Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Использование 3'-нетранслируемой области вируса некротического пожелтения жилок свеклы в качестве индуктора устойчивости к ризомании

Диссертация: Использование 3'-нетранслируемой области вируса некротического пожелтения жилок свеклы в качестве индуктора устойчивости к ризомании
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Одно из наиболее опасных вирусных заболеваний культуры сахарной свеклы, резуха (ризомания), вызывается вирусом некротического пожелтения жилок свеклы (Beet necrotic yellow vein virus, BNYVV). Ризомания регистрировалась практически во всех районах возделывания культуры в Старом и Новом Свете (McGrann et al, 2009). При поражении ризоманией сахаристость корнеплодов снижается от 8% до 50−60% (Asher… Читать ещё >

Содержание

  • Список сокращений

2

Введение.

2.1 Актуальность проблемы.

2.2 Цель и задачи работы. Ю

3 Обзор литературы.

3.1 Ризомания сахарной свеклы.

3.1.1 Географическое распространение BNYVV.

3.1.2 Вредоносность и экономическое значение BNYVV.

3.1.3 Растения-хозяева BNYVV.

3.1.4 Симптомы заболевания ризоманией.

3.1.5 Способы переноса и распространения вируса.

3.1.6 Морфология частиц и организация генома.

3.1.7 Типы и изоляты BNYVV.

3.1.8 Способы предотвращения распространения ризомании.

3.1.9 Устойчивость к вектору P. betae.

3.1.10 Селекция на устойчивость к BNYVV.

3.2 Использование трансгенных растений для индукции вирусоустойчивости.

3.2.1 Трансгенная устойчивость, обусловленная экспрессий в растении гена белка оболочки вируса.

3.2.2 Трансгенные растения, экспрессирующие репликазные гены.

3.2.3 Трансгенная устойчивость, основанная на экспрессии транспортного белка.

3.2.4 Трансгенная устойчивость, обусловленная экспрессией антител к вирусам.

3.2.5 Устойчивость, обусловленная активацией системной приобретенной устойчивости (SAR) растения.

3.2.6 Вирусоустойчивость растений, обусловленная «замолканием генов».

Использование 3'-нетранслируемой области вируса некротического пожелтения жилок свеклы в качестве индуктора устойчивости к ризомании (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

2.1 Актуальность проблемы В мировой практике рентабельность выращивания сахарной свеклы {Beta vulgaris L.) во многом зависит от эффективности борьбы с болезнями и вредителями этой культуры. Из грибковых болезней сахарной свеклы наиболее вредоносными являются черная ножка (вызываемая Phoma betae, Pythium spp., Aphanomyceas cochlioides, Rhizoctonia solani), церкоспороз (¦Cercospora beticola), альтернариозная листовая пятнистость (Alternaria alternata), ложная мучнистая poca (Peronospora farinosa), мучнистая poca (.Erysiphe betae), ризоктониозная корневая гниль (Rhizoctonia solani), пятнистость листьев {Ramularia beticola), фузариоз корней (.Fusarium spp.) (Agrios, 2005; Draycott, 2006; Harveson et al, 2009). Культура сахарной свеклы поражается и рядом вирусов, такими как вирус желтухи свеклы (Beet yellows virus, BYV), вирус курчавости верхушки (Beet curly top virus, BCTV), вирус мозаичности свеклы (Beet mosaic virus, BtMV), вирус курчавости листьев свеклы (Beet leaf curl virus, BCLV) (Smith and Hallsworth, 1990; Wisler and Duffus, 2000; Agrios, 2005; Draycott, 2006; Harveson et al., 2009).

Одно из наиболее опасных вирусных заболеваний культуры сахарной свеклы, резуха (ризомания), вызывается вирусом некротического пожелтения жилок свеклы (Beet necrotic yellow vein virus, BNYVV). Ризомания регистрировалась практически во всех районах возделывания культуры в Старом и Новом Свете (McGrann et al, 2009). При поражении ризоманией сахаристость корнеплодов снижается от 8% до 50−60% (Asher, 1993; Henry, 1996; Johanson, 1985), а снижение урожайности может достигать 30−90% (Johanson, 1985; Шпаар, 2004).

На сегодняшний день успех борьбы с ризоманией зависит от выращивания устойчивых сортов, гибридов и линий, причем устойчивость может достигаться использованием как естественных, так и созданных генно-инженерными методами источников устойчивости к BNYVV.

Кроме методов классической селекции, с помощью которых были получены все современные сорта и гибриды сахарной свеклы, устойчивые к ризомании, существуют различные подходы генетической инженерии для дальнейшего увеличения устойчивости к этой болезни. Совокупность подходов, связанных с трансгенной экспрессией фрагментов вирусного генома, получила название патоген-зависимой устойчивости (PDR).

Ранее для создания трансгенной устойчивости к BNYVV использовали экспрессию в растениях последовательности гена белка оболочки (Mannerlof et al., 1996; Andika et al, 2005), инвертированных повторов гена репликазы (Lennefors et al, 2006; Pavli et al, 2010), RTD домена (Andika et al, 2005) и одноцепочечного фрагмента антител, специфичных к белку оболочки BNYVV (Fecker et al, 1997). В этих работах наблюдали частичную или полную трансгенную устойчивость к BNYVV.

Экспрессия в растениях фрагментов З'-нетранслируемой области (3'-НТО) вирусных РНК геномов имеет определенные преимущества с точки зрения безопасности, поскольку вирусные РНК, в отличие от белков, имеют короткое время полужизни и не являются иммуногенами. З'-НТО BNYVV представляет интерес в качестве нового индуктора патоген-зависимой устойчивости к ризомании. В настоящей работе для сравнения эффективности использования З'-НТО с ранее изученными индукторами в модельном растении Nicotiana benthamiana была также экспрессирована последовательность гена белка оболочки BNYVV. Кроме того, в трансгенных растениях был экспрессирован ген bar, обеспечивающий устойчивость к фосфинотрицину — действующему веществу гербицида BASTA.

6 Выводы.

1. Сконструирован бинарный вектор pBIJBARJBNYVVsil, несущий под контролем двух независимых 35S промоторов кДНК двухцепочечных инвертированных фрагментов З'-НТО BNYVV, разделенных интроном ubil, и кДНК гена bar.

2. Сконструирован бинарный вектор pBIBARBNYVVcp, несущий под контролем двух независимых 35S промоторов вставку кДНК белка оболочки BNYVV и кДНК гена bar.

3. Методом транзиентной экспрессии конструкции «индуктора» (BNYVVsil) и «мишени» в растениях N. benthamiana дикого типа показано 30-кратное снижение экспрессии GFP, что указывает на возможность эффективной индукции сайленсинга двунитчатой формой З'-НТО генома BNYVV.

4. Получены трансгенные растения N. benthamiana, трансформированные вектором pBIBARBNYVVsil. В трансгенных линиях наблюдали экспрессию транскрипта BNYVVsil и продукта гена bar, PAT, обеспечивающего устойчивость к гербициду BASTA.

5. Получены трансгенные растения N. benthamiana, экспрессирующие транскрипт гена белка оболочки BNYVV и PAT продукт гена bar.

6. В гомозиготном поколении Т2 выделена толерантная линия BNYVVsil-126.4, обладающая частичной устойчивостью к инфекции BNYVV в условиях механической передачи вируса.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Abe Н. and Tamada Т. Association of Beet necrotic yellow vein virus with isolates of Polymyxa betae. II Ann. Phytopathol. Soc. Jpn. 1986, 52: 235−247.
  2. Abe H. Studies on the ecology and control of Polymyxa betae Keskin, as a fungal vector of the causal virus (Beet necrotic yellow vein vims) of rhizomania disease of sugar beet. // Rep. Hokkaido Prefect. Kitami Agric. Exp. Stn. 1987, 60: 80−99.
  3. Abhary M.K., Anfoka G.H., Nakhla M.K., Maxwell D.P. Post-transcriptional gene silencing in controlling viruses of the Tomato yellow leaf curlvirus complex. //Arch Virol. 2006, 151 (12): 2349−2363.
  4. Adams M.J. and Antoniw J.F. DPVweb: a comprehensive database of plant and fungal virus genes and genomes. //Nucleic Acids. Database issue. 2006, 34: 382−385.
  5. Adams M.J. and Antoniw J.F. DPVweb: An open access internet resource on plant viruses and virus diseases.// Outlooks on Pest Management. 2005, 16: 268−270.
  6. Adams M.J., Antoniw J.F., Mullins J.G.T. Plant virus transmission by plasmodiophorid fungi is associated with distinctive transmembrane regions of virus-encoded proteins. // Arch. Virol. 2001, 146: 1139−1153.
  7. Agrios G.N. Plant Pathology. 5th ed. Academic Press, New York. 2005.
  8. Ahmad M., Majerczak D.R., Pike S., Hoyos M.E., Novacky A., et al. Biological activity of harpin produced by Pantoea stewartii subsp. stewartii. II Mol Plant Microbe Interact. 2001, 14: 1223−1234.
  9. Al-Khaff N.S., Covey S.N., Kreike M.M., Page A.M., Pinder R., Dale P.J. Transcriptional and posttranscriptional plant gene silencing in response to a pathogen. // Science. 1998, 279: 2113−2115.
  10. Amiri R., Moghaddam M., Mesbah M., Sadeghian S.Y. The inheritance of resistance to beet necrotic yellow vein viruse (BNYVV) in B. vulgaris subsp. maritima, accession WB42: Statistical comparison with Holly-1−4. // Euphytica. 2003, 132: 363−373.
  11. Anderson J.M., Palukaitis P., Zaitiin M. A defective replicase gene induces resistance to cucumber mosaic virus in transgenic tobacco plants. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA .1992, 89: 8759−8763.
  12. Andika I.B., Kondo H., Tamada T. Evidence that RNA silencing-mediated resistance to Beet necrotic yellow vein virus is less effective in roots than in leaves. //MPMI. 2005, 18: 194−204.
  13. Asher M.J.C. 1993. Rhizomania. In: Cooke D.A. andvScott R.K. The sugar beet crop, Science into practice. Chapman & Hall, London, pp 311−346.
  14. Asher M.J.C. and Blunt S.J. The ecological requirements of Polymyxa betae. Proceedings of 50th International Institute Sugar Beet Research Winter Congress. Brussels. 1987, 45−55.
  15. Barr K. J., Asher M. J. C., Lewis B. G. Resistance to Polymyxa betae in wild Beta species. //Plant pathol. 1995, 44: 301−307.
  16. Baulcombe D. Mechanisms of pathogen-derived resistance to viruses in transgenic plants. // Plant Cell. 1996, 8: 1833−1844.
  17. Baulcombe D. Viruses and gene silencing in plants. // Arch Virol Suppl. 1999, 15: 189−201.
  18. Beachy R.N., Loesch-Fries S., Turner N.E. Coat protein-mediated resistance against virus infection. // Ann. Rev. Phytopathol. 1990, 28: 451−474.
  19. Beachy R.N. Mechanisms and applications of pathogen-derived resistance in transgenic plants. // Curr Opin Biotechnol. 1997, 8(2): 215−220.
  20. Beck D.L., Van Dolleweerd C.J., Lough T.J., Balmori E., Voot D.M., Andersen
  21. M.T., O’Brien I.E., Forster R.L. Disruption of virus movement confers broadliispectrum resistance against systemic infection by plant viruses with a triple gene block. //Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1994, 91: 10 310−10 314.
  22. Bendahmane M., Chen I., Asurmendi S., Bazzini A.A., Szecsi J., Beachy R.N. Coat protein-mediated resistance to TMV infection of Nicotiana tabacum involves multiple modes of interference by coat protein. // Virology. 2007, 366: 107−116.
  23. Biancardi E., Lewellen R.T., De Biaggi M., Erichsen A.W., Stevanato P. The origin of rhizomania resistance in sugar beet. // Euphytica. 2002, 127: 383−397.
  24. Boonrod K.J., Galetzka D., Nagy P.D., Conrad U., Krczal G. Single-chain antibodies against a plant viral RNA-dependent RNA polymerase confer virus resistance. //NatureBiotech. 2004, 22: 856−862.
  25. Bouzoubaa S., Guilley H., Jonard G., Richards K., Putz C. Nucleotide sequence analysis of RNA-3 and RNA-4 of beet necrotic yellow vein virus, isolates F2 and Gl. // J. gen. Virol. 1985,66: 1553−1564.
  26. Bouzoubaa S., Niesbach-Klosgen U., Jupin I., Guilley H., Richards K., Jonard G. Shortened forms of beet necrotic yellow vein virus RNA-3 and -4: internal deletions and a subgenomic RNA. // J. gen. Virol. 1991, 72: 259−266.
  27. Bouzoubaa S., Quillet L., Guilley H., Jonard G., Richards K. Nucleotide sequence of beet necrotic yellow vein virus RNA-1. // J. gen. Virol. 1987, 68: 615−626.
  28. Bouzoubaa S., Ziegler V., Beck D., Guilley H., Richards K., Jonard G. Nucleotide sequence of beet necrotic yellow vein virus RNA-2. // J. gen. Virol. 1986, 67: 1689−1700.
  29. Braun C.J. and Hemenway C.L. Expression of amino-terminal portion or full-length viral replicase genes in transgenic plants confers resistance to Potato virus X infection. // Plant Cell. 1992, 4: 735−744.
  30. Campbell M.A., Fitzgerald H.A., Ronald P.C. Engineering pathogen resistance in crop plants. // Transgenic Res. 2002, 11(6): 599−613.
  31. Canova A. On the pathology of sugar beet. // Inf. Fitopatol. 1959, 9: 390−396.
  32. Carr J.P., Marsh L.E., Lomonossoff G.P., Sekiya M.E., Zaitlin M. Resistance to tobacco mosaic virus induced by the 54-kDa gene sequence requires expression of the 54-kDa protein. // Mol. Plant-Microbe Interact. 1992, 5: 397−404.
  33. Cervera M., Esteban 0., Gil M., Gorris M.T., Martinez M.C., Pena L., Cambra M. Transgenic expression in citrus of single-chain antibody fragments specific to Citrus tristeza virus confers virus resistance. // Transgenic Res. 2010, 19(6): 1001−1015.
  34. Chuang C.F. and Meyerowitz E.M. Specific and heritable genetic interference by double-stranded RNA in Arabidopsis thaliana. // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2000, 97: 4985−4990.
  35. Cogoni C. and Macino G. Gene silencing in Neurospora crassa requires a protein homologous to RNA-dependent RNA polymerase. // Nature. 1999, 399: 166−169.
  36. Cooper B., Lapidot M., Heick J.A., Dodds J.A., Beachy R.N. A defective movement protein of TMV in transgenic plants confers resistance to multiple viruses whereas the functional analog increases susceptibility. // Virology. 1995, 206: 307−313.
  37. Doyle J.J. and Doyle J.L. A rapid total DNA preparation procedure for fresh plant tissue.// 1990. 12: 13−15.
  38. Draycott A.P. Sugar beet. Blackwell Publishing Ltd., Oxford. 2006.
  39. Duffus J.E., Liu H.Y. First report of Rhizomania of sugar beet from Texas. // Plant Dis. 1987,71: 557.
  40. Duffus J.E., Whitney E.D., Larsen R., CLiu. H.Y., Lewellen R.T. First report in western hemisphere of rhizomania of sugar beet caused by beet necrotic yellow vein virus. // Sugarbeet Production Research Unit. Plant Dis. 1984, 68: 251.
  41. Dunning R.A., Payne P.A., Smith H.G., Asher M.J.C. Sugarbeet rhizomania: the threat to the English crop and preventive measures being taken. // Brighton Crop Protection Conference. Croydon: British Crop Protection Council. 1984, 779−783.
  42. Dunoyer P., Pfeffer S., Fritsch C., Hemmer O., Voinnet O., Richards K.E. Identification, subcellular localization and some properties of a cysteine-rich suppressor of gene silencing encoded by Peanut clump virus. // Plant J. 2002, 29: 555−567.
  43. Ehlers U., Commandeur U., Frank R., Landsmann J., Koenig R., Burgermeister W. Cloning of the coat protein gene from beet necrotic yellow114vein virus and its expression in sugar beet hairy roots. // Theor Appl Genet. 1991, 81: 777−782.
  44. I.English J. J., Mueller E., Baulcombe D.C. Suppression of virus accumulation in transgenic plants exhibiting silencing of nucleargenes. // Plant Cell. 1996, 8(2): 179−188.
  45. EPPO Al and A2 lists of pests recommended for regulation as quarantine pests. EPPO standards. 2011.
  46. Erhardt A., Vetter G., Gilmer D., Bouzoubaa S., Richards K., Jonard G., Guilley H. Subcellular localization of the Triple Gene Block movement proteins of Beet necrotic yellow vein virus by electron microscopy. // Virology. 2005,340: 155−166.
  47. Erhardt M., Dunoyer P., Guilley H., Richards K., Jonard G., Bouzoubaa S. Beet necrotic yellow vein virus particles localize to mitochondria during infection. // Virology. 2001, 286: 256−262.
  48. Fire A., Xu S., Montgomery M.K., Kostas S.A., Driver S.E., Mello C.C. Potent and specific genetic interference by doublestranded RNA in Caenorhabditis elegans. //Nature. 1998, 391: 806−811.
  49. Fujisawa I. and Sugimoto T. Transmission of Beet necrotic yellow vein virus by Polymyxa betae. II Ann. Phytopathol. Soc. Jpn. 1977, 43: 583−586.
  50. Gao J.L., Deng F., Zhai H.Q., Ling X.S., Liu Y. The occurrence of sugar beet rhizomania caused by Beet necrotic yellow vein virus in China. // Acta Phytopathol. Sin. 1983, 13: 1−4.
  51. Gargouri-Bouzid R., Jaoua L., Rouis S., Saidi M.N., Bouaziz D., Ellouz R. PVY-resistant transgenic potato plants expressing an anti-NIa protein scFv antibody. //Mol. Biotechnol. 2006, 33: 133−140.
  52. Gidner S., Lennefors B.L., Nilsson N.O., Bensefelt J., Johansson E., Gyllenspetz U., Kraft T. QTL mapping of BNYVV resistance from the WB41 source in sugar beet. // Genome. 2005, 48: 279−285.
  53. Gielen J.J.L., de Haan P., Kool A.J., Peters D., van Grinsven M.Q.J.M. and Goldbach R.W. Engineered resistance to tomato spotted wilt virus, a negativestrand RNA virus.//Bio/Technol. 1991,9: 1363−1367.
  54. Gilmer D., Bouzoubaa S., Hehn A., Guilley H., Richards K., Jonard G. Efficient cell-to-cell movement of beet necrotic yellow vein virus requires 3' proximal genes located on RNA2. // Virology. 1992, 189: 40−47.
  55. Goldbach R, Bucher E., Prins M. Resistance mechanisms to plant viruses: an overview. // Virus Res. 2003, 92: 207−212.
  56. Golemboski D.B., Lomonossoff G.P., Zaitlin M. Plants transformed with a tobacco mosaic virus nonstructural gene sequence are resistant to the virus. // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1990, 87: 6311−6315.
  57. Gonsalves D. Control of papaya ringspot virus in papaya: a case study. // Annu Rev Phytopathol. 1998, 36: 415−437.
  58. Goodwin J., Chapman K., Swaney S., Parks T.D., Wernsman E.A., Dougherty W.G. Genetic and biochemical dissection of transgenic RNA-mediated virus resistance // Plant Cell. 1996, 8: 95−105.
  59. Gottula J. and Fuchs M. Toward a quarter century of pathogen-derived resistance and practical approaches to plant virus disease control. // Adv Virus Res. 2009, 75: 161−183.
  60. Grimmer M.K., Kraft T., Francis S.A., Asher M.J.C. QTL mapping of BNYVV resistance from the WB258 source in sugar beet. // Plant Breeding. 2008, 127 (6): 650−652.
  61. Hamilton A.J. and Baulcombe D.C. A species of small antisense RNA in post transcriptional gene silencing. // Science. 1999, 286: 950−952.
  62. Hamilton A.J., Brown S., Yuanhai H., Ishizuka M., Lowe A., Alpuche Solis A.-G., Grierson U. A transgene with repeated DNA causes high frequency, post-transcriptional suppression of ACC-oxidase gene expression in tomato. // Plant J. 1998, 15: 737−746.
  63. Harju V.A., Mumford R.A., Blockley A., Boonham N., Clover G.R.G., Weekes R., Henry C.M. Occurrence in the United Kingdom of Beet necrotic yellow vein virus isolates which contain RNA 5. // Plant Pathol. 2002, 51:811−811.
  64. Harveson M. Plant Desease. Sugar Beet. 2008.
  65. Harveson R. M., Linda E. H., Gary L. H. Compendium of Beet Diseases and Pests, Second Edition. APS Press, St. Paul. 2009.
  66. He S.Y., Huang H.C., Collmer A. Pseudomonas syringae pv. syringae harpinPss: a protein that is secreted via the Hrp pathway and elicits the hypersensitive response in plants. // Cell. 1993, 73: 1255−1266.
  67. Hehn A., Bouzoubaa S., Jonard G., Guilley H., Richards K. Artificial defective interfering RNAs derived from RNA 2 of Beet necrotic yellow vein virus. // Arch. Virol. 1994, 135: 143−151.
  68. Heijbroek W. Dissemination of rhizomania by soil, beet seeds and stable manure. //Netherlands Journal of Plant Pathology. 1988, 94: 9−15.
  69. Heijbroek W. Dissemination of rhizomania by water, soil and manure. // Proceedings of the 50th Congress of the IIRB, Brussels: Institut International de Recherches Betteravieres. 1987, 35−43.
  70. Heijbroek W. The development of Rhizomania in two areas of the Netherlands and its effect on sugar-beet growth and quality. // Neth. J. Plant Pathol. 1989, 95: 27−35.
  71. Heijbroek W., Musters P.M.S., Schoone A.H.L. Variation in pathogenicity and multiplication of beet necrotic yellow vein virus (BNYVV) in relation to the resistance of sugar beet cultivars. // Eur. J. Plant. Pathol. 1999, 105: 397−405.
  72. Hemenway C., Fang R.-X., Kaniewski W. K., Chua N.-H., Turner N. E.
  73. Analysis of the mechanism of protection in transgenic plants expressing the118potato virus X coat protein or its antisense RNA. // EMBO J. 1988, 7: 12 731 280.
  74. Henry C. Rhizomania its effect on sugar-beet yield in the UK. // Br. Sug. Beet Rev. 1996, 64: 24−26.
  75. Hill S.A. and Torrance L. Rhizomania disease of sugar beet in England. // Plant Pathol. 1989,38: 114−122.
  76. Horvath J. Beet necrotic yellow vein furovirus 1. New Host. // Acta Phytopathologica et Entomologica Hungarcia. 1994, 29 (1−2): 109−118.91. http ://www. dp vweb .net/92.http://www.uiweb.uidaho.edu
  77. Hu Q., Niu Y., Zhang K, Liu Y., Zhou X. Virus-derived transgenes expressing hairpin RNA give immunity to Tobacco mosaic virus and Cucumber mosaic virus. //Virol. J. 2011, 8: 41.
  78. Hugo S., Henry C., Harju V. The role of alternative hosts of Polymyxa betae in transmission of Beet necrotic yellow vein virus (BNYVV) in England. // Plant Pathol. 1996, 45: 662−666.
  79. Jakubikova L., Subikova V., Nemcovic M., Farkas, V. Selection of natural isolates of Trichoderma spp. for biocontrol of Polymyxa betae as a vector of virus causing rhizomania in sugar beet. // Biologia. 2006, 61: 347−351.
  80. Jang Y.S., Sobii S.I., Wang M.H. The hrpN gene of Erwinia amylovora stimulates tobacco growth and enhances resistance to Botrytis cinerea. // Planta. 2006, 223: 449−456.
  81. Johansen L.K. and Carrington J.C. Silencing on the spot. Induction and suppression of RNA silencing in the Agrobacterium-mediated transient expression system. //Plant Physiol. 2001, 126: 930−938.
  82. Johansson E. Rizomania in sugar beet a threat to beet growing that can be overcome by plant breeding. // Sveriges Utsadesforenings Tidskrift. 1985, 95: 115−121.
  83. Jupin I., Guilley H., Richards K.E., Jonard G. Two proteins encoded by Beet necrotic yellow vein virus RNA-3 influence symptom phenotype on leaves. // EMBO J. 1992, 11:479−488.
  84. Kallerhof J., Perez P., Bouzoubaa S., Ben Tahar S. and Perret J. Beet necrotic yellow vein virus coat protein-mediated protection in sugarbeet {Beta vulgaris L.) protoplasts. // Plant Cell Rep. 1990, 9: 224−228.
  85. Kanzawa K. and Ui T. A note on rhizomania of sugar beet in Japan. Ann. Phytopathol. Soc. Jpn. 1972, 38: 434−435.
  86. Keller P., Luttge U., Wang X.-C., Buttner G. Influence of rhizomania disease on gas exchange and water relations of a susceptible and a tolerant sugar beet variety. //Physiol. Mol. Plant Pathol. 1989, 34: 379−392.
  87. Keskin B. and Fuchs W. H. Der Infektionsvorgang bei Polymyxa betae. Arch. Mikrobiol. 1969, 68: 218−226.
  88. Keskin B. Polymyxa betae n.sp., ein Parasit in den Wurzeln von Beta vulgaris Tournefort, besonders wahrend der Jugendentwicklung der Zuckerrube. //Arch. Mikrobiol. 1964, 49: 348−374.
  89. Kiguchi T., Saito M., Tamada T. Nucleotide sequence analysis of RNA-5 of five isolates of Beet necrotic yellow vein virus and the identity of a deletion mutant. //J. Gen. Virol. 1996, 77: 575−580.
  90. Kim J.G., Jeon E., Oh J., Moon J.S., Hwang I. Mutational analysis of Xanthomonas harpin HpaG identifies a key functional region that elicits the hypersensitive response in nonhost plants. // J Bacteriol. 2004, 186: 6239−6247.
  91. Klein E., Link D., Schirmer A., Erhardt M., Gilmer D. Sequence variation within Beet necrotic yellow vein virus p25 protein influences its oligomerization and isolate pathogenicity on Tetragonia expansa. // Virus Res. 2007, 126: 53−61.
  92. Ko K., John L., Norelli J.L., Reynoird J-P., Boresjza-Wysocka E., Brown S. K, Aldwinckle H.S. // Biotechnology Letters, 2000, 22: 373−381.
  93. Koenig R. and Lennefors B.-L. Molecular analyses of European A, B and P type sources of Beet necrotic yellow vein virus and detection of the rare P type in Kazakhstan. // Arch. Virol. 2000, 145: 1561−1570.
  94. Koenig R., Haeberle A.-M., Commandeur U. Detection and characterization of a distinct type of beet necrotic yellow vein virus RNA5 in a sugar beet growing area in Europe. // Arch. Virol. 1997, 142: 1499−1504.
  95. Koenig R., Jarausch W., Li Y., Commandeur U., Burgermeister W., Gehrke M., Luddecke P. Effect of recombinant Beet necrotic yellow vein virus with different RNA compositions on mechanically inoculated sugar-beets. // J. Gen. Virol. 1991, 72: 2243−2246.
  96. Koenig R., Luddecke P. and Haeberle A.M. Detection of Beet necrotic yellow vein virus-strains, variants and mixed infections by examining singlestrand conformation polymorphisms of immunocapture RT-PCR products. // J. Gen. Virol. 1995, 76: 2051−2055.
  97. Koenig R., Pleij C., Buttner G. Structure and variability of the 3' end of RNA 3 of Beet soilborne Pomovirus a virus with uncertain pathogenic effects. //Arch.Virol. 2000, 145: 1173−1181.
  98. Koenig R., Kastirr U., Holtschulte B., Demi G., Varrelmann M. Distribution of various types and P25 subtypes of Beet necrotic yellow vein virus in
  99. Germany and other European countries. // Arch Virol. 2008, 153(11): 21 392 144.
  100. Kollar A., Thole V., Dalmay T., Salamon P., Balazs E. Efficient pathogen-derived resistance induced by integrated potato virus Y coat protein gene in tobacco //Biochimie. 1993, 75 (7): 623−629.
  101. Koo J.C., Asurmendi S., Bick J., Woodford-Thomas T., Beachy R.N. Ecdysone agonist-inducible expression of a coat protein gene from tobacco mosaic virus confers viral resistance in transgenic Arabidopsis. // Plant J. 2004, 37: 439−448.
  102. Kralovic J., Kralovic V. Relations among rhizomania disease, root content of potassium, sodium, amino nitrogen and crop yield of sugar beet. // Z. Pflanzenkr.Pflanzenschutz. 1996, 103: 561−570.
  103. Kuszala M., Ziegler V., Bouzoubaa S., Richards K., Putz C., Guilley H., Jonard G. Beet necrotic yellow vein virus: different isolates are serologically similar but differ in RNA composition. // Ann. Appl. Biol. 1986, 109: 155−162.
  104. Kuszala M. and Putz C. // Annales de Phytopathologie. 1977, 9: 435.
  105. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4 // Nature. 1970, 27: 680−685.
  106. Lapidot M., Gafny R., Ding B., Wolf S., Lucas W.J., Beachy R.N. A dysfunctional movement protein of Tobacco mosaic virus that partially modifies the plasmodesmata and limits virus spread in transgenic plants. // Plant J. 1993,4: 959−970.
  107. Leibman D., Wolf D., Saharan V., Zelcer A., Arazi T., Yoel S., Gaba V.,
  108. Gal-On A. A high level of transgenic viral small RNA is associated with broad122potyvirus resistance in cucurbits. // Mol Plant Microbe Interact. 2011, 24(10): 1220−1238.
  109. Lein J.C., Asbach K., Tian Y.Y., Schulte D., Li C.Y., Koch G., Jung C., Cai D.G. Resistance gene analogues are clustered on chromosome 3 of sugar beet and cosegregate with QTL for rhizomania resistance. // Genome. 2007, 50: 61−71.
  110. Lemaire O., Merdinoglu D., Valentin P., Putz C., Ziegler-Graff V., Guilley H., Jonard G., Richards K. Effect of beet necrotic yellow vein virus RNA composition on transmission by Polymyxa betae. II Virology. 1988, 162: 232−235.
  111. Lennefors B.L., Lindsten K., Koenig R. First record of A and B type Beet necrotic yellow vein virus in sugar beets in Sweden. // Eur. J. Plant Pathol. 2000, 106: 199−201.
  112. Lewellen R.T. Performance of near-isolines of sugarbeet with resistance to rhizomania from different sources. // Proceedings of the 58th Congress of the IIRB, Brussels: Institut International de Recherches Betteravieres. 1995, 83−92.
  113. Lewellen R.T. Registration of sugarbeet germplasm lines C78, C80, and C82. // Crop Sci. 1997,37: 1037.
  114. Li J.G., Liu H.X., Chen L.F., Gu C., Allen C., et al. PopW of Ralstonia solanacearum, a new two-domain harpin targeting the plant cell wall. // Mol Plant Pathol. 2010, 11(3): 371−381.
  115. Lindbo J.A., Silva-Rosales L., Proebsting W.M. and Dougherty, W.G. Induction of a highly specific antiviral state in transgenic plants: implications for regulation of gene expression and virus resistance. // Plant Cell. 1993, 5: 1749−1759.
  116. Lindsten K. Rhizomania a complicated disease in sugar beets which can also occur in Sweden. // Vaxtskyddsnoliser. 1986, 50: 111−118.
  117. Liu H.Y. and Lewellen R.T. Distribution and molecular characterization of resistance-breaking isolates of Beet necrotic yellow vein virus in the United States. //Plant Dis. 2007, 91: 847−851.
  118. Liu H.Y. and Lewellen R.T. Distribution and molecular characterization of resistance-breaking isolates of Beet necrotic yellow vein virus in the United States. //PlantDis. 2007, 91: 847−851.
  119. Liu H.Y., Sears J.L., Lewellen R.T. Occurrence of resistancebreaking Beet necrotic yellow vein virus of sugar beet. Plant Dis. 2005, 89: 464−468.
  120. Longstaff M., Brigneti G., Boccard F., Chapman S., Baulcombe D. Extreme resistance to potato virus X infection in plants expressing a modified component of the putative viral replicase. // The EMBO Journal. 1993, 12 (2): 379−386.
  121. MacFarlane S.A. and Davies J.W. Plants transformed with a region of the 201-kilodalton replicase gene from pea early browning virus RNA1 are resistant to virus infection. // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1992, 89: 5829−5833.
  122. Malyshenko S.I., Kondakova O.A., Nazarova J.V., Kaplan I.B., Taliansky M.E. and Atabekov J.G. Reduction of tobacco mosaic virus accumulation in transgenic plants producing non-functional viral transport proteins. // J. Gen. Virol. 1993,74: 1149−1156.
  123. Mannerlof M., Lennerfors B.L., Tenning P. Reduced titer of BNYVV in transgenic sugar beets expressing the BNYVV coat protein. // Euphytica. 1996, 90: 293−299.
  124. Marano M.R. and Baulcombe D. Pathogen-derived resistance targeted against the negative-strand RNA of tobacco mosaic virus: RNA strand-specific gene silencing? // Plant J. 1998, 13: 537−546.
  125. Martin F.N. and Whitney E.D. In-bed fumigation for control of rhizomania of sugar-beet. //Plant Dis. 1990, 74: 31−35.
  126. McDonald J., Brandle F., Gleddie S., Hermans J., Kermali I. Resistance to homologous and heterologous strains of potato virus Y in transgenic tobacco carrying the PVY (N) coat protein gene. // Canadian Journal of Plant Science. 1997, 77: 167−171.
  127. McGrann G.R., Grimmer M.K., Mutasa-Gottgens E.S., Stevens M. Progress towards the understanding and control of sugar beet rhizomania disease. // Mol Plant Pathol. 2009, 10(1): 129−141.
  128. Meyer P., Heidmann I., Niedenhof I. Differences in DNA methylation are associated with a paramutation phenomenon in transgenic petunia. // Plant J. 1993,4: 89−100.
  129. Meyer P. and Heidmann I. Epigenetic variants of a transgenic petunia line show hypermethylation in transgene DNA: an indication for specific recognition of foreign DNA in transgenic plants. // Mol Gen Genet. 1994, 243 (4): 390−399.
  130. Miyanishi M., Kusume T., Saito M., Tamada T. Evidence for three groups of sequence variants of beet necrotic yellow vein virus RNA5. // Arch. Virol. 1999, 144: 879−892.
  131. Morozov S.Y. and Solovyev A.G. Triple gene block: modular design of a multifunctional machine for plant virus movement. // J Gen Virol. 2003, 84(6): 1351−1366.
  132. Morroni M., Thompson J.R., Tepfer M. Twenty years of transgenic plants resistant to Cucumber mosaic virus. // Mol Plant Microbe Interact. 2008, 21(6): 675−684.
  133. Nagl N., Atanasov I., Rusanov K., Paunovic S., Kovacev L., Atanasov A. Advances in development of transgenic resistance to beet necrotic yellow vein virus (BNYVV) in sugar beet. // Genetika. 2005b, 37 (3): 181−189.
  134. Napoli C., Lemieux C., Jorgensen R. Introduction of a chimeric chalcone synthase gene into Petunia results in reversible cosuppression of homologous genes in trans. // Plant Cell. 1990, 2: 279−289.
  135. Neuhuber F., Park Y.D., Matzke A.J., Matzke M.A. Susceptibility of transgene loci to homology-dependent gene silencing. // Mol Gen Genet. 1994, 244(3): 230−241.
  136. Nickel H., Kawchuk L., Twyman R.M., Zimmermann S., Junghans H., Winter S., Fischer R., Priifer D. Plantibody-mediated inhibition of the Potato leafroll virus PI protein reduces virus accumulation. // Virus Res. 2008, 136 (1−2): 140−145.
  137. OEPP/ EPPO. First record of Beet necrotic yellow benyvirus in Morocco. European and Mediterranean Plant Protection Organization (OEPP/ EPPO). EPPO Reporting Service, 2005/102. 2005, № 7.
  138. OEPP/CABI (1996) Beet necrotic yellow vein virus. // Quarantine Pests for Europe, 2nd edn. CAB International, Wallingford (GB).
  139. Paul H., Henken B., Alderlieste M.F.J. A greenhouse test for screening sugar beet (Beta vulgaris) for resistance to Beet necrotic yellow vein virus (BNYVV). // Neth. J. Plant Pathol. 1992a. 98: 65−75.
  140. Paul H., Henken B., Scholten O.E., Lange W. Use of zoospores of Polymyxa betae in screening beet seedlings for resistance to Beet necrotic yellow vein virus. //Neth. J. Plant Pathol. 1993b, 99: 151−160.
  141. Pavli O.I., Panopoulos N.J., Goldbach R., Skaracis G.N. BNYVV-derived dsRNA confers resistance to rhizomania disease of sugar beet as evidenced by a novel transgenic hairy root approach. //Transgenic Res. 2010, 19 (5): 915−922.
  142. Pavli O.I., Kelaidi G.I., Tampakaki A.P., Skaracis G.N. The hrpZ gene of Pseudomonas syringae pv. phaseolicola enhances resistance to rhizomania disease in transgenic Nicotiana benthamiana and sugar beet. // PLoS One. 2011, 6 (3): el7306.
  143. Powell-Abel P., Nelson R.S., De B., Hoffmann N., Rogers S.G., Fraley R.T., Beachy R.N. Delay of disease development in transgenic plants that express the tobacco mosaic virus coat protein gene. // Science. 1986, 232: 738−743.
  144. Prins M. and Goldbach R.W. RNA-mediated virus resistance in transgenic plants. //Arch Virol. 1996, 141: 2259−2276.
  145. Prins M., Laimer M., Noris E., Schubert J., Wassenegger M., Tepfer M. Strategies for antiviral resistance in transgenic plants. // Mol Plant Pathol. 2008, 9 (1): 73−83.
  146. Putz C. Composition and structure of beet necrotic yellow vein virus. // J. gen. Virol. 1977, 35: 397−401.
  147. Putz C., Pinck M., Fritsch C., Pinck L. Identification of the 3'- and 5'- ends of beet necrotic yellow vein virus RNAs. // FEBS. 1983, 156: 41−46.
  148. Quillet L., Guilley H., Jonard G., Richards K. In vitro synthesis of biologically active beet necrotic yellow vein virus RNA. // Virology, 1989, 172 (1): 293−301.
  149. Rahim M.D., Andika I.B., Han C., Kondo H., Tamada T. RNA4-encoded p31 of Beet necrotic yellow vein virus is involved in efficient vector transmission, symptom severity and silencing suppression in roots. // J. Gen. Virol. 2007, 88: 1611−1619.
  150. Ratcliff F.G., Harrison B.D., Baulcombe D. A similarity between viral defense and gene silencing in plants. // Science. 1997, 276: 1558−1560.
  151. Richard-Molard M. Beet rhizomania disease: the problem in Europe. // Brighton Crop Protection Conference. Croydon: British Crop Protection Council. 1984, 837−845.
  152. Richard-Molard M.S. Rhizomania: a world-wide danger to sugar beet. // Span. 1985,28: 92−94.
  153. Richards K., Jonard G., Guilley H., Ziegler V., Putz C. In vitro translation of beet necrotic yellow vein virus RNA and studies of sequence homology among the RNA species using cloned cDNA probes. // J. gen. Virol. 1985, 66: 345−350.
  154. Richards K.E. and Tamada T. Mapping functions on the multipartite genome of Beet necrotic yellow vein virus. // Annu. Rev. Phytopathol. 1992, 30: 291−313.
  155. Rott M. E. and Jelkman W. Characterization and detection of several filamentous viruses of cherry: Adaptation of an alternative cloning method (DOP-PCR) and modification of an RNA extraction protocol. // Eur. J. Plant Pathol. 2001. 107:411−420.
  156. Rush C.M. Ecology and epidemiology of benyviruses and plasmodiophorid vectors. // Annu Rev Phytopathol. 2003, 41: 567−5692.
  157. Rush C.M., Heidel, G.B. Furovirus diseases of sugar beets in the United States. //Plant Dis. 1995, 79: 868−875.
  158. Rush C.M., Liu H.-Y., Lewellen R.T., Acosta-Leal R. The continuing saga of rhizomania of sugar beets in the United States. // Plant Dis. 2006, 90: 4−15.
  159. Safarnejad M.R., Fischer R, Commandeur U. Recombinant-antibody-mediated resistance against Tomato yellow leaf curl virus in Nicotiana benthamiana. II Arch Virol. 2009, 154(3): 457−467.
  160. Saito M., Kiguchi T., Kusume T., Tamada T. Complete nucleotide sequence of the Japanese isolate S of Beet necrotic yellow vein virus RNA and comparison with European isolates. // Arch. Virol. 1996, 141: 2163−2175.
  161. Sanford J.C. and Johnston S.A. The concept of parasitederived resistance-Deriving resistance genes from the parasite’s own genome. // J. Theor. Biol. 1985,113:395−405.
  162. Schirmer A., Link D., Cognat V., Moury B., Beuve M., Meunier A., Bragard C., Gilmer D., Lemaire O. Phylogenetic analysis of isolates of beet necrotic yellow vein virus collected world wide. // J gen Virol. 2005, 86: 2897−2911.
  163. Scholten O.E. and Lange W. Breeding for resistance to rhizomania in sugar beet: a review. // Euphytica. 2000, 112: 219−231.
  164. Scholten O.E., De Bock T.S.M., Klein-Lankhorst R.M., Lange W. Inheritance of resistance to beet necrotic yellow vein virus in Beta vulgaris conferred by a second gene for resistance. // Theor. Appl. Genet. 1999, 99: 740−746.
  165. Scholten O.E., Jansen R.C., Keizer L.C.P., DeBock T.S.M., Lange, W. Major genes for resistance to Beet necrotic yellow vein virus (BNYVV) in Beta vulgaris. //Euphytica. 1996, 91: 331−339.
  166. Scholten O.E., Paul H., Peters D., Van Lent J.W.M., Goldbach R.W. In situ localisation of Beet necrotic yellow vein virus (BNYVV) in rootlets of susceptible and resistant beet plants. // Arch. Virol. 1994, 91: 331−339.
  167. Smith H.G., Hallsworth P.B. The effects of yellowing viruses on yield of sugar beet in field trials, 1985 and 1987. // Ann App Biol. 1990, 116: 503−511.
  168. Steddom K., Heidel G., Jones D., Rush C.M. Remote detection of rhizomania in sugar beets. // Phytopathology. 2003, 93(6): 720−726.
  169. Strausbaugh C.A., Rearick E., Gallian J.J. Influence of Beet necrotic yellow vein virus on sugar beet storability. // Plant Dis. 2008, 92: 581−587.
  170. Suehiro N., Natsuaki T., Watanabe T., Okuda S. An important determinant of the ability of Turnip mosaic virus to infect Brassica spp. and/or Raphanus sativus is in its P3 protein. // J Gen Virol. 2004, 85 (7): 2087−2098.
  171. Tamada T. and Abe H. Evidence that beet necrotic yellow vein virus RNA-4 is essential for efficient transmission by the fungus Polymyxa betae. II J gen Virol. 1989, 70:3391- 3398.
  172. Tamada T. and Baba T. Beet necrotic yellow vein virus from rhizomania-affected sugar beet in Japan. // Ann. Phytopath. Soc. Japan. 1973, 39: 325−332.
  173. Tamada T. and Kusume T. Evidence that the 75K readthrough protein of beet necrotic yellow vein virus RNA-2 is essential for transmission by fungus Polymyxa betae. II J. gen. Virology. 1991, 72: 1497−1504.
  174. Tamada T. Beet necrotic yellow vein virus. CMI/AAB. Descriptions of Plant Viruses. 1975, № 144.
  175. Tamada T. Benyviruses. In: Webster R. and Granoff A. Encyclopedia of virology, 2nd ed., vol.11. Academic Press, New York. 1999, 154−160.
  176. Tamada T., Shirako Y., Abe H., Saito M., Kigushi T., Harada T. Production and pathogenicity of isolates of beet necrotic yellow vein virus with different numbers of RNA components. // J gen Virol. 1989, 70: 3399−3409.
  177. Tamada T., Uchino H., Kusume T., Saito M. RNA 3 deletion mutants of beet necrotic yellow vein virus do not cause rhizomania disease in sugar beets. //Phytopathology. 1999, 89: 1000−1006.
  178. Tavladoraki P., Benvenuto E., Trinca S., Demartinis D., Cattaneao A., Galeffi P. Transgenic plants expressing a functional singlechain Fv antibody are specifically protected from virus attack. // Nature. 1993, 366: 469−472.
  179. Tenllado F. and Diaz-Ruiz J.R. Double-stranded RNA-mediated interference with plant virus infection. // J Virol. 2001, 75(24): 12 288−12 297.
  180. Tenllado F., Llave C., Diaz-Ruiz J.R. RNA interference as a new biotechnological tool for the control of virus diseases in plants. // Virus Res. 2004, 102: 85−96.
  181. Tuitert G. Assessment of the inoculum potential of Polymyxa betae and beet necrotic yellow vein virus (BNYVV) in soil using the most probable number method. //Eur. J. Plant Pathol. 1990, 96: 331−341.
  182. Valentin C., Dunoyer P., Vetter G., Schalk C., Dietrich A., Bouzoubaa S. Molecular basis for mitochondrial localization of viral particles during Beet necrotic yellow vein virus infection. // J. Virology. 2005, 79: 9991−10 002.
  183. Van der Krol A.R., Mur L.A., Beld M., Mol J.N., Stuitje A.R. Flavonoid genes in petunia: addition of a limited number of gene copies may lead to a suppression of gene expression. // Plant Cell. 1990, 2: 291−299.
  184. Van der Wilk F., Posthumus-Lutke Willink D., Huisman M.J., Huttinga H., Goldbach R. Expression of the potato leafroll luteovirus coat protein gene in transgenic potato plants inhibits viral infection. // Plant Mol Biol. 1991, 17(3): 431−439.
  185. Verchot-Lubicz J., Rush C.M., Payton M., Colberg T. Beet necrotic yellow vein virus accumulates inside resting spores and zoosporangia of its vector Polymyxa betae BNYVV infects P. betae. // Virol. J. 2007, 4: 37.
  186. Vetter G., Hily J.M., Klein E., Schmidlin L., Haas M., Merkle T., Gilmer D. Nucleo-cytoplasmic shuttling of the Beet necrotic yellow vein virus RNA-3-encoded p25 protein. // J. Gen. Virol. 2004, 85: 2459−2469.
  187. Voinnet O. Induction and suppression of RNA silencing: insights from viral infections. //Nature Rev Genet. 2005, 6: 206−220.
  188. Voinnet O. RNA silencing as a plant immune system against viruses. // Trends Genet. 2001, 17: 449−459.
  189. Ward L., Koenig R., Budge G., Garrido C., McGrath C., Stubbley H., Boonham N. Occurrence of two different types of RNA-5-containing Beet necrotic yellow vein virus in the UK. // Arch. Virol. 2007, 152: 59−73.
  190. Waterhouse P.M., Wang M.B., Lough T. Gene silencing as an adaptive defence against viruses. // Nature. 2001, 411: 834−842.
  191. Wei Z.M., Laby R.J., Zumoff C.H., Bauer D.W., He S.Y., Collmer A., Beer S.V. Harpin, elicitor of the hypersensitive response produced by the plant pathogen Erwinia amylovora. II Science. 1992, 257: 85−88.
  192. Whitney E.D., Martin F.M. Preplant soil fumigation for the control of rhizomania of sugar beet. // Abstracts of the Fifth International Congress of Plant Pathology, Kyoto, Japan. 1988, 454.
  193. Winner C. Terminologische fragen in der rizomaniaforschung. // Zuckerindustrie. 1988, 113: 597−600.
  194. Wisler G.C. and Duffus J.E. A century of plant virus management in the Salinas valley of California, 'East of Eden'. // Virus Res. 2000, 71(1−2): 161 169.
  195. Xie Z. and Chen Z. Harpin-induced hypersensitive cell death is associated with altered mitochondrial functions in tobacco cells. // Mol. Plant-Microbe Interact. 2000, 13: 183−190.
  196. Yardimci N. andH. Qulal K1I19. Identification of Beet necrotic yellow vein virus in Lakes District: A Major Beet Growing Area in Turkey. // Indian Journal of Virology. 2011, 22 (2), 127−130.
  197. Yu T.A., Chiang C.H., Wu H.W., Li C. M, Yang C.F., Chen J.H., Chen Y.W., Yeh S.D. Generation of transgenic watermelon resistant to Zucchini yellow mosaic virus and Papaya ringspot virus type W. // Plant Cell Rep. 2011, 30(3): 359−371.
  198. Zhang L., Xiao S., Li W., Feng W., Li J., Wu Z, Gao X., Liu F., Shao M. Overexpression of a Harpin-encoding gene hrfl in rice enhances drought tolerance. // J Exp Bot. 2011, 62 (12): 4229−4238.
  199. Zimmermann S., Schillberg S., Liao Y.C., Fischer R. Intracellular expression of TMV-specific single-chain Fv fragments leads to improved virus resistance in Nicotiana tabacum. 11 Mol. Breeding. 1998, 4: 369−379.
  200. И.В. Ризомания в России: мифы или реальность? // Сахарная свекла. 2007, 8: 10−16.
  201. Г. В., Корниенко А. С., Васильева Н. А. Ризомания опасная болезнь сахарной свеклы. Агропромиздат. 1989. 7с.
  202. .А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). Москва. «Агропомиздат». 1985: 351с.
  203. Г. Ф. Биометрия. Москва. «Высшая школа». 1985: 276с.
  204. И.М. Изучение вирусных болезней сахарной свеклы в процессе селекции на повышение устойчивости к заболеваниям. Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук. Рамонь. 2001. 133с.
  205. Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. Москва. «Мир». 1984: 480с.
  206. К.А., Гирсова Н. В., Кастальева Т. Б. Изучение возможности передачи семенами сахарной свеклы вируса некротического пожелтения жилок свеклы возбудителя ризомании. // Сахарная свекла. 2009, 5: 25−29.
  207. Д. Ризомания опасная болезнь, способная унести до 90% урожая. // Сахарная свекла. 2004, 5: 18−24.
  208. К., Бокхольт К. Зайцева И. Сахарная свекла: новые сорта. // Новое сельское хозяйство. 2010, 6: 44−46.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!