Диплом, курсовая, контрольная работа
Помощь в написании студенческих работ

Изучение культур клеток и тканей морских макрофитных водорослей

Диссертация: Изучение культур клеток и тканей морских макрофитных водорослей
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Однако исследования культур тканей морских макрофитных водорослей достаточно трудны, что связано с их гетерогенностью по морфологическим, физиологическим и биохимическим характеристикам, сложным жизненным циклам, недостатком знаний о механизмах роста, трудностью получения аксеничных кулыур и, как правило, их медленным ростом. В настоящее время показана возможность получения каллусных культур… Читать ещё >

Содержание

  • ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • 1. МАКРОФИТНЫЕ ВОДОРОСЛИ КАК ОБЪЕКТ ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ И СОВРЕМЕННОЙ БИОТЕХНОЛОГИИ
  • 2. КУЛЬТУРЫ КЛЕТОК И ТКАНЕЙ МОРСКИХ МАКРОФИТНЫХ ВОДОРОСЛЕЙ
    • 2. 1. Получение аксеничных культур макрофитных водорослей
    • 2. 2. Питательные среды и условия культивирования клеток и тканей макрофитов in vitro
    • 2. 3. Каллусные культуры макрофитных водорослей
    • 2. 4. Вегетативный рост в аксеничных условиях
    • 2. 5. Получение протопластов макрофитных водорослей и их регенерация
    • 2. 6. Получение клеточных суспензий и суспензионных культур макрофитных водорослей
  • 3. КЛЕТОЧНАЯ И ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ МОРСКИХ ВОДОРОСЛЕЙ
  • ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
  • ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • РЕЗУЛЬТАТЫ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ РАБОТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
  • 1. ПОЛУЧЕНИЕ АКСЕНИЧНЫХ ЭКСПЛАНТАТОВ ИЗ ТАЛЛОМОВ МОРСКИХ МАКРОФИТНЫХ ВОДОРОСЛЕЙ
    • 1. 1. При помощи поверхностных стерилизующих агенток
    • 1. 2. При помощи антибиотиков
  • 2. КУЛЬТИВИРОВАНИЕ ЭКСПЛАНТАТОВ МОРСКИХ МАКРОФИТНЫХ ВОДОРОСЛЕЙ В АКСЕНИЧНЫХ УСЛОВИЯХ. КАЛЛУСНЫЙ И ВЕГЕТАТИВНЫЙ РОСТ
  • 3. ПОЛУЧЕНИЕ И ИССЛЕДОВАНИЕ ХАРАКТЕРИСТИК ЖИЗНЕСПОСОБНЫХ КЛЕТОЧНЫХ СУСПЕНЗИЙ МОРСКИХ МАКРОФИТНЫХ ВОДОРОСЛЕЙ, ПОЛУЧЕННЫХ МЕХАНИЧЕСКОЙ МАЦЕРАЦИЕЙ ТАЛЛОМА
    • 3. 1. Получение жизнеспособных клеточных суспензий морских макрофитных водорослей
    • 3. 2. Исследование характеристик жизнеспособных клеточных суспензий морских макрофитных водорослей
  • 4. ПОЛУЧЕНИЕ КЛЕТОЧНЫХ СУСПЕНЗИЙ И ПРОТОПЛАСТОВ С ПОМОЩЬЮ КОММЕРЧЕСКИХ ФЕРМЕНТНЫХ ПРЕПАРАТОВ И ПРЕПАРАТОВ, ВЫДЕЛЕННЫХ ИЗ ПРИРОДНЫХ ПРОДУЦЕНТОВ
    • 4. 1. Получение ферментных комплексов из природных продуцентов
    • 4. 2. Получение клеточных суспензий и протопластов
  • ВЫВОДЫ

Изучение культур клеток и тканей морских макрофитных водорослей (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы. Культуры клеток и тканей растений являются удобным объектом для физиологических, генетических и биохимических исследований, а также источником ценных продуктов клеточного метаболизма (Бутенко, 1964; 1984). Исследования способов ведения культур тканей морских макрофитных водорослей, были начаты в 60−70 годы в Швеции и Японии (Fries, 1963; 1977; Nakamura, 1974; Saga et al., 1978; Chen, Taylor, 1978). У нас в стране это было начато в 1983 г. в группе проф. А. Х. Тамбиева. В перспективе это могло бы заменить добычу макрофитов и одновременно с выращиванием водорослей в хозяйствах марикультуры служить источником промышленно важных соединений водорослей, таких как агар, каррагинан, альгинаты и др.

В настоящее время показана возможность получения каллусных культур, аксеничного вегетативного роста, протопластов из ряда видов морских водорослей (Polne-Fuller, Gibor, 1984; Гусев, Тамбиев и др., 1984; Butler et al., 1989; Garcia-Reina et al., 1991; Mollet et al., 1995; Rusig et al., 2001), а также только двух суспензионных клеточных культур (Chen, 1989; Tait et. al., 1990).

Однако исследования культур тканей морских макрофитных водорослей достаточно трудны, что связано с их гетерогенностью по морфологическим, физиологическим и биохимическим характеристикам, сложным жизненным циклам, недостатком знаний о механизмах роста, трудностью получения аксеничных кулыур и, как правило, их медленным ростом.

Возможно, что, учитывая происхождение макрофитных водорослей, правомерно проводить сопоставление их культур тканей с колониальными формами водорослей, где может наблюдаться лишь начальная дифференциация.

В настоящее время весьма важным является ведение и развитие культур тканей новых видов морских макрофитных водорослей с полезными для человека свойствами, а также оптимизация условий автономного культивирования их клеток и тканей с целью получения различных ценных продуктов.

Цель и задачи исследования

Основной целью нашей работы являлось исследование возможностей получения каллусного роста, жизнеспособных суспензий клеток и протопластов из талломов красных, бурых и зеленых морских макрофитных водорослей.

В соответствии с этим в работе были поставлены следующие экспериментальные задачи: ^ 1. Подбор условий стерилизации и получение аксеничного материала из талломов нескольких видов морских макрофитных водорослей.

2. Получение каллусного и вегетативного роста из эксплантатов водорослей в аксеничных условиях.

3. Подбор коммерческих ферментных препаратов для мацерации талломов водорослей.

4. Поиск и выделение природных продуцентов экзоферментов для разрушения специфических компонентов клеточных стенок водорослей.

5. Получение природных ферментных препаратов и изучение их ферментативных активностей.

6. Исследование эффективности воздействия коммерческих и природных ферментных препаратов на талломы морских макрофитных водорослей с целью получения жизнеспособных суспензий клеток и протопластов. и 7. Изучение физиологических характеристик полученных в работе суспензий клеток и протопластов исследуемых видов макрофитных водорослей.

Научная новизна работы. Выявлены индивидуальные комплексы антибиотиков, эффективные для получения аксеничных эксплантатов из талломов нескольких видов морских водорослей. Установлена возможность получения каллусного и вегетативного роста из эксплантатов тропической морской макрофитной красной водоросли — Во1гуос1а (Па пеиэЬиШ.

Показана возможность роста нескольких видов наземных грибов (21 штамма) — продуцентов экзоферментов на сухой биомассе морской красной водоросли В. пеизИиШ.

Исследована активность полученных в работе природных ферментных препаратов (из грибов и моллюска Глйоппа Шогеа) и их ^ эффективность при разрушении клеточных стенок и межклетников красных водорослей. При помощи коммерческих и экспериментально подобранных ферментных препаратов получены жизнеспособные клеточные суспензии из талломов ряда видов морских макрофитных водорослей.

Получено значительное количество протопластов из талломов красных, бурых и зеленых макрофитных водорослей, некоторые из которых способны к регенерации клеточных стенок.

Практическое значение работы. Выявленные в работе комплексы антибиотиков могут быть использованы для получения аксеничных культур из ряда видов морских макрофитных водорослей.

Отработанные методики получения жизнеспособных клеточных м" суспензий и протопластов ряда видов красных, бурых и зеленых морских макрофитных водорослей могут быть рекомендованы для использования на других представителях водорослей.

Получение каллусов, жизнеспособных клеточных суспензий и протопластов, способных к регенерации клеточных стенок, открывают перспективы перехода к суспензионным культурам морских макрофитных водорослей — автономным источникам ценных пищевых и лекарственных продуктов.

Апробация работы. Результаты работы докладывались на конференциях:

VIII Международная конференция и дискуссионный научный клуб: «Новые информационные технологии в медицине и экологии». Гурзуф, 610 июня 2000 г.

Международная научная конференции «Автотрофные микроорганизмы». Москва, 13−15 декабря 2000 г.

IX Международная конференция и дискуссионный научный клуб: «Новые информационные технологии в медицине и экологии». Гурзуф, 1 -10 июня 2001 г.

Международная научная конференция «Биологические ресурсы и устойчивое развитие» Россия, Пущино Московской области, 29 октября — 2 ноября 2001 г.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 5 печатных работ.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

выводы.

1. Подобраны индивидуальные комплексы антибиотиков, эффективные для получения аксеничного материала, и отработана схема стерилизации талломов ряда видов морских макрофитных водорослей.

2. Впервые получен каллусный и вегетативный рост из эксплантатов тропической морской макрофитной красной водоросли Botryocladia neushulii. Превалирование каллусного или вегетативного роста при инкубации эксплантатов В. neushulii зависело от условий выращивания.

3. Показана способность 21 штаммов почвенных грибов (микро-и макромицетов) к росту на среде с сухой биомассой морской красной водоросли Botryocladia neushulii в качестве единственного источника углерода. Выявлена ксиланазная активность грибных экзоферментных препаратов, которые использовались для получения клеточной суспензии из морской макрофитной водоросли В. neushulii.

4. Получены клеточные суспензии из талломов ряда видов красных и зеленых морских макрофитных водорослей (Caulerpa prolifera, Caulerpa mexicana, Botryocladia neushulii, Porphyra amplissima). Жизнеспособность клеток в них постепенно снижалась в жидкой среде в фотоавтотрофных условиях в течение 7 суток.

5. Получены жизнеспособные протопласты из талломов 5-ти видов красных, зеленых и бурых морских макрофитных водорослей. Протопласты двух видов регенерировали клеточную стенку.

Показать весь текст

Список литературы

  1. ., Брей Д., Льюис Дж., Рефф М., Роберте К., Уотсон Дж. Молекулярная биология клетки. Пер. с англ. — М.: Мир, 1994.- Т. 3. — 519с.
  2. Н.Я. Микрофлора морей СССР.-М.: Наука, 1981.-192с.
  3. З.Э. Физиология и биохимия грибов. М.: Изд. МГУ, 1988.-230с.
  4. Биология черноморских агарофитов. М.: ИОРАН, 1993.-210с.
  5. Биотехнология растений: культура клеток. / Под ред. P.A. Диксона. -Пер. с англ. М.: ВО «Агропромиздат», 1989.- 280с.
  6. Е.И. Состояние и перспективы развития марикультуры водорослей // Рыбное хозяйство. 1984.-N8.- С. 33−37
  7. Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений. М.: Наука, 1964.- 272с.
  8. Р.Г. Экспериментальный морфогенез и дифференциация в культуре клеток растений. М.: Наука, 1975.
  9. Р.Г. Рост и дифференциация в культуре клеток и тканей / В кн. Рост растений и природные регуляторы. М.- Наука, 1977. С.6−21.
  10. Р.Г. Перспективы использования культивируемых клеток растений в биотехнологии // Биотехнология. 1984.- 239с.
  11. К.Л. Ульвовые водоросли (Chlorophyta) морей СССР JL: Наука, 1974.- 166с.
  12. Водоросли. Справочник / Вассер С. П., Кондратьева К. В. и др. Киев: Наукова думка, 1989.- 608с.
  13. В.Б. Донные макрофиты Белого моря. М.: Наука, -1986.-255с.
  14. В.Б., Цапко A.C., Блинова Е. И., Калугина A.A., Петров Ю. Е. Промысловые водоросли СССР.- М.: Пищ. промышленность, 1971.- 270с.
  15. Г. М., Вшивцев B.C., Крестникова Е. В., Родова H.A., Телегин М. Л. Некоторые особенности клеток опухоли и суспензионной культуры бурой водоросли Fucus distichus // Физ. Раст. 1989.- Т. 36.-С. 162−165.
  16. Г. М., Родова H.A. Культура клеток макроводорослей.-Апатиты, 1989.- 19с.
  17. Ю.Ю., Сытник K.M. Клеточная инженерия растений. Киев: Наукова Думка, 1984.- 160с.21 .Голлербах М. М. Водоросли, их строение, жизнь и значение. М.: Изд-во Моск. о-ва испыт. природы, 1951.- 172с.-(Среди природы- Вып. 34).
  18. Н.П., Альгология. М.: Высш. школа, 1991.-256с.
  19. М.В., Тамбиев А. Х., Кирикова H.H., Асланян P.P., Шелястина H.H. Получение аксеничных эксплантатов из талломов морских водорослей // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1984. Т. 5.- С. 716−721.
  20. Жизнь растений. Т. 3. Водоросли, лишайники. / Под ред. М.М.
  21. Голлербаха. М.: Просвещенье, 1977.- 488с.
  22. Калугина-Гутник А. А. Фитобентос Черного моря. Киев, Наукова думка, 1975.- 247с.
  23. И.В. Химический состав и народнохозяйственное значение промысловых макрофитов морей // Использование биологических ресурсов Мирового океана. М., 1981.- С. 131−150.
  24. А.А., Рабинович М. Л., Елякова Л. А. Ферментативный гидролиз целлюлозы. V Целлюлазные комплексы морских организмов японского моря. Биоорганическая химия том 8, № 11, 1982. — с. 1490−1496.
  25. Клеточная инженерия / Бутенко Р. Г., Гусев М. В., Киркин Д. Ф., Корженевская Т. Г., Маркарова Е. Н. / Биотехнология: Учеб. пособие для
  26. ВУЗов. Под ред. Н. С. Егорова и В. Д. Самуилова. — М.- Высшая школа, 1987.- 124с.
  27. P.P. Глобальный потенциал морской биотехнологии // Журн. общ. биол, — 1986, — Т. 157.- № 3.- С. 328−336.
  28. Кондратьева J1.M.- Тен Хак Мун. Деградация полимерных субстратов морских макрофитов культурой Cytophaga НК-5 // Микробиология. -1989.- Т. 58.- № 6.- С. 990−993.
  29. Компьютерная биометрика / Под ред. В. Н. Носова. — М.: Изд. Моск. Унив., 1990.-231с.
  30. Т.Г., Бутенко Р. Г., Гусев М. В. ассоциации цианобактерий с культивируемыми клетками и тканями высших растений. / Культура клеток растений и биотехнология. М.: Наука, 1986- С. 225−242.
  31. Т.Н. К биотехнологии культивирования ламинарии японской в двухгодичном цикле // Промысловые водоросли и их использование. -М., 1987.- С. 20.
  32. Курс низших растений. / Под ред. М. Б. Горленко. М.: Высшая школа, 1981.-519с.
  33. Л.И. Бурые и красные водоросли М.- Изд-во МГУ, 1927.-145с.
  34. Липский A. JL Глубинное культивирование клеток высших растений / Культура клеток растений. М.: Наука, 1981.- С. 51−68.43 .Литвинов М.А.- Определитель микроскопических почвенных грибов. -Л., 1967. 289с.
  35. Н.Ф. Выращивание водорослей и беспозвоночных в морских хозяйствах. М.: Пищ. пром., 1979.- 198с.
  36. В.Н. Инструкция по биотехнике культивирования ламинарии сахаристой в двухгодичном цикле в условиях Белого моря. Мурманск: ПИНРО, 1987.- 60с.
  37. В.Ф. Особенности структуры нематеция у Ahnfeltia plicata (Huds.) Fries из Колючинской губы (Чукотской море) // Новости сист. низ. растений.- 1970.- Т. 7.- С. 99−101.
  38. О.В., Кучерук Н. В. Эколого-морфологическая пластичность черноморской Phyllophora nervosa и проблема существования Филлофорового поля Зернова // Биология черноморских ага-рофитов.- М., -1993.- С. 97−107.
  39. Е.И., Микудич Д. Е. Характеристика полисахаридов некоторых красных водорослей Черного и Балтийского морей // Альгология.- 1992.- Т. 2.- N 2.- С. 25−29.
  40. Методы общей бактериологии. / Под ред. Герхардта в Зт.-М.: Мир, 1984.
  41. Методы экспериментальной микологии. / Под ред. Белай В.И.- Киев: Наукова Думка, 1982.- 450с.51 .Морозова-Водяницкая Н. В. Сезонная смена и «миграция» водорослей Новороссийской бухты / Раб. Новоросс. биолог, ст. им. Арнольди.-1930.-В. 4.- 16с.
  42. К.Х. Фотосинтез и фотоавтотрофные культуры растительных клеток // В сб. Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. / Под ред. Р. Г. Бутенко.- М.: Наука, 1991.-С. 56−76.
  43. Л.П. Водоросли залива Петра Великого. Л.: Наука. Ленинг. отд-ние, 1980. — 231с.
  44. Л.П. Красные водоросли дальневосточных морей России.-Спб.- Изд-во Ольга, 1994.- 330с.
  45. В.А. Ламинариевые и фукусовые водоросли в морях СССР // Растит, ресурсы.-1973.- Т. 9.- С. 123−127.
  46. Н.М. Грибная флора грубых кормов.- Киев: Изд. АН УССР, 1953.-487с.
  47. Н.А. Математические методы в биологии.- М: Изд. МГУ, 1978.- 264с.
  48. В.Ф. Культивирование водорослей макрофитов // Культивирование тихоокеанских беспозвоночных и водорослей. М., 1987.- С. 8−12.
  49. Руководство к практическим занятиям по микробиологии. / Под ред. Н. С. Егорова.- М.: Изд. МГУ, 1983.- 236с.
  50. Р., Уиттик А. Основы альгологии.- Пер. с англ.- М.: Мир, 1990.-595с.
  51. В.А., Золотухина Е. Ю., Бурдин К. С. Биотехнология морских макроводорослей.- М.: Изд. МГУ, 1992.- 150 с.
  52. А.П., Гусаков А. В., Черноглазое В. М. Биоконверсия лигноцеллюлозных материалов: Учебн. пособие.- М.: Изд-во МГУ, 1995.- 224с.
  53. А.П., Черноглазое А. В., Гусаков А. В. Методы изучения и свойства целлюлолитических ферментов. / В изд. «Биотехнология». (Итоги науки и техники АН СССР). М., 1993.- 152с.
  54. Л.А., Козицкая В. Н. Биологические активные вещества водорослей и качество воды.- Киев: Наукова Думка, 1988.- 254с.
  55. А.Х. Реакционная способность экзометаболитов растений.-М: Изд. МГУ, 1984.- 72с.
  56. А.Х. Новое направление в альгологии / В сб. Биология наших дней.- М.: Знание, 1987.- С. 96−114.
  57. А.Х., Асланян Р. Р. Эксплантация водорослей-макрофитов вискусственную питательную среду // Океанология.- 1984.-Т. 24.- N 1,-С. 139−142.
  58. А.Х., Асланян P.P. Каллусные структуры морских водорослей / Тез. Докл. I Всес. Конф. «Актуальные проблемы современной альгологии».- Киев: Наукова Думка, 1986.- С. 24.
  59. А.Х., Асланян Р. Р., Гусев М. В., Кирикова H.H., Шелястина H.H. Каллусные структуры нескольких видов морских водорослей-макрофитов // Изв. АН СССР. Сер. биол.- 1987.- Т. 2.- С. 297−300.
  60. А.Х., Асланян P.P., Кирикова H.H. Получение каллусных культур из ряда видов морских макрофитных водорослей / В сб. «Применение научных разработок ученых-биологов в рыбном хозяйстве».- М: Изд. МГУ, 1988.- С. 101−104.
  61. А.Х., Кирикова H.H., Паньков С. J1. Роль бактерий-спутников в процессе внеклеточного выделения у морской зеленой водоросли Platymonas viridis // Вестник МГУ. Сер. 16. Биология.- 1986.- N 3.- С. 71−75.
  62. А.Х., Кирикова H.H., Шелястина Выделение органических соединений морскими водорослями. Вестн. Моск. Ун-та. Сер. 16. Биология, 1983,№ 1.-с. 52−55.
  63. А.Х., Николаева Е. В. Получение аксеничных культур морских макрофитных красных водорослей // Биотехнология, 1996,№ 10, С.51−56.
  64. А.Х., Николаева Е. В., Асланян P.P. Изучение каллусных структур и некоторых аспектов размножения Ahnfeltia plicata белого моря // Вестн. Моск. Ун-та. Сер. 16. Биология. 1996. № 2 с. 39−43.
  65. А.Х., Николаева Е. В., Синицын А. П., Аникина М. И., Асланян P.P. Действие грибных ферментных препаратов на таллом красной водоросли Palmaria Palmata // Вестн. Моск. Ун-та. Сер. 16. Биология.1998. № 4 с. 32−35.
  66. А.Х., Синицын А. П., Николаева Е. В., Аникина М. И., Воздействие экзоферментов наземных грибов на клеточную стенку морских красных водорослей // Биотехнология, 1997, № 2, С. 10−14.
  67. A.B. Вопросы цитологии, морфологии, биологии и филогении водорослей.- Киев: Изд-во АН УССР, 1962.- 235с.
  68. Г. Л. Низшие растения, их использование в агропромышленном комплексе.- Кишинев: Кишинев, с/х ин-т им. Фрунзе, 1988.-35с.
  69. А.И. Полисахариды красных морских водорослей / В сб. Прогресс химии углеводов.- М.: Наука, 1985.- С. 77−96.
  70. А.И. Полисахариды морских водорослей: Проблемы изучения и использования. // Биологически активные вещества морских организмов. М.: АН СССР, -1990.- В. 1.- С. 97−111.
  71. А.И., Козлова Е. Г. Полисахариды водорослей. XX. Изучение одонтолана сульфатированного полисахарида из красной водоросли Odonthalia corymbifera (Gmel.) J. Ag. // Биоорган, химия.- 1975.- T. 1.- С. 912−918.
  72. А.И., Мартынова M.Д., Кочетков Н. К. Обнаружение агаразы в моллюсках рода Littorina // ДАН СССР.- 1970.- T. 194.-N2.- С. 455−457.
  73. А.И., Мирошникова Л. И. Полисахариды водорослей. XV. Окрашенный субстрат для определения агаразной активности // Журнал общей химии.- 1975.- T. XLV (CVII).- С. 455−459.
  74. А.И., Чижов О. С. Химические исследования водорослей.- М.: изд. «Знание», 1988.- 68с.
  75. А.И., Яроцкий C.B., Шашков A.C., Тищенко Б. П. Поли-сахаридный состав Rhodymenia stenogona Perest. и применение спектроскопии 13С-ЯМР для установления строения ксиланов //
  76. Биоорг. химия.- 1978а.- Т. 4.- N 1.- С. 57−65.
  77. А.И., Яроцкий С. В., Эстевес M.JI. Полисахариды водорослей XXIII Полисахариды красной водоросли Barigia fuscopurpurea (Dillw.) Lyngb // Биоорг. химия.- 19 786.- Т. 4.- N 1С- 66−72.
  78. JI.B. Особенности популяций культивируемых клеток / В сб. Культура клеток растений.- М.: Наука, 1981.- С. 5−16
  79. К.М. Экологический метаболизм в море.- Киев: Наукова Думка, 1971.- 252 с.
  80. В. Морские водоросли и их использование.- М.: ИЛ, 1953.-248с.
  81. И.О., Кордюм В. М. Экспресс-метод определения числа живых и мертвых клеток в культурах водорослей // Мат. IV Науч. Конф. молодых ученых АН УССР.- Киев: Наукова Думка, 1972.-С. 41.
  82. Е.В. Биология Ahnfeltia plicata (Rhodophyta) Белого моря. / АН СССР. Кольский научный центр. Апатиты.- 1990.-42с.
  83. Шубравый 0. И. Аквариум с морской водой для содержания и разведения примитивного многоклеточного организма Trichoplax и других мелких беспозвоночных // Зоолог. Журн.- 1983, — Т. XII.- N 4.-С. 618−621.
  84. Abe Н., Uchiyarna М., Sato R. Isolation and identification of native auxins in marine algae // Agr. Biol. Chem.- 1972.-V. 36.- P. 2259−2260.
  85. Araki Т., Aoki Т., Kitamikado M. Preparation arid regeneration of protoplasts from wild-type of Porphyra yezoensis and green variant of P. tenera//Bull. Jpn. Soc. Sci. Fish- 1987.-V.53.- P. 1623−1627.
  86. Araki Т., Hayakawa M., Taniaru Y., Yoshimatsu K., Morishita T. Isolation and regeneration haploid protoplasts from Bangia atropurpurea (Rhodophyta) with Marine bacterial ensyrnes // J. Phycology.- 1994.- V,-30.-N6.- P. 1040−1046.
  87. Aslanyan R.R., Tambiev A.H. Vegetative growth of explants of marine macroalgae on artificial nutrient medium. // Algologia.- 1993.- V. 3.- N 1 P. 100−102.
  88. Augier H. Les hormones des algues. Etat actuel des connaissanoes. II. Recherche et tentatives didentification des aib-berellines, des cytokinines et de diverses autres substances de nature honnonale // Bot. Mar.- 1976.— V. 19.-P. 245−254.
  89. Bauer A.W., Kirby W.M.M., Sherris J.C., Turck M. Antibiotic susceptifc>ily testing- by a standardized single disk method // Amer. J. Clin. Pathol- 1966.-V. 45.- P. 493−496.
  90. BjorkM., EkmanP., Wall in A., Pedersen M. Effects of growth rate and other factors on protoplast yield from four species of the red seaweed Gracilaria (Rhodophyta) // Bot. Mar.-1990.- V. 33.- P. 433−439.
  91. Bjork M., Gomes-Penchetti J.L., Garcia-Reina G., Pedersen IVI. Protoplast isolation from Ulva rigida (Chlorophyta) // Br. Phycol. J.- 1992.-V. 27.- P. 401−407.
  92. Bradley P. M, Cheney D.P. Some effects of plant growth regulators on tissue cultures of the marine red alga Agardhiella subulata (Gigartinal es, Rhodophyta) // Hydrobiologia. 1990.- V. 204/205.- P. 353−360.
  93. Bradley P.M., Cheney D.P., Saga N. One step antibiotic disk method for obtaining axenic cultures of multicellular marine algae // Plant cell, tissue and organ culture.- 1988.- V. 12.- P. 55−60.
  94. Buggeln R.G. Auxin, an endogenous regulator of growth in algae // J. Phycol- 1976.- V. 12.- P. 355−358.
  95. Buggeln R.G. Morphogenesis and growth regulators / In: The Biology of Seaweeds (eds. Lobban C.S., Wynne M.J.).- Black well Scientific Publications, -Oxford, 1981.- P. 827−660.
  96. Butler D.M., Evans L.V. Isolation of protoplasts from LaminariayVBr.
  97. PhycoL- 1988.- V. 23.- P. 204.
  98. Butler D.M., Evans L.V. Cell and tissue culture of macroalgae // In: Akatsuka I. (ed.) Introduction to Applied Phycology, SPB Academic Publishing, The Hague. 1990.- P. 3−19.
  99. Butler D.M., Evans L.V., Kloareg B. Isolation of protoplasts from marine macroalgae // In: Akatsuka I. (ed.) Introduction to Applied Phycology, SPB Academic Publishing The Hague.- 1990.- P. 647−668.
  100. Butler D.M., Ostgaard K., Boyen C., Evans L.V., Jensen A., Kloareg B. Isolation conditions for high yields of protoplasts from Laminaria saccharina and L. digitata (Phaeophyceae) // J. exp. Bot.- 1989.- V. 40.- P. 1237−1246.
  101. Caccamese S., Toscano R.M., Furnaring- R. et a.l. Antimicrobial activities of red and brown algae from southern Italy coast // Bot. Mar.-1985.- V. 28.- N 11.- P. 505−511.
  102. Carbohydrate analysis- a practical approach / Ed. by M.F. Chaplin, J.F. Kennedy. IRL. Press Limited. Oxford, England.- 1986.- P. 341.
  103. Chapman A.R. The wild harvest arid culture Laminaria longicruris in eastern Canada // FAO Fish. Techn. Pap.- 1987.- P. 193−198.
  104. Chapman V.J., Chapman DJ. Seaweeds and their uses.-L.: Chapman aid Hall, 1980.- 334p.
  105. Chen L.C.M. Callus-like formation from Chondrus crispus / 1-st Intern. Phycol Congr.- St. John’s, 1982.- P.25−27.
  106. Chen L.C.M. Cell development of Porphyra miniata. (Rhodophyta) under axenic culture // Bot.Mar.1986.- v. 24.- P.436−439.
  107. Chen L.C.M. protoplast morphogenesis of Porphyra leucosticta in culture // Bot. Mar.- 1987.- v. 30.- P. 399−403.
  108. Chen L.C.M. Cell suspension culture from Porphyra linearis (Rhodophyta) a multicellular marine red alga // J. of applied Phycol- 1989.-V. 1.-P. 153−169.
  109. Chen L.C.M. Porphyra Cell Suspension Culture, Novel Biotechnological Approach for the Production of Hoshi-nori // Nat. Hist. Res., Special Issue № 3. 1997. P. 111−121.
  110. Chen L.C.M., McCracken I. An antibiotic protocol for preparing axenic cell cultures of Porphyra linearis // Bot. marina.- 1993.- V. 36.- P. 29−32.
  111. Chen L.C.M., Taylor A.R.A. Medullary tissue culture of red alga Chondrus crispus // Canad. J. Bot.- 1978.- V. 56.- P. 883−886.
  112. Chen L.C.M., Craigie J.S., Xie Z.K. Protoplast production from Porphyra linearis using a simplified agarase procedure capable of commercial application // J. Appl. Phycol- 1994.- V. 6.- P. 35−39.
  113. Chen L.C.M., McCracken I., Ragan M.A. Biotechnology potential for hoshi-nori production // World Aquacult.- 1990. V. 21.- P. 106−107.
  114. Chen L.C.M., McCracken I., Xie Z.K. Electrofusion of protoplasts of two Species of Porphyra (Rhodophyta) //Bot. Mar.- 1995.- V. 38.- P. 335−338.
  115. Chen Y.C., Chiang- Y.M. Development of protoplasts from, Grateloupia sparsa and G. filicina (Halymeniaceae, Rhdophyta) // Bot. Mar.- 1994.- V. 37.-N4.- P. 361−386.
  116. Chen Y.C., Shih H.C. Development of protoplast of Ulva fusciata for algal seed stock // J. Phycol. 2000 № 36. P.608−612.
  117. Cheney D.P. Genetic engineering in seaweeds- applications and current status // Nova Hedwigia.- 1986.- V- 61.- P. 22−29.
  118. Cheney D.P. Interspecific protoplast fusion and somatic hybridization in the agarophyte Gracilaria / Abstr. 19 Int. Seaweed Symp.- Vancouver, 1989.-P. 17−69,
  119. Cheney D.P., Luistro A.H., Bradley P.M. Carraginan anialysis of tissue cultures and whole plants of Agardhiella subulata I// Hydrobiologia.- 1987.-V. 151/152.- P. 161−166.
  120. Cheney D., Mar E., Saga N., van der Meer J. Protoplast isolation and celldivision in the agar producing- seaweed Gracilaria (Rhodophyta) // J. Phycol.- 1986.- V. 22.- P. 238−243.
  121. Cocking E.G., Evans P.K. The Isolation of Protoplasts / Plant Tissue and Cell Culture /Ed. Street H.E.- Oxford, 1973. P. 100−120.
  122. Cristensen P.J., Cook F.D. The isolation and enumeration of Cytophagas // Can. J. Microbiol. 1972.- V. 18.- P. 1933−1940.
  123. Datta R., Datta B.K., Chauhan V.D. Axenic culture of marine brown alga Sargassum swartzii // Ind. J. Of Mar. Scie. Vol.23. 1994. P.165−167.
  124. Davison I.R., Polne-Fuller M. Photosynthesis in protoplasts of Macrocystis pyrifera (Phaeophyta) // J. Phycol.- 1990.-V. 26.- P. 384−387.
  125. Dawes C.J., Koch E.W. Branch, micropropagation and tissue culture of the red algae Eucheuma denticulatum and Kappaphycus alvarezii farmed in the Philippines // J. Appl Phycol.-1991.- V. 3.- P. 247−257.
  126. Dawes C.J., Trono G.C., Lluisma D.O. Clonal propagation of Eucheuma denticulatum and Kappaphycus alvaiezii for Phylippine seaweed farms // Hydrobiologia.- 1993.- V. 261.- N6.- P. S79−383.
  127. Dawes C.J., Teasdale B.W., Friedlander M. Cell wall structure of the agarophytes Gracilaria tikvahiae and G. cornea (Rhodophyta) and penetration by the epiphyte Ulva lactuca (Chlorophyta) // J. of Appl. Phycol. № 12 2000. P.567−575.
  128. Deacon-Smith R. A., Lee-Potter J.P., Pogers D.J. Anticoagulant activity in extracts of British marine algae // Bot. Mar.-1985 V 28. -N8 P. 333−336.
  129. Dixon P. S. The Biology of the Rhodophyta.- Oliver and Boyd, Edinburgh.- 1973--P. 376.
  130. Doubet R.S., Quatrano R.S. Isolation of marine bacteria capable of producing specific lyases for alginate degradation // Appl. Env. Microbiol -1982.- V. 6.- P. 754−756.
  131. Droop N.R. A procedure for routine purification of algal cultures withantibiotics II Br. Phycol. Bull.- 1967.- V. 3.- P. 295−297
  132. Druehl L.D., Hsiao S.I.C. Axenic culture of Laminariales in difined media // Phycologia.- 1969.- V. 7.- P. 47−49.
  133. Ducreux G., Kloareg B. Plant regeneration from protoplasts of Sphacelaria (Phaeophyceae) // Planta.- 1988.- V. 174.-P. 25−29.
  134. Elyakova L.A., Favorov V.V. Isolation and certain properties of alginatlyase from the mollusk Littorina sp. // Biochem. biophys. Acta.-1974, — V. 358.- P. 341−3.54.
  135. Evans L.V., Butler D.M. Seaweed biotechnology current status and future prospects // In: Biochemistry of the Alegae and Cyanobacteria. Proc. Phytochem. Soc. Eur. Ed. — by L.J. Roiers, J.R. Gallon. — 1987.- V. 28.- P. 335−350.
  136. Fang T.C. Some genetic features revealed from culturing the gaploid cells of kelps II Hydrobiologia, — 1984.- V. 116/117.-P. 317−318.
  137. Fang T.C., Yan Z., Wang Z. Some preliminary observations on tissue cultures in Laminaria japonica and Undaria pinnatifida Kezue Tougbao Soi. Bull. Jpn.- 1983.- V. 28.- P. 247−249.
  138. Fisher D.D., Gibor A. Production of protoplasts from the brown alga, Sargassum muticum (Yendo) Fensholt (Phaeophyta) Phicologia 1987.- V. 26.- P. 488−495.
  139. Fleurence J. The enzymatic degradation of algal cell walls: a useful approach for improving protein accessibility. II J. Of Appl. Phycol. № 11 1999. P.313—314.
  140. Foyn B. Lebenszyklus, Cytology und Sexualitat der Chlorophycee Cladophora suhriana Kutzing// Arch. Protistenkd.-, 1934.- V. 83.- P. 1−56.
  141. Fries L. On the cultivations of axenic red algae // Physiol. Plant.- 1963.-V.16.- P. 695−708.
  142. Fries L. Requirements for organic. substances in seweads.// Bot.-Mar.1973.-V. 26.- P. 19−31.
  143. Fries L. Growth regulating: effects of phenylacetic acid and p-hydroxyphenylacetic acid on Fucus spiralis in axenic culture // Phycologia. -1977.- V. 16.-P. 451−455.
  144. Fries L. Axenic tissue cultures from the sporophytea of Laminaria digitate and L. hyperborea // J. Fhycol.- 1980. -16.- P. 475−477.
  145. Fries L. D-vitamins arid their precursors as growth regulators in axenically cultivated marine macroalgae // J. Phycol. — 1984. V.20.-P. 6266.
  146. Fujimoto K., Kaneda I. Screening: test for the antioxygenic compounds from marine algae and fractionation from Eisenia bicyclis and Undaria pinnatifida // Bull. Jap. Soc. Fac. Fish. -1980.- V. 46.- P. 1125−1128.
  147. Fujimura T., Kawai. T., Shiga M., Kajiwara T., Hatanaka A. Regeneration of protoplasts into complete thalli in the marine green alga Ulva pertusa // Nippon Suisan Gakkaishi, — 1989.- V.55.- N 8.- P. 1353−1359.
  148. Fujita Y., Migita S. isolation and culture of protoplasts from some seaweeds // Bull. Fac. Fish.- 1985.- V.57.- P.39−45.
  149. Fujita Y., Migita S. Fusion of protoplasts from the thalli of two different color types in Porphyra yezoensis Ueda and development of fusion products // Jpn. J. Phycol.- 1987.- V.35.- P. 201−208.
  150. Fujita Y., Munehisa S. Protoplast isolation and fusion in Porphyra (Bangiales, Rhodophyta) //Jpn. J. Phycol.- 1987.- V. 35.- P. 201−208.
  151. Fujita Y., Saito M. Protoplast isolation and fusion in Porphyra / Abstr. XIII Int. Seaweed Symp.- Vancouver, 1989.- P. 17−68.
  152. Garcia-Jimenez P., Marian F.D., Rodrigo M., Robaina R.R. Sporulation and sterilization method for axenic culture of Gelidium canariensis // Journal of Biotechnology 70 (1999) P.227−229.
  153. Garcia-Reina G, Gomez-Pinchetti J., Robledo D.R., Sosa P. Actualpotential and speculative applications of seaweed cellular biotechnology: some specific comments on Gelidium // Hydrobiologia.- 1991.- V. 221.- P. -181−194.
  154. Garcia-Reina G., Romero R., Luque A. Regeneration of thalliclones from Laurencia // In: Plant Cell Biotechnology. Ed. by D. Pals M.S.S., Mavituna F., Novais J.M.- NATO ASI Series. Springer-Verlag.- 1988.- P. 81−86.
  155. Gibor A., Polne M., Biniaminov M., Neushul M. Exploratory studies of vegetative propagation of marine algaes procedure for obtaning axenic tissues // Proc. X-th Int. Seaweed Symp. 1981.- P. 587−695.
  156. Giraud G. Culture de Fucus vesiculosus en vue de rexperirnetation. Essais sur d’autres Fucales // Physiol. Veg.-1983.- V. 21.- N 3.- P. 551−562.
  157. Goldstein M. Regeneration and vegetative propagation of the agarophyte Gracilaria debt 1 is (Forska) Boerg. (Rhodophyta) // Bot. Mar.- 1973. V. 16,-P. 226−229.
  158. Gomez-Pinchetti J., Bjork M., Pedersen M., Garcia-Reina G. Factors affecting protoplast yield of the carrageenophyte Solieria filiformis (Gigartinales, Rhodophyta) // Plant Cell Reports. -1993.- V.12- P. 541−545.
  159. Gomez-Pinchetti J.L., Garcia-Reina G. Marine phycophages enzymes that degrade cell walls of seaweeds // Mar. Biol.-1993.- V. 116.- P. 553−558.
  160. Gorham J. Plant growth regulators in Sargassum muticum // J. Phycol.-1977.- V. -13 (suppl.).- P. 25.
  161. Gong X., Chen F. Optimization of culture medium for growth of
  162. Haematococcus pluvialis // J. of Appl. Phycol. № 9 1997. P.437−444.
  163. Gross W. Preparating of protoplasts from the carrageenophyte Gigartina corymbifera (Kuts.) J. Ag-. (Rhodophyta) // J. Microb. Methods.- 1990.- V. 12.-P. 217−223.
  164. Gusev M.V., Tambiev A.H., Kirikova N.N., Shelyastina N.N., Aslanyan R.R. Callus formation in seven species of agarophyte marine algae .// Mar. Biol.- 1987.- V. 95.- P. 593−597.
  165. Hanisak M.D. Effect of indole-3-acetic acid on growth of Codium fragile subsp. Tomentosoides (Clorophyceae) in culture // J. Phycol- 1979.- V. 15.-P. 124−127.
  166. Hansen J.E. Mariculture of marine plants: a critical pathway approach // Proc. «OCEAN'83″, San-Francisco, New-York.-N.Y, — 1983.- P. 890−894.
  167. Haslin C., Pellegrini M. Culture Medium Composition for Optimal Thallus Regeneration in the Red Algae Asparagopsis armata Harvey (Rhodophyta, Bonnemaisoniaceae) //Bot. Mar.- 2001.- V. 44.- P. 23−30.
  168. Hoppe H.A. Marine algae: their products and constituents // Marine algae in pharmaceutical science.- B.- N.Y., 1982.- V.2. p. 3−48.
  169. Huang W., Fujita Y. Callus induction and Thallus Regeneration of the Red Alga Meristotheca papulosa // Bot. Mar. Vol.40,1997, p. 55−61.
  170. Jacobs W.P., Davis W. Effects of gibberellic acid on the rhizome and rhizoids of the algal ocenocyte Caulerpa prolifera in culture // Ann. But.-1983.- V. 52.- P. 39−41.
  171. Jacobs W.P., Falkenstein K., Hamilton K.H. Nature and amount of auxin in algae // Plant Physiol.- 1985.- V 78.- P. 844−848.
  172. Kaczyna F., Megnet R. The effects of glycerol and plant-growth regulators on Gracilaria verrucosa. (Gigartinales, Rhodophyceae) // Hydrobiologia.- 1993.- V. 268.- N 1.- P. 57−64.
  173. Kapraun D.F. Marine biologist clones seaweeds cells // Gen. Engineering
  174. News.- 1987.- V. 7.- P. 42−43.
  175. Kapraun D.F., Sherman S.G. Strain selection and cell isolation of Ulvaria oxysperma (Chlorophyta) for net cultivation // Hydrobiologia.- 1989.- V. 179.- P. 53−60
  176. Kawashima. Y., Tokuda H. Callus formation in Ecklonia cava (Laminariales, Phaeophyta) // Hydrobiologia.- 1990. V. 204/205.- P. 275 380.
  177. Kawashima Y., Tokuda. H.. Kominiami H., Kakuno T. Effects of plant hormones on the induction of adventitious embryos from calluses of a brown algae Ecklonia cava (Laminariales) // Oceanis.- 1992.- V. 18.- N 1.- P. 1−9.
  178. Kloareg B., Quatrano R.S. Enzymatic removal of the cell wails from zygotes of Fucus distichus (L.) Powell (Phaeophyta) // Hydrobiologia. -1987.-V. 151/152.-P. 128−129.
  179. Kloareg B., Quatrano R.S. Structure of the cell walls of marine algae and ecophysiological functions of the matrix polysaccharides // Oceanogr. Mar. Biol. Ann. Rev.- 1988.- V. 26.-P. 259−315.
  180. Kloareg B., Polne-Fuller M., Gibor A. Mass production of viable protoplasts from Macrocystis pyrifera // Plant. Science.- 1989.- V. 62.- P. 105−112.
  181. Lapointe B.E., Williams L.D., Goldman J.C. et al. The mass outdoor culture of macroscopic marine algae // Aquaoulture.-1978.- V. 9.- P. 9−16.
  182. Lawlor H.J., McComb J.A., Borowitska M.A. Tissue culture of Ecklonia radiata (Phaeophyceae, Laminariales): effects on growth of light, organic carbon source and vitamins // J. appl. Phycol- 1989.- V. 1.- P. 105−112.
  183. Lee T. Aposporous gametophyte formation in stipe explant from Laminaria saccharina (Phaeophyta) // Bot. Mar.- 1985.-V. 28.- P. 179−185.
  184. Lee T.F. Callus development from Laminaria saccharina sporophytes derived from gametophytes of aposporous origin // Abstr. Amer. Soc. of1.mnol. and Oceanography. Phycol. Soc of America.- 1986, — P. 75.
  185. LeGall Y., Brand J.P., Kloareg B. Protoplast production in Chondrus crispus gametophytes // Plant Cell Rep.- 1990.- V. 8.- P. 582−585.
  186. LeGall Y., Brown S., Marie D., Mejjad M. Kloareg B. Production of protoplasts from the red alga Chondrus crispus. Application to the quantification of nuclear DMA and to the evaluation of GC% // Oceanis.-1992.-V. 18.-P. 11−17.
  187. R.A., Lounsbery D.M. 1969. Isolation, cultivation and characterization of Flexibacteria // J. of Microbiol- 1969.- 58.- P. 145−170.
  188. Lipkin J. Outdoor cultivation of sea vegetables // Plant and soil.- 1985.-V. 89.-P. 159−183.
  189. Liu X.W., Gordon M.E. Tissue and cell culture of New Zealand Pterocladia and Porphyra sp. // Hydrobiologia. 1987.- V. 116/117.- P. -147 154.
  190. Liu W. X» Tang Y.L., Liu X., Fang T.C. Studies on the preparation and properties of sea snail enzymes // Hydrobiologia.- 1984.- V. 116/117.- P. 319−320.
  191. Mazur H., Konop A., Synak R. Indole-3-acetic acid in the culture medium of two axenic green microalgae // J. Of Appl. Phycol. № 3 2001. P.35−42.
  192. McCully M. The histological localization of the structural polysaccharides of seaweeds // Ann, N.Y. Acad. Sci.- 1970.-7.175.- P. 702−711
  193. McLachlan J. Inorganic nutrition of marine macroalgae in culture / In IM Srivaslava (ed.) Syntetic and Degradative Processes in Marine Macrophytes.- Berlin, 1982. P. 71−98.
  194. McLachlan J. Macroalgae (seaweeds): Industrial resourses and their utilization // Plant and soil.- 1985.- V. 20.- P. 137.
  195. Millner P.A., Callow M.E., Evans L.V. Preparation of protoplasts from the green alga Enteromorpha intestinales (L.) Link. // Planta.- 1979.- V. 147.1. P. 174−177.
  196. Mollet J.C., Verdus M.C., Kling R., Morvan H. Improved protoplast, yield and cell wall regeneration in Gracilaria verrucosa (Huds) Papenfuss (Gracilariales, Rhodophyta) // J. Exp. Botany.- 1995.- V. 46.- N 283.- P. 239 247.
  197. Morrise L.M., McLean M., Williamson F.B., Long W.F. b-Agarases from Pseudomonas atlantica // Hydrobiologia. 1983.-V. 116/117.- P. 576−579.
  198. Moss B.L. Would healing and regeneration in Fucus vesiculosus / Proc. VI Intern. Seaweed Symp. / Ed. A.D. Devirville.-1963.- P. 117−122.
  199. Mumford T. Commercialization strategy for nori cultivation in Puget Sound, Washington / In K. Bird, P.H. Benson (eds.) Seaweed Cultivation for Renewable Resources.- Elsevier, 1987.- P. 351−372.
  200. Munda I.M. Distribution and use of some economicaly important seaweeds in Iceland // Hydrobiologia.- 1987.- V. 151/152.- P. 257−260.
  201. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant.- 1962.- V. 15.- P. 473−497.
  202. Nakamura T. Production of agar.- Jap. Patent (Kokai), 74−101 651.- 1974.
  203. Nair S. Yokoya Apical callus formation and plant regeneration controlled by plant growth regulators on axenic culture of the red alga Gracilariopsis tenuifrons (Gracilariales, Rhodophyta) // Phycological Research 2000- № 48, P. 133−142.
  204. Nikolaeva E.V., Usov A.I., Sinitsyn A.P., Tambiev A.H. Degradation of agarophytic red alga cell wall components by new crude enzyme preparations //J. Appl. Phycol. 11,1999, p. 385−389.
  205. Nikolaeva E.V., Usov A.I., Tambiev A.H. Study on the marine agarolytic bacterium-infusorium association // Mar. Biol. 1999. № 135. P.407−410.
  206. Nisizava K., Noda H., Kikuchi R. et al. The main seaweed food in Japan // Hydrobiologia. 1987.- V. 151/152.- P. 5−36.
  207. Notoya M. Tissue culture from the explant Ecklonia stolonifera Okamura (Phaeophyta, Laminariales) //Jpn. J. Phycol. № 36 1988. P. 175−177.
  208. Notoya M. Chloroplast changes and differentiation of callus cells in Eckloniopsis radicosa (Kjellman) Okamura (Phaeophyta, Laminariales) // J. Of Appl. Phycol. № 9 1997. P.175−178.
  209. Norton T.A., Mathieson A.C. Neushul M. Morphology and environment // The Biology of Seaweeds.- Oxford, 1981.- P. 421−433.
  210. Paloma G. Juan A. C. Fusion and histocompatibility in Rhodophyta // Hydrobiologia. 1996.- V. 322/327.- P. -387−392.
  211. Patel K.S. A new record of agar-digesting microflora // Geobios.- 1979.-V. 6.- N 6.- P. 222.
  212. Patwary M., Van der Meer J. Improvement of Gracilaria tikvahiae (Rhodophyta) by genetic modification of thallus morphology // Aquaculture.-1983.- V.33.- P. 207−211.
  213. Percival E. The polysaccharides of green, red and brown seaweeds: their basic structure, biosynthesis and function // Br. Phycol. J.- 1979.- V. 14.- P. 103−117.
  214. Percival E., McDowell R.H. Chemistry and Enzymology of Marine Algae Polysaccharides.- Acad. Press. London N.Y.- 1967.-205p.
  215. Polne M., Gibor A., Neushul M. The use of ultrasound for the removal of macroalgal epiphytes // Bot. Mar.- 1980.-V. 23.- P. 731−734.
  216. Polne-Fuller M. A multinucleated marine ameba which digested seaweeds // J. Protozool- 1987.- V. 34.- N 2.- P. 159−165.
  217. Polne-Fuller M. The past, present and future of tissue culture and biotechnology of seaweeds.- 1988.- Lille Blotecnol. Symp.- P. 1−22.
  218. Polne-Fuller U., Gibor A. Developmental studies of Porphyra species. 1. Cell differentiation and protoplast regeneration in Porphyra perforata // J. Phycol.- 1984.- V. 20.- P. 609−616.
  219. Polne-Fuller M. Gibor A. Calluses, cells and protoplasts in studies towards genetic improvement of seaweeds // Aquaculture.- 1986.- V. 57.- P. 117−123.
  220. Polne-Fuller M., Gibor A. Calluses and callus-like growth in seaweeds: Induction and culture // Hydrobiologia. -1987a.- V. 151/152.- P. 131−137.
  221. Polne-Fuller M., Gibor A. Microorganisms as digestors of seaweed cell walls // Hydrobiologia.- 1987b.- V. 151/152.- P. 405−406.
  222. Polne-Fuller M., Gibor A. Developmental studies in Porphyra (Rhodophyceae). III. Effects of culture conditions on wall regeneration and differentiation of protoplasts // J. Phycol., 1990.- V.26.- P. 674−682.
  223. Polne-Fuller M., Biniaminov M., Gibor A. Vegetative propagation of Porphyra perforata// Hydrobiologia. 1984.-V. 11.- P. 308−313.
  224. Polne-Fuller M., Rogerson A., Amano H., Gibor A. Digestion of seaweeds by the marine ameba Trichosphaerium // Hydrobiologia.- 1990.- V. 204/205.- P. 409−413.
  225. Polne-Fuller M., Saga N., Gibor A. Algal cell, callus, and tissue cultures and selection of algal strains // Nova Hedwigia.- 1986.- V. 83.- P. 30−36.
  226. Provasoli L. Effect of plant hormones on Ulva // Biol. Bull. (Wood Hole).- 1958.- V. 114.- P. 375−384.
  227. Provasoli L. Media and prospects for the cultivation of marine algae // In Hattori A.(ed.), Proc. U.S.-Jpn. Conf. Cultures and collection of algae.- Jpn. Soc. Plant Physiol. Kyoto, 1968.- P. 63−75.
  228. Provasoli L., Carlucci A.I. Vitamins and growth regulators // In Algal
  229. Physiology and Biochemistry. Ed. by W.D.P. Stewart. Blackwell Ski. Publ., Oxford.- 1974.- P. 74−1-787.
  230. Provasoli L., Pintner I.J. Bacteria produced polymorphysm in an axenic laboratory strain of Ulva lactuca (Chlorophyta.) // J. Phycol.- 1980.- V. 16.-P. 196−201.
  231. Provasoli L., McLauglin J.J.A., Droop M.R. The development of artificial media for marine algae //Arch. Mikrobiol.-1957.- V. 25.- 392−428.
  232. Quatrano R.S., Caldwell B.A. Isolation of a unique marine bacterium capable of growth on wide variety of polysaccharides from macroalgae // Appl. envir. Miorobiol- 1978.- V. 36.- P. 979−981.
  233. Reddy C.R.K., Migita S., FujitaY. Protoplast isolation and regeneration of three species of Ulva in axenic culture. // Bot. mar.- 1989.- V. 32.- P. 783 790.
  234. Robaina R., Garciajimenez P., Luglie A. The growth-pattern and structure of callus from the red algae Laurencia sp. (Rhodophyta, Ceramiales) compared to shoot regeneration // Bot. Mar.- 1992.- V. 35.- N 4.- P. 267−272.
  235. Robaina R., Garcia-Reina G., Lugue A. The effects of the physical characteristic of the culture medium on the development of red seaweeds in tissue culture // Hydrobiologia.- 1990a. V. 204/206.- P. 137−142.
  236. Robaina R., Garcia P., Garcia-Reina G., Lugue A. Morphogenetic effect of glicerol on tissue cultures of the red seaweed Grateloupia doryphora // J. appl. Phycol.- 1990b.- V. 2.- P. 137−143.
  237. Rochaix J., Van Dillewijn J. Transformation of the green alga Chlamidomonas reinhardii with yeast DNA // Nature.-1982.- V. 296.- P. 7073.
  238. Rotmann K.W.G. The collection, utilization and potential farming of red seaweeds in Namibia // Hydrobiologia.- 1987.- V. 151/152.- P. 301−307.
  239. Round F.E. The Biology of the Algae.- London: Edward Arnold Publ1.d., 1977.- 278p.
  240. Rusig Anne-Marie., Cosson J. Plant regeneration from protoplasts of Enteromorpha intestinalis (Chlorophyta, Ulvophyceae) as seedstock for macroagal culture//J. Of Appl. Phycol. № 13 2001. P. 103−108.
  241. Ryther J.H. Technology for commercial production four macroalgae // Energy Appl. Biomass Proc. Nat. Meet. Biomass R and D Energy Appl.-N.Y., 1985.- P. 177.
  242. Saga N. Isolation of protoplasts from edible seaweeds // Bot. Mar. Tokyo.- 1984.- V. 97.- P. 423−427.
  243. Saga N., Gibor A. Pure culture of algae / In Yamada Y., Okada Y. (ed.) Plant biotechnology.- Tokyo, 1986.- P. 55−71.
  244. Saga N., Kudo T. Isolation and culture of protoplasts from the marine green alga Monostroma angicava // J. appl. Phycol- 1989.- V. 1.- P. 25−30.
  245. Saga N., Sakai Y. Axenic tissue culture and callus formation of the marine brown alga Laminaria angustata // Bull. Jpn. Soc. Sci. Fish.- 1983.-V. 49.-P. 1561−1563.
  246. Saga N., Sakai Y. Isolation of protoplasts from Laminaria and Porphyra // Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 1984.- V. 50.- P. 1085.
  247. Saga N., Motomura T., Sakai Y. Induction of callus from the marine brown alga Dictiosiphon foeniculaceus // PI. Cell Physiol.- 1982.- V. 23, — P. 727−730.
  248. Saga N., Polne-Fuller M., Gibor A. Protoplasts from seaweeds / In Algal Biomass Tecchnologies: An Interdisciplinaiy Perspective. Ed. by W.R. Barclay and R.M. Mclntosch // Nova Hedwigia.- 1986.- V. 83, P. 37−43.
  249. Saga N., Uchida T., Sakai Y. Clone Laminaria from single isolated cells // Bull. Jpn. Soc. Sci. Fish.- 1978.- V. 44.-P. 67−96.
  250. Santelices B. The wild harvest and culture of economically important species of Gelidium in Chile // FAO Fish. Techn. Pap. -1987.- N 281.- P. -165.
  251. Smith R.S., Bidwell R.G.S. Inorganic carbon uptake by photosynthetically active protoplasts of the red macroalga Chondrus crispus // Mar. Biol.- 1989.- V. 102.- P. 1−4.
  252. Srinivasa R. Yuji F. Red rot resistance in interspecific protoplast fusion product progeny of Porphyra yezoensis and Porphyra tenuipedalis // Phycological Research 2000- № 48. P.281−289.
  253. Stanier R.Y. Studies on marine agardigesting bacteria // J. Bacteriol.-1941. v. 42.- P, 527−559.
  254. Sylvester A.W., Waaland J.R. Cloning the red alga Gigartina exasperata for culture on artificial substrates // Aquaculture.- 1983.- V. 31.- P. 305−318.
  255. Tait M.I., Milne A.M., Grant D., Somers J.A., Staples J., Long W.F. Williamson F.B., Wilson S.B. Porphyra cell cultures: isolation and polysaccharide production // J.appl. Phycol.-1990.- V. 2.- P. 63−70.
  256. Tang Y. Isolation and cultivation of vegetative cells and protoplasts of Porphyra suborbiculata Kjellm // J. Shandong Coll. Oceanol. — 1982.— V. 12. P.37−50
  257. Tatewaki M. Formation of crustaceous sporophyte with unilocular sporangia in Scyfcosiphon lomentaria //Phycol.- 1966.-V. 6.- P. 62−66.
  258. Tatewaki M., Provasoli L., Pintner I.J. Morphogenesis of Monostromaoxyspermum in axenic culture, especially in bialgal culture // J. Phycol.-1983.- V. 19.- P. 409−416.
  259. Tokuda H., Kawashima Y. Protoplast isolation and culture of brown alga Undaria pinnatifida // In Stadler T., Mollion J., Verdus M.-C., Karamasov Y., Christiaen M.H. (eds). Algal Biotechnology. Elsevier, — 1988.- P. 151−157.
  260. Tseng C.K. Commercial cultivation. In: The Biology of the Seaweeds. Ed. by Lobban C.S. arid Wynne M.J. Blackwell Scientific Publications, Oxford.-1981.- P. 680−741.
  261. Tseng C.K. Algal biotechnology industries and research activities in China // J. of Appl. Phycol. № 9 2001. P.375−380.
  262. Turvey J.K., Christison J. The hydrolysis of algal galactans by enzymes from a Cytophaga species // Biochem J. 1967.- v. 105.- F. 311−316.
  263. Usov A.I., Elashvili M.Ya. Polysaccharides of Algae. 44. Investigation of sulfated galactan from Laurencia japponica Yamada (Rhodophyta, Rhodomelaceae) using partial, reauctive hydrolysis / Bot. Marina.- 1991.- V. 34.- F. 553−560.
  264. Usov A.I., Miroshnikova L.I. Isolation of agarase from Littorina mandshurica by affinity chromatography on Biogel A, Carbohydrate Reseach.- 1975.- V. 43.- P. 204−207.
  265. Van der Meer J.F. Genetic contributions to research on seaweeds / Prog, in Phycol. Res.- 1986.- V. 4.- F. 1−36.
  266. Van der Meulen J.F. The enzymatic hydrolysis of agar by Cytophaga flevensis sp. nov. // Thesis Univ. bronineen, Netherlands. 1975.-p.80
  267. Waaland S.D. Evidens for a species-specific ceil fusion hormone in red algae // Protoplasma.- 1975.- V. 86.- P. 253−263.
  268. Waaland J.R., Diokson L.G. Preparation of Porphyra protoplasts // J. Phycol- 1987.- V. 23.- P. 13.
  269. Waaland J.R., Dickson L.Q., Watson B.A. Protoplast isolation andregeneration in the marine red alga Porphyra nereocystis.- Planta.- 1990.- V. 181.-P. 522−528.
  270. Wakibia J.G., Anderson R.J. Growth rates and agar properties of three gracilarioids in suspended open-water cultivation in StHelena Bay, South Africa//J. Of Appl. Phycol. № 13 2001. P.195−207.
  271. Wang S. Zhane X., Zhidong Z. Sun Y. A study on the cultivation of the vegetative cells and protoplasts of Porphyra haitanensis // Oceanol Limnol. Sinica.- 1986.- V. 17.- P. 217−221.
  272. Wataru M., Hajime Y., Hirotoshi Y. Mariculture of Laminaria japonica (Laminariales, Phaeophyceae) using protoplast regeneration // Phycological Research 2000- № 48. P. 169−176.
  273. Watson B.A., Waaland S.D. Partial purification of a glycoprotein cell fusion hormone from Griffithsia pacifica, a red algal // Plant Physiol.- 1983. V. 71.-p. 327−332.
  274. Whytney L.L. Macroalgal commercialisation in United States / Proc, Intern Seaweed Symp., — 1987.-V. 12.- P 183−186.
  275. Xue Chang-Hu, Fang Yu, Lin Hong, Chen Lei, Li Zhao-Jie Chemical characters and antioxidative properties of sulfated polysaccharides from Laminaria japonica // J. Of Appl. Phycol. № 13 2001. P.67−70.
  276. Yan Z. Studies on tissue culture of Laminaria japonica and Undaria pinnatifida, // Hydrobiologia-- 1984.- V. 116/117.- p. 314−316.
  277. Yamamoto T., Yamaoka T., Tokura P, Hirose H. Microconstituents in seaweeds // Proc. 9-th Int. Seaweed Syrup.- 1979.- P. 445−450.
  278. Yokota N. Handro W. Development or callus-like structures and plant regeneration in thallus segments of Grateloupia filiformis Kutzing (Rhdoophyts) // Hydrobiologia. -1993.- V. 26−1.- N 6.- P. 407−413.
  279. Zhang J. Some experiments arid observations and the tissue and cell culture of Undaria pinnatifida // J. Shandong- Coll. Oceanogr. -1982.- V. 12.1. P. 29−38.
  280. Zhang D. Study on the protoplast preparation, culture and fusion of somatic cells of two species of green algae Ulva linza and Monostroma angicava Kjellm //J. Shandong Coll. Oceanol.- 1983.- V. 13.- P. 57−65.
  281. Zhao H., Zhan X. Isolation and cultivation of the vegetative cells of Porphyra yezoensis // J. Shandong Coll. Oceanogr.- 1981.- V. 11.- P. 61−66.
Заполнить форму текущей работой

На отлично!