Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Возрастные преобразования центров иннервации прямой кишки в норме и в условиях химической десимпатизации и деафферентации

Диссертация: Возрастные преобразования центров иннервации прямой кишки в норме и в условиях химической десимпатизации и деафферентации
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Некоторые авторы указывали на реакцию нейроцитов в ганглиях при хирургической денервации органов (Рудик Е.А., 1952; Картавенко А. Н., 1955; Ярыгин Н. Е., Шепелева Н. С., 1957; Зайденберг М. Д., 1960; Мосеев В. П., 1970; Елецкий Ю. К., 1984; Когут Б. М., 1984; Шаширина М. И., 1986; Оррин Т. с соавт., 1998; Schmid W., van der Zypen E., KellerH., 1979; Suzuki Т. с соавт., 1997), в единичных работах… Читать ещё >

Содержание

  • Перечень условных обозначений
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Морфологические особенности и нейронная 13 организация интрамуральных ганглиев органов пищеварительной системы
    • 1. 2. Морфологические особенности и нейронная 21 организация тазовых ганглиев
    • 1. 3. Возрастные особенности интрамуральных ганглиев 25 органов пищеварения
    • 1. 4. Компенсаторно-приспособительные изменения 31 нейроцитов интрамуральных ганглиев при денервациях
  • 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКИ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • 3. ВОЗРАСТНЫЕ ПРЕОБРАЗОВАНИЯ НЕЙРОЦИТОВ ИНТРАМУРАЛЬНЫХ ГАНГЛИЕВ ПРЯМОЙ КИШКИ БЕЛОЙ КРЫСЫ
    • 3. 1. Морфометрическая характеристика нейроцитов 46 межмышечных ганглиев прямой кишки у белых крыс разного возраста
    • 3. 2. Активность холинэстеразы в нейроцитах 52 интрамуральных ганглиев прямой кишки белых крыс разного возраста
    • 3. 3. Возрастные преобразования активности 55 моноаминоксидазы в интрамуральных ганглиях прямой кишки белых крыс
    • 3. 4. Активность НАДФ-Д в нейроцитах интрамуральных 56 ганглиев прямой кишки у белых крыс разного возраста

Возрастные преобразования центров иннервации прямой кишки в норме и в условиях химической десимпатизации и деафферентации (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Согласно современным представлениям процессы преи постнатально-го развития организма протекают при непосредственном участии различных механизмов. Среди них значительное место отводится нейрогуморальной регуляции. Состояние и уровень развития ее отдельных звеньев во многом определяют возможности адаптации организма к среде обитания. Уже с момента закладки органов развивающаяся нервная система оказывает существенное влияние на их формообразование (Голуб Д.М., 1966; Корочкин Г. И., 1965; Амвросьев А. П., 1970; Волкова и соавт., 1971; Кнорре А. Г., Суворова JI.B., 1984; Леонтюк A.C., 1996). Ослабление нервных влияний определяет характер и темпы вторичных изменений в обмене, функции и структуре тканей и органов целостного организма (Bellinger D.L. с соавт., 1993; Andrews T.J. с соавт., 1996; Akoev G.N., ChalisovaN.I., 1997).

Нарушения иннервации органов таза остаются важной проблемой современной медицины.

Нервный аппарат прямой кишки длительное время является объектом особого внимания морфологов и физиологов. Вместе с тем вопросы структурно-функциональных изменений в системе её иннервации в различные периоды преи постнатального онтогенеза в полном объеме не разработаны. Совершенно недостаточны сведения о структурных и гистохимических изменениях, возникающих в процессе развития в экстраи интрамуральных нервных образованиях прямой кишки, для которой характерны высокая степень иннервации (Амвросьев А.П., 1970, 1972, 1977) и централизации (Булы-гинИ.А., 1966).

До сих пор еще нет точных данных о возрастных преобразованиях ней-роцитов интрамуральных и экстрамуральных ганглиев прямой кишки, а также их гистохимической профилизации на этапах постнатального развития белой крысы — экспериментального животного, широко используемого в исследованиях. В литературе отсутствуют сведения об особенностях структурно-химических изменений в различных периферических звеньях иннервации этого органа на этапах постнатального онтогенеза.

Имеющиеся в настоящее время данные об иннервации прямой кишки, как правило, базируются на анатомических методах исследования, результатах невротомий, ганглиоэктомий, резекции части органа, которые имеют существенные недостатки.

Исследования отечественных нейроморфологов и физиологов показали различия влияний афферентных и симпатических центров на ткани-мишени, выделили специфику развития дистрофических и компенсаторных изменений при разных видах денервации (Пекарский М.И., 1963; Григорьева Т. А., 1966; Корытный Е. Я., 1966; Червова И. Д., 1966; Крыжановский Н. Г. с соавт., 1973, 1974; Строганова А. Б., 1972; Волкова О. В., 1978 и др.).

Известно, что нарушения симпатической иннервации приводят к нарушению адаптационных реакций (Гинецинский А.Г., 1923; Орбели JI.A., 1923; Червова И. А., 1966; Говырин В. А., 1967; Cannon с соавт., 1929, 1949), а деафферентация вызывает комплекс изменений, определяемых как асептическое воспаление и являющихся типичными для различного рода органов (Григорьева Т.А., 1951;1967; Зайденберг М. Д., 1963; Пекарский М. И., 1963; Волкова О. В., 1973, 1978; Елецкий Ю. К., 1984; и др.).

В меньшей степени изучены изменения нейроцитов и компенсаторные процессы в ганглиях, которые при нарушении межнейрональных связей также становятся мишенями нейродистрофического процесса (Милохин A.A., 1967; Зайко H.H., 1974; Румянцева Т. А., 2002).

Некоторые авторы указывали на реакцию нейроцитов в ганглиях при хирургической денервации органов (Рудик Е.А., 1952; Картавенко А. Н., 1955; Ярыгин Н. Е., Шепелева Н. С., 1957; Зайденберг М. Д., 1960; Мосеев В. П., 1970; Елецкий Ю. К., 1984; Когут Б. М., 1984; Шаширина М. И., 1986; Оррин Т. с соавт., 1998; Schmid W., van der Zypen E., KellerH., 1979; Suzuki Т. с соавт., 1997), в единичных работах показано влияние внутриутробной химической десимпатизации или химической десимпатизации половозрелых крыс на нейроциты чувствительных ганглиев (Руденок В.В., Сысов А. В., 1991; Шилкин В. В. с соавт., 1999; Румянцева Т. А., 2002), иммунологической де-симпатизации на интрамуральные нейроциты сердца и матки у мышей (Волкова О.В., 1978), химической деафферентации на симпатоциты шейно-грудных ганглиев, на нейроциты интрамуральных ганглиев желудка и двенадцатиперстной кишки (Румянцева Т.А., 2001; Воробьева О. Б., 2005).

Появление веществ, обладающих избирательным токсическим действием на нейроциты разной природы, позволяет моделировать «чистые» избирательные денервации, определить особенности влияния разных частей нервной системы на органы-мишени, выявить особенности дистрофических и компенсаторных процессов в развивающемся организме.

Вышеизложенное и определило цель и задачи настоящего исследования.

Цель работы: изучить преобразования различных центров иннервации прямой кишки в постнатальном онтогенезе белой крысы в норме и в условиях химической денервации.

Для достижения этой цели определены следующие задачи:

1. Получить нормативные данные о возрастных преобразованиях нейро-цитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия на протяжении первого полугодия жизни белой крысы.

2. Изучить влияние десимпатизации на нейроциты интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия развивающейся белой крысы.

3. Установить влияние деафферентации на нейроциты интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия развивающейся белой крысы.

4. Выявить особенности влияния десимпатизации и деафферентации на морфометрические и гистохимические характеристики нейроцитов интраму-рального нервного сплетения прямой кишки и большого тазового ганглия.

Работа выполнена на 495 самках белых крыс линии Вистар разного возраста.

Возрастные морфологические и гистохимические особенности нейро-цитов изучены в интрамуральных ганглиях ампулы прямой кишки и большого тазового ганглия. Возраст исследуемых крыс выбирался в соответствии с периодизацией онтогенеза крыс, предложенной И. П. Западнюком (1974), от 3 до 180 суток.

Десимпатизация проводилась путем длительного введения гуанетиди-на, что позволяет достичь 95−97% убыли нейроцитов в шейно-грудном ганглии, т. е. создать модель «полной десимпатизации».

Химическая деафферентация проводилась путем однократного введения капсаицина новорожденным крысам в дозе 100 мг/кг, что позволяет достичь гибели почти позволило достичь гибели 22−24% нейроцитов спинномозговых ганглиев (Порсева В.В., 2006), т. е. создать модель «частичной деаффе-рентации».

Животных выводили из опыта в разные сроки — от 3 до 180 суток жизни.

В работе использовались нейрогистологические (окраска по Нисслю), гистохимические (выявление активности холинэстеразы (ХЭ), моноаминок-сидазы (МАО), НАДФ-диафоразы (НАДФ-Д)), морфометрические и статистические методики.

Для оценки стабильности, упорядоченности, зрелости системы нейроцитов, для сопоставления состояния совокупности нейроцитовганглиев разной природы использовали информационный анализ (Кадыров Х.К., Анто-монов Ю.Г., 1974; Леонтюк A.C., Леонтюк Л. А., Сыкало А. И., 1981; Слука Б. А., 1983).

Анализ возрастных преобразований нейроцитов интрамуральных и тазовых ганглиев позволил установить общие и органоспецифичные черты их развития в первом полугодии жизни крысы, отличия в темпах роста и сроках достижения ими дефинитивного состояния.

Научная новизна исследования заключается в установлении общих и органоспецифичных черт развития нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и больших тазовых ганглиев в первом полугодии жизни крысы, проявляющихся в темпах роста и сроках достижения ими дефинитивного состояния по размерам, и количественного состава отдельных ХЭ-, МАО-, НАДФ-Д-позитивных субпопуляций.

Впервые доказано, что дефинитивное состояние популяций нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и тазовых ганглиев белой крысы по размерам клеток и активности ХЭ, МАО и НАДФ-Д достигается гетерохрон-но.

Информационный анализ позволил выявить, что для развивающейся системы нейроцитов в период активного роста характерно постепенное увеличение гетерогенности по метрическим параметрам и волнообразные изменения состояния системы по активности ферментов.

Доказано, что в изученных ганглиях существуют нейроциты чувствительные к гуанетидину. В результате исследования получены оригинальные данные о влиянии этого нейротоксина на нейроциты интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия белой крысы, выявлены органные особенности выраженности нейродистрофического процесса в изучаемых ганглиях при десимпатизации. С учетом количества нейроцитов, погибших в ранние сроки при первичном воздействии нейротоксина и в отдаленные сроки вследствие вторичного эффекта — нейродистрофического процесса, показано, что более устойчивой к десимпатизации является популяция нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки.

Впервые установлено, что часть нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия гибнут при первичном воздействии капсаицина. Их количество особенно велико в интрамуральных ганглиях, в которых более выражена и вторичная гибель нейроцитов вследствие развития дистрофического процесса.

Гибель афферентных нейроцитов приводит к задержке роста остальных клеток и к нарушению нормальной возрастной динамики активности ХЭ, МАО и НАДФ-Д в изученных ганглиях. Установлены органные особенности реакции ферменто-позитивных субпопуляций на введение нейротоксина и развитие вторичного дистрофического процесса.

В результате исследования установлено, что во всех ганглиях присутствуют капсаицин-чувствительные и гуанетидин-чувствительные нейроциты, гибель которых происходит непосредственно после введения нейротоксина. Первичной чувствительностью к гуанетидину обладают ХЭ и МАО-позитивные нейроциты, субпопуляция НАДФ-Д-позитивных нейроцитов устойчива к прямому воздействию этого симпатолитика. Первичной чувствительностью к капсаицину обладают НАДФ-Д-позитивная и МАО-позитивная субпопуляции, устойчивой к прямому действию нейротоксина является ХЭ-позитивная субпопуляция.

Выявлена степень нарушения состояния систем нейроцитов разных субпопуляций и оценена направленность патологического процесса, развивающегося в них.

В результате проведенного исследования впервые получены нормативные возрастные характеристики нейроцитов вегетативных ганглиев, участвующих в иннервации прямой кишки, у белой крысы первого полугодия жизни, которые могут служить основой для морфо-функциональных исследований органов и тканей в эксперименте, и значительно расширяют представления об особенностях возрастных изменений в системе иннервации прямой кишки. Установлено, что любой вид химической денервации (десим-патизация, деафферентация) является только относительно избирательным, приводя к развитию нейродистрофического процесса в других центрах, что необходимо учитывать в экспериментальной и клинической работе.

Результаты исследования нейроцитов различных ганглиев при химической денервации свидетельствуют о возможности использования десимпати-зации, деафферентации для моделирования состояний приобретенного в периоде раннего развития дефицита симпатоцитов и афферентных нейроцитов, в целях фундаментальных исследований структуры и функции органов, адаптивных возможностей организма в целом и его отдельных систем при воздействии различных факторов, а также механизмов действия лекарственных препаратов.

Полученные нормативные данные, данные о динамике развития нейро-дистрофического процесса и об особенностях компенсаторных преобразований в нервной ткани могут использоваться в учебном процессе при обучении специалистов медицинского и биологического профилей.

На защиту выносятся следующие положения:

1. Нейроциты интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия белой крысы гете рогенны по морфометрическим и гистохимическим характеристикам.

2. Достижение дефинитивного уровня морфометрических и энзи-могистохимических характеристик нейроцитов ганглиев, участвующих в иннервации прямой кишки у белых крыс, происходит гетерохронно и зависит от вида ганглия.

3. Нейроциты изученных ганглиев обладают различной чувствительностью к нейротоксинам. Первичное действие капсаицина и гуанетидина сопровождается ранней гибелью нейроцитов, отсроченная реакция нейроцитов на десимпатизацию и деафферентацию проявляется нейродистрофиче-скими изменениями.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

193 ВЫВОДЫ.

1. Интрамуральные межмышечные ганглии прямой кишки и большого тазового ганглия гетерогенны по составу нейроцитов. В них выявляются ХЭ-позитивные, НАДФ-диафораза-позитивные, МАО-позитивные и ферменто-негативные субпопуляции. Позитивность нейроцитов к НАДФ-Д и ХЭ выявляется с 3 суток, к МАО — с 10 суток жизни крысы.

2. Становление активности ХЭ, МАО, НАДФ-Д происходит в нейроцитах ганглиев прямой кишки и в большом тазовом ганглии волнообразно и имеет выраженные органоспецифичные черты, дефинитивное состояние нейроцитов по активности ферментов достигается гетерохронно. В нейроцитах интрамуральных ганглиев прямой кишки ранее других на 90 сутки стабилизируется активность ХЭ и МАО, НАДФ-Д на 120 сутки. В большом тазовом ганглии ранее других стабилизируется НАДФ-Д — позитивная субпопуляция — 90 сутки, вслед за ней — МАО-позитивная субпопуляция — 120 сутки, позже других — 150 сутки — ХЭ-позитивная субпопуляция нейроцитов.

3. Достижение нейроцитами ганглиев прямой кишки и больших тазовых ганглиев дефинитивного состояния по морфометрическим характеристикам происходит неодновременно, на 60 и 90 сутки соответственно, нейроциты интрамуральных ганглиев увеличиваются в течение первого полугодия жизни крысы в 4 раза, тазовых ганглиев — в 5,8 раза.

4. Изменения нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия по метрическим и гистохимическим параметрам позволяют выделить в течение первого полугодия жизни крысы по развитию центров иннервации прямой кишки ряд фаз: первая фаза — до 30 суток — характеризуется интенсивными процессами роста нейроцитов, выраженными колебаниями активности ферментов и количественного состава субпопуляций, вторая фаза продолжается до 90 суток в прямой кишке и до 120 суток в тазовом ганглии и характеризуется достижением ганглиями по части изучаемых параметров дефинитивного уровня, третья фаза, после 120 суток в прямой кишки и после 150 суток в большом тазовом ганглии и далее, — достижение дефинитивного состояния по всем изучаемым параметрам.

5. Информационные характеристики выявляют основные тенденции развития систем нейроцитов интрамуральных ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия в первом полугодии жизни у белой крысы — это повышение гетерогенности по большинству параметров, а также чередование периодов возрастания резервов системы и их активной мобилизации, что является одним из проявлений волнообразности становления структурно-функциональной организации ганглиев прямой кишки.

6. Десимпатизация вызывает в интрамуральных ганглиях прямой кишки и в большого тазового ганглия прогрессирующий дистрофический процесс, который затрагивает все популяции нейроцитов, особенно ХЭи МАО-позитивные, и продолжается в течение всего периода наблюдения, проявляясь гибелью нейроцитов в ранние сроки при первичном воздействии нейротоксина и в отдаленные сроки, вследствие вторичного эффекта, высоким «дистрофическим индексом», нарушением активности ферментов, задержкой роста сохранившихся нейроцитов. Изменения более выражены в большом тазовом ганглии, где они длительно не имели тенденции к компенсации.

7. Деафферентация приводит к нарушению нормальной возрастной динамики метрических и гистохимических характеристик нейроцитов ганглиев прямой кишки и большого тазового ганглия, что проявляется гибелью в ранние сроки части нейроцитов, особенно МАОи НАДФ-Д-позитивных и является признаком первичного действия капсаицина, а также отсроченной гибелью преимущественно ХЭ-позитивных нейроцитов вследствие вторичного эффекта нейротоксина.

8. Органные различия в реакции на неонатальную деафферентацию капсаицин состоят в следующем: первичная реакция сильнее выражены в ганглиях прямой кишки, что связано, очевидно, с большей долей афферентных нейроцитов в составе интрамуральных ганглиев, но отсроченная реакция преобладает в большом тазовом ганглии, который реагирует, вероятно, на дефицит афферентных влияний персистирующими дистрофическими изменениями.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Г. Г. Медицинская морфометрия. М: Медицина, 1990.-383 с.
  2. Г. Г. Морфология в патологии. М: Медицина, 1973. 248 с.
  3. Е.Г., Воробьева О. Б., Ноздрачев А. Д., Обрезчикова М. Н., Румянцева Т. А., Филимонов В. И., Шилкин В. В. Морфология и реактивные изменения нервных структур при химической десимпатизации //Физи-ол.журн.им. И. М. Сеченова, 1995. -№ 10. С.44−50.
  4. А.П. Анатомия афферентных систем пищеварительного тракта. Минск: Наука и техника, 1972. 312 с.
  5. А.П. Закономерности развития и строение афферентных систем толстого кишечника. Автореф. дисс. докт.биол.наук. Л. 1968. 398 с.
  6. А.П. Об изменениях активности щелочной фосфатазы в нейронах спинальных ганглиев кошки после резекции прямой и сигмовидной ободочной кишок // ДАН БССР, 1966.-т.10.-№ 9.-С.710−714.
  7. А.П., Рыхликова Г. Г. Строение афферентного звена периферических висцеро-висцеральных рефлекторных механизмов поперечной ободочной кишки//ДАН БССР, 1973.-Т. 17.-№ 11.-С. 1061−1065.
  8. С.П. Структурная организация иннервационного аппарата тощей кишки// Функциональная нейроморфология. Фундаментальные и прикладные исследования. К 100-летию академика Д. М. Голуба. Минск, 2001. С. 39−41.
  9. Л.И. Изучение передачи нервных импульсов по кишечнику в условиях его денервации на различном протяжении // В сб.: Нервные и гуморальные механизмы рефлекторных реакций. Минск, 1968. С. 50.
  10. В.Э., Суворова Л. В. Ферментативная активность нейронов разных отделов пищеварительной трубки в постнатальном онтогенезе крыс // Архив анат., гист., эмбриол., 1988. Т. 95.- № 8. — С. 27−32.
  11. И.А. Цепные и кольцевые нейрогуморальные механизмы висцеральных рефлекторных реакций. Минск: Наука и техника, 1970. 289 с.
  12. И.А., Арчакова Л.И.- Бортник Э.М. Электронномикроскопиче-ский анализ представительства в спинном мозгу периферических афферентных нейронов желудка // ДАН БССР, 1972.- В.16.-№ 10.-С. 954.
  13. И.А., Солтанов В. В. Происхождение С-афферентов толстой кишки // Вести АН БССР, серия биол., 1971.-№ 6.-С. 121.
  14. О.Н. Рецепторы пищеварительного тракта лошади // Архив анат., гист., эмбр., 1952.- Т. 29.- № 4.- С. 48−53.
  15. О.В. Нейродистрофический процесс. М., Медицина, 1978. 256 с.
  16. О.Б. Возрастные преобразования сократительной активности двенадцатиперстной кишки белой крысы в норме и при химической де-нервации. Автореферат.дисс.канд.биол.наук, Ярославль, 2005.26 с.
  17. Е.Я. Материалы по морфологии рецепторного аппарата желудка позвоночных. М.-Л., 1958.
  18. В.А. Трофическая функция симпатических нервов сердца и скелетных мышц. М.: Наука, 1967.
  19. Д.М. Многоступенчатая чувствительная иннервация внутренних органов II Докл.АН БССР, 1966. Т. 10. — С.222−224.
  20. Т.А. Морфологические изменения лимфатических узлов при их чувствительной денервации // Лимфоидная ткань в восстановительных и защитных процессах. М., 1966.- С. 105.
  21. A.C. (Dogiel A.S.) Zwei Arten sympathischer Nervenzellen. Anat.Res. 1896. Bd. 11. — S.679−687.
  22. Л.И. Чувствительная иннервация и состояние тканевых элементов в стенке желудка при перерезке блуждающих нервов // Архив анат., гист., эмбр., 1963.- № 12. С. 30−34.
  23. Ю.М. Нормальная и патологическая морфология вегетативных ганглиев. М.: Изд-во АМН СССР, 1953. 292 с.
  24. Жук В. В. Реиннервация желудка после ваготомии // Авто-реф.дисс.канд.мед.наук. Минск, 1988. 24 с.
  25. М.Д. Об изменениях слизистой оболочки желудка при его чувствительной денервации // Бюлл. Москов. об-ва испыт. природы. Отдел биол., 1960.-Т.65.- № 2.- С. 159−160.
  26. И.П., Западнюк В. И., Захария Е. А. Лабораторные животные. Разведение, содержание, использование в эксперименте // Киев, «Вища школа», 1974, 304 с.
  27. М.В. Нитрооксидситетаза легких и значение NO-ергического механизма в регуляции проходимости бронхов. Автореф.дисс.канд.мед.наук, Владивосток, 1996.-21 с.
  28. Н.М., Чаиркин И. Н. Нервный аппарат мочевого пузыря в норме и при перевязке внутренней подвздошной артерии//В сб.: Структура и функции вегетативной нервной системы. Материалы 1-го международного симпозиума.- Воронеж, 1995. С.36−37.
  29. Т.С. Рецепторная иннервация тонкой кишки. JL: Наука, 1967. 139 с.
  30. Х.К., Антомонов Ю. Г. Синтез математических моделей биологических и медицинских систем. Киев, Наукова думка, 1974. 224 е.
  31. С.Г., Дудина Ю. В., Дюйзен И. В., Мотавкин П. А. Индукция NO-синтазы и глиального кислого фибриллярного белка в астроцитах височной коры крыс с аугенной эпилептиформной реакцией // Морфология, 2004. Т. 125. — № 3. — С. 68−73.
  32. А.Н. Роль неврогенного фактора в патогенезе и клинике язвенной болезни желудка и 12-перстной кишки. Дисс.докт.мед.наук, Смоленск, 1955. 325 с.
  33. А.Г., Суворова JI.B. Развитие вегетативной нервной системы в эмбриогенезе. М.: Медицина, 1984. 272 с.
  34. JI.A., Ван Хэмин, Чарыева И.Г., Гаман С. А., Пылаев A.C. SIF-клетки вегетативных ганглиев // В сб.: Структура и функции вегетативной нервной системы. Материалы 1-го международного симпозиума.- Воронеж, 1995 С.43−44.
  35. Н.М. Структура ганглиев тазового сплетения самцов белых крыс в норме и в межорганном сращении. Автореф. канд дисс.биол. наук. Москва, 1983. 18 с.
  36. Н.Г., Забусов Г.И. Zur Frage uber den Bau des autonomen Nerversystems //Anat.Anz., 1932.- Bd. 74.- S. 417.
  37. Л.И. Дифференцировка и старение вегетативного нейрона. М.-Л.: Наука, 1965. 188 с.
  38. Г. И., Червова И. А. Сердце как саморегулирующаяся система. М., 1968. 131 с.
  39. Е.М. Функциональная морфология и гистохимия вегетативной иннервации сердца. М., 1973. 136 с.
  40. П.П. Вегетативная система млекопитающих животных и человека в онтогенезе. Автореф.дисс.докт.биол.наук, Саранск. 1996. 36 с.
  41. П.П., Одыванова Л. Р. Чаиркина И.Н., Гуски Г., Швалев В. Н., Сосунов A.A. Межнейрональные взаимоотношения в вегетативных ганглиях (ультраструктурные аспекты) //Морфология, 1997.-T.III., N. 1.-С. 35−39.
  42. С.Г. К эмбриогенезу нервного аппарата мочевого пузыря человека. Автореф. канд. дисс. Волгоград, 1957. 18 с.
  43. Г. Ф. Биометрия. М., «Высшая школа», 1990, 352 с.
  44. В.И. Роль интрамуральных ганглиев и сплетений в осуществлении периферических рефлексов с желудка на кишечник // В сб.: Нервные и гуморальные механизмы регуляции функций. Минск, 1969. С. 61.
  45. Ле-Ван Минь Строение и связи нервных сплетений желудка у человека и животных. Автореф.дисс.канд.мед.наук. Киев, 1978. 20 с.
  46. A.C. Структурное разнообразие как критерий системной характеристики процессов морфогенеза. Морфология, 1996, т. 104, вып.2, с. 67.
  47. A.C., Леонтюк Л. А., Сыкало А. И. Информационный анализ в морфологических исследованиях. Минск, 1981. 160 с.
  48. Л.А. Структурно-функциональные особенности аффрентных систем илеоцекального отдела кишечника. Автореф.дисс.канд.мед.наук, Минск, 1972. 26 с.
  49. В.Н., Древаль A.A., Ярыгин В. Н. Радиографический и электрон-номикроскопический анализ симпатических невроцитов после частичной химической десимпатизации крыс разного возраста // Архив анат., гист., эмбр. 1982. -Т. 83. Вып. 10. — С. 35−42.
  50. Е.П. Функциональная морфология иннервации органов пищеварения. М.: Медицина. 1970. 328 с.
  51. A.M. Вегетативное нервное сплетение таза (экспериментально-морфологическое исследование). Автореф. докт. дисс. Казань, 1951. 26 с.
  52. A.A. К вопросу о собственной рефлекторной дуге кишечника // Докл. АН СССР, 1953.-Т.93, № 5.-С.933−935.
  53. A.A. Чувствительная иннервация вегетативных нейронов. Л., «Наука», 1967, 68 с.
  54. В.П. Морфологические и функциональные изменения желудка после частичной его денервации. Дисс.канд.мед.наук, Ярославль, 1970. 269 с.
  55. П.А., Зуга М. В. Окись азота и её значение в регуляции легочных функций // Морфология, 1998. Т. 114.- № 5. — С. 99−111.
  56. А.Ф. Афферентный нейрон и нейродистрофический процесс. М., Медицина. 1973. — 192 с.
  57. Николаев Г. М.и Шилкин В. В. Опыт определения активности ацетилхо-линэстеразы в структурах периферической нервной системы // Проблемы морфогенеза периферических нервов: сб. трудов ЯМИ.-Ярославль, 1983. -С. 64−72.
  58. А.Д. Адренэргические, холинэргические, серотонинэргиче-ские и пептидэргические нейроны метасимпатической нервной системы // Физиол. журн. СССР, 1984.-Т.70, N5.-C.649−661.
  59. А.Д. Анатомическая структура вегетативной нервной системы // Физиология вегетативной нервной системы. Л.: Наука, 1981. С. 31−34.
  60. А.Д. Физиология вегетативной нервной системы. Л.: Медицина, 1983. 296 с.
  61. А.Д. Химическая структура периферического автономного (висцерального) рефлекса // Успехи физиол. наук, 1996.-Т.27, N2.-C.28−60.
  62. Пак Бон Ик Морфологические и гистохимические закономерности развития иннервации прямой кишки в онтогенезе белой крысы. Авто-реф.канд.биол.наук, Москва, 1985, 24 с.
  63. В.И. Материалы к функциональной морфологии периферической нервной системы // Бюлл. экспер. биол. и мед., 1957.-Т.41, № 5.-С.70.
  64. В.П., Сорокина Е. Г., Охотин В. Е., Косицын Н. С. Циклические превращения оксида азота в организме млекопитающих. М: Наука. 1997.
  65. В.Н. Морфологическая характеристика нервного аппарата стенки тонкой кишки в эмбриогенезе// Современные проблемы нейробиологии. Матер. З-го международ. симпозиума, 21−22 июня 2001 г., Саранск. Тез.докл. Саранск, 2001. С.67−68.
  66. И.М., Ярыгин В. Н., Мухаммедов А.А Иммунологическая и химическая десимпатизация. М.: Наука, 1988. 152 с.
  67. В.В., Сысов A.B. Строение нейронов шейных спинномозговых узлов плода белой крысы при химической десимпатизации гуанетидином беременной самки // 2-й съезд анатомов, гистологов, эмбриологов Белоруссии: Тез.докл. Минск, 1991. С. 150.
  68. Е.А. Морфологические изменения желудка при перерезке блуждающих нервов. // Архив патол., 1952.-Т.14, № 6.-С.59−63.
  69. Т.А. Влияние введения капсаицина на развитие нейроцитов чувствительных узлов белой крысы // Функциональная нейроморфология. Фундаментальные и прикладные исследования. К 100-летию академика HAH Беларуси Д. М. Голуба. Минск. 2001.-С.163−166.
  70. Т.А. Влияние химической десимпатизации и деафферента-ции на нейроциты экстра- и интрамуральных ганглиев в постнатальном онтогенезе белой крысы. Дисс. докт.мед.наук. Ярославль, 2002. 384 с.
  71. Т.А. Изменения нейроцитов интрамуральных ганглиев желудка у десимпатизированной и деафферентированной белой крысы // Мор-фология.-2001 -Т. 120, № 4.-С.82−83.
  72. Т.А. Энзимохимическая характеристика нейроцитов интрамуральных ганглиев желудка белой крысы при химической десимпатизации // Российские морфологические ведомости, 2001. № 1−2. — С. 77−79.
  73. Т.А., Шилкин В. В., Ковригина Т. Р., Филимонов В. И. Влияние введения капсаицина на нейроциты спинномозговых ганглиев белой крысы // Российские морфологические ведомости, 1999.-№ 1−2.-С.167−168.
  74. Э.М. Состояние интрамуральной нервной системы сердца при воздействии инадекватного раздражителя на некоторые органы // Вопросы морфологии в теоретической и клинической медицине. Труды Крымского медицинского института.-1982.-Т.91.-С.30−33.
  75. П.В. Микроциркуляторное русло межмышечного нервного сплетения толстой кишки в норме, при её парасимпатической децентрализации и моделировании проникающих ранений. Автореф.канд.мед.наук.
  76. Ивано-Франковск, 1973, 24 с.
  77. Л.В., Адамацкий А. И. Связи нейронов симпатических ганглиев с миэнтеральным нервным сплетением ободочной кишки млекопитающих // Архив анат., гист., эмбриол., 1986.-Т.91, № 10.-С. 15−21.
  78. .А. Информационный анализ нейроцитов некоторых периферических ганглиев и критические периоды их функционирования // Архив анат., гист., эмбр., 1983. Т.84. — № 2. — С.16−22.
  79. .А. Структура нейронов симпатических ганглиев при химической десимпатизации гуанетидином // Архив анат., гист., эмбриол.-1987.-Т. 93, В.9.-С.64−70.
  80. В.М. Гипотеза о серотонинергической иннервации желудка и кишечника // В сб.?Механизмы функционирования висцеральных систем. Тез.докл. междунар. Конференции, посвящен. 150-летию И. П. Павлова, СП6.-1999.-С.350−351.
  81. В.В. Электрофизиологический анализ афферентных систем желудочно-кишечного тракта. Автореф. дисс.докт.мед.наук, Минск, 1975. 24 с.
  82. A.A. Оксид азота как межклеточный посредник // Соросов-ский Образовательный Журнал, 2000 № 12 — с.27−34.
  83. В.А. Микроморфология интрамуральной нервной системы тонкой кишки у новорожденных телят // Современные проблемы нейробиологии. Матер. З-го между народ, симпозиума, 21−22 июня 2001 г., Саранск. Тез.докл. Саранск, 2001.-С.72.
  84. А.И., Ярыгин Н. Е., Лапин С. К. Вопросы классификации структурных изменений элементов нервной системы // В кн.: Вопросы морфологии нервной системы. М.-1960.-С.69.
  85. Л.П., Кизим Э. В. Периодизация развития нервной ткани стенки тонкого и толстого кишечника// Современные проблемы нейробиологии. Матер. З-го международ. симпозиума, 21−22 июня 2001 г., Саранск. Тез.докл. Саранск.-2001.-С.74−75.
  86. И.П. Сердечная деятельность у неонатально десимпатизи-рованных животных // В сб.: Механизмы функционирования висцеральных систем. Тез. докл. междунар. конференции, посвящен. 150-летию И. П. Павлова, СП6.-1999.-С.394−395.
  87. И.А. Гистохимия холинэстераз коры головного мозга. М., Наука. 1983. 104 с.
  88. М.И. Реакция нейронов интрамуральных ганглиев поджелудочной железы морской свинки на нарушение их связей с ЦНС// Архив анат., гист., эмбр., 1986.-Т.91, № 10.-С.11−15.
  89. Н.Е., Шепелева Н. С. Отдаленные результаты при двусторонней ваготомии // Архив патол., 1957.-Т.19, № 7.-С.41−44.
  90. Н.Е., Ярыгин В. Н. Патологические и приспособительные изменения нейрона. М., Медицина, 1973. 190 с.
  91. Aberg G., Eranko O. Localization of noradrenaline and acetylcholinesterase in the taenia of the guinea-pig caecum // Acta Physiol. Scand. 1967.- V.69.- P. 383.
  92. Adnot S., Raffestin В., Eddahibi S. NO in the lung // Respir.Physiol.-1995.1. V.101, № 2.-P.109−120.
  93. Aigner F, Zbar A.P., Ludwikowski B., Kreczy A., Kovacs P., Fritsch H. The rectogenital septum: m orphology, function, and clinical relevance // Dis Colon Rectum. 2004, Feb. — 47(2).-P.131−40.
  94. Akoev G.N., Chalisova N.I. Role of neurotrophic factors in adaptational processes of the nervous system // Neurosci. Behav. Physiol.-1997.-V.27, № 3.-P.207−211.
  95. Aim P., Ekstrom J. Outgrowth of cholinergic nerves in the rat urinary bladder either partially denervated or partially denervated and decentralized // Acta Physiol. Scand.-1981 .-V. 112, № 2.-P. 179−183.
  96. Andrews T.J., Thrasivoulou C., Nesbit W., Cowen T. Target-specific differences in the dendritic morphology and neuropeptide content of neurons in the rat SCG during development and aging // J. Comp. Neurol.-1996.-V.368(1), № 22.-P.33−44.
  97. Arbuckle J.B., Docherty R.J. Expression of tetrodotoxin-resistant sodium channels in capsaicin-sensitive dorsal root ganglion neurons of adult rats // Neurosci. Lett. 1995. — 185 (1).- P. 70−73.
  98. Auberson S., Lundberg J.M. Lactic acid-induced plasma protein extravasation in rat airways by stimulation of sensory nerves and NK1 receptor activation // Pharmacol.Toxicol. 1993 — 73(6). — P. 305−310.
  99. Bakal R.S., Wright L.L. Postnatal neuron death in the nodose ganglia of the rat // Dev. Neurosci.-1993.-V. 15, № 1.- P.22−26.
  100. Baltazar E.T., Kitamura N., Hondo E., Yamada J., Maala C.P., Simborio L.T. Immunohistochemical study of endocrine cells in the gastrointestinal tract of the Philippine carabao (Bubalus bubalis) // Anat. Histol. Embryol.-1998.-V.27, № 6.-P.407−411.
  101. Barbiers M., Timmermans J.P., Scheuermann D.W., Adriaensen D., Mayer B., De Groodt-Lasseel M.H. -1993
  102. Boyd I.D. Intermediate sympathetic ganglia // Brit. Med. Bull.-1957.-V.13.-P.207.
  103. Brzozowski Т., Kontirek S.J., Pytko-Polonczyk J., Warzecha Z. Gastric adaptation to stress: role of sensory nerves, salivary glands and adrenal glands // Scand. J. Gastroenterol., 1995. 30 (1). — P. 6−16.
  104. I. 1986. / Цит.: Гнетов A.B., Ноздрачев А. Д., Степанова Т. П. Механизмы регуляции активности продольного слоя гладких мышц кишки мальмы // Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1991. — Т.77. — № 8. — С. 122 129.
  105. Carlstedt A., Fasth S., Hulten L., Nordgren S. The sympathetic innervation of the internal anal sphincter and rectum in the cat. // Acta Physiol Scand. -.1988,Jul. 133(3). -P 423−31.
  106. Chard P. S., Bleakman D. Capsaicin-induced neurotoxicity in cultured dorsal root ganglion neurons: involvement of calcium-activated proteases // Neuroscience. 1995.-65 (4).-P. 1099−1108.
  107. Collier В., Iohnson G., Quik M., Welner S. Effect of chemical destruction of mechanisms in adult rat sympathetic ganglia // Brit. J. Pharmacol. 1984. — Vol. 82, N4.-P. 639−646.
  108. Costa M., Furness J.B. The origins of the adrenergic fibres which innervate the internal anal sphincter, the rectum, and other tissues of the pelvic region inthe guinea-pig.// Z Anat Entwicklungsgesch. 1973, Jul 25. — 140(2). — P. 12 942.
  109. Cracco C., Filogamo G. Quantitative study of the NADPH-diaphorase-positive myenteric neurons of the rat ileum // Neuroscience.-1994.-V.61, № 2.-P. 351−359.
  110. Crowe R., Burnstock G., Light J.K. Intramural ganglia in the human urethra // J. Urol.-1988.-V.140, № 1.-P. 183−187.
  111. Dang K., Bielefeldt K., Gebhart G.F. Differential responses of bladder lumbosacral and thoracolumbar dorsal root ganglion neurons to purinergic agonists, protons, and capsaicin // J Neurosci. 2005, Apr 13. — 25(15). — P.3973−84.
  112. Dixon J.S., Jen P.Y., Gosling J.A. A double-label immuno-histochemical study of intramural ganglia from the human male urinary bladder neck // J. Anat.-1997.-V.90, №Pt 1.-P.125−134.
  113. Domoto T., Gonda T., Oki M., Yanaihara N. Coexistence of substance P-and methionine5-enkephalin-like immunoreactivity in nerve cells of the myenteric ganglia in the cat ileum // Neurosci. Lett.-1984.-V.l, № 47(1).-P.9−13.
  114. Echteler S.M., Nofsinger Y.C. Development of ganglion cell topography in the postnatal cochlea//J.Comp.Neurol.-2000.-V.25, № 425 (3).-P.436−446.
  115. Ekblad E., Ekelund M., Grafftier H., Hakanson R., Sundler F. Peptide-containing nerve fibers in the stomach wall of rat and mouse // Gastroenterology.-1985.-V.89, №l.-P.73−85.
  116. Ekblad E., Ekman R., Hakanson R., Sundler F. Projections of peptide-containing neurons in rat colon // Neuroscience.-1988.-V.27, № 2.-P.655−674.
  117. Ekblad E., Mei Q., Sundler F. Innervation of the gastric mucosa // Microsc. Res. Tech.-2000.-V.l, № 48(5).-P.241−257.
  118. Ekblad E., Winther C., Ekman R., Hakanson R., Sundler F. Projections of peptide-containing neurons in rat small intestine // Neuroscience.-1987.-V.20, № 1.-P.169−188.
  119. Eranko O., Eranko L. Histochemical evidence of chemical sympathectomy by guanethidine in newborn rats // Ibid.-1971.-V.3, № 6.-P. 451−456.
  120. Evans B.K., Burnstock G. Chronic guanethidine treatment of female rats including effects on the femus // J. Reprod. and Fert. 1979. — V. 56, N 2. — P. 715 724.
  121. Fang S., Christensen J. Distribution of NADPH diaphorase in intramural plexuses of cat and opossum esophagus // J. Auton. Nerv. Syst.-1994.-V.46, № 1−2.-P.123−133.
  122. Furness J.B., Costa M., Gibbins I.L., Llewellyn-Smith I.J., Oliver J.R. Neu-rochemically similar myenteric and submucous neurons directly traced to the mucosa of the small intestine // Cell Tissue Res.-1985.-V.241,№l. P.155−163.
  123. Furness, J. B., Costa M. The Enteric Nervous SystemNew York // Churchill Livingstone. 1987. — P.306
  124. Ganchrow J.R., Seltzer Z. The effect of neonatal treatment on gustatory behavior in the albino rat // Physiol. Behav., 1992 52 (6). — P.1037−1042.
  125. Garrett J.R., Howard E.R. Myenteric plexus of the hind-gut: developmental abnormalities in humans and experimental studies. // Ciba Found Symp. 1981. -83. — P.326−54
  126. Geirsson G., Fall M., Sullivan L. Clinical and urodynamic effects of intravesical capsaicin treatment in patients with chronic traumatic spinal detrusor hyperreflexia // J. Urol., 1995.-154 (5). P. 1825−1829.
  127. Gillespie J.S., Maxwell J.D., Adrenergic innervation of sphincteric and non-sphincteric smooth musclein the rat intestine. // J Histochem Cytochem.1971,Nov. 19(11).-P.676−81.
  128. Goldstein R. S. Axial level-dependent differences in size of avian dorsal root ganglia are present from gangliogenesis // J. Neurobiol.-1993.-V.24, № 8.-P.l 121−1129.
  129. Gonda T., Oki M., Distribution of cholinergic and catecholaminergic nerves in the colon of the rat with aganglionosis // Jikken Dobutsu. 1991, Oct. — 40(4). — P.471−84.
  130. Gonella J. The physiological role of peripheral serotoninergic neurones. A review//J. Physiol. (Paris)-1981.-V.77, № 2−3.-P.515−519.
  131. Grunditz T., Ekman R., Hakanson R., Sundler F., Uddman R. Neuropeptide Y and vasoactive intestinal peptide coexist in rat thyroid nerve fibers emanating from the thyroid ganglion // Regul. Pept.-1988.-V.23, № 2.-P. 193−208.
  132. Guarini S., Bazzani C., Tagliavini S., Bertolini A., Ferrari W. Capsaicin prevents the adrenocorticotropin-induced improvement of cardiovascular function and survival in hemorrhage-shocked rats // Neurosci. Lett., 1992. 143 (1−2). -P. 181−184.
  133. Hirose R., Nada O., Kawana T., Suita S. The intramural pelvic nerves im-munoreactive for calcitonin gene-peptide in the rectum of normal and aganglionosis rat // Anat. Embryol. (Berl).-1993.-V.187, №l.-P.37−44.
  134. Hiura A., Ishizuka H., Sakamoto Y. Electron microscopic study of the effect of capsaicin on the mouse chorda tympani nerves // Arch.Oral.Biol.-1990.-V.35, № 11.-P.913−916.
  135. Hope B.T., Michael G.J., Knigge K.M., Vincent S.R. Neuronal NADPH diaphorase is a nitric oxide synthase. Neurobiology, 1991, v. 88, p. 2811−2814.
  136. Jobling P., Gibbins I.L., Morris J.L., Functional organization of vasodilator neurons in pelvic ganglia of female guinea pigs: comparison with uterine motor neurons. // J Comp Neurol. 2003, May 5. — 459(3). — P.223−41
  137. Johnson I.E., Manning P.T. Guanethidine-induced destruction of sympathetic neurons // Intern.Rev.Neurobiol.-1984.-V.25.-P.l-37.
  138. Juul P., Melsaac R.L. The effect of guanethidine on the noradrenaline content of the adult rat superior cervical ganglion // Acta pharmacol. et toxicol.-1973.- V. 32.- N 5.-P. 382−389.
  139. Kato A.C., Vrachliotis A., Fulpins B., Duant Y. Molecular forms of acetylcholinesterase in chick muscle and ciliary ganglion embryonic tissues and cultured cells // Develop.Biol., 1980. Vol. 76. — P. 222−228.
  140. Keast J.R. Plasticity of pelvic autonomic ganglia and urogenital innervation. // Int Rev Cytol. 2006. — 248. — P. 141−208.
  141. Keef K.D., Murray D.C., Sanders K.M., Smith T.K. Basal release of nitric oxide induces an oscillatory motor pattern in canine colon. // J. Physiol. (Lond). -1997. -V. 499. -P. 773−786.
  142. Keller H. The development of the intramural nerve plexus of the gastrointestinal tract // Anat.Embryol.(Berl).-1976.-V.22, № 150(l).-P.l-6.
  143. Krantis, A., I. Glasgow, A. E. McKay, K. Mattar, F. Johnson. A method for simultaneous recording and assessment of gut contractions and relaxations in vivo // Can. J. Physiol. Pharmacol.-1996.-V. 74.-P. 894−903.
  144. Kyosola K., Veijola L., Rechardt L. Cholinergic innervation of the gastric wall of the cat // Histochemistry.-1975.-V. 16, № 44 (l).-P.23−30.
  145. Kyosola K., Veijola L., Rechardt L. Immunohistochemical demonstration of choline acetyltransferase of a peripheral type (pChAT) in the enteric nervous system of rats // Acta Biol.Med.Ger.-1980.-V.39, № 6.-P.687−696.
  146. Lapsha V.I., Bocharova V.N. Microfluorimetric study of adrenergic structures in nerve plexuses of the pelvic cavity of the normal and decentralized cat. // Neirofiziologiia. 1986. — 18(4). -P.496−502.
  147. S.H., Jacobowitz D.M., Mason G.R., Garber H.I., Ormsbee H.S. 3d. Gastric and pyloric motor response to sympathetic nerve stimulation after chemical sympathectomy // J.Auton.Nerv.Syst.-1981.-V.4, № 3.-P.207−215.
  148. Lolova I, Davidoff M, Itzev D, Apostolov A. Histochemical, immunocyto-chemical and ultrastructural data on the innervation of the smooth muscle of the large intestine in Hirschsprung’s disease. // Acta Physiol Pharmacol Bulg. 1986. -12(2). -P.55−62
  149. Luckensmeyer G.B., Keast J.R. Activation of alpha- and beta-adrenoceptors by sympathetic nerve stimulation in the large intestine of the rat. // J Physiol. -1998, Jul 15. 510 (Pt 2). — P.549−61.
  150. Luckensmeyer G.B., Keast J.R. Characterisation of the adventitial rectal ganglia in the male rat by their immunohistochemical features and projections. // J Comp Neurol. 1998, Jul 13. — 396(4). — P.429−41.
  151. Luo M.H., Li S.W., Zheng X.M., Hu L.Q., Luo Y., Zheng H. Impacts of denervation on the morphology and expression of neuronal nitric oxide synthase of prostate of adolescent rats // Zhonghua Nan Ke Xue. 2006, Feb. — 12(2). -P/112−4,119.
  152. Lychkova A.E. Gradients of serotoninergic innervation of the large intestine // Bull Exp Biol Med. 2005, May. — 139(5). — P.550−3.
  153. Manzini S., Maggi C.A., Meli A. Pharmocological evidence that at least two different non-adrenergic non-cholinergic inhibitory systems are present in the rat small intestine. // Eur. J. Pharmacol. 1986. -V. 123. -P.229−236.
  154. Matharu M.S., Hollingsworth M. Purinoceptors mediating relaxation and spasm in the rat gastric fundus. // Br. J. Pharmacol. -1992-V.106. -P.395−403.
  155. Mercier-Parot L., Tuchmann-Duplessis H. Abortifactent and teratogenic effect of suramin, a trypanocide. // Comptes Rendus des Seances de la Societe de
  156. Biologie et de Ses Filiates. 1973. — 167. — P. 1518−1522.
  157. Nagy I., Pabla R. Cobalt uptake enables identification of capsaicin- and bra-dykinin-sensitive subpopulations of rat dorsal root ganglion cells in vitro // Neu-roscience.-1993 .-V.56, № 1 .-P.241 -246.
  158. Nakajima K., Tooyama I., Yasuhara O., Aimi Y., Kimura H. Immunohisto-chemical demonstration of choline acetyl transferase of a peripheral type (pChAT) in the enteric nervous system of rats. // J Chem Neuroanat. 2000, Feb. — 18(1−2). -P.31−40
  159. Nakanishi Y, Tooyama I, Yasuhara O, Aimi Y, Kitajima K, Kimura H Im-munohistochemical localization of choline acetyltransferase of a peripheral type in the rat larynx // J. Chem. Neuroanat. 1999 — 17 (l).-21−32.
  160. Nelson D.K., Service J.E., Studelska D.R., Brimijoin S., Go V.L. Gastrointestinal neuropeptide concentrations following guanethidine sympathectomy // J.Auton.Nerv.Syst.-l988.-V.22, № 3.-P.203−210.
  161. Nichols K., Staines W., Wu J.-Y., Krantis A. Immunopositive GABAergic neural sites display nitric oxide synthase-related NADPH diaphorase activity in the human colon. // J. Auton. Nerv. Syst. 1995. — V.50. — P.253−262.
  162. Nielsen G.D. Guanethidine induced sympathectomy in the adult rat. I. Functional e ffects following s ubacute administration // Acta p harmacol. ettoxicol.-1977.-V.41,N3.-P 203−208.
  163. Orloff L.A., Orloff M.S., Bunnett N.W., Walsh J.H. Dopamine and norepinephrine in the alimentary tract changes after chemical sympathectomy and surgical vagotomy // Life Sci.-1985.-V.29, № 36 (17).-P.1625−1631.
  164. Ouyang A., Zimmerman K., Wong K.L., Sharp D., Reynolds J.C. Effect ofceliac ganglionectomy on tachykinin innervation, receptor distribution and intestinal responses in the rat // J.Auton.Nerv.Syst.-1996.-V.14, № 61 (3).-P.292−300.
  165. Patterson J.T., Chung K., Coggeshall R.E. Further evidence for the existence of the long ascending unmyelinated primary afferent fibers within the dorsal funiculus: effects of capsaicin // Pain, 1992.- 49 (l).-P. 117−120.
  166. Phillips R.J., Kieffer E.J., Powley T.L. Aging of the myenteric plexus: neuronal loss is specific to cholinergic neurons. // Auton Neurosci. 2003 Jul 31. -106(2).-P.69−83.
  167. Sanders KM, Ordog T, Koh SD, Torihashi S, Ward SM. Development and plasticity of interstitial cell of Cajal // Neurogastroenterol Motil.-1999.-V. 1 l.-P. 311−338.
  168. Santicioli P., Del-Bianco E., Geppetti P., Maggy C.A. Release of calcitonin gene-related peptide-like immunoreactivity from rat isolated soleus muscle by low PH, capsaicin and potassium // Neurosci. Lett.- 1992.- 143 (1−2).- P. 19−22.
  169. Simonsen U., Triguero D., Garcia-Sacristan A., Prieto D. Cholinergic modulation of non-adrenergic, non-cholinergic relaxation in isolated, small coronary arteries from lambs // Pflugers.Arch.-1999.-V.438, № 2.-P.177−186.
  170. Smith D.C. Sinaptic sites in sympathetic and vagal cardioaccelerator nerves of the dog // AmerJ.Physiol.-1970.-Vol.218, № 6.-P.16.
  171. Timmermans J.P., Barbiers M., Scheuermann D.W., Bogers J.J., Adriaensen
  172. D., Fekete E., Mayer B., Van Marck E.A., De Groodt-Lasseel M.H. Nitric oxide synthase immunoreactivity in the enteric nervous system of the developing human digestive tract. // Cell Tissue Res. 1994, Feb. — 275(2). — P.235−45.
  173. Uno H., Arakawa T., Fukuda T., Higuchi K., Kobayashi K. Involvement of capsaicin-sensitive sensory nerves in gastric adaptive relaxation in isolated guinea-pig stomachs // Digestion.-1997.-V.58, № 3.-P.232−239.
  174. Vizzard M.A., Erdman S.L., de Groat W.C. Localization of NADPH diaphorase in bladder afferent and postganglionic efferent neurons of the rat // J.Auton.Nerv.Syst.-1993.-V.44,№l.-P.85−90.
  175. Wakade A.R. Recent developments in degeneration of the sympathetic neuron// Gen.Pharmacol.-1979.-Vol. 10, № 5.-P.351−357.
  176. Wester T., O’Briain S., Puri P. Morphometric aspects of the submucous plexus in whole-mount preparations of normal human distal colon // J.Pediatr.Surg.-1998.-V.33, № 4.-P.619−622.
  177. White C.B., Roberts A.M., Joshua I.G. Arteriolar dilation mediated by capsaicin and calcitonin gene-related peptide in rats // Am.J.Physiol., 1993, 265 (4 pt.2), p.1411−1415.
  178. Yamada M. Observations on the morphology of the pelvic ganglion of the female rat (Nippon Sanka Fujinka Gakkai Zasshi. 1986 May-38(5):685−92).
  179. Yoshida N., Tanaka C., Taniyama K., Kondo M. Cyclic adenosine 3!, 5'-monophosphate levels in response to norepinephrine in rectum of postnatal rats. // Jpn J Pharmacol. 1979, Oct. — 29(5). — P.781−7.
  180. Zhou Y., Tan C.K., Ling E.A. Distribution of NADPH-diaphorase and nitric oxide synthase-containing neurons in the intramural ganglia of guinea pig urinary bladder//J.Anat.-1997.-V.190, Pt. 1.-P.135−145.
  181. Zoucas E., Nilsson C., Aim P., Ihse I. Selective microsurgical sympathetic denervation of the rat pancreas // Eur.Surg.Res.-1996.-V.28, № 5.-P.367−373.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!