Med. 1998a. — Vol. 186, N 3. — P. 205 — 213.
  213. Kirschvink N., Martin N., Fievez L., Smith N., Marlin D., Gustin P. Airway inflammation in cadmium-exposed rats is associated with pulmonary oxidative stress and emphysema // Free Radic. Res. 2006. — Vol. 40, N 3. -P. 241 -250.
  214. Koehler R.C., Traystman R.J. Cerebrovascular effects of carbon monoxide // Antioxid. Redox. Signal. 2002. — Vol. 4, N 2. — P. 279 — 290.
  215. Koizumi Т., Li Z.G. Role of oxidative stress in single-dose, cadmium-induced testicular cancer // J. Toxicol. Environ. Health. 1992. — Vol. 37, N 1. — P. 25 -36.
  216. Konecki J., Blazejowski J., Slowinski J., Helewski K. Influence of chronic cadmium exposure during pregnancy on DNA synthesis in different organs of rat offspring // Med. Sci. Monit. 2000. — Vol. 6, N 6. — P. 1077 — 1081.
  217. Konukoglu D., Serin O., Yelke H.K. Effects of hormone replacement therapy on plasma nitric oxide and total thiol levels in postmenopausal women // J. Toxicol. Environ. Health. 2000. — Vol. 60, N 2. — P. 81 — 87.
  218. Korashy H.M., El-Kadi A.O. The role of aryl hydrocarbon receptor and the reactive oxygen species in the modulation of glutathione transferase by hevy metals in murine hepatoma cell lines // Chem. Biol. Interact. 2006. — Vol. 162, N3.-P. 237−248.
  219. Korpela H., Loueniva R., Yrjanheikki E., Kauppila A. Lead and cadmium concentration in maternal and umbilical cord blood, amniotic fluid, placenta, and amniotic membranes // Am. J. Obstet. Gynecol. 1986. — Vol. 155. — P. 1086- 1089.
  220. Kostic M.M., Ognjanovic В., Dimitrijevic S., Zikic R.V., Stajn A., Rosic G.L., Zivkovic R.V. Cadmium-induced changes of antioxidant and metabolicstatus in red blood cells of rats: in vivo effects // Eur. J. Haematol. 1993. -Vol. 51, N2. -P. 86−92.
  221. Kowalczyk E., Kopff A., Fijalkowski P. Effect of anthocyanins on selected biochemical parameters in rats exposed to cadmium // Acta Biochimica Polonica. 2003. — Vol. 50, N 2. — P. 543 — 548.
  222. Koyu A., Gokcimen A., Ozguner F., Bayram D.S., Kocak A. Evaluation of the effects of cadmium on rat liver // Mol. Cell. Biochem. 2006. — Vol. 284, N 1 -2. -P. 81 — 85.
  223. Kozak E.M., Tate S.S. Glutathione-degrading enzymes of microvillus membranes // J. Biol. Chem. 1982. — Vol. 257, N 11. — P. 6322 — 6327.
  224. Kugelman A., Choy H.A., Liu R., Shi M.M., Gozal E., Forman H.J. Gamma-glutamyltranspeptidase is increased by oxidative stress in rat alveolar L2 epithelial cells // Am. J. Resp. Cell. Mol. Biol. 1994. — Vol. 11, N 5. — P. 586−92.
  225. Kume-Kick J., Ferris D.C., Russo-Menna I., Rice M.E. Enhanced oxidative stress in female rat brain after gonadectomy // Brain Res. 1996. — Vol. -738,N1.-P. 8−14.
  226. Lautier D., Luscher P., Tyrrell R.M. Endogenous glutathione levels modulate both constitutive and UVA radiation/hydrogen peroxide inducible expression of the human heme oxygenase gene // Carcinogenesis. 1992. — Vol. 13, N 2. -P. 227−232.
  227. Lauwerys R.R. Cadmium in man // The chemistry, biochemistry, and biology of cadmium / Ed. N. Webb. Amsterdam: Elsevier North Holland Biomedical Press, 1979.-P. 433 -453.
  228. Leazer T.M., Liu Y., Klaassen C.D. Cadmium absorption and its relationship to divalent metal transporter-1 in the pregnant rat // Toxicol. Appl. Pharmacol. -2002.-Vol. 185, N 1. P. 18−22.
  229. Leotsinidis M., Alexopoulos A., Kostopoulou-Farri E. Toxic and essential trace elements in human milk from Greek lactating women: association with dietary habits and other factors // Chemosphere. -2005. Vol. 61, N 2. — P. 238 — 247.
  230. Lettelier M.E., Martinez M., Gonzalez-Lira V., Faundez M., Aracena-Parks P. Inhibition of cytosolic glutathione S-transferase activity from rat liver by copper // Chem. Biol. Interact. 2006. — Vol. 164, N 1−2. — P. 39 — 48.
  231. Levander O.A. Metabolic interactions between metals and metalloids // Environ. Health Perspect. 1978. — Vol. 25. — P. 77 — 80.
  232. Lin C.J., Wu K.H., Yew F.H., Lee T.C. Differential cytotoxicity of cadmium to rat embryonic fibroblasts and human skin fibroblasts // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1995. Vol. 133, N 1. — P. 20 — 26.
  233. Liu R.M., Gao L., Choi J., Forman H.J. gamma-glutamylcysteine synthetase, mRNA stabilization and independent subunit transcription by 4-hydroxy-2-nonenal // Am. J. Physiol. 1998. — Vol. 275, N 5, Pt. 1. — P. L861 — L869.
  234. Liu Y., Wang X., Zeng G., Qu D., Gu J., Zhou M., Chai L. Cadmium-induced oxidative stress and response of the ascorbate-glutathione cycle in Bechmeria nivea (L.) Gaud // Chemosphere. 2007. — Vol. 69, N 1. — P. 99 — 107.
  235. Lopez E., Arce C., Oset-Gasque M.J., Canadas S., Gonzalez M.P. Cadmium induces reactive oxygen species generation and lipid peroxidation in cortical neurons in culture // Free Rad. Biol. Med. 2006. — Vol. 40, N 6. — P. 940 -951.
  236. Lu L.T., Chang I.C., Hsiao T.Y., Yu Y.H., Ma H.W. Identification of pollution source of cadmium in soil: application of material flow analysis and a case study in Taiwan // Environ. Sci. Pollut. Res. Int. 2007. — Vol. 14, N 1. -P. 49 — 59.
  237. Lu S.C. Regulation of glutathione synthesis // Curr. Top. Cell. Regul. 2000. -Vol. 36.-P. 95−116.
  238. Lucier G.W., Lui E.M., Lamartiniere C.A. Metabolic activation/deactivation reactions during perinatal development // Environ. Health Perspect. 1979. -Vol. 29.-P. 7−16.
  239. Lui E.M., Lucier G.W. Neonatal feminization of hepatic mono-oxygenase in adult male rats: altered sexual dimorphic response to cadmium // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1980. — Vol. 212, N 2. — P. 211 — 216.
  240. Mabrouk G.M., Jois M., Brosnan J.T. Cell signaling and the hormonal stimulation of the hepatic glycine cleavage enzyme system by glucagons // Biochem. J. 1998. — Vol. 330, Pt. 2. — P. 759 — 763.
  241. Magnani M., Beretta E. Cell survival and glutathione reductase // J. Theor. Biol. 1982. — Vol. 94, N 4. — P. 995 — 997.
  242. Maines M.D. Heme oxygenase: function, multiplicity, regulatory mechanismsand clinical applications // FASEB J. 1988. — Vol. 2, N 10. — P. 2557−2568.
  243. Maines M.D. The heme oxygenase system: a regulator of second messenger gases // Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 1997. — Vol. 37. — P. 517 — 554.
  244. Manca D., Ricard A.C., Trottier В., Chevalier G. Studies on lipid peroxidation in rat tissues following administration of low and moderate doses of cadmium chloride // Toxicology. 1991. — Vol. 67, N 3. — P. 303 — 323.
  245. Masso E.L., Corredor L., Antonio M.T. Oxidative damage in liver after perinatal intoxication with lead and/or cadmium // J. Trace Elem. Med. Biol. -2007. Vol. 21, N 3. — P. 210 — 216.
  246. Masters C., Holmes R. Peroxisomes: new aspects of cell physiology and biochemistry//Physiol. Rev. 1977. — Vol. 57, N8. — P. 816−882.
  247. Mattison D.R. The mechanisms of action of reproductive toxins // Am. J. Ind. Med. 1983. — Vol. 4, N 1−2. — P. 65 — 79.
  248. Mavis R.D., Stellwagen E. Purification and subunit structure of glutathione reductase // J. Biol. Chem. 1997. — Vol. 243, N 4. — P. 809−814.
  249. Mehdi K., Thierie J., Penninckx M.J. gamma-Glutamyl transpeptidase in the yeast Saccharomyces cerevisiae and its role in the vacuolar transport and metabolism of glutathione // Biochem. J. 2001. — Vol. 359, Pt. 3. — P. 631 -637.
  250. Mitchell A.E., Morin D., Lakritz J., Jones A.D. Quantitative profiling of tissue- and gender-related expression of glutathione-S-transferase isoenzymes in the mouse//Biochem. J. 1997. — Vol. 325, Pt. l.-P. 207−216.
  251. Miyake M., Murata I., Osabe M., Ono T. Effect of metal cations on misincorporation of cadmium by E. coli DNA polymerases // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1979. — Vol. 77. — P. 854 — 860.
  252. Mohanpuria P., Rana N.K., Yadav S.K. Cadmium induced oxidative stress influence on glutathione metabolic genes of Camellia sinensis (L.) O. Kuntze // Environ. Toxicol. 2007. — Vol. 22, N 4. — P. 368 — 374.
  253. Morales A.I., Vicente-Sanchez C., Sandoval J.M., Egido J., Mayoral P., Arevalo M.A., Fernandez-Tagarro M., Lopez-Novoa J.M., Perez-Barriocanal
  254. F. Protective effect of quercetin on experimental chronic cadmium nephrotoxicity in rats is based on its antioxidant properties // Food Chem. Toxicol. 2006. — Vol. 44, N 12. — P. 2092 — 2100.
  255. Мои S., Qin S., Ни Q., Duan X. Effect of fluorine, selenium and cadmium on anti-oxidase and microelements in rat’s body // Wei Sheng Yan Jiu. 2004. -Vol. 33, N2.-P. 211 -213.
  256. Mukhopadhyay S., Mukhopadhyay S., Addya S., Bhattacharya D.K., Chatterjee G.C. Effects of cadmium treatment in vitro on the antioxidant protection mechanism and activation of human blood platelets // Thromb. Res. 1988. — Vol. 50, N 3. — P. 419 — 427.
  257. Muller L. Consequences of cadmium toxicity in rat hepatocytes: effects of cadmium on the glutathione-peroxidase system // Toxicol. Lett. 1986. — Vol. 30, N3.-P. 259−265.
  258. Muller L., Stacey N.H. Effects of low-level cadmium in rats: influence of pretreatment with thiol-modulating agents // Environ. Res. 1988. — Vol. 45, N2.-P. 204−212.
  259. Nagata C., Nagao Y., Shibuya C., Kashiki Y., Shimizu H. Urinary cadmium and serum levels of estrogens and androgens in postmenopausal Japanese women. Cancer Epidemiol // Biomarkers Prev. 2005. — Vol. 14, N 3. — P. 705−708.
  260. Nakamura K., Fujiki Т., Tamura H. Age, gender and region-specific differences in drug metabolising enzymes in rat ocular tissues // Exp. Eye Research. -2005. Vol. 81, N6. — P. 710−715.
  261. Nakanishi N., Suzuki K., Tatara K. Serum y-glutamyltransferase and risk of metabolic syndrome and type 2 diabetes in middle-aged japanese men // Diabetes Care. 2004. — Vol. 27, N 6. — P. 1427 — 1432.
  262. Nebbia C., Dacasto M., Carletti M. Postnatal development of hepatic oxidative, hydrolytic and conjugative drug-metabolizing enzymes in female horses // Life Sci. 2004. — Vol. 74, N 13. — P. 1605 — 1619.
  263. Nehru L.B., Bansal M.P. Effect of selenium supplementation on the glutathione redox system in the kidney of mice after chronic cadmium exposures // J. Appl. Toxicol. 1997. — Vol. 17, N 1. — P. 81 — 84.
  264. Nesatyy V.J., Rutishauser B.V., Eggen R.I., Suter M.J. Identification of the estrogen receptor Cd-binding sites by chemical modification // Analyst -2005. Vol. 130, N 7. — P. 1087 — 1097.
  265. Ng T.Y., Wang W.X. Modeling of cadmium bioaccumulation in two population of the green mussel Perna viridis // Environ. Toxicol. Chem. -2005. Vol. 24, N 9. — P. 2299 — 2305.
  266. Novelli E.L., Vieira E.P., Rodrigues N.L., Ribas B.O. Risk assessment of cadmium toxicity on hepatic and renal tissues of rats // Environ. Res. -1998. Vol. 79, N 2. — P. 102 — 105.
  267. Oehler R., Roth E. Regulative capacity of glutamine // Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab. Care. 2003. — Vol. 6, N 3. — P. 277 — 282.
  268. Oskarsson A., Palminger H.I., Sundberg J., Petersson G.K. Risk assessment in relation to neonatal metal exposure // Analyst. 1998. — Vol. 123, N 1. -P. 19−23. Review.
  269. Ossola J.O., Tomaro M.L. Heme oxygenase induction by cadmium chloride: evidence for oxidative stress involvement // Toxicology. 1995. — Vol. 104, N1−3.-P. 141−147.
  270. Otterbein L.E., Choi A.M.K. Heme oxygenase: colors of defense against cellular stress // Am. J. Physiol. Lung. Cell Mol. Physiol. 2000. — Vol. 279, N6.-P. 1029−1037.
  271. Pari L., Murugavel P. Diallyl tetrasulfide improves cadmium induced alterations of acetylcholinesterase, ATPases and oxidative stress in brain of rats // Toxicology. 2007. — Vol. 234, N 1−2. — P. 44 — 50.
  272. Pari L., Murugavel P., Sitasawad S.L., Kumar K.S. Cytoprotective and antioxidant role of diallyl tetrasulfide on cadmium induced renal injury: an in vivo and in vitro study // Life Sci. 2007. — Vol. 80, N 7. — P. 650 — 658.
  273. Park H.J., Moon J.S., Kim H.G. Characterization of a second gene encoding gamma-glutamyl transpeptidase from Schizosaccharomyces pombe // Can. J. Microbiol. 2005. — Vol. 51, N 3. — P. 269 — 275.
  274. Passagne I., Lazou В., De Portal C., Cambar J., Ohayon-Courtes C. Glutathione synthesis inhibitor increases cadmium-induced oxidative stress and cytotoxicity in glomerular kidney cells // Toxicol. Lett. 2007. — Vol. 172, Suppl. l.-P. S70.
  275. Pavelkova M., Kubala L. Luminol-, isoluminol- and lucigenin-enhahced chemiluminescence of rat blood phagocytes stimulated with different activators // Luminescence. 2004. — Vol. 19, N 1. — P. 37 — 42.
  276. Persaud С., Forrester Т., Jackson A. Urinary excretion of 5-L-oxoproline (pyroglutamic acid) is increased during recovery from severe childhood malnutrition and responds to supplemental glycine // J. Nutr. 1996. — Vol. 126, N 11. -P. 2823−2830.
  277. Persijn J.P., van der Slik W. A new method for the determination of gamma-glutamyltransferase in serum // J. Clin. Chem. Clin. Biochem. 1976. — Vol. 14, N9.-P. 421 -427.
  278. Petersson G.K., Oskarsson A. Cadmium in milk and mammary gland in rats and mice // Arch. Toxicol. 2000. — Vol. 73, N 10−11. — P. 519 -527,
  279. Piantadosi C.A., Tatro L., Zhang J. Hydroxyl radical production in the brain after CO hypoxia in rats // Free Rad. Biol. Med. 1995. — Vol. 18, N 3. — P. 603−609.
  280. Poon H.F., Calabrese V., Scapagnini G., Butterfield D.A. Free radicals: key to brain aging and heme oxygenase as a cellular response to oxidative stress // J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 2004. — Vol. 59, N 5. — P. 478 — 493.
  281. Poss K.D., Tonegawa S. Reduced stress defense in heme oxygenase 1-deficient cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1997. Vol. 94, N 20. — P. 10 925 — 10 930.
  282. Potter D.W., Tran T. Apparent rates of glutathione turnover in rat tissues // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1993. — Vol. 120, N2. — P. 186 — 192.
  283. Prochaska J.R. The glutathione peroxidase activity of glutathione-S-transferases Biochem // Biophys. Acta. 1980. — Vol. 611, N 1. — P. 87 — 98.
  284. Puka-Sundvall M., Eriksson P., Nilscon M., Sondberg M., Lehmann A. Neurotoxicity of cysteine: interaction with glutamate // Brain Res. -1995. -Vol. 705, N 1−2. P. 65 -70.
  285. Radetski C.M., Ferrari В., Cotelle S., Masfaraud J.F., Ferard J.F. Evaluation of the genotoxic, mutagenic and oxidant stress potentials of municipal solid waste incinerator bottom ash leachates // Sci. Total Environ. 2004. — Vol. 333, N1−3.-P. 209−216.
  286. Rajanna В., Hobson M., Boykin M., Chetty C. Effects of chronic treatment with cadmium on ATPases, uptake of catecholamines, and lipid peroxidationin rat brain synaptosomes // Ecotox. Environ. Saf. 1998. — Vol. 20, N 1. — P. 36−41.
  287. Rantala A.O., Lilja M., Kauma H., Savolainen M.J., Reunanen A., Kesaniemi Y.A. Gammaglutamyl transpeptidase and the metabolic syndrome // J. Intern. Med. 2000. — Vol. 248, N 3. — P. 230 — 238.
  288. Regoli F., Hummel H., Amiard-Triquet C., Larroux C., Sukhotin A. Trace metals and variations of antioxidant enzymes in Arctic bivalve populations // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1998. — Vol. 35, N 4. — P. 594 — 601.
  289. Rho K.A., Kim M.K. Effects of different grape formulations on antioxidative capacity, lipid peroxidation and oxidative DNA damage in aged rats // J. Nutr. Sci. Vitaminol. 2006. — Vol. 52, N 1. — P. 33 — 46.
  290. Rice D., Barone J.S. Critical periods of vulnerability for the developing nervous system: evidence from humans and animal models // Environ. Health Perspect. 2000. — Vol. 108, Suppl. 3. — P. 511 — 533.
  291. Roszczenko A., Galazyn-Sidorczuk M., Brzoska M.M., Moniuszko-Jakoniuk J., Zwierz K. Select parameters of renal function in smokers in correlation with the exposure to cadmium // Przegl. Lek. 2004. — Vol. 61, N4.-P. 348−350.
  292. Rush J.W.E., Sandiford S.D. Plasma glutathione peroxidase in healthy young adults: influence of gender and physical activity // Clinical Biochemistry. -2003. Vol. 36, N 5. — P. 345 — 351.
  293. Saillenfait A.M., Payan J.P., Brondeau M.T., Zissu D., de Ceaurriz J. Changes in urinary proximal tubule parameters in neonatal rats exposed to cadmium chloride during pregnancy // J. Appl. Toxicol. 1991. -Vol. 11, N l.-P. 23 — 27.
  294. Salvatori F., Talassi C.B., Salzgeber S.A., Spinosa H.S., Bernardi M.M. Embryotoxic and long-term effects of cadmium exposure during embryogenesis in rats // Neurotoxicol. Teratol. 2004. — Vol. 26, N 5. — P. 673 — 680.
  295. Saric M.M., Blanusa M., Piasek M., Varnai V.M., Juresa D., Kostial K. Effect of dietary calcium on cadmium absorption and retention in suckling rats // Biometals. 2002. — Vol. 15, N 2. — P. 175 — 182.
  296. Sarkar S., Yadav P., Bhatnagar D. Cadmium-induced lipid peroxidation and the antioxidant system in rat erythrocytes: the role of antioxidants // J. Trace Elem. Med. Biol. 1997. — Vol. 11, N 1.-P. 8 — 13.
  297. Sarkar S., Yadav P., Bhatnagar D. Lipid peroxidative damage on cadmium exposure and alterations in antioxidant system in rat erythrocytes: a study with relation to time // Biometals. 1998. — Vol. 11, N 2. — P. 153 — 157.
  298. Sarkar S., Yadav P., Trivedi R., Bansal A.K., Bhatnagar D. Cadmium-induced lipid peroxidation and the status of the antioxidant system in rat tissues // J. Trace Elem. Med. Biol. 1995. — Vol. 9, N 3. — P. 144 — 149.
  299. Saunders N.R., Habgood M.D., Dziegielewska K.M. Barrier mechansims in the brain, II. Immature brain // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 1999. -Vol. 26, N 1. — P. 11 — 19.
  300. Schramel P., Hasse S., Ovcar-Pavlu J. Selenium, cadmium, lead and mercury concentrations in human breast milk, in placenta, maternal blood, and the blood of the newborn // Biol. Trace Elem. Res. 1988. -Vol. 15. -P. Ill — 124.
  301. Schumann K., Friebel P., Schmolke G., Elsenhans B. State of iron repletion and cadmium tissue accumulation as a function of growth in young rats after oral cadmium exposure // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1996. — Vol. 31, N4.-P. 483 -487.
  302. Semczuk M., Semczuk-Sikora A. New data on toxic metal intoxication (Cd, Pb, and Hg in particular) and Mg status during pregnancy // Med. Sci. Monit. 2001. — Vol. 7, N 2. — P. 332 — 340.
  303. Serafini M.T., Romeu A., Arola L. Zn (II), Cd (II) and Cu (II) interactions on glutathione reductase and glucose-6-phosphate dehydrogenase // Biochem. Int. 1989. — Vol. 18, N 4. — P. 793 — 802.
  304. Sharma G., Nath R., Gill K.D. Effect of ethanol on cadmium-induced lipid peroxidation and antioxidant enzymes in rat liver // Biochem. Pharmacol. -1991.-Vol. 42, Supp. 1.-P. 9−16.
  305. Sharma R.P., Kjellstrom J.Т., McKenzie J.M. Cadmium in blood and urine among smokers and non-smokers with high cadmium intake via food // Toxicology. 1983. — Vol. 29, N 1−2. — P. 163 — 171.
  306. Shivakumar B.R., Anandatheerthavarada H.K., Ravindranath V. Free radical scavenging systems in developing rat brain // Int. J. Dev. Neurosci. 1991. — Vol. 9, N 2. — P. 181 — 185.
  307. Shukla A., Shukla G.S., Srimal R.C. Cadmium-induced alterations in blood-brain barrier permeability and its possible correlation with decreasedmicrovessel antioxidant potential in rat // Hum. Exp. Toxicol. 1996. — Vol. 15, N5.-P. 400−405.
  308. Shukla G.S., Srivastava R.S., Chandra S.V. Glutathione status and cadmium neurotoxicity: studies in discrete brain regions of growing rats // Fundam. Appl. Toxicol. 1988a. — Vol. 11, N 2. — P. 229 — 235.
  309. Shukla G.S., Srivastava R.S., Chandra S.V. Prevention of cadmium-induced effects on regional glutathione status of rat brain by vitamin E // J. Appl. Toxicol. 19 886. — Vol. 8, N 5. — P. 355 — 359.
  310. Sies H. Research Monographs: glutathione and GSTs // Biol. Trace. Elem. Res. 2000. — Vol. 78, N 1−3. — P. 219 — 230.
  311. Sies H., Sharov V.S., Klotz L.O., Briviba K. Glutathione peroxidase protects against peroxynitrite-mediated oxidations. A new function for selenoproteins as peroxynitrite reductase // J. Biol. Chem. 1997. — Vol. 272, N 44. — P. 27 812−27 817.
  312. Sinha M., Manna P., Sil P.C. Attenuation of cadmium chloride induced cytotoxicity in murine hepatocytes by a protein isolated from the leaves of the herb Cajanus indicus L // Arch. Toxicol. 2007. — Vol. 81, N 6. — P. 397 -406.
  313. Sowa B, Steibert E. Effect of oral cadmium administration to female rats during pregnancy on zinc, copper and iron content in placenta, fetal liver, kidney, intestine and brain // Arch. Toxicol. 1985. — Vol. 56, N 4. — P. 256 -262.
  314. Speisky H. Age-dependent removal of circulating glutathione by rat liver: role of gamma-glutamyl transferase // Age. 1992. — Vol. 15. — P. 104 — 107.
  315. Staessen J.A., Roels H.A., Emelianov D., Kuznetsova Т., Thijs L., Vangronsveld J., Fagard R. Environmental exposure to cadmium, forearm bone density, and risk of fractures: prospective population study. Public
  316. Health and Environmental Exposure to Cadmium (PheeCad) Study Group // Lancet. 1999. — Vol. 353, N 9159. — P. 1140 — 1144.
  317. Stark A.A. Oxidative metabolism of glutathione by gamma-glutamyl transpeptidase and peroxisome proliferation: the relevance to hepatocarcinogenesis: a hypothesis // Mutagenesis. 1991. — Vol. 6, N 4. — P. 241 -245.
  318. Stewart B.M. Mechanisms of apoptosis: integration of genetic, biochemical, and cellular indicators // J. Natl. Cancer Inst. 1994. — Vol. 86, N 17. — P. 1286 — 1295.
  319. Swiergosz-Kowalewska R. Cadmium distribution and toxicity in tissues of small rodents//Microsc. Res. Tech. 2001. — Vol. 55, N3.-P. 208−222.
  320. Swiergosz-Kowalewska R., Bednarska A., Kafel A. Glutathione levels and enzyme activity in the tissues of bank vole Clethrionomys glareolus chronically exposed to a mixture of metal contaminants // Chemosphere. -2006. Vol. 65, N 6. — P. 963 — 974.
  321. Tabacova S., Baird D.D., Balabaeva L., Lolova D., Petrov I. Placental arsenic and cadmium in relation to lipid peroxides and glutathione levels in maternal-infant pairs from a copper smelter area // Placenta. 1994a. — Vol. 15, N8.-P. 873 -881.
  322. Tabacova S., Little R.E., Balabaeva L., Pavlova S., Petrov I. Complications of pregnancy in relation to maternal lipid peroxides, glutathione, and exposure to metals // Reprod. Toxicol. 19 946. — Vol. 8, N3,-P. 217 -224.
  323. Tang W., Sadovic S., Shaikh Z.A. Nephrotoxicity of cadmium-metallothionein: protection by zinc and role of glutathione // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1998. — Vol. 151, N 2. — P. 276 — 282.
  324. Tee L.B.G., Gilmore K.S., Meyer D.J., Ketterer В., Vandenberghe Y., Yeoh G.C.T. Expression of glutathione S-transferase during rat liver development // Biochem. J. 1992. — Vol. 282, Pt. 1. — P. 209 — 218.
  325. Tellez-Plaza M., Navas-Acien A., Crainiceanu C.M., Guallar E. Cadmium exposure and hypertension in the 1999−2004 National Health and Nutrition Examination Survey (KHANES) // Environ. Health Perspect. 2008. — Vol. 116, N1.-P. 51−56.
  326. Thijssen S., Cuypers A., Maringwa J., Smeets K., Horemans N., Lambrichts I., Van Kerkhove E. Low cadmium exposure triggers a biphasic oxidative stress response in mice kidneys // Toxicology. 2007. — Vol. 236, N1−2.-P. 29−41.
  327. Thorn S.R., Fisher D., Xu Y.A., Garner S., Ischiropoulos H. Role of nitric oxide-derived oxidants in vascular injury from carbon monoxide in the rat // Am. J. Physiol. 1999. — Vol. 276, N 3, Pt. 2. — P. H984 — H992.
  328. Thom S.R., Fisher D., Xu Y.A., Notarfrancesco K., Ischiropoulos PI. Adaptive responses and apoptosis in endothelial cells exposed to carbon monoxide // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. — Vol. 97, N3,-P. 1305 — 1310.
  329. Thom S.R., Xu Y.A., Ischiropoulos H. Vascular endothelial cells generateperoxynitrite in response to carbon monoxide exposure // Chem. Res. Toxicol. 1997. — Vol. 10, N 9. — P. 1023 — 1031.
  330. Tiryakioglu M., Eker S., Ozkutlu F., Husted S., Cakmak I. Antioxidant defense system and cadmium uptake in barley genotypes differing in cadmium tolerance // J. Trace Elem. Med. Biol. 2006. — Vol. 20, N 3. -P. 181 — 189.
  331. Townsend D.M., Tew K.D., Tapiero H. The importance of glutathione in human disease // Biomed. Pharmacother. 2003. — Vol. 57, N 3−4. — P. 145 -155.
  332. Ulusu N., Acan N., Turan В., Tezcan E. Inhibition of glutathione reductase by cadmium ion in some rabbit tissues and the protective role of dietary selenium //Biol. Trace Elem. Res. 2003. — Vol. 91, N 2. -P. 151 — 156.
  333. Unamuno V.I., Meers E., Tack F.M. The solid-solution partitioning of heavy metals (Cd and Zn) in soil and dredged sediments for environmental management purposes // Commun. Agric. Appl. Biol. Sci. 2006. — Vol. 71, Nl.-P. 245−247.
  334. Vahter M., Akesson A., Liden C., Ceccatelli S., Berglund M. Gender differences in the disposition and toxicity of metals // Environ. Res. 2007. -Vol. 104, N 1,-P. 85 -95.
  335. Vahter M., Berglund M., Nermell В., Akesson A. Bioavailability of cadmium from shellfish and mixed diet in women // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1996. — Vol. 136, N 2. — P. 332 — 341.
  336. Van Vleet T.R., Schnellmann R.G. Toxic nephropathy: environmental chemicals // Semin. Nephrol. 2003. — Vol. 23, N 5. — P. 500 — 508.
  337. Vuori E., Vetter M., Kuitunen P., Salmela S. Cadmium in Finnish breast milk, a longitudinal study // Arch. Toxicol. 1983. — Vol. 53, N 3. — P. 207 — 211.
  338. Wang A.G., Chen X.M., Lu W.Q. Studies on the effects of low-dose selenium and high-dose cadmium on myocardial injury // Zhonghua Yu Fang Yi Xue Za Zhi. 1994. — Vol. 28, N 2. — P. 94 — 96.
  339. Wang H., Liu H., Liu R. Gender difference in glutathione metabolism during aging in mice //Exp. Gerontology 2003. — Vol. 38.-P. 507 -517.
  340. Wang J., Wang S.J., Ouyang Z.Y. Geogenic distribution and baseline concentrations of cadmium in surficial soil of Guiyang, China // Huan Jing Ke Xue. 2007. — Vol. 28, N 6. — P. 1344 — 1348.
  341. Wang R. Resurgence of carbon monoxide: an endogenous gaseous vasorelaxing factor // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1998. — Vol. 76, N 1. — P. 1−15.
  342. Wannamethee G., Ebrahim S., Shaper A. G: Gamma-glutamyltransferase: determinants and association with mortality from ischemic heart disease and all causes // Am. J. Epidemiol. 1995. — Vol. 142, N 7. — P. 699 — 708.
  343. Watford M. Net interorgan transport of L-glutamate occurs via the plasma, not via erythrocytes // J. Nutr. 2002. — Vol. 132. — P. 952 — 956.
  344. Webster W.S. Cadmium induced fetal growth retardation in the mouse // Arch. Environ. Health. 1978. — Vol. 33, N 1. — P. 36 — 42.
  345. Whitfield J.B. Gamma-glutamyl transferase // Crit. Rev. Clin. Lab. Sci. -2001. Vol. 38, N 4. — P. 263 — 355.
  346. Whitfield J.B. Serum gamma-glutamyltransferase and risk of disease // Clin. Chem. 2007. — Vol. 53, N 1. — P. 1 — 2.
  347. Wloch S. Dynamics of morphological and cytochemical changes in the placenta following cadmium chloride intoxication // Ginekol. Pol. 1992. -Vol. 63, N6.-P. 265−274.
  348. Wlodek P., Sokolowska M., Smolenski O. The y-glutamyltransferase activity and non-protein sulfhydryl compounds levels in rat kidney of different age groups // Clin. Chem. 2002. — Vol. 49, N 2. — P. 501 — 507.
  349. Wolff D.G. The formation of carbon monoxide during peroxidation of microsomal lipids // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1976. — Vol. 73, N 4.-P. 850 -857.
  350. Wu G., Fang Y., Yang S., Lupton J.R. Glutathione metabolism and its implications for health // J. Nutr. 2004. — Vol. 134, N 3. — P. 489 — 492.
  351. Wu G., Meininger C.J. Regulation of nitric oxide synthesis by dietary factors // Annu. Rev. Nutr. 2002. — Vol. 22. — P. 61 — 86.
  352. Wu L., Wang R. Carbon monoxide: endogenous production, physiological functions, and pharmacological // Pharmacol. Rev. 2005. — Vol. 57, N 4. -P. 585−630.
  353. Yannarelli G.G., Fernandez-Alvarez A.J., Santa-Cruz D.M., Tomaro M.L. Glutathione reductase activity and isoforms in leaves and roots of wheat plants subjected to cadmium stress // Phytochemistry. 2007. — Vol. 68, N 4. -P. 505 -512.
  354. Yiin S.J., Chern C.L., Sheu J.Y., Lin Т.Н. Cadmium-induced liver, heart, and spleen lipid peroxidation in rats and protection by selenium // Biol. Trace Elem. Res. 2000. — Vol. 78, N 1−3. — P. 219 — 230.
  355. Yuan H.T., Bingle C.D., Kelly F.J. Differential patterns of antioxidant enzyme mRNA expression in guinea pig lung and liver during development // Biochimica et Biophysica Acta. 1996, — Vol. 1305, N3.-P. 163−171.
  356. Zalups R.K., Sarfaraz A. Molecular handling of cadmium in transporting epithelia // Toxicol. Appl. Pharmacol. 2003. — Vol. 186, N 3. — P. 163 — 188.
  357. Zhang J., Shu W.S. Mechanisms of heavy metal cadmium tolerance in plants // Zhi Wu Sheng Li Yu Fen Zi Sheng Wu Xue Xue Bao. 2006. — Vol. 32, N 1.-P.1−8.
  358. Zhu Y., Carvey P.M., Ling Z. Age-related changes in glutathione and glutathione-related enzymes in rat brain // Brain Res. 2006. — Vol. 1090, N l.-P. 35−44.
  359. Zirong X., Shijun B. Effects of waterborne Cd exposure on glutathione metabolism in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) liver // Ecotox. Environ. Saf. 2007. — Vol. 67, N 1. — P. 89 — 94.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!