Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Разработка элементов технологии, направленной на расширение генетического разнообразия баклажана при селекции на качество

Диссертация: Разработка элементов технологии, направленной на расширение генетического разнообразия баклажана при селекции на качество
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В настоящее время проблема селекции сортов и гибридов Р] баклажана с различными параметрами, удовлетворяющих требования производства и потребителей, стоит очень остро. Динамичное развитие общества приводит к увеличению требований потребителей как к качеству и разнообразию продукции, так и к ее объемам. В связи с этим у производителей сельскохозяйственной продукции возникают соответствующие… Читать ещё >

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Происхождение и народно-хозяйственное значение баклажана
  • Solanum melongena L.)
    • 1. 2. Задачи и проблемы селекции баклажана
    • 1. 3. Использование межвидовой гибридизации в селекции баклажана
    • 1. 4. Трудности, возникающие при межвидовой гибридизации баклажана
    • 1. 5. Использование биотехнологических методов в селекции баклажана
      • 1. 5. 1. Использование эмбриокультуры для преодоления межвидовых барьеров при гибридизации
      • 1. 5. 2. Клональное микроразмножение баклажана
    • 1. 6. Биохимический состав плодов баклажана
      • 1. 6. 1. Полифенольные соединения
      • 1. 6. 2. Пектиновые вещества
  • 2. УСЛОВИЯ, ИСХОДНЫЙ МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКИ ПРОВЕДЕНИЯ ОПЫТОВ
    • 2. 1. Задачи и цель исследований
    • 2. 2. Условия проведения исследований
    • 2. 3. Материал и методика проведения исследований
  • 3. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
    • 3. 1. Оценка эффекта гетерозиса у баклажана по количественным признакам
    • 3. 2. Комбинационная способность линий баклажана по количественным признакам
    • 3. 3. Оценка плодов баклажана по биохимическим показателям
    • 3. 4. Разработка методики клонального микроразмножения
    • 3. 5. Разработка методики культивирования in vitro зародышей межвидовых гибридов
    • 3. 6. Оценка полученных межвидовых гибридов по морфологическим признакам, биометрическим и биохимическим показателям
      • 3. 6. 1. Морфологическая и биометрическая характеристика родительских форм
      • 3. 6. 2. Морфологическая и биометрическая характеристика межвидовых гибридов
      • 3. 6. 3. Фертильность межвидовых гибридов
      • 3. 6. 4. Подтверждение гибридности при помощи ПЦР
      • 3. 6. 5. Биохимический анализ полученных гибридов
  • Выводы 119 Рекомендации по практическому использованию в селекции
  • Список использованной литературы
  • Приложение

Разработка элементов технологии, направленной на расширение генетического разнообразия баклажана при селекции на качество (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность темы

В настоящее время проблема селекции сортов и гибридов Р] баклажана с различными параметрами, удовлетворяющих требования производства и потребителей, стоит очень остро. Динамичное развитие общества приводит к увеличению требований потребителей как к качеству и разнообразию продукции, так и к ее объемам. В связи с этим у производителей сельскохозяйственной продукции возникают соответствующие требования к селекционным достижениям, в первую очередь направленные на повышение урожайности и качества продукции (в т.ч. высокое содержание биологически активных веществ (БАВ)). В условиях современного рынка потребительский спрос постоянно растет и меняется, это создает необходимость в наличии у селекционера генотипически разнообразного исходного материала, наличие которого позволит быстро удовлетворять требования современного производства в короткие сроки и создавать линии с высокой комбинационной способностью для селекции на гетерозис.

В связи с этим создание генотипически разнообразного исходного материала с использованием межвидовой гибридизации и разработка методов биотехнологии, способствующих решению ряда проблем при его создании, являются актуальными. Это позволит расширить спектр поиска ценных селекционных форм, повысить эффективность выявления линий с высокими комбинационной способностью и содержанием БАВ для селекции высокоурожайных сортов и гибридов Б] баклажана с широкой нормой реакции к условиям различных культивационных сооружений и открытого грунта.

Научная новизна работы. Впервые выявлены различия по содержанию фенольных соединений (антоцианы, флавоноиды, фенолкарбоновые кислоты) и пектиновых веществ в отечественных сортах и гибридах, полученных на основе внутрии межвидовой гибридизации. Установлено, что основным антоцианом кожуры плодов баклажана является дельфинидин-(6-кумароил)-3~глюкозид. Показано, что образцы Б. тасгосагроп, З. аеШоржит превосходят по содержанию флавоноидов и фенолкарбоновых кислот сортообразцы 8. те1о^епа.

Разработана методика клонального микроразмножения отечественных сортов баклажана.

Впервые разработана методика эмбриокультуры с использованием ти-диазурона и получены новые генотипы растений на основе межвидовой гибридизации, расширяющие спектр генотипической изменчивости: 8. те1о^епа х 8. тасгосагроп, S. melongena х З. аеМоргсит, &-тасгосагроп х 51. melongena^.аеШоргсит х 8. те1ощепа, З. аеШортит х 5.тасгосагроп.

Установлены различия в динамике развития зародышей у разных видов баклажана и их гибридов.

Практическая значимость. Выделены селекционно ценные линии с высокой комбинационной способностью и содержанием фенольных соединений. Полученный в результате исследований исходный селекционный материал может быть использован для создания сортов и гибридов Р) с высоким содержанием БАВ.

Подобраны питательные среды для клонального микроразмножения баклажана и эмбриокультуры, определены оптимальные сроки получения полноценных растений-регенерантов из незрелых зародышей.

Обоснование и достоверность научных положений. Исследования выполнены по методикам, рекомендованным научными учреждениями страны. Все выводы и предложения подтверждены экспериментальными исследованиями, статистической обработкой полученных данных. у Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

— оценка комбинационной способности линий баклажана по комплексу хозяйственно ценных признаков;

— межвидовая гибридизация баклажана для расширения спектра генотипической изменчивости;

— разработка биотехнологических средств для селекции баклажана.

Объем и структура диссертации. Диссертационная работа изложена на.

185 страницах, состоит из введения, 3 глав, выводов, предложений для использования в селекционной практике, списка использованной литературы, содержащего 405 наименований, в том числе 348 иностранных автора, приложения, иллюстрирована 40 таблицами, 32 рисунками.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

Выводы.

1. Показано, что раннеспелость гибридных комбинаций (80−85 суток) зависит от сочетаний высоких эффектов OKG и СКС у родительских линий.

По, количественным признакам, определяющим урожайность, гибридных комбинаций Fi по проявлению эффекта гетерозиса, закономерности не наблюдается.

2. Основным, антоцианом линий и гибридных комбинаций Fi селекции. ВНИИССОК является* дельфинидин-(6-кумароил)-3-глюкозид, который ранее не был выявлен в баклажане. Содержание антоцианов в плодах родительских линий составляет 0,12−0,18 г/кг плодов^ в гибридных комбинациях — 0,14 — 0,31 г/кг. По данному признаку у 40% гибридных комбинаций Fi наблюдается эффект гетерозиса 105,6 — 193,8%.

3. Изучение морфогенетических реакций ш vitro разных типов эксплан-тов показало, что наибольшей регенерационной активностью обладают семядольные экспланты, которые могут найти широкое применение для массового получения регенерантов баклажана на среде Мурасиге и Скуга с добавлением низких концентраций тидиазурона (0,02 — 0,-2'мг/л TДZ).

4. На основе изучения динамики развития зародышей видов S. melongena L., S. macrocarpon L., S. aethiopicum L. и их гибридов установлено, что зародыши, проходят основные стадии развития-(от глобулярного эмбриоида до полностью сформировавшегося зародыша) в промежутке 20 — 45 суток после опыления. Наиболее быстрое развитие зародыша наблюдается у вида S. aethiopicum — за 30 суток, у S. melongena — за 40 суток, у S. macrocarpon — за 45 суток. Скорость развития зародышей межвидовых гибридов незначительно отличается от скорости развития зародышей родительских видов.

5. Предложены элементы технологии получения межвидовых гибридов баклажана методом эмбриокультуры, состоящие из условий стерилизации семян, стадий развития зародышей, составов питательных сред для индукции, регенерации побегов, укоренения растений-регенерантов.

6. В межвидовых гибридных комбинациях баклажана в большей степени проявляются морфологические и биометрические признаки генеративных органов дикого вида. Показано, что прямые и обратные комбинации являются схожими по основным-признакам (габитус растения, форма, размер и масса цветка и плода).

Фертильность пыльцы всех межвидовых гибридов, полученных при скрещивании S. melongena L., S. macrocarpon L. и S. aethiopicum L. не превышает 30−35%. Все плоды партенокарпические. Семена образуются только при опылении пыльцой культурного вида S. melongena.

7. Содержание флавоноидов в межвидовых гибридных комбинациях в 1,3 раза, фенолкарбоновых кислот — в 1,6−1,7 раза выше, чем у вида S.melongena.

Рекомендации к практическому использованию в селекции.

1. Для получения перспективных гибридов Fi, отличающихся высокой урожайностью, можно> использовать < линии* Л-Багратиощ Л-Бак и Л-Беглец, раннеспелостью — линию Л-Алмаз.

3. Для клонального микроразмножения селекционно ценных форм баклажана отечественных сортов использовать среду Мурасиге и Скуга с добавлением 0,02 и 0,2 мг/л TJZ. Для регенерации побегов рекомендуется использовать среды с уменьшенной концентрацией тидиазурона (0,01 мг/л TJJZ и 0,01 мг/л ТД2 + 0,01 мг/л БАП). Для укоренения побегов, развившихся из почек каллуса семядолей и гипокотиля — среду Мурасиге и Скуга с половинным содержанием основных компонентов без добавления регуляторов роста.

4. Для получения межвидовых гибридов баклажана культивировать незрелые зародыши на стадии торпедовидного эмбриоида (> 2 мм) и более поздних (возраст >30 суток с момента опыления) на среде Мурасиге и Скуга с добавлением ОД мг/л ТД£. Срок развития зародышей на индукционной среде не должен превышать 7−14 суток. Для укоренения оптимальна среда Мурасиге и Скуга с половинным содержанием основных компонентов без добавления регуляторов роста.

5. Линии Л-Алмаз и Л-Солярис можно использовать как исходный материал для получения форм с высоким содержанием антоцианов в кожуре плодов баклажана.

6. Для получения форм с высоким содержанием фенольных соединений в мякоти плодов использовать межвидовые гибридные комбинации 8. аеШор1сит х 8. те1о^епа (Л-Бриллиант), 8. ае1Ыор1сит х 8. те1ощепа (Л-Алмаз), 8. те1ощепа (Л-Бриллиант) х 8.тасгосагроп.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ю.И., Кигашпаева О. П., Алексеева B.C. Селекция баклажана на гетерозис// Международный симпозиум по гетерозису с/х растений (Материалы докладов 1−5 декабря 1997). — М., 1997. С. 85−86.
  2. В.А. Биотехнологические основы расширения генетического разнообразия картофеля: Автореф. дис.. д-ра биол наук. — М., 1997. — 46 с.
  3. A.B. Перцы и баклажаны. М., 1952, — 80с.
  4. Д. М. Пищевые волокна в рациональном питании человека: Сб., научн. тр. М., 1989. — С.90−93.
  5. А.И. Биотехнология в растениеводстве. — Новосибирск: ИЦиГ СО РАН, 1993.-242 с.
  6. Т.Б., Васильева В. Е. Размножение растений.- СПб.: Изд-во.СПб: ун-та, 2002.- 230 с.
  7. Биотехнология растений: культура клеток / Пер. с англ. В. И. Негрука. // Болвелл Г. П., Вуд K.P., Гонзалес P.A. и др. М.: Агропромиздат, 1989.280 е.: ил.
  8. А.Ф., Бухарова А.Р Генетический потенциал диких сородичей баклажана и перспективы вовлечения их в селекционный процесс// Селекция и семеноводство овощных культур в XXI веке. М., 2000.- T.I.- С. 146 148
  9. А.Ф., Соломатин М. И. Методические подходы и перспективные направления отдаленной гибридизации пасленовых культур. // Труды ученых Мичуринского государственного аграрного университета. Мичу-ринск.-«Кварта», 2005.- С.90−97
  10. А.Р., Бухаров А. Ф. Репродуктивные взаимоотношения культивируемых и дикорастущих форм в родовых комплексах томата, перца и баклажана//Докл. TGXA, Вып. 274.-М., 2002.-С.393−396.
  11. В.М., Мамедов М.И, Пышная О. Н., Шмыкова Н: А Клональное микроразмножение баклажана путем органогенеза // Вестник РАСХН, № 6, 2010.- С.57−59
  12. Волобуева В. Ф, Шатилова Т. И. Практикум по-биохимии овощных, плодовых, ягодных, эфироносных и лекарственных культур — Москва, 2008. — С. 45−47.
  13. Г. А., Приходько Н. И. Использование культуры зародышей in vitro для получения межвидовых гибридов томатов // Тр. по прикладной ботанике- генетике, селекции.-1980.-Т.68.-В.З.- С.64−74.
  14. Е.В., Карначук P.A., Гвоздева Е. С., Шумный В. К. Биотехнология и генная инженерия растений (учебное пособие).-Томск, 2006.- С.256
  15. Е. А. Создание исходного материала’перца с использованием1 отдаленной межвидовой гибридизации // Дисс. на соиск. уч ст. канд с.-х. наук, Москва, 2009
  16. С.П., Студенцова Л. И. Гетерозисные гибриды баклажана Майкопской опытной станции ВИР // Научн.-техн. бюлл. ВИР.-1981.-№ 111. -С.41−45.
  17. Л. В. Технология пектина и пектинопродуктов. М., 2000. — 256 с.
  18. М. С., Щелкунов И. Ф., Денисюк Н. А. с соавт. Пищевые волокна — радиопротекторы // Вопросы питания. 1997. — № 2, С. 12−14.24.3апрометов М. Н. Фенольные соединения: распространение, метаболизм и функции в растениях. М: Наука, 1993 .- 178с.
  19. С.И. 40 лет работы с пасленовыми культурами // Картофель и овощи.- 2001.- № 5.- С.23
  20. С.И. Отдаленная гибридизация в семействе пасленовых культур, как метод получения исходного материала // Автореф. дис. на соиск. уч. ст. канд.-с.х.-наук.-М., 1972.-26 с.
  21. Истомин А-. В., Пилат Т. Л. Гигиенические аспекты использования пектина и пектиновых веществ в лечебно-профилактическом питании: пособие для врачей. — М. 2009: — 44 с.
  22. А. В., Чижов С. С. Экология и гигиена профилактического питания. М.: Вера плюс, 2000. — 97 с.
  23. М.И., Ткаченко К. Г. Семена травянистых растений: особенности латентного периода, использование в интродукции и размножении in vitro. Уфа: Гилем.- 2009.- 116 с.
  24. Кан Л.Ю., Романов B.C., Тимин Н. И. Комплексная оценка межвидовых гибридов лука // Вавиловские чтения 2007. Саратовб 2007. — Т.З. — с. 8688.
  25. H.A., Кильчевский A.B. Биотехнология в растениеводстве: уче (5--ник.-Мн:Тэхналопя, 2005.-310 е.: ил.
  26. Д. П. и др. Методические указания.по-использованию в лечебно--профилактических целях пектинов и пектиносодержащих продуктов. — IVCEEE^ СССР, Киев, Разраб. НИИ микробиол. и вирусол. АН УССР. 1990^ с.
  27. П. А., Залевский В. И., Мазанчук В. П. и др. Пищевые волокыг:^^^ в рациональном питании человека. -М., 1989. С. 155−160.
  28. A.C., Шведская З. М. Помидоры, перцы, баклажаны. Биология: и^^г агротехника. -М.: Россельхозиздат, 1972. 144с.
  29. Г. А., Иноземцев В. А. Опыт применения искусственной культз^—. ры зародышей при отдаленной гибридизации яблони с грушей // Бюлзтзс науч. инф./ЦЛГ им. И. В. Мичурина.- 1973.- В.20.- С.11−14
  30. Е. Б., Шрамко Л. У., Донская Е. В., Меньшиков Д. Д. // Рос. жу^>—. нал гастроэнтерологии. 1995. — № 3. — С.133−134.
  31. . О. Д. Профилактическая роль местных пектиносодержащих 1Щг—.щевых продуктов при свинцовых интоксикациях // Вопросы питания. -.1969 .-№ 4'.-С.76−77.
  32. А. Н., Маев И. В., Янушевич О. О. Общая нутрициология.--.
  33. М.: Медпресс-информ, 2005. 392 с.
  34. Э.А. Оценка- уровня потребления флавоноидов отдельньич^я^^ группами населения Российской федерации: Автореф. дис.. канд.наук. -М., 2007. -С. 131.
  35. Д. Д., Лазарева Е. Б., Попова Т. С. и др. // Антибиотики и х^з: — миотерапия. 1997. — № 12. — С. 10−15.
  36. О.И., Короткое О. И., Е.М. Ветчинкина, H.A. Мамаева, 0-ИГ Васильева Генетические банки растений: проблемы формирования, ocz>— хранения и. использования // Вестник Удмуртского университета.- 201 Вып. 3.- С.33−39.
  37. Д.Н., Арамов М. Х. Испытание и оценка гибридов Fl баклажана на раннеспелость и по хозяйственно-ценных признакам // Международная научно-практическая конференция «Селекция и семеноводство' овощных культур в XXI веке». -т.2.-М.-2000.-С. 109−111.
  38. А.Г. Техекагир Гюхатнечакан Гитутюниер // Известия сельско-хояйственых наук Армении.- 1976.-№ 10.-C.33−38
  39. В.Ф., Мамедов М. И., Бочарникова Н. И. Пасленовые культуры: томат, перец, баклажан, физалис. М, 1998. — С.295
  40. Т. Л., Иванов А. А. Биологически активные добавки к пище (теория, производство, применение). М., 2002. — 710 с.
  41. Р., Загорска Н. Использование методов in-vitro для преодоления стерильности межвидового гибрида Capsicum аппиит х Capsicum praetermissum' // Культура клеток растений и биотехнология.- М. Наука, 1986.- С.171−175.
  42. И.А., Крючков A.B., Комиссаров В. А. Селекция и семеноводство овощных культур. М.: Колос, 1998.- 448 с
  43. К.А., Кудашкина Н. В. Изучение возможности пряно-ароматических и эфирномасличных растений для экопротективной помощи населению // Вестник ОГУ, 2009, № 6. С.499−502
  44. Соболев Ml Б., Хацкель С. Б., Мурадов А. Ю. Энтеросорбция некрахмальными полисахаридами, как метод лечения детей с меркуриализмом // Вопр. питания. 1999. — Т.68, № 1. — С.28−30.
  45. Тимин Н. И, Агафонов А. Ф., Шмыкова Н. А. и др. Межвидовая гибридизация в роде Allium L. и её использование в селекции (методические рекомендации) М., 2007. — 47 с.
  46. A.A., Поляков A.B. Регенерация растений огурца in vitro II Биотехнология овощных, бахчевых, цветочных и малораспространенных культур: Сборник науч. трудов Междунар. научно-практ. конф. 22—25 марта 2004 г. М., 2004. — С. 118−121.
  47. Н.И., Матушкина О. В., Пронина И. Н. Методические указания по микроклональному размножению клоновых подвоев яблони и груши. -М., 1996.-17 с.
  48. Е.А. Зависимость антиоксидантной активности флавоноидов от физико-химических характеристик в различных системах: Автореф: дис.. канд.мед. наук. — М., 2005. — С.114.
  49. Э.К., Мезенцев, Рубцов Межвидовая гибридизация клевера с использованием культуры зародышей // Селекция и семеноводство.-1980.-№ 1.- С.16−18.г
  50. Г. Н., Галецкая Г. Р. Регенерационная способность коллекционных образцов культурного томата // Пробл. теор. и прикл. генет. в Казахстане: Матер. Респ. конф., Алма-Ата, 18−22 ноября 1990 г. Алма-Ата, 1990. — С. 122−123.
  51. А.А., Костенко С. И. Особенности микроклонального размножения-кормовой свеклы // Докл. ВАСХНИЛ. 1988. — № 10. — С.15−17.
  52. Acciarri N-, Restaino F., Vitelli G., et al. Genetically modified parthenocarpic eggplants: improved fruit productivity under both greenhouse and-, open field cultivation //BMC biotechnology. 2002. Vol.2, № 4. -P.l01−114.
  53. Aherne S.A., O’Brien N. M, Dietary flavonols: chemistry, food content, and metabolism // Nutrition. 2002. Vol.18. — P.75−81.
  54. Alba, V., Lotti Т., D’Alessandro A., Mennella G., Riciardi L., Sunseri f. Genetic diversity on African eggplant: molecular and chemical analyses. // Proc. XLIX Italian Soc. Agric. Gen. Ann. Congress (12−15 Sept. 2005, Potenza, Italy)-2005.-P. 135−139.
  55. AH M:', Okubo H., Fujieda K. In vitro multiplication of intra- and interspecific Solanum hybrids through somatic embryogenesis and adventitious organogenesis. //J. Jpn. Soc. Hortic. Sei.- 1991. Vol-60.- P.60r-612.
  56. Alicchio R., Antonioli C., Palenzona D. Karyotic variability in plants, of Solanum melongena regenerated from callus grown in presence of culture filtrate of Verticillium dahliae // Theor. Appl. Genet. 1984. Vol.67. -P.601−612
  57. Alicchio R., Del Grosso E., Boschieri E. Tissue cultures and plant regeneration from different explants in six cultivars of Solanum melongena II Experientia. -1982. Vol.38. P.449—450.
  58. Amagai M., Ohashi K., Kimura S. et al. Breeding of interspecies hybrid between Allium fistulosum and A. tuberosum by embryo culture. // Bull. Tochigi. Agr. Exp. Stn.- 1995. Vol.43.- P.87−94.
  59. Anaso H., Okereke G.U., Uzo J.O. Breeding for high yield of berries and improved yield attributes in S. aethiopicum L. // Tropical, Agric.- 1990.- V. 67, №*4.- P.371−375.
  60. Anaso H.U. Comparative cytological- study of S. aethiopicum Gr. Gilo, 5. aethiopicum Shum group and Solanum anguivi. II Euphytica.- 1991.-V. 53, № 2.-P. 81−85.
  61. Anderson R.F., Amarasinghe C., Fisher L.J. et al. Reduction in free-radical-induced DNA stand breaks and base damage through fast- chemical- repair by flavonoids //Free Radic. Res. 2000. Vol.33 — P.91—103.
  62. Ando T., Saito N., Tatsuzawa F., Kakefiida T. et al. HPLC profiles of floral an-thocyanins in the native taxa of Petunia (Solanaceae) // Tech. Bull. Fac. Hortic. Chiba UniV. 1999. Vol.53. — P:135−144.
  63. Ano G., Hebert Y., Prior P., Messiaen C.M. A new source of resistance to bacterial wilt of eggplants obtained from a cross: Solanum aethiopicum L. x Solanum melongena L.//Agronomie.- 1991.-V. 11.-P.555−560.
  64. Arous S., Boussai’d M., Marrakchi M. Plant regeneration from zygotic embryo hypocotyls of Tunisian chili (Capsicum annuum L.) // J. Appl. Hort. — 2001 Vol.3, № 1.-P. 17−22.
  65. Arts I.C., Hollman P.C. Polyphenols and disease risk in epidemiologic studies // Am. J. Cli. n Nutr. 2005. Vol.81. -P.317−325.
  66. Asao H., Tanigawa M., Okayama K., Arai S. Breeding of. resistant Solarium spp. for bacterial wilt by cell selection using a wilt-inducing product // Bulll Nara. Agric. Exp. Stn. 1992. Vol.23. -P.7−12.
  67. Ashfaq Farooqui M., Rao A., Jayasree T., Sadanandam A. Induction of atrazine resistance and somatic embryogenesis in Solarium melongena II Theor. Appl. Genet. 1997. V.95. -P.702−705.
  68. Attav/an B.N., Jelenkovic G., Pollack B.L. Crossability of selected non-tuberous Solanum species. // J. Amer. Soc. Hort. Sci.-1983.-V. 108, № 1.- P. 15−20.
  69. Ayotte R., Harney P.M., Machado VOL. The transfer of triazine resistance from Brassicanapus L. to B. oleracea L.I. Production of F! hybrids through embryo rescue. //Euphytica.- 1987! Vol.36.- P.615−624.
  70. Azuma K., Ohyama A., Ippoushi K., Ichiyanagi T., Takeuchi A., Saito T., Fu-kuoka H. Structures and antioxidant activity of anthocyanins in many accessions of eggplant and its related species // J: Agric. Food Chem. — 2008. Vol.56. — P.10 154—10 159.
  71. Baksh S. et al. Breeding system of Solanum integrifolium Poir. with am emphasis on sex potential and intercrossability. // Euphytica.- 1978: — 27, № 3.-P. 811−815.
  72. Banerjee M: K., Kalloo G., Singh M. et. al Wide hybridization of eggplant (Solanum sps.) — II Caps. Egg. Newsl.- 2002. Vol.21.- P. 89−92.
  73. Behera T.K., Sharma P., Singh B.K. et al. Assessment of genetic diversity and species relationships in eggplant (Solanum melongena~L.) using STMS markers // Sci.Hort. — 2006. Vol.107. P.52−357.
  74. Behera T.K., Singh N. Interspecific crosses between eggplant (Solanum melongena L.) with related Solanum species // Scientia Horticulturae.- 2002.- V. 95.-P. 165−172.
  75. Beyries A. Le greffage, moyen de lutte contre les parasites telluriques des so-lanees cultivees pour leurs fruits. // These Dr Univ, Univ Sci et Tech du Languedoc,?. Montpellier.- 1979.-P. 166.
  76. Bhatt P., Bhatt D., Sussex I. Organ regeneration from leaf discs of Solarium nigrum, S. dulcamara, S. khasianum II Z. Pflanzenphysiol. — 1979. Vol.95. — P.355−362.
  77. Bhattarai S. P., de la Pena R: C. Midmore D.J. Palchamy K. In vitro culture of immature seed* for rapid generation advancement in tomato // Euphytica.- 2009. Vol.167.-P:23−30-
  78. Binzel M.L., Sankhla N., Joshi S. et. al Induction of direct embryogenesis and plant regeneration in pepper (Capsicum annuum L.) // Plant Cell Rep.- 1996. Vol. 15.- P.536−540-
  79. Bletsos F., Roupakias D., Tsaktsira M, Scaltsoyjannes A. Production and characterization of interspecific hybrids* between three eggplant {Solanum melon-gena L.) cultivars and" Solanum macrocarpon L. // Scientia Horticulturae.-2004.-V. 101.-P. 11−21.
  80. Block G., Patterson B., Subar A. Fruit, vegetables and cancer prevention: a review of the epidemiological evidence. -Nutr. Cancer. — 1992.Vol.18. -P.l-30.
  81. Bohmer P., Meyer B., Jacobsen H.-J. Thidiazuron-induced high frequency of shoot induction and plant regeneration in protoplast derived pea callus // Plant Cell Rep. 1995. VoL15. -P.26−29.
  82. Borkowski B. Phenolic acids and their esters. Part II // Herba.Pol. 1993. Vol.39.-P. 139−145.
  83. Borkowski B., Besiadecka A., Litwinska B. Comparison of virusostatic activity of caffeic, chlorogenic and rosmarinic acids // Herba Pol. 1996. Vol.42. — P. 317−321.
  84. Brakenchielm E.R., Cao Y. Suppression of angiogenesis, tumor growth, and wound healing by resveratrol, a natural compound in red wine and grapes // FASEB. 2001.Vol.15. — P.1798—1800.
  85. Bukenya Z.R. Solanuum macrocarpon: an underutilised but potential vegetable in Uganda. // Proceedings Xlllth Plenary Meeting AETFAT, 17−24, Sept. 1994. Malawi (J.H.Senyani and A.C. Chikuni, eds).- 1994. P.34−41.
  86. Bukenya Z.R., Carasco J.F. Biosystematic study of Solanum macrocarpon S. dasyphyllum complex in Uganda and relations with Solanum linnaeanum. II East African Agric. For. J.- 1994, — V.59, № 3.-P. 187−204.
  87. Bukenya Z.R., Hall J.B. Six cultivars of Solanum macrocarpon (Solanaceae) in Ghana. //Euphytica.- 1987.-V.17, № 1.-P. 91−95.
  88. Buyukalaca S., Mavituna F. Somatic embryogenesis and plant regeneration of pepper in liquid media // Plant Cell Tiss. Cult.- 1996. Vol.46.- P.227−235.
  89. Carlson P. S., Smith H.H., Dearing R.D. Parasexual interspecific plant hybridization. //Proc. Natl. Acad. Sei.- 1972. Vol.69.- P.2292−2294.
  90. Caruso G. Morpho-physiological characterization of S. aethiopicum L. Gr. Gilo. //Agric. Mediterr.- 2001. -V.131(3−4).-P. 153−163.
  91. Casa Nova S. et al. Hypoglycemic effect of eggplant {Solanum melongena L.) in rats. // Cienc. Tecnol. Aliment. 2002. Vol.22, № 2. — P. 164−169
  92. Chakravarthi D.V.N., Rao Y.V., Rao M.V.S., Manga V. Genetic analysis of in vitro callus and production of multiple shoots in eggplant // Plant Cell Tiss. Organ. Cult. -2010. Vol.102. -P.87−97.
  93. Chen H., Ho C. Antioxidant activities of caffeic acid and its related hy-droxycinnamic acid compounds // J! Agric. Food Chem. 1997. Vol.45. -P.2374−2378.
  94. Chen J.F., Staub J., Adelberg J., Lewis S. and Kunkle B. Synthesis and preliminary characterization of a new species (amphidiploid) in Cucumis II Euphytica.- 2002. Vol.123, № 3.- P.315−322.
  95. Chen Y-K.H., Palta J.P., Bamberg J.B. Freezing tolerance and tuber production in selfed and backcross progenies derived from somatic hybrids between Solanum tuberosum L. and Solanum commersoni Dun. I I Theor. Appl. Genet.-1999.-V. 99.-P.100−107.
  96. Chiriac G., Andronic L., Bujoreanu V., Marii L. Features of crossingover in virus-infected tomato // Central European Journal of Biology.- 2006.-Vol.l, № 3.-P.l-13.
  97. Chopde P.R., Wanjari K.B. Interspecific hybrids of Solanum. In: Proceedings of the Second Congress of SABRAO. //Indian J.Genet.- 1973.-Vol.34A.-P.1318−1323.
  98. Cieslik E., Gr^da A., AdamusW. Contents of polyphenols in fruit and vegetables // Food Chem. 2006. Vol.94, № 1. — P. 135−142.
  99. Cnakrabarti A. K., Choudhury B. Breeding brinjal resistant to little leaf disease. //Proc. Indian Nat. Set. Acad.-1975.-Vol. 4.-P. 379—385.
  100. Collonnier C., Fock I., Kashyap V. et al. Applications of biotechnology in eggplant II Plant Cell Tiss. Org. Cult. 2001. Vol.65, № 2. — P. 91−107.
  101. D’Arcy, W.G. Solanaceae studies. II. Typification of subdivisions of Solarium 11 Ann. Missouri. Bot. Guard. 1972. Vol.59. — P. 262−278.
  102. Das S.C., Barman T.S., Singh R. Plant regeneration and establishment in nursery // Assam. Rev. Tea News. 1990. Vol.79. — P.24−27.
  103. Daunay M.C., Chaput M.H., Sihachakr D., Allot M., Vedel F., Ducreux G. Production and characterization of fertile somatic hybrids of eggplant (Solarium melongena L.)with S. aethiopicum L. // Theor. Appl. Genet.-1993.-Vol. 85.-P. 841−850.
  104. Daunay M.C., Lester R.N. The usefulness of taxonomy for Solanaceaebreeders, with special reference to the genus Solanum and to Solanum melongena L. (eggplant). // Cap. New.- 1988.-Vol.7.- P. 70−79.
  105. Di Vito M., Zaccheo G. Catalano F. Source for resistance to root knot nematodes Meloidogyne spp in eggplant. // In: Proc. VHIth Eucarpia meeting on Genetics and Breeding of Capsicum and Eggplant.- 1992.- P.301−303.
  106. Dixon R.A., Palva N.L., Stress-induced phenylpropanoid metabolism // Plant Cell. 1995. Vol.7. -P.1085−1097
  107. Doganlar S., Frary A., Daunay M.G., Lester R.N., Tanksley S. D: A comparative genetic linkage map of eggplant (Solarium melongena} arid its implications for genome evolution, in the Solanaceae. II Genetics.- 2002.-V. 161.-P. 1697−1711.
  108. Donzella G., Spena A., Rotino G.L. Transgenic parthenocarpic eggplants: superior germplasm for increased winter production // Mol. Breed. 2000. Vol.6, № l. -P. 79−86:
  109. Dubouzet J.G., Shinoda K., Murata N. Interspecific hybridization of A Ilium giganteum Regel: production and- early verification of putative hybrids // Theor.Appl.Genet.- 1998.- Vol.96. P.385−388.
  110. Estebam R. M., Lopez-Andreu F- J-, Martin-Gabrejas ML A: et al. Pectin changes during the development and ripening of eggplant fruits // Food Chem. 1993. Vol.46, № 3. — P.289−292.
  111. Fang M., Mao R., Xie W. Breeding of cytoplasmically inherited male sterile lines of eggplant (, Solarium melongena L.): // Acta-: Hortic. Sim. r 1985.-V.12.-P. 261−266.
  112. Fari M., Csanyi M., Mityko J. et al. An alternative pathway of in vitro organogenesis in higher plants: plant regeneration via decapitated hypocotyls in three solanaceous vegetables genera // Hort. Sei. 1995. Vol.27. — P.9−16.
  113. Farooqui M.A., Rao A.V., Jayasree T. et al. Induction of atrazine resistance and somatic embryogenesis in Solanum melongena II Theor. Appl. Genet. — 1997. Vol.95.-P. 702−705.
  114. Fasolo F., Zimmerman R., Fordham I. Adventitious shoot formation on excised leaves of in vitro grown shoots of apple cultivars // Plant Cell Tissue Organ. Cult. 1989. Vol.16. -P.75−87.
  115. Fassuliotis G. Regeneration of whole plants from isolated stem parenchyma cells of iSolanum sisymbrifolium 11 J. Amer. Soc. Hort. Sei. 1975. Vol.100. — P.636−638.
  116. Fassuliotis G., Dukes P.D. Disease reaction of Solanum melongena and Solanum sisymbrifolium to Meloidogyne incognita and Verticillium' alboatrum. II J. Nematol.-1972.- V. 4(4).- P. 222−223.
  117. Fassuliotis G., Nelson B., Bhatt D. Organogenesis in tissue culture of Solanum melongena cv. Florida market // Plant Sei. Lett. 1981. Vol.22. — P. l 19 125.
  118. Faure O., Diemer F., Moja S. et al. Mannitol and thidiazuron improve in vitro shoot regeneration from spearmint and peppermint leaf disks // Plant- Cell Tiss. Org. Cult. 1998. Vol.52. -P.209−212.
  119. Felgines C., Talavera S., Gothier M.P. et al. Strawberry anthocyanins are recovered in urine as glucuoro- and sulfoconjugates in humans // J. Nutr. 2003. Vol.133.-P.1296−1301.
  120. Fobert P.R., Webb D.T. Effects of polyamines, polyamine precursors, and polyamine biosynthetic inhibitors on somatic embryogenesis from eggplant {So
  121. Fournier D., Lejeune F., Tourte Y. Cytological events during the initiation of meristematic nodules in calli derived from eggplant protoplasts. // Biol. Cell.-1995. Vol.85.- P.93−100.
  122. Frankenberger A., Hasegawa P.M., Tigchelaar E.C. Diallel analysis of shoot-forming capacity among selected tomato genotypes // Z. Pflanzenpirysiol. -1981. Vol.102. -P.233−242.
  123. Franklin G., Sheeba C., Sita G. Regeneration of eggplant (Solatium- melongena L.) from root explants // In vitro Cell Dev. Biol. Plant. — 2004. Vol.40. — P.188−191.
  124. Frary A., Doganlar S., Daunay M.C. QTL analysis of morphological traits in eggplant and implications for conservation of gene function during evolution of solanaceous species. // Theor. Appk Genet.- 2003.- V.107- P.359−370.
  125. Fukumoto L., Mazza G. Assessing antioxidant and prooxidant activities of phenolic compounds // J. Agric. Food Chem. 2000. Vol.48. — P.3597−3 604.
  126. Gallo-Meagher M-., English R.G., Abouzid A. Thidiazuron stimulates shoot regeneration of sugarcane embryogenic callus // In vitro Cell. Dev. Biol.Plant. -2000! Vol.36. P.37−40:
  127. Gawell N. J., Robacker C. D. Genetic control of somatic embryogenesis in cotton petiole callus culture // Euphytica. 1990. Vol.49. — P.249−253.
  128. George E.F. Plant Tissue Culture Procedure Background // Plant Propagation by Tissue Culture 3rd Edition, Springer.- 2008. Vol.1.- Ch.l.- P. 1−28.
  129. Gill R., Ozias-Akins P. Thidiazuron-induced highly morphogenetic callus and high frequency regeneration of fertile peanut (Arachis hypogaea L.) plants II In vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 1999. Vol.35. — P.445 — 450.
  130. Gleddie S., Keller W., Setterfield G. Plant regeneration from tissue, cell and protoplast cultures of several wild Solanum species // J. Plant. Physiol. — 1985. Vol.109.-P.405−418.
  131. Gleddie S., Keller W., Setterfield G. Production and characterisation of somatic hybrids between S. melongena and S. sisymbrifolium Lam. // Theo-ret.Appl.Genet.- 1985b. Vol.71.-P.613−621.
  132. Gleddie S., Keller W., Setterfield G. Somatic embryogenesis and plant regeneration from leaf explants and cell suspensions of Solanum melongena II Can. J. Bot. 1983. Vol.61. -P.656−666.
  133. Goldfarb B., Howe G.T., Bailey L.M. et al. A liquid cytokinin pulse induces adventitious shoot formation from Douglas-fir cotyledons // Plant Cell Rep. -199k Vol.10.-P.156−160.
  134. Gowda P.H.R., Shivashankar K.T., Joshi Sh. Interspecific hybridization between Solanum melongena and Solanum macrocarpom study of the F1 hybrid plants.//Euphytica.- 1990.-Vol.48.-P.59−61.
  135. Gupta S.D., Conger B.V. In vitro differentiation of multiple shoot clumps from intact seedlings of switchgrass // In vitro Cell. Dev. Biol. Plant. — 1998. Vol.34.-P.196−202.
  136. Guri A, Sink K.C. Interspecific somatic hybrid plants between eggplant S. melongena and S.torvum. II Theoret. Appl. Genet.- 1988a. Vol.76.- P.490−496.
  137. Guri A, Sink K.C. Organelle composition in somatic hybrids between an atrazine resistant biotype of S. nigrum> and S. melongena II Plant Sci.- 1988b. Vol.58.- P.51−58.
  138. Guri A., Volokita M., Sink K. Plant regeneration from leaf protoplasts of Solanum torvum II Plant Cell Rep. 1987. Vol.6. — P.302−304.
  139. Hagiwara T., Saski H., Inaba T., Yanase Y. Genetical studies on habit in the progeny of spontaneous hybrids of Solanum Gilo // Bull. Coll. Agric. Vet. Med. Nibon. Univ.- 1963.- Vol.16.- P. 47−58-
  140. Hakkinen A., Karenlampi G., Mykkanen D. et. al Influence of domestic processing and storage on flavonol contents in berries // J. Agric. Food Chem. 2000. Vol.48. — P.2960−2965.
  141. Han S., Tae J., Kim J., Kim D. et al. The aqueous extract of Solanum melon-gena inhibits PAR2 agonist-induced inflammation // Clinica Chimica Acta. -2003. Vol.328. P.39−44.
  142. Hansen L.N., Earle E.D. Transfer of resistance to Xanthomonas campestris pVol. campestris into Brassica oleracea L. by protoplast fusion. // Theor.AppkGenet.- 1995. Vol.91.- P.1293−1300. •
  143. Hare P., Van Staden J. Inhibitory effect of thidiazuron on the activity of cy-tokinin. oxidase isolated from soybean callus // Plant Cell Physiol. — 1994. Vol.35.-P.l 121−1125:
  144. Harini I., Lakshmi S. G. Direct somatic embryogenesis and plant"regeneration from immature embryos of chilli (Capsicum annuum L.) // Plant Sci.-1993. Vol.89.- P.107−112.
  145. Hensel A., Meier K. Pectins and xyloglucans exhibit antimutagenic activities against nitroaromatic compounds // Planta Med. — 1999. Vol.65, № 5. P.395−399.
  146. Herling A.W., Burger HJ., Schwab D. et. al Pharmacodynamic profile of a novel inhibitor of the hepatic glucose-6-phosphatase system // Am. J. Physiol. -1998. Vol.274. P. 1087−1093.
  147. Hertog M.G.L, Feskens EJ. M, Hollman P.C.H. et al. Dietary antioxidant flavonoids and the risk of coronary heart disease: The in Zutohen Elderly Study // Lancet. 1993.Vol.342.-P. 1007—1011.
  148. Hocher V., Sotta B., Maldiney R. et al. Changesinindole-3-acetic acid levels during tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) seed development // Plant.Cell. Rep. 1992. Vol.11, № 5−6. — P.253−256.
  149. Hou D.X. Potential mechanisms of cancer chemoprevention by anthocyanins // Curr. Mol. Med. 2003. Vol.3. — P.149−159.
  150. Huetteman C., Preece J. Thidiazuron: a potent cytokinin for woody plant tissue culture // Plant Cell Tiss. Org. Cult. 1993. Vol-33. — P1105−119.
  151. Hyde C., Phillips G.C. Silver nitrate promotes shoot development and plant regeneration of chile pepper (Capsicum annuumli,.) via organogenesis // In vitro Cell Dev. Biol. Plant: 1996. Vol.32. — P:72−80.
  152. Ichikawa H., Ichiyanagi T., Xu B. et al. Antioxidant activity of anthocyanin extract from purple black rice // J- Med. Food. 200V. Vol.4. — P.211−218.
  153. Ichiyanagi T., Hatano Y., Matsugo >S. Simultaneous comparison of relative reactivities of twelve major anthocyanins in bilberry towards reactive nitrogen species // Chem. Pharm. Bull. 2004©. Vol.52. — P. 1312−1325.
  154. Ichiyanagi T., Hatano Y., Matsugo S. Structural dependence of HPLC separation pattern of anthocyanins from bilberry (Vaccinium myrtillus L.) // Chem. Pharm. Bull. 2004(b). Vol. 52. — P.628−630.
  155. Ichiyanagi T., Hatano Y., Matsugo S., Konishi T. Comparison of anthocyanin reactivity towards hydroxyl radical, superoxide anion ang singlet oxygen // ITE Lett. 2003. Vol.4. — P.788−793.
  156. Ichiyanagi T., Hatano Y., Matsugo S., Konishi T. Kinetic comparison of anthocyanin reactivity towards AAPH radical, hydrogen peroxide and tbuthylhydroperoxide using capillary zone electrophoresis // Chem. Pharm. Bull.- 2004(d). Vol.52. P.434−438.
  157. Ichiyanagi T., Kashiwada Y., Ikeshiro Y. et al. Complete assignment of bilberry (Vaccinium myrtillus L.) anthocyanins separated by capillary zone electrophoresis // Chem. Pharm. Bull. 2004(a). Vol.52. — P.226−229.
  158. Ichiyanagi T., Rahman M.M., Kashiwada K. et al. Absorption and metabolism of delphinidin 3-O-?-D-glucopyranoside in rats // Free Radical Biol. Med.- 2004(f). Vol.36. P.930−937.
  159. Ichiyanagi T, Kashiwada Y, Shida Y. et al. Nasunin from eggplant consists of cis-trans isomers of delphinidin 3−4-(p-coumaroyl)-L-rhamnosyl (1—>6)glucopyranoside.-5-glucopyranoside // J. Agric. Food Chem. 2005(a). Vol.53.-P. 9472−9477.
  160. Ichiyanagi, T., Kashiwada, Y., Shida, Y. et. al Nasunin from eggplant consists of cis-trans isomers of delphinidin 3−4-(p-coumaroyl)-L-rhamnosyl (l-6) glucopyranoside.-5-glucopyranoside // J. Agr. Food Chem. 2005. Vol.53. -P.9472−9477.
  161. Igarashi K. Functions of anthocyanins // Food* Processing (in Japanese). — 1998. Vol.33.-P.ll-14.
  162. Igarashi K., Yoshida T., Suzuki E. Antioxidative activity of nasunin in Chouja-nasu (Little eggplant, Solanum melongena L. 'Chouja) // Nippon Sho-kuhin Kogyo Gakkaishi. 1993. Vol.40. -P.138 — 143.
  163. Isouard G., Raquim C., Demarly Y. Obtention de plantes haploides et dip-loides par culture in vitro antheres d’aubergine (, Solanum melongena L.) // C. R. Acad. Sei. Paris. 1979. Vol.288. -P.987 — 989:
  164. Isshiki S., Kawajiri N. Effect of cytoplasm of Solanum violaceum Ort. on fertility of eggplant (S.me/o"g??2<3 L.). // Sei. Hort.- 2002.-V.93.-P. 9−18.
  165. Isshiki S., Okubo H., Fujieda K. Segregation of isozymes in selfed progenies of a synthetic amphidiploid between S. integrifolium and S.melongena. II Euphytica.- 2000.-V. 112.-P. 9−14.
  166. Isshiki S., Suzuki S., Yamashita K. RFLP analysis of mitochondrial DNA in eggplant and related Solanum species // Genet.Res.CropEvol. 2003. Vol.50. -P.133−137.
  167. Isshiki S., Taura T. Fertility restoration of hybrids between Solanum melongena L. and S. aethiopicum L. Gr. Gilo by chromosome doubling and cyto-plasmiceffect on pollen fertility // Euphytica. 2003. Vol.134. — P.195−201.
  168. Isshiki S., Yoshida S. Characteristics of the cytoplasmic male sterility in the eggplant (Solanum melongena L.) carrying the cytoplasm of S. violaceum Ort. // Bull. Fac. Agr. Saga. Univ.- 2002.- V.87.- P.87−93.
  169. Isshiki S., Uchiyama T., Tashiro Y. et al. RFLP analysis of a PCR amplified region of chloroplast DNA in eggplant and related Solanum species // Euphytica.- 1998. Vol.102. P.295−299.
  170. Iwamoto Y., Hirai M., Ohmido N. et al: Fertile somatic hybrids between Solanum integrifolium and S. sanitwongsei (syn. S. kurzii) as candidates for bacterial wilt-resistant rootstock of eggplant // Plant Biotechnology.- 2007. Vol.24.-P. 179−184.
  171. Iwamoto, Y., Hirai M., OhmidoN. et al. Fertile somatic hybrids between Solanum integrifolium and S. sanitwongsei (syn. S. kurzii) as candidates for bacterial" wilt-resistant rootstock of eggplant // Plant Biotechn. 2007. Vol.24f. — P. 179−184.
  172. Jain S., Das S., Barman T. Enhancement of root induction from in vitro regenerated shoots of tea (Camellia sinensis L.) // Proc. Ind. Natl Sei. Acad. -1993. VoliB59.-P.623 628.
  173. Jarl C., Rietveld E.M., Haas J.M. Transfer of fungal tolerance through interspecific somatic hybridisation between Solanum melongena and Solanum tor-vum. II Plant. Cell. Rep.- 1999.- V.18.- P.791−796.
  174. Jin-Zhuo D., Shi-Rong J. High efficiency plant regeneration from cotyledons of watermelon (Citrullus vulgaris Schrad.) // Plant Cell Rapt. 1991. Vol.9, N10. — P.559−562.
  175. Joshipura K.J., Hu F.B., Manson J: E. et al. The effect of fruit and vegetable intake on risk for coronary heart disease // Ann. Int. Med. 2001.Vol.134. -P.l 106—1114.
  176. Kalda T.S., Swarup V., Choudhury B. Resistance toPhomosis blight in eggplant. //Veg. Sci.- 1977.- V.4.- P.90−101.
  177. Kalloo G. Eggplant (Solarium melongena L.). // In: Kalloo G. (Ed.) Genetic improvement of vegetable crops. Oxford: Pergamon Press, 1993.- P.587−604.
  178. Kamat M., Rao N. Vegetative multiplication of eggplants (Solarium melongena) using tissue culture techniques I I Plant Sci. Lett. 1978. Vol.13. -P.57−65.
  179. Kanadaswami C., Lee L.T., Lee P. P: et al. The antitumor activities of fla-vonoids II In Vivo. 2005.Vol.19. — P.895−909.
  180. Kandasamy P. Heterosis and combining ability in eggplant // Indian J. Agr. Sci.- 1983.- 53.-V.4.-P.201−206.
  181. Kaneyuki T., Noda Y., Traber M. et al. Superoxide anion and hydroxyl radical scavenging activities of vegetable extracts measured using electron spin resonance // Biochem. Mol. Biol. Int. 1999. Vol.47, № 6. — P.979−989
  182. Kankonen M., Heinonen M. Antioxidant activity of anthocyanins and their aglycons // J? Agric. Food Ghem. 2003. Vol.51. — P.628−633.
  183. Kanyand M., Dessai A., Prakash C. Thidiazuron promotes high frequency regeneration of peanut (Arachis hypogaea) plants in vitro II Plant Cell Rep. — 1994. Vol.14.-P.l-5.
  184. Karami O., Saidi A. The molecular basis for stress-induced acquisition of somatic emryogenesis // Mol. Biol. Rep.- 2009. Vol.37, № 5.- P.2493−2507.
  185. Karihaloo J.L., Brauner S., Gottlieb L.D. Random amplified polymorphic DNA variation in the eggplant, Solanum melongena L. {Solanaceae). // Theor. Appl. Genet.- 1995.- V.90(6).- P.767−770.
  186. Karihaloo J.L., Kaur M., Singh S. Seed’protein diversity in Solanum melongena L. and its wild and weedyrelatives // Genet.Res.Crop Evol. — 2002. Vol.49. P.533—539.
  187. Karihaloo J.L., Kaur M., Singh S. Seed protein diversity in Solanum melongena L. and its wild and weedy relatives. // Genet. Res. Crop Evolution.- 2002.-V.49(9).- P.533−539.
  188. Kartha K., Pahl K., Leung N. Plant regeneration from meristems of grain legumes: soybean, cowpea, peanut, chickpea, and bean // Can. J. Bot. — 1981. Vol.59.-P. 1671−1679.
  189. Katsube N., Iwashita K., Tsushida T., Yamaki K., Kobori M. Induction of apoptosis in cancer cell by bilberry (Vaccinium myrtillus L.) and the antho-cyanins // J. Agric. Food Chem. 2003. Vol.51. — P.68−75.
  190. Kawaii S., Tomono Y., Katase E. et al. Antiproliferative activity of flavon-oids on several cancer cell lines // Biosci. Biotechnol. Biochem. 1999.Vol.63. -P.896—899.
  191. Kayamori F., Igarashi K. Effects of dietary nasunin on the serum cholesterol level in rats // Biosci. Biotech. Biochem. 1994. Vol.58. -P.570 — 571.
  192. Kazi A., Smith D.M., Daniel K. et al. Potential molecular targets of tea polyphenols in human tumor cells: significance in cancer prevention // In vivo. -2002.Vol.16. -P.397−403.
  193. Kishor R. and Sharma G. J. Intergeneric hybrid of two rare and endangered orchids, Renanthera imschootiana Rolfe and Vanda coerulea Griff, ex L. (Orchidaceae): Synthesis and characterization Euphytica Volume 165, Number 2, 247−256, 2009
  194. Komatsuda T., Enomoto S., Nakajima K. Genetics of callus proliferation and shoot differentiation in barley // J. Hered. 1989. Vol.80. — P.345−350.
  195. Kong J.M., Chia L.S., Goh N.K. Analysis and biological activities of antho-cyanins // Phytochemistry. 2003. Vol.64. — P.923−933
  196. Korszicow B.M. Lecznicze wlasciwoski roslin uprawnyh // Medical properties of cultivated plants (PWRiL, Warshawa, 1991). 1991. — P. 9−11.
  197. Kowalski R., Kowalska G. Phenolic acid contents in fruits of aubergine (Solarium melongena L.) // Polish J Food Nutr. Sci. 2005. Vol.14(55), № 1. — P. 37−42.
  198. Kowlozyk T., Mackenzie I., Cocking E. Plant regeneration from organ explants and protoplasts of medicinal plant Solanum khasianum Clarke var. Chat-tergeeanum Sengupta (Syn. Solanum viamm Dunal) // Z. Pflanzenphysiol. — 1983. Vol.11. -P.55−68.
  199. Kumar N., Ram H.H. Combining ability and gene effect analysis of quantitative characters in eggplant // Indian J. Agr. Sci.- 1987.-57.-V.2.-P.89−102.
  200. Kumar P.A., Mandaokar A., Sreenivasu K. et al. Insect-resistant transgenic brinjal plants // Mol. Breed. 1998. Vol.4, № 1. — P. 33−37.
  201. Kuroda C., Wada M. The coloring matter of eggplant (Nasu) // Part II. Proc. Imp. Acad. 1935. Vol.11. -P.235−237.
  202. Kuroda C., Wada M. The coloring matter of eggplant (Nasu) // Proc. Imp. Acad. 1933. Vol.9. -P.51−52.
  203. Lai O.P., Sharma R.K., Verma T.S., Bhagchandan P.M., Chandra J. Resistance in Brinjal to shoot and fruit borer (Leucinodes orbonalis Guen., Pyralidi-dae: Lepidoptera).//Veg. Sci.- 1976.- V.3.- P. lll-116.
  204. Lambert J.D., Hong J., Yang G.Y. et al: Inhibition of carcinogenesis by polyphenols: evidence from laboratory inves-tigations // Am. J. Clin. Nutr. -2005.Vol.81. — P.284−291.
  205. Leblay C., Chevreau E., Raboin L. Adventitious shoot regeneration from in vitro leaves of several pear cultivars (Pyrus communis L.) I I Plant Cell Tissue Organ Cult. 1991. Vol.25. -P.99−105.
  206. Lester R.N. Genetic resources of Capsicum and eggplants. // Xth EUCAR-PIA Meeting on Genetic and Breeding of Capsicum and Eggplant, Avignon, France.- 1998.- P.25−30.
  207. Lester R.N., Niakan L. Origin and domestication of the scarlet eggplant, Solanum aethiopicum, from S. anguivi in Africa. // In: D’Arcy W.G. (Ed.), So-lanaceae Biology and Systematics. Columbia University Press, NewYork, USA.- 1986.- P.433−456.
  208. Lester R. N., Grace N.W. Inheritance in Solanum aethiopicum, the scarlet eggplant//Euphytica.- 1989.-V. 40.-P. 67−74.
  209. Levin R.A., Myers N.R., Bohs L. Phylogenetic relationship among the «spiny Solanumsu (Solanum subgenus Leptostemonum, Solanaceae). II Am. J.Bot.- 2006.-V. 93.- P. 157−169.
  210. Levin R.A., Watson K., Bohs L. A four-gene study of evolutionary relationships in Solanum section Acanthophora. // Am. J. Bot.- 2005.- V.92, № 4.-P.603−612.
  211. Lim B. O., Yamada K., Nonaica M. et al. Dietary fibers modulate indices of intestinal immune function in rats // J. Nutr. — 1998. Vol.127, № 5. P.663— 667.
  212. Liu K.B., Ly M., Sink K.C. Assymetric somatic hybrid plants between an interspecific Lycopersicon hybrid and Solanum melongena II Plant Cell Rep.-1995. Vol.14.- P.652−656.
  213. Liu Wen, Chen Xuesen, Liu Guanjun, Liang Qing Interspecific hybridization of Prunus persica with P. armeniaca and P. salicina using embryo rescue // Plant Cell Tiss. Organ Cult. 2007. Vol. 88, № 3. — P.34−41.
  214. Lun-Yi Z., Greg C., Henry G. et. al Effect of chlorogenic acid on hydroxyl radical //Mol. Cell.Biochem. -2003. Vol. 247, № 1−2. -P.205−210.
  215. MacDonald N. S., Eznurlian F., Spain P. et al. Agents diminishing skeletal accumulation of lead // Arch. Indust. Hyg. Occup. Med. 1953. Vol.7, № 3. -P.217−220.
  216. Mace E.S., Lester R.N., Gebhardt C.G. AFLP analysis of genetic relationships among the cultivated eggplant, Solanum melongena L., and wild relatives (Solanaceae). // Theor. Appl.Genet.- 1999.- V.99.- P.626−633.
  217. Macha E.S. African eggplants promising vegetables for home consumption and sale in Tanzania. // Proceedings of the Third Horticulture Workshop on* Sustainable Horticultural Production» in the Tropics, Maseno, Kenya, 26−29* Nov.- 2005.
  218. Madalageri B.B., Gowda P.H.R. Inheritance of characters in the progeny of Solanum macrocarpon and Solanum melongena. II Proc. Conf. on Cytol. and Genet.- 1988.-V.1.-P. 199−202 .
  219. Magioli C, Mansur E. Eggplant {Solanum melongena L.): tissue culture, genetic transformation and use as an alternative model plant. // Acta Bot. Bras.- 2005. Vol.19, № 1.- P.139−148.
  220. Magioli C., Rocha A.P.M., de Oliveira D.E. Somaclonal variant for tolerance to little leaf disease of eggplant {Solanum melongena L.) regenerated from tissue culture of infected plants // New Bot. 1998b. Vol.16. — P.291−292.
  221. Magioli C., Rocha A., de Oliveira D. Efficient shoot organogenesis of eggplant {Solanum melongena L.) induced by thidiazuron II Plant Cell Rep. — 1998a. Vol.17.-P.661−663.
  222. Magioli C., Mansure E. Eggplant (Solanum melongena L.): tissue culture, genetic transformation^and use as an alternative model plant // Acta Bot. Bras. — 2005. Vol.19, № 1. — P. 139−148.
  223. Magoon M.L., Ramanujam S., Copper D.C. Cytogenetical studies in relation to the origin and differentiation of species in the genus Solanum L. // Caryolo-gia.- 1961.- V.15.- V.151−152.
  224. Mao W.H., Du L.M., BaoC.L. et al. Genetic diversity and genetic relatives analysis of southern long-eggplant germplasm based on inter-simple sequence repeat (ISSR) // Acta. Horticult-Sin. 2006. Vol.33. — P. l 109−1112.
  225. Mariani P. Eggplant somatic embryogenesis combined with synthetic seed technology // Capsicum Newslett. 1992: Vol.5. — P.289−294.
  226. Mariani P. Eggplant somatic embryogenesis combined with synthetic seed* technology // Capsicum Newslett. — 1992. — P.289−294 (special issue).
  227. Masuda K., Kikuta Y., Okazava Y. A. Revision, of the medium" for somatic embryogenesis in carrot suspension culture // J. Fac. Hokkaido Univ. — 1981. Vol.60.-P.183−193.
  228. Materska M., Perucka I. Antioxidant-activity of the main phenolic compounds isolated from hot pepper fruit (Capsicum annuum L,.) II J. Agric. Food Chem. -2005. Vol.53″. -P.1750−1756.
  229. Materska M, Piacente S., Stochmal A. et. al Isolation and structure elucidation of flavonoid and phenolic acid glycosides from pericarp of hot pepper fruit Capsicum annuum L // Phytochemistry. 2003. Vol.63. — P.893−898.
  230. Matsubara K., Kaneyuki T., Miyake T. Antiangiogenic activity of nasunin, an antioxidant anthocyanin, in eggplant peels // J. Agric. Food" Chem- — 2005- Vol.53.-P.6272−6275.
  231. Matsumoto H., Hanamura S., Kawakami T. et al. Preparative-scale isolation of four anthocyanin components of black currant (Ribes nigrum L.) fruits //. J. Agr. Food Chem.-2001. Vol.49 .-P.1541−1545.
  232. Matsumoto H., Hanamura S., Tachibanaki S. et al. Stimulatory effect of cyanidin 3-glycoside on the regeneration of rhodopsin // J. Agric. Food Chem. -2003 .Vol.51. P.3560−3563.
  233. Matsuoka H. Factors affecting embryoid formation in hypocotyl callus of Solarium melongena L. // Jpn. J. Breed. — 1983. Vol.33. — P.303−309.
  234. Matsuoka H., Hinata K. NAA-induced organogenesis and embryogenesis in hypocotyl callus of Solanum melongena L. // J. Exp. Bot. 1979. Vol.30. — P.363−370.
  235. Matsuta N., Hirabayashi T. Embryogenic cell lines from somatic embryos of grape (Vitis vinifera L.) // Plant Cell Rep. 1989. Vol.7. — P.684−687.
  236. Mehta Urmil J., Sahasrabudhe N., Hazra S. Thidiazuron-induced morphogenesis in tamarind seedlings // In vitro Cellular and Developmental* Biology Plant. 2005. Vol.41, № 3. — P.240−243.
  237. Miszke W., Skucinska B-, Kruczkowska Y., Pawlowska H: Klonowania in' vitro kapusty glowiastej dla potrzeb, hodowli // Acta agr. et silv. Ser. agr. — 1988.-N27.-P. 87−99.
  238. Mitra D., Gupta N. Somaclonal variant for tolerance to little leaf disease of eggplant (Solanum melongena L.) regenerated from tissue culture of infected plants. // New Bot. 1989. Vol. l6s — P.291−292.
  239. Mitra D., Gupta N., Bhaskaran S. Development of plantlets from brinjal (Solanum melongena L.) stem tissue infected with little leaf, a mycoplasma disease // Ind. J. Exp. Bot. 1981. Void9. -P.l 177−1178.
  240. Miura S., Watanabe J., Sano M. et al. Effects of various natural antioxidants on the Cu2+ mediated oxidative modification* of low-density lipoprotein // Biol. Pharm. Bull. — 1995. Vol. 18. — P. l-4.
  241. Miyoshi K. Callus induction and plantlet formation through culture of isolated microspores of eggplant (Solanum melongena L.) // Plant Cell Reports. 1996. Vol.15. -P.391−395.
  242. Mochizuki H., Yamakawa K. Resistance of selected eggplant cultivars and related wild species to bacterial wilt (Pseudomonas solanacearum). // Bull. Veg. Ornemental Crops Res. Stn.- 1979.- V.6.- P. 1−10.
  243. Mohinuddin A.K.M., Chowdhury M.K.U., Zaliha A. Influence of silver nitrate (ethylene inhibitor) on cucumber in vitro shoot regeneration // Plant Cell Tissue Organ. Cult.- 1997. Vol.51. -P.75−78.
  244. Molinier J., Fritsch O., Shwermann D., Hohn B. The dual nature of homologous recombination in plants // Trends in genetics.- 2005.- V.21.- P. 172−181.
  245. Molinier J., Ries G., Bonhoefer S., Hohn B. Interchromatid and interhomolog recombination in Arabidopsis thaliana // Plant Cell.- 2004.- V.16.-P.342−352.
  246. Momotaz A., Kato M., Kakihara F. Production of intergeneric hybrids between Brassica and Sinapis species by means of embryo rescue techniques. // Euphytica.- 1998. Vol.103.- P.123−130.
  247. Monma S., Sato T., Matsunaga T. Evaluation of resistance to bacterial fusa-rium and, verticillium wilt in eggplant and eggplan-related species collected in, Ghana// Caps. Egg. Newl.- 1996.- V.15.- P. 71−72.
  248. Moon J., Terao J. Antioxidant activity of caffeic acid and dihydrocaffeic acid in lard and human low-density lipoprotein // J. Agric. Food Chem. — 1998. Vol.46.-P.5062−5065.
  249. Morton L., Browse J. Facile transformation of Arabidopsis // Plant Cell Rep. 1991. Vol.10.-P.235−239.
  250. Moyers S.B., Kumar N.B. Green tea polyphenols and cancer che-moprevention: multiple mechanisms and endpoints for phase II trials // Nutr. Rev. 2004.Vol.62. — P.204−211.
  251. Mukherjee S., Rathnasbapathi B., Gupta N. Low sugar and osmotic requirements for shoot regeneration from leaf pieces of Solanum melongena IIL. Plant Cell Tissue Organ. Cult. 1991. Vol.25. — P. 12−16.
  252. Nasrallah M.E., Hopp RJ. Interspecific crosses between S. melongena L.(eggplant) and related Solanum species. // Proc. Amer. Soc. Hort. Sei.- 1963.-V.83- P.571−574.
  253. Ndoutoumou P., Toussaint A. and Baudoin J. Embryo abortion and histological features in the interspecific cross between Phaseolus vulgaris L. and P. coccineus L // Plant Gell, Tissue and Organ Culture Volume 88, Number 3, 2007
  254. Nettancourt D de., Devreux M- Incompatibility and in vitro cultures. // In: Reinert & Bajaj (eds.).- 1977.- P.426−441
  255. Noda T., Kneyuki T., Igarashi K. et al. Antioxidant activity of nasunin, an anthocyanin in eggplant peels // Toxicology. -2000. Vol.148. P.119−123 .
  256. Nomura Y., Oosawa K. Production of interspecific hybrids between Allium chinense and A. thunbergii by in ovulo embryoculture. // JpnJ.Breed.- 1990. Vol.40. -P-531−535.
  257. Omidiji M.O. Cytogenetic studies on the F1 hybrid between the African eggplant, Solanum Gilo Raddi and S. melongena L. // Hort. Res.- 1981.- V.21.-P.75−82.
  258. Omidiji M.O. Evaluation of some F1 hybrids and cultivars of the local eggplant, Solanum Gilo Raddi in South-Western Nigeria. // Acta. Hort.- 1983.-V.123.-P. 91−98.
  259. Omidiji M.O. Interspecific hybridisation in the cultivated, non-tuberous Solanum species//Euphitica.-l 975.-V.24.-№ 2.-p. 342−353.
  260. Omidiji M.O. The biology and taxonomy of the Solanaceae. Edt. J.G. Hawker, R.N. Lester, A.K. Skelding. Linnean Society of London by Academic Press.- 1979.-P. 602.
  261. Omidiji M.O. The role of hybridization in the evolution of Solanum species in the sub-genus Leptostemonum (Dun.) Bitt. In: W.G. D’Arcy (Ed.), Solanaceae-. Biology and Systematics.-Columbia University Press, New York, 1986:
  262. Ou G., Wang W.C., Nguyen H.T. Inheritance of somatic embryogenesis and organ regeneration from immature embryo cultures of* winter wheat // Theor.Appl. Genet. 1989. Vol.78. — P. 137−142.
  263. Patil H.S., Shinde I.M. Combining ability studies for different characters in eggplant //1. Maharashtra Agr. Univ.-1985.-10.-V.2.-P.155−159.
  264. Pessarakli M.M., Dris R. Pollination and breeding of eggplants // Food, Ag-ric. Envirom-2004. Vol.2, № 1. -P. 218−219.
  265. Petolino J.F., Thompson S.A. Genetic analysis of anther culture response in maize // Theor. Appl. Genet. 1987. Vol.74. — P.284−286/
  266. Phillips G.C. Valera-Montero L.L., Fan Z. Chile improvement through biotechnology: in vitro plant regeneration and genetic transformation // Chile Conference in New Mixico Chile Pepper Institute (8 February 2000). New Mixico, 2000.
  267. Picoli E.A.T., Otoni W.C., Figueira M.L. et al. Hyperhydricity in in vitro eggplant regenerated plants: structural characteristics and involvement of BiP (Binding Protein) // Plant Sci. 2001. Vol.160. — P.857−868.
  268. Plaami S. P. Content of dietary fiber in foods and its physiological effects // Food Rev. Int. 1997. Vol.13, № 1. -P.29−76.
  269. Pola S. ManbN, Ramana T. Plant tissue culture studies in Sorghum bicolor immature embryo explants as sourse material //Int J. of PI. Prod. 2(1), 2008
  270. Polanco M. C., Ruiz M. L. Factors that affect plant regeneration from in vitro culture of immature seeds in four lentil cultivars. // Plant Cell Tiss. Org. Cult.- 2001. Vol.66.- P.133−139.
  271. Popov S. V., Popova G. Y., Ovodova R.G. et al. Effects of polysaccharides from Silene vulgaris on phagocytes // Int. J. Immunopharmacol.. 1999. Vol.21, № 9. -P.617−624.
  272. Prabhavathi V., Yadav J.S., Kumar PA. et al. Abiotic stress in transgenic eggplant (Solanum melongena L.) by introduction of bacterial mannitol phos-phodehydrogenase gene // Mol. Breed. 2002. Vol.9, № 2. — P. 137−147.
  273. Pradeep Reddy M., Sarla N., Siddiq E.A. Inter simple sequence repeat (ISSR) polymorphism and its application in plant breeding // Euphytica. -2002. Vol.128. P.9−17.
  274. Prior R.L., Cao G. Analysis of botanicals and dietary supplements for antioxidant capacity: a review // J AOAC Int. 2000.Vol.83, № 4. — P.950—956.
  275. Procyk A. Nutritional and medical value of aubergine // Wiad. Ziel. 1993. Vol.3.-P.9.
  276. Prohens J., Nuez F. Handbook of plant breeding: Vegetables II. New York: Springer. 2008. USA.
  277. Rahman M.A., Rashid M.A., Salam M.A. et al. Performance of some grafted eggplant genotypes on wild Solanum root stocks against root-knot nematode // OnLine J. Biol. Sci. 2002. Vol.2, № 7. — P. 446−448.
  278. Rajasekaran S. Cytogenetic studies of the F1 hybrid Solanum indicum L. x S. melongena L. and its amphidiploid. // Euphytica.- 1970.- V.19.- P.217−224.
  279. Rajasekaran S.S. Cytological studies on the Fl, hybrid Solanum xanthocar-pum x S. melongena and its amphidiploid. // Caryologia.- 1971.-V.24.-P. 261 267.
  280. Rakoczy-Trojanowska M., Bolibok H. Characteristics and a comparison of three classes of microssatellite-based markers and their application in plants // CellIMol.Biol.Lett. 2004. Vol.9. — P.221−238.
  281. Ranga Swamy N.S. Applications of in vitro pollination and in vitro fertilization. in Reinert & Bajaj (eds.).- 1977.- P.412−425.
  282. Rangasamy P., Kadambavana Sandram M. Incompatibility in interspecific hybrid S. indicum x S. melongena L.// Madras Agr. J.-1973 (a).-V.60.-N 9−12,-p.1617−1621.
  283. Rangasamy P., Kadambavana Sandram M. Interspecific hybridisation in Solanum S. melongena x S. indicum L.//Madras Agr. J.-1973 (6).-V.60.-№ 9−12.-p.1687−1694.
  284. Rao G., Baksh S. Relationship between Solanum melongena L. and S. integrifolium Poir. // Indian J. Gensi. Plant Breed!- 1981.- V.41(l).- P.46−53.
  285. Rao N. Narashima The barriers to hybritization between Solanum melongena• and some other species of Solanum II Biol, and Texon. Solanaceae, London.-1979.- P.605−614.
  286. Rao P: Narayanaswami I. Induced morphogenesis in tissue cultures of Solanum xanthocarpum // Planta. 1968. Vol.81. — P.372−375.
  287. Rao P., Singh B. Plantlet regeneration from encapsulated somatic embryos of hybrid Solanum melongena L. // Plant Cell Rep.- 1991. Vol.10.- P.7−11.
  288. Rathus C., Nguen T., Avle J.A. Optimizing- Sorghum transformation technology via somatic embryogenesis // In: Seetharama N., Godwin I.(eds.) Sorghum tissue culture and transformation.- 2004.- P.25−34.
  289. Rekha Kathal S.P. Plant regeneration from hypocotyl explant of Cucumis melo L. cv. Pusa Sharbati // Embryology and seed reproduction: Abstracts XI Int: Symp. (3−7 July 1990). Leningrad, 1990. — P. 72.
  290. Ren W., Qiao Z., Wang H. et al. Flavonoids: Promising Anticancer Agents // Med. Res. Rev. 2003.Vol.23- № 4. — P.519—534.
  291. Reuther G. Adventitious organ formation and somatic embryogenesis in callus of Asparagus and Iris and its possible application. // Acta Hortic.- 1977. Vol.78.- P.217−224.
  292. Rice-Evance C., Miller N. Structure antioxidant activity relationships of fla-vonoids and phenolic acids II Free Radical Biol. Med. — 1996. Vol.20. — P.933−956.
  293. Rice-Evans C.A., Miller N.J., Paganga G. Structure-antioxidant activity re-larionship of flavonoids and phenolic acids // Free Radie. Biol. Med. -1996.Vol.20.-P.933—956.
  294. Rick C.M., Chetelat R.T. Utilization of related wild species for tomato improvement // First International simposium on Solanacea for Fresh market, Malaga, 28−31.03.1995/Acta Horticulture.- 1995.- V.412.- P.21−38.
  295. Rotino G. L., Sihachakr D., Rizza F et al. Current status in production and utilization of dihaploids from somatic hybrids between eggplant («Solanum melongena L.) and its wild relatives // Acta Physiol. Plant.- 2005. Vol.27, № 4B.- P. 723−733.
  296. Rotino G.L., Dorr I., Pedrazzini E. Fusione di protoplasti tra melanzana (S.melongena) e Solanum selvatici. // In: Proc. XXXIX Convegno Annuale S.I.G.A, Vasto Marina, Italia, 1995.- P.157.
  297. Rotino G.L., Falavigna A., Fiume F. et al. Possibility of eggplant (Solanum melongena L.) improvement through in vitro techniques // Genet. Agraria. — 1987. Vol.41.— P.314—315.
  298. Rotino G.L., Perri E.D., D’Alessandro A. Characterisation of fertile somatic hybrids between eggplant and S. integrifolium // In: Proc. Xth Eucarpia meeting on Genetics and Breeding of Capsicum and Eggplant, Avignon., France, 1998.-P.213−217.
  299. Roudebush P., Davenport D.J., Novotny B.J. The use of nutraceuticals in cancer therapy // Vet. Clin. North. Am. Small Anim. Pract. 2004.Vol.34. -P.249−269.
  300. Sacks E. J. Ovule rescue efficiency of Gossypium hirsutum x G. arboreum progeny from field-grown fruit is affected by media composition and antimicrobial compounds // Plant Cell, Tissue and Organ Culture.- 2008. Vol.93, № 1.- P.15−20.
  301. Sadanandam A., Farooqui M. Induction and selection of lincomycin-resistant plants in Solanum melongena L. // Plant Sci. 1991'. Vol.79. — • P.237−239.
  302. Saito T., Nishimura S. Improved culture conditions for somatic embryogenesis using an aseptic ventilative filter in eggplant (Solanum melongena L.). // Plant Sci.- 1994. Vol.102.- P. 205−211.
  303. Sakamura S., Watanabe S., Obata Y. The structure of the major anthocyanin in eggplant. // Agric. Biol. Chem. 1963. Vol.27. — P.663−665.
  304. Salman H., Bergman M., Djaldetti M. et al. Citrus pectin affects cytokine production by human peripheral blood mononuclear cells // Biomed Pharmaco-ther. — 2008. — P.8.
  305. Samaj J., Bobak M, Blehova A. et al. Importance of cytoskeleton and cell wall in somatic embryogenesis // Plant Cell Monogr. 2006. Vol.2. — P. 35−50.
  306. Sambandam C.N. Guide chart for. color combinations in hybrid eggplants // Econ. Bot.- 1967.-21(4).-P.309−311
  307. Sarvayya C.V. The first generation of an interspecific in Solanum between S. melongena and S. xanthocarpum II Madras Agric. J.-1936.- V.24.-P.» 139−142.
  308. Sealbert A.,.Manach C., Morand C. et al. Dietary polyphenols and the prevention of diseases // Crit. Rev. Food. Sei. Nutr. 2005.Vol.45. — P.287−306.
  309. Schaff D.A., Boyer C.H., Pollack, B-L. Interspecific hybridization of Solanum melongena L. x S. macrocarpon L. // Hort Science.- 1980.- V.15.- P.342.
  310. Schaff D.A., Jelenkovic G., Boyer C.D., Pollack B.L. Hybridization and fertility of. hybrid derivatives of Solanum melongena L. and Solanum-macrocarpon L. II Theoret. Appl. Genet.- 1982.- V.62.- P. 149−153.
  311. Scoccianti.V., Sgarbi E., Biondi S. Organogehesis from Solanum melongena L. (eggplant)-coltyledon explants in assotiated with hormone: modulation of polyamine biosynthesis and conjugation // Protoplasma. 2000. Vol.211. -P.51−63.
  312. Sekara A., Cebula S., Kunicki E. Cultivated eggplants origin, breeding objectives and’genetic resources (a review) // Folia Horticulturae Ann. — 2007. Vol.19, № 1.-P. 97−114.
  313. Serraino I., Dugo L., Dugo P. et al. Protective effects of cyanidin-3-O-?-D-glucoside from blackberry extract against peroxynitrite-induced endothelial dysfunction and vascular failure // Life Sei. 2003. Vol.73. — P. 1097−1114.
  314. Shah D. G., Malcolm S., Belonje B. et al. Effect of dietary cereal brans on the metabolism- of trace elements in a long-term rat study // Cereal Chem. — 1991. Vol.68, № 2. — P. 190—194.
  315. Sharma D. R., Chowdhury J: B., Ahuja U., Dhankhar B. S. Interspecific hybridization in genus Solanum. A cross between S. melongena and S. khasianum through embryo culture // Zeitschrift fur Pflanzenzuchtung.- 1980. Vol.85, № 3.-P. 248−253.
  316. Sharma D.R., Sareen P.K. Chowdhuru J.B. Crossability and pollination in some non-tuberous Solanum species. // Indian J. Agric. Sei.- 1984. Vol. 54, № 6.- P.514−517.
  317. Sharma P. The role of polyamines in the regulation of growth and differentiation in in vitro cultures of eggplant (Solanum melongena L.): PhD thesis, University of Delhi, Delhi, 1994.
  318. Sharma P., Rajam M. Induction of laterals in root cultures of eggplant (Solanum melongena L.) in hormone-free liquid medium: a novel system to study the role of polyamines// Plant Sei.- 1997. Vol.125. P.103−111.
  319. Sharma P., Rajam M~ Spatial and temporal changes in endogenous poly-amine levels associated with somatic embryogenesis from different hypocotyl segments of eggplant {Solanum melongena L.) // J Plant Physiol. 1995b. Vol.146. — P.658−664.
  320. Sharma P., Rajam M. Genotype, explant and position effects on organogenesis and somatic embryogenesis in eggplant {Solanum melongena L.)// J. Exp. Bot.- 1995a. Vol.46, № i. P.135−141.
  321. Sheela K., Gopalakrishnan P.K., Peter K.V. Resistance to bacterial wilt in a set of eggplant breeding lines. // Indian J. Agric. Sei.- 1984.- V.54, № 6.-P.457−460.
  322. Shimonaka M., Hosoki T., Tomita M. et al. Production of somatic hybrid plants between Japanese bunching onion {Allium fistulosum L.) and bulb onion {A.cepa L.) via electrofusion. // J. Jpn. Soc. Hortic. Sei.- 2002. Vol.71.- P.623−631.
  323. Shiro I., Naoko I. IS SR1 variations in eggplant {Solanum melongena L.) and related Solanum species // Sei. Hort. 2008. Vol.117. — P.186−190.
  324. Sidhu A.S., Bai S.S., Behera T.K. et al. An outlook in hybrid eggplant breeding // J. New Seeds. 2005. Vol.6, № 2−3. — P. 15−29.
  325. Sihachacr D., Haicour R, Serraf I et. al. Electrofusion for the production of somatic hybrid plants of S. melongena and S. khasianum Clark // Plant. Sci.-1988. Vol.57.- P.215−223.
  326. Singh A.K., Singh M., Singh A.K., Singh R., Kumar S., Kalloo G. Genetic diversity within the genus Solanum (Solanaceae) as revealed by RAPD markers. // Current Sei.- 2006.- V.90, № 5.- P.711−716.
  327. Singh S.N. Hazarika M.N. Note on relationship between performance per se and general combining ability of parents in eggplant // Indian I. Agric.Sic.-1982.-Vol.9.-P.614−615.
  328. Skalova D., Dziechciarkova M., Lebeda A., Kristkova E. and Navratilova B. Interspecific hybridization of Cucumis anguria and C. zeyheri via embryo-rescue // Biol. Plant. 2008. Vol. 52, № 4.-P.775−778.
  329. Skirm G.W. Embryo culturing as an aid to plant breeding. // J. Hered.- 1942. Vol.33.- P.211−215.
  330. Skroch P: W., Nienhuis J., Beebe S., Tohme J., Pedraza F. Comparison of Mexican common bean (Phaseolus vulgaris L.) core and reserve germplasm collections. // Crop Sei.- 1998. Vol.38.- P.488−496.
  331. Smith P.G. Embryo culture of a tomato species gybrid. // Prac. Am. Soc. Hort. Sei.-1944. Vol.44.-P.413−416
  332. Sreedhar R.V., Venkatachalam L., Thimmaraju R. et al. Direct organogenesis from leaf explants of Stevz’a rebaudiana and cultivation in bioreactor // Biol. Plant. 2008. Vol.52. — P.355−360.
  333. Stedje B., Bukenya-Ziraba R. RAPD variation in Solanum anguivi Lam. and S. aethiopicum L. (Solanaceae) in Uganda. // Euphytica.- 2003.- V.131.- P.293−297.
  334. Stoclet J.C., Chataigneau T., Ndiaye M. et al. Vascular protection by dietarypolyphenols // Eur. J. Pharmacol. 2004.Vol.500. — P.299−313.
  335. Sudheesh S., Vijayalakshmi N. R. Role of pectin from cucumber (Cucumis sativus) in modulation of protein kinase С activity and regulation of glycogen metabolism in rats // Indian J. Biochem. Biophys. 2007. Vol.44, № 3. — P.183−185.
  336. Suezawa K., Matsuta N., Omura M. Plantlet formation from cell suspensions of kiwifruit (Actinidia chinensis Planch, var. chinensis) // Sci. Hort. — 1988. Vol.37. P.123−128.
  337. Swarup V. Genetic resources and breeding of aubergine (Solanum melongena L). // Acta Hort.- 1995.- V.412.- P.71−79.
  338. Та С. A., Zee J. A., Desrosiers T. et al. Binding capacity of various fibre to block pesticide fesidues under simulated gastrointestinal conditions // Food-Chem. Toxicol. 1999. Vol.37, № 12. — P. l 147−1151.
  339. Taper H. S., Roberfroid M. Influence of inulin and oligofructose on breast cancer and tumor growth // J. Nutr. 1999. Vol.129, № 7. — P.1488−1491.
  340. Tateyama G., Igarashi K. Anthocyanin and chlorogenic acid contents of some selected eggplant (Solanum melongena L.) cultivars, and the radical scavenging activities of their extracts // J. Japan. Soc. Food Sci. Tech. — 2006. Vol.53, №.4.-P.218−224.
  341. Tatsuzawa F., Ando Т., Saito N. et al. Acylated delphinidin 3-rutinoside-5-glucosides in the flowers of Petunia reizii II Phytochemistry. 2000. Vol.54. -P.913−917.
  342. Tseng Т., Hsu J., Lo M. Ihibitory effect of Hibiscus protocatechuic acid on tumor promotion in mouse skin // Cane. Lett. 1998. Vol.126. — P. 199−207.
  343. Tukey H.B. Artificial culture methods for isolated, embryos of deciduous fruits. // Proc. Am. Soc. Hort. Sci.- 1934. Vol.32.- P.313−322.
  344. Vinson J., Hao Y., Su X. Phenol antioxidant quantity and quality in foods: vegetables // J. Agric. Food Chem. 1998. Vol.46. — P.3630−3634*.
  345. Visarada K.B., KishoreS.N., Balakrishna D. Transient gus expression studies in sorghum to develop a simple-protocol for Agrobacteriummediated genetic transformation."// J. Genet. Bred.- 2003. Vol.57.- P. 147−154.
  346. Wanjari K.B. Cytogenetic studies on F! hybrids between Solarium melon-gena L. and Solarium macrocarpon L. // Hort.Res.- 1976.- V.15.- P.77—82.
  347. WanY., Sorrensen Y., Liang G.H. Genetic control of in vitro regeneration in alfalfa (Medicago sativa L.) // Euphytica. 1988. Vol.39. — P.3−9.
  348. Wen J., Tu J., Li Z., Fu T. Improving ovary and embryo culture techniques for efficient resynthesis of Brassica napus from reciprocal crosses between yellow-seeded diploids B. rapa and B. Oleracea II Euphytica. 2008. — Vol.162, № 1. — P.81−89.
  349. Whalen M.D. Conspectus of species groups in Solanum subgenus Leptoste-monum II Gentes Herbarum. — 1984. Vol.12. — P. 282.
  350. Winkel-ShirleyB .Biosynthesis of flavonoids and effects of stress // Cur. Opin. Plant Biol. 2002. Vol.5. — P.218−223.
  351. Wu X. Адсорбция и метаболизм: антоцианинов человека после употребления голубики // J.Nutr. 2004: Vol: 134. — Р.2603−2610.
  352. Wu X., Cao G., Prior R. Absorption and metabolism of anthocyanins in elderly women, after consumption of elderberry or blueberry // J. Nutr. 2002. Vol.132.-P.1865−1871.
  353. Xing Y., Yu Y., Luo X. High efficiency organogenesis and analysis of genetic stability of the regenerants in Solanum melongena I I Biol. Plant. 2010- Vol.54, № 2.-P.231−236.
  354. Yeung E. C., Thorpe T. A.,. Jensen C. J. /" v/'/ro fertilization and embryo culture: /Яп: Thorpe T. A,(ed:), 198L (q.v.).- 1981.-P.253−271.
  355. Yoshimoto Mi, Okuno S., Yamaguchi M. Antimutagenicity of deacylated anthocyanins in purple-fleshed sweetpotato // Biosci. Biotechnol. Biochem. — 2001. Vol.65 .-P.1652−1655.
  356. Zenkteler M. Intra ovarian and in vitro pollination. I I In: Vasil I.K. (ed.) 1980b (q.v.).- 1980.- P.137−156.
  357. Zhang F.L., Takahata^ Y. Inheritance of microspore embryogenic ability in Brassica crops // Theor. Appl: Genet. 2001.Vol. 103- - P.254−258.
  358. Zhang P., Phansiri S., Puonti-Kaerlas J. Improvement of cassava shoot organogenesis by the use of silver nitrate: ш vitro II Plant Cell Tissue Organ Cult. 2001. Vol.67. — P.47−54.
  359. Zobayed S. M. A., Afreen F., Xiao Y. Recent advances in research on photoautotrophic micropropagation using large culture vessels with forced ventilation 11 In vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2004. Vol.37. — P.450−458.
  360. VII Международный симпозиум по фенольным соединениям ГУ Российской академии наук Институт физиологии растений- им. К. А. Тимирязева РАН (Москва, 19−23 октября 2009 года).
  361. Международная ежегодная научно-практическая конференция РГАУ-МСХА им. К. А. Тимирязева (Москва, 15−18 декабря 2009 года).
  362. В.М. Содержание антоцианов в плодах линий баклажана селекции ВНИИССОК в условиях малообъемной гидропоники / В. М. Верба, М. И. Мамедов, О. Н. Пышная, Н. А. Шмыкова // Овощи России. 2009. — № 3. — с.37−42.
  363. В.М. Культурный баклажан происхождение, задачи селекции и генетические источники / М. И. Мамедов, О. Н. Пышная, В. М. Верба // Овощи России. — 2009. — № 4 (6). — 2010. — № 1 (7). — с.27 — 33.
  364. В.М. Антоцианы в плодах баклажана селекции ВНИИССОК/ М. И. Мамедов, О. Н. Пышная, Н. А. Шмыкова, В. М. Верба, Передеряев О.И.// Фенольные соединения: фундаментальные и прикладные аспекты. — М.: Научный мир, 2010." с. 135−144.
  365. В.М. Клональное микроразмножение баклажана / В. М. Верба, М. И. Мамедов, О. Н. Пышная, Н. А. Шмыкова // Доклады ТСХА. М: РГАУ-МСХА. — 2010. — Вып. 282. — 4.1. — с. 603 — 607.
  366. В.М. Получение межвидовых гибридов баклажана методом эмбриокультуры./ В. М. Верба, М. И. Мамедов, О. Н. Пышная, Н. А. Шмыкова //Сельскохозяйственная биология. 2010. — № 5.- с.66−71.
  367. В.М. Клональное микроразмножение баклажана путем органогенеза / В. М. Верба, М. И. Мамедов, О. Н. Пышная, Н. А. Шмыкова // Вестник РАСХН.- 2010.- № 6. с.57−59.
  368. В.М. Определение количественного состава антоцианов в плодах баклажана (S. melongena) селекции ВНИИССОК / В. М. Верба, М. И. Мамедов, О. Н. Пышная, Н. А. Шмыкова // Доклады ТСХА. М: РГАУ-МСХА, 2011 (в печати).
Заполнить форму текущей работой

На отлично!