Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Методы диагностики возбудителя сосудистого бактериоза капусты и меры защиты

Диссертация: Методы диагностики возбудителя сосудистого бактериоза капусты и меры защиты
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Для целей обнаружения семенной инфекции используют микробиологический метод (выделение патогена на селективные питательные среды) и серологические методы (агглютинацию, ИФА, ELISA). Но наибольшей чувствительностью обладает метод молекулярногенетической (ПЦР) диагностики. Однако до сих пор не решена проблема поиска праймеров специфично реагирующих со всеми штаммами патогена и не дающих… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Распространенность и вредоносность сосудистого бактериоза
    • 1. 2. Систематическое положение возбудителя, симптомы и особенности патогенеза
    • 1. 3. Расовый состав популяции патогена
    • 1. 4. Источники инфекции
    • 1. 5. Защита капусты от сосудистого бактериоза
    • 1. 6. Методы диагностики возбудителя сосудистого бактериоза
  • ГЛАВА II. МЕТОДЫ И МАТЕРИАЛЫ
  • ГЛАВА III. ИЗУЧЕНИЕ ИЗМЕНЧИВОСТИ ПОПУЛЯЦИИ ХАИТНОМОИАЗ САМРЕЗТШБ РК САМРЕЗТШБ
    • 3. 1. Расовый состав популяции патогена и устойчивость новых гибридов белокочанной капусты компании Ве]о 2ас1еп
  • Нидерланды)
    • 3. 2. Генетическое и серологическое разнообразие
  • ГЛАВА IV. УСОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ МЕТОДОВ ДИАГНОСТИКИ ВОЗБУДИТЕЛЯ СОСУДИСТОГО БАКТЕРИОЗА
    • 4. 1. Молекулярно-генетические методы диагностики
    • 4. 2. Оптимизация использования иммуноферментного анализа для диагностики возбудителя сосудистого бактериоза в семенах капусты
  • ГЛАВА V. ПОИСК ЭФФЕКТИВНЫХ ПРИЕМОВ ЗАЩИТЫ ОТ СОСУДИСТОГО БАКТЕРИОЗА КАПУСТЫ
    • 5. 1. Обработка семян
    • 5. 2. Обработка вегетирующих растений
  • ВЫВОДЫ

Методы диагностики возбудителя сосудистого бактериоза капусты и меры защиты (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Сосудистый бактериоз относится к числу наиболее вредоносных заболеваний капусты. Вредоносность болезни проявляется в угнетении роста растения, снижении содержания сухого вещества, в виде прямых потерь урожая и снижении лежкости при хранении. Исследования, проведенные в Тимирязевской академии, показали, что заражение капусты сосудистым бактериозом, в период рассады, приводило к снижению массы кочанов на 2437% (Джалилов и др., 1989) в зависимости от устойчивости сорта. Пораженность кочанов сосудистым бактериозом существенно снижает их лежкость. Это снижение через 7 месяцев хранения позднеспелых гибридов составляло 18−30%, что в 2−3 раза больше, чем потери при хранении здоровых кочанов. Кроме того, развитие сосудистого бактериоза способствует более сильному проявлению не менее опасных болезней, таких как слизистый бактериоз.

Одним из источников инфекции при этом заболевании является посев зараженными семенами. Поэтому, разработка чувствительных и достоверных методов диагностики возбудителя сосудистого бактериоза имеет в настоящее время большую актуальность.

Тестирование зараженности семян является достаточно сложной задачей, так как возбудитель находятся в семенах в небольших количествах. К тому же установлено, что достаточно 0,05% зараженных семян для того, чтобы после посева вызвать эпифитотию. Таким образом, метод тестирования зараженности семян должен обладать чувствительностью, позволяющей надежно выявлять наличие не менее 5 зараженных семян в пробе из 10 тысяч семян.

Для целей обнаружения семенной инфекции используют микробиологический метод (выделение патогена на селективные питательные среды) и серологические методы (агглютинацию, ИФА, ELISA). Но наибольшей чувствительностью обладает метод молекулярногенетической (ПЦР) диагностики. Однако до сих пор не решена проблема поиска праймеров специфично реагирующих со всеми штаммами патогена и не дающих перекрестных реакций с другими патоварами X. сатреяМз, видами ксантомонад и сапротрофными бактериями, встречающимися на семенах капусты. Требует оптимизации и методика пробоподготовки и тестирования семенной инфекции.

Учитывая отсутствие эффективных против этого заболевания бактерицидов, большие надежды возлагаются на использование индукторов устойчивости и микроорганизмов — антагонистов.

Целью нашей работы являлось усовершенствование приемов защиты капусты от сосудистого бактериоза.

Для достижения этой цели планировалось решение следующих задач:

1. Изучить разнообразие популяции возбудителя по вирулентности, серологическим свойствам и генетической структуре.

2. Разработать эффективные и достоверные методы диагностики зараженности семян.

3. Сравненить эффективность различных современных препаратов против возбудителя сосудистого бактериоза капусты.

ВЫВОДЫ.

1. При тестировании 78 штаммов и изолятов возбудителя сосудистого бактериоза и 21 штамма близкородственных видов ксантомонад с использованием 11-ти пар праймеров была разработана мультиплексная БИО-ПЦР и ПЦР «в реальном времени», способная достоверно отличать ложноположительные результаты с близкими для X. campestris pv. campestris патоварами.

2. Предложенная среда КАА для БИО-ПЦР, содержащая в качестве селектирующего фактора гентамицин в дозе 8 мг/л, позволила в 10 раз повысить чувствительность ПЦР за счет снятия ингибирующего действия семенного экстракта.

3. Оптимизированный метод БИО-ПЦР диагностики позволял определять партии семян капусты с зараженностью 0,01% и обнаруживать возбудителя сосудистого бактериоза в семенном экстракте в концентрации более 4 КОЕ/мл, а праймеры на внутренний контроль позволяли выявлять ложноотрицательные результаты ПЦР обусловленные действием ингибиторов, присутствующих в семенном экстракте.

4. Количественная оценка при помощи ИФА возбудителя сосудистого бактериоза экстрагируемого с зараженных партий семян, показала, что оптимальным вариантом подготовки проб при анализе семенной инфекции является встряхивание семян 30 мин в фосфатно-солевом буфере pH 7,2 с предварительной ультразвуковой обработкой (35 кГц, 4 мин). Усовершенствованный метод ИФА диагностики позволял выявлять партии семян с зараженностью свыше 2%.

5. Показано несовершенство существующей системы дифференциации рас патогена. Предложены новые растения-дифференциаторы. В качестве источников устойчивости для селекции рекомендованы В. juncea L. сорт Florida Broad Leaf Mustard и линию абиссинской капусты (В. carinata) PI 199 947.

6. Изучение генетического и серологического разнообразия возбудителя сосудистого бактериоза показало наличие нескольких кластерных групп штаммов и изолятов. С помощью ДНК-фингепринтинга были получены полиморфные фрагменты ДНК, которые могут быть переведены в специфичные молекулярные маркеры соответствующего таксономического уровня.

7. Обработка 0,01%-ным Бионом в вегетационных опытах позволяла снизить проникновение патогена по сосудам в 1,5 — 1,8 раза. В 2-х полевых экспериментах 4-х кратная обработка 0,01%-ным Бионом в период вегетации позволила снизить поражение сосудистым бактериозом на 30 — 51%, увеличить массу кочана на 14 — 17% и снизить абсолютный отход при хранении в 1,8 раза по сравнению с контролем.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. Для диагностики зараженности семян капусты сосудистым бактериозом рекомендуется использовать усовершенствованные методики БИО-ПЦР и ИФА.

2. Выращивание гибридов капусты с расоспецифическим типом устойчивости к сосудистому бактериозу в конкретном регионе следует проводить с учетом расового состава патогена.

3. Опрыскивание капусты 0,01% Бионом, 50% ВДГ против сосудистого бактериоза рекомендуется включить в программу регистрационных испытаний.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.В. Иммунодиффузия и иммуноэлектрофорез. М.: Научный мир.-2006.-80 с.
  2. Ф.И. Природа и пути инфекции главнейших бактериозов капусты и обоснование способов борьбы с ними. — Харьков: НИИ соцземледелия. — 1940. 50 с.
  3. Ф.С. Иммуноферментная диагностика зараженности семян капусты возбудителем сосудистого бактериоза // Сельскохозяйственная биология. 1987. — N 5. С.48−50.
  4. Ф.С. Методы изучения бактериальных болезней растений (Методические указания для научно-исследовательской работы студентов). M.: МСХА. 1989. — 26 с.
  5. Ф.С.- Тивари Р.Д.- Андреева Е.И.- Амосова C.B.- Иванова Н. И. Эффективность гидротермической обработки и протравливания семян капусты против сосудистого бактериоза // Известия ТСХА. — 1989 — Т. 5. С. 102−105.
  6. Ф.С., Монахос Г. Ф., Тивари Р. Д. Вредоносность сосудистого бактериоза капусты. Известия ТСХА, 1989 — вып.З. С.69−72.
  7. Ф.С., Тивари Р. Д. Источники инфекции при сосудистом бактериозе капусты // Известия ТСХА. 1990 — вып.2. СЮ 1−105.
  8. Ф.С. Достоверность различных методов диагностики зараженности семян капусты сосудистым бактериозом // Известия ТСХА. 1994. -Вып.4. С. 107−112.
  9. Ф.С., Корсак И. В., Перебитюк А. Н. Влияние биопрепарата ризоплан на рост, развитие капусты и ее пораженность бактериальными болезнями // Интродукция микроорганизмов в окружающую среду. М., 1994.-С. 31−35.
  10. Ф.С. Методы диагностики зараженности семян капусты сосудистым бактериозом // Бактериальные болезни картофеля и овощных культур и методы борьбы с ними. М., 1994. — С. 92−97.
  11. Ф.С., Тивари Р. Д. Изучение штаммового разнообразия возбудителя сосудистого бактериоза капусты // Бактериальные болезни картофеля и овощных культур и методы борьбы с ними. М., 1994. — С. 90−91.
  12. Ф.С., Корсак И. В., Мироненко Ю. Л., Гурьев М. Д., Митрофанов А. Н., Алалыкина В. Н. Сравнение эффективности двух препаративных форм ризоплана // Экологизация с.-х. производства Северокавказского региона. — Анапа, 1995. С. 76−79.
  13. Ф.С. Диагностика зараженности семян капусты сосудистым бактериозом (Учебно-методическое пособие). М.: Издательство МСХА. —1995.-21с.
  14. Ф.С. Бактериальные болезни капусты (диагностика, патогенез, иммунитет, защитные мероприятия). Автореферат диссертации доктора биологических наук. М. 1996. — 32с.
  15. Ю. Т., Озерецковская О. Л., Джавахия В. Г., Багирова С. Ф. Общая и молекулярная фитопатология. — М.: Издательство Общество фитопатологов. 2001. — 302с.
  16. A.M., Осипов А. П., Дзантиев Б. Б., Гаврилова Е. М. Теория и практика иммуноферментного анализа. — М.: Высшая школа. — 1991. — 288 с.
  17. Защита растений от болезней / В. А. Шкаликов, О. О. Белошапкина, Д. Д. Букреев и др. Под ред. В. А. Шкаликова. М.: КолосС. — 2003. — 255с.
  18. Защита овощных культур и картофеля от болезней / А. К. Ахатов, Ф. С. Джалилов, О. О. Белошапкина и др. Под ред. А. К. Ахатова. — Москва. -2006.-352с.
  19. В.Г.- Сильванович H.A. Эпифитотиология сосудистого бактериоза капусты // Известия АН БССР. 1990. — № 4. С. 58−63.
  20. В.Г.- Сильванович H.A. Сосудистый бактериоз белокочанной капусты в Белоруссии. // Овощеводство. — 1991. — Т. 8. с. 94−98.
  21. А.Н. Изучение индуцированной и генетической устойчивости к сосудистому бактериозу у белокочанной капусты. Автореф. к. с-х.н. Москва. 1992.- 25 с.
  22. А.Н., Поляков К. Л., Самохвалов А. Н. Количественный анализ серологических признаков Xanthomonas campestris П Сельскохозяйственная биология. 1998. — № 1. С. 106−115.
  23. Игнатов А. Н, Кугинуки Я., Хида К., Монахос Г. Ф., Джалилов Ф. С. Патоген крестоцветных Xanthomonas campestris. О создании устойчивых к ксантомонадам растений // Сельскохозяйственная биология. Серия «Биология растений». —2002, N 5. — С. 75−84
  24. Методы общей бактериологии. Под ред. Ф. Герхарда. М.: Мир. — 1983. — Т. 1 -536 с.
  25. Г. Ф., Джалилов Ф. С., Тивари Р. Д. Наследование устойчивости к сосудистому бактериозу у самонесовместимых линий позднеспелой белокочанной капусты// Известия ТСХА. 1990. — Т. 4. С.86−91.
  26. O.JI. Индуцирование устойчивости растений биогенными элиситорами фитопатогенов // Прикладная биохимия и микробиология — М.: Наука. 1994. — Т.30. С.334−337.
  27. Н.В., Игнатов А. Н., Зотов B.C., Матвеева Е. В., Шаад Н. Генетическое разнообразие фитопатогенных бактерий Xanthomonas campestris // Вычислительная филогенетика и геносистематика «ВФГС 2007» М.: МГУ. -16−19 ноября 2007.- С. 260−266.
  28. Ю.Б. Оценка белокочанной капусты на комплексную устойчивость киле и бактериозам. Автореферат диссертации кандидата с.-х. наук. М.:ТСХА. 1991. — 16с.
  29. А.Н. Против бактериозов капусты // Защита растений. Москва.-1983.-Т. 3. С.52−53.
  30. А.Н. Гидротермическая обработка семян капусты // Защита растений. 1987. — № 2 С. 38.
  31. H.A. Сосудистый бактериоз капусты и пути снижения его вредоносности. Автореферат диссертации кандидата биологических наук, п. Самохваловичи, Минской области. 1989. — 21с.
  32. H.A., Иванюк В. Г., О методах определения устойчивости капусты к сосудистому бактериозу // Селекция и семеноводство. — 1991. — № 4. С. 19−20.
  33. О.В., Петровская Н. Н. Устойчивость коллекционных сортов капусты к сосудистому бактериозу в предгорной зоне Северного Кавказа // Бюллетень ВНИИ растениеводства. 1981. — вып. Ill С.45−48.
  34. Н.С. Методика оценки и селекционного отбора белокочанной капусты на устойчивость к сосудистому бактериозу. Автореферат дисс. канд. с.-х.наук. Москва. 1987. — 16с.
  35. Р.Д. Биологические обоснования приемов защиты капусты от сосудистого бактериоза. // Автореферат дисс. канд. биол.наук. — Москва. 1989.-22с.
  36. С.И., Голышин Н. М., Самохвалов А. Н. Эффективность некоторых препаратов против слизистого бактериоза у маточников капусты Сб. науч. тр. ВНИИ селекции и семеноводства овощных культур. — 1985.-Т. 21. С.85−87.
  37. А.А. Бактериозы растений. M.-JL: Сельхозгиз, 1935. — 372 С.
  38. Alvarez A.M., Kiniyuki S.R., Lou К. Antigenic relationships between Xanthomonas strains causing disease of cabbage, lettuce and onion in Hawai // Plant Pathology Bact. Cali 1981. P. 122−128.
  39. Alvarez A.M., Benedict A.A., Mizomoto C.Y., Hunter J.E., Gabriel D.W. Serological, pathological, and genetic diversity among strains of Xanthomonas campestris infected crucifers // Phytopathology 1994. V.84. № 12. P.1449−1457.
  40. Arias R.S., Mochizuki G., Fukui R., Alvares A.M. Most probable number method to enumerate a bioluminescens Xanthomonas campestris pv. campestris in soil // Soil Biology and Biochemistry. 1996. V. 28. P. 1725−1728.
  41. Bain D.C. Disappearance of black rot symptoms in cabbage seedlings // Phytopathology 1955. V.45 № 1 P.55−56.
  42. Bandyopadhyay S. Induction and spread of black rot disease on cabbage and cauliflower through different sources of inoculum // Environ. Ecology — 1985. V.3. № 4. P. 481- 484.
  43. Bazzi C. Seed-transmission of phytopathogenic bacteria // Petria 1991. V.l. P. 19−30.
  44. De Boer S.N., Coperman R.I., Vruggink H. Serogroups of Erwinia carotovora potato strains determined with diffusible somatic antigens // Phytopathology -1979. V. 69. № 4. P. 316−319
  45. De Boer S.H., Mc Naughton M.E. Monoclonal antibodies to the lipopolisacharide of Eca serogroup I. // Phytopathology 1987. V. 77. P.828−832.
  46. Cavalcanti R., Resende M.V., Zacaroni A.B. Acibenzolar-S-methyl and Ecolife in the induction of defense responses in tomato against bacterial spot (Xanthomonas vesicatoria) // Fitopatologia Brasileira 2006. V.31. № 4. P. 1930.
  47. Chen J., Roberts P., Gabriel D.W. Effects of a virulence locus from Xanthomonas campestris 528T on pathovar status and ability to elicit blight symptoms on crucifers // Phytopathology 1994. V.84 P.1458−1464.
  48. Clayton E.E. Control of blackleg of cruciferous crops by seed and seedbed treatment // Phytopatology 1924. V.14 P.24−25.
  49. Clayton E.E. Second progress report of black rot (Pseudomonas campestris) investigation on Lons Island: Seed infection and seasonal development // Phytopathology 1925. V.15. P. 48−49.
  50. Coons A.N., Creech H.J., Jones K.N., Berliner E.P. The demonstration of pneumococcal antigen in tissue by the use of fluorescents antibody. // J. Gen. Microbiol, 1942 V.45. № 3. P. 159−170.
  51. Coock A.A., Laron R.H., Walker J.C. Relation of the black rot pathogen to cabbage seed // Phytopathology 1952. V.42. P.316−320.
  52. Coock A.A., Walker J.C., Laron R.H. Studies on the disease cycle of black rot of crucifers // Phytopathology 1952. V.42 № 1. P. 162−167.
  53. Dane F., Shaw J J. Growth of bioluminescens Xanthomonas campestris pv. campestris in susceptible and resistant host plants // Molecular Plant Microbe Interactions-1993. V.6. P.786−789.
  54. Fargier E., Manceau C. Pathogenicity assays restrict the species Xanthomonas campestris into three pathovars and reveal nine races within X. campestris pv. campestris//Plant Pathology 2007 V.56. P. 805−818.
  55. Guo H., Dickson M. H., Hunter J. E. Brassica napus sources of resistance to black rot of crucifers and inheritance of resistance // HortScience 1991. V.26. P.1545−1547.
  56. Goto M. Fundamentals of bacterial plant pathology. San Diego. Academic Press Ins.-1992. P.358.
  57. Gurta D.K., Choudhary K.C. Infection of radich ahd rayosag seeds by Xanthomonas campestris pv. campestris. Indian Journal of Mycology and Plant Pathology 1995. V.25. P.332.
  58. Hetz G.P., Takatzu A., Reifscheider F.J. Evaluation of methods inoculating Xanthomonas campestris pv campestris for detecting sources of resistance in brassicas. Fitobacteriologia Brasileira- 1998.V.13. P.207−210.
  59. Hunter J.E., Abami G.S., Becker R.F. Observation on the source and spread of Xanthomonas campestris in an epidemic of black rot in New York // Plant Disease Reporter 1975. V. 59. № 5. P.384−387.
  60. Hunter, J. E., Dickson, M. H., Ludwig J. Source of resistance to black rot of cabbage expressed in seedlings and adult plants. Plant Disease 1987. V.71. P. 263−266.
  61. Ignatov, A., Hida K., Kuginuki Y. Black rot of crucifers and sources of resistance in Brassica crops. Jpn. Agric. Res. Q. — 1998. V.32. P.167−172.
  62. Ignatov A., Kuginuki Y., Hida K. Distribution and inheritance of race-specific resistance to Xanthomonas campestris pv. campestris in Brassica rapa and B. napus. J. Russian Soc. Plant Pathologists 2000. V.l. P.83−87.
  63. Ignatov A.N., Monakhos G.F., Djalilov F.S. Shift of Xanthomonas campestris pv. campestris race 1 to race 0 in planta // J. Rus Soc. Plant Pathology 2001. V. 2. P.68−70.
  64. Kamoun S., Kado C.I. Phenotypic switching affecting Chemotaxis, xanthan production and virulence in Xanthomonas campestris // Applied and Environmental Microbiology 1990. V.56. P. 3855−3860.
  65. Kamoun, S., Kamdar, H. V., Tola, E., Kado, C. I. Incompatible interactions between crucifers and Xanthomonas campestris involve a vascular hypersensitive response: Role of the hrpX locus. Mol. Plant Microbe Interact. -1992.V.5. P. 22−23.
  66. Kennedy B.W., Alcorn S.M. Estimates of U.S. crop losses to procaryote plant pathogens // Plant Disease 1980. V.64. № 7. P.674−676.
  67. Kim B.S.Testing for detection for Xanthomonas campestris pv. campestris in crucifer seeds and seed disinfection // Korean J. Plant Pathology 1986. V.2. № 2. P.96−101.
  68. Kishun R. Seed treatment for control of cabbage black rot // Journal of Turkish Phytopathology- 1984. V.13. №.2. P.81−86.
  69. Kocks C.G., Zadoks J.C., Ruissen M.A. Spatio-temporal development of black rot (Xanthomonas campestris pv. Campestris in cabbage in relation to initial inoculum levels in field plots in The Netherlands// Phytopathology — 1999. V.48. P. 176−188.
  70. Kleinhempel H., Naumann K., Spaar D. Bakterrielle Erkrankungen der Kulturpflanzen, Jena: Gustav Fischer Verl 1989. P. 573.
  71. Kohl J., Wolf J. Alternaria brassicicola and Xanthomonas campestris pv. campestris in organic seed production of Brassicae: Epidemiology and seed infection. Plant Research International. Wageningen, September 2005. — 363 P.
  72. Laboratory guide for identification of plant-pathogenic bacteria /Schaad N.W., Jones J.B., Chun W. eds. 3rd ed. American Phytopathological Society Press. St. Paul. Mn., 2001.
  73. Lelliot R.A., Stead D.E. Methods for the diagnosis of bacterial diseases of plants. Oxford etc.: Blackweell sei. publ., 1987. — 216 P.
  74. Leite R.T., Ruano O., Komori N. Characterization of Xanthomonas campestris pv. Campestris isolated from canola // Summa Phytopathologia 1994. B.20. P. 35−38.
  75. Lin C.Y. Studies on black rot of cruciferous crops caused by Xanthomonas campestris pv. campestris in Taiwan // Plant Protection Bulletin, Taiwan — 1981. V.23. № 3. P.157−167.
  76. Machmud M., Black L. A Xanthomonas leaf spot of crucifers caused by Xanthomonas campestris pv. armoraciae // Contributions, Central Research Institute for Food crops, Bogor- 1985. № 74. P. 1−13.
  77. Maddox D. Regulatory needs for standartized seed health test // In. — C. McGee DC, ed. Plant Pathogens and the Worldwide Movement of Seeds. St. Paul, USA -C. ASP Press-1997. P.81−92.
  78. McElhaney R., Alvares A.M., Kado C.I. Nitrogen. limits Xanthomonas campestris pv. campestris invasion of the host xylem // Physiological and Molecular Plant Pathology 1998. V.52. P. 15−24.
  79. Nakane P.K. New developments in tissue enzyme-labeled immunoassays // Immunoassays: clinical laboratory techniques for the 1980s, Alan R., Liss Inc., New York 1980. P. 157−169.
  80. Napoles P., Amat Z., Ramires P. The use of different treatmens to control Xanthomonas campestris pv. campestris in cabbage seeds // Protession de Plantes — 1991. V.l. № 3. P.33−41.
  81. Neergaard P. Seed Pathology // The MacMillian Press LTD, London and Basingstoke 1979. V.l. 839 P.
  82. Norman D., Alvarez A. A rapid method for presumptive identification of Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae and other xanthomonads // Plant Disease -1989. V. 73. № 8. P. 654−658
  83. Obradovic A., Arsenijevic M., Draizera T. First report of black rot of cauliflower and cale caused by Xanthomonas campestris pv campestris in Yugoslavia // Plant Disease 1999. V.83. P.109−165.
  84. Randhawa P., Schaad N.W. Selective isolation of Xanthomonas campestris pv. campestris from crucifer seeds // Phytopathology 1984. V68. P.249−252.
  85. Schaad N.W., White W.C. Survival of Xanthomonas campestris in soil // Phytopathology- 1974. V64. № 12. P. 1518−1520.
  86. Schaad N.W., Kendrick R. A qualitative method for detecting Xanthomonas campestris in crucifer seed//Phytopathology. 1975. V65. № 9. P. 1034−1036.
  87. Schaad N.W. Control of black rot of cabbage // Uni. Ga. Agric. Exp. Station Bull- 1976. № 187. P.5−20.
  88. Schaad N.W., Sitterly W.R., Humaydan H. Relationship of incidence of seedborne Xanthomonas campestris to black rot of crucifers // Plant Disease — 1980. V.64. № 1. P.91−92.
  89. Schaad N.W. Detection of seedborne bacteria plant pathogens // Phytopathology 1982. V66. P. 885−890.
  90. Schaad N.W. Detection of Xanthomonas campestris pv campestris in crucifer seeds // Seed Sc.Technol. 1983. V. l 1. № 3. P.877−883.
  91. Schaad, N.W., Jones, J.B. Lacy G.H. Laboratory guide for the identification of plant pathogenic bacteria. 3rd edition. St. Paul, Minnesota // American Phytopathological Society 2002. P. 175−200.
  92. Shidaki T., Nelson S., Alvares A. Symptomles spread of blight-inducing strains of Xanthomonas campestris pv campestris on cabbage seedlings in misted seedbeds // European Journal of Plant Pathology 2000. № 106. P.339−346/
  93. Shiomi T. Black rot of cabbage seeds and it’s disinfection under hot-air treatment // JARQ 1992. V. 26. P. 13−18.
  94. Shelton A.M., Hunter J.E. Evaluation of the potential of flea beetle Phyllotreta cruciferae to transmit Xanthomonas campestris pv campestris, causal agent of black rot of crucifers // Canad.J. of Plant Pathology 1985. V.7. № 3. P.308−310.
  95. Strandberg J. Spatial distribution of cabbage black rot and the estimation of diseased plant populations // Phytopathology 1973. V63. № 8. P. 998−1003.
  96. Thurstone L. L. Multiple factor analysis // Psychological Review 1931. V.38. P.406−427.
  97. Tryon R. C. Cluster Analysis. Ann Arbor, MI: Edwards Brothers, 1939.
  98. Tsygankova, S.V., A.N. Ignatov, E.S. Boulygina, B.B. Kuznetsov, E.V. Korotkov. Genetic intraspecies relationships in Xanthomonas campestris pv. campestris revealed by novel rep-PCR primers // European J. Plant Pathol. -2004. V. l 10. № 8. P.845−853.
  99. Vicente J. G., Conway J., Roberts S. J., Taylor J. D. Identification and origin of Xanthomonas campestris pv. campestris races and related pathovars // Phytopathology 2001. V. 91. P. 492−499.
  100. Vicente J. G., Taylor J. D., Sharpe A. G., Parkin I. A. P., Lydiate D. J., King, G. J. Inheritance of race-specific resistance to Xanthomonas campestris pv. campestris in Brassica genomes // Phytopathology 2002. V. 92. P. 11 341 141.
  101. Westman, A. L., Kresovich, S., Dickson, M. H. Regional variation in Brassica nigra and other weedy crucifers for disease reaction to Alternaria brassicicola and Xanthomonas campestris pv. campestris II Euphytica — 1999. V. l06. P.253−259.
  102. Williams, P. H., Staub, T., Sutton, J. C. Inheritance of resistance in cabbage to black rot // Phytopathology 1972. V.62. P.247−252.
  103. Williams P.H. Black rot: a continuing threat to world crucifers // Plant disease. -1980. V. 64, № 8. P.736−742.
  104. Yuen G. Y. K., Alvarez A.M. Aberrant symptoms on cabbage caused by strains of Xanthomonas campestris // Phytopathology. 1985. V. 75. P. 1382.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!