Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Биологические свойства бактерий Ornithobacterium Rhinotracheale, выделенных на территории Российской Федерации

Диссертация: Биологические свойства бактерий Ornithobacterium Rhinotracheale, выделенных на территории Российской Федерации
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Практическая значимость работы. В результате проведенных исследований впервые в РФ разработаны «Методические рекомендации по лабораторной диагностике орнитобактериоза птиц» (2010 г.), одобренные ученым советом ФГУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» и утвержденные Заместителем руководителя Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору в установленном порядке. Научная… Читать ещё >

Содержание

  • аминного азота 250−300мг%) с добавлением экстракта пекарских дрожжей
  • ХДЭ — агар на основе мясного гидролизата по Хоттингеру с добавлением 10% экстракта пекарских дрожжей
  • ХКЭ — агар на основе мясного гидролизата по Хоттингеру с добавлением 10% эритроцитов крови лошади
  • ХФ — агар на основе мясного перевара по Хоттингеру с добавлением экстракта пекарских дрожжей, эритроцитов крови лошади, сыворотки крови крупного рогатого скота I категории и 40%-ного раствора глюкозы
  • АТСС — Американская коллекция типовых культур
  • API — analytical profile index — аналитический индекс профилей
  • GN — gram-negative identification card — карты для идентификации ферментирующих и неферментирующих грамотрицательных палочек
  • NH — Neisseria-Haemophilus identification card — карты для идентификации клинически значимых прихотливых микроорганизмов
  • PPLO — среда для культивирования плевропневмониеподобных микроорганизмов
  • РРВА — PPLO-бульон с добавлением аргинина- PPLOA — PPLO-arap- РРЬОБ — PPLO-бульон

PPLOF — PPLO-arap с добавлением 10% экстракта пекарских дрожжей, эритроцитов крови лошади, сыворотки крови крупного рогатого скота 1-й категории, 40%-ного раствора глюкозы- SDS — sodium dodecyl sulfate — додецил сульфат натрия-

XSA — агар на основе мясного перевара по Хоттингеру с добавлением сыворотки крови цыплят-

XSB — агар на основе мясного перевара по Хоттингеру с добавлением сыворотки крови крупного рогатого скота 1-й категории.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.^.

1.1. Роль О. гМпо (гаскеа1е в патологии птиц.

1.2. Характеристика бактерий вида О. гМпо1гаскеа1е.

1.2.1. Классификация и таксономия.

1.2.2. Тинкториальные свойства.

1.2.3. Культурально-морфологические и биохимические свойства.

1.2.4. Патогенные свойства.

1.2.5. Серологические свойства.

1.3. Эпизоотологические особенности, клиническое проявление и патологоанатомические изменения при орнитобактериальной инфекции.

1.4. Дифференциальная диагностика орнитобактериальной инфекции от других болезней бактериальной этиологии.

1.4.1. Риемереллез уток.

1.4.2. Пастереллезы.

1.4.3. Инфекционный ринит.:.

1.4.4. Бордетеллиоз (ринит индеек).

1.4.5. Колибактериоз.

1.5. Методы лабораторной диагностики орнитобактериоза птиц.

1.5.1. Бактериологическое исследование.

1.5.2. Серологическое исследование.

1.5.3. Иммуногистохимическое исследование.

1.5.4. Молекулярно-биологические исследования.

Биологические свойства бактерий Ornithobacterium Rhinotracheale, выделенных на территории Российской Федерации (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

Заболевания респираторного тракта животных являются одной из важнейших проблем в ветеринарии. В частности, к ним относится и орнитобактериоз птиц. Особый интерес ветеринарных врачей к данному заболеванию обусловлен скудностью информации и сложностью его диагностики.

Возбудителем орнитобактериоза птиц являются бактерии семейства Flavobacteriaceae, рода Ornithobacterium, вида Ornithobacterium rhinotracheale [39, 87]. Заболевание относится к высоко контагиозным и характеризуются респираторным синдромом.

Орнитобактерии относятся к паразитическим микроорганизмам и могут вызывать заболевание как самостоятельно, так и в ассоциации с другими инфекциями вирусной, бактериальной или микоплазмозной этиологии [6, 42, 87, 139].

Впервые орнитобактерии были выделены в 1981 году в Германии, от индеек, имели сходные характеристики с представителями рода Pasteurella, поэтому были отнесены к пастереллоподобным микроорганизмам. Более подробно эти бактерии были описаны в 1991 году Jan DuPreez, а в 1994 году вынесены Vandamme et al. в новый вид бактерий, названный Ornithobacterium rhinotracheale [42, 91, 101].

По данным зарубежной литературы в настоящее время бактерии О. rhinotracheale широко распространены в промышленных птицеводческих хозяйствах и среди дикой птицы (утки, гуси, чайки, страусы, фазаны, голуби и т. д.) многих стран, таких как Нидерланды, Франция, США, Южная Африка, Великобритания, Испания и др. [3, 4, 14, 15, 27, 47, 55, 60, 64, 91]. В то же время данные по орнитобактериозу в РФ ограничиваются только результатами серологических исследований, которые свидетельствуют о возможной циркуляции О. rhinotracheale на территории страны. Мониторинговые исследования и учет орнитобактериальной инфекции в РФ не проводятся, а также отсутствуют нормативные документы по диагностике данного возбудителя [4, 15].

К орнитобактериозу среди домашней птицы восприимчивыми являются только индейки и куры.

Заболевание по основным клиническим и патологоанатомическим признакам имеет много общего с различными респираторными инфекциями: вирусной (например, метапневмовирусная инфекция, инфекционный бронхит кур, болезнь Ньюкасла и т. д.), микоплазмозной и бактериальной этиологии [3,4, 6, 8, 33,61,64,91, 109].

Специфическими признаками инфекции, вызванной О. rhinotra.chea.le, являются отставание в росте, серозно-фибринозные аэросаккулиты и одно-или двусторонние пневмонии.

Лечение орнитобактериоза антимикробными препаратами связано с определенными трудностями, так как большинство штаммов О. гЫпо&асЬеа1е невосприимчивы к широко распространенным антибиотикам [3, 15, 24, 44, 49, 62, 64, 83, 91].

Исходя из вышеизложенного можно заключить, что постановка вопроса о выделении изолятов О. гМпо&аскеа1е, циркулирующих натерритории РФ, изучении их биологических свойств с целью использования для изготовления диагностикумов и вакцин, является актуальной задачей, имеющей научное и практическое значение.

Цель и задачи исследований. Основной целью данных исследований было выделение и идентификация бактерий вида О. гМпо1таскеа1е из патологического материала от птиц, изучение их морфологических, культуральных, биохимических, антигенных и патогенных свойств.

Для выполнения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

1. Выделить изоляты бактерий О. гМпо&аскеа1е от птиц из птицеводческих хозяйств РФ.

2. Изучить биологические свойства изолятов О. гЫпо^аскеа1е, выделенных на территории РФ в сравнении с референтными штаммами.

3. Подобрать оптимальную питательную среду и условия для культивирования О. гЫпо1таскеа1е.

4. Подобрать оптимальные условия для длительного хранения штаммов О. гЫпо1таскеа1е.

5. Получить специфические компоненты бактерий О. гЫпо1гаскеа1е для постановки серологических реакций.

6. Определить антигенное родство между референтными штаммами и изолятами бактерий О. гЫпо1таскеа1е.

Научная новизна работы. В результате проведенных исследований патологического материала получены 19 патогенных изолятов О. гЫпо&аскеа1е, один из которых детально изучен, паспортизирован и депонирован как производственный штамм в коллекции бактериальных культур ФГУ «Всероссийский государственный Центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» (ФГУ «ВГНКИ»).

Изучены биологические свойства 3 референтных штаммов и 4 полевых изолятов О. гЫпо№аскеа1е.

Изучена чувствительность полевых изолятов О. гЫпо&аскеа1е к широкому спектру антибактериальных препаратов.

Подобрана питательная среда и оптимальные условия для культивирования О. гМпо1гаскеа1е с целью получения большого объема биомассы.

Определены оптимальные условия и сроки хранения возбудителя орнитобактериоза птиц.

Установлены нуклеотидные последовательности фрагмента гена 168 рРНК выделенных изолятов О. гЫпо^аскеа1е и заложены в базу данных вепБапк.

Практическая значимость работы. В результате проведенных исследований впервые в РФ разработаны «Методические рекомендации по лабораторной диагностике орнитобактериоза птиц» (2010 г.), одобренные ученым советом ФГУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» и утвержденные Заместителем руководителя Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору в установленном порядке.

Штамм «Задонский-1» № 130 ДЕП, депонирован в коллекции бактериальных культур ФГУ «ВГНКИ» и используется при производстве набора ИФА для выявления антител в сыворотке крови кур к О. гЫпо1гасЬеа1е.

В коллекцию бактериальных культур ФГУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» после детального изучения' заложены следующие изоляты О. гМпо1гаскеа1е: «Т-1», «Кр-1», «Б-1». Основные положения выносимые на защиту.

— штамм О. гЫпо&аскеа1е «Задонский-1» № 130 ДЕП, депонированный в коллекции ФГУ «ВГНКИ»;

— результаты изучения биологических свойств референтных штаммов и выделенных изолятов О. гЫпо^аскеа1е.

— питательная среда для получениябиомассы бактерий О. гЫпо1таскеа1е.

— антигенное родство выделенных изолятов;

— способы хранения возбудителя орнитобактериоза птиц в лабораторных условиях.

Апробация результатов работы. Основные материалы диссертационной работы доложены и опубликованы в материалах научных конференций: «Актуальные проблемы инфекционной патологии ветеринарной медицины» посвященная памяти члена-корреспондента РАСХН Вишнякова И. Ф. (г. Покров, 2009 г.), VII Всероссийской конференции с международным участием «Молекулярная диагностика — 2010» (г. Москва, 2010 г.), «Достижения молодых ученых в ветеринарную практику», посвященная 30-летию создания СМУ ФГУ «ВНИИЗЖ» (г. Владимир, 2010 г.), а также на заседаниях ученого совета ФГУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» в 2007;2010 гг.

Публикации научных исследований. По теме диссертационной работы опубликовано 7 научных работ в журналах и материалах научных конференций, 3 из них в изданиях рекомендованных ВАК РФ.

Личный вклад соискателя. Диссертационная работа выполнена автором самостоятельно. Нуклеотидное секвенирование осуществлялось сотрудниками лаборатории диагностики вирусных болезней птиц ФГУ «ВНИИЗЖ».

Исследования по диссертационной работе выполнены в 2007;2010 гг в соответствии с планами НИР в ФГУ «Федеральный центр охраны здоровья животных».

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 130 страницах компьютерного текста и содержит разделы: введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение результатов исследований, выводы, практические предложения и приложения.

Список литературы

включает 143 источника, в том числе 115 зарубежных. Работа иллюстрирована 11 рисунками и 17 таблицами. В приложении представлены копии титульных листов документов, подтверждающих результаты отдельных этапов работы, их научную новизну и практическую значимость.

5. ВЫВОДЫ.

1. Впервые выделены изоляты О. гЫп (Ягаскеа1е от птиц, поступавших из различных регионов РФ, и изучены их основные биологические свойства.

2. Изучены генетические свойства изолятов орнитобактерий. Установлена идентичность последовательностей гена 168 рРНК изолятов «Кр-1», «Т-1» и «Б-1» с изолятами из Тайваня: РТ-8В930 803-Е2, СУ200 505Ь2 и зарубежным штаммами и87 100, АТСС-51 464, ОЯ-Ж. Последовательность гена 168 рРНК штамма «Задонский-1» № 130 ДЕП отличалась от последовательностей генов зарубежных штаммов, содержащихся в базе данных ОепВапк.

3. Обоснована рецептура питательной среды на основе мясного гидролизата по Хоттингеру (с содержанием аминного азота 250−300 мг%) и определен оптимальный способ культивирования О. гЫпо1гаскеа1е (в динамических условиях), что позволяет через 6 часов культивирования получить максимальный выход бактериальной массы (8,40 1ё КОЕ/см3).

4. Установлено, что лиофильное высушивание орнитобактерий в сахарозо-желатозной среде и последующее хранение при минус 40 °C в течение 12 месяцев (период наблюдения) не изменяет их биологических свойств.

О о.

5. Определена заражающая доза (3×10 КОЕ/см) у цыплят необходимая для воспроизведения орнитобактериоза птиц. Было показано, что гибель цыплят и наиболее тяжелые поражения вызывал штамм «Задонский-1» № 130 ДЕП.

6. В этиологии респираторной патологии кур была подтверждена роль О. гЫпо1таскеа1е при экспериментальном заражении, при котором у птиц опытных групп наблюдали развитие пневмонии, трахеита и синусита.

7. Впервые в РФ получены специфические компоненты О. гШпо^аскеа1е и определена степень антигенного родства изолятов между собой и по отношению к референтным штаммам. Изолят «Кр-1» родственен референтным штаммам №№ 51 463, 51 464, изолят «Б-1» — штамму № 51 463, в то время как, изолят «Т-1» и штамм «Задонский-1» № 130 ДЕП не родственны ни одному из референтных штаммов.

8. Установлено, что выделенные изоляты О. гЫпо1гаскеа1е чувствительны к аминопенициллинам, ингибиторозащищенным пенициллинам, фторхинолонам III поколения, группе левомицетина, группе нитрофурановых препаратов и цефалоспоринам III поколения.

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Для практического использования предлагаются «Методические рекомендации по лабораторной диагностике орнитобактериоза птиц», утвержденные Заместителем руководителя Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору. Данная методика позволяет проводить выделение орнитобактерий из патологического материала и их идентификацию.

Штамм «Задонский-1» № 130 ДЕП депонирован в коллекции бактериальных культур ФГУ «ВГНКИ» и используется при производстве набора для выявления антител к О. rhinotracheale в ИФА.

Показать весь текст

Список литературы

  1. И.П., Воробьев A.A. Статистические методы в микробиологических исследованиях. — Л.: Медгиз, 1962. —180 с.
  2. И.А., Васильев Д. А., Козлова Д. И. Пастереллёз, как зооантропонозная инфекция // Вопр. вет. микробиологии, эпизоотологии и вет.-сан. экспертизы: тез. докл. Ульяновск, 1994.- С. 26−32.
  3. Болезни домашних и сельскохозяйственных птиц: пер. с англ. / под ред. Б. У. Кэлнека и др. -М.: Аквариум Бук, 2003. -1232 с.
  4. А.Н., Рождественская Т. Н. Респираторный синдром бактериальной этиологии у птиц // Ш Междунар. вет. конгр. по птицеводству. -М., 2007.-С. 176−181.
  5. Биологические свойства пастерелл, выделенных при респираторном синдроме птиц / А. Н. Борисенкова, Т. Н. Рождественская, А. И. Лебедева, О. Б. Новикова // Рос. вет. журн. сельскохозяйственных животных. — 2007. — № 3. -С. 39−40.
  6. О.В. Патоморфологическая характеристика патогенности Р. multocida различных серовариантов и их неочищенных экзотоксинов: автореф. диссертации канд. вет. наук. — М., 1999. — 23 с.
  7. И.В. Возбудители пастереллёзов и близких к ним заболеваний. М.: Медицина, 1971.-288с.
  8. JI.H. Перспективы изучения и усовершенствования процессов культивирования патогенных микроорганизмов // ЖМЭИ. — 1981. -№ 8.-С. 19−25.
  9. Инфекционные болезни животных / Б. Ф. Бессарабов, А. А. Ватутин, Е. С. Воронин и др. -М.: КолосС, 2007. 671 с.
  10. Инфекционная патология животных: 3 т. Т. 3 / под ред. А. Я. Самуйленко. -М.: РАСХН, 2009. 881 с.
  11. Р.Н., Зеленский В. П., Грошева Г. А. Лабораторная диагностика болезней птиц. -М.: Агропромиздат, 1989. 256 с.
  12. Ленгелер Й, Древе Г., Шлегель Г. Современная микробиология. Прокариоты: в 2 т. Т. 1 -М.: Мир, 2005. 656 с.
  13. В.Г. Новое заболевание в комплексе респираторных проблем птиц. Орнитобактериальный ринотрахеит // Белорус, сельское хоз-во. — 2007. -№ 11.-С. 51−53.
  14. Л.Р., Макаров В.В. Ornithobacterium rhinotracheale: бактериология, патология, эпизоотология // Ветеринарная патология. 2006. — № 4. -С. 181−185.
  15. Методические указания по лабораторной диагностике пастереллёза животных и птиц / Г. Е. Толяронок, А. С. Андрусевич, Р. П. Лизун и др. Минск: РУП «Ин-т эксперим. ветеринарии им. С.Н. Вышелесского», 2009. — 24 с.
  16. Методы общей микробиологии: в 3 т. Т.1 / Ф. Герхардт, Р. Г. Мюррей, Р. Н. Костилов и др. М.: Мир, 1983. — 536 с.
  17. Методы общей микробиологии: в 3 т. Т. З / Ф. Герхардт, Р. Г. Мюррей, Р. Н. Костилов и др. М.: Мир, 1983. — 264 с.
  18. Микробиологические и вирусологические методы в ветеринарной медицине: справ, пособие / А. Н. Головко, В. А. Ушкалов, В. Г. Скрыпник и др. — Харьков: ХГМТ, 2007. 512 с.
  19. Определитель бактерий Берджи: в 2 т. Т. 1: Пер. с англ. / Под ред. Дж. Хоулта, Н. Крига, П. Снита и др. -М.: Мир, 1997. 432 с.
  20. Определитель нетривиальных патогенных грамотрицательных бактерий: пер. с англ. / Р. Вейант, У. Мосс, Р. Уивер и др. М.: Мир, 1999. -791 с.
  21. С.Д. Основы культивирования микроорганизмов и клеток: пер. с англ. -М.: Мир, 1978. 332 с.
  22. П.Ф., Сухинин A.A. Ринотрахеит птиц, вызванный орнитобакгериями // Архив вет. наук. 2003. — Т.4, № 51. — С. 1−9.
  23. H.A., Родионова Г. Л. О причинах спонтанной агглютинации паратифозных, А диагностикумов // Вакцины и сыворотки. Материалы по производству. -1966.—Вып. 6. — С. 210−217.
  24. Ю.А., Собко А. И. Определение соответствия эпизоотических штаммов вируса ящура производственным // Ветеринария. — 1973.-№ 1.-С. 43−46.
  25. Ю.Н., Кононенко А. Б., Виткова О.Н. Ornithobacterium rhinotracheale: распространение и диагностика // Ш Междунар. вет. конгр. по птицеводству. М., 2007. — С. 181 -183.
  26. Энтеробактерии: руководство для врачей / И. В. Голубева, В. А. Килессо, Б. С. Киселева и др. М.: Медицина, 1985. — 321 с.
  27. A potential new serotype of Riemerella anatipestifer isolated from ducks in Thailand / P. Pathanasophon, P. Phuektes, T. Tanticharoenyos, W. Narongsak // Avian Pathology. -2002. Vol. 31, № 3. -P. 267−270.
  28. Allan B J., van den Hurk J.V., Potter A. A. Characterization of Escherichia coli isolated from cases of avian colibacillosis // Canad. J. Vet. Res. —1993. — Vol. 57. — P. 146 151.
  29. Archetti J., Horsfall F.L. Persistent antigenic variation of influenza // J. Exp. Med. — 1950. Vol. 92.-P. 441.
  30. Banani M., Pourbakhsh S.A., Khaki P. Characterization of Ornithobacterium rhinotracheale isolates from commercial chickens // Arch. Inst. Razi.-2001.-Vol. 52.-P. 27−34.
  31. Bernardet J.F., Nakagawa Y., Holmes B. Proposed minimal standards for describing new taxa of the family Flavobacteriaceae and emended description of the family // Intern. J. of Systematic and Evolutionary Microbiology. — 2002. — Vol. 52.-P. 1049−1070.
  32. Blackall P.J. Infectious Coryza: Overview of the disease and new diagnostic options // Clinical Microbiology Reviews. — 1999. — Vol. 12, № 4. — P. 627−632.
  33. Blackall P.J., Doheny C.M. Isolation and characterization of Bordetella avium and relates species and an evaluation of their role in respiratory disease in poultry // Austral. Vet. J. 1987. — Vol. 64. — P. 235−239.
  34. Bordetella avium virulence measured in vivo and in vitro / Temple L.M., Weiss A.A., Walker K.E. et al. // Infection and Immunity. 1998. — Vol. 66, № 11. -P. 5244−5251.
  35. Bordetella avium sp. nov., isolated from the respiratory tracts of turkeys and other birds / K. Kersters, K.H. Hinz, A. Hertle et al. // Intern. J. Syst. Bacteriology. 1984. — Vol. 34, № 1. — P. 56−70.
  36. Bergey’s manual of systematic bacteriology. — 2nd ed. Vol. 2. The Proteobacteria. Part A / ed. G.M. Garrity et a!.- Bergey’s Manual Trust Department of Microbiology and Molecular Genetics Michigan State University, 2005. 1136 p.
  37. Bragg R.R., Greyling J.M., Verschoor J.A. Isolation and identification of NAD-independent bacteria from chickens with symptoms of infectious coryza // Avian Pathology. 1997. — Vol.26, № 3. — P. 595−606.
  38. Carriage of potentially pathogenic Escherichia coli in chickens / S. Kariuki, C. Gilks, J. Kimari et al. // Avian Diseases. 2002. — Vol. 46, № 3 — P. 721−724.
  39. Chansiripornchai N., Wanasawaeng W., Sasipreeyajan J. Seroprevalence and identification of Ornithobacterium rhinotracheale from broiler and broiler breeder flocks in Thailand // Avian Diseases. -2007. Vol. 51, № 3. — P. 777−780.
  40. Christensen J.P., Bisgaard M. Avian pasteurellosis: Taxonomy of the organisms involved and aspects of pathogenesis // Avian Pathology. — 1997. Vol. 26, № 3.-P. 461−483.
  41. Control of Ornithobacterium rhinotracheale in poultry / K. Warner, M.I. Clark, S. Perez, R. Jennison // Vet. Record. 2009. — Vol. 165, № 22. — P. 668.
  42. Development of a serum plate agglutination test to detect antibodies to Ornithobacterium rhinotracheale / A. Back, D. Halvorson, G. Rajashekara, K.V. Nagaraja // J. Vet. Diagn. Invest. 1998. — Vol. 10. — P. 84−86.
  43. Diagnosis and incidence of Ornithobacterium rhinotracheale infections in commercial broiler chickens at slaughter / L. van Veen, J. Nieuwenhuizen, D. Mekkes et al. //Vet. Record. -2005. Vol. 156. -P. 315−317.
  44. Diagnosis of Ornithobacterium rhinotracheale infection in chickens by ELISA / M. Refai, A. El-Gohary, S.A. Attia, R.A. Khalifa // Egyptian J. of Immunology. 2005. -Vol. 12, № 1.-P. 87−93.
  45. Devriese L.A., Herdt P., Haesebrouck F. Antibiotic sensitivity and resistance in Ornithobacterium rhinotracheale strains from Belgian broiler chickens // Avian Pathology. 2001. — Vol. 30. — P. 197- 200.
  46. Dho-Moulin M. Les Escherichia coli pathogenes des volailles I ! Annales de Medecine Veterinair. 1993. — Vol. 137. — P. 353−357.
  47. Dho-Moulin M., Fairbrother J.M. Avian pathogenic Escherichia coli (APEC) II Vet. Research. 1999. — Vol. 30. — P. 299−316.
  48. Domingo D.T., Jackwood M.W., Brown T.P. Filamentous forms of Bordetella avium: culture conditions and pathogenicity // Avian Diseases. — 1992. Vol. 36, № 3. — P. 707−713.
  49. Emele J., Loht J. Respiratory diseases in chickens of non-viral origin // World Poultry. 2001. — Vol.17, № 12. — P. 39−43.
  50. Evaluation of a commercial system for the identification of Ornithobacterium rhinotracheale / K.W. Post, S.C. Murphy, J.B. Boyette, P.M. Resseguie // J. Vet." Diagn. Invest-1999.-Vol. 11.-P. 97−99.
  51. Evaluation of two experimental infection models for Avibacterium paragallinarum / Q. Zhao, Y. Sun, X. Zhang et al. II Vet. Microbiology. 2010. -Vol. 141.-P. 68−72.
  52. Etude de l’infection par Ornithobacterium rhinotracheale en elevages de dindes de chair / T. Bazin, B. Dominique, M. Antoine et al. Il Sixiemes Journees de la Recherche Avicole, St. Malo, 30 et 31 mars 2005. P. 360−364.
  53. Experimental infection in turkeys and chickens with Ornithobacterium rhinotracheale / P. van Empel, H. van den Bosch, D. Goovaerts, P. Storm // Avian Diseases. -1996. Vol. 40, № 4. — P. 858−864.
  54. Genetic diversity of Ornithobacterium rhinotracheale strains isolated from poultry in France / S. Leroy-Setrin, G. Flaujac, K. Thenaisy, E. Chaslus-Dancla // Letters in Applied Microbiology. -1998. Vol. 26. -P. 189−193.
  55. Hafez H.M. Emerging and re-emerging diseases in poultry // World Poultry. -2003.-Vol. 19, № 7.-P. 23−27.
  56. Hafez H.M. Diagnosis of Ornithobacterium rhinotracheale II Intern. J. Poultry Sci.-2002.-Vol. 1,№ 5.-P. 114−118.
  57. Hafez H.M. Diagnostic approach and control of Ornithobacterium rhinotracheale «ORT» and other similar bacterial diseases in poultry // Selezione Veterinaria. 1999. — Vol. 8/9. — P. 551−565.
  58. Hafez H.M. Current status on the laboratory diagnosis of Ornithobacterium rhinotracheale «ORT» in poultry //Berl. Munch, tierarztl. Wschr. 1998. -Bd. Ill, № 4. -S. 143−145. '
  59. Hafez H.M. Current status on the role of Ornithobacterium rhinotracheale «ORT» in respiratory disease complexes in poultry // Arch. Geflugelkunde. 1996. — Bd. 60, № 5.-S. 208−211.
  60. Hafez H.M. Sting R. Investigations on Ornithobacterium rhinotracheale «ORT» isolates // Avian Diseases. 1999. — Vol. 43, № 1. — P. 1−7.
  61. Hafez H.M., Friedrich S. Isolation of Ornithobacterium rhinotracheale from meat turkey in Austria II Tierarztl. Umschau. 1998. — Bd. 53. — S. 500−502.
  62. Hafez H. M., Sting R. Serologic surveillance on Ornithobacterium rhinotracheale in poultry flocks using self-made ELISA // Proceedings of the 45th Western Poultry Disease Conference. Cancun, 1996. — P. 163−164.
  63. Harper M., Boyce J.D., Adler B. Pasteurella multocida pathogenesis: 125 years after Pasteur // FEMS Microbiol. Lett. 2006. — Vol. 265, № 1. — P. 110.
  64. Hemagglutinating activity of serovar reference strains of Ornithobacterium rhinotracheale / V. Vega, A. Zepeda, S. Ramirez et al. // J. Vet. Diagn. Invest. 2008. — Vol. 20. — P. 353−355.I
  65. Hinz K.H., Hafez H.M. The early history of Ornithobacterium rhinotracheale (ORT) //Arch. Geflugelkunde. -1997. -Bd. 61. S. 95−96.
  66. Hinz K.H. Acute exudative pneumonia and airsacculitis associated with Ornithobacterium rhinotracheale in turkeys // Vet. Record. — 1994. — Vol. 135, № 10. — P. 233−234.
  67. Hugo C.J., Jooste P.J. Culture media for genera in the family Flavobacteriaceae II Handbook of Culture Media for Food Microbiology / ed. J.F.I. Corry et al. Elsevier Sei. B.V., 2003. — P. 355−367.
  68. Immunohistochemical and serological investigation of experimental Ornithobacterium rhinotracheale infection in chickens / P. van Empel, M. Vrijenhoek, D. Goovaerts, H. Van Den Bosch I I Avian Pathology. 1999. — Vol. 28, № 2. — P. 187−193.
  69. Increased condemnation of broilers associated with Ornithobacterium rhinotracheale / L. Van Veen, E. Gruys, K. Frik, P. van Empel // Vet. Record. -2000. Vol. 147, № 15. — P. 422−423.
  70. Infection of turkeys with Ornithobacterium rhinotracheale and Mycoplasma synoviae / O. Zorman-Rojs, I. Zdovc, D. Bencina, I. Mrzel // Avian Diseases. 2000. — Vol. 44, № 4. — P. 1017−1022.
  71. Interaction of Ornithobacterium rhinotracheale and Bordetella avium in turkey poults / M. De Rosa, R. Droual, R.P. Chin, H.L. Shivaprasad // Proceedings 46th Western Poultry Disease Conference. 1997. — P. 52−53.
  72. Investigations on the clonality of isolates of Pasteurella gallinarum obtained from turkeys in Germany / M. Bisgaard, H. Christensen, K-P. Behr et al. II Avian Pathology. -2005. Vol. 34, № 2. — P. 106−110.
  73. Investigations on Ornithobacterium rhinotracheale in broiler flocks in Elazig province located in the East of Turkey / G. Ozbey, H. Ongor, D.T. Balik et al. // Vet. Med. Czech. — 2004. — Vol. 49, № 8. — P. 305−311.
  74. Iron acquisition by Ornithobacterium rhinotracheale / L.B. Tabatabai, E.S. Zehr, M.K. Zimmerli, K.V. Nagaraja // Avian Diseases. 2008. — Vol. 52, № 3. — P. 419 425.
  75. Isolation and differentiation of a cytochrome oxidase-negative strain of Ornithobacterium rhinotracheale from turkeys / M. Ryll, R. Gunther, H.M. Hafez, K.H. Hinz // Berl. Munch, tieraizu. Wschr.-2002. Bd. 115, № 7−8. — S. 274−277.
  76. Isolement d’un novel pathogene chez la dinde: Ornithobacterium rhinotracheale: conduit a tenir / Dudouyt J., Leorat J., Van Empel P. et al. // Proceedings of the J. de la Recherche Avicole, Angers. 1995. — P. 240−243.
  77. Isolation of Ornithobacterium rhinotracheale from chickens and turkeys / O. Erganis, M. Ates, H.H. Hadimli, M. Corlu // Tur. J. Vet. Anim. Sei. 2002. -Vol. 26.-P. 543−547.
  78. Isolation of Ornithobacterium rhinotracheale from turkeys in Quebec, Canada / P. Joubert, R. Higgins, A. Laperle et al. // Avian Diseases. 1999. — Vol. 43, № 3.-P. 622−626.
  79. Jackwood M.W., McCarter S.M., Brown T.P. Bordetella avium: an opportunistic pathogen in leghorn chickens // Avian Diseases. 2008. — Vol. 39, № 2. — P. 360−367.
  80. Jooste P.J., Hugo C.J. The taxonomy, ecologie and cultivation of bacterial genera belonging to the family Flavobacteriaceae / Intern. J. of Food Microbiology. — 1999.-№ 53.-P. 81−94.
  81. Jordan F.T.W., Pattison M. Poultry Disease. 4th ed. — Great Britain: W.B. Saunders Company Ltd., 1996. — 546 p.
  82. Kabir S.M.L. Avian colibacillosis and salmonellosis: a closer look at epidemiology, pathogenesis, diagnosis, control and public health concerns // Intern. J. Environ. Research Public Health. 2010. — Vol. 7. — P. 89−114.
  83. Koga Y., Zavaleta A.I. Intraspecies genetic variability of Ornithobacterium rhinotracheale in commercial birds in Peru // Avian Diseases. — 2005. Vol. 49, № 1.-P. 108−111.
  84. Lafay D. Ornithobacterium rhinotracheale: patogenicite et importance en medicine veterinaire: these doct. vet. — Toulouse, 2000. 83 p.
  85. La Ragione R.M., Woodward M.J. Virulence factors of Escherichia coli serotypes associated with avian colisepticemia // Reseach in Vet. Sei. — 2002. -Vol. 73.-P. 27−35.
  86. Marien M. Mixed respiratory infections in turkeys, with emphasis on avian metapneumovirus, Ornithobacterium rhinotracheale, Escherichia coli and Mycoplasma gallisepticum: these doct. vet. — Ghent, 2007. — 219 p.
  87. Minimization of pathologic changes in Ornithobacterium rhinotracheale infection in turkeys by temperature-sensitive mutant strain / V. Lopes, A Back, D.A. Halvorson, K.V. Nagaraja // Avian Diseases. 2002. — Vol. 46, № 1. — P. 177 185.
  88. Mohd-Zain Z., Jee T.L., Jusoff K. Phenotypic characteristics, antibiotic susceptibility and pathogenicity of Ornithobacterium rhinotracheale II WSEAS Transactions on Biology and Biomedicine. 2008. — Vol. 5, № 7. — P. 133−142.
  89. Molecular epidemiology of Ornithobacterium rhinotracheale / A. Amonsin, J.F.X. Wellehan, L.L. Li et al. II J. Clin. Microbiology. 1997. — Vol. 35, № 11. — P. 2894−2898.
  90. Molecular characterization of Ornithobacterium rhinotracheale / P. van Empel, P. Savelkoul, R. Segers et al. II P. van Empel Ornithobacterium rhinotracheale: thesis. Utrecht: University of Utrecht, The Netherlands, 1998. -P. 37−48.
  91. Mouahid M., Mutters R., Mannheim W. Rapid identification of Bordetella avium and related organisms on the basis of their cellular carbohydrate patterns I I Avian Pathology. -1991. Vol. 20, № 4. -P. 627−636.
  92. NAD (V-factor)-independent and typical Haemophilus paragallinarum infection in commercial chickens: A five year field study / R.F. Horner, G.C. Bishop, CJ. Jarvis etal. //Avian Pathology. -1995. Vol. 24, № 3. -P. 453−463.
  93. Nervous signs associated with otitis and cranial osteomyelitis and with Ornithobacterium rhinotracheale infection in red-legged partridges (Alectoris rufa) / B. Moreno, G. Chacon, A. Villa et al. // Avian Diseases. 2009. — Vol. 38, № 5.-P. 341−347.
  94. Ornithobacterium rhinotracheale gen. nov., sp. nov., isolated from the avian respiratory tract / P. Vandamme, P. Segers, M. Vancaneyt et al. // Intern. J. Syst. Bacteriology. 1994. — Vol. 44, № 1 — P. 24−37.
  95. Ornithobacterium rhinotracheale associated with respiratory infection and high mortality in turkey breeders / M. de Rosa, R. Droual, R. Chin et al. // American Association of Avian Pathologist Annual Meeting, Scientific Proceedings. 1995. — P. 126.
  96. Ornithobacterium rhinotracheale infection in Japan: preliminary investigations / E. Sakai, Y. Tokuyma, F. Nonaka et al. // Vet. Record. 2000. -Vol. 146, № 17.-P. 502−504.
  97. Ornithobacterium rhinotracheale infection in commercial laying-type chickens / SJ. Sprenger, D.A. Halvorson, K.V. Nagaraja et al. // Avian Diseases. -2000. Vol. 44, № 3. — P. 725−729.
  98. Ornithobacterium rhinotracheale infection in turkeys: experimental reproduction of the disease / S.J. Sprenger, A. Back, D.P. Shaw et al. // Avian Diseases. 1998. — Vol. 42, № 1. — P. 154−161.
  99. Pathological examination and bacterial reisolation by culture and PCR of experimental Ornithobacterium rhinotracheale infection in broiler chickens / A.
  100. Kilic, N. Timurkaan, H.B. Erta§, F. Yilmaz // Revue Med. Vet. 2009. — Vol. 160, № 3. — P. 140−144.
  101. Pathogenic bacteria related to respiratory diseases in poultry with reference to Ornithobacterium rhinotracheale isolated in India / T.R.G.K. Murthy, N. Dorairajan, G.A. Balasubramaniam et al. // Vet. Arhiv. 2008. — Vol. 78. — P. 131−140.
  102. Pathogenesis of avian pneumovirus infection in turkeys / F. F. Jirjis, S. L. Noll, D. A. Halvorson etal. //Vet. Pathology. -2002.- Vol. 39.- P. 300−310.
  103. Pastereila avium (Hinz and Kunjara 1977) comb. nov. and Pasterella volantium sp. nov. / R. Mutters, K. Piechulla, K.H. Hinz, W. Mannheim // Intern. J. Syst. Bacteriology. -1985. Vol. 35, № 1. — P. 5−9.
  104. Pasteurella multocida from outbreaks of avian cholera in wild and captive birds in Denmark / K. Pedersen, H.H. Dietz, J.C. Jorgensen et al. // J. of Wildlife Diseases. -2003. Vol. 39, № 4. -P. 808−816.
  105. Pharo H. Import risk analysis: belovo egg powders. New Zeland: Ministry of Agriculture and Forestry Wellington, 2003. — 14 p.
  106. Phenotypic characteristics of Riemerella anatipestifer and similar microorganisms from various hosts / K.H. Hinz, M. Ryll, B. Kohler, G. Glunder // Avian Diseases. -1998. Vol. 27, № 1. — P. 33−42.
  107. Pilot study on the prevalence of Ornithobacterium rhinotracheale infections in food chickens in northwest Germany / M. Ryll, K.H. Hinz, U. Neumann et al. // Berl. Munch, tierarztl. Wehr. 1997. — Bd. 110, № 7−8. — S. 267 271.
  108. Preliminary characterization of a pleomorphic gram-negative rod associated with avian respiratory disease / B.R. Charlton, S.E. Channing-Santiago, A.A. Bickford et al. // J. Vet. Diagn. Invest. -1993. Vol. 5. — P. 47−51.
  109. Prevalence of fowl cholera (Pasteurella multocida) in commercial broiler breeder flocks maintained in Abbottabad and Mansehra / B. Tahir, F.R. Durrani, M. Farooq et al. // J. Anim. Vet. Advances. 2003. — Vol. 2. — P. 444 447.
  110. Pyzik E., Rzedzicki J., Kolasa A. Etiopathogenesis and diagnostics of avian ornithobacteriosis // Ann. Univ. Maria Curie-Sklodowska. Sect. DD. 2007. -Vol.62, № 2.-P. 32−39.
  111. Rahimi M., Banani M. Isolation of Ornithobacterium rhinotracheale from the chickens of a broiler farm in Kermanshah province, west of Iran // Iranian J. of Vet. Research, University of Shiraz. 2007. — Vol. 8, № 4. — P. 355−359.
  112. Rimler R.B., Simmons D.G. Differentiation among bacteria isolated from turkeys with coryza (rhinotracheitis) // Avian Diseases. — 1983. — Vol. 27, № 2.-P. 491−500.
  113. Rhoades K.R., Rimler R.B., Bagley R.A. Fowl cholera epornitic: antigenic characterization and virulence of selected Pasteurella multocida isolates // Avian Diseases. 1992. — Vol. 36, № 1. — P. 84−87.
  114. Serological classification of Haemophilus paragallinarum with a hemagglutinin system / K. Kume, A. Sawata, T. Nakai, M. Matsumoto // J. Clin. Microbiology. 1983. — Vol. 17, № 6. — P. 958−964.
  115. Seroprevalence of Ornithobacterium rhinotracheale infection in commercial laying hens in the north central region of the United States / C.J. Heeder, V.C. Lopes, K.V. Nagaraja etal. //Avian Diseases. 2001. — Vol. 45, № 4. -P. 1064−1067.
  116. Synergy between avian pneumovirus and Ornithobacterium rhinotracheale in turkeys / M. Marien, A. Decostere, A. Martel et al. // Avian Pathology. 2005. — Vol. 34, № 3.-P. 204−211.
  117. The relevance and efficacy of Ornithobacterium rhinotracheale control in chickens / P.D. Herdt, K. Cauwerts, J. Vervloesem, R. Ducatelle // World Poultry. 2001. -Vol.17, № 10.-P. 32−33.
  118. The role outer membrane proteins of Ornithobacterium rhinotracheale in attachment to chicken tracheal epithelium / K. Nofouzi, S. Shapouri, M. Jamshidian et al. //Pakistani of Biological Sci. -2007. Vol.10, № 3. P. 470−473.
  119. Travers A.F. Concomitant Ornithobacterium rhinotracheale and Newcastle disease infection in broilers in South Africa // Avian Diseases. — 1996. -Vol. 40, № 2.-P. 488−490.
  120. Travers A.F., Coetzee L., Gummow B. Pathogenicity differences between South African isolates of Ornithobacterium rhinotracheale II Onderstepoort J. Vet. Research. 1996. — Vol. 63. — P. 197−207.
  121. Tsai H., Huang C. Phenotypic and molecular characterization of isolates of Ornithobacterium rhinotracheale from chickens and pigeons in Taiwan // Avian Diseases. 2006. — Vol. 50, № 4. — P. 502−507.
  122. Unexpected similarities between Bordetella avium and other pathogenic Bordetellae / P.A. Spears, L.M. Temple, D.M. Miyamoto et al. // Infection and Immunity. -2003.- Vol. 71, № 5.-P. 2591−2597.
  123. Van Empel P., van den Bosch H., Loeffen P. Identification and serotyping of Ornithobacterium rhinotracheale II J. Clin. Microbiology. — 1996. — Vol. 35, № 2. P. 418−421
  124. Van Empel P., Hafez H.M. Ornithobacterium rhinotracheale a review // Avian Pathology. -1999. Vol. 28, № 3. — P. 217−227.
  125. Van Empel P., van den Bosh H. Vaccination of chickens against Ornithobacterium rhinotracheale infection // Avian Diseases. — 1998. — Vol. 42, № 3. — P. 572−578.
  126. Varga J., Fodor L., Makrai L. Characterization of some Ornithobacterium rhinotracheale strains and examination of their transmission via eggs // Acta Vet. Hungarica. -2001. Vol. 49, № 2. — P. 125−130.
  127. Vargas E.S., Garduno M.L., Rosas P.F. Isolation and characterization of Ornithobacterium rhinotracheale from respiratory diaseased turkeys // Vet. Mexico. 2003. — Vol. 34, № 3. — P. 283−288.
  128. Van Veen L., van Empel P., Fabri T. Ornithobacterium rhinotracheale, a primary pathogen in broilers // Avian Diseases. 2000. — Vol. 44, № 4. — P. 896 900.
  129. Van Veen L., Vrijenhoek M., van Empel P. Studies of the transmission routes of Ornithobacterium rhinotracheale and immunoprophylaxis to ~ prevent infection in young meat turkeys // Avian Diseases. 2004. — Vol. 48, № 2, P. 233 237. J
  130. Virulence of the nine serovar reference strains of Haemophilus paragallinarum / V.E. Soriano, G.M. Longinos, R.P. Fernandez et al. // Avian Diseases. -2004. Vol. 48, № 4. — P. 886−889.
  131. Yersin A.G., Edens F.W., Simmons D.G. The effects of Bordetella avium infection on elastin and collagen content of turkey trachea and aorta // Poultry Sci. 1998. — Vol. 77, № 11. — P. 1654−1660.
  132. Youssef N.M.A., Ahmed M.H.H. Serological studies on flocks showing depressed egg production // Vet. Med. J. Giza. 1996. — Vol. 44. — P. 719−726.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!