Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Биотехнологические основы селекционной технологии моркови: Daucus carota L

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Важное место в сельскохозяйственной биотехнологии занимает биотехнология растений. Одно из первых определений этому направлению было дано в начале 90-х годов XX века. Биотехнология растений — прикладная область науки, которая использует научные подходы для разработки новых технологий и оборудования с целью получения новых форм и использования их биологическими организмами (Qualset, 1991). Целями… Читать ещё >

Содержание

  • ВВЕДЕНИЕ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Состояние исследований по использованию методов биотехнологии в селекции растений на начало 80-х годов XX века
    • 1. 2. Обоснование темы
      • 1. 2. 1. Клональное микроразмножение и системы регенерации растений in vitro
      • 1. 2. 2. Получение гаплоидов и/или удвоенных гаплоидов методами биотехнологии растений и их практическая значимость
        • 1. 2. 2. 1. Культура зародышей
        • 1. 2. 2. 2. Культура пыльников
        • 1. 2. 2. 3. Культура неоплодотворенных завязей и семяпочек
      • 1. 2. 3. Генетическая трансформация
        • 1. 2. 3. 1. Использование методов прямого переноса генов при генетической трансформации моркови
        • 1. 2. 3. 2. Агробактериальная трансформация моркови
    • 1. 3. Связь диссертационной работы с тематическим планом научно-исследовательских работ
    • 1. 4. Апробация работы
  • ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
  • 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Растительный материал
    • 2. 2. Стерилизация
    • 2. 3. Выделение эксплантов
    • 2. 4. Питательные среды — состав и приготовление
    • 2. 5. Условия культивирования эксплантов in vitro
    • 2. 6. Цитоэмбриологические исследования
    • 2. 7. Генетическая трансформация моркови
    • 2. 8. Адаптация растений-регенерантов и выращивание последующих поколений в условиях in vivo
    • 2. 9. Биохимический анализ экспериментального материала
    • 2. 10. Статистическая обработка экспериментальных данных
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Культура зародышей
      • 3. 1. 1. Стерилизация семян и завязей моркови
      • 3. 1. 2. Разработка состава питательной среды для культивирования зиготических зародышей моркови in vitro
      • 3. 1. 3. Каллусогенез и регенерация растений в культуре зародышей моркови in vitro
      • 3. 1. 4. Рост и развитие завязей, семяпочек и зародышей in vivo
      • 3. 1. 5. Регенерация растений in vitro из разновозрастных завязей, семяпочек и зародышей моркови
      • 3. 1. 6. Получение апомиктичных растений моркови in vivo
      • 3. 1. 7. Получение апомиктичных растений моркови in vitro
    • 3. 2. Культура пыльников
      • 3. 2. 1. Цветение и фертильность донорных растений моркови
      • 3. 2. 2. Строение пыльника моркови
      • 3. 2. 3. Развитие пыльника моркови in vivo и in vitro
      • 3. 2. 4. Микроспорогенез и микрогаметогенез у моркови
      • 3. 2. 5. Взаимосвязь между стадиями развития мужского гаметофита и размерами соцветий и генеративных органов моркови
      • 3. 2. 6. Условия выращивания донорных растений моркови
      • 3. 2. 7. Стерилизация первичных эксплантов
      • 3. 2. 8. Стадия развития микроспор для индукции андрогенных структур моркови
      • 3. 2. 9. Каллусогенез и эмбриогенез в культуре пыльников моркови in vitro
        • 3. 2. 9. 1. Каллусогенез
        • 3. 2. 9. 2. Эмбриогенез
      • 3. 2. 10. Способы повышения эффективности получения андрогенных структур в культуре пыльников моркови in vitro
      • 3. 2. 11. Роль 2,4-Д на индукцию андрогенных структур в культуре пыльников моркови in vitro
      • 3. 2. 12. Цитология эмбриогенеза в культуре пыльников моркови
      • 3. 2. 13. Смена плоидности при формировании андрогенных растений-регенерантов моркови in vitro
      • 3. 2. 14. Депонирование
      • 3. 2. 15. Адаптация растений-регенерантов in vivo
    • 3. 3. Культура неопыленных завязей и семяпочек
      • 3. 3. 1. Строение завязи моркови
      • 3. 3. 2. Развитие генеративных органов моркови in vivo
      • 3. 3. 3. Взаимосвязь между стадиями развития женского гаметофита и стадиями развития мужского гаметофита, а также размерами соцветий и генеративных органов моркови
      • 3. 3. 4. Каллусогенез и эмбриогенез в культуре неопыленных завязей и семяпочек моркови in vitro
      • 3. 3. 5. Цитология каллусо- и эмбриогенеза в культуре неопыленных семяпочек моркови
      • 3. 3. 6. Смена плоидности при формировании гиногенных растений-регенерантов моркови in vitro
    • 3. 4. Анализ андрогенных и гиногенных растений моркови
      • 3. 4. 1. Растения вегетативного периода онтогенеза
        • 3. 4. 1. 1. Андрогенные растения Rao
        • 3. 4. 1. 2. Андрогенные растения Ra
        • 3. 4. 1. 3. Андрогенные растения Ra
        • 3. 4. 1. 4. Гиногенные растения Rn
      • 3. 4. 2. Растения репродуктивного периода онтогенеза
        • 3. 4. 2. 1. Андрогенные растения Rao
        • 3. 4. 2. 2. Гиногенные растения Rpo
      • 3. 4. 3. Прикладное значение метода андрогенеза in vitro у моркови
      • 3. 4. 4. Сравнительная характеристика андрогенных и гиногенных растений моркови, полученных из сорта Нантская
        • 3. 4. 2. 1. Анатомическое строение черешков листьев андрогенных и гиногенных растений моркови Ro вегетативного периода онтогенеза
        • 3. 4. 2. 2. Молекулярная оценка андрогенных и гиногенных растений моркови Ri вегетативного периода онтогенеза на основе RAPD технологии
        • 3. 4. 2. 3. Морфологические различия андрогенных и гиногенных растений моркови Ro репродуктивного периода онтогенеза
    • 3. 5. Генетическая трансформация моркови сорта Нантская
      • 3. 5. 1. Трансформация моркови репортерным геном GUS
      • 3. 5. 2. Методика отбора трансгенных растений Rti,., ii моркови с селективным геном npt II
      • 3. 5. 3. Отбор и анализ трансгенных растений моркови сорта Нантская 4 с геном растительного дефензина Rs-ap
      • 3. 5. 4. Отбор и анализ трансгенных растений моркови сорта Нантская 4 с геном Тауматин II
        • 3. 5. 4. 1. Отбор и анализ трансгенных растений Rto
        • 3. 5. 4. 2. Отбор и анализ трансгенных растений Rn
        • 3. 5. 4. 3. Отбор и анализ трансгенных растений Rt
        • 3. 5. 4. 4. Анализ трансгенных растений Rti-тз по устойчивости к болезни, вызываемой Fusarium avenaceum

Биотехнологические основы селекционной технологии моркови: Daucus carota L (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Биотехнология как наука, использующая биологические принципы в практических целях, возникла в конце прошлого столетия с появлением микробиологии и её применением в промышленных процессах брожения. Хотя такие биотехнологические процессы, как хлебопечение, приготовление кисломолочных продуктов, сыроварение, виноделие, улучшение полезных видов растений и животных известны с незапамятных времен.

Применение термина «биотехнология» впервые было осуществлено в 1973 году в США, в научно-исследовательской группе Станфордского университета, при получении Е-коли (EcoRl) во время проведения успешной работы в области рекомбинантов ДНК. С этого момента то, что мы теперь называем «биотехнологией», стало использоваться при описании сравнительно новых технологических процессов, входящих в общее понятие «биология», и в частности, для определения таких областей технологии, как рекомбинация ДНК, слияние клеток и др. (Хиросэ, 1986). Энциклопедическое определение биотехнологии (от греческого bios — жизнь, techne — искусство, мастерство и logos — учение), использование биологических процессов и систем в различных областях сельского хозяйства, промышленности и медицинынаучное направление, объединяющее возможности биологии и техники*. В связи с этим выделяются ряд направлений в том числе и сельскохозяйственная биотехнология.

Сельскохозяйственная биотехнология — любая технология, использующая живые организмы или их части для создания или модификации продуктов, улучшения растений или животных, а также создания микроорганизмов для специального применения (James, 1991). Она охватывает использование «как Сельскохозяйственный энциклопедический словарь / Редкол.: В. К. Месяц (гл. ред.) и др. — М.: Советская энциклопедия, 1989. — С. 52. традиционной, так и современной биотехнологии». В традиционном понимании биотехнология — наука о методах и технологиях производства различных веществ и продуктов с использованием природных биологических объектов и процессов (хлебопечение, квашение, виноделие, пивоварение, биологическая защита от вредных насекомых, производство традиционных вакцин для животных, и др.). Современная биотехнология — наука о генно-инженерных и клеточных методах и технологиях создания и использования генетически трансформированных биологических объектов для интенсификации производства или получения новых видов продуктов различного назначения (включает новые методы культуры клеток и тканейдиагностику с использованием как монокло-нальных антител, так и зондов нуклеиновых кислоттехнологию рекомбинант-ной ДНК — рДНК). Высшим достижением современной биотехнологии является генетическая трансформация, перенос чужеродных генов и других материальных носителей наследственности в клетки растений, животных и микроорганизмов, получение трансгенных организмов с новыми или усиленными свойствами и признаками.

Важное место в сельскохозяйственной биотехнологии занимает биотехнология растений. Одно из первых определений этому направлению было дано в начале 90-х годов XX века. Биотехнология растений — прикладная область науки, которая использует научные подходы для разработки новых технологий и оборудования с целью получения новых форм и использования их биологическими организмами (Qualset, 1991). Целями научных исследований биотехнологии растений, наряду с другими, являются: новые фундаментальные знания о процессах, происходящих в растениях, включая структуру, функцию и выражение генановые методологии для применения при разработке продуктовновые генетические линии для научных исследований и селекции растений, включая растения, гаметы, клонированную ДНКновые сорта растений для прямого использования в сельском хозяйстве.

Немаловажное значение в становлении современной биотехнологии растений сыграла разработка методологических основ культуры тканей растений области биологии, изучающей клетки, ткани и органы, изолированные от растения и выращиваемые на искусственных питательных средах, in vitro (в стекле) (Чайлахян и др., 1982).

История развития методов культуры тканей растений подробно отражена в ряде работ как зарубежных (Уайт, 1949), так и отечественных (Бутенко, 1964; Калинин и др., 1980; Муромцев и др., 1990; Бутенко, 1999) исследователей. Можно выделить следующие периоды развития методов культуры тканей растений:

1. 1834−1900 гг. — Создание и разработка клеточной теории.

2. 1901;1922 гг. — Сформулирована идея культуры тканей.

3. 1923; 1934 гг. — Безуспешные поиски методов, обеспечивающих длительное выращивание культуры тканей.

• 4. 1935;1940 гг. — Детальная разработка техники культуры растительных тканей: культивирование изолированных кончиков корня в течение неограниченного периода времени, введение в культуру новых объектов — кал-лусные ткани.

5. 1941;1960 гг. — Разрабатываются составы основных питательных сред, Изучено значение отдельных макрои микроэлементов. Выявлена потребность тканевых культур в витаминах и стимуляторах роста. Открыт новый класс стимуляторов роста растений — цитокинины. Оценено значение натуральных экстрактов типа эндосперма кокосового ореха, каштана, кукурузы и других растений для поддержания неорганизованного клеточного роста и стимуляции процессов органогенеза и соматического эмбриогенеза в культуре каллусных тканей и клеточных суспензий. В культуру in vitro введены ткани 142 видов высших растений.

6. 1961;1975 гг. Разработан метод получения изолированных протопластов. Изолированные протопласты, еще не образовавшие клеточную стенку, были использованы для разработки методов гибридизации соматических клеток путем слияния протопластов с помощью полиэтиленгликоля (ПЭГ), а также для введения в них вирусных РНК, клеточных органелл, клеток прокариотов. Разработан метод культуры меристем (клонального микроразмножения), позволяющий быстро, с высоким коэффициентом, клонально размножить растения в асептических условиях, а также получить оздоровленный посадочный материал экономически важных растений. Важное фундаментальное и прикладное значение имело открытие индукции анд-роклинии при культивировании изолированных пыльников и партеногенеза при культивировании клеток зародышевого мешка. Обнаружено явление сомаклональной изменчивости.

7. 1976 — 1990 гг. Продолжает быстро развиваться техника in vitro, изучение биологии культивируемых растительных объектов и создание биотехнологий на их основе. Разработка методов электрослияния изолированных протопластов и разнообразных методов селекции гибридных клеток значительно облегчила гибридизацию соматических клеток растений. Методы мутагенеза и клеточной селекции, получение сомаклональных вариантов и экспериментальных гаплоидов используются для создания новых форм и сортов сельскохозяйственных растений.

8. 1991 г. и по настоящее время — С использованием изолированных протопластов и генетических векторов на основе Ti-плазмид, электропорации и баллистического введения генов в клетки реципиентов стало возможным получение трансгенных растений.

В отечественной литературе термин «биотехнология» относительно растений появился в названии IV Всероссийской конференции «Культура клеток растений и биотехнология» — Кишинев, 1983 г. У зарубежных исследователей термин «биотехнология растений» подразумевал применение технологий тканевых культур, клеточных культур, слияния клеток, рекомбинацию ДНК и др. (Хиросэ, 1986). При этом выделялись три основные области применения биотехнологии растений: 1 — клональное микроразмножение и оздоровление посадочного материала- 2 — производство вторичных метаболитов- 3 — селекция растений.

В контексте нашей работы мы также будем использовать термин «биотехнология растений», подразумевая при этом область биологии, имеющую дело с растительными организмами и продуктами их жизнедеятельности, использующую все уровни организации живого — молекулярный, субклеточный, клеточный, тканевый, организменный и применяющую методы как культуры тканей, так и других биологических дисциплин для разработки практически важных технологий.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

ВЫВОДЫ.

1. Впервые для селекционной технологии моркови разработаны биотехнологические методы: культура зародышей, андрогенез и гиногенез in vitro, генетическая трансформация. Применение этих методов позволяет ускорить получение исходного материала с заданными признаками в селекционных программах по моркови.

2. При получении стерильной культуры зародышей а) из семян путем предварительной обработки 96%-м этанолом (2 мин) и дальнейшей стерилизации 0,5%-м водным раствором сулемы в течение 20−30 минутб) из завязей путем предварительной обработки 96%-м этанолом (1 мин) и последующей стерилизации 0,1%-м водным раствором сулемы в течение 20−30 минут инфицированность выделенных зародышей не превышает 1,7%, а их прорастание составляет до 86%. При получении стерильной культуры пыльников и семяпочек путем стерилизации бутонов 10%-ным водным раствором хлорамина «Б» в течение 20−30 минут инфицированность выделенных пыльников и семяпочек не превышает 2,7%.

3. Использование в качестве первичных эксплантов зиготических зародышей моркови позволило разработать регенерационную систему, включающую: 1) индукцию каллуса на среде МСм с 0,2 мг/л 2,4-Д- 2) регенерацию проростков на среде МСм с 0,1 мг/л кинетина- 3) подращивание и укоренение растений-регенерантов на фильтровальных мостиках в жидкой безгормональной среде МСм.

4. Завязи in vivo достигают максимальных размеров через 4 недели, семяпочки — через 5 недель, зародыши — через 6−7 недель после опыления. Автономность зародышей моркови для культивирования in vitro достигается через 4 недели на семядольной стадии развития, которые к этому времени составляют ~ 1/3 своего окончательного размера in vivo.

5. Эффективность прорастания зародышей in vitro определяется их возрастом и составом основной питательной среды. Прорастание зрелых зиготических зародышей и формирование растений моркови может происходить на полной безгормональной среде МСм. Однако ряд ростовых веществ оказывает благоприятное действие на рост и развитие проростков моркови in vitro. Исходя из принципа функционирования фитогормонов, заключающегося в их взаимодействии друг с другом, для культивирования зиготических зародышей предложена среда МСм с добавлением 2 г/л ГК с ДЭ, 0,5 мг/л кинетина, 0,1 мг/л ИУК и 0,01 мг/л ГК3. Рост и развитие проростков из равновозрастных зародышей зависит от генотипа материнского растения.

6. Взаимосвязь между микрои макроспорогенезом, а также между стадиями развития мужского и женского гаметофитов и морфологическими показателями соцветия и цветков растений моркови характеризуется сильной корреляционной зависимостью. Маркерными показателями для отбора эксплантов при андрогенезе моркови in vitro служат диаметр зонтика, высота бутона и длина пыльника, при гиногенезе — стадия развития мужского гаметофита и размер завязи.

7. Пыльники моркови являются гормонозависимыми. Для индукции андрогенных структур необходим темновой период культивирования. Индукция андрогенных структур (эмбриоидов, каллусов) происходит при культивировании бутонов и/или пыльников на среде МСм с 0,2 мг/л 2,4-Д (или с 0,2 мг/л 2,4-Д + 0,2 мг/л кинетина), регенерация растений-регенерантов — на среде МСм с 0,1 мг/л кинетина, подращивание и укоренение растений-регенерантов — на безгормональной среде МСм. Выращивание донорных растений в контролируемых условиях, культивирование пыльников на фильтровальных мостиках в жидкой среде, кратковременное воздействие (48 ч.) низкими положительными температурами (4−6 °С) на изолированные бутоны, центрифугирование зонтичков моркови при 355 g в течение 4 мин. повышает эффективность андрогенеза моркови in vitro.

8. При эксплантации пыльников моркови на питательные среды оптимальной стадией микроспорогенеза является вакуолизированные микроспоры. Развитие андрогенных структур происходит как при равном, так и при неравном делении микроспор. При равном делении эмбриоиды закладываются либо из одной, либо из обеих клеток микроспор. При неравном делении микроспор прослеживаются три пути образования эмбриоидов из вегетативной клетки, из генеративной клетки или одновременно из вегетативной и генеративной клеток микроспор.

9. Оптимальными условиями для индукции гиногенных структур (эмбриоидов и каллусов) при эксплантации завязей на стадии зрелого зародышевого мешка являются: а) последовательное культивирование завязей (в темноте -14 суток) и выделенных семяпочек (на свету) на среде МСм с 0,2 мг/л 2,4-Д, б) регенерация растений-регенерантов — на среде МСм с 0,1 мг/л кинетина, в) подращивание и укоренение растений-регенерантов — на безгормональной среде МСм.

10. Регенеранты из андрогенных и гиногенных эмбриоидов характеризуются определенной нестабильностью числа хромосом, при которой, наряду с гаплоидными и диплоидными клетками в фазе метафазы с числом хромосом 9 и 18 соответственно, обнаружены метафазные пластинки, содержащие от 4 до 18 хромосом. В процессе вторичного эмбриогенеза и регенерации растений in vitro происходит смена плоидности от п до 2п.

11. Методами молекулярно-генетического анализа (белковых и ДНК-маркеров) показана высокая генетическая однородность андрогенных и гиногенных растений моркови, полученных путем прямого эмбриогенеза.

12. Андрогенные и гиногенные растения, полученные из сорта Нантская 4, различаются между собой по анатомическим и морфологическим признакам. Эти различия обусловлены генетически, что подтверждено RAPD-анализом.

13. Культивирование растений-регенерантов моркови in vitro при низких положительных температурах (24 °С) замедляет их рост и развитие, что позволяет сохранять полученный материал длительное время. При дальнейшем культивировании в обычных условиях рост и развитие растений-регенерантов возобновляется.

14. Инокуляция каллуса из зиготических зародышей моркови агробакте-риями и их последующее совместное культивирование в течение 2−3 суток проводится на фильтровальной бумаге. Селекция каллусных культур осуществляется на среде с 200 мг/л канамицина, а регенерация и укоренение растений-регенерантов — на среде с 100 мг/л канамицина. При семенном размножении отбор трансгенных растений, содержащих селективный ген npt II, проводится по проросткам при проращивании семян на безгормональной среде МСм со 100 мг/л канамицина. Наличие и экспрессия целевого гена определяется моле-кулярно-биологическим анализом.

15. Впервые получены трансгенные растения моркови с геном Тауматин II. Методом иммуноблотинга выявлена экспрессия гена Тауматина II в листьях и корнеплодах трансгенных растений моркови. Проростки из семян, полученных от самоопыления трансгенных растений на инфекционном фоне in vitro, обладали устойчивостью к грибам родов Cladosporium и Alternaria. Растения семей поколений R-T2-T4 обладали повышенной устойчивостью к грибному патогену Fusarium avenaceum.

16. В результате практического использования разработанных биотехнологических методов были получены перспективные для дальнейшей селекции апомиктичные, андрогенные, гиногенные и трансгенные семьи моркови и сорт моркови столовой Соната.

Практические рекомендации.

1. С целью получения растений из недоразвитых семян, образуемых при индуцированном апомиксисе или межвидовой гибридизации, для моркови необходимо использовать разработанный метод культуры зародышей in vitro.

2. Для ускоренного получения гомозиготных линий и повышения эффективности селекционного процесса предлагается использовать методы удвоенных гаплоидов в культуре пыльников и неопыленных семяпочек in vitro.

3. Для пополнения генофонда генами устойчивости к биотическим и абиотическим факторам у моркови столовой необходимо применять разработанные нами методы регенерации и генетической трансформации in vitro.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.М. Получение безвирусной суперэлиты земляники методом культуры верхушечных меристем // Вирусные болезни плодово-ягодных культур в Молдавии. Кишинев, 1973а. — Вып. 2. — С. 26−50.
  2. Н.М. Стерильная культура почек один из способов терапии пораженного вирусами винограда // Вирусные болезни плодово-ягодных культур в Молдавии. — Кишинев, 19 736. — Вып. 2. — С. 22−25.
  3. В.А. Биотехнологические основы расширения генетического разнообразия картофеля: Автореф. дис. д-ра биол наук. -М., 1997.-46 с.
  4. Э.П. Использование методов верхушечной меристемы, химиотерапии и культуры каллусной ткани в оздоровлении картофеля от мозаичных вирусов: Автореф. дис. канд. биол. наук. Ереван, 1975. — 20 с.
  5. .Б. Процессы морфогенеза в культуре пыльников пшеницы // Проблемы современной биологии / Тр. 20 Науч. конф. мол. ученых биол. фак. МГУ, 24−28 апр., 1989. М., 1990. — Ч. 1. — С. 73−77. — Деп. в ВИНИТИ 05.02.90. № 641−890.
  6. Ф., Уолден Р., Дрейпер Д. Агробактериальные трансформирующие векторы растений // Генная инженерия растений. Лабораторное руководство: Пер с англ. / Под ред. Дж Дрейпера и др. М.: Мир, 1991.-С. 11−86.
  7. А. Изолирани култури от прашници на тютюн и захарно цвекло като средство за получаване на хаплоидии растения и хетерогенен по плоидност калус // Генет. и селекция (НРБ). 1973. — Т.6, № 6. — С. 501−507.
  8. А., Памуков И., Кунев Л., Неделчева С. Хомозиготни линии тютюн, получени от изолоровани в условия in vitro. 1. Диплоидизирани линии от линия Шумен 13 // Генет. и селекция (НРБ). 1978. — Т. 11, № 4. — С. 297 301.
  9. А.И. Биотехнология в растениеводстве. Новосибирск: ИЦиГ СО РАН, 1993.-242 с.
  10. Л.В. Влияние генотипа и основной среды на индукцию эмбриогенеза и регенерацию растений в пыльниковой культуре пшеницы // Прогресс в селекции озимой пшеницы как фактор интенсификации производства зерна Мироновка, 1988. — С. 3812.
  11. Г. Н. Рост изолированных зародышей плодовых растений в стерильной культуре // Сб. науч. работ ВНИИ садоводства. 1971. — № 15. — С. 75−79.
  12. О.В. Гаметоклональная изменчивость в культуре пыльников пшеницы // Пробл. теор. и прикл. генет. в Казахстане: Матер. Респ. конф., Алма-Ата, 18−22 ноября, 1990.-Алма-Ата, 1990.-С. 107−108.
  13. Н., Ланджева С. Цитогенетична характеристика на антерна калусна култура от различноплоидни Helianthus L. // Генетю и селек. 1987. -Т. 196№ 6.-С. 509−516.
  14. П. Калусогенез и регенерация в антерни култури от хибридни комбинации мека пшеница // Растениевъд. науки. 1986. — Т.23, № 2. — С. 1011.
  15. П. Мариана нов сорт ориз, получен по метода на антерните културу // Растениевъд. науки 1990. — Т.27. № 6. — С. 111−113.
  16. П., Фам В.К., Минков И. Н. Изследване на някои физиологични показатели от антерна култура на F. комбинация (Белозем х Пловдив) ориз //Физиол. раст. 1986. — Т. 12, № 2. — С. 70−74.
  17. A.M., Русина JI.B. Культура неоплодотворенных завязей и семяпочек in vitro как способ получения гаплоидных растений // Физиол. и биохимия культ, раст. 1988. — Т.20, № 5. — С. 41930.
  18. A.M., Русина J1.B., Егорова Н. А., Резникова С. А. Гаплоидный каллусогенез и органогенез в культуре неоплодотворенных семяпочек шалфея и кориандра // Тез. докл. V съезда генетиков и селекционеров Украины. Киев, 1986. -Ч. 1.-С. 159.
  19. A.M., Русина JI.B., Резникова С. А. Эмбриоидогенез в культуре пыльников шалфея мускатного // Физиол. и биохимия культ, раст. 1986. -Т.18,№ 4.-С. 381−386.
  20. В.М. Пути использования метода изолированных зародышей в селекции яблони // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. -М.: Колос, 1979.-С. 52−57.
  21. В.И., Федорова М. И. Селекция по отдельным направлениям // Методы селекции и семеноводства овощных корнеплодных растений. М., 2003.-С. 161−177.
  22. Э.А. Культура изолированных зародышей ирисов // Интродукция растений. Минск: Наука и техника, 1976. — С. 23−29.
  23. Р.Г. Биология клеток высших растений и биотехнологии на их основе: Учеб. пособие. М.: ФБК-ПРЕСС, 1999. — 160 с.
  24. Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений. М.: Наука, 1964. — 272 с.
  25. Р.Г., Кучко А. А. Получение межвидового соматического гибрида картофеля методом слияния изолированных протопластов // Докл. АН СССР. 1979. — Т.247, № 2. — С. 491195.
  26. Н.Н. Микроспорангий // Эмбриология растений: использование в генетике, селекции, биотехнологии: в 2-х томах. Т. 1 / Пер. с англ. Под ред. И. П. Ермакова. М.: Агропромиздат, 1990. — С. 66−146.
  27. В.Е., Батыгина Т. Б. Культивирование in vitro зародышей и семяпочек лотоса, изолированных на разных стадиях развития // Физиол раст. -1981.-Т.28,№ 2.-С. 319−327.
  28. Н.С., Дьячук Т. И., Тучин С. В. Биотехнологические методы в селекции пшеницы и ячменя достижения и перспективы // Достижения науки и техники в АПК. — 2003. — № 10. — С. 34−38.
  29. Н., Загорска Н. Съвременно състояние на въпроса за индуцирания андрогенезис при картофите // Гене, и селек. 1990. — Т.23, № 5. -С.499−507.
  30. Ю.П. Сладкие белки и их гены // Биотехнология. 1987. -Т.З, № 5. — С. 553−558.
  31. Г., Айрапетян Э. Метод культуры каллуса в семеноводстве картофеля // Картофель и овощи. 1972. — № 2. — С. 42−43.
  32. В.А. Получение гаплоидов из пыльников тритикале и их цитологическая характеристика // Докл. ВАСХНИЛ. 19 796. — № 10. — С. 8−10.
  33. В.А. Разработка метода получения растений-регенерантов томата в условиях культуры ткани // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. М.: Колос, 1979а. — С. 14−23.
  34. Г. А., Приходько Н. И. Использование культуры зародышей in vitro для получения межвидовых гибридов томатов // Тр. по прикл. ботан., генет. и селекции ВНИИ растениевод. 1980. — Т.63, № 3. — С. 64−74.
  35. С., Загорска Н. Индуциран фндрогенезис при различии генотипове Datura innoxia Mill. // Генет. и селек. 1990. — Т.23, № 1. — С. Ъ9-А1.
  36. Е.Ф., Гамбург К. З. К вопросу о природе «фактора кондиционирования» при изолированной культуре растительных клеток // Физиол. рас. 1975. — Т.22, Вып. 1. — С. 63−89.
  37. В.А. Метод культуры изолированных тканей в питомниках // С.-х. за рубежом. 1981. — № 4. — С. 11−13.
  38. Д., Новак Ф. Й. Использование культуры тканей в селекции лука (Allium сера L.) // Культура клеток растений и биотехнология: Тез. докл. IV Всесоюз. конф. 3−6 октября 1983 г. Кишинев, 1983. — С. 141.
  39. В.Г., Трушечкин В. Г. Культура пыльников земляник // Пробл. интенсиф. садовод, в нечерноземной зоне РСФСР. М., 1989. — С. 7377.
  40. С. Медико-биологическая статистика: Пер. с англ. М.: Практика, 1998.-459 с.
  41. Ю.Ю. Гибридизация соматических клеток растений // Культура клеток растений. М.: Наука, 1981. — С. 85−91.
  42. Е.С. Культура изолированных зародышей пиона // Культура изолированных органов, тканей и клеток растений. М.: Наука, 1970. -С. 45−47.
  43. ГОСТ 12 038–84 // Семена сельскохозяйственных культур: Методы определения качества. М.: Изд-во стандартов, 1991. — Ч. 2. — 416 с.
  44. A.M., Гродзинский Д. М. Краткий справочник по физиологии растений. 2-е изд., перераб. и доп. Киев: Наукова думка.1973. -592 с.
  45. Ю. Л., Фукс А., Валичек П. Селекция и семеноводство культивируемых растений: Учебник / Под ред. Ю. Л. Гужова. М.: Изд-во РУДН, 1999.-536 с.
  46. Э.И. Получение гаплоидов у риса методом культивирования неоплодотворенных завязей в условиях in vitro II Докл. ИФСХНИЛ. 1985. -Вып. 3. — С. 15−16.
  47. Д.М. Культура гаплоидных клеток // Биотехнология растений: культура клеток: Пер. с англ. М.: Агропромиздат, 1989. — С. 33−51.
  48. А.Н., Лусс Е. В., Бутенко Р. Г. Особенности дифференциации специализированных клеток моркови и характеристика нарастания каллуса // Физиол. раст. 1965. — Т. 12, Вып. 3. — С. 469- 478.
  49. С.А. Оптимизация агробактериального метода трансформации кукурузы: Автореф. дисканд. биол. наук. М., 2001. — 24 с.
  50. Т.В. Оптимизация методики получения гаплоидов мягкой пшеницы (Triticum aestivum L.) в культуре пыльников in vitro и возможности их использования в селекции: Автореф. дис. канд. биол. наук. -М., 2000. 16 с.
  51. Е.В., Филипенко М. Л., Храпов Е. А., Загорская А. А., Филипенко Е.А, Тюкавин Г. Б, Шмыкова Н. А., Сенников С. В., Шумный В.К.
  52. Создание трансгенных растений табака и моркови с геном интерлейкина-18 человека // Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и ветеринарии: Тез. докл. III международной научной конференции 19 октября 2004. Москва, 2004.-С. 130−131.
  53. А., Айрапетян Э., Винклер Г., Бутенко Р. Освещение и морфогенез изолированных меристем // Картофель и овощи. 1972. — № 3. — С. 44.
  54. A.M., Бычко Е. А. Клональное микроразмножение тетраплоидных форм сахарной свеклы // Биотехнологические методы в селекции сахарной свеклы М., 1989. — С. 11−14.
  55. С.В., Шушкова Т. В., Тюкавин Г. Б. Генетическая трансформация моркови (Daucus carota L.) // Биоорганика-2000: Тез. докл. V чтений, посвященных памяти Ю. А. Овчинникова 13−20 ноября 2000. Москва-Пущино, 2000. — С. 95.
  56. В.Г. Работа в Excel 7.0 для Windows 95 на примерах. М.: БИНОМ, 1995.-384 с.
  57. Доросиев JL, Атанасов А., Събева 3., Станоева JI. Индуциран андрогенез при антери на Triticale in vitro. 1. Калусогенез и органогенез // Генет. и селекция. 1978. — T. l 1, № 2−3. — С. 168−176.
  58. Д.Б., Клоке Э. Быстрая и экономичная технология RAPD анализа растительных геномов // Генетика. 1997. — Т 33, № 4. — С. 476−483.
  59. .А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). 5-е изд., доп. и перераб. М.: Агропромиздат, 1958.-351 с.
  60. И., Сыкорова С. Использование эмбриональных культур у пшеницы // Tag. Ber., Akad. Landwirtsch. Wiss. DDR, Berlin — 1983. — V.207. -P. 63−66.
  61. П.А., Дьячук Т. И., Кудашкина С. В., Сафронова Н. Ф., Давыдов С. Д. Получение гаплоидных растений мягкой яровой пшеницы саратовских сортов в культуре пыльников // Докл. ВАСХНИЛ. 1986. — № 10. — С. 3−4.
  62. Дюк В. Обработка данных на ПК в примерах. СПб.: Питер, 1997. -240 с.
  63. З.П., Кравцов П. В. Влияние гибберелловой кислоты на прорастание изолированных зародышей яблони и груши в условиях стерильной культуры // Тр. Центр, генет. лаб. им. И. В. Мичурина. 1971. — № 18. — С. 3942.
  64. Н.Х., Тырнов B.C., Хохлов С. С. Выделение зародышевых мешков покрытосеменных растений путем мацерации тканей // Цитология и генетика. 1972. — Т.6, № 5. — С. 429−441.
  65. Л.Л. Морфологические особенности овощных растений в связи с семенной продуктивностью. Новосибирск: Наука, 1975. — 472 с.
  66. А. И. Арасимович В.В., Ярош Н. П., Перуанский Ю. В., Луковникова Г. А., Иконникова М. И. Методы биохимического исследования растений / Под ред. А. И. Ермакова. 3-е изд., перераб и доп. — Л.: Агропромиздат. Ленингр. отд-ние, 1987. — 430 с.
  67. В.А. Некоторые вопросы цитоэмбриологии и эмбриокультуры тритикально-пшеничных гибридов // Биология, селекция и семеноводство зерновых культур. Каменная степь, 1981. — С. 107−116.
  68. О.С., Олейникова О. Я. К проблеме получения гаплоидных форм вишни // Бюл. науч. инф. Центр, генет. лаб. 1989. — № 7. — С. 21−24.
  69. А.А., Салтанович Т. И., Кравченко А. Н., Смирнов А. А. Возможности использования метода культуры зародышей в селекции томатов // Культура клеток растений и биотехнология: Тез. докл. IV Всесоюз. конф. 3−6 октября 1983 г. Кишинев, 1983. — С. 193.
  70. Н. Получаване на хаплоидии и хомозиготни форми от хибриди при N. tabacum в тьканни култури // Науч. тр. Ин-т тютюна и тютюневите изделия. Пловдив, 1977. — № 6. — С. 61−70.
  71. Н., Палакарчева М. Используване метода на антерните и тъканните култури за съкращаване на селекционния процеспри тютюна // Растениевъдни науки. 1976. — Т. 13, № 10. — С. 24−33.
  72. Н., Палакарчева М., Шабанов Д., Попристев В. Хомозиготни линии тютюн, получени при идуцирован андрогенез // Генет. и селекция. -1978.-T.il, № 2−3.-С. 177−186.
  73. Н.А., Шамина З. Б. Изучение растений-регенерантов, полученных в культуре тканей табака // Генетика. 1971. — Т.7, № 3. — С. 23−26.
  74. Н.А., Шамина З. Б. Способность к регенерации в культурах тканей разного происхождения // Культура изолированных органов, тканей и клеток растений. М.: Наука, 1970. — С. 158- 163.
  75. Т.Ф., Суханов В. М., Тырнов B.C. Способ получения растений злаковых культур из пыльцы // А.с. 1 276 309, СССР. Заявл. 01.04.85, № 3 868 302/30−15, опубл. в Б.И., 1986.-№ 46.-МКИ, А 01 НЗ/00.
  76. Здруйковская-Рихтер А. И. Культивирование апомиктических зародышей in vitro //Апомиксис и селекция. М.: Наука, 1970. — С. 165−170.
  77. Здруйковская-Рихтер А. И. Культура зародышей in vitro и получение новых форм растений: Автореф. дис. д-ра биол. наук. М., 1981. — 32 с.
  78. Здруйковская-Рихтер А. И. Культура зародышей in vitro как метод селекции // Цитологические и цитоэмбриологические методы в селекции плодовых и ягодных культур. М.: Колос, 1973. — С. 34−39.
  79. Здруйковская-Рихтер А. И. Культура изолированных зародышей и генеративных органов как метод селекции плодовых растений // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. М.: Колос, 1979. — С. 57−70.
  80. Здруйковская-Рихтер А. И. Культура незрелых зародышей миндаля от межвидовой гибридизации и свободного опыления // Бюл. Гл. бот. сада АН СССР. 1980. — № 115. — С. 85−90.
  81. Здруйковская-Рихтер А. И. Получение раносозревающих форм черешни Cerasus avium (L.) Moench. из зародышей в культуре in vitro II Докл. сов. ученых к XIX Междунар. конгр. по садоводству. Варшава, 1974. М.: Колос, 1974.-С. 82−85.
  82. Здруйковская-Рихтер А. И. Получение сортов плодовых растений in vitro методом культуры изолированных зародышей // Докл. АН СССР. 1985. -№ 1. — С. 246−249.
  83. Здруйковская-Рихтер А.И., Хроликова А. Х. Получение новых форм груши из зародышей в культуре in vitro II С.-х. биол. 1975. — Вып. 10., № 4. -С. 518−521.
  84. В.В., Жужжалова Т. П. Микроклональное размножение сахарной свеклы: Методические рекомендации. Воронеж, 1995. — 23 с.
  85. Л.П. Культура зародышей и семян на искусственных питательных средах как метод интродукции декоративных растений Сибири // Культура изолированных органов, тканей и клеток растений. М.: Наука, 1970. -С. 36−41.
  86. Г. И. Биотехнологические аспекты создания исходного материала для селекции зерновых колосовых культур: Автореф. дис.. д-ра биол наук. Краснодар, 2006. — 45 с.
  87. М.А. Экспериментальное получение гаплоидов у Nicotiana rus-tica (со специальным рассмотрением гаплоидии у цветковых растений // Изв. Биол.-геогр. НИИ при Вост.- Сиб. гос. ун-те. 1937. — Т.7, № 3−4. — С. 71−156.
  88. С.И. Метод культуры тканей в селекции // Сборник статей молодых ученых и аспирантов. М., 1974. — Вып. 6. — С. 119−122.
  89. Н.В. Оценка исходного материала столовой моркови на устойчивость к фузариозу и альтернариозу с использованием методов традиционной и клеточной селекции: Автореф. дис.. канд. с.-х. наук. М., -21 с.
  90. ИСТА // Методика анализа семян. М., 1995. — 400 с.
  91. Е.А. Клеточная инженерия // Лабораторно-практические занятия по сельскохозяйственной биотехнологии. М., — 1996. — С. 3- 57.
  92. А.В. Метод культивирования пыльников в селекции картофеля // Исследования по клеточной селекции картофеля. М., — 1984. — С. 62−68.
  93. Ф.Л. Выращивание незрелых зародышей в искусственных условиях // Тр. Ботан. сада Киев, ун-та. 19 516. -№ 20. — С. 46−58.
  94. Ф.Л. Культура изолированных зародышей, как возможный путь переделки природы растений // Тр. Ин-та физиологии растений 1951а, -№ 7, Вып. 7.-С. 153−192.
  95. Ф.Л. Культура незрелых зародышей редьки Raphanus sativus Z. в искусственных условиях // Докл. АН СССР. 1949. — Т.66, № 6. — С. 11 911 194.
  96. Ф.Л. Некоторые закономерности развития зародыша редьки Raphanus sativus Z. на материнском растении // Докл. АН СССР. 1950а. — Т.71. № 5.-С. 945−948.
  97. Ф.Л., Полищук В. Е. Фосфолипидный состав митохондриальных мембран нормальных и опухолевых клеток в культуре in vitro //Культура клеток растений: Тр. II Всесоюз. конф. Киев: Наукова думка, 1978.-С. 158−162.
  98. Ф.Л., Сарнацкая В. В., Полищук В. Е. Методы культуры тканей в физиологии и биохимии растений. Киев: Наукова думка, 1980. — 488 с.
  99. Ф.Л. До методики культивування незрших зародюв рослин // Доп. АН УРСР. 19 506. -№ 4. — С. 325−330.
  100. И.И. Регенерация растений из изолированных почек луков // Изв. АН КазССР / Сер. биол. 1982. — № 4. — С. 12−16.
  101. И.И., Рахимбаев И. Р. Органогенез в культуре изолированных тканей луков // Вестн. ФР КазССР. 1982. — № 9. -С. 43−47.
  102. Н.В., Аветисов В. А. Клональное размножение растений в культуре ткани // Культура клеток растений. М.: Наука, 1981. — С. 137−149.
  103. В.И. Рост растений. 2-е изд., перераб. и доп. М.: Колос, 1984. — 175 с.
  104. Н.С., Шелухин Н. В. Атлас по анатомии растений. Под ред. С. В. Калишевича. Минск: Вышэйшая школа, 1969. — 288 с.
  105. P.M., Клейн Д. Т. Методы исследования растений / Пер. с англ. и предисл. В. И. Мельгунова. М.: Колос, 1974. — 528 с.
  106. М.К., Шегебаев О. Ш. Размножение сахарной свеклы в культуре in vitro // Вестн. с.-х. науки Казахстана. 1989. -№ 8. — С. 22−26.
  107. А.В., Кравцов П. В. Влияние пиридоксина на рост изолированных зародышей яблони и груши в стерильной культуре // Физиология растений. 1973. — Т.20, Вып. 4. — С. 693−699.
  108. А.И. Колхицин и получение новых форм сельскохозяйственных растений. Л.: Колос, Ленингр. отд-ние, 1972 — 128 с.
  109. А.В. Использование молекулярных маркеров в работе с генетическими ресурсами растений // С.-х. биол., 1998. — № 5. — С. 3−25.
  110. А.И., Кузьменко А. Д. Получение межвидовых гибридов табака с помощью культуры тканей // 3-я Всесоюз. конф. Культура растительных клеток раст.: Тез. докл. Абовян, 1979. — С. 185−186.
  111. А.В. Мейоз. Мн., Изд-во БГУ, 1971. — 180 с.
  112. Е.А. Цито-эмбриология семейства зонтичных. Киев: Наукова думка, 1967.- 176 с.
  113. Е.Л., Веледницкая Д. Л. Особенности развития тапетума пыльника и микроспорогенез у ряда представителей Umbelliferae // Бот. журн. -1964. Т. 49. № 11. — С. 1609- 1615.
  114. Корнеева И. А, Долгов С. В. Получение трансгенных растений томата, несущих ген суперсладкого белка тауматина // Материалы Междунар. научнопракт. конф. по пасленовым культурам, Астрахань, 19−22 авг. 2003. -Астрахань, 2004. С. 119−125.
  115. Н.Т. Получение отдаленных гибридов лилий методом культуры зародышей на искусственной среде // Бюл. Главного бот. сада. 1981. -Вып. 120.-С. 77−80.
  116. П.В. Действие регуляторов роста на дифференциацию и органогенез зародышей плодовых растений в стерильной культуре // Применение физиологически активных веществ в садоводстве. 1974. — № 2. -С. 87−94.
  117. П.В. Рост изолированных зародышей яблони на среде с различными концентрациями агара в стерильной культуре // Бюл. науч. информ. Центр, генет. лаб. им. И. В. Мичурина. 1971. — № 18. — С. 43−48.
  118. П.В., Касьянова В. Г. Культура изолированных зародышей как метод преодоления стерильности отдаленных гибридов плодовых растений // Физиол. раст. 1968. — Т. 15, Вып. 5. — С. 931−933.
  119. П.В., Касьянова В. Г. Опыт применения изолированных зародышей для преодоления стерильности отдаленных гибридов плодовых растений // Тр. Центр, генет. лаб. им. И. В. Мичурина. 1969. — № 10. — С. 236 244.
  120. П.В., Кравцова J1.B. Культура изолированных зародышей и перспективы ее использования в селекции плодовых растений // Биофизические и физиолого-биохимические исследования плодовых и ягодных культур. М.: Колос, 1974.-С. 133−141.
  121. П.В., Кравцова JI.B. Рост изолированных зародышей и семян плодовых растений в условиях стерильной культуры при добавлении в питательную среду дрожжевого экстракта // Тр. Центр, генет. лаб. им. И. В. Мичурина. 1971. — № 12. — С. 241−244.
  122. П.В., Нафталиев Н. М. Влияние покровов семени и пониженных температур на зародыши яблони и груши при эксплантации в процессе развития. М., 1976. — Деп. в ВИНИТИ 14. 05. 76, № 1680−76.
  123. Г. Овощеводство / Пер. с нем. В. И. Леунова. М.: Колос, 2000. -576 с.
  124. В.А. Цитогенетическая изменчивость клеточных популяций в культуре изолированных тканей растений // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. М.: Колос, 1979. — С. 38−51.
  125. Г. А. Межродовая и межвидовая гибридизация плодовых культур и искусственная культура зародышей // Отдаленная гибридизация растений и животных. М.: Колос, 19 706. — Т.2. — С. 123- 126.
  126. Г. А. Опыт использования и пути применения искусственной культуры зародышей в селекции зимостойких форм плодовых растений // Биофизические и физиолого-биохимические исследования плодовых и ягодных культур. -М.: Колос, 19 746. С. 141- 145.
  127. Г. А. Опыт применения искусственной культуры зародышей при отдаленной гибридизации сливы // Тр. Центр, генет. лаб. им. И. В. Мичурина. 1967. -№ 9. — С. 120−124.
  128. Г. А. Применение изолированной культуры зародышей и тканей при отдаленной гибридизации // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. М.: Колос, 1979. — С. 70−77.
  129. Г. А. Применение искусственной культуры зародышей in vitro при отдаленных скрещиваниях косточковых культур // Тр. Цент, генет. лаб. им. И. В. Мичурина. 1974а. — № 15. — С. 11−22.
  130. Г. А. Применение культуры изолированных зародышей при отдаленной гибридизации сливы // Культура изолированных органов, тканей и клеток растений. М.: Наука, 1970а. — С. 47−50.
  131. Г. А., Дубовицкая JI.A., Мячина О. С. Некоторые особенности тканевых культур отдаленных гибридов косточковых растений // 3-я Всесоюз. конф. Культура растительных клеток раст.: Тез. докл. Абовян, 1979. — С. 193.
  132. Г. А., Панфилкина Т. И. Применение искусственной культуры зародышей при отдаленной гибридизации моравской рябины // Бюл. науч. информ. Центр, генет. лаб. им. И. В. Мичурина. 1976. -Вып. 23. — С. 3−6.
  133. Г. А., Панфилкина Т. И. Скрещиваемость и применение искусственной культуры зародышей при отдаленной гибридизации рябины // Бюл. науч. информ. Центр, генет. лаб. им. И. В. Мичурина. 1974. -Вып. 21. -С. 18−21.
  134. Кучеренко J1.A., Давоян Э. И. Культивирование незрелых зародышей риса // Бюл. науч. техн. информ. ВНИИ риса. 1975. — вып. 19. — С. 6−9.
  135. Кучеренко J1.A., Харченко П. Н., Давоян Э. И. О возможности применения методов культуры изолированных органов и тканей в селекции риса // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. М.: Колос, 1979. -С. 31−38.
  136. JI.A., Харченко П. Н., Давоян Э. И. О получении всходов из щуплых семян риса на питательных средах // Бюл. науч. техн. информ. ВНИИ риса.- 1975.-Вып. 16.-С. 3−5.
  137. А.А., Бутенко Р. Г., Тарасенко В. А. Соматическая гибридизация картофеля // С.-х. биология. 1983. — № 7. — С. 54−57.
  138. Н.В. Генетическая инженерия высших растений. Киев: Наукова думка, 1997.- 152 с.
  139. Г. Ф. Биометрия. 3-е изд., перераб. и доп. М.: Высшая школа, 1980.-293 с.
  140. М.Н. Разработка методов молекулярной оценки селекционного материала основных овощных культур (лук, морковь, капуста белокочанная) на основе RAPD технологии: Автореф. дис. канд. с.-х. наук. М., 1999. — 25 с.
  141. Н.И. Преодоление барьера несовместимости между видами Nicotiana при использовании опыления in vitro // 3-я Всесоюз. конф. Культура растительных клеток раст.: Тез. докл. Абовян, 1979. — С. 186.
  142. В.Г. Генно-инженерные методы в селекции груши обыкновенной (Pyrus communis L.) на устойчивость к биотическим и абиотическим факторам: Автореф. дис.. канд. биол. наук. -М., 2000. -20 с.
  143. В.А. Получение гаплоидов из пыльников растений // Экспериментальная полиплоидия у культурных растений. Киев: Наукова думка, 1974.-С. 25−39.
  144. В.А. Применение культуры изолированных клеток, тканей и органов растений в генетике и селекции // Общая генетика / Генетика и селекция сельскохозяйственных растений. М., 1978. — Т.5. — С. 158- 206.
  145. Е.В. Генетика изоферментов растений. Новосибирск: Наука, 1986.- 145 с.
  146. Г., Лабес Р., Эртель К., Петерсдорф М. Использование культуры тканей и органов в селекции растений и производстве посадочного материала: Пер. с нем. М.: Колос, 1980. — 77 с.
  147. В.И., Рыбалко А. А., Михеев Ю. Г., Клыгина Т. Э., Ховрин А. Н. Селекция и семеноводство моркови столовой. М., 2006. — 234 с.
  148. М.К. Морковь Daucus carota L. (биологические особенности, селекция и семеноводство, агротехника возделывания). — Пенза, 2001а.-144 с.
  149. Лу Чжихуа Культура изолированных пыльников тополей и естественное удвоение числа хромосом у дерева из пыльцы // Лесовод, лес. культуры и почвовед. Л., 1987. — С. 74−78.
  150. С.Ф., Игнатова С. А. Выявление генетического разнообразия у тритикале при получении гаплоидов // Адаптация и рекомбиногенез у культурных растений: Тез. докл. Всес. конф. Кишинев, 1979. — С. 61−62.
  151. С.Ф., Игнатова С. А., Максимов Н. Г., Максимова В. И., Шеремет A.M. Использование эмбриокультуры при отдаленных скрещиваниях пшеницы и ячменя с рожью // С.-х. биол. 1981. — Вып. 16, № 5. — С 735−739.
  152. С.Ф., Махновская М., Игнатова С. А., Максимов Н. Г. Роль генотипа в гаплопродукции тритикале // Науч.-техн. бюл. Всес. селекц.-генет. ин-та ВАСХНИЛ. 1988. — № 2. — С. 43−47.
  153. П.П. Применение биотехнологических методов в селекции и семеноводстве картофеля // Селекция и биотехнология картофеля / НИИ картоф. х-ва М., 1990. — С. 116−136.
  154. Т.В., Грыб У. М. Картэль М.А. Калусаутварэнне i рэгенерацыя раслш з двухтыдневых эмбрыёнауячменю // Весщ АН БССР. Сер. Б1ял. н., Изв. АН БССР. Сер. Б1ял. н. 1980. -№ 5. — С. 29−31.
  155. Н.В., Донец Н. В., Бутенко Р. Г. Использование культуры меристемы для клонального размножения огурца in vitro // Докл. ВАСХНИЛ.1989.-№ 8.-С. 11−13.
  156. И.М., Кучко А. А. Каллусогенез и эмбриогенез в культуре пыльников картофеля // Цитол. и генет. 1989. — Т.23, № 3. — С. 48−51.
  157. И.М., Кучко А. А., Бутенко Р. Г. Андрогенез и получение растений в культуре пыльников картофеля // Сельскохозяйственная биология.1990.-№ 1.- С. 138−143.
  158. И.М., Кучко А. А., Бутенко Р. Г. Физиологические аспекты получения гаплоидов картофеля методом культуры пыльников // Физиол. раст. 1988.-Т.35,№ 1.-С. 136−143.
  159. И.Я. Характер морфогенеза в размножении кочанной капусты в культуре ткани при использовании различных стимуляторов роста // С.-х. биология. 1981. — Т.16, № 2. — С. 246−252.
  160. И.Я., Крашенинник Н. В., Китаева И. Е. Разработка метода клонового размножения кочанной капусты в культуре ткани // Докл. ВАСХНИЛ. 1979. -№ 7. — С. 15−16.
  161. И.Я., Крашенинник Н. В., Китаева И. Е. Способ получения семян капусты // Авт. св. СССР, кл. АО 1Р1/04, № 816 439, заявл. 24.10.79, № 2 845 232/30−15, опубл. 30.03.81.
  162. И.Я., Полумордвинова И. В., Козлова Н. М. Клональное размножение растений лука и формирование полиплоидных форм in vitro // С.-х. биология. 1983. -№ 6. — С. 16−21.
  163. В.П., Рубцов М. И. Овощеводство. 3-е изд. перераб. и доп. -М.: Агропромиздат, 1985.-431 с.
  164. А.В. Методические указания по регенерации и размножению люцерны с использованием культуры тканей, клеток и протопластов. М.: Изд-во В АСХНИЛ. 1980.-25 с.
  165. Мелик-Саркисов О.С., Овчинников В. Н., Ульянов Р. П. Получение безвирусного посадочного материала картофеля микроклубнями, индуцированными в культуре in vitro: Методические рекомендации. М., 1985. -16 с.
  166. Т.В. Получение регенерантов капусты белокочанной методом андрогенеза // Молодые ученые интенсификации сельского хозяйства: Тез. докл. науч.-практ. конф., 26−27 июня 1990. Рига, 1990. — С. 90−91.
  167. М.А. Цитогенетические аспекты организации интерфазного ядра // Успехи соврем, биол. 1990. — Т. 100, Вып. 2, № 5. С. — 163−179.
  168. Г. С., Бутенко Р. Г., Тихоненко Т. И., Прокофьев М. И. Основы сельскохозяйственной биотехнологии. -М.: Агропромиздат, 1990. 384 с.
  169. Нам И. Я-Г. Оптимизация применения регуляторов роста и развития растений в биотехнологиях in vitro: Автореф. дис.. д-ра биол. наук. М., 2004.-43 с.
  170. З.В. К методике выращивания зародышей хлопчатника на искусственных питательных средах // Науч. тр. / Ташкент, ун-т. 1973 — Т. 439. -С. 271−271
  171. В., Венцель Г. Гаплоиды в селекции растений: Пер. с нем. М.: Колос, 1980.- 128 с.
  172. Новик Ф. И, Кубалакова М., Машкова И., Мичикова М. Влияние регуляторов роста на андрогенез хлорофильных мутантов Nicotiana tabacum // Цитол. и генет. 1980. — Т. 14, № 1. — С. 23−27.
  173. Н.Ф., Шумный В. К. Изучение особенностей культивирования in vitro у различных видов овсов // Изв. СО АН СССР Сер. биол. н. 1986. — № 6. — С. 71−76.
  174. Л.Г., Сыроватская А. П. Изучение регенерационной способности отдельных частей растения томата в культуре in vitro // Культура клеток растений и биотехнология: Тез. докл. IV Всесоюз. конф. 3−6 октября 1983 г. Кишинев, 1983. — С. 143−144.
  175. А.Н., Смирнов A.M. Использование культуры изолированных зародышей для улучшения качества белка в зерне кукурузы // Биологические основы повышения качества семян с.-х. растений. -М.: Наука, 1964. С. 73−79.
  176. М.К. Особенности возникновения клонов из отдельных клеток культивируемой ткани табака и их морфо-физиологические характеристики: Автореф. дис. канд. биол. наук. Киев, 1969. — 26 с.
  177. М.К., Банникова В. П. Преодоление перекрестной несовместимости при отдаленной гибридизации методом культуры незрелых гибридных семян // С.-х. биотехнология. 1974. — Т.9, № 1. — С.23−27.
  178. Н.К. Культура in vitro неоплодотворенных семяпочек Crepis tectorum L. // Культура клеток растений и биотехнология: Тез докл. IV Всесоюз. конф. 3−6 октября 1983. Кишинев, 1983. — С. 101.
  179. Д.К. Индуцированный морфогенез и микроразмножение in vitro зизифуса индийского (Zizyphus mauritiana Lam.) и китайского (Zizyphus jujuba Mill.): Автореф. дис. канд. биол. наук. Ялта, 1996. — 25 с.
  180. Н.Д. Стимуляция эмбриогенеза в пыльниках ячменя // Культура клеток растений: Тез. докл. 3-й Всесоюз. конф. Абовян, 1979. — С. 160−161.
  181. З.П. Практикум по цитологии растений. 4-е изд., перераб. и доп. — М.: Агропромиздат, 1988. — 271 с.
  182. З.П. Практикум по цитологии растений. М.: Колос, 1970. -255 с.
  183. М. Доросиев JI. Эфективност на индуцироания атдрогенез при култура на антери от тютюна в зависимост от състава на хранителната среда // Генет. и селекция. 1980. — Т.13, № 2. — С. 97−103.
  184. Э.С. Основы генетической инженерии растений. М.: Наука, 1988.-304 с.
  185. Р.Н., Абызова Л. В., Слюсаренко А. Г. Получение гаплоидных растений in vitro Gerbera jamesonii // Изв. АН СССР. Сур. биол. -1985.-№ 8.-С. 862−869.
  186. В.М. Действие нистатина на внутреннюю инфекцию семян моркови // Тр. по прикл. ботан., генет и селекции ВНИИ растениеводства. -1982а. -Т.71, Вып. 3. С. 145−146.
  187. В.М. Неоднородность начальных стадий каллусогенеза у различных эколого-географических подвидов моркови // Тр. по прикл. ботан., генет и селекции ВНИИ растениеводства. 19 826. — Т.71, Вып. 3. — С. 124−128.
  188. Н.А. Биометрия. 2-е изд. М.: Изд-во Московского университета, 1970. — 368 с.
  189. Поддубная-Арнольди В.А., Селезнева В. А. Выращивание орхидей из семян //Тр. Гл. бот. сада. 1953. — Т.З. — С. 106−124.
  190. Поддубная-Арнольди В.А., Селезнева В. А. Орхидеи и их культура. -М.: Изд-во АН СССР. 1957.
  191. B.C., Яшина С. Г., Олейникова Т. А. Размножение in vitro регенерантов томата из изолированных меристем // Физиол. раст. 1988. -Т.35,№ 3.-С. 612−617.
  192. В.Е., Калинин Ф. Л., Жуковская И. Л. Особенности ультраструктурного строения опухолевой ткани моркови // Электронная микроскопия в ботанических исследованиях: Тез доел. IV Всесоюз. симпозиума. Рига: Зинатне, 1978. — С. 205−208.
  193. А.В. Биотехнология в селекции льна. Тверь, 2000. — 180 с.
  194. А.В. Усовершенствование селекционного процесса льна-долгунца (Linum usitatissimum L.) на основе использования биотехнологических методов: Автореф. дис.. д-ра биол. наук. М., 1998. — 50 с.
  195. П.В. Применение агробактериальной трансформации в селекции белокочанной капусты на устойчивость к болезням: Автореф. дис.. канд. биол. наук. М., 2002. — 20 с.
  196. Ю.Г., Равкин А. С. Применение метода меристематических верхушек в селекционной работе с земляникой // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. М.: Колос, 1979. — С. 115−123.
  197. Ю.Г., Ускоренное размножение земляники с помощью метода культуры меристематических верхушек // С.-х. биология. 1977. — № 1. — С. 45−47.
  198. Н.И. Влияние условий выращивания донорских растений на андрогенез в культуре пыльников пшеницы (Triticum aestivum L.) // Сб. науч. тр. по прикл. ботан., генет. и селекции / ВНИИ растениевод. 1989. — Вып. 128. -С. 86−89.
  199. Н.И. Получение гаплоидных растений из пыльцевых зерен мягкой пшеницы (Triticum aestivum L.) // Тр. по прикл. ботан., генет. и селекции ВНИИ растениевод. 1980. — Т.67, № 3. — С. 75−79.
  200. Н.И., Воробьева Г. А. Получение амфидигаплоидов и амфидиплоидов Lycopersikon eskulentum Mill х L. peruvianum Mill в культуре in vitro // Культура клеток растений: Тез. докл. 3-й Всесоюз. конф. Абовян, 1979. С. 183−184.
  201. И.А., Крючков А. В., Комиссаров В.А Селекция и семеноводство овощных культур / Под ред. В. А. Комиссарова. М.: Колос, 1981.-447 с.
  202. И.Р., Тивари Ш., Бишимбаева Н. К., Кушнаренко С. В., Азимова Е. Д. Биотехнология зерновых культур. Алма-Ата: Гылым, 1992. -240 с.
  203. С.А. Цитология и физиология развивающегося пыльника. -М.: Наука, 1984.-272 с.
  204. И.А., Склонная Л. Я., Кожемякин А. В., Кузнецов С. И. Способ получения гаплоидного каллуса исчезающих видов кедра: А.С. 1 497 212 СССР, МЮГ С 12 N 5/00 -№ 4 522 500/28−13- Заявл. 17.03.87- Опубл. 30.07.1989
  205. Т.Н. Выращивание меристемных растений огурца (Cucumis sativus L.) // Пол у растений и гетерозис Рига, 1979. — С. 88−94.
  206. Т.Н. Морфогенез в культуре каллусной ткани огурца // Культура клеток растений и биотехнология: Тез. докл. IV Всесоюз. конф. 3−6 октября 1983 г. Кишинев, 19 836. — С. 89.
  207. Т.Н., Бутенко Р. Г., Мауриня Х. А. Действие физиологически активных веществ на сексуализацию растений огурца в условиях in vitro // Физиол. раст. 1981. — Т.28, № 6. — С. 1190−1197.
  208. Т.Н., Мауриня Х. А. Применение культуры изолированных апикальных меристем для изучения вопросов роста, развития и полоопределение у растений // Регуляция роста и метаболизма растений. -Таллин, 1983а.-С. 51−56.
  209. Т.Н., Мауриня Х. А. Размножение растений огурца в культуре in vitro // Культура клеток растений и биотехнология: Тез. докл. IV Всесоюз. конф. 3−6 октября 1983 г. Кишинев, 19 836. — С. 90.
  210. А.А. Корнеплодные культуры. Барнаул, 2005. — 23 с.
  211. JI. В., Буренин В. И., Тараканов Г. И. и др. Методические указания по селекции сортов и гетерозисных гибридов корнеплодных растений(морковь, свекла, редис, редька, репа, брюква, пастернак). М., 1987. -84 с.
  212. JI.B., Власова Э. А., Воскресенская В. В. Классификатор вида Daucus carota L. (Морковь мясистая). JI., 1990. — 27 с.
  213. В.В., Троян В. М., Желтоножская JI.B., Полищук В. Е., Яворская В. К., Ильченко JI.H., Мережинский Ю. Ю., Калинин Ф. Л. О связи индукции корончатогалловых опухолей растений с клеточным циклом // Цитология и генетика- 1976. Т. 10, № 5- С. 465−468.
  214. Е.А. Получение in vitro гибридов Lycopersikon eskulentum с Lycopersikon peruvianum Mill, в условиях Молдавии // Экол. генет. раст. и животн. Тез. докл. Всесоюз. конф. Кишинев, 1981. Ч. 2. — С. 215−216.
  215. Л.Б., Амерханова М. Б. Микроклональное размножение в исследованиях с сахарной свеклой // Проблемы теоретической и прикладной генетики в Казахстане: Матер, конф., 18−22 ноября 1990. Алма-Ата, 1990. — С. 114−115.
  216. А.Я., Потлайчук В. И. Болезни семян полевых культур. М.: Колос. Ленингр, отд-ние, 1982. — 128 с.
  217. И.В., Ларькина Н. И., Казачек Т. И. Гаплоидия как метод индуцирования рекомбинантов при межсортовой и межвидовой гибридизации табака // Экол. генет. раст. и животн.: Тез докл. Всес. конф. 1981. — Кишинев, 1981.-Ч. 2.-С. 132−133.
  218. Н.Ю. Разработка лабораторной технологии получения андрогенных растений белокочанной капусты с использованием культуры пыльников: Автореф. дис. канд. биол. наук. -М., 1992. 18 с.
  219. .И. Морковь Daucus L. // Культурная флора СССР. Корнеплодные растения. — Л.: Колос, 1971. — С. 267−373.
  220. Т.Н., Тюкавин Г. Б., Долгов С. В. Генетическая трансформация моркови // Биотехнология овощных, бахчевых, цветочных и малораспространенных культур: Сборник науч. трудов Междунар. научно-практ. конф. 22−25 марта 2004 г. М., 2004. — С. 110−113.
  221. А.А., Лукьянюк С. Ф., Игнатова С. А. Индукция гаплоидных растений тритикале при культивировании пыльников // Генет., селекц. и агротехн. тритикале. Одесса, 1980. — С. 7−20.
  222. B.C., Перышкина Н. Г. Искусственные почвы для растений. -Мн.: Наука и техника, 1985. 64 с.
  223. И.П., Иванов О. В. Возможность использования культуры зародышей при гибридизации огурца // Биологический сборник. Тамбов, 1972.-С. 79−80.
  224. Ю.Г., Лукьянюк С. Ф., Игнатова С. А. Получение гаплоидов тритикале методом культуры пыльников in vitro II Апомиксис у раст. и животн. / Тр. Биол. ин-та СО ФН СССР № 35. Новосибирск: Наука, 1978. — С. 206 210.
  225. .О. Разработка лабораторной технологии получения андрогенных растений моркови in vitro: Автореф. дис.. канд. с.-х. наук. М., 1991.-22 с.
  226. И.В., Башарова Т. В. Использование гелий-неонового лазера для увеличения частоты гаплоидии в культуре пыльников пшеницы // Апомиксис и цитоэмбриология растений Саратов, 1987. — С. 13−19.
  227. М.Ф., Бутенко Р. Г., Изман Г. В., Шинкарева И. К., Гаплоидные растения табака, полученные в культуре пыльников // Генетика. -1974.-Т.10, № 2.-С. 42−47.
  228. М.Ф., Бутенко Р. Г., Моисеева М. Е. Культура тканей и селекция растений // Полиплоидия и селекция. Минск, 1972. — С. 45−50.
  229. М.Ф., Изман Г. В., Сарычев Ю. Ф. Индуцированные in vitro андрогаплоиды и реституционные диплоиды как исходный материал для анализа и отбора признаков в синтетической селекции // Генетика. 1975. Т.11, № 9.-С. 8−14.
  230. М.Ф., Шинкарева И. К., Ларькина Н. И. Получение межвидовых гибридов табака путем опыления семяпочек in vitro // Генетика. -1976. Т.12, № 10. — С. 40−45.
  231. Ш. Регенерация гаплоидных растений в культуре пыльников ячменя // Каз. ун-т. Алма-Ата, 1988. — 15 с. — Деп. в КазНИИНТИ 04.03.88., 2003-Ка8 8.
  232. Н.И. Методы создания и идентификация генетических источников ценных признаков овощных растений (морковь, лук, салат): Автореф. дис. д-ра с.-х. наук. С.-Петербург, 1997. — 61 с.
  233. Н.И., Валеева З. Т., Пыжьянова Л. Г. Индуцированный апомиксис моркови и получение гомозиготных форм растений // Селекция овощных культур / Сб. науч. трудов. М., 1994. — Вып. 34. — С. 11−16.
  234. . Эмбриогенез, органогенез и регенерация растений // Биотехнология растений: культура клеток: Пер. с англ. М.: Агропромиздат, 1989.-С. 97−127.
  235. И.В. Преодоление постгамной несовместимости в скрещиваниях лука репчатого с дикими видами методом культуры зародышей // Культура клеток растений и биотехнология: Тез. докл. IV Всесоюз. конф. 3−6 октября 1983 г.-Кишинев, 1983.-С. 190.
  236. И.И., Тимин Н. И., Юрьева Н. А., Дмитриева Н.Н Применение метода культуры изолированных зародышей в межвидовой гибридизации лука // Тр. ВНИИ селекции и семеновод, овощ, культур. 1982. — Вып. 15. — С. 5765.
  237. А.А., Поляков А. В. Регенерация растений огурца in vitro II Биотехнология овощных, бахчевых, цветочных и малораспространенных культур: Сборник науч. трудов Междунар. научно-практ. конф. 22−25 марта 2004 г.-М., 2004.-С. 118−121.
  238. .П. Целебные яды растений. 2-е изд. перераб. Л.: Лениздат, 1974.-344 с.
  239. .П. Целебные яды растений. Повесть о фитонцидах. 3-е изд. испр. и доп. Л.: Изд-во Ленингр. ун-та. 1980. — 280 с.
  240. Л.Н., Волкова Т. В., Миренкова Н. Н. Метод культуры тканей в картофелеводстве // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. -М.: Колос, 1979.-С. 123−128.
  241. JI.H., Остапенко Д. П., Бойко В. В., Зейрук Т. В., Донец Н. В. Оздоровление и ускоренное размножение семенного картофеля: Методические рекомендации. М., 1985. — 35 с.
  242. A.M. Каллусогенез и деградация микроспор в культуре пыльников хлопчатника // Проблемы современной биологии / Тр. 17 Науч. конф. мол. ученых биол. фак. МГУ, 22−25 апр., 1986. М., 1986. — Ч. 1. — С. -186−190. — Деп. в ВИНИТИ 12.09.86. № 6642-В.
  243. A.M., Шамина З. Б. Оптимизация состава среды для культивирования пыльников хлопчатника // Физиол. раст. 1986. — Т. ЗЗ, № 3. -С. 565−571.
  244. Н.В. Генетика гетерозиса и методы селекции растений на комбинационную способность // Генетические основы селекции растений. М.: Наука, 1971.-С. 112−155.
  245. Н.И., Матушкина О. В., Пронина И. Н. Методические указания по микроклональному размножению клоновых подвоев яблони и груши. -М., 1996. 17 с.
  246. B.C. Гаплоидия у растений: Научное и прикладное значение. -М.: Наука, 1998.-53 с.
  247. Г. Б. Культура пыльников моркови метод ускоренного получения фертильных линий для гетерозисной селекции // Селекщя овочевих i баштанних культур на гетерозис: Тез. допов. М1жнар. наук. конф. — Харюв, 1996.-С. 81−82.
  248. Г. Б. Получение неинфицированных зародышей моркови для культивирования in vitro // Селекция овощных культур / Сб. науч. трудов. М., 1989.-Вып. 28. — С.81−86.
  249. Г. Б., Таганов Б. О. Эмбриогенез в культуре пыльников растений моркови in vitro // Селекция овощных культур / Сб. науч. трудов. М., 1993.-Вып. 32.-С. 12−15.
  250. Г. Б., Таганов Б. О., Наумова С. В. Индукция эмбриогенеза при культивировании пыльников моркови // Embryology and seed reproduction: Proc. XI Int. Symp. July 3−7, 1990. St. Petersburg, Nauka, 1992. — P. 562−563.
  251. Г. Б., Тимин Н. И., Буракова И. А. Использование методов культуры тканей растений in vitro в селекции моркови // Науч. техн. бюл. ВИР. -Л., 1989.-Вып. 192.-С. 57−60.
  252. Г. Б., Тимин Н. И., Валеева З. Т., Буракова И. А. Эмбриокультура в создании константных линий моркови // Биология культивируемых клеток и биотехнология: Тез. докл. Междунар. конф., 2−6 авг. 1988. Новосибирск, 1988. — Ч. 2. — С. 239−240.
  253. Г. Б., Тимин Н. И., Титова И. В. Использование методов культуры тканей в селекции овощных культур // Селекция овощных культур / Сб. науч. трудов. М., 1984. — Вып. 18. — С. 43−48.
  254. Г. Б., Шмыкова Н. А. Методические рекомендации по получению дигаплоидов моркови методом андрогенеза. М.: Россельхозакадемия, 2000. — 56 с.
  255. Г. Б., Шмыкова Н. А., Монахова М. А. Цитология эмбриогенеза в культуре пыльников моркови // Физиология растений. 1999. — Т. 46., № 6. -С. 876−883.
  256. Ю.Н., Макаров А. А. Статистический анализ данных на компьютере / Под ред. В. Э. Фигурнова. М.: ИНФРА-М, 1988. — 528 с.
  257. Л.А. Криосохранение и хранение генофонда // Биотехнология растений: культура клеток: Пер. с англ. М.: Агропромиздат, 1989. — С. 204 233.
  258. Л.И. Культура in vitro репродуктивных органов томатов и перспективы ее использования: Автореф. Дис. канд. биол. наук. М., 1982. -23 с.
  259. Л.И. Органогенез в каллусных тканях огурца (Cucumis sativus L.) // Культура клеток растений и биотехнология: Тез. докл. IV Всесоюз. конф. 3−6 октября 1983 г. Кишинев, 1983. — С. 88−89.
  260. Л.И. Получение гибридных семян томатов опылением пестиков in vitro // Физиология и биохимия культурных растений. 1981. — Т. 13, № 1. -С. 77−80.
  261. Э.К., Мезенцев А. В., Рубцов М. И. Межвидовая гибридизация клевера с использованием культуры зародышей // Селекция и семеноводство. -1980.-№ 1.-С. 16−18.
  262. Н.Р. Морфогенетические и цитоэмбриологические особенности онтогенеза апомиктичных растений сахарной свеклы (Beta vulgaris L.): Автореф. дис.. канд. биол. наук. Рамонь, 2003. — 24 с.
  263. П.Н. Получение гаплоидов и гомозиготных линий у риса методом in vitro: Автореф. дис. канд. биол. наук. Л., 1986. — 25 с.
  264. П.Н., Кучеренко Л. А. Получение растений риса из пыльников // Докл. ВАСХНИЛ. 1977. — № 4. — С. 15−16.
  265. П.Н., Шиловский В. Н. Использование метода культуры пыльников в ускорении селекционного процесса // Доклады ВАСХНИЛ. 1982. — № 9. — С. 24−25.
  266. А. Современное состояние и перспективы биотехнологии растений: Лекция. М., 1986. — 42 с.
  267. Л.В., Ермишин А. П. Каллусообразование и стеблевой органогенез в культуре in vitro у дителоцентрических линий мягкой пшеницы сорта Чайниз Спринг // Докл. АН БССР. 1979. — т.23, № 1. — С. 85−87.
  268. С.С., Гришина Е. В., Зайцева М. И., Тырнов B.C. Малышева-Шишкинская Н.А. Гаплоидия у покрытосеменных растений. Саратов: Изд-во Сарат. ун-та, 1970. — Ч. 1. — 140 с.
  269. С.С., Тырнов B.C. Гришина Е. В. Гаплоидия и селекция. М.: Наука, 1976.-221 с.
  270. А.Х., Здруйковская-Рихтер А.И. Новые перспективные сорта груши раннего срока созревания, полученные in vitro II Бюл. Никитского ботан. сада. 1976. — Вып. 3(31). — С. 66−69.
  271. Л.М. Культивирование верхушечных меристем картофеля для оздоровления сортов от вирусных болезней // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. -М.: Колос, 1979. С. 128−137.
  272. К.Г., Голиадзе Ш. К., Кашакашвили Ц. С. Использование культуры пыльников для получения гаплоидных растений цитрусовых // Субтроп, культуры. 1982. -№ 5. — С. 72−76.
  273. Цанци JL, Цанци А. Цели и принципы микроразмножения // Технический доклад. М., 1981. — 5 с.
  274. Е., Георгиева Й., Загорска Н., Язови М. Цитологично и цитохимично проучване на андрогенез при цитоплазмено мъжкостерилии тютюни // Генет. и селекция. 1981. — Т. 146 № 1. — С. 3−12.
  275. Н.В., Петрова К. А. О гибридизации пшеницы с элимусом гигантским // Отдаленная гибридизация в семействе злаковых. М., 1958, — С. 19−40.
  276. М.Х., Бутенко Р. Г., Кулаева О. Н., Кефели В. И., Аксенова Н. П. Терминология роста и развития высших растений. М.: Наука, 1982. 96 с.
  277. А.А., Челак В. Р., Мошкович A.M., Архипенко М. Г. Эмбриология зерновых, бобовых и овоще-бахчевых возделываемых растений. -Кишинев: Штиинца, 1987.-228 с.
  278. Т.В. Динамка i характер росту зародюв жита, вирощуваних в штучних умовах // Доповщ АН УРСР. 1974. -Б, № 2. — С. 171−173.
  279. Т.В. Получение триплоидных растений ржи методом культуры зародышей // Новые методы создания и использования исходных материалов для селекции растений. Киев, 1979. — С. 52−60.
  280. Т.В. Цитогенетическое изучение триплоидных гибридов ржи, полученных с помощью культуры зародышей // Структура и генетические функции биополимеров. Киев, 1975. — С. 38.
  281. Т.В., Шевцов И. А. Преодоление нескрещиваемости автотетраплоидных и диплоидных растений ржи путем культуры зародышей // Цитология и генетика. 1972. — Т. 6, № 6. — С. 512−515.
  282. А.Е., Минкевич И. И., Власов Ю. И., Гаврилова Е. А. Основные методы фитопатологических исследований. М.: Колос, 1974. — 192 с.
  283. З.Б. Андрогенез и получение гаплоидов в культуре пыльников и микроспор // Культура клеток растений. М.: Наука, 1981. — С. 124−136.
  284. З.Б., Тураев A.M., Мусаев Д. А. Способность к каллусогенезу в культуре пыльников хлопчатника // Цитол. и генет. 1986. — Т.20, № 4. — 276— 280.
  285. И.А., Чугункова Т. В. Применение культуры зародышей для преодоления нескрещиваемости растений // Цитология и генетика. 1973. — Т. 7,№ 6.-С. 546−553.
  286. И.К., Шамина З. Б., Сарычев Ю. Ф., Загорска Н. А., Краевой С. Я. Анеуплоидия в семенном потомстве регенерантов, полученных в культуре ткани табака // Генетика. 1973. — Т.9, № 2. — С. 21−28.
  287. Н.А. Культура пыльников, неопыленных завязей и семяпочек лука репчатого // Научные труды по селекции и семеноводству. М., 1995. — Т. 1.-С. 164−170.
  288. Н.А., Тюкавин Г. Б. Диморфизм пыльцы и андрогенез в культуре пыльников моркови (Daucus carota L.) // Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и ветеринарии: Тез. докл. II Междунар. науч. конф. 18−19 октября 2000. М., 2000. — С. 55−56.
  289. Н.А., Тюкавин Г. Б. Диморфизм пыльцы и оценка эмбриогенной способности микроспор различных генотипов моркови // Сельскохозяйственная биология. 2001. — № 5. — С. 53−61.
  290. Н.А., Тюкавин Г. Б., Особенности морфогенетических изменений в культивируемых in vitro пыльниках моркови // Биотехнология. -2002.-№ 5.-С. 65−69.
  291. В.К., Першина J1.A. Получение ячменно-ржаных гибридов и их клонирование методом культивирования изолированных тканей // Докл. АН СССР. 1979. — Т. 249, № 1. — С. 209−210.
  292. Т.В., Тюкавин Г. Б., Долгов С. В. Генетическая трансформация моркови (Daucus carota L.) // Новые направления биотехнологии: Тез. докл. VIII конф. 27 29 апреля 1998. — М., 1998а. — С. 34.
  293. Т.В., Тюкавин Г. Б., Долгов С. В. Генетическая трансформация моркови (Daucus carota L.) // III Пущинская конф. молодых ученых: Тез. докл. -Пущино, 19 986.-С. 104−105.
  294. Н.И. Метод культуры зародышей в генетико-селекционном изучении косточковых растений // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. М.: Колос, 1979. — С. 85−93.
  295. Н.И. Применение метода культуры зародышей в селекции косточковых // Докл. АН СССР. 1973. -Т. 208, № 4. — С. 998−999.
  296. Д., Крулева М., Загорска Н. Индуциране на андрогенезис в антерни култури от домати // Генет. селек. 1990. — Т.236 № 3. — С. 185−193.
  297. В.И. Овощеводство. 3-е изд. перераб. М.: Сельхозиздат, 1962.-440 с.
  298. Г. Н., Галецкая Г. Р. Регенерационная способность коллекционных образцов культурного томата // Пробл. теор. и прикл. генет. в Казахстане: Матер. Респ. конф., Алма-Ата, 18−22 ноября 1990 г. Алма-Ата, 1990.-С. 122−123.
  299. Г. Н., Сирант Л. В., Труханов В. А. Прямая регенерация растений из мезофильных клеток растений // Цитол. и генет. 1989. Т.23, № 1. — С. 6869.
  300. С.П., Кожин А. В., Луткова Е. Н., Дубовицкая Л. А. Разработка способов культивирования недоразвитых зародышей и завязей груши // Тканевые и клеточные культуры в селекции растений. М.: Колос, 1979. — С. 93−99.
  301. А.А., Костенко С. И. Особенности микроклонального размножения кормовой свеклы // Докл. ВАСХНИЛ. 1988. -№ 10. — С. 15−17.
  302. Abo El-Nill М.М. Organogenesis and embryogenesis in callus cultures of garlic (Allium sativum L.) // Plant Science Letters. 1977. — N9. — P. 259−264.
  303. Agache S., Bachelier В., Buyser J., Henry Y., Snape J. Genetic analysis of anther culture response in wheat using aneuploid, chromosome substitution and translocation lines // Theor. and Appl. Genet. 1989. — V.77, N 1. — P. 7−11.
  304. Ahloowalia B.S. Somatic embryogenesis and plant regeneration in Eruca sa-tiva // Crop. Sci. 1987. — V. 27, N 4. — P. 813−814.
  305. Ahmim M., Vieth J. Production de plantes haploides de Gerbera jamesonii par culture in vitro d’ovules // Can. J. Bot. 1986. — V.64, N 10. — P. 2355−2357.
  306. Alissa Asad, Serieys Herve, Jonard Robert Sur les possibilies de regeneration d’especes sauvages et d’hybrides interspecifiques du genre Helianthus par an-drogenese in vitro // C. r. Acad. Sci. 1985. — Ser. 3,300, N 1. — P. 25−30
  307. Ammirato P.V. Carrot // Handbook of plant cell culture / Eds D.A. Evans et al. New York: Macmillan, 1986. — V.4. — P. 457199.
  308. Ammirato P.V. Embryogenesis // Handbook of plant cell culture / Eds D.A. Evans et al. New York: Macmillan, 1983. — V. l — P. 82−123.
  309. Ammirato P.V. Patterns of development in culture // Tissue culture in forestry and agriculture / Eds R.R. Henke et al. New York: Plenum Press, 1985. — P. 9−29.
  310. Anadjieva M. Cytological investigation of Datura innoxia Mill, plants by an-drogenesis in vitro // Fert. and Embryogenes. Ovulated Plants: Proc. 7 Int. Cytoem-bryol. Symp., High Tatra (Rackova dolina), June 14−17, 1982. Bratislava, 1983. -P. 381−384.
  311. Anagnostakis S.L. In vitro culture of immature embryos of American elm // Hort. Sci. 1977. — V. 12, N 1. — P. 44.
  312. Anand V.V., Arekal G.D., Swamy B.G.L. Chimeral embryoids of pollen origin in tobacco // Curr. Sci. (India). 1980. — V.49, N 15. — P. 603−604.
  313. Anand V.V., Arekal G.D., Swamy B.G.L. Foliar histology of androgenetic haploid «vegetative» and «generative» tobacco // Cur. Sci. (India). 1981b. — V.50, N7.-P. 327−328.
  314. Anand V.V., Arekal G.D., Swamy B.G.L. Variation among flowers of androgenetic tobacco haploids // Curr. Sci. (India). 1981a. — V.50, N 8. — P. 372−373.
  315. Andersen S.B. Anther Culture in Carrot // Hereditas Suppl. 1985. — V.3, N 12.-P. 132.
  316. Arnison P.G., Keller W.A. A survey of the anther culture response of Bras-sica oleracea L. Cultivars grown under field conditions // Plant Breed. 1990. -V.104, N2.-P. 125−133.
  317. Arora R., Bhojwani S.S. Production of androgenic plants through pollen em-bryogenesis in anther cultures of Brassica carinata F. Braun. // Biol, plant. 1988. -V.30, N 1. — P. 25−26.
  318. Aruna M., Reddy G.M. Genotypic differences in callus initiation and plant regeneration from anthers of Indica rice // Curr. Sci. (India). 1988. — V.57, N 18. -P. 1014−1017.
  319. Arya I., Chandra N. Organogenesis in anther-derived Callus culture of cow-pea (Vigna unguiculata (L.) walp. // Curr. Sci. (India) 1989. — V. 58, N 5. — P. 257 259.
  320. Aslam Ferre N., MacDonald M.V., Ingram D.S. Rapid-cycling Brassica species: anther culture potential of B. campestris L. and B. napus L. // New Phytol. -1990. V. l 15, N 1. — P. 1−9.
  321. Assani A., Bakry F., Kerbellec F., Haicour R., Wenzel G., Foroughi-Wehr B. Production of haploids from anther cultured of banana (Musa balbisiana) // Plant Cell Repts. 2003. — V.21, N 6. — P. 511−516.
  322. Assay Bah B. Culture in vitro d’embryons zygotiques de cocotiers // Oleagi-neux. 1986. — V.41, N 7. — P. 321−328.
  323. Babbar S.B., Gupta S.C. Chemicals affecting androgenic response of Datura metel. Glutamine, glutamic acid, serine inositol // Beitr. Biol. Pflanz. 1985. — V.60, N3.-P. 459−466.
  324. Babbar S.B., Gupta S.C. Pathways in pollen sporophyte development in anther cultures of Datura metel and Petunia hybrida // Beitr. Biol. Pflanz. 1984. -V.59, N3.-P. 475−488.
  325. Babnik J., Bohanec B. Raziskava metoda in vitro mikropropagaciue vecih genotipov radica (Cichorium intybus L. var. foliosum Hegi) // Zb. Biotehn. fac. Univ. Ljubljani. 1988. -N 51. — P. 181−185.
  326. Badea E., Raicu P. Experimental androgenesis in Datura innxia plants with different of ploidy (2л, 4n, 6n) Rev. roum. biol. Ser. biol. veg. 1983. — V.28, N 1. -P. 59−61.
  327. Badea E.M., Prisecaru M., Angheluta R. Studies on gynogenesis in intraspecific and interspecific hybrids in genus Helianthus // Cercetary de Genetica Vegetalasi Amimala.- 1989.-N l.-P. 177−183.
  328. Baenziger P. S., Wesenberg D.M., Smail V.M., Alexander W.L., Schaeffer G.W., Agronomic performance of wheat doubled-haploid lines derived from cultivars by anther culture // Plant Breed. 1989. — V.103, N 2. — P. — 101−109.
  329. Bagga S., Bhalla-Sarin N., Sopory S.K., Guha-Mukheijee S. Comparison of in vitro plant from somatic tissues and pollen grains in Brassica oleracea var. botrytis. // Phytomorphology. 1982. — V.32, N 2−3. — P. 152−156.
  330. Bajaj Y.P.S. Enhancement of the in vitro development of Triticale embryos by the endosperm of durum wheat // Cereal. Res. Commun. 1980. — V. 8, N 2. — P. 359−364.
  331. Bajaj Y.P.S. In vitro induction of haploids in wheat (Triticum aestivum L.) // Crop Improv. 1977. — N 4. — P. 54−64.
  332. Bajaj Y.P.S. In vitro production of haploids // Handbook of plant cell culture: Techniques for propagation and breeding / Eds D.A. Evans et al. New York, London.: Macmillan, 1983. — V.l. — P. 228−287.
  333. Bajaj Y.P.S. Regeneration of haploid tobacco plants from isolated pollen grown in drop culture // Indian J. Exp. Biol. 1978. — V. l6. — P. 407−409.
  334. Bajaj Y.P.S., Gosch G., Ottma M., Weber A., Grobler A. Production of polyploid & aneuploid plants from anthers & mesophyll protoplasts of Atropa belladonna & Nicotiana tabacum // Indian J. Exp. Biol. 1978. — v.16, N 9. — P. 947−953.
  335. Bajaj Y.P.S., Labana K.S., Dhanju M.S. Induction of pollen-embryos and pollen callus in anther cultures of Arachis hypogaea and A. glabrata // Protoplasma. -1980a. V.103, N 4. — P. 397−399.
  336. Bajaj Y.P.S., Ram A.K., Labana K.S., Singh H. Regeneration of genetically variable plants from the anther-derived callus of Arachis hypogaea and Arachis vil-losa // Plant Sci. Lett. 1981. — V.23, N 1. — P. 35−39.
  337. Bajaj Y.P.S., Singh H. In vitro induction of androgenesis in mung bean Phaseolus aureus L. // Indian J. Exp. Biol. 1980. — V. l8, N 11. — P. 1316−1318.
  338. Bajaj Y.P.S., Verma M.M., Dhanju M.S. Barley X-rye hybrids (Hordecale) through embryo culture // Curr. Sci. (India). 1980b. — V. 49, N 9. — P. 362−363.
  339. Balaga H.Y., Guzman E.V. The growth and development of coconut «maka-puno» embryos in vitro // Philipp. Agr. 1970. — V. 53. N 10. — P. 551−565.
  340. Balestrazzi A., Carbonera D., Cella R. Transformation of Daucus carota hy-pocotyls mediated by Agrobacterium tumefaciens // Genet. & Breed. 1991. — V 45. -P. 135−140.
  341. Barloy D., Denis L., Beckert M. Comparison of the aptitude for anther culture in some androgenetic doubled haploid maize lines // Maydica. 1989. — V.34, N 4.-P. 303−308.
  342. Beaville M.A. Obtention d’haploides in vitro a partir d"ovaries non fecondes de Riz, Oruza sativa L. // C. r. Acad. Sci. 1980. — V.290. N 6. — P. 489−492.
  343. Bellincampi D., Morpurgo G. A method for high plating efficiency in Daucus carota cell cultures // G. Bot. ital. 1984. — V. l 18, N 1−2, suppl. 1. — P. 85−86.
  344. Bendadis A. Culture des cellules isolees: le probleme du conditionnement des milieux de culture // Les cultures de tissus de plantes CNRS: Strasbourg 5−7 mai 1975.-Strasbourg, 1968.-P. 121−129.
  345. Benhamou N., Broglie D., Chet I., et al. Cytology of infection of 35S-bean chitinase transgenic canola plants by Rhizoctonia solani: cytochemical aspects of chi-tin breakdown in vivo // The Plant Journal 1993. — N 4. — P. 295−305.
  346. Bergmann L. A. Growth and division of single cells of higher plants in vitro // J. Gen. Physiol. 1960. — V.43, N 4. — P. 841−851.
  347. Bergmann L.A. A new technique for isolation and cloning single cells of higher plants // Nature. 1959. — V. 184, N 4686, sappl. 9. — P. 648−649.
  348. Bernard S. Study of some factors in vitro androgenesis of hexaploid Triticale // Ann. Amelior Plant. 1977. — V. 27, N 6. — P. 639−655.
  349. Bernard S., Picard E., Buyser J. Obtention de plantes haploides de Triticale hexaploides (X Triticosecale Wittmack) par cultyre in vitro d antheres // C. r. Acad. Sci. 1976. — D283, N 3. — P. 235−238.
  350. Bevan M. Binary Agrobacterium vectors for plant transformation // Nucleic Acids Res. 1984.-N 12.-P. 8711−8721.
  351. Bhojwani S.S. Differentiation of haustoria in the geminating embryos of mistletoe without host stimulus // Experientia. 1969. — V.25, N 5. — P. 543−544.
  352. Bhojwani S.S. In vitro propagation of garlic by shoot proliferation // Sci. Hortic. 1980. — V. l3, N 1. — P. 47−52.
  353. Birnberg P.R., Somers D.A., Brenner M.L. Characterization of conditioning factors that increase colony formation from «Black Mexican Sweet Corn» protoplasts // J. plant Physiol. 1988. — V. 132, N 3. — P. 316−321.
  354. Bjornstad A., Opsahl-Ferstad H.G., Aasmo M. Effects of donor plant environment and light during incubation on anther cultures of some spring wheat (Triti-cum aestivum L.) cultivars // Plant Cell. Tissue and Organ Cult. 1989. — V.17, N 1. -P. 27−37.
  355. Blakeslee A.F., Belling J., Farnham M.E., Berger A.D. A haploid mutant in Datura stramonium // Science. 1922. — V.55. — P. 646−647.
  356. Blanke M.M., Balcher A.R. Stomata of apples leaves cultured in vitro // Plant Cell Tiss. Org. Cult. 1989. — V. 19. — P. 85−89.
  357. Bogouspaev K.K., Kudarov B.R., Anapiaev B.B., Rahimbaev I.R. Division and embryogenesis in isolated microspores of wheat culture // Embryology and seed reproduction: Abstracts XI Int. Symp. July 3−7,1990. Leningrad, 1990. — P. 23.
  358. Bohorova N., Atanasov A., Georgieva-Todorova J In vitro organogenesis, androgenesis and embruo culture, in the genus Helianthus L. // Z. Pflanzenzucht. -1985. V.95, N 1. — P. 35−44.
  359. Bohorova N.E. In vitro plant development of seeds of Helianthus interspecies hybrids // Докл. Болг. АН. 1982. — Т. 35, № 1. — С. 105−107.
  360. Boladjiev P., Cuong P.V. Cytological and physiological studies of some varieties and FI hybrids of rice, Oryza sativa, using the method of anther culture // Bionature. 1988. — V.8, N 1. — P. 41−46.
  361. Boppenmeier J., Zuchner S., Foroughi-Wehr B. Haploid production from barley yellow dwarf virus resistant clones of Lolium // Plant Breed. 1989. — V.103, N3.-P. 216−220.
  362. Bornman C.H. Haploidization of sugar beet (Bet vulgaris) via gynogenesis // In vitro.- 1985.-N1.-P.3.
  363. Borojevic K., Sesek S., Radojevic L. Responses of different genotypes on development of callus from anther cultures of wheat // Nucl. Techn. and in vitro Cult. Plant Improv: Proc. Int. Symp., Vienna, 19−23 Aug., 1985. Viena, 1986. — P. 233−237ю
  364. Borovec V. Micropropagace zimnich odrud kvetaku // Zahradnictvi. 1988. -V.15, N 1. P. 21−28/
  365. Borovec V. Vtristemova kultura linii ruzickove kapusty (Brassica oleracea L. var. gemmifera D.C.) // Bull. vyzk. slecht. Ust. zelin. Olomouc, 1986. — Bull. 30. -P. — 31−45.
  366. Borovec V., Krivsky R. Mikropropa^ace slechtitelskych linii zele Brassica oleracea L. var. capitata (L.) // Alef Sbornik UVTIS Zahradnictvi. 1987. — V.14, N 2.-P. 105−118.
  367. Bossoutrot D., Hosemans D. Gynogenesis in Beta vulgaris L.: From in vitro culture of unpollinated ovules to the production of doubled haploid plants in soil // Plant Cell Rep. 1985. — V.4, N.6. — P. 300−303.
  368. Bourgin J.P., Nitsch J.P. Obtention de Nicotiana haploidesa partir d’etamines cultivees in vitro // Ann. Physiol. Veg. 1967. — V.9. — P. 377−382.
  369. Bouvinet J., Rabechault H Recherches sur la culture in vitro des embiyons de palmier a huile // Oleagineux. 1965. — V.20, N 2. — P. 79−87.
  370. Brachard M., Chateau M. Obtention de plantes de Melon (Cucumis melo L.) par embryogenese somtique // C. r. Acad.sci. Ser. 3. 1988. — V. 307, N 16. — P. 777−780.
  371. Brainerd K.E., Fuchigami L.H. Acclimatization of aseptically cultured apple plants to low relative humidity // J. Amer. Soc. Hort. Sci. 1981. — V. 106. — P. 515— 518.
  372. Braser L. G, Harvey C.F. Somatic embryogenesis from anther-derived callus in two Actinidia species // Sci. hort. (Neth.) 1986. — V.29, N 4. — P. 335−346.
  373. Broekaert W.F., Terras F.R.G., Cammue B.P.A., Obsborn R.W. Plant de-fensins: Novel antimicrobial peptides as components of the host defense system // Plant. Physiol. 1995. — V. 108. — P. 1353−1358.
  374. Broglie K., Chet I., Holliday M. et al. Transgenic plants with enhanced resistance to the fungal pathogen Rhizoctonia solani // Science 1991. — V. 254. — P. 1194−1197.
  375. Brooks H.J., Hough L.F. Vernalization studies with peach embryos // Amer. Soc. Hort. Sci. 1958. — V.71.- P. 95−102.
  376. Broue P., Douglass j., Grace J, P., Marshall D.R. Glycine species indigenous to Australia via embryo culture // Euphytica. 1982. — V.31, N3. — P. 715−724.
  377. Bullock W.P., Baenziger P. S., Schaeffer G.W. Anther culture of wheat (Triticum aestivum L.) Ffs and their reciprocal crosses // Theor. and Appl. Genet. -1982.-V. 62, N.2.-P. 155−159.
  378. Burk L.G., Gwynn G.R., Chaplin J.F. Diploidized haploids from aseptically cultured anthers of Nicotiana tabacum. Acolchicine method applicable to plant breeding // J. Hered. 1972. — V.63, N 6. — P. 355−360.
  379. Burk L.G., Matzinger D.F. Variation among anther-derived doubled haploids from an inbred line of tobacco // J. Hered. 1976. — V.67, N 6. — P. — 381−384.
  380. Buyser J., Henry Y. Androgegenese sur des bles tendres de selection 1. Г obtention des plantes in vitro // Z. gflarzenzucht. 1979. — V.83, N 1. — P. 49−56.
  381. J., Henry Y., Lonnet R. «Fiorina» doubled haploid wheat variety // Plant Breed. 1987. — V.98. — P. 53−56.
  382. Campion В., Azzimonti M.T. Evolution of ploidy level in haploid plants of onion (Allium сера) obtained through in vitro gynogenesis // EUCARPIA Sec. Vegetables: Proc. 4th Allium Symp., Coventry, 6−9 Sept., 1988. — Wellesbourne, 1988.-P. 85−89.
  383. Campion В., Azzimonti M.T., Vicini E., Schiavi M., Falavigna A. Advances in haploid plant induction in onion (Allium сера L.) through in vitro gynogenesis // Plant Sci. 1992. — V.86. — P. 97−104.
  384. Campion В., Perri E., Azzimonti M. T, Vicini E., Schiavi M. Spontaneous and induced chromosome doubling in gynogenic lines of onion (.Allium сера L.) // Plant Breeding. 1995.- V. 114. — P. 243−246.
  385. Caplin S.M. Mineral oil overlay for conservation of plant tissue cultures // Amer. J. Bot. 1959. — V.46. — P. 324−330.
  386. Cappadocia M., Ahmim M. Comparison of two culture methods for the production of haploids by anther culture in Solanum chacoense // Can. J. Bot. 1988. -V.66, N 5. — P. 1003−1005.
  387. Cappadocia M., Cheng D.S.K., Ludlum-Simonette R. Plant regeneration from in vitro culture of anthers of Solanum chacoense Bitt. and interspecific hybrids S. tuberosum L. x S. chacoense Bitt. // Theor. and Appl. Genet. 1984. — V.69, N 2. -P. 139−143.
  388. Cappadocia M., Cheng D.S.K., Ludlum-Simonette R. Self-compatibility in doubled haploids and their Fj hybrids, regenerated via anther culture in self- incompatible Solanum chacoense Bitt. // Theor. and Appl. Genet. 1986. — V.72, N 1. — P. 66−69.
  389. Cappadocia M., Chretien L., Laublin G. Production of haploids in Gerbera jamesonii via ovule culture: influence of fall versus spring sampling on callus formation and shoot regeneration // Can. J. Bot. 1988. — V.66. — P. 1107−1110.
  390. Cappelades M., Fontarnau R., Carulla C., Debergh P. Environment influences anatomy of stomata and epidermal cell in tissue-cultured Rosa multiflora // J. Amer. Soc. Hort, Sci. 1990. — V. 115. — P. 141−145.
  391. Carlson P. S. Methionine sulfoximide resistant mutants of tobacco // Science. 1973. — V. 180, N 4093. — P. 1366−1368.
  392. Castillo A.M., Cistue L. Production of gynogenic haploids of Hordeum vul-gare L. // Plant Cell Rep. 1993. — V.12. — P. 139−143.
  393. Cauderon Y. Hybridation interspecifique etamelioration des plantes. 1. Evolution des voies d’etude des relations entre especes // C. r. Acad. agr. France. 1981. -V. 67, N12.-P. 1001−1012.
  394. Ceapoiu N. Ingineria genetica. Perspective de utilizare in transformarea plantelor si animalelor // Probl. genet, teor. si apl. 1982. — V.13, N 6. — P. 323−337.
  395. Cersosimo A Colture in vitro di antere in Vitis sp. // Riv.viticolt. e. enol. -1986.-V. 39, N12.-P. 520−531.
  396. Chakravarty В., Sen S. Regeneration trough somatic embryogenesis from anther explants of Scilla indica (Roxb.) Baker //Plant Cell, Tissue and Organ Cult. -1998. -V.19.N1.- P. 71−75.
  397. Chandler J.M., Beard R.H. Embryo culture of Helianthus hybrids // Crop. Sci. 1983. -V. 23, N 5. — P. 1001−1007.
  398. Chandra N, Hildebrandt A.C. Differentiation of plants from tobacco mosaic virus inclusion- bearing and inclusion-free single tobacco cells // Virology 1967. -V31, N 3. — P. 414−421.
  399. Chandy L.P., Narayanaswamy S. Diploid and haploid androgenic plantlets from haploid Datura in vitro // Indian J. Exp. Biol. 1971. — V.9, N 4. — P. M2-A15.
  400. Charmet G., Bernard S., Bernard M. Origin of aneuploid plants obtained by anther culture in triticale // Can. J. Genet, and Cytol. 1986. — V.20, N 3. — P. 444 452.
  401. Chaturvedi H. C, Sharma A.K. Androgenesis in Citrus aurantifolia (Christm.) Swingle. // Planta. 1985a. — V.165, N 1. — P. 142−144.
  402. Chaturvedi H. C, Sharma A.K. Production of androgenic plants of Citrus aurantifolia // J. Plant Physiol. 1985b. — V. l 19, N 5. — P. 47377.
  403. Chee Paul P. Somatic embryogenesis and plant regeneration of squash Cu-curbita pepo L. cv. YC 60 // Plant. Cell. Repts. 1991. — V.9< N 11. — P. 620−622.
  404. Chen C.C., Chen C.M. Changes in chromosome number in microspore callus of rice during successive subcultures // Can. J. Genet, and Cytol. 1980. — V.22, N 4. -P. 607−614.
  405. Chen Z., Kasha K.J., Marsolais A. Segmentation patterns and mechanisms of genome multiplications in cultured microspores of barley // Can. J. Genet, and Cytol. 1984. — V.26, N 4. — P. 475−483.
  406. Z., Liao H. Изучение в культуре пыльников in vitro индукции гаплоидных растений чая // J. Fujian Agr. Coll. 1988. — V.17, N 3. — P. 185−190.
  407. Chen Z., Quian C., Xu X., Deng Z. Anther culture techniques of rubber tree and sugarcane // Plant Tissue Cult.: Proc. 5 Int. Congr. Plant Tissue and Cell. Cult. Tokyo and Lake Yamanaka, July 11−16,1982. Tokyo, 1982a. — P. 533−534.
  408. Z., Wang M., Liao H. Индукция пыльцевых растений Citrus на искусственной среде // Acta genet, sinica. 1980. — V.7, N 2. — P. 180−191.
  409. Cheng Wan-eheng, Kuo Li-chuan, Kuan Yu-Ian, Huang Chao-hsiang, An His-pri, Ku Ming-kuang Индукция эмбриоидов в культуре пыльников кукурузы // Acta genet, sinica. 1978. — V.5, N 4. — P. 274−280.
  410. Chopra R.N. In vitro culture of ovaries of Althaea rosea Cav. // Proc. Seminar Mod. Dev. Plant Physiol. / Ed. P Maheshwari. Delhi, 1958. — P. 87−89.
  411. Chowdhyry M.K.U. An improved method for dihaploid production in Nico-tiana rustica through anther culture // Theor. and Appl. Genet. 1984. — V.69, N 2. -P. 199−204.
  412. Chu C. Haploids in plant improvements // Plant improvement and somatic cell genetics / Eds. J Vasil et al. New York: Academic Press, 1982. — P. 129−158.
  413. Chu Q, Zhang L. Цитогенетика анеуплоидов, происходящих из пыльцевых растений риса // Acta genet, sci. 1985. — V. l2, N 1. — P. 51−60.
  414. Chua B.K., Chen Y.H., Omar O. Anther culture of rice hybrids 1854 and 1856 // MARDI Res. Bull. 1984. — V. 12, N 3. — P. 275−280.
  415. Chuang C., Duyang Т., Chia H. A set of potato media for wheat anther culture // Proc. of Symposium of Plant Tissue Culture. Peking: Science Press, 1978. -P. 51−56.
  416. Chueca M.C., Cauderov Y., Tempe J. Technique d’obtention d’hybrides Ble tendrexAegilops par culture in vitro d’embryons immatures // Ann. amelior. plant. -1977.-V. 27, N5.-P. 539−547.
  417. Chuong P.V., Deslauriers C., Roff L., Beversdorf W.D., Effects of donor genotype and bud sampling on microspore culture of Brassica napus // Can. J. Bot. -1988. V.66, N 8. — P. 1653−1657.
  418. Clapham D. Haploid Hordeum plants from anthers in vitro // Z. Pflanzen-ziicht. 1973. — V.69, N 2. — P. 142−155.
  419. Clausen R.E., Mann M.C. Inheritance in Nicotiana tabacum. V. The occurrence haploid plants in interspecific progenies // Proc. Nat. Acad. Sci. 1924. — V.10. -P. 121−124.
  420. Collins G. B, Genovesi A.D. Anther culture and its application to crop improvement // Application of Plant Cell and Tissue Culture to Agriculture and Industry / Eds. D.T. Tomes et al. Canada: Univ. of Guelph, 1982. — P. 1−25.
  421. Collins G.B. Production and utilization of anther derived haploids in crop plants // Crop. Sci. 1977. — V. l7, N 4. — P. 583−586.
  422. Collins G.B., Legg P.D., Kasperbauer M.J. Use of anther-derived haploids in Nicotiana. 1. Isolation of breeding lines in total alkaloid content // Crop. Sci. 1974. -V. 14, N 1. — P. 77−80.
  423. Conner L.N., Conner A.J. Comparative water loss from leaves of Solanum laciniatum plants cultured in vitro and in vivo II Plant. Sci. Let. 1984. — V.36. — P. 241−246.
  424. Cooper K.V., Dale J.E., Lyne R.L., Walker J.L. Early development of hybrids between barley and rye // 8th Congr. and Gen. Assem. EUCARPIA: Interspec. Hybrid. Plant Breed. Madrid, 1977. — P. 37.
  425. Corduan G. Isozyme variation as an indicator for the generative or somatic origin of anther-derived plants of Digitalis purpurea L. // Z. Pflanzenzucht. 1976. -V.76, N l.-P. 47−55.
  426. Corduan G. Regeneration of anther-derived plants from Hyoscyamys niger L. // Planta. 1975. — V.127. — P. 27−36.
  427. Cossette F., Pauze F.J. La production de lignees d’orge haploides et diploi-des homozygotes par culture d’antheres // Rev. can. biol. exp. 1983. — V.42, N 1. -P. 45−49.
  428. Coulibaly Y., Demarly Y. Androgenese in vitro chez Oryza sativa (var. Ci-galon) a partir d’antheres conservees dans Г azote liquide (-196 °C) // Agron. Trop. (France). 1979. — V.34, N 1. — P. 74−79.
  429. Craig I.L. Haploid plants (2n = 21) from in vitro anther culture of Triticum aestivum // Can. J. Genet. 1974. — V. l6, N 3. — P. 697−700.
  430. Crespan M., Cipriani G., Vischi M., Olivieri A.M. Individuzione dela micro e macrosporogenesi in orzo (Hordeum vulgare L.) e primi resultati comparativi della colture «in vitro» di antere e ovari // Riv. agron. 1988. — V.22, N 2. — P. 89−93.
  431. Crouch M.L. Non-zygotic embryos of Brassica napus L. contain embryo-specific storage proteins // Planta. 1982. — V. 1982, N 6. — P. 520−524.
  432. Custers J.B.M, Kruit S. Embryo culture with Cucumis species // Plant Tissue Cult.: Proc. 5 Int. Congr. Plant Tissue and Cell. Cult., Tokyo and Lake Yamanaka, July 11−16,1982.- Tokyo, 1982.-P. 777−778.
  433. Custers J.B.M., Bergervoet J.H.W. In vitro culture of embryos of Cucumis spp.: Heart-stage embryos have a higher ability of direct plant formation than advanced-stage embryos // Sex. Plant Reprod. 1990. — V.3, N 3. — P. 152−159.
  434. D’Halluin K., Keimer B. Production of haploid sugarbeets (Beta vulgaris L.) by ovule culture // Gen. Manipulat. Plant Breed.: Proc. Int. Symp., Berlin (West), September 8−13,1985. Berlin, New York, 1986. -P. 307−309.
  435. Dahmen W.J., Mock J.J. Effects of nutrient-media composition on growth of seedlings from intact seeds and excised embryos of maize // Crop. Sci. 1972. -V.12, N4. — P. 549−550.
  436. Davojan E.I., Rymar V.T. Production of haploid rice plantlets from unfertilized ovaries in vitro // Plant Tissue and cell culture application to crop improvement: Abst. Int. Symp. Czechoslovakia, September 24−29, 1984. — Olomouc, 1984. -P. 38.
  437. Deaton W.R., Metz S.G., Armstrong T.A., Mascia P.N., Genetic analysis of the anther-culture response of three spring wheat crosses // Genetics 1987. — V. l 16, Nl. Pt 2. — Suppl., 26.
  438. Debata B.K., Patnaik S.N. In vitro culture of anther of Crotalaria pallida Ait. for induction of haploid // Indian J. Exp. Biol. 1983. — V.21, N 1. — P. 44−46.
  439. Debata B.K., Patnaik S.N. Induction of androgenesis in anther cultures of Solanum viarum Dunal. // Plant Physiol. 1988. — V. 133, N 1. — P. 124−125.
  440. Dehne J., Leike H., Claus E., Kohler H. Die Gewebekultur und ihre Bedeutung fur die Getreidezuchtung // Tagungsber. Akad. Landwirtschaftswiss. DDR. 1977. — N 154. — P. 81−86.
  441. Devreux M., Laneri U. Anther culture haploid plant, isogenic line and breeding researches in Nicotiana tabacum L. // Polyploidy and Induced Mutations Plant Breeding. Vienna, 1974.-P. 101−107.
  442. Devreux M., Laneri U., Martinis P. Reflexions sur nos cultures d’antheres de plantes cultivees // G. bot. ital. 1975. V.109, N 6. — P. 335−349.
  443. Devreux M., Saccardo F. Mutazioni sperimentali osservate su plante haploidi di tabacco ottenute per colture in vitro di antere irradiate // Atti. Assoc. genet, ital. -1971.-N 16.-P. 69−71.
  444. Dietrich K. Uber kultur von embryonen ausserhalb desbsamens // Flora. -1924.-V.17.-P. 379−417.
  445. Dieu P., Beckert M. Further studies of androgenetic embryo production and plant regeneration from in vitro cultured anthers in maize (Zea mays L.) // Maydica. -1986,-V.31,N3.-P. 245−259.
  446. Ding-Gang H., Jun-Wen O. Callus and plantlet formation from cultured wheat anthers at different developmental stages // Plant. Sci. Lett. 1984. — V.33. -P. 71−79.
  447. Doctrinal M., Sangwan R.S., Sangwan-Norreel B.S. In vitro gynogenesis in Beta vulgaris L.: Effects of plant growth regulators, temperature, genotypes and season // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 1989. — V.17, N 1. — P. 1−12.
  448. Dolezel J., Novak F.J., Luzny J. Embryo development and in vitro culture of Allium сера and its interspecific hybrids // Z. Pflanzenziicht 1980. — V. 85, № 3. -P. 177−184.
  449. Dollmantel H.J., Reinert J. Auxin levels, antiauxin (s) and androgenic plantlet formation in isolated pollen cultures of Nicotiana tabacum // Protoplasma. 1980. -V.103.N2.-P. 155−162.
  450. Dore, c. Evaluation du niveau de plo’fdie des plantes d’une population de choux de Bruxelles (Brassica oleracea L. ssp. gemmifera) d’origine pollinique // Agronomie. 1986. — V.6, N 10. — P. 797−801.
  451. Dos Santos Rozely F., Handro W., Floh Eny I.S. Ploidy in Petunia hybrida plants regenerated from tissue cultures // Rev. bras. bot. 1983. — V.6, N 1. — P. 3339.
  452. Dostal J., Skladal V. Klonovani kvetaku (Brassica oleracea L. var. botrytis (L.) Alef.) in vitro // Sbornik uvtiz -Zagradnictvi. 1978−1979. — V. 5−6. — P. 177 185.
  453. Douglas G.C., Wetter L.R., Keller W.A., Setterfield G. Production of sexual hybrids of Nicotiana rusticaxN. tabacum and N. rusticaxn. Glutinosa via in vitro culture of fertilized ovules // Z. Pflanzenziicht. 1983. — V.90, N 2. — P. l 16−129.
  454. Drira N., Benbadis A. Analyse, per culture d’antheres in vitro, des potentiali-tes androgenetiques de deux especes de citrus (Citrus medica L. et Citrus limon L. Burm.) // C. r. Acad. sci. 1975. — D 281, N 18. — P. 1321−1324.
  455. Du L., Hou Y., Chang W., Zhao Y., li A., Shao Q, Yang Z., Chen Z. Индукция растений из пыльцы и получение клонов Fritillaria ussuriensis // Acta genet, sin. 1986. — V. 13, N 4. — P. 262−265.
  456. Dumas V.R., Chambonnet D. Obtention of embryos and plants from in vitro culture of unfertilized ovules of Cucurbita pepo // Gen. Manipulat. Plant Breed.: Proc. Int. Symp., Berlin (West), September 8−13, 1985. Berlin, New York, 1986. -P. 295−297.
  457. Duncan E.J., Heberle E. Effect of temperature shock on nuclear phenomena in microspores of Nicotiana tabacum and consequently on plantlet production // Pro-toplasma. 1976. — N 9. — P. 173−177.
  458. Dunstan D.I., Short K.C. Improved growth of tissue cultures of the onion, Allium сера // Physiol. Plant. 1977a. — V.41. N 1. — P. 70−72.
  459. Dunstan D.I., Short K.C. In vitro studies on organogenesis and growth in Allium сера tissue culture // Acta. Hortic. 1977b. — V.78. — P. 139−148.
  460. Dunstan D.I., Short K.C. Shoot production from cultured Allium porrum tissues // Sci. Hortic. 1979a. — V. 11, N 1 -P. 37−43.
  461. Dunstan D.I., Short K.C. Shoot production from onion callus tissue cultures // Sci. Hortic. -1978. V.9, N 2. — P. 99−110.
  462. Dunstan D.I., Short K.C. Shoot production from the flower head of Allium сера L. // Sci. Hortic. 1979b. — V. 10. — P. 345−356.
  463. Dunwell J.M. A comparative study of environmental and developmental factors which influence induction and growth in cultured anthers of Nicotiana tabacum. II Environ. Exp. Bot. 1976. — V.16. — P. 109−118.
  464. Dunwell J.M. Haploid cell cultures // Plant cell culture: Practical approach / Ed. R.A. Dixon. Oxford, Washington., 1985. — P. 21−36.
  465. Dunwell J.M., Cornish M., Courcel A.G.L., Middlefell-Williams J.E. Induction and growth of microspore-derived embryos of Brassica napus ssp. oleifera // J. Exp. Bot. 1983. — V.34, N 149. — P. 1768−1778.
  466. Dunwell J.M., Cornish M., Courcell A.G.L. Influence of genotype, plant growth temperature and anther incubation temperature on microspore embryo production in Brassica napus ssp. oleifera // J. exp. Bot. 1985. — V.36, N 165. — P. 679— 689.
  467. Dunwell J.M., Sunderland N. Anther culture of Solanum tuberosum L. // Euphytica. 1973. — V.22. — P. 317−323.
  468. Durr A., Fleek J. Production of haploid plants of Nicotiana langsdorffii // Plant Sci. Lett. 1980. — V.18, N 1. -P. 75−79.
  469. Duysen M., Medich C. Anther culture of wheat and triticale // Proc. N. D. Acad. Sci.- 1987.-N41.-P. 10.
  470. Eapan S., Rao P. S. Factors, controlling embryogenesis in triticale and wheat // Proc. Indian Nat. Sci. Acad. 1985. — В 51, N 3. — P. 353−359.
  471. Edens L., Heslinga L., Ledeboer A.M., Maat j., Toonen M.Y., Visser C. Ver-rips C.N. Cloning of cDNA encoding the sweet-testing plant protein thaumatin and its expression in Escherichia coli // Gene. 1982. — V.18, N 1. — P. 1−12.
  472. Edwards K., Johnstone C., Thompson C. F simple and rapid method for the preparation of plant genomic DNA for PCR analysis // Nucleic Acids Res. 1991. -V.19, N 6. — P. 1349.
  473. Elbern B. Antherenkultur und regeneration haploider pflanzen von mohn (Papaver somniferum) // Landbauforsch. Volkenrode. 1984. — V.34, N 1. — P. 6366.
  474. Engvild K.C. Growth and chlorophyll formation of dark-grown pine embryos on different media // Physiol. Plant. 1964. — V. 17, N 4. — P 866−874.
  475. Engvild K.C. Plantlet ploidy and flower-bud size in tobacco anther cultures // Hereditas. 1974. — V.76. — P. 320−322.
  476. Engvild K.C., Linde-Laursen I., Lundquist A. Anther cultures of Datura in-noxia: Flower bud stage and embryoid level of ploidy. // Hereditas. 1972. — V.72. -P. 331−332.
  477. Erickson R.O. Cytological and growth correlations in the flower bud and anther of Lilium longiflorum // Amer. J. Bot. 1948. V.35. — P. 729−739.
  478. Eriksson T. Effects of ultraviolet and X-ray radiation on in vitro cultivated cells of Haplopappus gracilis // Physiol, plant. 1967. — V.20, N 3. — P. 507−518.
  479. Espinasse A., Lay C., Dybing C.D. Factors controlling in vitro development of sunflower embryos // Agronomie. 1985. — V.5, N 9. — P. 825−832.
  480. Evans D.A., Flick C.E., Kut S.A., Reed S.M. Comparison of Nicotiana ta-bacum and Nicotiana nesophila hybrids produced by ovule culture and protoplast fusion // Theor. and Appl. Genet. 1982. — V. 62, N 3. — P. 193−198.
  481. Evans D.A., Palmyra, Morrison R.A. Tomato anther culture: Пат. 4 835 339 США, МКИЛ A 01 H 1/04, A 01 H 1//00 Заявл. 14.02.86- Опубл. 30.05.1989- НКИ 800/1
  482. Fadel F., Wenzel G. Medium-genotype-interaction on androgenetic haploid production in wheat // Plant Breed. 1990. — V. 105, N 4. — P. 278−282.
  483. Falavigna A., Hussey G. Moltiplicazione in vitro della cipolla (Allium сера) // Genet. Agr. 1980. — V.34, N 1−2. — P. 165−166.
  484. Fang Guo-wei, Liang Hai-men. Studying of value of processing by a cold on efficiency of anther culture of rice // Acta phytophysiol sin. 1985. — V. l 1, N 4. P. 366−380.
  485. Feng G.H., Ouyang J.W. Fertility of Triticum aestivum plants derived from anther culture // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 1989. — V.18, N 2. — P. 227 230.
  486. Ferrant V., Bouharmont V. Origin of gynogenic embryos of Beta vulgaris L. // Sex. Plant Reprod. 1994. — N 7. — P. 12−16.
  487. Fils-Lycaon B.R., Wiersma P.A., Eastwell K.C., Sautiere P. A cherry protein and its gene, abundantly expressed in ripening fruit, have been identified as thau-matin-like // Plant Physiology. 1996. — V. l 11. — P. 269−273.
  488. Fitch M.M., Moore P.H. Haploid production from anther culture of Saccha-rum spontaneum L. // Z. Pflanzenphysiol. 1983. — V.109, N 3. — P. 197−206.
  489. Flinn B. S., Webb D.T., Georgis W. In vitro control of caulogenesis by growth regulators and media components in embryonic explants of eastern white pine (Pinus strobus) // Can. J. Bot. 1986. — V.64, N 9. — P. 1948−1956.
  490. Forche F., Neumann R.H. Der einflu (3 verschiedener kulturfaktoren auf die gewinnung haoloider pflanzen aus antheren von Datura inoxia und Nicotiana tabacum ssp. // Z. Pflanzenzucht. 1977. — V.79, N 3. — P. 250−255.
  491. Foroughi-Wehr В., Friedt W. Rapid production of recombinant barley yellow mosaic virus resistant Hordeum vulgare lines by anther culture // Theor. and Genet. -1984. V.67, N4. P. 377−382.
  492. Foroughi-Wehr В., Friedt W. Responsiveness to anther culture of Hordeum vulgare cv. 'Dissa' and its parents // Barley Genet. Newslett 1981. — N. 11 — P. 5053.
  493. Foroughi-Wehr В., Friedt W., Wenzei G. On the genetic improvement of an-drogenetic haploid formation in Hordeum vulgare L. // Theor. and Appl. Genet.1982. V. 62, N. l 13. — P. 233−239.
  494. Foroughi-Wehr В., Friedt W., Wenzei G. Field experiments with anther derived lines of barley (Hordeum vulgare) and rye (Secale cereale) // Plant. Cell. Cult. Crop Improv.: Proc. Int. Symp., Calcutta, 6−10 Des., 1981. New York, London, 1983.-P. 475−483.
  495. Foroughi-Wehr В., Mix G., Gaul H., Wilson H.M. Plant production from cultured anthers of Hordeum vulgare L. // Z. Pflanzenzucht 1976. — V.77, N 3. — P. 198−204.
  496. Foroughi-Wehr В., Pickering R., Wolfgang F. Related response of barley cultivars to the «bulbosum» and anther culture techniques of haploid production // Barley Genet. Newslett. 1981. — N 11. — P. 54−59.
  497. Fossard R.A. Terminology in «haploid» work // Haploids in higher plants. -Guelph, 1974. P. 40310.
  498. Friedt W. Autotetraploids derived from anther culture of winter barley (Hordeum vulgare L.) // Barley Genet. Newslett. 1984. — N 14. — P. 68−69.
  499. Friedt W., Foroughi-Wehr B. Microspore derived chromosome number and structural variants of barley (Hordeum vulgare L.) // Barley Genet. Newslett. 1980. -N10.-P. 16−20.
  500. Fromm M.E., Taylor L.P., Walbot V. Expression of genes transferred into monocot and dicot cells by electroporation // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1985. -V.82.-P. 5824−5825.
  501. Fu L., Tang D. Индукция регенерантов в культуре пыльников Litchi chinensis // Acta genet, sin. 1983. — V. 10, N 5. — P. 369−374.
  502. Fujieda K., Ando Y., Fujita Y. Propagation of welsh onion through shoot tip culture // J. Fac. Agr. Kyushu Univer. 1977. — V.22. -P. 89−98.
  503. Fujieda K., Matsuoka N., Fujita Y. Vegetative multiplication of onion Allium сера L. // Jap. J. Soc. Hortic. Sci. 1979. — V. 48. — P. 186−194.
  504. Fujimura Т., Komamine A. Mode of action of 2,4-D and zeatin on somatic embryogenesis in carrot cell suspension culture // Z. Pflanzenphysiol. 1980. — V.99. -P. 1−8.
  505. Gabr M.F., El-Henawy H. M" Sabour A.M. In vitro regeneration of date palm embryos as affected by 2ip concentration and period of daily light exposure // Egypt. J. Hort. 1986. — V. l3, N 1. — P. 49−53.
  506. Galieva E.R., Kuchin M.D., Abramov S.N. Ultrastructure of wheat anther wall cells at the early stages of culture. // Embryology and seed reproduction: Abstracts XI Int. Symp. July 3−7, 1990. Leningrad, 1990. — P. 46.
  507. Gamborg O.L., Eveleigh D.E. Culture methods and detection of glucanases in cultures of wheat and barley // Can. J. Biochem. 1968. — V.46, N 5. — P. 417 421.
  508. Gao Xiuyun Андрогенез и формирование растений из пыльцы картофеля // Acta Hortic. Sin. 1988. — V. 15, N 4. — P. 264−267.
  509. Gathercole R.W.E., Street H.E. Isolation, stability and biochemistry of p-fluorophenylalanineresistant cell line of Acer pseudoplatanus L. // New Phytol. -1976. -V. 77, N 1. P. 29−41.
  510. Gaul H., Foroughi-Wehr В., Mix G., Wilson H.M. Plants produced by barley anther culture: Further observations // Acta. biol. jugosl. 1976. — F8, N 2. — P. 111 118.
  511. Gautheret R.J. Sur la possibilite de realiser la culture indefmie des tissus de tubercules de Carotte // Compt. Rend. Acad. Sci. 1939. — V.208. — P. 118−121.
  512. Gelebart P. Obtention de plantes haploi’des par culture in vitro d’ovaires non fecondes d’Helianthus annuus L. Bui. Soc. Bot. France. Acta Bot. 1986. — V. 133, N4.-P.71.
  513. Gelebart P., San L.H. Obtention de plantes haploi’des par culture in vitro d’ovaires et d’ovules non fecondes de tournesol (Yelianthus annuus) // Agronomie. -1987. -V.7.- 81−86.
  514. Genovesi A.D., Collins G.B. In vitro production of haploid plants of corn via anther culture // Crop. Sci. 1982. — V.22, N 6. — P. 1137−1144.
  515. Ghosh В., Sen S. Somatic embryos in Asparagus cooperi Baker. // Curr. Sci. 1989. — V.58, N 5. — P. 256−257.
  516. Gibson M.S. Diploid plant production from ovule cultures of sugarbeet // Proc. N. D. Acad. Sci. 1987. — V. 41, N 11. — P. 11.
  517. Giewart J. McD., Hsu C.L. Hybridization of diploid and tetraploids cottons through in-ovulo embryo culture // J. Hered. 1978. V. 69, N 6. — 404−408.
  518. Gilbert M.O., Zhang Y.Y., Punja Z.K. Introduction and expression of chiti-nase encoding genes in carrot following Agrobacterium-mediated transformation // In vitro Cellular and Developmental Biology Plant. 1996. — V 32, N 3. — 171−178.
  519. Gill B.S., Waines J.G., Sharma H.C. Endosperm abortion and the production of viable Aegilops Squarrosa x Triticum boeoticum hybrids by embryo culture // Plant. Sci. Lett. 1981. — V. 23, N 2. — P. 181−187.
  520. Gorecka K., Krzyzanowska D. The use androgenesis in vitro to obtain homozygous lines of vegetable plants // Vegetable Crops Bull. 2001. — V.54. — P. 711.
  521. Gorecki R., Gorecka K., Krzyzanowska D., Kozik E., Nowak R., Adasik B. Rooting and adaptation of androgenic carrot plants // Vegetable Crops Bull. 2001. -V.54.-P. 25−28.
  522. Gosal S.S., Bajaj Y.P.S. Interspecific hybridization between Vigna mungo and Vigna radiata through embryo culture // Euphytica. 1983. V.32, N 1. — P. 129— 137.
  523. Goska M., Jassem B. Histological observation of sugar-beet ovules in in vitro cultures // Bull. Pol. Acad. Sci., Biol. Sci. 1988. — V.36, N 7−9. — P. 171−175.
  524. Gregory F.G., Purvis O.N. Studies in vernalization of cereals // Ann. Bot. New. Ser.- 1938.-N2.-P. 5.
  525. Gresshoff P.M., Doy C.H. Development and differentiation of haploid Ly-copersicon eskulentum (tomato) // Planta. 1972a. — V.107. — P. 161−170.
  526. Gresshoff P.M., Doy C.H. Haploid Arabidopsis thaliana callus and plants from anther culture // Aust. J. Biol. Sci. 1972 b. — V.25. — P. 259−264.
  527. Griga M., Sladky Z. Regeneration of plantlets from ovules of carnation (Di-anthus caryophyllus L.) after placental pollination in vitro // Scripta Fac. Sci. Nat. Univ. Purk. Brun. 1982. — V.12, N 8. — P. 377−381.
  528. Grout B.W.W. Was development on leaf surfaces of Brassica oleracea var. Currawong regenerated from meristem culture // Plant. Sci. Let. 1975. — V.5. — P. 401−405.
  529. Grout B.W.W., Aston M.J. Transplanting of cauliflower plants regenerated from meristem culture: I. Water loss and water transfer related to changes in leaf wax to xylem regeneration // Hort. Res. 1977. — V. 17. — P. 1−7.
  530. Grunewaldt J., Malepszy S. Beobachtungen an antherenkallus von Hordeum vulgare L. // Z. Pflanzenzucht 1975. — V. 75, N 1. — P. 55−61.
  531. Grzebelus D., Szklarczyk M., Michalik B. The use of RAPD markers for genotype identification of carrot lines and F. hybrids // J. Appl. Genet. 1997. -V.38A.-P. 33−41.
  532. Guha S., Maheshwari S.C. Development of embryoids from pollen grains of Datura in vitro // Phytomorphology. 1967. — V. 17. — P. 454−461.
  533. Guha S., Maheshwari S.C. In vitro production of embryos from anthers of Datura // Nature. 1964. — V.204. — P. 497.
  534. Gupta P.P. Microspore derived haploid, diploid and triploid plants in Petunia violacea Lindl. // Plant Cell Repts. 1983. — V.2, N 5. — P. 255−256.
  535. Guzman E.V. The growth and development of cocoanut «makapuno» embryo in vitro // Philipp. Agr. 1970. — V.53, N 10. — P. 566−579.
  536. Guzman E.V. The growth and development of cocoanut «makapuno» embryo in vitro 1. The induction of rooting // Philipp. Agr. 1969. — V.53, N 2. — P. 6578.
  537. Hadwiger M.A., Heberle-Bors E. Pollen plant production in Triticum tur-gidum ssp. durum // Gen. Manipulat. Plant Breed.: Proc. Int. Symp., Berlin (West), Sept. 8−13,1985. Berlin, New York, 1986b. — P. 303−305.
  538. Hadwiger M.A., Heberle-Bors E. Pollen plant production in Triticum tur-gidum spp. durum // Nucl. Techn. and in vitro Cult. Plant Improv.: Proc. Int. Symp., Vienna, 19−23, Aug., 1985.-Vienna, 1986a.-P. 213−220.
  539. Halberg N., Olesen A., Tuvesson I.K.D., Andersen S.B. Genotypes of perennial ryegrass (Lolium perenne L.) with high anther-culture response through hybridization // Plant Breed. 1990. — V.105, N 2. — P 89−94.
  540. Hammerschlag F.A. Factors influencing the frequency of callus formation among cultured peach anthers // Hort Science. 1983. — V. l 8, N 2. — P. 210−211.
  541. Han-min Y., Keppenne V.D., Beenziger P. S., Berke Т., Lieng G.H. Effect of genotype and medium on wheat (Triticum aestivum L.) anther culture // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 1990. — V.21, N 3. — P. 253−258.
  542. Hanning E. Uber die kultur von Cruciferen embryonen ausserhalb des embryosacks // Bot. Zeitung. 1904. — V.62. — P. 45−80.
  543. Hansen G., Chilton M.-D. «Agrolistic» transformation of plant cell integration of T-strands generated in plant // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1996. — V. 93. -P.14 978−14 983.
  544. Harada H., Kyo M., Imamura J. Induction of embryogenesis and regulation of the developmental pathway in immature pollen of Nicotiana species // Curr. Top. Dev. Biol. -Orlando, 1986. V.20. — P. 397−417.
  545. Hassawi D.S., Liang G.H. Affect of cultivar, incubation temperature, and stage of microspore development on anther culture in wheat and triticale // Plant Breed. 1990. — V.105, N 4. — P. 332−336.
  546. Hassawi D.S., Sears R.G., Liang G.H. Microspore development in the anther culture of wheat (Triticum aestivum L.) // Cytologia 1990. — V.55, N 3. — P. 475 478.
  547. Havel L., Novak F.J. In vitro pollination in maize // Fert. and. Embryogenes. Ovulated Plants: Proc. 7 Int. Cytoembryol. Symp. High Tatra (Rackova dolina), June 14−17,1982. Bratislava, 1983. — P. 265−266.
  548. Havranek P. Viruproste klony cesneku kuchynskeho ziskane z meristematickych kultur // Ochrana rostlin. Praha, 1972. — V.8, N 4. — P. 291−298.
  549. Havranek P., Novak F.J., The bud formation in the callus cultures of Allium sativum L. // Z. Pflanzenphysiol. Bd. 1973. — V.68. — P. 308−318.
  550. Havranek P., Vagera J. Regulation of in vitro androgenesis in tobacco through iron-free media // Biol. plant. 1979. — V.21, N 6. — P. 412−417.
  551. He Т., Luo K., Han S., Guo X., Tu S., Li X. Эффективность культуры пыльников гибридов риса javanica х indica // Chin. J. Appl. and Environ. Biol. -2004.-V. 10, N2.-P. 146−149.
  552. Heberle E., Reinert J. Factors of haploid production by isolated pollen cultures // Naturwissenschaften. -1977. V.64, N 2. — P. 100−101.
  553. Heberle-Bors E. Genotypic control of pollen formation in Nicotiana tabacum L. // Theor. and Appl. Genet. 1984. — V.68, N 5. — P. 47579.
  554. Heberle-Bors E. In vitro haploid formation from pollen: a critical review // Theor. Appl. Genet. 1985. — V.71.-P. 361−374.
  555. Henry Y., De Buyser J. Androgenese sur des Ble Tendres en Cours de Selection. 2. L’Obtention des Grains. //Z. Pflanzenzucht. 1980. — V.84, N 1. — P. 9−17.
  556. Henry Y., De Buyser J., Guenegou Т., Ory C. Wheat microspore embryo-genesis during in vitro anther culture // Theor. and Appl. Genet. 1984. — V.67, N 2. — P. 439−442.
  557. Henry Y., De Buyser J., Le Brun J. Androgenese sur des Ble Tendres (Triticum aestivum) en Cours de Selection. 3. Electrophorese des gliadines de quelgues haploi’des doubles // Z. Pflanzenzucht. 1980. — V.85, N 4. — P. 322−327.
  558. Herr J.M. A new clearing-squash technique for the study of ovule development in angiosperms // Am. J. Bot. 1971. — V. 58. — P. 785−790.
  559. Heszky L. A new artificial hybrid of species from the genera Festuca and Lo-lium (Festuca pratenses Huds x Lolium temulentum L.) // Acta Agron. Acad. Sci. Hung. 1972. — V.21, N 3−4. — P. 363−368.
  560. Heszky L., Mesch J. Anther culture investigations in cereal gene bank collection // Z. Pflanzenzucht. 1976. — V.77, N 3. — P. 187−197.
  561. Heszky L., Paal H. Haploid novenyek felnevelese pollenekbol a Nicotiana tabacum L. portokkulturajaban // Bot. kozl. 1972. — V.59, N 2. — P. 125−127.
  562. Hildebrandt A.C. Stimulation or inhibition of virus-infected and insect gall tissues and single cell clones // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1958. — V.44, N 3. — P. 354−363.
  563. Hildebrandt A.C., Riker A.J. Viruses and single cell clones in plant tissues cultures // Proc. Fed. Amer. Soc. Exp. Biol. 1958. — V. 17. — P. 986−993.
  564. Hirth L., Durr A Donnes recentes sur la multiplication du virus de la mosai-que du tabac dans les tissues de tabac cultives in vitro // Cultures tissus plantes C.N.R.S. 1971. — N 193. — P. 481−498.
  565. Hisajima S. Microplant propagation through shoot formation from seeds and embryos // Plant Tissue Cult.- Proc. 5 Int. Congr. Plant Tissue and Cell. Cult., Tokyo and Lake Yamanaka, July 11−16,1982. Tokyo, 1982. — P. 141−142.
  566. Hofer M., Grafe Ch. Induction of doubled haploids in sweet cherry (Prunus avium L.) // Euphytica. 2003. — V.130, N 2. — P. 191−197.
  567. Hoffmanowa A. Some aspects of sugar nutrition of excised embryos of Lu-pinus luteus L. and Brassica oleracea L. // Acta Soc. Bot. Pol. 1964. — V. 33, N 1. -P. 193−210.
  568. Holdgate D.P. Economic and technological problems associated with bulk production of plants from tissue culture // Biochem. Soc. Trans. 1980. — V.8, N 4. -P. 477−479.
  569. Hosemans D., Bossoutrot D. Induction of haploid plants from in vitro culture of unpollinated beet ovules (Beta vulgaris L.) // Z. Pflanzenzucht 1983. — V. 91, N l.-P. 74−77.
  570. Ни H., Xi Z., Zhuang J., Ouyang J., Jia S., Jia X., Jing J., Zhou S. Генетическое изучение образовавшихся из пыльцы растений пшеницы (Triticum aestivum) // Acta genet, sinica. 1979. — V.6, N 3. — P. 322−330.
  571. Hu Han. Use of haploids in crop improvement // Biotechnology in international agricultural research / International Rice Research Institute. 1985. — P. 7581.
  572. Hu K.L., Matsubara S., Murakami K. Haploid plant production by anther culture in carrot (Daucus carota L.) // J. Japan Soc. Hort. Sci. 1993. — V.62, N 3. -P.561−565.
  573. Hu S., Li X. Культура семяпочек межвидовых гибридов дикого диплоидного хлопчатника с тетраплоидными сортами, развитие зародышей и проростков // Acta genet, sinica. 1982. — V.9, N 1. — P. 57−62.
  574. Huang Q.T., Yang H.Y., Zhou C. Embryological observations on ovary culture of unpollinated young flowers in Hordeum vulgare L. 1982. — V.24, N 3. — P. 295−300.
  575. Hughen A. Rapid regeneration of wheat in vitro // Ann. Bot. 1983. — V.51, N6.-P. 851−853.
  576. Huguette S., Maryse Т., Alain C. The ultrastructure of micropropagated and greenhouse rose plant stomata // Plant Cell, Tiss. Org. Cult. 1993. — V.32, N 2. — P. 227−233.
  577. Hussey G. In vitro propagation of the onion Allium сера by axillary and adventitious shoot proliferation // Sci. Hortic. 1978. — N 9. P. 227−236.
  578. Hussey G., Falavigna A. Origin and production of in vitro adventitious shoots in the onion, Allium сера L. // J. Exp. Bot. 1980. — V.31, N 125. — P. 16 751 686.
  579. Ionescu A. Cercetari preliminare de haploidie prin culturi de antere la tomate // An. Inst. cerc. legumicult. si flori cult. 1984. -N 7. — P. 79−82.
  580. Ivers D.R., Palmer R.G., Fehr W.R. Anther culture in soybeans // Crop. Sci. 1974. — V. 14, N 6. — Р/ 891−893.
  581. Jain R.K., Brune U., Friedt W. Plant regeneration from in vitro cultures of cotyledon explants and anther of Sinapis alba and its implications on breeding of cru-cifers // Euphytica. 1989. — V.43, N 1−2. — P. 153−163.
  582. Janabi K., Picard E. Transfer chez le ble tendre par androgenese in vitro des genes de compatibilite avec Hordeum bulbosum (kr 1 kr 2). // Acad. sci. 1981. — ser 3. V.292,N2.-P. 247−250.
  583. Jefferson R.A., Kavanagh T.A., Bevan M.W. GUS fusions: beta-glucuronidase as a sensitive and versatile gene fusion marker in higher plants // EMBO J. 1987. — N 6. — P. 3901−3907.ё
  584. Jin-Zhuo D., Shi-Rong J. High efficiency plant regeneration from cotyledons of watermelon (Citrullus vulgaris Schrad.) // Plant Cell Rapt. — 1991. V.9, N10. -P. 559−562.
  585. Johansson L., Eriksson T. Effects of carbon dioxide in anther culture // Physiol plant. 1984. — V.60. N 1. — P. 26−30.
  586. Johansson L.B. Effects of activated charcoal, cold treatment and elevated C02-concentrations on embryogenesis in anther culture // Gen. Manipulat. Plant Breed.: Proc. Int. Symp., Berlin (West), Sept. 8−13,1985. Berlin, New York, 1986. -P. 257−264.
  587. Jones L.E., Hildebrandt A.C., Riker A.L., Wu J.H. Growth of somatic tobacco cells in microculture // Amer. J. Bot. 1960. — V.47, N 7. — P. 468−475.
  588. Jdrgensen C.A. The experimental formation of heteroploid plants in the genus Solanum// J. Genet.- 1928.- V.19. -P. 133−211.
  589. Juretic В., Katavic V., Jelaska S. In vitro clonal multiplication of Cucurbita pepo by single-node culture // Acta. bot. croat. 1989. — V.48. — P.27−34.
  590. Kamada H., Kobayashi K., Kiyosue Т., Harada H. Stress induced somatic embryo-genesis in carrot and its applications to synthetic seed production // In vitro Cell Div. Biol. -1989. V.25. — P Л163−1168.
  591. Kameya Т., Hinata K. Induction of haploid plants from pollen grains of Brassica // Jap. J. Breed. 1970a. — V.73, N 1. — P. 82−87.
  592. Karunaratne Seetha, Kurukulaarachichi Cecily, Gamage Chandra A report on the culture of embryos of dwarf coconut, Cocos nucifera L. var nana in vitro // Cocos. 1985.-N 1. -P. 1−8.
  593. Kasperbauer M.J., Buckner R.C., Springer W.D. Haploid plants by anther-panicle culture of tall fescue // Crop Sci. 1980. — V.20, N 1. — P. 103−107.
  594. Kasperbauer M.J., Collins G.B. Anther derived haploids in tobacco evaluation of procedures // Crop. Sci. 1974. — V.14, N 2. — P. 305−307.
  595. Kasperbauer M.J., Collins G.B. Reconstitution of diploids from leaf tissue of anther-derived haploids in tobacco // Crop. Sci. 1972. — V. 12, N 1. — P. 98−101.
  596. Katayama V. Karyological comparisons of haploid plants from octoploid Aegiloristicum and diploid wheat // Jap. J. Bot. 1935. — V.7, N 31. — P. 349−380.
  597. Kavi Kishor P.B., Aruna M., Reddy G.M. Plant regeneration from haploid callus of indica rice // Proc. Indian Nat. Sci. Acad. B. 1989. — V.55, N 3. — P. 193 201.
  598. Kehr A.E., Schaeffer G.W. Tissue culture and differentiation of garlic // Hortscience.- 1976. V. 11, N 4. — P. 422−423.
  599. Keller J. Culture of unpollinated ovules, ovaries, and flower buds in some species of the genus Allium and haploid induction via gynogenesis in onion (Allium сера L.) // Euphytica. 1990a. — V.47. — P. 241- 247.
  600. Keller J. Results of anther and ovule culture in some species and hybrids the genus Allium L. // Arch. Zuchtungsforsch. 1990c. — V.20, N 3. — P. 189−197.
  601. Keller J., Korzun L, Ovary and ovule culture for haploid production // In vitro haploid production in higher plants: Fundamental aspects and methods / Eds J.S. Mohan et al. Dordrecht, Boston, London, 1996. — V.l. — P. 217−235.
  602. Keller W.A. Armstrong K.S., Roche A.I. The production and utilization of microspore-derived haploids Brassica crops // Plant cell culture in crop improvement. / Eds. S.K. Sen and Giles. K.L. New York, London: Plenum Press., 1982. — P. 169 183.
  603. Keller W.A., Armstrong K.S. High frequency production of microspore-derived plants from Brassica napus anther cultures // Z. Pflanzenzucht 1978. -V.80, N 2. — P. 100−108.
  604. Keller W.A., Stringam G. R Production and utilization of microspore-derived haploid plants // Frontiers of Plant Tissue Culture / Ed. T.A. Thorpe. Calgary: Univ. of Calgary Press, 1978.-P. 113−122.
  605. Kimber G., Riley R. Haploid angiosperms // Bot. Rev. 1963. — V. 29, N 4. -P. 480−531.
  606. Kitto S.L., Janick J. Production of synthetic seeds by encapsulating embryos of carrot // J. Am. Soc. Hortic. Sci. 1985. — V. l 10. — P. 277−282.
  607. Kivihaiju E., Laurila J., Lehtonen M., Tanhuanpaa P., Manninen O. Anther cultured properties of oax wild red oat progenies and a search for RAPD markers associated with cultured ability // Agr. and Food Sci. 2004. — V. l3, N 1−2. — P. 151— 162.
  608. Kleijer J., Schmid J. Winzeler H., Fried P.M. La culture d’antheres possibili-tes et limites la selection du ble et de Tepeautre // Rev. suisse agr. 1986. — V. l8, N 6.-P. 305−311.
  609. Klein T.M., Wolf E.D., Wu R., Sanford J.C. High velocity microprojectiles for delivering nucleic acids into cells // Nature. 1987. — V. 327. — P. 70−73.
  610. Klimaszewska K., Keller W.A. The production of haploids from Brassica hirta Moench (Sinapis alba L.) anther culture // Z. Pflanzenphysiol. 1983. — V. l09, N3.-P. 235−241.
  611. Knudsen S., Due I.K., Andersen S.B. Components of responds in barley anther culture // Plant Breed. 1989. — V.103, N 3. — P. 241−246.
  612. Kobeticova D. Rast izolovaanych embryi Zea mays у mediach so stupajucou koncentraciom sacharozy //Biologia (CSSR). 1971. — V.26, N 4. — P. 341−348.
  613. Kochhar Т., Sabharwal P., Engelberg J. Production of homozygous diploid plants by tissue cultured technique // J. Hered. 1971. — V. 62. — P. 59−61.
  614. Kohler F., Wenzel G. Regeneration of isolated barley microspores in conditioned media and trails to characterize the responsible factor // Plant Physiol. 1985. — V.121, N 2. -P. 181−191.
  615. Kohler K.H., Binh T. Kahi M. Wechselwirkungen von Licht und Phytohormonen bei der Gewebekultur // Potsdam. Forsch B. 1988. — N 57. — P. 128−132.
  616. Kononowicz H., Kononowicz A.K., Janick J. Asexual embryogenesis via callus of Theobroma cacao L. // Z. Pflanzenphysiol. 1984. — V. l 13, N 4. — P. 347 358.
  617. KostofF D. An androgenic Nicotiana haploid // Ztschr. f. Zellforhg. u. Mikr. Anatomie. -1929. Bd. 9. — S. 640−642.
  618. Kott L.S., Flack S., Kasha K.J. A comparative study of initiation and development of embryogenic callus from haploid embryos of several barley cultivars. II. Cytophotometry of embryos and callus // Can. J. Bot. 1986. — V.64, N 9. — P. 21 072 112.
  619. Kott L.S., Polsoni L., Beversdorf W.D. Cytological Aspects of isolated microspore culture of Brassica napus // Can. J. Bot. 1988. — V.66, N 8. — P. 16 581 664.
  620. Kriiger H.U. Untersuchungen zur Antherenkultur von Spargel (Asparagus officinalis L.) //Arch. Zuchtungsforsch.- 1985. V. l5,N 1. — P. 53−60.
  621. Kruse A. An in vitro/in vivo embryo culture technique // Hereditas. 1974. -V.77, N 2. — P. 219−224.
  622. Kuo C.S. The preliminary studies on culture of unfertilized ovary of rice in vitro // Acta. Bot. Sinica. 1982. — V.24. N 1. — P. 33−38.
  623. Kuo Chung-Shen, Lu Wenliang, Kui Yao-Lin. Corn (Zea mays L.): production of pure lines through anther culture // Greps I. Berlin e. a., 1986. — P. 168−180.
  624. Kuo John-shang, Wang Yu-ying, Chien Nan-fan, Ku Shu-jong, Kung Ming-liang, Hsu Hui-chun Изучение культуры in vitro пыльников Nicotiana tabacum L. and Capsicum annuum L. // Acta bot. sinica. 1973. — V. l5, N 1. — P. 37−52.
  625. La Rue C.D. The growth of plant embryos in culture // Bull. Torrey. Bot. Club. 1936. — V.63, N 7. — P. 365−382.
  626. Lagaja S.W., Hough L.F., Bailey C. The responses of immature peach embryos to low temperature treatment // Proc. Amer. Soc. Hortic. Sci. 1960. — V.75. -P. 171−179.
  627. Lagriffol J., Monnier M. Etude de divers parametres en vue de la culture in vitro des ovules de Capsella bursa-pastoris // Can. J. Bot. 1983. — V.61, N 12. — P. 3471−3477.
  628. Laibach F. Das taubwerden von bastardsamen und die ku kunstliche auffrucht fruh absterbender bastard-embryonen //Zeitschr. Bot. 1925. — V. 17, N 8. -P. 417−459.
  629. Lakshmi S.G., Dore S.R., Chacko E.K., Bhat R.N. Studies on anther culture I. Induction of androgenic plants and callus in Petunia hybrida Vilm. // Curr. Sci. (India). 1976. — V.45, N 20. — P. 714−715.
  630. Lammerts W.E. Embryo culture an affective technique for shortening the breeding cycle of deciduous trees and increasing germination of hybrid seed // Amer. J. Bot. 1942. — V.29, N 2. — P. 166−171.
  631. Lammerts W.E. Use of embryo culture in rose breeding // Plants Gardens. -1946.-N2.-P. 2.
  632. Lange W. Crosses between Hordeum vulgare L. and H. bulbosum L. 1. Production, morphology and meiosis of hybrids, haploids and dihaploids // Euphytica. -1971.-V.20, N l.-P. 14−29.
  633. Langridge W.H.R., Li B.J., Szalay A.A. Electric field mediated stable transformation of carrot protoplast with naked DNA // Plant Cell Rep. 1985. — V.4. P. 355−359.
  634. Laroche M., Verhoyen M. Essai de multiplication rapide in vitro de l’echalote (Allium ascalonicum L.) // Meded. Fac. Landbouw. Rijksuniv. Gent. -1980.-V. 45.-P. 323−333.
  635. Lars J. Embryogenesis in anther cultures of some species in the families So-lanaceae, Ranunculaceae and Papaveraceae // Acta. univ. upsal. Abstis Uppsala Diss. Fac. Sci.-1983.-42 pp.
  636. Lay-Allemand C., Cornu D. Culture in vitro d’embryos isoles de noyer commun (Juglans regia L.) // Ann. sci. forest. 1986. — V.43, N 2.- P. 189−197.
  637. Lazar M.D., Baenziger P. S., Schaeffer G. W. Combining abilities and herita-bility of callus formation and plantlet regeneration in wheat (Triticum aestivum L.) anther culture //Theor. and Appl. Genet. 1984a. — V.68, N. 1−2. — P. 131−135.
  638. Lazar M.D., Schaeffer G. W., Baenziger P. S. Cultivar and cultivar x environment effects on the development of callus and polyhaploid plants from anther cultures of wheat // Theor. and Appl. Genet. 1984b. — V.67, N 2−3. — P. 273−277.
  639. Lazar M.D., Schaeffer G. W., Baenziger P. S. The effects of interactions of culture environment with genotype on wheat (Triticum aestivum) anther culture response // Plants Cell Repts. 1990. — V.8, N 9. — P. 525−529.
  640. Leelavathi S., Reddy V.S., Sen S.K. Somatic cell genetic studies in Brassica species I. High frequency production of haploid plants in Brassica alba (L.) // Plant Cell Repts. 1984. — V.3, N 3. — P. 102−105.
  641. Leelavathi S., Siva R.V., Sen S.K. Somatic cell genetic studies in Brassica species II. Production of androgenetic haploid in Brassica nigra (L.) Koch. // Euphytica. 1987. — V.36, N1. — P. 215−219.
  642. Leike H., Jahr W. Stand der anwendung der in vitro vermehrungwichtiger genotypen in der gemuseziichtung // Gartenbau 1984. — V.31, N 1. P. 7−8.
  643. Lelu M.A., Bollon H. Obtention d’haploides par culture d’antheres de Brassica oleracea L. var. capitata et var. gemmifera // C. r. Acad. sci. 1985. — Ser. 3, 300, N2.-P. 71−76.
  644. Lescure A.M. Selection of markers of resistance to base-analogues in somatic cells cultures of Nicotiana tabacum // Plant. Sci. Lett. 1973. — V.l. — P. 375— 383.
  645. Leshem B. Growth of carnation meristems in vitro: anatomical structure of abnormal plantlets and the effect of agar concentration in the medium and their formation // Ann. Bot. 1983. — V.52. — P. 413115.
  646. Li J.W., Li S.N. Генетические особенности пыльцевых растений риса // Bull. Akad. Sci. D. P. R. Korea. 1981. -N 1. — P. 50−52.
  647. Li Y., Guo Z., Wang F. Культура незрелых зародышей подсолнечника // Acta bot. Yunnanica.- 1988.-V.10,N l.-P. 79−86.
  648. Liang C.L., Sun C., Liu T.L., Chiang J.C. Studies on interspecific hybridization in cotton // Sci sinica. 1978. — V.21, N 4. — P. 545−560.
  649. Ling D.H., Chen W.Y., Chen M.F., Ma Z.R. Somatic embryogenesis and plant regeneration in an interspecific hybrid of Oryza // Plant Cell Repts. 1983. -V.2, N 4. — P. 169−171.
  650. Linthorst H.J.M., van Loon L.C., van Rossum C.M.A. et al. Analysis of acidic and basic chitinases from tobacco and petunia and their constitutive expression in transgenic tobacco // Mol. Plant-Microbe Interact. 1990. — n 3. — P. 252−258.
  651. Liu D., Raghothama R.G., Hasegawa H.M., Bressan R.A., Osmotin over expression in potato delays development of disease symptoms // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A.-1994.-N91.-P. 1888−1892.
  652. Liu J.R., Jeon J.H., Yang S.G., Lee H.S., Song N.M., Jeong W.J. Dry type of carrot (Daucus carota L.) artificial seeds // Scientia Horticulture. 1992. — V.51. — P. 1−11.
  653. Liu M.-Ch., Chen W.-H. Tissue and cell culture as aids to sugarcane breeding. I. Creation of genetic variation through callus culture // Euphytica. 1976. -V.25, N 2. — P. 393−403.
  654. Loo S. W., Wang F.H. The culture of young Conifer embryos in vitro // Science. 1943. — V.98, N 2255. — P 544.
  655. Lupotto E. Improvement in plantlet differentiation from anther culture of rice // Genet, agr. 1982. — V.36. N 1−2. — P. 129−142.
  656. Lux H., Herrmann L., Wetzel C. Production of haploid sugar beet (Beta vulgaris L.) by culturing unpollinated ovules // Plant Breed. 1990. — V. l04. — P. 177 183.
  657. Macdonald M.V., Hadwiger M.A., Aslam F. N., Ingram D.S. The enhancement of anther culture efficiency in Brassica napus ssp. oleifera Metzg. (Sinsk.) using low doses of gamma irradiation //- 1988. V. l 10, N 1. — P. 101−107.
  658. Y.Q., Мок С., Мок D.W.S., Stang J.R. Phenotypic and cytological variation among plants derived from anther cultures of Lilium longiflorum // In vitro Cell, and Dev. Biol. 1988. — V.24, N 5. — P. 47176.
  659. Maene I.J., Debergh P. Optimization of the transfer of tissue cultured shoots to in vitro conditions // Acta. Hort. 1987. — V.212. — P. 335−348.
  660. Maheshwari N. In vitro culture of excised ovules of Papaver somniferum L. // Science. 1958. — V.127. — P. 342.
  661. Maheshwari N., Lai M. In vitro culture of excised ovules of Papaver somniferum L. // Phytomorphology. -1961.-Nil.-P. 307−314.
  662. Maheswaran G., Williams E.G. Primary and secondary direct somatic em-bryogenesis from immature embryos of Brassica campestris // J. Plant Physiol. -1986. -V. 124, N 5. P. 455463.
  663. Maksoud M.A., Bondok A., El-Shami M.R., Gabr M.F. Garlic tissue culture organogenesis in callus cultures // Egypt. J. Hortic. 1983. — V. l0, N 2. — P. 107— 114.
  664. Malehorn D.E., Borgmeyer J.R., Smith K.E., Shah D.M. Characterization and expression of an antifungal zeamatin-like protein (Zip) gene from Zea mays // Plant Physiology. 1994,-V.l06.-P. 1471−1481.
  665. Malepszy S., Grunewaldt J. Ein beitrag zur erzeugung von haploiden beiHordeum vulgare L. // Z. Pflanzenzucht. 1974. — V.72, N 3. — P. 206−211.
  666. Malepszy S., Nadolska-Orczyk A. In vitro culture of Cucumis sativus. 1. Regeneration of plantlets from callus formed by leaf explants // Z. Pflanzenphysiol. -1983.-V.111,N3.-P. 273−276.
  667. Malepszy S., Niemirowicz-Szczytt K., Wiszniewska J. Cucumber (Cucumis sativus L.) somatic embryogenesis in vitro // Pr. nauk. USI. Katowicach: Acta Biol. -1982.-N10.-P. 218−220.
  668. Maliga P., Martin L., Sz-Breznovits A. 5-bromo-deoxyuridine-resistant cell lines from haploid tobacco // Plan. Sci. Lett. 1973a. — V. l, N 3. — P. 119−121.
  669. Maliga P., Sz-Breznovits A., Martin L. Streptomycin-resistant plants from callus culture of haploid tobacco // Nature. 1973b. — V.244, N 5410. — P. 29−30.
  670. Maliga P., Szilagvi M. Portoktenyeszetbol nyert haploid Nicotiana tabacum L. citologiai vizsgalata // Bot. kozl. 1973. — V.60, N 2. — P. 77−82.
  671. Marciniak K., Kaczmarek Z., Adamski Т., Surma M. The anther-culture response of triticale line X tester progenies // Cell and Mol, Biol. Lett. 2003. — V.8, N 2.-P. 343−351.
  672. Martin A., Cubero J.I. The use of Hordeum chilense in cereal breeding // Cereal Res. Commun. -1981. -V.9, N 4. P. 317−323.
  673. Masuda K., Kikuta Y., Okazava Y. A Revision of the Medium for Somatic Embryogenesis in Carrot Suspension Culture // J. Fac. Agr. Hokkaido Univ. 1981. -Vol. 60. — P.—183—193.
  674. Matsubara S., Hihara H. Onion bulblet regeneration on receptacles in vitro and in vivo // Jap. J. Soc. Hortic. Sci. 1978. — V.46. — P. 476−486.
  675. Mattingly C.F., Collins G.B. The use of anther-derived haploids in Nicotiana. III. Isolation of nullisomics from monosomic lines // Chromosoma. 1974. -V.46, N1.-P. 29−36.
  676. Mauch F., Mauch-Mani В., Boiler T. Antifungal hydrolyses in pea tissue // Plant Physiol 1988. — V. 88. — P. 936−942.
  677. Mauch F., Staehelin L.A. Functional implications of the subcellular localization of ethylene-induced chitinase and p-1.3-glucanase in bean leaves // Plant Cell -1989.-N l.-P. 447−457.
  678. Mazzolani G., Pasqua G., Monacelli B. Condizioni per la formazione di piante aploidi da pollini coltivati in vitro // Ann. bot. 1980. — N 38. — P. 107−117.
  679. Medrano H., Primo M.E., Guerri J. Ethyl-methane-sulphonate effects on anther culture of Nicotiana tabacum // Euphytica. 1986. — V.35, N 1. — P. 161−168.
  680. Melchers G. Potatoes for combined somatic breeding methods, plants from protoplasts and fusion of protoplasts of potato and tomato // Production of natural compounds by cell culture methods. Munchen, 1978. — P. 306−311.
  681. Mercy S.T., Zapata F.J. Chromosomal behavior of anther culture derived plants of rice // Plant Cell Repts. 1986. — V.5, N 3. — P. 215−218.
  682. Meredith C.P., Lawrence R.H. Report of the vegetable crops round-table // Environ and Exp. Bot. 1981. — V.21, N 3−4. — 401105.
  683. Metz S.G., Sharma H.C., Armstrong T.A., Mascia P.N. Chromosome doubling and aneuploidy in anther-derived plants from two winter wheat lines // Genome. 1988. — V.30, N 2. — P. 177−181.
  684. Meynet J. Possibilities of obtainment and utilization of doubled haploids in Gerbera // Gen. Manipulat. Plant Breed.: Proc. Int. Symp., Berlin (West), September 8−13,1985.-Berlin, New York, 1986.-P.319−321.
  685. Meynet J., Sibi M. Haploid plants from in vitro culture of unfertilized ovules in Gerbera jamesonii / Z. Pflanzenziicht. 1984. — V.93. — P. 78−85.
  686. Miah M.A.A. Studies on the association between yield and yield components in anther derived doubled-haploid rice (Oryza sativa L.) // Bangladesh J. Bot. 1985. -V.14,N2.-P.- 147−155.
  687. Miah M.A.A., Earl E.D., Khush G.S. Inheritance of callus formation ability in anther cultures of rice, Oryza sativa L. // Theor. and Appl. Genet. 1985. — V.70. N.2.-P. 113−116.
  688. Miller C.O. Kinetin and kinetin-like compounds // Mod. Meth. Pflanzenanal. 1963.-V. 6, N6.-P. 194−202.
  689. Minora N., Grant W.F. Callus, plantlet formation and polyploidy from cultured anthers of Lotus and Nicotiana // Can. J. Bot. 1971. — V.49, N 11. — P. 20 412 051.
  690. Misawa M., Sakato К., Tanaka H., Hayashi M., Samejima H., Production of physiologically active substances by plant cell suspension cultures // Tissue culture and plant science. Ed. H.E.Street. London etc.: Acad, press, 1974. — P. 405−432.
  691. Miszke W., Skucinska В., Kruczkowska Y., Pawlowska H. Klonowania in vitro kapusty glowiastej dla potrzeb hodowli // Acta agr. et silv. Ser. agr. 1988. — N 27. — P. 87−99.
  692. Mitchell A.Z., Hanson M.R., Skvirsky R.C., Ausubel F.M. Anther culture of Petunia: Genotypes with high frequency of callus root, or plantlet formation // Z. Pflanzenphysiol. 1980. — V. l00, N 2. — P. 131−146.
  693. Mix G. Anther culture of Solanum tuberosum L. and some wild species // Plant Tissue Cult.: Proc. 5 Int. Congr. Plant Tissue and Cell. Cult. Tokyo and Lake Yamanaka, July 11−16,1982,-Tokyo, 1982.-P. 273−274.
  694. Mix G. Antheren- und jverienkultur von sonnenblumen (Helianthus annuus L.) // Landbauforsch. Volkenrode. 1985. — V.35, N 3. — P. 153−156.
  695. Mix G., Wang H.M. In vitro erzeugung von haploiden Corpea-Pflanzen (Vigna unguiculata L.) Landbauforsch Volkenrode. 1988. — V.38, N 4. — P. 305 309.
  696. Mix G., Wilson H.M., Foroughi-Wehr B. The cytological status of plant of Hordeum vulgare L. regenerated from microspore callus // Z. Pflanzenziicht. 1978. -v.80, N2.-P. 89−99.
  697. Mol R. In vitro gynogenesis in Melandrium album: from parthenogenetic embryos to mixoploid plants // Plant. Sci. 1992. — V. 81. — P. 261−269.
  698. Monnier M., Norstog K. Effect of in Ovulo period on the differentiation and regulation of immature embryos of Zamia cultured in vitro // Exp. Bot. 1986. -V.37-N 184.-P. 1633−1642.
  699. Moraes-Fernandes M.I.B., Picard E. Viability of haploid production by anther culture using Brazilian wheat genotypes // Rev. bras, genet. 1983. — V.6, N 2. -P261−277.
  700. Morrison R.A., Koning R.E., Evans D.A. Pepper // Handbook of plant cell culture / Eds D.A. Evans et al. New York: Macmillan, 1986. — V.4. — P. 562−573.
  701. Muir W. H., Hildebrandt A.C., Riker A.J. The preparation, isolation and growth in culture of single cells from higher plants // Amer. J. Bot. 1958. — V.45, N 8.-P. 589−597.
  702. Miiller D., Keller J. Anther culture of brussels sprouts (Brassica oleracea var. gemmifera) // Arch. Zuchtungsforsch. 1990. — V.20, N 4. — P. 219−226.
  703. Miiller G., Vahl U., Wiberg A. Die nutzung der antherenkulturmethode im zuchtprozefl von winterweizen II. Die Bereitstellung neuerWinterweizen-dh-Linien mit lAI^lRS-Translokation//Plant Breed.- 1989. V.103, N l.-P. 81−87.
  704. Murashige T. Clonal crops through tissue culture // Plant tissue culture ant its bio-technological applications / Eds W. Barz et al. Berlin, Heidelberg, New York.: Springer-Verb, 1977. — P. 392−403.
  705. Murashige T. Plant propagation through tissue culture // Ann. Rev. Plant Physiol.-1974.-V.25.-P. 135−166.
  706. Murashige Т., Skoog F. A Revised Medium for Rapid Growth and Bioassays with Tobacco Tissue Cultures // Physiol. Plant. 1962. — Vol. 15. P. 473197.
  707. Muren R.C. Haploid plant induction from unpollinated ovaries in onion // HortScience. -1989. V.24, N 5. — P. 833−834.
  708. Nair S., Gupta P.K., Mascarenhas A.F. Haploid plants from in vitro anther culture of Annona squamosa Linn. // Plant Cell Repts. 1983. — V.2 N 4. — P. 198— 200.
  709. Nakajima Y., Oeda K., Yamamoto T. Characterization of genetic diversity of nuclear and mitochondrial genomes in Daucus varieties by RAPD and AFLP // Plant Cell Reports. 1998. — V.17, N 11. — P. 848−853.
  710. Nakamura A., Yamada Т., Kadotani N., Itagaki R. Improvement of flue-cured tobacco variety MC 1640 by means of haploid breeding and some problems of this method // Haploids in higher plants / Ed. K.J.Kasha. Univers. Guelph., 1974. -P. 277−278.
  711. Nakamura C., Keller W. A. Callus proliferation and plant regeneration from immature embryos of hexaploid triticale // Z. Pflanzenziicht. 1982. — V.88, N 2. -P. 137−160.
  712. Nakamura C., Keller W.A., Fedak G. In vitro propagation and chromosome doubling of a Triticum crassum x Hordeum vulgare intergeneric hybrid // Theor. and Appl. Genet. -1981. V.60, N 2. — P. 89−96.
  713. Nakata К., Tanaka M. Differentiation of embryoids from germ cells in anther culture of tobacco // Jap. J. Genet. 1968. — V.43. — P. 65−71.
  714. Natali L., Cavallini A. Regeneration of pea (Pisum sativum L.) plantlets by in vitro culture of immature embryos // Plant Breed. 1987. — V.99, N 2. — P. 172 176.
  715. Navratilova B. Mikropropagace okurku (Cucumis sativus L.) // Bull. vyzk. slecht. Ust. zelin., Olomouc, 1987. — Bull. 31. — P. 3514.
  716. Nezticky M., Novak F.J., Dolezelova M., Piovarci A. Vplyv kultivacnych podmienok na rast izolovanych embryi kulturice // Sb. UVTIZ Genet, a slecht. -1983.-V. 19, N2.-P. 127−134.
  717. Nikolic D. Mogucnosti dobijanja haploidnih biljaka kulturom antera in vitro // Шумарство. 1977. — V.30, N 31. — P. 29−34.
  718. Nitsch J.P. Experimental Androgenesis in Nicotiana // Phytomorphology. -1969.-V.19,N4.-P. 389−404.
  719. Nitzsche W., Hennig L. Fruchtknotenkultur bei Grasern // Z. Pflanzenziicht. 1976.-V.77, N l.-P. 80−82.
  720. Nobecourt P. Sur les radicelles des cultures de tissus du tubercule de Carotte // Compt. Rend. Soc. Biol. 1939. — V.13. — P. 1271−1272.
  721. Nomura K., Komamine A. Physiological and biochemical aspects of somatic embryogenesis from single cells // Somatic Embryo Genesis Carrots: Proc. Workshop, San Miniato, May 28−31,. Rome, 1985. — P. 1−5.
  722. Novak F.J. Production of garlic (Allium sativum L.) tetraploids in shoot-tip in vitro culture // Z. Pflanzenzucht. 1983. — V.91, N 4. — P. 329−333.
  723. Novak F.J., Do T.H.H., Poncova J. Factory ovlivnujici proces androgeneze in vitro u Nicotiana tabacum L. // Acta Univ. Palack. Olomuc. Fac. rerum natur. -1979.-N63.-P. 93−110.
  724. Novak F.J., Dolezel J., Luzny J. Cytologie a fertilita mezidruhovyh hybridu Allium сера x A. fistulosum // Sb. UVTIZ / Genet, a slecht. 1980. — V. 16, N 2. — P. 81−88.
  725. Novak F.J., Dolezelova M. Hormone control of growth and differentiation in the in vitro cultured tissue of cucumber (Cucumis sativus L.) // Biologia. 1982. -V.37, N3.-P. 283−289.
  726. Novak F.J., Havel L. Shut production from in vitro cultured flower heads of Allium porrum L. // Biol. Plant. 1981. V.23, N 4. — P. 266−269.
  727. Novak F.J., Vyskot B. Karyology of callus cultures derived from Nicotiana tabacum L. haploids and ploidy of regenerants // Z. Pflanzenzucht. 1975. — V. l5, N l.-P. 62−70.
  728. Ockendon D. J, Sutherland R.A. Genetic and non-genetic factors affecting anther culture of Brussels sprouts (Brassica oleracea var. gemmifera // Theor. and Appl. Genet. 1987. — V.74, N 5. — P. 566−570.
  729. Ockendon D.J. Anther culture in brussels sprouts (Brassica oleracea var. gemmifera). I: embryo yields and plant regeneration // Ann. Appl. Biol. 1984. -V. 105, N 2. — P.285−291.
  730. Ockendon D.J. The ploidy of plants obtained from anther culture of cauliflowers (Brassica oleracea var. botrytis) // Ann. Appl. Biol. 1988. — V. l 13, N 2. -P. 319−325.
  731. Ognjanov V. Kultura antera I delove sejanaca breskve in vitro // Jugosloven. vocar. 1989. — V.23, N 1−2. — P. 471177.
  732. Olesen A., Andersen S.B., Due I.K. Anther culture response in perennial ryegrass (Lolium perenne L.) // Plant. Breed. 1988. — V.101, N 1. — P. — 60−65.
  733. Ono H., barter E.N. Anther culture of Triticale // Crop. Sci. 1976. — V. l6, Nl.-P. 120−122.
  734. Ono K., Tsukida T. Haploid callus formation from anther cultures in a culti-var of Paeonia. // Jap. J. Genet. 1978. — V.53, Nl.-P. 51−54.
  735. Orlikowska Т., Chrastek M. Kulturu zarodkov roslinnych in vitro i mozliwosci ich wykorzystania w hodowli //Post, naukrol. 1979.- V.26, N l.-P. 27−42.
  736. Ouyang J.W., He D.G., Feng G.H., Jia S.E. The response of anther culture to culture temperature varies with growth conditions of anther-donor plants // Plant Sci. 1987. -v.49, N2. — P. 145−148.
  737. Ouyang J.W., Zhou S.M., Jia S.E. The response of anther culture to culture temperature in Triticum aestivum // Theor. and Appl. Genet. 1983. — V.66, N 2. -P. 101−109.
  738. Overbeek J. van, Conclin M.E. Cultivation in vitro of smole Datura embryos I I Amer. J. Bot. 1942. — V.29, N 6. — P. 472−477.
  739. Overbeek J. van, Conclin M.E., Blakeslee A.F. Factors in coconut milk essential for growth and development of very young Datura embryos // Science. 1941. -V.94,N2441.-P. 350−351.
  740. Pace G.M., Reed J.N., Ho L.C., Fahey J.W. Anther culture of maize and the visualization of embryogenic microspores by fluorescent microscopy // Theor. and Appl. Genet. 1987. — V.73, N 6. — P. 863−869.
  741. Paepe R., Bleton D., Grangbe F. Basic and extent of genetic variability among doubled haploid plants obtained by pollen culture in Nicotiana sylvestris // Theor. and Appl. Genet. 1981. — V.59, N 3. — P. 177−184.
  742. Palada-Nicolau M., Alionte J., Hurduc N. Re searches concerning «in vitro» rice androgenesis // Bujl. Acad. sci. agr. et forest. 1986. — N 15. — P. 57−70.
  743. Pan Ching-li, Pai Shou-hsin, Kuan Chiliang, Yu Hui-hsia Certain factors affecting the frequency of induction of wheat (Triticum vulgare) pollen plants // Acta bot. sinica. 1975. — V.17, N 2. — P. 161−166.
  744. Patrascu M., lean E., Deculescu G. Obtinerea de linii izogenice prin androgeneza si utilizarea lor in ameliorarea tutunului // Probl. genet, teor. si apl. -1981. -V.13,N6.-P. 387−396.
  745. Pawlicki N., Sangwan R.S., Sangwan-Norreel B.S. Factors influencing the Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of carrot (Daucus carota L.) // Plant Cell Tissue cult. 1992. — V. 31. — P. 129−139.
  746. Peixe A., Barroso J., Potes A., Pais M.N. Induction of haploid morphogenic calluses from in vitro cultured anthers of Prunus armeniaca cv. 'Harcot' // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 2004. — V.77, N 1. — P. 35−41.
  747. Petolino J.F., Jones A.M. Anther culture of elite genotypes of maize // Crop Sci. 1986. -V. 26, N 5. — P. 1072−1074.
  748. Phillips G.C., Collins G.B. Taylor N.L. Interspecific hybridization of red clover (Trifolium pratense L.) with T. sarosiense Hazsl. using in vitro embryo rescue // Theor. and Appl. Genet. 1982. — V.62, N 1. — P. 17−24.
  749. Phippen C., Ockendon D. J Genotype, plant, bud size and media factors affecting anther culture of cauliflowers (Brassica oleracea var. botrytis) // Theor. and Appl. Genet. 1990. — V.79, N 1. — P. 33−38.
  750. Picard E., Buyser J. Nouveaux resultats concernant la culture d’antheres de Triticum aestivum L. Conditions de regeneration des plantes haploi’des et production de lignees entierement homozygotes // C. r. Acad. sci. 1975b. — D281, N 14. — P. 989−992.
  751. Picard E., Buyser J. Nouveaux resultats concernant la culture d’antheres in vitro de ble tendre (Triticum aestivum L.). Effets d’un choc thermique et de la position de Tanthere dans 1'epi // C. r. Acad. sci. 1975a. — D281, N 2−3. — P. 127−130.
  752. Pickering R.A., Morgan P.W. Plant regeneration from cultured embryos Derived from Hordeum vulgare L. pollinated with H. bulbosum L. // Euphytica. 1983. -V 32, N2.-P. 585−591.
  753. Pierik R.L.M. Anthurium andraeanum plantlets produced from callus tissues cultivated in vitro // Physiol, plant. 1976. — V.37, N. 1. — P. 80−82.
  754. Pierik R.L.M., Steegmans H.H.M. Freesia plantlets from flower-buds cultivated in vitro // Neth. J. Agr. Sci. 1975. — V.23, N 4. — P. 334−337.
  755. Pierik R.L.M., Steegmans H.H.M., Meys J.A.J. Plantlet formation in callus tissues of Anthurium andraeanum Lind. // Sci. Hort. 1974. — V.2, N 2. — P. 193— 198.
  756. Pilet P.E. Auxins and the process of aging in root cells // Plant growth regulation / 4th Internet. Conf. Iowa, Univ. Press, 1961. — P. 167−179.
  757. Pohler W., Schumann G., Sulze M., Kummer I.M. Cytological investigation of callus tissue and regenerated plants from triticale anther culture // Biol. Zbl. -1988. V. 107, N 6. -P. 643−652.
  758. Poliakov A.V., Proliotova N.V., Rutkowska-Krause I. Some aspects of flax in vitro anther culture (Linum usitatissimum L.) cytology and pretreatment // Natural Fibres Wlokna Naturalne. — 1995. — V.39. — P. 57−64.
  759. Pretova A. The influence of osmotic potential of the cultivation on the development of excised flax embryos // Biol. Plant. 1974. — V. 16, N 1. — P. 14−20.
  760. Pretova A., Williams E.G. Direct somatic embryogenesis from immature zygotic embryos of flax (Linum usitatissimum L.) // J. Plant Physiol. 1986. — V. l26, N2−3.-P. 155−161.
  761. Punja Z.K., Zhang Y.Y. Plant chitinases and their roles in resistance to fungal diseases // J. Nematol. 1993. — V.25. — P. 526−540.
  762. Qu Rong-da, Chen Ying Пути андрогенеза и изучение культивируемых пыльцевых зерен риса // Acta bot. sin. 1984. — V.26, N 6. — P. 580−587.
  763. Qualset C.O. Plant biotechnology, plant breeding, population biology and genetic resources perspectives from a university scientist // NABC Report / Nat. Agr. Biotechnol. Council., Ithaca (N.Y.). 1991. N 3. — P. 81−90.
  764. Quiot J., Messiaen C., Marrou J., Leroux J. Regeneration par culture de me-ristemes de clones d’ail infectes de facon chronique par le virus de la mosaique de Tail // Actas 3 Congr. Uniao fitopatol. mediter., Oeiras, 1972. Oeiras, 1972. — P. 429−433.
  765. Raageeva B. Anther culture of Nicotiana plumbaginifolia Viv. // Cur. Sci. -1987.-V.56,N 16.-P. 838−840.
  766. Radojevic L., Djordjevic N., Tucic B. In vitro induction of pollen embryos and plantlets in Aesculus carnea Hayne through anther culture // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 1989. — V. l7, N 1. — P. 21−26.
  767. Raghavan V. Induction of haploid plants from anther culture of henbane I IZ. Pflanzenphysiol. 1975. — V.76. — P. 89−92.
  768. Raghavan V. Role of the generative cell in androgenesis in henbane // Science. 1976. — V.191, N 4225. — P. 388−389.
  769. Raghavan V., Nagmani R. Morphogenesis of pollen callus of Hyoscyamus niger // Amer. J. Bot. 1983. — V.70, N 4. — P. 524−531.
  770. Rajasekaran K., Mullins M.G. Embryos and plantlets from cultured anthers of hybrid grapevines // J. Exp. Bot. 1979. — V.30, N 116. — P. 399−407.
  771. Rajasekaran K., Mullins M.G. Influence of genotype and sex-expression on formation of plantlets by cultured of grapevines // Agronomie. 1983. — V.3, N 3. -P. 233−238.
  772. Rakoczy-Trojanowska M., Malepszy S. A method for increased plant regeneration from immature Fi and BCi embryos of Cucurbita maxima Duch. x C. pepo L. Hybrids // Plant Cell Tissue and Organ Cult. 1989. — V.18, N 2. — P. 191−194.
  773. Ramanna M.S. The origin and in vitro development of embryoids in the anthers of Solanum hybrids // Euphytica. 1974. — V, 23, N 3. — P. 623−632.
  774. Rao A.N. Tissue culture in the orchid industry // Applied and fundamental aspects of plant cell, tissue and organ culture / Ed. J. Reinert and Y.P.S. Baja. Berlin, New York.: Springer-Verl., 1977. — P. 44−70.
  775. Rappoport J. In vitro culture of plant embryos and factors controlling the growth // Bot. Rev. 1954. — V.20, N 4. — P. 201−225.
  776. Rashid A. Pollen dimorphism in relation to pollen plant formation // Physiol plant. 1983. — V.58, N 4. — P. 544−548.
  777. Reddy P.J., Vaidyanath K. In vitro selection for salt tolerance in Basmati rice // Indian J. Plant Physiol. 1985. -N 1. — P. 88−91.
  778. Reddy V.S., Leelavathi S., Sen S.K. Influence of genotype and culture medium on microspore callus induction and green plant regeneration in anthers of Oryza sativa // Physiol, plant. -1985. V.63, N 3. — P. 309−314.
  779. Redenbaugh K.M., Westfall R.D., Karnosky D.F. Dihaploid callus production from Ulmus americana anthers // Bot Gaz. 1981. — V. l42, N 1. — P. 19−26.
  780. Reiffers I., Freire A.B. Production of doubled haploid rice plants (Oryza sativa L.) by anther culture // Plant Cell, Tissue and Organ Cult. — 1990. — V.21, N 2. -P. 165−170.
  781. Reinert J. Morphogenesis in plant tissue cultures // Endeavour. 1962. -V.21.-P. 85−90.
  782. Reinert J. Uber die kontrolle der morphogenese und die induction von adventive embryonen an gewebekulturen aus karotten // Planta. 1959. — V.53, N 4 -P. 318−333.
  783. Rekha Kathal S.P. Plant regeneration from hypocotyl explant of Cucumis melo L. cv. Pusa Sharbati // Embryology and seed reproduction: Abstracts XI Int. Symp. July 3−7,1990. Leningrad, 1990. — P. 72.
  784. Reynolds T.L. Callus formation and organogenesis in anther cultures of Solanum carolinense L. // J. Plant Physiol. 1984. — V. l 17, N 2. — P. 157−161.
  785. Reynolds T.L. Callus formation and organogenesis in anther cultures of Solanum carolinense // J. Plant Physiol. 1984. — v. l 17, N 2. — P. 157−161.
  786. Reynolds T.L. Pollen embryogenesis in anther cultures of Solanum carolinense L. // Plant Cell Repts. 1986. — V.5, N 4. — P. 273−275.
  787. Rines H. W. Oat anther culture: genotype effects on callus initiation and the production of haploid plant // Crop Sci. 1983. — V.23, N 2. — P. 268−272.
  788. Rivard S.R., Cappadocia M., Landry B.S. Cytological and molecular analyses of plants produced via anther culture in Solanum chacoense // Amer. J. Bot. -1989a. V.76, N 6, Sappl. — P. 153.
  789. Rivard S.R., Cappadocia M., Vincent G., Brisson N., Landry B.S. Restriction fragment length polymorphism (RFLP) analyses of plants produced by in vitro anther culture of Solanum chacoense Bitt. // Theor. and Appl. Genet. 1989b. — V.78, N 1. -P. 49−56.
  790. Roberts W.K., Selitrennikoff C.P. Zeamatin, an antifungal protein from maize with membrane-permeabilizing activity // J. Gen. Microbiology. 1990. -V.136.-P. 1771−1778.
  791. Rogers S.O., Benedich A.J. Extraction of total cellular DNA from plants, algae and fungi // Plant Molecular Biology Manual / Eds Gelvin S.B., Schilperoort R. A: Dordrecht Boston, London: Kluwer Academic Publishers, 1994. — D1. — P. 18.
  792. Rogozinska J.H., Goska M. Attempts to induce haploids in anther cultures of sugar, fodder and wild species of beet // Acta. soc. bot. pol. 1982. — V.51, N 1. — P. 91−105.
  793. Rose J.B., Dunwell J.M., Sunderland N. Anther culture of Lolium temulen-tum, Festuca pratenses and Lolium x Festuca hybrids II. Anther and pollen development in vivo and in vitro // Ann. Bot. (USA). 1987. — V.60, N 2. — P. 203−214.
  794. Roulund N., Andersen S.B., Farestveit B. Optimal concentration of sucrose for head cabbage (Brassica oleracea L. convar. capitata (1.) Alef.) anther culture //Euphytica. 1991. — V.52, N 2. — P. 125−129.
  795. Ryoppy P., Honkanen J., Tigerstedt P.M.A. Increasing the efficiency of triticale anther culture // Gen. Manipulat. Plant Breed.: Proc. Int. Symp., Berlin (West), 8−13 Sept, 1985. Berlin- New York, 1986. — P. 339−341.
  796. Sabir A. A, Ford-Lloyd B.V. Processing crop plant germplasm in vitro for mass production of regenerants: a case study with beet // J. Biotechnol. 1991. -V.17, N3. -P. 257−268.
  797. Sachar R.C., Kapoor M. In vitro culture of ovules of Zephyranthes // Phyto-morphology. 1959. — V.9, N 21. — P. 147−156.
  798. Sachar R.C., Kapoor M. Influence of kinetin and gibberellic acid on the test tube seeds of Cooperia pedunculata Herb. // Naturwissenschaften. 1958. — V.45. -P. 552−553.
  799. Samac D.A., Shah D.M. Developmental and pathogen-induced activation of the Arabidopsis acidic chitinase promoter // Plant Cell. 1991. — N 3. — P. 10 631 072.
  800. San L.H., Demarly Y. Gynogenesis in vitro and biometric studies of doubled haploids obtained by three techniques in Hordeum vulgare L. // Efficiency in Plant Breeding: Proc. X EUCARPIA Congress, Wageningen, June 19−24, 1983. Wagen-ingen, 1984.-P. 347.
  801. San Noeum L.H. Haploi’des d’Hordeum vulgare L. par culture in vitro d’ovaries non fecondes // Ann. Amelior. Plant. 1976. — V.26, N 4. — P. 751−754.
  802. San Noeum L.H. In vitro induction of gynogenesis in higher plants // Broadening Genet. Base Crops: Proc. Conf., Wageningen, July 3−7, 1978. Wageningen, 1979.-P. 327−329.
  803. Sanchez-Monge L.E., Millan Т., Martin A. Hibridos cebadaxtrigo. Analisis de la Fi у generaciones de retrocruzamiento por trigo // An. INIA. Ser.:Agr. 1981 -N14.-P. 79−94.
  804. Sangwan-Norreel B.S. Androgenic stimulating factors in the anthers and isolated pollen grain culture of Datura innoxia Mill. // J. Exp. Bot. 1977. — V.28. — P. 843−852.
  805. Sangwan-Norreel B.S. Evolution in vitro du contenu en AND nucleaire et de la ploidie des embryons polliniques du Datura innoxia // Can. J. Bot. 1981. — V.59, N4.-P. 508−517.
  806. Sangwan-Norreel B.S. Evolution of nuclear DNA content during microspore embryo formation in Datura innoxia // Pollen: Biol, and Implic. Plant. Breed.: Proc. Symp., Lake Garda, June 23−26,1982. New York, 1983. — P. 295−301.
  807. Sasson A. Plant diotechnology-derived products: Market-value estimates and public acceptance. Dordrecht, Boston, London: Kluwer Academic Publishers. 1998. -160 p.
  808. Sastri D.C., Moss J.P., Nalini M. The use of in vitro techniques in groundnut improvement // Plant Cell Cult. Crop Improv.: Calcutta, 6−10 Dec., 1981. New York- London, 1983. — P. 365−370.
  809. Sato Т., Nishio Т., Hirai M. Varietal differences in embryogenic ability in anther culture of Chinese cabbage (Brassica campestris ssp. pekinensis) // Jap. J. Breed. 1989. — V.39, N 2. — P. 149−157.
  810. Sator C. Regeneration von Lupinenpflanzen aus Embryonen // Landbauforsch Volkenrode.- 1985. V.35, N 1. — P. 1−4.
  811. Sauton A. Doubled haploid production in melon (Cucumis melo L.) // Cucurbitaceae'88: proc. EUCARPIA Meet. Cucurbit Genet, and Breed., Avignon-Montfavet, May 31-June 1−2,1988. Paris, 1988. — P. 119−128.
  812. Schestibratov K.A., Dolgov S.V. Transgenic strawberry plants expressing a thaumatin II gene demonstrate enhanced resistance to Botrytis cinerea // Sci. Hort. -2005.-N106.-P. 177−189.
  813. Schiltz P., Hitier G., Cazamajour F. Utilisation de Г androgenese au cours de la selection de Nicotiana tabacum // Tabac. 1975. — Sec. 2, N 12. — P. 11−17.
  814. Schinkel C., Lelley T. Somaclonal variation in triticale // Gen. Manipulat. Plant breed.: Proc. Int. Symp., Berlin (West), Sept. 8−13, 1985. Berlin, New York, 1986.-P. 625−628.
  815. Schulz В., Westphal L., Wricke G. Linkage groups of isozymes, RFLP and RAPD markers in carrot (Daucus carota L. sativus) // Euphytica. 1994. — V.74, N 1−2.-P. 67−76.
  816. Schumann G., Hoffmann B. Some proc and cons using potato extract medium in anther culture of triticale and wheat //Arch. Zuchtungsforsch. 1989. — V. 19, N l.-P. 21−27.
  817. Scott R.J., Draper J Transformation of carrot tissues derived from proem-bryogenic suspension cells. A useful model system for gene expression studies in plants // Plant Mol. Biol. 1987. — N 8. — P. 265- 274.
  818. Scowcroft W. R, Larkin P.J. Plant biotechnology, somaclonal variation and varietal improvement // Comb. Proc. / Intern. Plant Propagators' Soc. 1983 — V.32. P. 80−89.
  819. Sharma D. P, Firoozabady E., Ayres N.M., Galbraith D.W. Improvement of anther culture in Nicotiana: media, cultural conditions and flow cytometric determination of ploidy levels HZ. Pflanzenphysiol. 1983. — V. l 11, N 5. — P. 441−451.
  820. Sharma G.C., Wen C.W., Sapra V.T. Effect of genotype, media and temperature pretreatment on callus initiation in triticale, wheat and rye anther cultures // Cereal Res. Commun. 1982. — V.10, N 3−4. — P. 143−150.
  821. Sharp W.R., Raskin R.S., Sommer H.E. Haploidy in Lilium // Phytomor-phology. 1971. — V.21, N 4. — P. 334−337.
  822. Shekhawat N.S., Gordon P.N., Galston A.W. Highly regenerative tissue cultures from axillary tiller buds of sexually mature oat plants (Avena sativa L.) In Vitro. 1984. — V.20, N 9. — P. 707−711.
  823. Shimada T. Haploid plants regenerated from the pollen callus of wheat (Triticum aestivum L.) // Jap. J. Genet. 1981. — V.56, N 6. — P. 581−588.
  824. Shimada T. Microspore development during in vitro anther culture of wheat // Wheat Inf. Serv. 1989. — N 69. -P. 46−48.
  825. Shiong L., Chiang I. Production of haploid plants from anther cultures and secondary embryoids of winter oilseed rap, Brassica napus ssp. Oleifera // New Phy-tol. 1982. — V. 91, N 3. — P. 507−516.
  826. Shmikova N.A., Tjukavin G.B. Culture of unpollinated ovaries and ovules in bulb onion, carrot and cucumber // Plant biotechnology and genetic engineering: Abst. Int. Symp. Ukraine, October 3−6,1994. Kiev, 1994. — P. 114.
  827. Shumny V.K., Pershina L.A., Belova L.I. Production of barleyxrye and bar-leyxwheat hybrids // Cereal Res. Commun. 1981. — V.9, N 4. — P. 265−272.
  828. Sibi M., Dumas de Vaulx R., Shambonnet D. Obtention de plantes haploides par androgenese in vitro chez le Piment (Capsicum annum L.) // Ann. Amelior Plant. 1979. — V. 29, N 5. — P. 583−606.
  829. Simkova H. Methylation of mitochondrial DNA in carrot (Daucus carota L.) // Plant Cell Reports. 1998. — V.17. — P. 220−224.
  830. Simon P.W. Improvement of carrots for U.S. production with classical and modern techniques // J. Appl. Genet. 1997. — 38A. — P. 1−4.
  831. Singsit C., Veilleux R.E. Intra- and interspecific transmission of androge-netic competence in diploid potato species // Euphytica. 1989. — V.42, N 1−2. P. 105−112.
  832. Sitbon M. Production of haploid Gerbera jamesonii plants by in vitro culture of unfertilized ovules // Agronomie. 1981. — V. l, N 9. -P. 807−812.
  833. Skoog F., Miller C.O. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissue cultured in vitro // Symp. Soc. Exp. Biol. 1957. — V. 11. — P. 118−131.
  834. Skucinska В., Miszke W., Pawlowska H. Wyprowadzenie homozygot z androgenetycznyh haploidov w polskim materiale hodowlanym tytoniu // Biul. Centr. lab. przem. tyton. 1974. — N 1−2. — P. 29−41.
  835. Slabbert M.M., Lindeque J.M., Ferreira D.I. Rapid in vitro multiplication of Asparagus // S. Afr. J. Bot. 1990. — V.56, N 3. — P. 331−335.
  836. Slusarkiewicz-Jarzina A., Zenkteler M. Development of hybrid plants from ovules of Nicotiana tabacum pollinated in vitro with pollen grains of Nicotiana knightiana // Experientia. -1983. V.39, N 12. — P. 1399−1400.
  837. Smith C.W. The effect of growth substances on growth of excised embryo shoot apices of wheat in vitro // Ann. Bot. 1968. — V.32, N 127. — P. 593−600.
  838. Smith J.A., Sung Z. R Increase in regeneration of plant cells by cross feeding with regenerating Daucus carota cells // Somatic Embryo Genesis Carrots: Proc. Workshop, San Miniato, May 28−31,. Rome, 1985. — P. 133−137.
  839. Song H.G., Li S.N., Li G.R., Sok J.G., Cho O. B Anther culture of Oryza sa-tiva L. // Bull. Acad. Sci. D.P.R. Korea. 1976. — V. 24, N 3. — P. 116−120.
  840. Sonnino A., Tanaka S., Iwanaga M., Schilde-Rentschler L. Genetic control of embryo formation in anther culture of diploid potatoes // Plant Cell Repts. 1989
  841. Sopory S.K. Differentiation in callus from cultured anthers of dihaploid clones of Solanum tuberosum // Z. Pflanzenphysiol. 1977. — V.82, N 1. — P. 88−91.
  842. Sopory S.K. Induction of haploids: achievements problems and possibilities // Curr. Sci. (India). -1983. v.52, N 23. — P. 1112−1113.
  843. Sopory S.K., Jacobsen E., Wenzel G. Monohaploid embryoids and plantlets in cultured anthers of Solanum tuberosum // Sci. Lett. 1978. -N 12. — P. 47−54.
  844. Sopory S.K., Maheshwari S.C. Production of haploid embryos by anther culture technique in Datura innoxia. A further study // Phytomorphology/ 1972. V.22, N1. P. 87−90.
  845. Sopory S.K., Tan B.H. Regeneration and cytological studies of anther and pollen calli of dihaploid Solanum tuberosum // Z. Pflanzenziicht. 1979. — V.82, N 1. -P. 31−35.
  846. Sorvari S. Production of haploids from anther culture agriculturally valuable Brassica campestris L. cultivars // Ann. agr. fenn. 1985. — V.24, N 3. — P. 149−160.
  847. Souza M.V., Shupe J., Keller W.A. Cytoplasmic inherited atrazine resistance transmitted through anther culture in rutabaga // Z. Pflanzenziicht 1985. — V.95, N 2.-P. 179−184.
  848. Sozinov A., Lukjanjuk S., Ignatova S. Anther cultivation and induction of haploid plants in triticale // Z. Pflanzenziicht. 1981. — V.86, N 4. — P. 272−285.
  849. Srivastava D.R., Andrianov V.M., Piruzian E.S. Tissue culture and plant regeneration of watermelon (Citrullus vulgaris cv. Schrad. cv. Melitopolski // Plant Cell Repts. 1989. — V.8, N 5. — P. 300−302.
  850. Staraycki S., Stolarz A. Haploidalne i diploidalne homozygoty Nicotiana ta-bacum L. etrzymane metoda kultur pylnikov I tkanek in vitro // Hod. rosl., aklimat. i nasienn. 1976. — V.20, N 5. — P. 455−466.
  851. Stein M., Nothnagel T. Some remarks on carrot breeding (Daucus carota sativus Hoffm.) // Plant Breed. 1995. — V. 114. N 1. — P. 1−11.
  852. Stolarz A. Indukcja androgenezy w ziarnach pylkowych Secale cereale L. cv. Strzekecinskiejare w warunkach in vitro (Komunikat) // Hod. rosl., aklimat. i nasienn. 1974. — V. l 8, N 3. — P. 217−220.
  853. Stoltz L.P. Agar restriction of the growth of excised mature iris embryos // J. Amer. Soc. Hortic. Sci. 1971. — V 96, N 5. — P. 681−684.
  854. Su C.Y., Tsay H.S. Anther culture of papaya (Carica papaya L.) // Tissue Cult. Forest and Agr.: Proc. 3rd Tenn. Symp. Plant Cell and Tissue Cult., Knoxville, Tenn., 9−13 Sept., 1984. New York- London, 1985. — P. 357.
  855. Subhashini U., Venkateswari T. Genotypes and their response to in vitro production of haploids in Fj lines of Nicotiana tabacum // Theor. and Appl. Genet. -1985.-V.70, N3.-P. 225−226.
  856. Sudhakar Y., Singh I.S., Singh C.P. Anther culture of pigeon pea. Physiology of callus formation and ploidy analysis // Indian J. Plant Physiol. 1986. — V.29, Nl.-P. 67−70.
  857. Sudhakar Y., Singh I.S., Singh C.P. Anther culture of tobacco (Nicotiana tabacum L.) and pigeon pea (Cajanus cajan Millsp.) genotypes // Proc. Nat. Acad. Sci., India B. 1987. — V.57, N 4. — P. 487−490.
  858. Sun Ching-san., Wang Chin-chu, Chu Chih-ching Cytological studies on the androgenesis of Triticale // Acta bot. sinica. 1973. — V. l 5, N 2. — P. 163−173.
  859. Sunderland N. Anther culture: a progress report // Sci. Progr. 1971. — V.59, N236.-P. 527−549.
  860. Sunderland N. Pollen plants and their significance // New. Sci. 1970. — V. 47, N710.-P. 142−144.
  861. Sunderland N. Strategies in the improvement of yields in anther culture // Sci. Press. Proc. Symp. Plant tissue culture. Peking, 1978. — P. 65−86.
  862. Sunderland N. The concept of morphogenic competence with reference to anther and pollen culture // Plant cell culture. Crop improvement: Proc. Int. Symp., Calcutta, 6−10 Dec., 1981. New York- London, 1983. — P. 125−139.
  863. Sunderland N., Dunwell J.M. Anther and pollen culture // Plant tissue and cell culture / Ed. H.E. Street Oxford: Blackwell Sci. Publ., 1978. — P. 223−586.
  864. Sunderland N., Evans L.J. Multicellular pollen formation in cultured barley anthers. II. The A, B, and С pathways. // J. Exp. Bot. 1980. — V.31, N 121. — P. 501−514.
  865. Sunderland N., Huang B. Barley anther culture. The switch of programme and albinism. // Hereditas. — 1985. — Suppl. V.3. — P. 37−40.
  866. Sunderland N, Roberts M, Evans L. J, Wildon D.C. Multicellular pollen formation in cultured barley anthers. I. Independent division of the generative and vegetative cells //J. Exp. Bot. 1979. — V.30, N 119. — P. 1133−1144.
  867. Sung Z. R, Dudits D. Carrot Somatic Cell Genetics // Genetic engineering in the plant sciences / Ed. N.J. Panopoulos N. Y., 1981. — P. 11−37.
  868. Sussex I. M, Frei K.A. Embryoid development in long term tissue cultures of carrot //Phytomorphology. 1968. — V. l8. — P. 339−349.
  869. Sutter E, Langhans R.W. Formation of epicuticular wax and its effect on water loss in cabbage plants regenerated from shoot-tip culture // Can. J. Bot. 1982. -V.60.-P. 2896−2902.
  870. Szarejko I., Maluszynski V, Polok K., Kilian A. Doubled haploids in the mutation breeding of selected crops // Plant Mutant. Breed. Crop Improv.: Proc. Int. Symp., Vienna, June 18−22,1990. Vienna, 1991. — V.2. — P. 355- 378.
  871. Szklarczyk M. RELP of PCR-amplified variable sequences a new tool for carrot organelle genetics // Genet. Pol. — 1996. — V.37A. — P.86−89.
  872. Szwacka M., Krzymowska M, Osuch A, Kowalczyk M.E., Malepszy S. Variable properties of transgenic cucumber containing the thaumatin II gene from Thaumatococcus danielli // Acta. Physiol. Plant. 2002. — V.24, N 2. — P. 173−185.
  873. Szwacka M, Morawski M, Burza W. Agrobacterium tumefaciens mediated cucumber transformation with thaumatin II cDNA // Genet. Pol. — 1996. -V.37A.-P. 126−129.
  874. Taira T, barter E.N. The factors determining development of embryos of wheat-rye hybrids in vitro //Crop. Sci. 1978. — V. l8, N 2. — P. 248−250.
  875. Takanori S., Takeshi N., Masahi H. Varietal differences in embryogenic ability in anther culture of Chinese cabbage (Brassica campestris ssp. pekinensis) // Jap. J. Breed. 1989. — V.39, N 2. — P. 149−157.
  876. Tan D.H., Halloran G.M. Some cytological aspects of diploid wheat anther culture. // Wheat Inform Serv. 1980. — N 15.-P. 15−18.
  877. Tao Z. R, Liu M.S., Zhu Z.C. In vitro production of haploid plantlets from unpollinated ovaries of potato // Hereditas. 1985. — N 7. — P. 5.
  878. Tao Z. R, Liu M.S., Zhu Z.C. Induction of dihaploid plantlets from unpollinated ovaries of potato in vitro // Acta Genet. Sin. 1988. — V. l 5, N 5. — P. 329−334.
  879. Templeton-Somers K. M, Sharp W. R, Pfister R.M. Selection of cold-resistant cell lines of carrot // Z. Pflanzenziicht.- 1981. V.103, N2.-P. 139−148.
  880. Terras F.R.G., Eggermont К., Kovaleva V. et. al. Small cysteine-rich antifungal proteins from radish: their role host defense // Plant Cell. 1995. — V.7. — P. 573−588.
  881. P., Georgiev S., Mogensen H.L., Coronado M.J., Dumas C., Risueno M.C. // Spontaneous chromosome doubling results from nuclear fusion during in vitro maize induced microspore embryogenesis // Chromosoma. 2004. -v.112, N 7. — P. 342−349.
  882. Tetsushi H., Mitsuo 0. Origin and development of embryoids from microspores in anther culture of citrus // Jap. J. Breed. 1989. — V.39, N 2. — P. 169−178.
  883. Thanh-Tuyen N.T., Guzman E.D. Formation of pollen embryos in cultured anthers of coconut (Cocoa nucifera L.) // Plant Sci. Lett. 1983. — V. 29, N 1. — P. 81−88.
  884. Theime R., Pett В., Griess H. Nutzung der sprossregeneration aus kartoffelkallus // Podsdam. Forsch. B. 1988. — N 57. — P. 208−209.
  885. Thevenin L., Dore C. L’amelioration de l’asperge (Asparagus officinalis L.) et son atout majeur, la culture in vitro // Ann. amelior. plant. 1976. — V.26, N 4. P. 655−674.
  886. Thomas E., Wenzel G. Embryogenesis from microspores of Brassica napus // Pflanzenziicht. 1975a. — V.74. — P. 77−81.
  887. Thomas E., Wenzel G. Embryogenesis from microspores of rye // Naturwissenschaften. 1975b. — V.62, N 1. — P. 40−41.
  888. Thomas H.M., Pickering R.A. Barleyxrye crosses. The morphology and cytology of the hybrids and amphidiploids // Z. Pflanzenziicht. 1979. — V. 82, N 3. -P. 193−200.
  889. Thomas J.C., Guiltinan M.J., Bustos S., Thomas Т., Nessler C. Carrot (Daucus carota) hypocotyl transformation using Agrobacterium tumefaciens // Plant Cell Report. 1989. — N 8. — P. 354−357.
  890. Thomas M.R., Scott K.J. Plant regeneration by somatic embryogenesis from callus initiated from immature embryos and immature inflorescences of Hordeum vulgare //J. Plant Physiol. 1985. — V.121, N 2. — 159−169.
  891. Thurling N., Chay P.M. The influence of donor plant genotype and environment on production of multicellular microspores in cultured anthers of Brassica napus ssp. oleifera // Ann. Bot. 1984. — V.54, N 5. — P. 681−693.
  892. Tian H.Q." Yang H.Y. Haploid embryogeny and plant regeneration in unpol-linated ovary culture of Allium tuberosum // Acta. Biol. Exp. Sin. 1989. — V.22. -P. 139−147.
  893. Tilton V. R, Russell S.H. Applications of in vitro pollination/fertilization technology // Bioscience. 1984a. — V.34, N 4. — P. 239−242.
  894. Tilton V.R., Russell S.H. In vitro culture of immature soybean embryos // J. Plant Physiol. 1984b. — V. 115, N 3. — P. 191−200.
  895. Ting Y.C. Meiosis and progenies of anther culture-derived maize plants // Genetics. 1987.-V.l 16, N l. Pt2, Suppl, 10.
  896. Tokumasa S., Kato M. Variation of chromosome numbers and essential oil components of plants from anther culture of the diploid and tetraploid in Pelargonium roseum // Euphytica. 1979. — V.28, N 2. — P. 329−338.
  897. H., Gordon H. 1984. Immunoblotting and dot immunoblotting: current status and outlook // Immunol. Methods. 1984. — V.72. -P. — 313−340.
  898. Truong-Andre I. In vitro haploid plants derived from pollination by irradiated pollen on cucumber // Cucurbitaceae’SB: proc. EUCARPIA Meet. Cucurbit Genet, and Breed., Avignon-Montfavet, May 31-June 1−2, 1988. Paris, 1988. — P. 143−144.
  899. Truong-Andre I., Demarly Y. Obtaining plants by in vitro culture of unfertilized maize ovaries (Zea mays L.) and preliminary studies on the progeny of gynoge-netic plant // Z. Pflanzenzucht. 1984. — V.92, N 4. — P. 309−320.
  900. Tsay H.S., Chen L.J., Tseng Т.Н., Lai P.C. The culture of rice anthers of ja-ponica x indica crosses // Plant Tissue Cult.: Proc. 5 Int. Congr. Plant Tissue and Cell. Cult. Tokyo and Lake Yamanaka, July 11−16, 1982. Tokyo, 1982. — P. 561 562.
  901. Tsay H.S., Yeh C.C., Hsu J.Y. Embryogenesis and plant regeneration from anther culture of bamboo (Sinocalamus latiflora (Munro) McCIure) // Plant Cell Repts. 1990. -V.9, N 7. -P. 349−351.
  902. Tsay S.S., Tsay H.S., Chap C.Y. Cytochemical studies of callus development microspore in cultured anthers of rice // Plant Cell. Repts. 1986. — V.5, N 2. — P. 119−123.
  903. Tsikov D.K., Zagorska N.A., Tsikova E.D. Haploids of cytoplasmic male sterile tabacco obtained from anthers in vitro // Докл. Болг. АН 1974. — V.27, N 12.-P. 1727−1730.
  904. Tukey H.B. Artificial culture of sweet cherry embryos // J. Hered. 1933. -V.24,N l.-P. 7−12.
  905. Tulecke W. A haploid tissue culture from the female gametophyte of Ginkgo biloba // Nature. 1964. — V.203, N 4940. — P. 94−95.
  906. Uchimiya H., Kameya Т., Takahashi N. In vitro culture of unfertilized ovules in Solanum melongena and ovaries in Zea mays // Jap. J. Breed. 1971. — V.21, N 5. -P. 247−250.
  907. Uddin M.R., Meyer M.M., Jokela J.J. Plantlet production from anthers of Eastern cottonwood (Populus Deltoides) Can. J. Forest Res. 1988. — V. l8, N 7. — P. 937−941.
  908. Uhrig H. Genetic selection and liquid medium conditions improve the yield of androgenetic plants from diploid potatoes // Theor. and Appl. Genet. 1985. -V.71, N3. — P. 455−460.
  909. Uijtewaal B.A., Jacobsen E., Hermsen J.G.T. Morphology and vigour of monohaploid potato clones, their corresponding homozygous diploids and tetraploids and their heterozygous diploid parent // Euphytica. 1987. — V.36, N 3. — P. 745 753.
  910. Vagera J., Hanackova H. Embryokultura soje tehnika kultivace a moznosti vyaziti // Rostl. vyroba. — 1979. -V.25, N 4. — P. 349−360.
  911. Vagera J., Jilek M. Specification of the effect of chelating complex of iron ions in androgenesis in vitro by means of cation-free minimal medium // Biol, plant. 1984.-V.26,N 2.-P. 121−127.
  912. Valieva Z.T., Timin N.I. Cytoembryology of induced apomixes of carrot // Embryology and seed reproduction: Abstracts XI Int. Symp. July 3−7, 1990. Leningrad, 1990.-P. 179.
  913. Van Geyt J., D’Halluin K., Jacobs M. Induction of nuclear and cell divisions in microspores of sugar beet (Beta vulgaris L.) // Z. Pflanzenziicht 1985. — V.95, N 4.-P. 325−335.
  914. Van Geyt J., Jacobs M. Induction of haploids of sugarbeet (Beta vulgaris L.) by means of androgenesis and gynogenesis // Bull. Soc. Bot. France. Act Bot. 1986. -V. 133, N4.-P. 83.
  915. Van Geyt J., Speckmann G.J., D’Halluin K., Jacobs M. In vitro induction of haploid plants from unpollinated ovules and ovaries of the sugarbeet (Beta vulgaris L.) // Theor Appl. Genet. 1987. — V.73. — P. 920−925.
  916. Vasil I.K. Androgenetic haploids // Perspectives in Plant Cell and Tissue Culture / Ed. I.K. Vasil. New York: Academic Press, 1980. — P. 195−223.
  917. Vasil I.K., Nitsch C. Experimental production of pollen haploids and their uses // Z. Pflanzenziicht 1975. — V.76, N 3. — P. 191−212.
  918. Veen H. The effect of various growth regulators on embryos of Capsella bursa-pastoris growing in vitro // Acta Bot. Neer. 1963. — V. l2, N 2. — P. 129−171.
  919. Vences F.J., Vaquero F., Vazquez A.M., Perez V.M. Izozymatic changes during in vitro morphogenetic processes in self-pollinated species of Secale // J. Plant Physiol. 1986. — V. 123, N 1. — P. 31−36.
  920. Vigers A.J., Roberts W.K., Selitrennikoff C.P. A new family of plant antifungal proteins // Mol. Plant-Microbe Interaction. 1991. — N 4. — P. 315−323.
  921. Vogt M., Schweiger W. Untersuchungen zur Methodik der Empryokultur bei Trifolium Arch. Zzchtungsforsch 1983. — v.13, N 4. — P. 273−283.
  922. Vu L., Huynth Q.K. Isolation and characterization of 27 kDa antifungal protein from the fruits of Diospyros texana 11 Biochem. Biophys Res Commun. 1994. -V.202. — P. 666−672.
  923. Vyskot В., Novak F.J. Genotypic foundation of the frequency of androgenesis in vitro and characteristics of stomates in haploid plants // Scripta Fac. sci. natur. UJEP brun. Biol. 1974. — V.4, N 1. — P. 25−33.
  924. Vyvadilova M., Zelenkova S., Tomaskova D. Anther culture of Brassica napus // Sci. agr. bohemost. 1987. — V.19, N 4. — P. 267−273.
  925. Wagner V.T., Yang C.S., Matthys-Rochon E., Dumas C. Observation on the isolated embryo sac of Zea mays L. // Plant Sci. 1989. — V.59. — P. 127−132.
  926. Wang A.S. Callus induction and plant regeneration from maize mature embryos // Plant Cell. Repts. 1987. — V.6, N 5. — P. 360−362.
  927. Weatherhead M.A., Henshaw G. G The production of homozygous diplo? plants of Solanum verrucosum by tissue culture techniques // Euphytica. 1979. V.28,N 3. — P. 765−768. i —
  928. Wenzel G. Anther culture and its role in plant breeding // Plant Tissue Cult. Genet. Manipul. and Somatic Hybrid. Plant Cells.: Proc. Nat. Symp., Bombay, 27−29 Febr. 1980. Bombay, 1980. — P. 68−78.
  929. Wenzel G., Bapat V.A., Uhrig H. New strategy to tackle breeding problems of potato // Plant cell culture in crop improvement. / Ed. S.K. Sen and L. Giles Kenneth. New York, London: Plenum Press., 1982. — P. 337- 349.
  930. Wenzel G., Foroughi-Wehr B. Anther culture of Solanum tuberosum // Cell Culture and Somatic Cell Genetics of Plants. Ed. I.K. Vasil. New York: Academic Press, 1984. — P. 293−301.
  931. Wenzel G., Hoffmann F., Thomas E. Anther culture as a breeding tool in rape. I. Ploidy level and phenotype of androgenetic plants // Z. Pflanzenzucht. -1977. V.78, N2.-P. 149−155.
  932. Wenzel G., Hoffmann F., Thomas E. Heterozygous microspore-derived plants in rye // Theor. and Appl. Genet. 1976. — V.48, N 4. — P. 205−208.
  933. Wernicke W., Kohlenbach H.W. Antherenkulturen bei Scopolia // Z. Pflanzenphysiol. 1975. — V.77, N 1. — P. 89−93.
  934. Westcott R.J., Henshaw G.G., Roca W.M. Tissue culture storage of potato germplasm: culture initiation and plant regeneration // Plant Sci. Lett. 1977. — V.9, N4.-P. 309−315.
  935. Wheatley W.G., Marsolais A.A., Kasha KJ. Microspore growth and anther staging in barley anther culture // Plant Cell Repots. 1986. — v.5, N 1. — P. 47−49.
  936. Widholm J.M. Cultured Nicotiana tabacum cells with an altered anthranilate synthetase which is less sensitive to feedback inhibition // Biochim. et Biophys. Acta. 1972. — V.261, N 1. — P. 52−58.
  937. Widholm J.M. Selection and characteristics of biochemical mutants of cultured plant cells // Tissue culture and plant science / Ed. H.E. Street. London etc.: Acad, press, 1974 — P. 287−299.
  938. Williams E. A hybrid between Trifolium repens and T. ambiguum obtained with the aid of embryo culture // N. Z. J. Bot. 1978. — V. 16, N 4. — P. 499−506.
  939. Witty M. Sensory evaluation of transgenic Solanum tuberosum producing r-thaumatin II // N.Z.J. Crop. Sci. 1990. — V.18. — P. 77−80.
Заполнить форму текущей работой